DD255954C2 - Stabile biosensoren und verfahren zu ihrer herstellung - Google Patents
Stabile biosensoren und verfahren zu ihrer herstellung Download PDFInfo
- Publication number
- DD255954C2 DD255954C2 DD29693086A DD29693086A DD255954C2 DD 255954 C2 DD255954 C2 DD 255954C2 DD 29693086 A DD29693086 A DD 29693086A DD 29693086 A DD29693086 A DD 29693086A DD 255954 C2 DD255954 C2 DD 255954C2
- Authority
- DD
- German Democratic Republic
- Prior art keywords
- heavy metal
- enzymes
- enzyme
- stable
- membrane material
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims abstract description 42
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims abstract description 42
- 229910001385 heavy metal Inorganic materials 0.000 claims abstract description 40
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 24
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 18
- 239000011149 active material Substances 0.000 claims abstract description 6
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims abstract description 3
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims abstract description 3
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 claims description 13
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 11
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 7
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 5
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 5
- 239000003791 organic solvent mixture Substances 0.000 claims description 4
- 239000012876 carrier material Substances 0.000 claims description 2
- 125000001072 heteroaryl group Chemical group 0.000 claims description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims description 2
- 239000008139 complexing agent Substances 0.000 claims 1
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N nitrogen Substances N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N nitrogen group Chemical group [N] QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 abstract description 5
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 abstract description 3
- 239000003446 ligand Substances 0.000 abstract description 2
- 125000004433 nitrogen atom Chemical group N* 0.000 abstract description 2
- 239000000470 constituent Substances 0.000 abstract 1
- 125000000623 heterocyclic group Chemical group 0.000 abstract 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 33
- RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N imidazole Natural products C1=CNC=N1 RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 108010046334 Urease Proteins 0.000 description 7
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 5
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 5
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 4
- ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N N,N-Dimethylformamide Chemical compound CN(C)C=O ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000005669 field effect Effects 0.000 description 3
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 3
- 229920000915 polyvinyl chloride Polymers 0.000 description 3
- 239000004800 polyvinyl chloride Substances 0.000 description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 125000003396 thiol group Chemical group [H]S* 0.000 description 3
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000007698 Alcohol dehydrogenase Human genes 0.000 description 2
- 108010021809 Alcohol dehydrogenase Proteins 0.000 description 2
- 108010024976 Asparaginase Proteins 0.000 description 2
- 102000015790 Asparaginase Human genes 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- WYURNTSHIVDZCO-UHFFFAOYSA-N Tetrahydrofuran Chemical compound C1CCOC1 WYURNTSHIVDZCO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 229960003272 asparaginase Drugs 0.000 description 2
- DCXYFEDJOCDNAF-UHFFFAOYSA-M asparaginate Chemical compound [O-]C(=O)C(N)CC(N)=O DCXYFEDJOCDNAF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000002210 biocatalytic effect Effects 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- 239000002738 chelating agent Substances 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 239000005725 8-Hydroxyquinoline Substances 0.000 description 1
- 102000004366 Glucosidases Human genes 0.000 description 1
- 108010056771 Glucosidases Proteins 0.000 description 1
- 102100024295 Maltase-glucoamylase Human genes 0.000 description 1
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010028144 alpha-Glucosidases Proteins 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 239000011942 biocatalyst Substances 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 1
- TVMUHOAONWHJBV-UHFFFAOYSA-N dehydroglycine Chemical compound OC(=O)C=N TVMUHOAONWHJBV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 description 1
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 239000011147 inorganic material Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 210000003463 organelle Anatomy 0.000 description 1
- 239000011368 organic material Substances 0.000 description 1
- 229960003540 oxyquinoline Drugs 0.000 description 1
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 description 1
- 229920002006 poly(N-vinylimidazole) polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- MCJGNVYPOGVAJF-UHFFFAOYSA-N quinolin-8-ol Chemical compound C1=CN=C2C(O)=CC=CC2=C1 MCJGNVYPOGVAJF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- YLQBMQCUIZJEEH-UHFFFAOYSA-N tetrahydrofuran Natural products C=1C=COC=1 YLQBMQCUIZJEEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Stabile Biosensoren bestehen aus SH-Enzyme enthaltendem biokatalytisch aktivem Material und vor Schwermetallinaktivierung schützendem Membranmaterial. Bevorzugte schwermetallbindende Membranbestandteile sind Komplexliganden, Heteroaromaten mit endocyclischem, tertiärem Stickstoffatom und funktionelle Gruppen, die mit Schwermetallen schwer dissoziierbare Verbindungen ergeben. Die Arbeits- und Lagerstabiütät der erfindungsgemäßen Biosensoren ist von wenigen Tagen auf mehrere Wochen ausgedehnt.
