CZ355697A3 - Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu - Google Patents

Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu Download PDF

Info

Publication number
CZ355697A3
CZ355697A3 CZ973556A CZ355697A CZ355697A3 CZ 355697 A3 CZ355697 A3 CZ 355697A3 CZ 973556 A CZ973556 A CZ 973556A CZ 355697 A CZ355697 A CZ 355697A CZ 355697 A3 CZ355697 A3 CZ 355697A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
omega
amino acid
chiral
amine
aminodonor
Prior art date
Application number
CZ973556A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ283836B6 (cs
Inventor
David L. Stirling
Adrew L. Zeitlin
George W. Matcham
Original Assignee
Celgene Corporation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from US07/369,723 external-priority patent/US4950606A/en
Application filed by Celgene Corporation filed Critical Celgene Corporation
Publication of CZ283836B6 publication Critical patent/CZ283836B6/cs
Publication of CZ355697A3 publication Critical patent/CZ355697A3/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu
Oblast techniky
Vynález se týká způsobu stereoselektivní syntézy chirálních aminů.
Dosavadní stav techniky
Nositelem biologické aktivity chemických sloučenin, jako jsou farmaceutické produkty a produkty aplikovatelné v zemědělství, které obsahují centrum chirality, je často převážně jedna z možných čhirálních forem. Vzhledem k tomu, že většina chemických syntéz není ve své podstatě stereoselektivní, způsobuje tento jev vážný problém z hlediska chemické výroby. V některém stupni výroby, buň až po získání výsledných chirálních sloučeninznebo po připravení jejich chemických prekursorů se stejným centrem chirality je zapotřebí provádět obohacení produktu ve prospěch jedné chirální formy. Až již se zvolí pro obohacování kterýkoliv stupeň reakce, je tento postup svou vlastní podstatou omezen tím, že se při něm může dosáhnout maximálního teoretického výtěžku 50 % požadovaného enantiomeru (pokud není k dispozici způsob recyklování nežádoucího enantiomeru).
Mnohé z chirálních sloučenin tohoto typu jsou aminy. Kromě toho, vzhledem k všestrannosti jejich reakcí jsou dobrými kandidáty pro štěpení na enantiomery, po němž lze provést stereoselektivní konverzi na chirální sloučeniny. Chemické výroba chirálních aminů • · · ♦ · · • * neobsahujících druhý enantiomer se až dosud spoléhá zejména na štěpení směsi dvou chirálních forem prostřednictvím vytvoření diasteromerických derivátů, jako jsou soli s chirální kyselinou, stereoselektivní syntetické postupy a použití chirálních chromatografických kolon (viz například US patent č. 3 944 608 a EP A 36 265)·
Některé strukturní ty^ý aminů je možno štěpit na enantiomery enzymaticky. Jsou dobře známy enzymatické reakce zahrnující α-aminokyseliny a jejich použití bylo navrženo pro stereospecifické preparace. Tak například v US patentu č. 3 871 958 je popsána enzymatická příprava derivátů α-aminokyseliny šeřinu kopulací aldehydu s glycinem v přítomnosti threoninaldolázy odvozené od druhu E. coli a příbuzná syntéza seronilu za použití ethanolaminu.
Poměrně málo bylo publikováno o enzymatických reakcích aminokyselin, u nichž aminoskupina není ve vicinální poloze vůči skupině karboxylové kyseliny. Yonaha a další, Agric. Biol. Chem. 42. (12), 2363 - 2367 (1978) popisují omega-aminokyselina: pyruvát transaminázu 7 druhu Pseudomonas, pro níž je puryvát výlučným aminoakceptorem. Tento enzym, který byl nedávno před tím vyroben v krystalické formě a charakterizován (viz Yonaha a další, Agric. Biol. Chem., 41 (9), 1701 - 1706 (1977)), měl nízkou substrátovou specificltu pi*o omega-amino kyseliny, jako je hypotaurin, 3-aminopropansulfonát, β-alanin, 4-aminobutyrát
a 8-aminooktanoéto katnlyzoval transaminace mezi primárními aminoalkany a pyruvátem·
Nakano a další, J. Biochem., 81, 1375 - 1381 (1977) identifikovali dvě omega-amino kyselinové transaminázy v B. cereus: β-alanin tran^tfinázu, která odpovídá Yonahově omega-amino kyselina:pyróvát transamináze a -aminobutyrát transaminázu. Tyto dvě transaminázy je možno rozlišit na základě výrazně odlišné ektivity vůči 8-alaninu (100 : 3) -aminobutyrétu (43 : 100) a na základě jejich odlišných požadavků na aminoakceptory.
Burnett a další, J. C. S. Chem. Comm. , 1979, 826 - 828, uvedli, že omega-amino kyselina:pyruvát transmináza a -aminobutyrát tramsamináza vykazují odlišné pre'ference vůči dvěma terminálním atomům vodíku v tritiem značeném -aminobutyrátu.
Tanizawa a další, Biochem. 21, 1104 - 1108 (1982) zkoumali bakteriální L-lysin-£-aminotransferázu a L-ornithin-<í -aminotransferázu a uvedli, že i když jsou oba tyto enzymy specifické pro L-amino kyseliny, působí distálně a se stejnou stereospecifitou jako -aminobutyrát transamináza studovaná Burnettem a dalšími, viz shora.
