DD284110A7 - Verfahren zur gewinnung von proteinen aus mikroorganismen - Google Patents
Verfahren zur gewinnung von proteinen aus mikroorganismen Download PDFInfo
- Publication number
- DD284110A7 DD284110A7 DD23159181A DD23159181A DD284110A7 DD 284110 A7 DD284110 A7 DD 284110A7 DD 23159181 A DD23159181 A DD 23159181A DD 23159181 A DD23159181 A DD 23159181A DD 284110 A7 DD284110 A7 DD 284110A7
- Authority
- DD
- German Democratic Republic
- Prior art keywords
- protein
- acid
- item
- extraction
- pretreatment
- Prior art date
Links
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 44
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 44
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 29
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims description 8
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims abstract description 16
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims abstract description 14
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 claims abstract description 6
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims abstract description 6
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims abstract description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims abstract description 4
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 claims abstract description 3
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 claims abstract 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 18
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 12
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 9
- 238000000751 protein extraction Methods 0.000 claims description 9
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 claims description 8
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 claims description 5
- 239000011707 mineral Substances 0.000 claims description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 5
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims description 4
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 claims description 4
- 239000008399 tap water Substances 0.000 claims description 4
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 claims description 4
- 150000007522 mineralic acids Chemical class 0.000 claims description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims 2
- 241000222120 Candida <Saccharomycetales> Species 0.000 claims 1
- 241000235070 Saccharomyces Species 0.000 claims 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 claims 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 abstract description 11
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 abstract description 11
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 abstract description 11
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 abstract description 10
- 230000009145 protein modification Effects 0.000 abstract description 5
- 239000000654 additive Substances 0.000 abstract 1
- 235000014680 Saccharomyces cerevisiae Nutrition 0.000 description 6
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 5
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 3
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 3
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IMSOBGJSYSFTKG-PKPIPKONSA-N Lysinoalanine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCCCNCC(N)C(O)=O IMSOBGJSYSFTKG-PKPIPKONSA-N 0.000 description 2
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 2
- 230000030609 dephosphorylation Effects 0.000 description 2
- 238000006209 dephosphorylation reaction Methods 0.000 description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 2
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 230000007065 protein hydrolysis Effects 0.000 description 2
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 2
- 230000006340 racemization Effects 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 101800000263 Acidic protein Proteins 0.000 description 1
- 208000033809 Suppuration Diseases 0.000 description 1
- 241000006364 Torula Species 0.000 description 1
- 238000010306 acid treatment Methods 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000008651 alkaline stress Effects 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 238000001311 chemical methods and process Methods 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 description 1
- 230000006866 deterioration Effects 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000546 pharmaceutical excipient Substances 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 230000006920 protein precipitation Effects 0.000 description 1
- 230000035484 reaction time Effects 0.000 description 1
- 238000006722 reduction reaction Methods 0.000 description 1
- 230000001629 suppression Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Die Erfindung beinhaltet ein Verfahren zur Extraktion von mikrobiellem Protein fuer die Herstellung von Nahrungsmitteln. Das Ziel der Erfindung ist es, das mikrobielle Protein mit einer hohen Ausbeute und hohen Reinheit des Proteinisolats zu gewinnen, die hinsichtlich des Nucleinsaeuren- und Lipidgehalts unter 2% liegt. Gleichzeitig ist die Aufgabe gestellt, die oben genannten Ziele unter Vermeidung einer alkalischen Belastung des Proteins zu erreichen, da diese zu negativen Proteinmodifizierungen hinsichtlich ernaehrungsphysiologischer und verarbeitungstechnologischer Eigenschaften fuehrt. Das Wesen der Erfindung besteht aus diesem Grunde darin, dasz das biologische Material in einer sauren Vorbehandlungsstufe einerseits auf einen hocheffektiven Extraktionsprozesz vorbereitet wird und andererseits einer fast vollstaendigen Nucleinsaeurenextraktion unterliegt. Dieser Vorbehandlungsstufe folgt dann nach einer Waschstufe ohne wesentliche Hilfsstoffzusaetze die saure Extraktion.