Description
Die Erfindung betrifft stabile Biosensoren, die aus einer biokatalytisch aktiven Schicht mit einem SH-Enzym und einem elektrochemischen Transducer bestehen und Verfahren zu ihrer Herstellung. Anwendungsgebiete sind die Medizin, Biotechnologie, Land- und Nahrungsgüterwirtschaft und der Umweltschutz.
Zur Entwicklung von zu den Biosensoren gehörenden biospezifischen Elektroden, die aus amperometrischen, potentiometrischen oder konduktometrischen Elektroden bzw. ionenselektiven Feldeffekttransistoren, den sogenannten elektrochemischen Transducem und in Membranen immobilisierten Enzymen, den sogenannten biokatalytisch aktiven Membranen, hergestellt werden, können eine Reihe von SH-Enzymen verwendet werden, z. B. Urease, Asparaginase, a-Glucosidase, Alkoholdehydrogenase und andere. Viele dieser biospezifischen Elektroden stehen vor der Einführung in die Praxis (F. W. Scheller et al., Biosensors 1 [1985] 135-160), obwohl noch eine Reihe ungelöster Probleme deren breiter Anwendung im Wege stehen. Eine Ursache besteht in der teilweise geringen Arbeits- und Lagerstabilität von solchen biospezifischen Elektroden, in deren biokatalytisch aktiver Membran SH-Enzyme immobilisiert sind, das heißt solche Enzyme, die zur Herausbildung der biokatalytischen Aktivität freie Sulfhydrylgruppen — im weiteren als SH-Gruppen bezeichnet — benötigen. Diese SH-Enzyme reagieren ausgesprochen empfindlich gegenüber geringsten Spuren von Schwermetallen, durch die sie inaktiviert werden. Bei analytischen Verfahren unter Verwendung von biospezifischen Elektroden läßt sich aber die Anwesenheit von Schwermetallionen in den Meßlösungen selten vermeiden. Zum einen werden die Meßlösungen aus Chemikalien hergestellt, die in der Regel trotz höchster Reinheitsgrade noch Spuren von Schwermetallen enthalten, die aber ausreichend sind, um bei kontinuierlichem Einwirken auf SH-Enzyme infolge längeren Einsatzes der biospezifischen Elektroden diese zu inaktivieren. Zum anderen diffundieren aus den zur Herstellung der biospezifischen Elektroden verwendeten Elektroden, z. B. aus den Bezugselektroden, laufend Schwermetallionen in die die biospezifischen Elektroden umgebenden Meßlösungen, mit dem Ergebnis, daß die in den biokatalytisch aktiven Membranen befindlichen SH-Enzyme inaktiviert werden.
