CZ80499A3 - Způsob modifikace polypeptidů - Google Patents

Způsob modifikace polypeptidů Download PDF

Info

Publication number
CZ80499A3
CZ80499A3 CZ1999804A CZ80499A CZ80499A3 CZ 80499 A3 CZ80499 A3 CZ 80499A3 CZ 1999804 A CZ1999804 A CZ 1999804A CZ 80499 A CZ80499 A CZ 80499A CZ 80499 A3 CZ80499 A3 CZ 80499A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
polypeptide
sequence
methionine
indicator sequence
purification
Prior art date
Application number
CZ1999804A
Other languages
English (en)
Inventor
Mario Roggero
Giampietro Corradin
Christophe Reymond
Nicolas Fasel
Original Assignee
Rmf Dictagene S. A.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rmf Dictagene S. A. filed Critical Rmf Dictagene S. A.
Priority to CZ1999804A priority Critical patent/CZ80499A3/cs
Publication of CZ80499A3 publication Critical patent/CZ80499A3/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Způsob modifikace polypeptidů pro usnadnění jejich čištění, který zahrnuje vložení alespoň jedné specificky štěpitelné aminokyseliny na konec polypeptidového řetězce během jeho syntézy a ochranu téže aminokyseliny /aminokyselin/ v polypeptidů, pokud se v něm vyskytuje /vyskytují/, vůči štěpení k umožnění specifického štěpení přesně v místě specificky štěpitelné aminokyseliny/aminokyselin/. Způsob výroby vyčištěných polypeptidů za použití uvedeného způsobu modifikace.

Description

Předkládaný vynález se týká způsobu modifikace pro usnadnění přípravy vyčištěných polypeptidů a způsobu čištění, využívajícího této modifikační metody.
Dosavadní stav techniky
Během uplynulých let byla široce zdokonalena syntéza peptidů v pevné fázi, využívající metodu t-Boc nebo F-moc. Důmyslné syntezní protokoly dovolily přípravu polypeptidů, majících přibližně 100 či více aminokyselinových zbytků (P. Chong, C. Sia, E. Tam, A. Kandil, M. Klein, International Journal of Peptide and Protein Research 41, 21-27, 1993; L.R. Haaheim, J.P. Maskell, P. Mascagni, A.R. Coates, Scandinavian Journal of Immunology 34, 341-350, 1991; M.A. Rogerro se spol., Molecular Immunology 32, 1301-1309, 1995; D.D. Smith se spol., International Journal of Peptide and Protein Research 44, 183-191, 1994. Avšak nekompletní navázání a ukončení řetězce, k čemuž může dojít ve kterémkoli cyklu prodlužování peptidu, vede k vytvoření neúplných a zkrácených sekvencí.
Tento jev a možný výskyt vedlejších reakcí, pozorovaných zejména během konečného odštěpování z pryskyřice, komplikuje přímé isolování požadovaného peptidu od ostatních nečistot. Čištění dlouhých syntetických polypeptidů je hlavním problémem při výrobě produktů vhodných pro biologická studia a pro použití u lidí a u zvířat, kde je závazná vysoká úroveň čistoty.
• · • · • · · · • 9 9 · ··· 9·· · · 9 9
9 99 99
Konkrétně, pokud jsou syntetizovány sekvence obsahující 30 či více aminokyselinových zbytků, mohou být rozdíly ve fyzikálních vlastnostech jako je velikost, náboj a hydrofobnost u požadovaného produktu a peptidových nečistot s vynechanou sekvencí, po zkrácení nebo modifikaci příliš malé, než aby umožnily postačující vyčištění. Navíc jsou moderní výkonné separační techniky, jako HPLC na reversní fázi, často omezeny nízkými výtěžky a malým vzorkovým injikovatelným objemem, takže jsou zdlouhavé a nákladné.
K obejití tohoto omezení již byly testovány různé přístupy. Provedena byla biotinylace zbytku 153 synetického proteinu IL-1 (T.J. Lobl, M.J. Deibel, A.W. Yem, Analytical Biochemistry 170, 502-511, 1988) a zbytku 99 proteázového syntetického proteinu SIV (A.G. Tomasselli se spol., Journal of Biological Chemistry 267, 10232-10237, 1992) a biotinylované řetězce byly isolovány na sloupci avidin-agarózy.