Description
Die Gewinnung des mikrobiellen Proteins kann bekanntlich durch chemische, physikalische oder mechanische Aufschlußverfahren bzw. -methoden erreicht werden. Bei den chemischen Verfahren überwiegt der alkalische Aufschluß, bei dem vorbehandelte bzw. nichtvorbehandelte Mikroorganismen einstufig bzw. zweistufig im alkalischen Bereich zwischen pH 8,0 bis 12,0 und Temperaturen von 70-1700C behandelt werden. Die meisten dargestellten Verfahren enthalten nicht alle Angaben, die für eine umfassende Einschätzung des jeweiligen Verfahrensprinzips notwendig sind. Doch wird bei den bekannten Verfahren der Nachteil deutlich, daß beschriebene Lösungswege auf dereine Seite zu guten Ergebnissen hinsichtlich des Anteils an extrahiertem Proteinführen, die daraus gewonnenen Proteinisolate aber nicht den Anforderungen genügen, auf der anderen Seite die Anforderungen an ein Proteinisolat erfüllt werden, die Ausbeuten an gefälltem Protein gegenüber der Reinproteinmenge im biologischen Ausgangsmaterial aber unbefriedigend sind. Nur solche Verfahren zur Gewinnung von Protein aus Mikroorganismen kann man als optimal bezeichnen, deren Bedingungen nicht nur 2u hohen Anteilen an extrahiertes Protein an sich führen, sondern wo dieses Protein auch weitgehend isoelektrisch fällbar ist und letztendlich eine hohe Ausbeute an gefälltem Protein gegenüber der Reinproteinmenge im biologischen Ausgangsmaterial von über 70% bei relativ geringer Stufenzahl des Verfahrens erreicht wird und wo die Produkte nicht nur einen hohen Reinproteingehalt von über 85%, sondern auch niedrige Nucleinsäuren- und Lipidgehalte von jeweils unter 2% haben.
Durch die überwiegend angewandten alkalischen Reaktionsbedingungen ist nicht auszuschließen, daß Proteinmodifizierungen durch Vorgänge wie Racemisierung, Maillard-Reaktion, Dephosphorylierung, NH3- und H2S-Abspaltung und Lysinoalaninbildung auftreten, die die Qualität des Proteinmaterials herabsetzen. Die Anwendung extremer alkalischer Bedingungen führt nicht nur zu einer unvertretbar hohen Proteinhydrolyse, sondern auch zu einer Verschlechterung der Proteinlöslichkeit. Weitere Belastungen arn Protein treten auch durch sich hinsichtlich der üpidreduzierung notwendig machender Maßnahmen zur Vorbehandlung des biologischen Ausgangsmaterials bzw. zur Nachbehandlung des gefällten
mikrowellen Proteins. Allerdingssind noch nicht solche Verfahren bekannt, diezurgleichzeitigen Erfüllung der oben genannten Kriterien für ein optimales Priteingewinnungsverfahren führen.
So führt eine Säurebehandlung von Torula-Hefen (US 3833 552) bei einer Molarität von 0,25-0,5, bei einer Temperatur von 60-100eC, einer Reaktionszeit bis zu 30min und Anwendung verschiedener Mineralsäuren zu nicht annähernd vertretbaren Proteinausbeuten und nach experimenteller Überprüfung beim Einsatz von Salzsäure (1,0M) zu einer Proteinextraktion, die 65% nicht überschreitet. Außerdem erwies sich der extrahierte Proteinanteil als nicht fällbar. Es kann angenommen werden, daß der Nucleinsäuregehalt den Anforderungen nicht genügt.