Aus diesen Darlegungen wird weiter ersichtlich, daß nicht nur isolierte SH-Enzyme durch Schwermetalle inaktiviert werden. Bekannt ist, daß höher integrierte biokatalytisch aktive Systeme wie Mikroorganismen oder Zellen pflanzlichen bzw. tierischen Ursprungs SH-Enzyme enthalten und solche Systeme auf Grund ihrer biokatalytischen Aktivität auch zur Herstellung von mikrowellen Elektroden zur Substratanalytik herangezogen werden. Aber auch hiertreten die genannten Probleme der geringen Arbeits- und Lagerstabilität infolge Inaktivierung durch Schwermetalle auf. Aus den geschilderten Problemen resultieren somit eingeschränkte Einsatzmöglichkeiten von biospezifischen Elektroden und mikrobiellen Elektoden. Zum Schutz von SH-Enzymen vor Schwermetallinaktivierung, auch in biospezifischen Elektroden und mikrobiellen Elektroden, sind in der Vergangenheit eine Reihe von Methoden bekannt geworden (DE-Offenlegungsschrift mit der Nummer 3347104 und DD-WP С 12Ш2695760). Die Lösungen in diesen Patentschriften und darin aufgeführter weiterer Literatur bestehen darin, daß zum Schutz der SH-Enzyme vor ein- oder mehrwertigen Schwermetallionen den Meßlösungen lösliche Sulfhydrylverbindungen allein oder Sulfhydrylverbindungen in Kombination mitChelatbildnern, Reduktionsmitteln und Enzymstabilisatoren zugesetzt werden. Dieses Vorgehen hat allerdings einschneidende Nachteile, denn neben hochreinen und damit teuren Chemikalien und Biochemikalien werden dabei toxische und unangenehm riechende Chemikalien eingesetzt, so daß eine allgemeine Routineanwendung dieser Verfahren nicht empfohlen werden kann.
Das Ziel der Erfindung besteht darin, stabile Biosensoren und Verfahren zu ihrer Herstellung zu entwickeln, die die geschilderten Nachteile nicht besitzen und dadurch eine breitere Anwendung von biospezifischen Elektroden und mikrobiellen Elektroden ermöglichen.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, länger einsetzbare Biosensoren durch Stabilisierung von biokatalytisch aktiven Schichten bereitzustellen. Die erfindungsgemäßen Biosensoren bestehen aus einem elektrochemischen Grundsensor mit einer biokatalytisch aktiven Schicht, die sich aus einem biokatalytisch aktiven Material und einem in wäßrigen Systemen unlöslichen Membranmaterial mit schwermetallbindenden Eigenschaften zusammensetzt. Als biokatalytisch aktives Material werden ein oder mehrere SH-Enzyme wie z. B. Urease, Asparaginase, «-Glucosidase, Alkoholdehydrogenase oder ein ein bzw. mehrere SH-Enzyme enthaltendes höher integriertes biologisch aktives System wie z. B. Mikroorganismen und Zellen oder Organellen von Pflanzen und Tieren eingesetzt.
Das schwermetallbindende Membranmaterial ist im allgemeinen in organischen Lösungsmitteln löslich. In einigen Fällen kann es darin aber auch als anorganisches oder organisches Material in suspendierter Form vorliegen. In jedem Falle aber sind die membranbildenden Materialien mit schwermetallbindenden Eigenschaften in wäßrigen Lösungen unlöslich. Die schwermetallbindenden Membranmaterialien enthalten — kovalent gebunden — komplexbildende Liganden oder andere funktioneile Gruppen, die mit Schwermetallen schwer dissoziierbare Verbindungen ergeben. In Frage kommen dabei solche schwermetallbindenden Materialien, die zur Bindung ein- oder mehrwertiger Schwermetalle Strukturen mit kovalent gebundenen Chelatbildnern vom Typ der Iminoessigsäure und des 8-Hydroxychinolins oder Heteroaromaten mit endocylischem, tertiärem Stickstoffatom, vorzugsweise Imidazol, besitzen. Aber auch SH-Gruppen enthaltende Trägermaterialien, die besonders schwer dissoziierbare Schwermetallmercaptide bilden, eignen sich als schwermetallbindende Membranmaterialien zum Schutz der schwermetallempfindlichen SH-Enzyme in den Membranen der Biosensoren. Wegen ihrer Löslichkeit in organischen Lösungsmitteln werden vorteilhaft unvernetztes und mit den genannten Gruppen funktionalisiertes Celluloseacetat oder Polyvinylchlorid oder ähnliche Polymere als membranbildende organische Träger verwendet. Aber auch Suspensionen, hergestellt aus in organischen Lösungsmitteln löslichem, unvernetztem und unmodifiziertem Celluloseacetat oder Polyvinylchlorid und in den gleichen organischen Lösungsmitteln unlöslichen und feinpulverisierten Trägermaterialien organischen oder anorganischen Ursprungs mit kovalent gebundenen Chelatbildend oder funktioneilen Gruppen mit schwermetallbindenden Eigenschaften, können zur Membranherstellung eingesetzt werden.