Balí se spoluautory (H.L. Balí, P. Mascagni, International Journal of Peptide and Protein Research 40, 370-379, 1992) nedávno navrhl postup čištění, založený na přidání reversíbilní chránící skupiny, poskytující lipofilní, kyselé nebo zásadité funkce poslednímu aminokyselinovému zbytku peptidového řetězce.
Specifičtější chromatografické metody byly optimalizovány využitím přítomnosti zvláštních zbytků v syntetizovaných sekvencích. Například peptidy obsahující cystein byly čištěny reakcí s imobilizovanými deriváty rtuti (D.E. Krieger, B.W. Erickson, R.B. Merrifield, Proceedings of the National Academy of Sciences of the U.S.A 73, 3160-3164,
1976) nebo aktivovanými thioly (G. Lindeberg, J. Tengborn, H. bennich, U.J. Ragnarsson, Chromatography 156, 366-369, 1978) a pro čištěni peptidů obsahujících histidin nebo tryptofan (G. Lindeberg, H. Bennich, A. Engstrom, International Journal of Peptide and Protein Research 38, 253-259, 1991) byla úspěšně použita afinitní chromatografie s imobilizovaným kovovým iontem (IMAC, immobilized metal ion affinity chromatography) (J. Porath, J. Carlsson, I. Olsson, G. Belfrage, Nátuře 258, 598-599, 1975).
U rekombinantních bílkovin byly záměrně přidány histidinové zakončení, B-buněčný epitop nebo GST částice. Tato zakončení by následně mohla být použita při afinitní chromatografii.
Obecně musí být protokol (podrobný postup) čištění, které je založeno na fyzikálně chemických vlastnostech syntetizovaného peptidu, optimalizován pro každý jednotlivý vzorek, což je časově náročný a drahý výkon. Z těchto důvodů bylo vyvinuto velké množství technik k umožnění obecné použitelnosti procedur čištění (G. Barany, R.B. Merrifield, Peptides, analysis, synthesis, biology 1-163-165, Academie Press, London 1980). Ovšem až dosud popsané metody nejsou zcela uspokojivé, neboť jsou stále časově náročné a/nebo zanechávají v konečně vyčištěných produktech kovalentně derivatizované peptidy, což může vyvolávat určité obavy vzhledem k jejich biologickým a fyzikálně chemickým vlastnostem a jejich konečnému použití u zvířat a u lidí.
Podstata vynálezu
Předmětem přítomného vynálezu je tedy umožnění zlepšení • · • «
• · · · · · • · • · · · známých metod poskytnutím způsobu modifikace polypeptidů pro usnadnění jejich čištění a postupu čištění polypeptidů, přičemž způsob i postup jsou universálně použitelné, jejich výsledkem je vysoký výnos a snadno se provádějí.
Tohoto předmětu bylo podle vynálezu dosaženo způsobem modifikace, který zahrnuje vložení alespoň jedné specificky štěpitelné aminokyseliny na konec polypeptidového řetězce během jeho syntézy a ochranu téže aminokyseliny (aminokyselin) v polypeptidů, pokud se v něm vyskytuje (vyskytují), vůči štěpení, k umožnění specifického štěpení přesně v místě specificky štěpitelné aminokyseliny (aminokyselin).
Postup čištění, používající tento způsob modifikace, zahrnuje kroky:
a) syntetizování požadovaného polypeptidů;
b) přidání alespoň jedné specificky štěpitelné aminokyseliny na konec polypeptidů za současného chránění téže aminokyseliny (aminokyselin) v polypeptidů, pokud se v něm vyskytuje (vyskytují), vůči štěpení;
c) prodloužení polypeptidů a k němu přidané aminokyseliny (aminokyselin) indikační (tag) sekvencí k získání prodlouženého polypeptidů;
d) vyčištění prodlouženého polypeptidů pomocí metod čištění specifických vůči indikační sekvenci; a
e) odstranění indikační sekvence a přídavné aminokyseliny (aminokyselin) z prodlouženého polypeptidů pomocí metody štěpení, specifické vzhledem k přidané aminokyselině (aminokyselinám), k získání vyčištěného polypeptidů.