In einem weiteren Verfahren (DP 2042 571) ist die Wirkung der sauren Extraktion abhängig von einer kurzzeitigen Vorbehandlung im extrem alkalischen Bereich (pH 13,0). Die Erreichung eines pH-Wertes von 1,0 erfordert dann nicht nur hohe Säurenmengen, sondern führt auch noch zu einer hohen Salzbelastung. Außerdem sind die aufgeführten Bedingungen der kombinierten Wirkung für Hefen nicht übertragbar, wobei auch schon die mit bakterieller Biomasse als Ausgangsorganismus erreichten Proteinstickstoffkonzentrationen des Isolats von 12% nicht ausreichend sind. Die ungenügenden Reinheitsgrade können z.T. durch unvertretbar hohe Nucleinsäurengehalte des Isolats erklärt werden und dadurch, daß die im Alkalischen durch Nucleinsäuren· und Lipidhydrolyse entstehenden Reaktionsprodukte vor der sauren Extraktion nicht durch einen Separationsschritt abgetrennt werden und somit ein Teil bei der Proteinfällung mitgefällt wird.
Ziel der Erfindung ist ein Verfahren zur Gewinnung eines Proteinisolates aus Mikroorganismen für die Herstellung von Nahrungsmitteln. Das Verfahren ermöglicht eine maximale Ausbeute an Reinprotein, eine sehr hohe Reinheit des Proteinisolats und damit die Einhaltung der Grenzwerte für Restnucleinsäuren und Restlipide von unter 2%, ohne daß eine Nachbehandlung des Isolats erfolgen muß. Dabei wird das Protein unter Bedingungen gewonnen, die eine mit negativen Veränderungen des Proteins verbundene alkalische Belastung gänzlich ausschließen bzw. nur in einer der eigentlichen Proteinextraktion vorangestellten Vorbehandlungsstufe eine betont milde Alkalibeeinflussung bewirken.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, bei der Proteinextraktion aus Mikroorganismen ein Verfahren zu erreichen, das eine hohe Reinproteinausbeute und eine hohe Reinheit des Isolats garantiert, wobei durch Alkalien induzierte negative Proteinmodifizierungen weitestgehend ausgeschlossen sind. Die negativen Proteinmodifizierungen, ausgelöst insbesondere durch Alkalieinwirkung bei höheren Temperaturen, umfassen vorwiegend Racemisierung, Proteinhydrolyse, Maillard-Reaktion, Dephosphorylierung, Verringerung der Proteinlöslichkeit, NH3- und H2S-Abspaltung und Bildung von Lysinoalanin. Gleichzeitig liegt der Erfindung die Aufgabe zugrunde, Proteinisolate mit niedrigen Restlipidgehalten von unter 2% zu erreichen, ohne daß eine diesbezügliche Vorbehandlung am biologischen Material bzw. eine Nachbehandlung am Isolat erfolgen muß. Die Zielstellungen sollen auch gleichzeitig unter dem Gesichtspunkt erreicht werden, daß eine hohe Fällbarkeit des extrahierten Proteins, eine optimale Koagulatbildung beim Fällvorgang und ein geringer Hilfsstoffeinsatz bei der Extraktion gesichert sind. Erfindungsgemäß wird die Aufgabe dadurch gelöst, daß das biologische Material zur Vorbereitung auf die Proteinextraktion und zur weitestgehenden Nucleinsäurenreduzierung bei einem pH vonO,7-1,5 mit einer äthanolischen Mineralsäurelösung bei 50-60°C 30-70 min vorbehandelt wird, wobei die Äthanolkonzentration 10-35 Vol.-% beträgt. Anschließend erfolgt eine Waschung des Sediments mit Leitungswasser. Das nach weiterer Zentrifugation erhaltene Sediment wird auf eine bevorzugte Trockensubstanzkonzentration von 6-7% suspendiert und mit einer anorganischen Säure oder einem anorganisch-organischen Säurengemisch bei einem pH-Wert von 1,0-2,0 und einer Temperatur von 110-1600C während einer Zeit von 0,5-6 min zur Extraktion gebracht. Nach Abkühlung erfolgt die Trennung der Zellreste von der Proteinlösung, der dann eine isoelektrische Fällung, entweder bei Raumtemperatur oder in der Hitze (800C), folgt. Zur Verringerung des Salzgehaltes kann das Isolat am IP mit phosphorsaurem Wasser nachgewaschen werden. Die Mengen an Phosphorsäure bei der Extraktion des mikrowellen Proteins sind dann optimal, wenn sie den PjCvMengen der bei diesem Prozeß eingesetzten Hefen entsprechen, um somit im Falle einer Rezirkulation dieses Ablaufs in die Fermentation den Phosphatbedarf damit decken zu können. Das Ziel der Erfindung kann hinsichtlich der sehr guten Ausbeuten und hohen Reinheit und unter Umgehung negativer Proteinmodifizierungen auch dann erreicht werden, wenn die Vorbehandlung unter äthanolisch-alkalischen Bedingungen bei pH 9-10,50°C, 5-10 min lang durchgeführt wird.