Die Biosensoren werden hergestellt, indem ein amperometrischer, potentiometrischer, konduktometrischer Grundsensor oder ein ionenselektiver Feldeffekttransistor mit den an ihrer sensitiven Oberfläche haftenden SH-Enzymen oder SH-Enzymgemischen oder solche SH-Enzyme enthaltenden höher
integrierten Systemen in eine Lösung eines organischen Lösungsmittels oder Lösungsmittelgemisches mit dem darin aufgelösten schwermetallbindenden Membranmaterial bzw. daß der Grundsensor in eine Suspension aus einem organischen Lösungsmittel, einem in diesem organischen Lösungsmittel löslichen und einem darin unlöslichen Trägermaterial mit schwermetallbildenden Eigenschaften und einem SH-Enzym oder SH-Enzymgemisch oder solche SH-Enzyme enthaltenden höher integriertem System eingetaucht wird. Durch Verdampfen des organischen Lösungsmittels bei möglichst niedriger Temperatur oder durch Eintauchen des Sensors in eine wäßrige Lösung wird eine die SH-Enzyme oder solche SH-Enzyme oder enthaltende höher integrierte biologische Systeme einschließende und vor Schwermetallinaktivierung schützende schwermetallbindende Membran gebildet. Andere Technologien zur Membrangewinnung mit den erfindungsgemäßen schwermetallbindenden Membranmaterialien sind ebenfalls geeignet, SH-Enzyme in Biosensoren vor Schwermetallinaktivierung zu schützen. In Modifikation der schon beschriebenden Vorgehensweise kann z. B. die biokatalytisch aktive Membran auf der Sensoroberfläche auch so hergestellt werden, daß der Grundsensor mit freier, sensitiver Oberfläche erst in eine Suspension eingetaucht wird, die aus einem leicht flüchtigen, organischen Lösungsmittel, einem der beschriebenen Trägermaterialien mit schwermetallbindenden Eigenschaften und einem SH-Enzym gewonnen wird und danach das organische Lösungsmittel verdampft wird.
Die auf die beschriebene Art entwickelten Biosensoren vom Typ amperometrischer, potenziometrischer oder konduktometrischer biospezifischer Elektroden bzw. Enzymfeldeffekttransistoren mit SH-Enzymen als Biokatalysator zeichnen sich durch eine bemerkenswert hohe Arbeits- und Lagerstabilität aus. Die Arbeitsstabilität z. B. konnte so von 3-4 Tagen auf mindestens 2-3 Wochen ausgedehnt werden. Die Einsatzdauer eines solchen stabilisierten Biosensors ist selbstverständlich von der Schwermetallbelastung des Meßmediums abhängig, weil ja die Kapazität der Membran für Schwermetalle nicht unbegrenzt ist. Unter den gewöhnlichen Bedingungen der quantitativen Analyse von Substraten mit Biosensoren werden aber unter allen Umständen für die nach der Erfindung stabilisierten Biosensoren Einsatz- und Standzeiten von zwei Wochen erreicht.
Das bedeutet einen wesentlichen Fortschritt zum Stand der Technik und erlaubt einen längeren, breiteren und damit effektiveren Einsatz von Biosensoren, die mit SH-Enzymen in der biokatalytisch aktiven Schicht hergestellt werden.
Der Gegenstand der Erfindung wird an Hand von Beispielen weiter erläutert, die aber den Umfang nicht einschränken sollen.