• ·
- 5 Specifickou metodou čištění je s výhodou metoda chemického štěpení, jak zde bude dále objasněno.
Způsob a postup podle vynálezu jsou použitelné pro každý polypeptid, neboť nejsou závislé na jeho aminokyselinovém složeni. Nadto jsou v určitých upřednostňovaných ztělesněních způsob a postup dle vynálezu finančně nenáročné a vysoce účinné.
Takovým ztělesněním je použiti methioninového zbytku jako přídavné aminokyseliny před přidáním afinitní indikační sekvence (například sekvence šesti histidinových zbytků nebo jiných sloučenin usnadňujících čištění). Po krocích vhodného čištění, jako je afinitní chromatografie specifická vzhledem k indikační sekvenci, může být histidinová indikační sekvence odštěpena digescí CNBr, finančně nenáročným a velmi účinným postupem, který specificky odštěpuje v místě methioninového zbytku.
V upřednostňovaném ztělesnění tedy indikační sekvence zahrnuje alespoň sekvenci hstidinových zbytků, s výhodou šesti nebo více, a methioninový zbytek. Volitelně lze začlenit jednu či více jiných aminokyselin.
Pokud sekvence požadovaného polypeptidu obsahuje methioninové zbytky, mohly by se stát při odstraňování indikační sekvence předmětem štěpení CNBr. Ovšem podle předkládaného vynálezu tomu lze zabránit použitím modofikovaných methioninových zbytků při syntéze polypeptidu. Takovým modifikovaným methioninovým zbytkem je například methioninsulfoxid.
♦ · · · · • · ·
V alternativním ztělesněni způsobu a postupu podle vynálezu je indikační sekvencí objemná molekula, jako polyethylenglykol. V takovém případě je způsobem čištění, specifickým vůči indikační sekvenci, gelová filtrační chromatografie.
Způsob a postup podle vynálezu jsou stejně dobře použitelné i pro polypeptidy vyráběné postupy rekombinace DNA. V upřednostňovaném ztělesnění jsou methioninové zbytky, původně přítomné v požadovaném polypeptidu, ne však v indikační sekvenci, chráněny proti štěpení, například substitucí jinou aminokyselinou jako je valin či glycin, nebo jsou odstraněny.
V této přihlášce vynálezu je indikační sekvence používána k označení odstranitelné molekuly, přidané k požadovanému polypeptidu během jeho syntézy nebo po ní. Indikační sekvencí může být aminokyselinová sekvence přidaná během syntézy polypeptidu, ale může to být také jiná molekula, kterou lze snadno vyčistit ze směsi složek. Příkladem druhé z možností je polyethylenglykol (PEG).
V této přihlášce vynálezu jsou výrazy peptid, a polypeptid používány zaměnitelně.
Následující příklad je uveden k dokreslení vynálezu. Je jasné, že pro odborníka bude tento příklad poskytovat dostatečný návod k rozvinutí dalších způsobů, spadajících do rozsahu vynálezu. V příkladu je uveden obecně použitelný postup čištění, založený na kombinaci 1) protokolu ukončení (capping), 2) použití methioninsulfoxidu jako chráněného methioninového zbytku během syntézy nativní sekvence a 3) • · · · • · · · · · • · · · · • · · • · « · • · · ········ ·· • · · · • · · · · • · · · · ♦ · · · · · · » • · · • · · · · prodloužení požadovaného peptidu methioninem a dvěma glycinovými zbytky a konečnou sekvencí šesti histidinů, které budou použity pro afinitní chromatografii. Po postačujících krocích čištění bylo provedeno odštěpení histidinové indikační sekvence bromkyanem (CNBr) a následně konečná redukce methioninsulfoxidu na methionin. Tato jednoduchá, přímá strategie umožnila vyčištění polypeptidu o 69 aminokyselinových zbytcích PbCS 242-310 pokrývajícího C-koncovou oblast CS proteinu Plasmodia berghei, do homogenity, s vysokým výtěžkem a v krátké době za použití běžných chromatografických postupů.