Saccharomycescerevisiae mit einem Reinproteingehalt von 32,9% in der Trockensubstanz sowie 5,1'/«Nucleinsäuren und 6,4% Lipiden wird mit Wasser, Äthanol und Schwefelsäure so suspendiert, daß Bedingungen von einer Biomassetrockensubstanzkonzentration von 23,3g/100ml bei einer Anwendungskonzentration von 20 Vol.-% Äthanol und pH 0,7 erhalten und bei 70°C 50min wirksam werden. Nach dieser Vorbehandlung und Abkühlung wird das durch Zentrifugation erhaltene Sediment mit Leitungswasser auf einen pH von 1,9 gewaschen und das nach erneuter Zentrifugation erhaltene Sediment in Wasser so suspendiert, daß eine Trockensubstanzkonzentration von 6,3% erhalten wird. 10 Volumenteile dieser
Suspension und 0,3 Volumenteile eines Säurengemisches von Essigsäure und Phosphorsäure (v/v = 2:1) werden innerhalb von 75s getrennt auf etwa 160°C erhitzt und nach Vereinigung 2ur Extraktion des Proteins 40s bei dieser Temperatur belassen. Im Anschluß daran erfolgt die Abkühlung und Abtrennung des Überstandes von den Zellresten. Die Fällung des Proteins erfolgt durch Zugabe von Natronlauge zur sauren Proteinlösung bis zum Erreichen des Isoelektrischen Punktes beim pH etwa 4,4. Zur Herabsetzung des Salzgehaltes schließt sich eine Waschung am IP mit phosphorsaurem Wasser an. Das auf diese Weise erhaltene Proteinisolat hat einen Reinproteingehalt von 91,5%, einen Restnucleinsäuren- und Restlipidgehalt von 0,9 bzw. 1,9%. Der Wirkungsgrad der Proteinextraktion beträgt 87%. Die Menge an gefälltem Protein bezogen auf die Menge an extrahiertem Protein wurde zu 89% ermittelt.
Ausführungsbeispiel 2
Unter Beibehaltung der im Ausführungsbeispiel 1 dargelegten Vorbehandlung und anschließenden Waschung kann die Proteinextraktion auch bei alleinigerAnwendung von Phosphorsäure durchgeführt werden. Zu 10 Volumenteilen einer 6,8%igen Hefesuspension werden 0,08 Volumenteile konzentrierte Phosphorsäure gegeben. Nach einer Aufheizzeit von 75s erfolgt die Extraktion bei etwa 160"C und einem pH-Wert von 1,5 35s lang. Der Wirkungsgrad der Proteinextraktion beträgt 83% und der fällbare Anteil 84%. Das nicht nachgewaschene Isolat enthielt 1,1 % Nucleinsäuren und 1,8% Lipide.