Yonaha a další, Agric. Biol. Chem., 47 (10), 2257 - 2265 (1983) dodatečně charakterizovali omega-amino kyséLina:pyruvát transaminázu a -aminobutyrát transaminázu (EC 2.6.1.18 a EC 2.6.1.19) a dokumentovali • » * • ·
- 4 jejich distribuci v různých organismech.
V/aters a další, FEvIS Micro, Lett., 34 (1986) 279 - 282, ve zprávě o úplném katabolismu β-alaninu a β-aminoisobutyrátu působením P-raeruginosa, uvedli, že první stupeň zahrnuje transaminaci β-alanin:pyruvát aminotransferézou.
Enzymatické metody jsou až doad považovány za metody pro dělení směsí chirálních aminů, které nejsou aminokyselinami, jako například 2-aminobutanolu. · Většina z těchto metod zahrnuje derivatizaci zejména aminoskupiny a využití teto chráněné skupiny nebo jiné skupiny v molekule pro vlastní separaci. Tak například v EP-A 222561 je popsán postup, při němž se racemický 2-áminobutanol převede na N-karbamoylderivát, který se pak uvede do styku s alkylalkanoátem v přítomnosti enzymu lipázy. Esterifikace volné hydroxyskupiny je zřejmě omezena na S-enantiomer N-karbamoylderivátu, který se potom hydrolýzuje. Tento postup je samozřejmě omezen na aminy, nesoucí esterifikovatelnou hydroxyskupinu a kromě toho specificky vyžaduje předchozí chránění aminoskupiny vytvo řením karbamoylskupiny (-NH-CO-) za účelem dosažení stereospecificity při enzymatické reakci.
EP-A 239 122 popisuje podobný postup aplikovatelný na širší třídu 2-amino-l-alkanolů.
e'· ♦ ·
Japonská publikace Kokai JP 55-138 389 popisuje přípravu viciálních aminoalkoholů tak, že se na alkyl- nebo eralkyl substituovaný ethylenimin působí mikroorganismy rodu Bacillus, Próteus, Erwinia nebo Klebsiella.
Japonská patentová publikace Kokai
JP 58-198 296 uvádí postup, při němž se d,l N-acyl-2-aminobutanol podrobí působení aminoacylázy odvozené od různých druhů Asperigillus, Penicillium a Streptomyces, která hydrolýzuje pouze d-N-acyl-2-aminobutanol.
Japonská patentová publikace Kokai
JP 59-39 294 popisuje způsob štěpení racemického 2-aminobutanolu tak, že se tato látka převede na N-acetylderivát, na který se působí Micrococcus acylázou za vzniku 1-2-aminobutanolu a d-N-acetyl-2-aminobutanolu, přičemž d-N-acetyl-2-aminobutanol se chemicky hydrolýzuje na d-2-aminobutanol.
Japonská patentová publikace Kokai
JP 63-237796 popisuje způsob, při němž se R,S-l-methyl-3za
-fenylpropylamin zpracovává/aerobních podmínek kultivací specifických mikroorganismů. Přitom se přednostně metabolizuje S-forma. Nejvyšších výtěžků a optické čistoty se dosahuje zs použití kvasinek druhu Candida humicola a Trichdsporon melibiosaceum. Neuvádí se zde enzymatická povaha metabolismu Srformy, k níž dochází v těchto aerobních kulturách, například oxidáza, dehydrogenáza, amoniak lyséza atd., haht“ .
V abstraktu japonské patentové publikace Kokai JP 63-2734S6 je zveřejněna mikrobiální syntéza l-(4-methoxyfenyl)-2-aminopropanu s R-konfigurací na jednom ze dvou chirálních center z l-(4-methoxyfenyl)-2-propanu za použití Sarcina lůtea.
Podstata vynálezu
V nejširším smyslu zahrnuje vynález použití omegaaminokyselina transaminázy v přítomnosti aminodonoru pro stereoselektivní syntézu chirálních aminů, v nichž je aminoskupina vázána k neterminálnímu chirálně substituovanému atomu uhlíku. Vynález je tedy založen na objevu, že omega-aminokyselina transaminázy působí stereoselektivně na aminoskupiny, které nejsou v poloze omega a že tohoto působení je možno použít pro stereoselektivní syntézu chirálního aminu v pouze jedné konfiguraci.
Pod pojmem omega-aminokyselina transaminázy se rozumějí jakékoliv enzymy, které jsou schopné převádět terminální skupinu vzorce -CH2-NH2 omega-aminokyseliny na skupinu vzorce -CH=O a naopak.
Enzymatickou rovnovážnou reakci, které se využívá při způsobu podle vynálezu, je možno znázornit takto:
R^-C-R^ + aminodonor omega-aminokyselina transmináza
NHi á , I p amino R -CH-fl + akčeptor
I kde
I každý ze symbolů
R1 a R2 jednotlivě představuje alkyl- nebo arylskupinu popřípadě substituovanou jednou nebo více enzymaticky neinhibujícími skupinami a R1 se liší od R2 bud strukturou^nebo chiralitou nebo
R1 a R2 dohromady představují uhlovodíkový řetězec se 4 nebo více atomy uhlíku obsahující centrum chirality.