50mg mitSH-Gruppen modifiziertes Celluloseacetat (SH-Gruppengehalt22/xMol/g Träger) werden unter Rühren bei Raumtemperatur in 2,5ml frisch destilliertem Dimethvlformamid gelöst. Gleichzeitig wird auf der pH-sensitiven Oberfläche einer auf üblichem Wege in den meßbereiten Zustand gebrachten pH-Einstabmeßkette Urease adsorptiv gebunden. Die so vorbehandelte pH-Elektrode wird etwa 5 Sekunden in die Polymerenlösung eingetaucht und zur Biosensorentwicklung auf zwei Wegen weiterbehandelt. Im ersten Fall wird die pH-Elektrode in Aceton getaucht und das Lösungsmittel bei Raumtemperatur verdampft. Im zweiten Fall wird die pH-Elektrode unmittelbar nach dem Eintauchen in die Polymerenlösung in eine wäßrige Lösung getaucht. In beiden Fällen wird eine Membran gebildet, die die Urease einschließt und auf der pH-sensitiven Oberfläche der pH-Elektrode fest fixiert. Eine solche potentiometrische Enzymelektrode kann mindestens 3 Wochen zur Harnstoffbestimmung in physiologischen Lösungen benutzt werden. Zum Beispiel besitzt sie nach 10 Tagen noch mehr als 50% der Ausgangsaktivität, während eine gleiche, aber mit gewöhnlichem, unmödifiziertem Celluloseacetat hergestellte Enzymelektrode schon nach 3-4 Tagen keine Aktivität mehr besitzt, die immobilisierte Urease also vollständig inaktiviert wurde.
Urease, Polyvinylchlorid und nach dem DDR-WP 124405 hergestelltes imidazolhaltiges, pulverisiertes Polymeres (Imidazolgehalt 1,46 mM/g Träger) in gleichen Gewichtsverhältnissen (1:1:1) werden in von Peroxiden befreitem frisch destilliertem Tetrahydrofuran gelöst bzw. suspendiert. In die gerührte Suspension wird eine meßbereite pH-Einstabmeßkette eingetaucht, und das organische Lösungsmittel wird danach bei Raumtemperatur verdampft. Die gebildete biologisch aktive Membran besitzt eine hohe Ureasestabilität, die bei täglichem 3stündigem Einsatz nach einer Woche noch unverändert ist. Nach zweiwöchigem Einsatz unter gleichen Bedingungen besitzt diese Enzymelektrode noch 60% der ursprünglichen Aktivität. Eine gleiche Enzymelektrode, aber ohne schwermetallbindende Polymerenkomponente, ist schon nach 3 Tagen vollständig inaktiviert.
Claims (7)
1. Stabile Biosensoren auf der Basis elektrochemischer Grundsensoren mit einer biokatalytisch aktiven Schicht, dadurch gekennzeichnet, daß die biokatalytisch aktive Schicht aus einem biokatalytisch aktiven Material und einem in wäßrigen Lösungen unlöslichen Membranmaterial mit schwermetallbindenden Eigenschaften besteht.
2. Stabile Biosensoren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als biokatalylisch aktives Material ein oder mehrere SH-Enzyme in isolierter Form oder diese als Bestandteil höher integrierter biologisch aktiver Systeme eingesetzt werden.
3. Stabile Biosensoren nach Anspruch І, dadurch gekennzeichnet, daß als Membranmaterial mit schwermetallbindenden Eigenschaften in Wasser unlösliche organische und/oder anorganische Trägermaterialien mit kovalent gebundenen Komplexbildnern oder Heteroaromaten mit endocyclischem, tertiärem Stickstoffatom oder funktionell und mit Schwermetallen schwer dissoziierbare Verbindungen ergebende Gruppen eingesetzt werden.
4. Verfahren zur Herstellung von stabilen Biosensoren, dadurch gekennzeichnet, daß ein elektrochemischer Grundsensor mit einer Schicht eines biokatalytisch aktiven Materials mit einem schwermetallbindenden und in Wasser unlöslichen Membranmaterial in Kontakt gebracht wird.
5. Verfahren zur Herstellung von stabilen Biosensoren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß ein elektrochemischer Grundsensor mit dem an seiner aktiven Oberfläche haftenden SH-Enzym oder SH-Enzymgemisch oder solche SH-Enzyme enthaltendem höher integriertem System in eine Lösung eines organischen Lösungsmittels oder Lösungsmittelgemisches mit dem darin aufgelösten schwermetallbindenden Membranmaterial eingetaucht und das Lösungsmittel verdampft wird.
6. Verfahren zur Herstellung von stabilen Biosensoren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß ein elektrochemischer Grundsensor in eine Suspension aus einem organischen Lösungsmittel, einem in diesem organischen Lösungsmittel löslichen und einem darin unlöslichen Trägermaterial mit schwermetallbindenden Eigenschaften und einem SH-Enzym oder SH-Enzymgemisch oder solche SH-Enzyme enthaltendem höher integriertem System eingetaucht und danach das organische Lösungsmittel verdampft wird.