Ausführungsbeispiel 3 -
Saccharomyces cerevisiae mit einem Reinproteingehalt von 28,0% in der Trockensubstanz sowie 8,1 % Lipiden wird mit äthanolischer Natronlauge suspendiert, so daß eine Äthanolanwendungskonzentration von 30Vol.-% und ein pH-Wert von 10,0 resultieren. Die Vorbehandlung bei 50"C dauert 5 min. Nach anschließender Zentrifugation wird das Sediment mit Leitungswasser auf pH 9,0 gewaschen und nach weiterer Zentrifugation mit Wasser suspendiert. 10 Volumenteile dieser Suspension und 0,8 Volumenteile des Säurengemisches Essigsäure/Phosphorsäure (v/v =* 2:1) werden getrennt innerhalb von 60s auf etwa 160°C erhitzt und reagieren während 45 s bei pH 1,5 miteinander. Nach Abkühlung und Zentrifugieren wird das Protein aus dem sauren Überstand am IP gefällt. Der Wirkungsgrad der Proteinextraktion beträgt 92% und der fällbare Anteil 75%. Das Isolat enthielt 0,4% Lipide und 0,8% Nucleinsäuren.
Claims (9)
1. Verfahren zur Gewinnung von mikrobiellem Protein mit dem Ziel, einen proteinogenen Ausgangsrohstoff zur Erzeugung von Produkten für die menschliche Ernährung zu erhalten, dadurch gekennzeichnet, daß bei Mikroorganismen, sowohl Hefen als auch Bakterien, nach einer Vorbehandlung mit äthanolischer Mineralsäurelösung bei einem pH-Wert von vorzugsweise 0,7-1,5, einer Temperatur von vorzugsweise 50-800C und einer Zeit von 30-70 min und anschließender Waschung mit Leitungswasser die Extraktion mit einer anorganischen Säure oder einem organisch-anorganischen Säurengemisch bei einem pH-Wert von vorzugsweise 1,0-2,0 unter Druck bei 110-1600C und einer Zeit von 0,5-6min erfolgt und nach Abtrennung der Zellreste die Fällung des extrahierten Proteins an IP durchgeführt wird.
2. Verfahren nach Punkt 1, dadurch gekennzeichnet, daß in der Vorbehandlungsstufe die Äthanolanwendungskonzentration 10-35Vol.-% beträgt und als Mineralsäure vorzugsweise Schwefelsäure eingesetzt wird.
3. Verfahren nach Punkt 1, dadurch gekennzeichnet, daß in der Vorbehandlungsstufe die Mikroorganismen nur mit Mineralsäure behandelt werden.
4. Verfahren nach Punkt 2 und 3, dadurch gekennzeichnet, daß die zur Vorbehandlung angewandten Chemikalien wiederholt in dieser Prozeßstufe eingesetzt werden können.
5. Verfahren nach Punkt 1, dadurch gekennzeichnet, daß die zur Proteinextraktion angewandte anorganische Säure Phosphorsäure ist und das Säuregemisch aus Essigsäure und Phosphorsäure im Verhältnis 1:2 bis 2:1 besteht.
6. Verfahren nach Punkt 1, dadurch gekennzeichnet, daß der pH-Wert am Ende des Waschprozesses nach der äthanolisch-sauren Vorbehandlung etwa 1,3 beträgt, um mit der für die Erreichung des Extraktions-pH erforderlichen Phosphorsäuremenge fur den Fall der Rezirkulation des Ablaufs zur Gewinnung der gleichen Menge an Ausgangsbiomasse des P2Os-8edarf deckend arbeiten zu können.
7. Verfahren nach Punkt 1, dadurch gekennzeichnet, daß die vorbehandelten Zellen durch den Waschvorgang auf solch einen pH-Wert gebracht werden, der einen zusätzlichen Säureeinsatz für die Extraktion erübrigt.
8. Verfahren nach Punkt 1-7, dadurch gekennzeichnet, daß das biologische Material Hefen, insbesondere der Gattungen Candida und Saccharomyces, bzw. Bakterien, insbesondere thermophile oder methanolverwertende Mikroorganismen, in Form des nativen biologischen Materials bzw. getrockneter Biomasse sind.