Popis obrázků na výkresech
Obrázek 1 znázorňuje hmotnostní spektrum surového peptidu.
Obrázek 2 znázorňuje chromatografický profil čištění pomocí IMAC (afinitní chromatografii s immobilizovaným kovovým iontem).
Obrázek 3 znázorňuje hmotnostní spektrum vyčištěného peptidu.
Obrázek 4 znázorňuje chromatografické profily surového a vyčištěného peptidu.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
1. Materiál a metody
1.1. Reagencie a rozpouštědla
Chemikálie a rozpouštědla, použité pro syntézu peptidu, • 0 • 00 • · · 0 · · · 0 · · · · • · 0 0» · 0 0 0
0 0 0 0 0 · 00 0 000 • 0 · 0 · 0 0 byly získány od firem Calbiochem-Novabiochem AG (Láufelfingen, Švýcarsko) a Fluka (Buchs, Švýcarsko).
1.2. Syntéza a analýza peptidu
K dokreslení předkládaného vynálezu byl polypeptid, označený jako PbCS 242-310, pokrývající C-koncovou oblast CS proteinu Plasmodia berghei (D.E. Lanař, Mol. Biochem. Parasitol. 39, 151-154, 1990), chemicky syntetizován za použití metody F-Moc v pevné fázi na peptidovém syntetizátoru Applied Biosystems 431A. Polypeptid byl připraven na F-moc-Ser(t-butyl)-p-alkoxybenzylalkoholové pryskyřici (Wangově pryskyřici) se stupněm substituce 0,43 mmol/g v 0,1 mmolové škále. Syntéza byla prováděna za použití pětinásobného přebytku aminokyselinových derivátů F-moc, DDCI a HOBt jako aktivačních činidel, 60 minutového vazebného času pro prvních 34 aminokyselin a dvojnásobného vazebného času pro zbývající zbytky. Ukončení (capping) s acetanhydridem bylo prováděno na konci každého cyklu. Chránící skupiny vedlejších řetězců zahrnovaly: pentamethylchromansulfonylovou skupinu pro Arg; -S-t-butyl pro Cys; trifenylmethylovou skupinu pro Asn, Gin a His; t-butoxykarbonylovou skupinu pro Lys a Trp; t-butylovou skupinu pro Asp, Clu, Ser, Thr a Tyr. Met 306 byl vkládán jako Fmoc-Met-sulfoxid k ochraně proti pozdějšímu štěpení CNBr.
Poté byl peptid prodloužen N-koncově sekvencí His-His-His-His-His-His-Gly-Gly-Met za stejných podmínek jako byly popsány výše, ale po navázání druhého Gly bylo vynecháno ukončení (capping). Takto získaný polypeptid je označován jako His tag PbCS 242-310.
• · · · · · · · · · · • · · · ♦ · ♦ · · • 4 4 · · 4 « ······ • 4 · 4 4 4 4 ···· 4··· ·» 9 99 ··
Surový peptid byl získán působením 2,5% H20, 5% triethylsilanu v TFA (kyselině trifluoroctové) na soustavu peptid-pryskyřice po dobu 2 hodin při laboratorní teplotě. Syntetický peptid byl čištěn kapalinovou chromatogragií na sloupci Sephadexu G-50 o velikosti 70 x 2,5 cm za použití soustavy 50% kyselina octová/H20 jako mobilní fáze. Čistota peptidu byla analyzována pomoci HPLC na reversní fázi za použití sloupce C4 W-Porex 250 x 4, 6 mm a 10-90% CH3CN gradientu v 0,1% TFA/H2O během 60 minut a rychlosti toku 1,0 ml/min. Složení aminokyselin bylo stanovováno podle Knechta a Changa (R. Knecht, J.Y Chang, Analyt. Chem. 58, 2375-2379,
1986) .