Pod označením aminodonor se rozumějí různé aminoL · sloučeniny podrobněji charakterizované dále, které jsou s 1 schopny poskytnout aminoskupinu znázorněnému ketonu, čímž se z nich stanou karbonylové sloučeniny, působením omega-aminokyselina transaminázy.
Pod výrazem aminoakceptor se v tomto popisu rozumějí různé karbonylové sloučeniny podrobněji charakteri> zované dále, které jsou schopny přijmout aminoskupinu ze znázorněného aminu rovněž působením stejné omega-aminokyselina transaminázy.
Pro enzymatické reakce znázorněné výše je charakteristické především to, že aminoskupina v získaném primárním aminu není v terminální (omega) poloze a že se nemusí jednat o aminokyselinu.
A · *
Předmětem vynalezu je způsob stereoselektivni synk
7. tézy jedné chirální formy aminu obecného vzorce IA nebo IB
Ί * 2 rI^O-^R
·.
Η νη2
Ο · Ί
R^C-^RX (ΙΑ) (ΙΒ) kde
R1 a R2 představují alkyl nebo arylskupiny, popřípadě substituované enzymaticky neinhibující skupinou, přičemž R1 se odlišuje od R2 strukturou nebo chiralitou, v množství podstatně převyšujícím množství druhé chirální formy, jehož podstata spočívá v tom , že se keton obecného vzorce II
II
R1- C - R2 (II) kde R1 a R2 mají stejný význam jako u připravovaného aminu; uvádí do styku s omega-aminokyselina transaminázou v přítomnosti aminodonoru přinejmenším tak dlouho, dokud se nevytvoří podstatné množství jednoho z uvedených chirálních aminů.
Vynález je založen na objevu, že omega-aminokyselina transamináza převádí keton, který není chirální (přinejmenším s ohledem na karbonylový atom uhlíku) v podstatě na pouze jedinou chirální formu aminu.
Pod pojmem enentiomerické obohacování se zde rozumí zvyšování množství -jednoha .enantiome-,. ru vzhledem k množství druhého enantiomeru. Při enantiomerickém obohacování může docházet 1) k poklesu množství jedné chirální formy ve srovnání s druhou, 2) ke zvýšení množství jedné chirální formy ve srovnání s druhou nebo 3) k poklesu množství jedné chirální formy a ke zvýšení množství druhé chirální formy. Účelným pojmem pro vyjádření enantiomerického obohacení je p^em nadbytku enantiomeru (ee), který je definován rovnicí
- 10 Ε1 - Ε2 ee = —ή----x 100
Ε + Ε kde
Ε1 představuje množství první chirální formy aminu a
E představuje množství druhé chirální formy stejného aminu.
Je-li tedy počáteční poměr obou chirálních forem 50 : 50 a dosáhne se enantiomerického obohacení poskytujícího výsledný poměr 50 : 30, je hodnota nadhytku enantiomeru ee vzhledem k první chirální formě 25 zatímco když se dosáhne výsledného poměru enantiomerů 70 : 30# je hodnota ee vzhledem k první chirální formě 40 %. Za použití způsobu podle tohoto vynálezu se obvykle může dosáhnout hodnot ee 90 $ nebo vyšších.
Pod výrazem podstatně vyšší, jak se ho používá v tomto popisu v souvislosti s vyjádřením množství jedné chirální formy aminu vzhledem k množství druhé chirální formy aminu při stereoselektivní syntéze tohoto aminu, se rozumí množství vyjádřené poměrem obou chirálních forem alespoň asi 3:1, což odpovídá hodnotě ee alespoň asi 50 %·
Chirální aminy obecného vzorce IA a IB připravené způsobem podle vynálezu, mají několik strukturních omezení. Za prvé, aminoskupina v nich obsažená je-primární, ale musí být vázána k sekundárnímu atomu uhlíku, tj. k atomu uhlíku nesoucímu jeden atom vodíku
2 a dva substituenty, které jsou odlišné od vodíku (R a R ).
2
Za druhé, R a R se sice volí ze struktur stejného typu, ale tyto skupiny musí dodávat molekule chiralitu, tj. R^ se nutně musí lišit od R ve struktuře nebo chiralitě nebo
R a R musejí dohromady představovat chirální skupinu.