9. Verfahren zur Gewinnung des mikrobiellen Proteins, dadurch gekennzeichnet, daß zur Erreichung desselben optimalen Extraktionseffektes in der sauren Stufe die Vorbehandlung unter äthanolischalkalischen Bedingungen (pH 9-10) bei 500C 5-10 min lang durchgeführt wird, wobei im Falle der Äthanolanwendung die Konzentration 30Vol.-% beträgt.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD23159181A DD284110A7 (de) | 1981-06-20 | 1981-06-20 | Verfahren zur gewinnung von proteinen aus mikroorganismen |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD23159181A DD284110A7 (de) | 1981-06-20 | 1981-06-20 | Verfahren zur gewinnung von proteinen aus mikroorganismen |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DD284110A7 true DD284110A7 (de) | 1990-11-07 |
Family
ID=5532215
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DD23159181A DD284110A7 (de) | 1981-06-20 | 1981-06-20 | Verfahren zur gewinnung von proteinen aus mikroorganismen |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DD (1) | DD284110A7 (de) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1999054355A1 (en) * | 1998-04-23 | 1999-10-28 | Abbott Laboratories | Process for the recovery and purification of a recombinant protein from a cell |
-
1981
- 1981-06-20 DD DD23159181A patent/DD284110A7/de not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1999054355A1 (en) * | 1998-04-23 | 1999-10-28 | Abbott Laboratories | Process for the recovery and purification of a recombinant protein from a cell |
| US6080844A (en) * | 1998-04-23 | 2000-06-27 | Abbott Laboratories | Process for the recovery and purification of a recombinant protein from a cell |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE4134854C2 (de) | ||
| EP0121778B1 (de) | Verfahren zur Abtrennung von Ribonukleinsäuren aus einer Lösung, die Desoxyribonukleinsäuren enthält | |
| DE69307897T2 (de) | Polysaccharide aus glykogen | |
| DE69701204T2 (de) | Verfahren zur Reinigung von wasserunlöslichen Glucanen | |
| DE3020722A1 (de) | Verfahren zur anreicherung von nikkomycin-gemischen | |
| DE2061984B2 (de) | Reagens zur Bestimmung der Lactat Dehydrogenase im Farbtest | |
| DE3124228C2 (de) | Verfahren zur Isolierung von Superoxid-dismutase aus roten Blutzellen | |
| DE2021465B2 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Enzympräparates, welches die OH-Gruppe in der 3beta-Stellung des Cholesterins dehydriert | |
| DE3300633A1 (de) | Verfahren zur herstellung von rhamnose oder fucose | |
| DE2001902C3 (de) | Verfahren zur Reinigung und Fraktionierung von gelösten aktiven Proteinen | |
| DD284110A7 (de) | Verfahren zur gewinnung von proteinen aus mikroorganismen | |
| DE2322462A1 (de) | Verfahren zur gewinnung von proteinen | |
| DE2632157A1 (de) | Behandlung von einzellenprotein | |
| DE2034593C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von Zitronensäure | |
| DE1642622A1 (de) | Verfahren zur Herstellung eines neuen Ferments zur Milchgerinnung | |
| DE2733923C3 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Humanalbumin | |
| DE3885012T2 (de) | Fermentationsverfahren zur Herstellung eines Polysaccharids wie Xanthan. | |
| DD234170A3 (de) | Verfahren zur gewinnung von protein aus mikrobieller biomasse | |
| EP0252900A2 (de) | Verfahren zur Gewinnung von proteinhältigen Mikroorganismenzellen | |
| DE2046576C3 (de) | Verfahren zur Abtrennung von Zitronensäure aus einem Gemisch mit (+)-Isozitronensäure | |
| DE884856C (de) | Verfahren zur Herstellung von den anti-perniciosa-anaemischen Faktor enthaltenden Zubereitungen | |
| DE2334521A1 (de) | Verfahren zur extraktion und reinigung von enzymen von mikroorganismen | |
| DE1065133B (de) | Verfahren zur Reinigung von aus Speichel bzw. Speicheldruesen gewonnenem Rohparotin | |
| DE856146C (de) | Verfahren zur Herstellung von Chitinxanthogenat | |
| DD280723A1 (de) | Verfahren zur Gewinnung und Isolierung von mikrobiellem Protein |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| ENJ | Ceased due to non-payment of renewal fee |