1.3. Afinitní chromatografie s imobilizovaným kovovým iontem (IMAC) a štěpení CNBr
Polypeptid byl nejprve čištěn afinitní chromatografii na základě histidinové indikační skupiny. Později byla indikační skupina odstraněna CNBr.
Ni-sloupec (Quiagen lne., Chatsworth, USA) byl připraven s Ni-NTA agarosovou pryskyřicí a ekvilibrován pufrem A (8 mol. I-1 močovina, 0,1 mol. I'1 Na2HPO4, 0,01 mol.l 1 Tris, pH upraveno na 8,0 pomocí H3PO4) . Gelovou filtrací čištěný polypeptid His tag PbCS 242-310 byl rozpuštěn v pufru A a nanesen na sloupec rychlostí toku 15 ml/hodinu. Sloupec byl promyt pufrem A (rychlost toku 15 ml/hod.) a pufrem B (8 mol.l-1 močovina, 0,1 mol.l 1 Na2HPO4, 0,01 mol.l 1 Tris, pH upraveno na 6,3 pomocí H3PO4 ), obsahujícím 50 mmol.1 1 imidazol při rychlosti toku 30 ml/hodinu. Polypeptid His-tag PbCS 242-310 byl poté eluován (rychlost toku 30 ml/hod.) • » ··· · ·· ·* • ···· ···· • · ·· ·· « ·«···· • · · · · 9 9
9999999 ·· 9 99 99 pufrem B, obsahujícím 250 mmol.l_1 imidazol.
Eluovaný materiál byl odsolen na sloupci Sephadex G25 (50 x 2,5 cm, za použití soustavy 50% kys. octová/H20 jako mobilní fáze) a lyofilizován. Pro odstranění histidinové indikační sekvence byl takto získaný materiál ovlivňován po dobu 8 hodin na reversní fázi při koncentraci 20 mg/ml v 70% TFA za použití stonásobného molárního přebytku CNBr.
Takto naštěpený materiál byl lyofilizován, rozpuštěn v pufru A a opět nanesen na sloupec Ni-NTA agarosy. Histidinová indikační sekvence je zachycena na Ni-sloupci a eluent ze sloupce obsahuje polypeptid PbCS 242-310. Eluent ze sloupce byl odsolen na sloupci Sephadex G25(50 x 2,5 cm, za použití soustavy 50% kys. octová/H20 jako mobilní fáze) a lyofilizován.
1.4. Redukce Met-sulfoxidu
Materiál ovlivněný CNBr a vyčištěný IMAC byl při pH 8,0 vystaven působení 10% merkaptoethanolu k přeměně methioninsulfoxidu na methionin a Cys-S-t-butylu na Cys a poté byl čištěn gelovou filtrací (sloupec Sephadex G25, 250 x 4,4 mm) .
1.5. Hmotnostní spektrometrie
Hmotnostní spektrografická analýza byla prováděna za použití hmotnostního spektrometru s průletovým analyzátorem LDI 1700 Mass Monitor (Linear Scientific lne., Reno, NV, USA), vyhodnocujícího dobu letu. Pět mikrolitrů roztoku polypeptidů o koncentraci 1 mg/ml bylo smíseno s 5 μΐ φφ ·· Φ· • φφφ ♦ · · 9 • · Φ Φ φ Φ • Φ φφφ
ΦΦΦΦΦΦΦΦ ΦΦ Φ
Φ Φ Φ Φ ΦΦΦ Φ Φ
Φ Φ kyseliny trans-3,5-dimethoxy-4-hydroxy-skořicové (sinapinová kyselina) o koncentraci 20 mg/ml v acetonitrilu (Linear Scientific lne., Reno, NV, USA) a 1 μΐ této směsi byl nanesen na špičku sondy hmotnostního spektrometru a vysušen jemným vakuem. Vzorek byl ozářen 3-ns laserovými pulsy (vlnová délka 337 nm) z N2-laseru. Doba průletu byla měřena digitálním osciloskopem (serie 9304; Le Croy Research Systems, Corp., Spring Valley, NY, USA), což bylo převedeno na hmotnostní spektrum za použití kalibračního standardu Peptide MALDITOFMS CAlibration Standard (Linear Scientific lne., Reno, NV, USA).