7. Verfahren zur Herstellung von stabilen Biosensoren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß die biokatalytisch aktive Schicht durch Eintauchen des zunächst mit einem SH-Enzym oder SH-Enzymgemisch oder solche SH-Enzyme enthaltenden höher integrierten System und dem schwermetallbindenden Membranmaterial beladenen elektrochemischen Grundsensor in eine wäßrige Lösung gebildet wird.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD29693086A DD255954C2 (de) | 1986-12-02 | 1986-12-02 | Stabile biosensoren und verfahren zu ihrer herstellung |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD29693086A DD255954C2 (de) | 1986-12-02 | 1986-12-02 | Stabile biosensoren und verfahren zu ihrer herstellung |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DD255954A1 DD255954A1 (de) | 1988-04-20 |
| DD255954C2 true DD255954C2 (de) | 1989-03-01 |
Family
ID=5584400
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DD29693086A DD255954C2 (de) | 1986-12-02 | 1986-12-02 | Stabile biosensoren und verfahren zu ihrer herstellung |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DD (1) | DD255954C2 (de) |
-
1986
- 1986-12-02 DD DD29693086A patent/DD255954C2/de not_active IP Right Cessation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DD255954A1 (de) | 1988-04-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE68911299T3 (de) | Enzymelektrode und verfahren zur herstellung. | |
| DE68925104T2 (de) | Amperometrischer Sensor | |
| DE69025470T2 (de) | Elektrische enzymfühlerelektrode sowie deren herstellungsverfahren | |
| DE69735127T2 (de) | Enzymsensor | |
| EP0714985B1 (de) | Elektrochemischer Enzymbiosensor | |
| DE60024965T2 (de) | Glukosesensor | |
| DE60319677T2 (de) | Redoxenzyme-tragender biosensor | |
| DE3853029T2 (de) | Sensor. | |
| EP0554255B1 (de) | Vorrichtung zur beaufschlagung flüssiger medien mit gasförmigen stoffen | |
| AT401653B (de) | Verfahren zur immobilisierung biologischer komponenten in einer polymermatrix sowie biosensoren unter verwendung derartiger immobilisate | |
| EP1282417B1 (de) | Creatinin-biosensor | |
| EP0562372A2 (de) | Biosensor | |
| CH642105A5 (de) | Enzym-immobilisierungsmembran, verfahren zur herstellung derselben und verwendung der membran in einer elektro-chemischen messvorrichtung. | |
| DE68922501T2 (de) | Enzymelektrode. | |
| DE2603698C2 (de) | Verfahren zum Immobilisieren eines Enzyms auf einem Träger | |
| Evtugyn et al. | Influence of surface-active compounds on the response and sensitivity of cholinesterase biosensors for inhibitor determination | |
| DE3882723T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Enzymelektroden. | |
| DE69119766T2 (de) | Substratregenerierender biosensor | |
| DE2638193C3 (de) | Laminierte Membran für die Verwendung in einer Enzymelektrode und Verfahren zur Herstellung einer solchen Membran | |
| DE69023440T2 (de) | Immobilisierte Alkoholoxydase, Methode zu deren Herstellung und Messgerät. | |
| DD255954A1 (de) | Stabile biosensoren und verfahren zu ihrer herstellung | |
| DE2650213A1 (de) | Verfahren und mittel fuer den nachweis und/oder die bestimmung alkylierender verbindungen | |
| DE2926167A1 (de) | Molekuelselektiver sensor und herstellung desselben | |
| DE3824258C2 (de) | Modifizierte Enzymmembran für Enzymelektroden mit hoher Selektivität und Verfahren zu ihrer Anwendung | |
| EP0498260A1 (de) | Verfahren zur Stabilisierung von 1-Methylhydantoinase, Verwendung einer stabilisierten 1-Methylhydantoinase zur Bestimmung eines Analyten, entsprechendes Bestimmungsverfahren sowie hierfür geeignete Mittel |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| ENJ | Ceased due to non-payment of renewal fee |