2
Pokud jsou R a R nezávislé skupiny, jedné se obvykle o alkyl-, aralkyl- nebo arylskupiny, přednostně alkylskupiny s přímým nebo rozvětveným řetězcem obsahujícím 1 až 6 atomů uhlíku, fenylalkylskupiny s přímým nebo rozvětveným řetězcem obsahujícím 7 až 12 atomů uhlíku nebo o fenyl nebo naftylskupinu. Jako příklady těchto skupin je možno uvést methyl-, ethyl-, η-propyl-, isopropyl-, n-butyl-, isobutyl-, sek.butyl-, fenyl-, benzyl-, fenethyl-, 1-fBnethyl-, 2-fenylpropylskupinu, atd. Kromě toho, poněvadž enzymatické reakce podle vynálezu zasahuje znázorněnou aminoskupinu a přilehlý atom uhlíku,'může být každá ze skupin R a R popřípadě substituována jednou nebo více skupinami, za předpokladu, že se nejedné o skupiny inhibující enzymy, tj. skupiny, které by významněji ovlivňovaly účinek transaminézy nebo s ním soutěžily, když se chirálních aminů nebo ketohů, které tyto skupiny nesou, používá v praktických koncentracích. To se může snadno určit jednoduchou zkouškou inhibice. Když se zjistí inhibice, může se často minimalizovat reakce nízkých koncentracích reakčního činidla. Jako typické substituenty, na něž se však navrhor r ♦ ♦ * váné řešení neomezuje, je možno uvést halogeny, jako je chlor, fluor, brom a jod, hydroxy-, nižší alkyl-, nižší alkoxy-, nižší alkylthio-, cykloalkyl-, karbamoylskupina, mono- a di-(nižšíalkyl)substituované karbamoylskupina, trifluormethyl-, fenyl-, nitro-, eminoskupina, a di-(nižšíjalkyl) substituovaná aminoskupina, alkylsulfonyl-, arylsůlfonyl-, alkylkarboxamido-, arylkarboxaraidoskupina, atd.
Jako typické skupiny ve významu R^ a R dohromady, je možno uvést methylbutan-1,4-diyl-, pentan-1,4-diyl-, hexan-l,4-diyl~, hexan-1,5-diyl- a 2-methylpentan-1,5-diylskupinu.
Jako neomezující příklady typických aminů, které jsou vhodné pro způsob podle vynálezu, je možno uvést 2-aminobutan, 2-amino-l-butanol, 1-amino-l-fenylethan, l-amino-l-(2-methoxy-5-fluorfenyl)ethan, 1-amino-l-fenylpropan, l-amino-l-(4-hydroxyfenyl)propan,
1-amino-l- (4-bromf eny 1) pr op an, 1-amino-l- (4-nitrofenyl) propan, l-fenyl-2-aminopropan, l-(3-trifluormethylfenyl)-2-aminopropan, 2-aminopropanol, 1-amino-l-fenylbutan, 1-f enyl-2-aminobutan, 1- (2,5-dime thoxy-4-me thylf enyl) -2-aminobutan, l-fenyl-3-aminobutan, l-(4-hydroxyfenyl)-3= -aminobutan, l-amino-2-methylcyklopentan, l-amino-3-methylcyklopentan, l-amlno-2-methyloyklohexan a l-emino-l-(2-naftyl)ethan.
**· · · ·♦ · r »· · · · r· f 9 9 f *·♦ ··♦ · · · 9 r r
Jako příklad způsobu podle vynálezu je možno uvést postup, při němž se na acetofenon působí transaminázou za přítomnosti aminodonoru za vzniku S-l-amino-l-fenylethanu, který neobsahuje R-l-amino-l-fenylethan, nebo který ho obsahuje jen ve velmi malém množství.
Aminoakceptory jsou ketokarboxylové kyseliny, alkanony nebo látky, z nichž se tyto sloučeniny vytváí^ in šitu. Jako typické příklady ketokarboxylových kyselin je možno uvést a-ketotearboxylové kyseliny, jako je kyselina glyoxalová, kyselina pyrohroznová, kyselina oxaloctová apod. a jejich soli. Typickým alkanonem je butan-2-on.
Používat je možno také jiných látek, které lze'převádět na aminoakceptory jinými postupy za použití enzymů nebo celých buněk. Jako příklady látek, které je možno konvertovet ne tyto aminoakceptory, je možno uvést kyselinu fumarovou (která rychle přechází in šitu na kyselinu oxalooctovou), glukózu (které se konvertuje na pyruvát), laktát, kyselinu maleinovou atd.
Aminodonory jsou aminy zahrnující nechirální aminokyselinu glycin a chirální aminokyseliny mající S-konfiguraci, jako je L-alanin nebo kyselina L-aspartová. Může se také použít aminů, jak chirálních tak nechirálních, které nejsou aminokyselinami, jako S-2 aminobut8nu, propylaminu, benzylaminu, atd.
Omega-aminokyselina transminézy, užitečné při způsobech podle vynálezu, jsou známé enzymy závislé na pyridoxalfosfátu, které jsou přítomny v různých mikroorganismech, jako je Pseudomonas, Escherichia, Bacillus, Saccharomyces, Hansenula, Candida, Streptomyces, Aspergillus a Neurospora. Dvě omega-iminokyselina transaminázy, které jsou obzvláště užitečné při způsobech podle vynálezu, EC 2.6.1.18 a EC 2.6.1.19, byly připraveny v krystalickém stavu a charakterizovány Yonaho<4 a dalšími, viz Agric. Biol. Chem., 47 (10), 2257 - 2265 (1983).
Mikroorganismy, které mají požadovanou aktivitu, je možno snadno izolovat pomocí chemostatové kultury, tj. kultivací v konstantním, ale omezeném chemickém prostředí s aminoakceptorem a s aminem, jako * r·
- 15 jediným zdrojem dusíku. Aminem může být, ale nemusí chirální amin, poněvadž v normálním prostředí omega-aminokyselina transaminázy metabolizují primární aminy. Z nechirálních aminů, kterých bylo s úspěchem použito pro tvorbu omega-aminokyselina transmináz, je možno uvést n-oktylamin, cyklohexylamin, 1,4-butandiemin, 1,6-hexendiamin, 6-aminohexanovou kyselinu, 4-aminomJ(selnou kyselinu, tyramin a benzylamin. Úspěšní bylo použito i chirálních aminů, jako 2-aminobutanu, α-fenethylaminu a 2-amino-4-fenylbutanu, stejně tak jako aminokyselin, jako je L-lysin, L-ornithin, 0-alanin a taurin.
Takovými postupy se kultura obohatí o mikroorganismy produkující požadované omega-aminokyselina transaminázy. Tak například jedná taková chemostatová kultivace za použití náhodných vzorků půdy, které neměly žádnou zvláštní historii, pokud se týče expozici aminům, byla prováděna po dobu přibližně jednoho měsíce. Jako domin^fyfíí mikroorganismus byl potom nezávisle identifikován v Američan Type Culiure Collection Bacillus megaterium, který se podstatně neodlišoval od známých kmenů a byl jim podobný, pokud se týče fenotypu.
Takto izolované organismy se mohou nechat růst různými způsoby. Předně se může použít standardního solného media doplněného fosfátovým pufrem, octanem sodným, jako zdrojem uhlíku, 2-ketoglutarátem, jako
v.
aminoakceptorem a sloučeninou obsahující dusík, jako je n-propylamin, n-oktylamin, 2-aminobutan, 2-aminoheptan, cyklohexylamin, 1,6-hexandij-amin putrescin, 6-aminohexanová kyselina, 4-aminomáselná kyselina, L-lysin, L-ornithin, β-alanin, α-fenethylamin, 1-fenyl-3-aminobutan, benzylamin, tyramin, taurin, atd.
Alternativně se může mikroorganismus nechat růst za použití aminu, jako jed^iného zdroje uhlíku, čímž se růst omezí na ty organismy, které jsou schopny pro získání uhlíku katabolizovat amin.
Za třetí, mikroorganismus se může nechat růst v prostředí obsahujícím jantaran sodný, octan sodný nebo jakýkoliv jiný zdroj uhlíku a amonnou sůl nebo proteinový hydrolyzát, jako hlavní zdroj dusíku, k němž se potom přidá, buň na začátku růstu^nebo v jeho průběhu, amin, jako 2-aminobutan, l-fenyl-3-aminobutan, a-fenéthylamin, atd., pro indukci produkce požadované transaminázové aktivity.
Skutečná enzymatická konverze se může provádět použití izolovaných, ale nerostoucích buněk, nebo tak, keton uvede do styku s rozpustným omega-aminokyselina za že se transaminázovým přípravkem.
Omega-aminokyselina transamináza může být ve volné formě, bučí jako extrakt neobsahující
Λ r
' t · r , r * * · ··· tri- ( , r
- 17 'buňkynebo přípravek obsahující celé buňky, uvedený1 shora, nebo ve formě immobilizoxiaané na vhodném nosiči či matrici, jako je zesítovéný dextran nebo agaróza, oxid křemičitý, polyamid nebo celulóza. Může být také zapouzdřena v polyakrylamidu, alginátech, vláknech apod. Způsoby immohilizace jsou popsány v literatuře (viz například MathQds of Enzymology, 44, 1976)· Metodám za použití immibilizovaného enzymu se dává přednost, pěněvadž po immobilizaci enzymu stačí již jen přes tento enzym vést aminodonor a keton, aby došlo k požadované syntéze a odvádět vytvořený chirální amin způsobem popsaným shora.
I když to není nezbytně nutné, je často výhodé zvyšovat rychlost konverze přídavkem zdroje pyridoxaminu, jako pyridoxalfosfátu k reakčni směsi.
Použité postupy e materiály jsou dále ilustrovány typickými příklady.
Aktivita enzymu: Aktivita enzymu se · vyjadřuje v jednotkách/mg. Jednotka aktivity enzymu je definována jako aktivita, která je schopna vyprodukovat l^umol ketonu za minutu. Za účelem dosažení jednotnosti se aktivita měří, jakožto počet /umoi l-fenylbutan-3-onu vyrobených z R,S-l-fenyl-3-aminobutanu. Pro měření hodnot aktivity omega-aminokyselina transamináz uvedených v následujících příkladech se používá následujícího standardizovaného testu
Známý objem zkoušeného enzymatického přípravku se inkubuje při 37 °C a pH 7 v roztoku následujícího složení:
pyruvát sodný 100 mM
R,S-l-fenyl-3-aminobutan 30 mM pyridoxalfosfát 0,5 mM
Odebere se vzorek a přidá se k němu v množství 20 % jeho objemu 12% vodná kyselina trichloroctová. Vysrážený protein se oddělí odstředěním a koncentrace l-fenylbutan-3-onu v supernatantu se stanoví kapalinovou chromatografií na 100 x 8 mm 4/um Novopak fenyl sloupci. Eluce se provádí 4 3% isopropanolu a 0,09 % kyseliny fosforečné ve vodě. Za těchto podmínek se l-fenylbutan-3-on eluuje za 5,3 minuty.
Čistota aminů: Čistota vyrobených aminů se stanovuje plynovou chromatografií na 1,83 x 2 mm chrom Q sloupci 10 % SE-30 na nosiči 100/120 mesh (125 až 150/um) při 210 °C při průtoku nosného plynu 10 ml/min.
Stanovení enantiomerického obohacení: Hodnota ee daného produktu se stanoví reakcí s (-) a-(trifluormethylfenyDmethoxyacetylchloridem (viz Gal, J. Pharm. Sci., 66. 169 (1977) a Mosher a další, J. Org. Chem., ^4., 25430 (1969) následovanou kapilární plynovou chromatografií derivatizovaného produktu na koloně Chrompack z taveného křemene.
r fr rr r · *r c ♦r r * * ·♦» r r '
- 19Standardní solné medium: Vhodné solné medium pro mikrobiální transformace popsané v následujících příkladech má toto složení:
MgSO4 CaCl2 1,00 g/1 0,021 g/1
ZnS0..7Ho0 4 d 0,20mg/l
MnS04.4H20 0,10 mg/1
h3bo3 0,02 mg/1
CuSO4.5H2O 0,10 mg/1
CoC12.6H20 0,05 mg/1
NíC12.6H2O 0,01 mg/1
FeSO. 4 1,50 mg/1
NaMoO. 4 2,00 mg/1
Fe EDTA 5,00 mg/1
kh2po4 20,00 mM _
NaOH do pH 7
Složení solného media nemá rozhodující důležitost, ale bylo standardizováno, aby bylo eliminováno jakožto proměnná hodnota.
Mikroorganismy; Kultury byly buá získány z označené sbírkyz nebo byly izolovány popsaným způsobem a potom nezávisle identifikovány.
Obohacování mikroorganismů produkujících omega-aminokyselina trensaminázu: Ve standardním solném mediu se udržuje chemostat
* * *
- 20 s 5 g/1 R,S-2-aminobutanu a 10 mM 2-ketoglutarátu při rychlosti ředění 0,03/h. Chemostat se naočkuje a udržuje v provozu asi 1 měsíc při 37 °C a pH 6,8 až 7,0» Kmeny, které se vyvinou se izolují a nechají růst na minimálním agaru obsahujícím solné medium doplněné 10 mM 2-ketoglutarátu a 5 mM R,S-l-fenyl-3-aminobutanu.
Izolace enzymu: Pokud není uvedeno jinak, buňky z kultury se 10 minut odstřelují při 10 000 6, resuspendují se v 10 mM fosfátovém pufru o pH 7 s 0,5 mM pyridoxal fosfátu a rozdrtí se dvěma průchody chlazeným francouzským lisem pracujícím při 103 MPa. Rozdrcené buňky se oddělí jednohodinovým odstřelováním při 10 OOOG a supernatant obsahující enzym se uschová.
¥ynález je blíže osvětlen v následujících příkladech provedení. Příklady mají výhradně ilustrativní charakter a rozsah vynálezu v žádném ohidu neomezují. Pro rozsah vynálezu je určující jen definice předmětu vynálezu.
Přikladl
Růst mikroorganismů produkujících omega-aminokyselina transaminázu za použití aminodonoru jako jediného zdroje dusíku je ilustrován následujícím příkladem.
• * • · ·
- 21 I- , . ____ Bacillus megaterium se nechá růst
I ve 3 litrové třepací láhvi (otáčky 200 min po dobu
I 17 hodin při 30 °C za použití 1 litru shora uvedeného
I solného roztoku, 60 mM octanu sodného, 30 mM fosfátového
I pufru, 30 mM 2-Ketoglutarátu dvojsodného a 100 mM n-proI pylaminu, jako zdroje dusíku. Když kultura dosáhne husI toty 0,6 g sušiny na litr buňky se oddělí a shora uvedeI ným způsobem se z nich izoluje enzym. Specifická aktivita
L omega-aminokyselina transaminázy, která se takto získá
L je vyšší než 0,49 jednotky/mg.
Kmen Bacillus megaterium použitý v ř předchozím postupu byl získán ze vzorků půdy s žádnou zvláštní historií, pokud se týče expozici aminům, naočkováním chemostatu popsaného shora a izolací dominantních organismů (těch, které jsou schopny růstu na R,S-l-fenyl-3-aminobutanu). Kmen byl nezávisle identifikován v Američan Type Culture Collection jako Bacillus megaterium, který se vý* ' znamně neliší od známého kmene ATCC č. 14531 a který je fenotypově podobný ATCC 49O97B.
Příklad 2
V tomto příkladu je ilustrován růst mikroorganismů produkujících omega-aminokyselina trensaminázu za použití aminodonoru, jako jediného zdro^je uhlíku.
r r v r
• ♦ »
Pseudomonas aeruginosa ATCC 15692 se nechá růst na β-alaninu, jakožto jediném zdroji uhlíku, způsobem, který popsali Way a další ve FEMS Micro. Lett., 34, 279 (1986). Buněčné extrakty obsahující omega-aíiinokyselina transaminázu se získají shora popsaným způsobem. Při zkoušení prováděném· shora popsaným způsobem se zjistí, že specifická aktivita omega-aminokyselina transaminázy je 0,040 jednotky/mg.
Příklad 3
Pseudomonas putida ATCC 39213 se kultivuje způsobem popsaným v příkladu 1 a podle tohoto příkladu se postupuje i při získávání extraktu z buněk. Specifická aktivita omega-aminokyselina transaminázy je 0,045 jednotky/mg.
Příklad 4
V tomto příkladu je demonstrována potřeba aminoackeeptoru.
Enzymové extrakty z Pseudomonas putida, Bacillus megaterium a Pseudomonas aeruginosa získá né shora uvedeným způsobem se zkoušecí při pH 9 v 50 mM tris/HCl za použití 30 mM R,S—l-fenyl-3-aminobutanu buž • * » v přítomnosti^nebo v nepřítomnosti 100 cnM pyruvátu sodného. Dosáhne se následujících relativních rychlostí přeměny.
relativní rychlost přeměny
P. putida B. megaterium P. aeruginosa
v přítomnosti pyruvátu 100 100 100
v nepřítomnosti pyrí/vátu 0 0 0
Transaminázová povahe enzymatického účinku je zřejmá z působení sebevražedných inaktivátorů, o nichž je známo, že jsou pro transaminázy specifické (viz například Burnett a další, J. Bio. Chem. 225, 428 až 432, 1980). Inaktivátor (0,5 mM) se předběžně inkubuje se zkušebním mediem před přidáním R,S-l-fenyl-3-aminobutanu.
relativní rychlost přeměny Inaktivátor P.putida B.megaterium P.aeruginosa
žádný 100 100 100
gabakulin 0 13 0
hydroxylamin 3 10 0
• · • · «
- M Stereoselektivita omega-aini.no kyselina transaminázy je zřejmá z výsledků následující Zkoušky za použití 15 mM R-l-fenyl-3-aminobutanu (s pyrl^vátem).
relativní rychlost přeměny
P.putida B.megaterium P.aeruginosa
R,S-l-feny1-3aminobutan 100 100 100
R-l-fenyl-3-aminobutan 3 15 4
Příklad 5
V tomto příkladu je ilustrován růst mikroorganismů za použití amonia, jako jediného zdroje dusíku, přičemž se indukce produkce omega-aminokyselina transaminázy provede přídavkem aminu.
Bacillus megaterium se nechá růst v litrových kulturách ve standardním solném mediu doplněném 40 mM zdroje uhlíku, uvedeného v následující tabulce, 5 mM chloridu amonného, 80 mM fosfátového pufru a 2 πώί aminu, jako indukčního činidla, uvedeného v následující tabulce. Po 30 až 40 hodinách se enzym izoluje a zkouší shora popsaným způsobem.
f 9 specifické aktivita (jednotky/mg)
zdroj uhlíku sukcinát acetét glukonát glukosa
R,S-l-fenyl-l- aminoethan 0,27 0,39 n.t. n.t.
R-l-fenyl-1aminoethan 0,27 0,36 n.t. n.t.
R,S-l-fenyl-3“ aminobutan 0,28 0,33 0,26 0,62
R-l-fenyl-3aminobutan 0,21 0,26 n.t. n.t.
R, S-2-aminobutan 0,13 0,14 n.t. n.t.
R-2-aminobutan 0,06 0,13 n.t. n.t.
tyramin n.t. 0,24 n.t. n.t.
n.t. = nezkoušeno
P ř í k 1 ad 6
V následujícím příkladu je ilustrován
růst mikroorganismů za použití zdroje bohatého : na proteiny
a následující indukce produkce omega-aminokyselina transaminázy přídavkem aminu.
Bacillus megaterium se nechá růst ve 121 litrovém fermentoru při pH 7 a teplotě 30 °C a shora uvedeném solném mediu doplněném 10 g/1 casamino kyselin.
• * r rr
9 · r · '' r r • · rΓ ·*· ··· r r rr '
Obsah fermentoru se míchá a provzdušňuje. Ke směsi se postupně přidá octan sodný až do výsledné koncentrace 120 mM. V tomto okamžiku je hustota buněk 3 g sušiny na 1 litr, l-fenyl-3-aminobutan se přidává až do celkové koncentrace 10 mM. Po 12 hodinách se enzym oddělí a zkouší shora popsaným způsobem. Jeho specifická aktivita je 0,49 jednotek/mg. Příklad 7
Tento příklad ilustruje typickou syntézu chirálního aminu.
Způsobem popsaným v příkladu 1 se z Bacillus megatarium vyrobí rozpustný enzymatický přípravek. Jeho specifická aktivita stanovená shora uvedeným způsobem je 0,56 jednotky/mg. Ke 200 ml vodného roztoku 35θ mg tohoto přípravku, 0,4 mM pyridoxalfosfáťu a 40 mM fosforečnanu sodného se přidá 4,2 mM 1-fenylbutan-3-onu a 100 ml 2-aminobutanu jako aminodonoru. Směs se inkubuje při pH 7 a 30 °C po dobu 4 hodin, fto ktoréž-tofpofetc době je v reakčni směsi přítomen R-l-u-aminobutan v koncentraci 3,35 mM, což odpovídá 80^% konverzi. Produkt se izoluje přídavkem 40 ml 10 N hydroxidu sodného a extrakcí alkalického vodného roztoku 250 ml n-heptanu. Odpařením heptanových extraktů se získá 100,5 g produktu, který byl analyzován shora popsanou derivatizací. Produkt obsahuje
96,4 % S-l-fenyl-S-asinobutanu.
Podobně byl S-l-fenyl-2-aminopropan připraven z l-fenylpropan-2-onu při ee 96,4 s ve výtěžku 94,8 %. S-l-amino-l-fenylethan byl připraven z acetofenonu při ee 100 a ve výtěžku 44 %.
r * r - < r , r r * 9 9 r ,· f f i : ' : ; - g

Claims (8)

  1. - 2Z PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob stereoselektivni syntézy jedné chirální formy aminu obecného vzorce IA nebo IB nh2
    R-^Ó—R2
    H (IA)? nh2 r^C^R1
    H (IB), kde
    R1 a R2 představují alkyl nebo arylskupiny, popřípadě substituované enzymaticky neinhibující skupinou, přičemž R1 se odlišuje od R2 strukturou nebo chiralitou, v množství podstatně převyšujícím množství druhé chirální formy, vyznačující se tím, že se keton obecného vzorce II
    II
    R1- C - R2 (11½ kde R1 a R2 mají stejný význam jako u připravovaného aminu y uvádí do styku s omega-aminokyselina transaminázou v přítomnosti aminodonoru přinejmenším tak dlouho, dokud se nevytvoří podstatné množství jednoho z uvedených chirálních aminů.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se jako aminodonoru použije 2-aminobutanu, glycinu, alaninu nebo kyseliny aspartové.
  3. 3. Způsob podle nároku 1, vyznačující se t í m , že se použije ketonu obecného vzorce II, kde každý ze symbolů R1 a R2 nezávisle představuje přímou nebo rozvětvenou alkylskupinu s 1 až 6 atomy uhlíku, přímou nebo rozvětvenou fenylalkylskupinu obsahující 7 až 12 atomu uhlíku nebo fenyl- nebo naftylskupinu, přičemž každá
    I z těchto skupin je nesubstituovaná nebo substituovaná e enzymaticky neinhibujicí skupinou.
  4. 4. Způsob podle nároku 1, vyznačující se t í m , že se použije ketonu obecného vzorce II, kde každý ze symbolů R1 a R2 nezávisle představuje methyl-, ethyl-, η-propyl-, isopropyl-, η-butyl-, isobutyl-, sek.butyl-, fenyl-, benzyl- nebo fenethylskupinu.
  5. 5. Způsob podle nároku 1, vyznačující se t í m , že se keton a aminodonor uvádějí do styku s celými buňkami mikroorganismu produkujícího omega-aminokyselina transamínázu.
  6. 6. Způsob podle nároku 1, vyznačující se t í m , že se keton a amidonor uvádějí do styku s bezbuněčným vodným přípravkem omega-aminokyselina transaminázy.
  7. 7. Způsob podle nároku 1, vyznačující setím, že se keton a aminodonor uvádějí do styku
    -Ϋ fc s omega-aminokyselina transaminázou imobilizovanou na t nosiči.
    i*
  8. 8. Způsob podle nároku 1, vyznačující setím, že se používá velkého molárního přebytku aminodonoru.
CZ973556A 1989-06-22 1990-06-26 Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu CZ355697A3 (cs)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/369,723 US4950606A (en) 1989-06-22 1989-06-22 Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
CS903166A CZ283867B6 (cs) 1989-06-22 1990-06-26 Způsob enantiomerického obohacování a stereoselektivní syntézy chirálních aminů

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ283836B6 CZ283836B6 (cs) 1998-06-17
CZ355697A3 true CZ355697A3 (cs) 1998-06-17

Family

ID=25745760

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ973556A CZ355697A3 (cs) 1989-06-22 1990-06-26 Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu
CS903166A CZ283867B6 (cs) 1989-06-22 1990-06-26 Způsob enantiomerického obohacování a stereoselektivní syntézy chirálních aminů

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS903166A CZ283867B6 (cs) 1989-06-22 1990-06-26 Způsob enantiomerického obohacování a stereoselektivní syntézy chirálních aminů

Country Status (1)

Country Link
CZ (2) CZ355697A3 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS316690A3 (en) 1992-01-15
CZ283836B6 (cs) 1998-06-17
CZ283867B6 (cs) 1998-06-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0404146B1 (en) Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
US5300437A (en) Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
HK1008052B (en) Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
US5169780A (en) Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
CA2659300C (en) Process for preparation of optically active n-protected 3-aminopyrrolidine or optically active n-protected 3-aminopiperidine and the corresponding ketones by optical resolution ofthe racemic amine mixtures employing a bacterial omega-transaminase
EP0857790B1 (en) Process for producing optically active amino compounds
EP0330695B1 (en) Process for preparation of organic chemicals
EP1075534B1 (en) Improvements in the enzymatic synthesis of chiral amines
US6133018A (en) Enzymatic synthesis of chiral amines using -2-amino propane as amine donor
CZ355697A3 (cs) Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu
US5079167A (en) Method of racemate resolution
SK280218B6 (sk) Spôsob enantiomérneho obohacovania a stereoselektí
Stirling ENANTIOMERICALLY PURE COMPOUNDS
JPS62205781A (ja) シユ−ドモナス属菌株の培養方法
HK1035000B (en) Improvements in the enzymatic synthesis of chiral amines
JPWO1997015682A1 (ja) 光学活性なアミノ化合物の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MK4A Patent expired

Effective date: 20100626