2. Výsledky
Polypeptid PbCS 242-310 o 69 aminokyselinových zbytcích odpovídá C-koncové oblasti CS bílkoviny P. berghei (D.E. Lanař, Mol. Biochem. Parasitol. 39, 151-154, 1990).
Syntéza His-tagPbCS242-310 byla provedena za použití automatického protokolu postupu, v němž byl krok ukončení (capping) začleněn po každém navázání, jak je popsáno v oddílu Materiál a metody.
Působením soustavy H2O/triethylsilan/TFA na 600 mg odpovídající pryskyřice s peptidem bylo získáno více než 150 mg surového polypeptidu.
Hmotnostní spektrální analýza surového polypeptidu ukazovala na přítomnost požadované látky s molekulovou hmotností (MW) 9301 mezi jinými nízkomolekulárními složkami (obr.l).
mg surového polypeptidu bylo čištěno afinitní ·
Φ* 99 · · 9 · 9 · 9 9 9 9
9 9 9 9 9 9 9 9
9 9 9 9 9 « ·····«
9 9 9 9 9 9 chromatograf ií s imobilizovaným kovovým iontem (IMAC) na sloupci Ní-NTA agarosy o objemu 25 ml (obr. 2). Po odsolení kapalinovou chromatografií oddělující látky o určité velikosti molekul bylo získáno 35 mg His-tag PbCS242-310”. Měření absorbance eluovaného materiálu (35 mg) při 280 nm a veškerého průtoku (55 mg) ukázalo, že výtěžek čistícího postupu byl 100%.
Materiál vyčištěný na Ni-sloupci byl poté štěpen CNBr k odstranění indikační sekvence šesti zbytků His.
Materiál po štěpení byl pak znovu nanesen na Ni-sloupec k odstranění nerozštěpeného peptidu a vystaven působení 10% merkaptoethanolu při pH 8,0 k redukování methioninsuifoxidu zavedeného během syntézy a chránících skupin zbytků cysteinu. Úplná redukce methioninsuifoxidu byla potvrzena opětným vystavením materiálu působení CNBr a ověřením účinnosti štěpení hmotnostní spektrografií.
Výsledkem dalšího čištění chromatografií oddělující určitou velikost molekul bylo 19 mg vyčištěného PbCS 242-310.
Na obrázku 3 je znázorněno hmotnostní spektrum získaného srovnány analytické vyčištěného peptidu. běhů je způsoben materiálu a na obrázku 4 jsou chromatografické profily surového a Rozdíl v retenčních časech dvou nepřítomností vysoce nabité histidinové indikační skupiny ve vyčištěném materiálu. Bylo zjištěno, že vyčištěný PbCS 242-310 vykazuje asi 95% čistotu na základě integrace ploch maxim (plků) při analýze při- vlnové délce 214 nm. Aminokyselinové složení CS polypeptidu bylo souhlasné se • · »·Μ
·0 0 0 0 0 · · • 0 0 · • · 0 0 · 0 0 0 0 00000000 · · složením, předpokládaným u tohoto peptidu (tabulka 1.)
Tabulka 1: Analýza aminokyselin
aminokyselina3 zbytky na mol PbCS 242-310
očekávané pozorované b S.D.C
Asp + Asn 10 9,4 1,0
Glu + Gin 9 9,1 0,9
Ser 7 8,4 2,1
Thr 4 2,2 CO o
Gly 3 3,1 1,0
Ala 2 3,4 1,1
Arg 4 4,8 0,9
Pro 1 1,1 0,2
Val 3 2,9 0, 3
Met 1 1,0 0,1
Ile 7 6, 3 0,7
Leu 3 3,3 0,2
Phe 1 1,1 0,1
Lys 8 6,7 1,0
His 0 - -
Tyr 1 1,2 0,2
a Cys a Trp nebyly stanovovány b střední hodnota z pěti stanovení c standardní odchylka
3. Diskuse
Chemická syntéza bioaktivních peptidů se stala rozšířenou a rychle se rozrůstající technikou díky automatizaci a účinným postupům pro sestavování řetězce. Pro většinu aplikací musí být surový syntetický produkt čištěn k odstranění zbývajících reagencií, chybějících sekvencí a chemicky modifikovaných peptidových typů. To se obvykle provádí pomocí HPLC na reversní fázi za použití soustavy • · *· »·*·
- ±4 ~ ·**· ·· · · « · · • * · · · 9 9 9 9 • · ·· *· 9 999999 • · 9 9 9 9 9 ···· 9999 99 · ·« ·« vodná kyselina trifluorooctová/acetonitril jako mobilní fáze. Ačkoli se peptidová syntéza stala vysoce automatizovanou, čištění je stále převážně manuálním procesem a tedy postupem časově náročným, nákladným a ne příliš účinným.
Příklad 1 ukázal, že způsob podle vynálezu vede k vysoké čistotě jak vyplývá z obrázku 3 a je snadno proveditelný a univerzálně použitelný.
Problém specifického štěpeni, daný přítomnosti methioninovýchzbytkův požadované sekvenci, tak jako ve zde uváděném příkladu, lze podle vynálezu snadno obejít použitím methioninsulfoxidových zbytků, které jsou odolné vůči působení CNBr a jsou kvantitativně redukovatelné kyselinou merkaptooctovou (R.A. Houghten, C.H. Li, Methods in enzymology 91, 549-559, 1991).
Z výše uvedeného vyplývá, že postup podle vynálezu byl úspěšně použit k vyčištění polypeptidu PbCS 242-310”, řetězce o 69 aminokyselinových zbytcích odpovídajícího C-koncové oblasti CS bílkoviny P. berghei (cit. 12). Ačkoli v surovém materiálu bylo po odštěpení z pryskyřice přítomno mnoho peptidových nečistot, jak je ukázáno hmotnostní spektrální analýzou uváděnou na obrázku 1, autoři vynálezu byli schopni vyčistit cílový peptid do homogenity s vysokým výtěžkem a v poměrně krátké době. Úplný protokol čištění poskytl 19 mg vyčištěného PbCS 242-310, odpovídajícího přibližně 20 % surového materiálu.
Závěrem zde bylo ukázáno, že štěpení CNBR a ochrana příslušných methioninových zbytků jako sulfoxidy ve spojení s účinnou afínítní indikační sekvencí může představovat účinný
ΦΦ φφ φ φ · · φ φ φ ΦΦΦ φ φφφφ φ φ · · φφφφφφφφ φφ φφ φφφφ φ φ ♦ φφφφ • φφφφ φ φ φφφ φφφ φ φ φ * φ · φ φ a obecný prostředek k čištění chemicky syntetizovaných peptidů s dlouhým řetězcem.
Zastupuje:
φφ φφφφ φ φ φ « φ φ φφφ
Φ φ φφφφ φφφφ rv

Claims (7)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob modifikace polypeptidů k usnadfení jejich vyčištění, přičemž tento způsob modifikace zahrnuje vložení nejméně jednoho specificky odštěpitelného methioninu a identifikační sekvence na konec polypeptidového řetězce během jeho syntézy a ochranu methioninových zbytků v polypeptidu, pokud jsou přítomné, vůči odštěpení jejich chráněním sulfoxidovou skupinou, vyznačující se tím, že indikační sekvencí je histidinová identifikační sekvence nebo objemnější molekula jako je polyethylenglykol.
  2. 2. Způsob výroby vyčištěných polypeptidů za použití způsobu modifikace podle nároku 1, kdy způsob výroby zahrnuje kroky:
    a) syntetizování požadovaného polypeptidu;
    b) přidání alespoň jednoho specificky odštěpitelného methioninu na konec polypeptidu za současné ochrany methioninu (methioninů) v polypeptidu, pokud se v něm vyskytuje (vyskytují), vůči štěpení chráněním sulfoxidovou skupinou;
    c) prodloužení polypeptidu a k němu přidaného methioninu (methioninů) indikační sekvencí k získání prodlouženého polypeptidu;
    d) vyčištění prodlouženého polypeptidu pomocí metody čištění specifické vůči indikační sekvenci; a
    e) odstranění indikační sekvence a přídavného methioninu (methioninů) z prodlouženého polypeptidu pomocí metody štěpení, založené na použití bromkyanu k získání vyčištěného polypeptidu, vyznačující se tím, že indikační sekvencí je histidinová indikační sekvence nebo objemnější molekula, jako je polyethylenglykol.
    «· *· Φ· • φ · · φ φ • · · · • φ · φ · • · · φ φφφφφφφφ φφ φ
  3. 3. Způsob podle nároku 2, vyznačující se tím, že se histidinová indikační sekvence skládá z His-His-His-His-His-His-Gly-Gly-.
  4. 4. Způsob podle nároků 2 nebo 3, vyznačující se tím, že metodou čištění, specifickou vůči indikační sekvenci, je chromatografie založená na afinitě vůči indikační sekvenci.
  5. 5. Způsob podle nároku 2, vyzná tím, že indikační sekvencí je objemná polyethylenglykol a metodou čištění, indikační sekvenci, je gelová filtrace.
    čující se molekula jako je specifickou vůči rekombinace polypeptidu
  6. 6. Způsob podle nároků 2 až 5, vyznačující se tím, že požadovaný polypeptid je vyráběn technikami DNA v živoucím hostiteli a methioniny v jsou namísto chránění sulfoxidovou skupinou odstraněny nebo nahraženy jinou aminokyselinou, jako je zalin, glycin nebo modifikovaný methionin.
  7. 7. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že živoucím hostitelem je eukaryotický hostitel nebo prokaryotický hostitel, jako Escherichia coli.
CZ1999804A 1997-09-09 1997-09-09 Způsob modifikace polypeptidů CZ80499A3 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ1999804A CZ80499A3 (cs) 1997-09-09 1997-09-09 Způsob modifikace polypeptidů

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ1999804A CZ80499A3 (cs) 1997-09-09 1997-09-09 Způsob modifikace polypeptidů

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ80499A3 true CZ80499A3 (cs) 2000-01-12

Family

ID=5462285

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ1999804A CZ80499A3 (cs) 1997-09-09 1997-09-09 Způsob modifikace polypeptidů

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ80499A3 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100371824B1 (ko) 정확하게연결된시스틴브릿지를갖는인슐린의수득방법
AU2002229603B2 (en) Process for folding chemically synthesized polypeptides
JP7360397B2 (ja) グルカゴンペプチドの製造
EP2057183A2 (en) High purity peptides
Roggero et al. A simple and rapid procedure for the purification of synthetic polypeptides by a combination of affinity chromatography and methionine chemistry
Decostaire et al. Solid phase oxime ligations for the iterative synthesis of polypeptide conjugates
RU2182155C2 (ru) Получение очищенных (поли)пептидов
CZ80499A3 (cs) Způsob modifikace polypeptidů
Pak et al. Conformation analysis of Ile-Ala-Val-Pro peptide and its derivatives by circular dichroism
MXPA99002208A (en) Preparation of purified (poly)peptides
DK2976325T3 (en) SYNTHESIS OF PEPTIDE PRODUCTS CONTAINING CYCLIC IMID
HUE034308T2 (en) Preparation of hydantoin-containing peptide products
Van de Vijver et al. Application of an omonasteine ligation strategy for the total chemical synthesis of the BRD7 bromodomain
Sabatier Chemical synthesis and characterization of small proteins: example of scorpion toxins
HK1022322B (en) Preparation of purified (poly) peptides
Scolaro et al. Solid‐phase synthesis of bombesin by continuous flow procedure using Fmoc‐amino acids
Moss et al. Mapping tertiary interactions in protein folding reactions: a novel mass spectrometry-and chemical synthesis-based approach
Aznar‐Derunes et al. Study of the yeast Saccharomyces cerevisiae F1FO‐ATPase ε‐subunit
Čeřovský et al. Combined solid‐phase/solution synthesis of large ribonuclease AC‐terminal peptides containing a non‐natural proline analog

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic