DD287644A5 - Mikrobiologisches verfahren zur herstellung agrarchemisch verwendbarer wirkstoffe - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Es wird ein mikrobiologisches Verfahren zur Herstellung von macrocyclischen Verbindungen der Formel (I) beschrieben, die sich in der Agrarchemie zur Bekaempfung bzw. Verhuetung von Pflanzenkrankheiten verwenden lassen. Die Substituenten haben die in der Beschreibung gegebene Bedeutung. Es werden sechs neue Mikroorganismen zur Durchfuehrung des Verfahrens beschrieben. Formel (I){macrocyclische Verbindungen; Herstellung, mikrobiologisch; Mittel, mikrobizid; Mikroorganismen, neu}
Description
Verfahren zur Herstellung von macrocyclischen Verbindungen
Die vorliegende Erfindung betrifft ein mikrobiologischeo Verfahren zur Herstellung von macrocyclischen Verbindungen und deren Verwendung zur Bekämpfung und Verhütung von Pflanzenkrankheiten.
In der europäischen Patent ildung EP-A-282,455 wird bereits ein Sorangium cellulosum-MxKroorganismus "So ce 26" beschrieben, der zur Herstellung macrocyclischer Verbindungen mit mikrobizider Wirkung verwendet wird.
Durch das erfindungsgemäße Verfahren werden unter Verwendung neuer Mikroorganismen-Stämme macrocyclische Verbindungen mit mikrobizider Wirksamkeit, insbesondere gegen phytopathogene Mikroorganismen, bereitgestellt.
Der vorliegenden Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren zur Herstellung von Verbindungen, die zur Bekämpfung bzw. Verhütung von Pflanzenkrankheiten geeignet sind, zur Verfügung zu stellen.
-Ia-
ZtU
51
(I)
wobei der macrocyclische Ring entweder gesättigt ist oder wahlweise in der 8,9-Stellung oder in der 9,10-stellung oder in der 14,15-Stellung eine Doppelbindung enthält und die Substituenten R1 bis R5, A, B, X und Y in folgenden kombinierten Bedeutungen vorliegen:
| Verb. | Ri | R2 | R3 | R1. | Rs | A | B | X | Y | H | Doppel |
| H | bindung | ||||||||||
| A | OCH3 | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | H | H | Δ9.10 |
| J) | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | H | H | — |
| C | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | H | OH | Δ9.10 |
| D | OH | CH3 | CH3 | H | H | H | H | H | H | H | — |
| E | OCH3 | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | OH | H | H | — |
| F | OCH3 | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | H | H | — |
| H | OCH3 | CH3 | H | H | H | CH3 | H | H | OH | H | Δ8,9 |
| J | OCHj, | H | CH3 | H | H | CH3 | H | H | H | H | — |
| M | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | OH | H | H | — |
| N | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | OCH3 | Δ9.10 | |
| Q | OCH3 | CH3 | CH3 | H | H | H | H | H | H | — | |
| R | OH | CH3 | H | H | H | H | H | H | H | — | |
| S | OH | CH3 | H | H | H | CH3 | H | H | H | Δ9.10 | |
| T | OH | CH3 | H | H | H | CH3 | H | H | H | — | |
| U | OCH3 | CH3 | CH3 | OH | H | CH3 | H | H | H | Δ9.10 | |
| V | 0",H3 | CH3 | H | H | H | CH3 | H | H | H | Δ9.10 | |
| X | OH | CH3 | H | H | OH | CH3 | H | H | H | Δ9.10 | |
| Y | =0 | CH3 | H | H | H | CH3 | H | OH | H | — | |
| Z | OCH3 | CH3 | H | OH | H | CH3 | H | H | H | Δ9.10 | |
| β | OCH3 | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | H | Δ9.10 | |
| r | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | 9,10-epoxy | — | ||
| 6 | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | H | Δ9.10 | ||
| ζ | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | OH | H | Δ9.10 | ||
| η | OH | CH3 | CH3 | OH | H | CH3 | H | H | Δ9.10 | ||
| κ | OH | CH3 | H | H | H | CH3 | H | H | Δ9.10 | ||
| μ | OCH3 | CH3 | H | H | H | CH3 | H | H | — | ||
| ν | OH | CH3 | CH3 | H | H | CH3 | H | OH | ΔΙΑ,15 | ||
| ξ | OH | CH3 | ti | H | H | CH3 | H | H | Δ9,ίΟ | ||
| O | OCH3 | CH3 | CH3 | OH | H | CH3 | H | H | Δ9.10 | ||
| 71 | OH | CH3 | K | H | H | CH3 | H | H | Δ9.10 | ||
| P | OH | CH3 | H | H | H | CH3 | H | OH | — | ||
| σ | OCH3 | CH3 | CH3 | OH | H | CH3 | H | H | Δ9.10 |
Diese 32 Verbindungen werden durch mikrobiologische Kultivierung von Myxobakterien aus der Sorangium/Polyangium-Gruppe gewonnan, von denen sie, in Abhängigkeit vom jeweiligen Stamm« sämtlich oder teilweise und in unterschiedlichen Verhältniszahlen produziert warden. Gemeinsam ist allen Stämmen die Produktion der Verbindung A als eines der Hauptprodukte. Die Verbindungen der Formel I sollen hier und im folgenden "Soraphene" genannt werden, mithin die Verbindungen der vorstehenden Aufnählung "Soraphen A" bis "Soraphen4 " genannt werden.
Verwendet werden insbesondere 6 neue Mikroorganismen-Stämme der cellulosezersetzenden Myxobakterion aus der Sorangium/ Polyanglum-Gruppe, die steh, wie bekannt, häufig in Erdproben, Pflanzenmaterial oder in Tier-Dunp finden lassen. Charakteristisch für diese taxonomisch n.' it allgemein verbindlich gegliederte Gruppe ist ihre Fähigkeit, auf Cellulose oder Cellulose-Abbauprodukten als einziger Kohlenstoffquelle zu gedeihen. Die 6 Stämme gemäß vorliegender Erfindung, gleichgültig, ob sie strenggenommen zur Sorangium/Polyangium-Gruppo oder nur einem taxonomisch verwandten Bereich angehören, sind gegenüber den weitaus meisten Vertretern dieser Gruppe weiterhin dadurch gekennzeichnet, daß sie mindestens eines der vorstehend genannten "Soraphene" der Formel I produzieren, und bevorzugt mindestens zwei "Soraphene", darunter "Soraphen AM.
Die 6 Stämme tragen hier und im folgenden den Sammelnamen Sorangium-(Polyangium)ceHulosum. Sie entstammen Erdproben, die zu unterschiedlichen Zeiten an verschiedenen Stellen Europas, Afrikas bzw. der USA gesammelt wurden. Sie wurden bei der Deutschen Sammlung von Mikroorganismen (DSM) in
- 3a -
Braunschweig« Bundesrepublik Deutschland, gemäß Budapester Vertrag hinterlegt. Sie sind wie folgt gekennzeichnet.
1.) Sorangiutft(Polyangium)eellulosum Stamm "So ce 139% isoliert im Mai 1986 aus einer im Herbst 1982 bei Fort Huachaca, Arizona, USA« gesammelten Erdprobe. Hinterlegungsnummer: DSM 5397. Kinterlegungstag: 2. Ouni 1989.
-A-
2.) Sorangium(Polyangium)cellulosum Stamm "So ce 170", isoliert im April 1987 aus einer im Mai 1981 gesamiralten Erdprobe von der Insel Delos, Griechenland. Hinteriegungsnummer: DSM 4795. Hinterlegungstag: 1 September 1988.
3.) Sorangium(Polyangium)cellulosum Stamm "So ce 191", isoliert im August 1987 aus einer im Februar 1987 gesammelten Erdprobe von dor Insel Madeira, Portugal. Hinteriegungsnummer: DSM 4796. Hinterlegungstag: 2. September 1988.
4.) Sorangium(Polyangium)cellulosum "So ce 192", isoliert im Augost 1987 aus einer im März 1987 gesammelten Erdprobe aus Nigeria. Hinterlegur.gsnummer: DSM 4797. Hinterlegungstag: 2. September 1988.
5.) Sorangium(Polyangium)cell),Iosuir. Stamm "So ce 231", isoliert im April 1988 aus einer im April 1987 bei Didyma, Türkei, gesammelten Erdproben. Hinterlegungsnurm:.?r: DSM 5393. Hinterlegungstag: 2. Juni 1989.
6.) SoranRium(PolyanRJum)cellulosum Stamm "So ce 242", isoliert im Oktober 1988 aus einer im April 1988 bei Pozzuoli, Italien, gesammelten Erdprobe. Hinteriegungsnummer: DSM 5414. Hinterlegungstag: 19. Juni 1989.
Im folgenden wird für diese Stämme die Bezeichnung Sorangium cellulosum verwendet.
Das erfindungsgemässe Verfahren zur Herstellung eines "Soraphens" der Formel I ist gekennzeichnet durch aerobe Züchtung eines der Stämme Sorangium celluXcsum "So ce 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce If/?", "So ce 231" oder "So ce 242" oder eines von diesen ableitbaren Klon, Mutante etc. in einem geeigneten Nährmedium und Abtrennung des gebildeten "Soraphens".
In der europäischen Patentanmeldung EP-A-282,455 wird ein anderer Sorangium cellulosum-Mikroorganismus "So ce26" beschrieben, dessen Fermentation die hier weiter oben genannten Soraphene A und D liefert. Die vorliegende Erfindung bezieht sich nicht auf diese beiden Präparate und ihre alleinige Anwendung in Mitteln.
Die vorliegende Erfindung betrifft die Herstellung weiterer wertvoller pflanzenmikrobizider Feraentationoprodukte, die durch den Mikroorganismus *«« ce 25" (Hinterlegungsrummer NCIB 12 411) und od^r durch die Mikroorganismen "Sc ce 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce 192", "So ce 231" oder "So ce 242" produziert werden.
Allgemeine Verfahrensbe,Jlngungen für die Kultivierung der
6 Produktionsstämme
Die Sorangium cellulosum-Stämme lassen sich in geeigneten Nährmedien nach üblichen biologischen Methoden, z. B. in Schüttelkulturen oder in Fermentoren kultivieren. Pie Fermentationstemperatur beträgt im Regelfall iO-40 0C, bevorzugt 10-35 0C und besonders bevorzugt bei etwa 30 °-32 0C, der pH-Wert beträgt 6-8, bevorzugt 7,4. Der Prozeß verläuft aerob und unter sterilen Bedingungen.
Die Zusammensetzung des Nährmediums kann in größeren Bereichen variieren. Für essentiell zu assimilierende Nährstoffe müssen eine Kohlenstoff- und eine Stickstoffquelle sowie eine Quelle für anorganische Mineralsalze, die P, S, Mg, K, Fe, Ca einschließen, vorhanden sein.
Fermsntierungsprozesse benutzen als C-^uellen bevorzugt Glucose, Stärke und Cellulose sowie deren Abbau-Produkte (z. B. Cellobiose) daneben auch Disaccharide, Glycerin, Essigsäure und andere. Als N-QueMe'i sind z. B. NH^, NO3 oder auch Peptone geeignet. Eine organische Verbindung als N-Quel-Ie kann in der Regel nicht gleichzeitig die einzige C-Quelle und Energiequelle bei der Fermentlsrung sein.
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Als Mineralsalze kommen Chloride, Nitrate, Sulfate, Carbonate und Phosphate der Elemente Na, K, NH4, Mg, Fe und Ca in Betracht, daneben können Cu, Mn, Mo, Zn, Co und andere als Spurenelemente anwesend sein. Soweit möglich, können solche Salze auch an Ethylendiamintetraessigsäure (EOTA) gebunden vorliegen.
Die Mikroorganismus-Kultur wird in die Schüttelkultur oder in den Ferinentor in einer Animpfmenge von 0,1-20 %, bevorzugt 0,5-10 %, ganz besonders bevorzugt 0,5-5 % (v/v), eingesetzt. Die Kulturdauer beträgt bei ca. 300C etwa 2-7 Tage, grossvolumige Ansätze seltener bis zu 10 Tagen oder langer. Für grossvolumige Ansätze werden zweckmassigerweise einleitend kleinere Vorkulturen fermentiert. Die Verwendung der Sorangium cellulosum-Stä'mme ist auch in immobilisierter Form möglich, z.B. in Form trägerfixierter Zellen an Alginat.
Als ableitbarer Klon im obigen Sinne gilt jede Kultur, welche noch die für die Durchführung des erfindungsgemassen Verfahrens wesentlichen Merkmale des hinterlegten Klons aufweist, insbesondere eine Kultur, deren Mikroorganismen die gleichen Strukturgene wie die für die Bildung der Verbindung der Formel I ursächlichen Strukturgene der Stämme "So ce 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce 192", "So ce 231" und "So ce 242" enthalten. Als ableitbarer Klon gilt auch jede Kultur, deren Mikroorganismen ein wegen der Entartung des genetischen Codes mögliches Aequivalent der für die Bildung von Verbindung I ursächlichen Strukturgene der 4 Stämme enthalten. Als ableitbare Klon gilt insbesondere jede Kultur, die cellulosezersetzende Myxobakterien, vorzugsweise der Art Sorangium cellulosum, welche zur Produktion der Verbindung der Formel I befähigt sind, enthält. Der Begriff "ableitbarer Klon" der Stämme DSM 5397, DSM 4795, DSM 4796, DSM 4797, DSM 5393 und DSM 5414 schliesst auch alle Mutanten oder Rekombinanten ein, die zur Produktion von Verbindung I befähigt sind.
Die Züchtung erfolgt aerob, also beispielsweise in ruhender Oberflächenkultur oder vorzugsweise submers unter Schütteln oder Rühren mit Luft oder Sauerstoff in Schüttelkulturen oder in Fermentoren. Vorzugsweise kultiviert man stufenweise, d.h. man stellt zunächst eine oder mehrere Vorkulturen in flüssigem Nährmedium her, die dann in das eigentliche Produktionsmedium, z.B. im Verhältnis 1:20, überimpft werden.
Die Abtrennung des "Soraphens" erfolgt auf physiko-chemischem Wege mittels an sich bekannter Trennungsmethoden wie Filtrieren, besonders aber Lösungsmittel-Extraktion, und Chromatographie, vor allem Adsorptions- und Verteilungschromatographie und gegebenenfalls Kristallisationt
Aus der wässrigen Fermentationsbrühe lassen sich die Verbindungen der Formel I mit lipophilen organischen Lösungsmitteln extrahieren, z.B. mit Ketonen wie Methylethylketon, Cyclohexanon; mit Alkoholen mittlerer Kettenlänge wie Isobutanol, Pentanol, Hexanol; mit Essigsäure-Ci-Ce-Alkylestern (Ethylacetat, Propylacetat, Butylacetat, Isobutylacetat u.a.); mit Toluol, Dichlormethan, 1,2-Dichlorethan, Chlorbenzol, Dichlorbenzol u.a.
Aus dem filtrierten Zeilkuchen lassen sich die Verbindungen leicht mit Alkoholen oder Ketonen (z.B. Methanol, Ethanol, Aceton, Methylethylketon) extrahieren.
Aus dem jeweiligen Extrakt können dann durch Einengen und/oder Ausfällen Verbindungen der Formel I gewonnen werden, die sich durch fraktioniete Kristallisation oder andere chromatographische Trennverfahren in die Soraphene A bis ρ (- Rho) auftrennen lassen.
Vorteilhaft schliesst der Fermentationsvorgang zur Gewinnung der Verbindungen der Formel I mit der Zugabe eines Adsorberharzes ab, von dem die gewünschten Produkte aufgenommen werden, oder die Fermentation wird von Anfang an in Gegenwart eines solchen Adsorberharzes durchgeführt. Als Adsorberharze kommen vor allem neutrale organische Polymerstoffe in Frage, besonders nicht-ionische hydrophobe Adsorberharze, die zur lipophilen Extraktion geeignet sind. An diesem wird die Verbindung der Formel I fast quantitativ gebunden. Beispiele solcher Harze sind halbpolare Acrylester-Harze, unpolare Polystyrol/Divinylbenzol-Harze und besonders vernetztes Polystyrol. Solche Harze werden in Mengen von 0,1 bis 5 % (v/v) des Fermentations-Volumens zugegeben, bevorzugt 0,5 bis 2 % (v/v). Auch Aktivkohle kommt in Frage. Technisch besonders vorteilhaft sind Polystyrol-HaLze wie z.B. XAD-1180 oder XAD-16 (Hersteller: Rohm and Haas), die in filtrierbarer Form vorliegen (Körner oder Granulate). Nach
Beendigung der Fermentation wird das Harz abfiltriert, mit Wasser gewaschen und mit Methanol oder Ethanol behandelt. Der alkoholische Extrakt wird eingeengt. Durch Zugabe von Diethylether« Ethylacetat oder Butylacetat kann die weitgehend auskristallisierende Vorbindung IA (»Soraphen A) abgetrenht werden. Das Filtrat wird zur Gewinnung von restlichem Soraphen A, vor allem aber zur Gewinnung der restlichen Soraphene B chromatographisch gereinigt.
Die Erfindung betrifft die Verbindungen der Formel I in reiner Form bzw. in kristallisierter Form. Die Erfindung betrifft aber auch Biomassen, Rohextrakte oder Adsoberharze aus der Fermentation, die die Verbindung der Formel I enthalten und als solche oder in weiterformulierter Form zur Bekämpfung von Pflanzenkrankheiten verwendet werden können. Biomassen können auch als gemahlene oder gepreßte Trockensubstanzen ("cake") weiterverwendet oder in den Handel gebracht werden.
Die beschriebenen Herstellungsverfahren einschließlich aller Teilschritte sind ein Bestandteil der vorliegenden Erfindung.
Insbesondere betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Herstellung von Soraphen der Formel I, dadurch gekennzeichnet, daß man einen der Stämme Sorangium cellulosum "So c.j 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce 192", "So ce 231" und "So ce 242" oder einen Mikroorganismus, der die gleichen Strukturgene enthalt wie die für die Bildung von Soraphen ursächlichen Strukturgene der genannten Stämme, in einem wässerigen, eine Kohlenstoff- und Stickstoffquelle sowie anorganische Salze enthaltenden Nährmediuro aerob züchtet und die Soraphene der Formel I isoliert.
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In erster Linie betrifft die Erfindung eine Ausfuhrungsform des obengenannten Verfahrens, die dadurch gekennzeichnet ist, daß man einen Soraphen bildenden Mikroorganismus aus der Gruppe der cellulosezersetzenden Myxobakterien züchtet.
Eine bevorzugte Ausführungsform des obengenannten Verfahrens ist dadurch gekennzeichnet» daß man einen der Stämme Sorangiuiii cellulosum "So ce 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce 192", "So ce 231", "So ce 242" oder eine Soraphen bildende Mutante dieses Stammes züchtet.
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Eine besonders bevorzugte Ausführungsform des obengenannten Verfahrens ist dadurch gekennzeichnet, dass man einen dieser gamäss Budapester Vertrag hinterlegten Stämme "So ce 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce 192", "So ce 231", "So ce 242" züchtet.
Vorzugsweise fiihxt man die Fermentation unter den im Beispielteil beschriebenen Bedingungen durch.
Mikroorganismen, die die gleichen für die Bildung von Soraphen ursächlichen Strukturgene enthalten wie die 6 Stämme, könnet; z.B. durch Genmanipulation künstlich geschaffen werden, indem man die entsprechenden Strukturgene aus den 6 Stämmen isoliert und an geeigneter Stelle in das Genmaterial eines geeigneten anderen Mikroorganismus einbaut. Geeignete Mikroorganismen sind solche, in die man die betreffenden Strukturgene nicht nur einbauen kann, sondern in denen diese Strukturgene auch exprimiert werden und in denen das gebildete Soraphen nicht wieder abgebaut, sondern vorzugsweise in die Fermentationsbrühe ausgeschieden wird. Solche geeigneten Mikroorganismen sind in erster Linie andere Stämme der Myxobakterien, insbesondere solche der Art Sorangium cellulosum, sofern sie die obengenannten Strukturgene nicht bereits besitzen.
Soraphen bildende Mutanten können zum Beispiel unter der Einwirkung von Ultraviolett- oder Röntgenstrahlen oder von chemischen Mutagenen, z.B. N-Methyl-N'-nitro-N-nitroso-guanidin, erzeugt und durch Selektion nach ihren spezifischen Eigenschaften in an sich bekannter Weise isoliert werden. Weitere Verfahrensmassnahmen zur Herstellung von Mutanten und Rekombinanten eines Mikroorganismus sind dem Fachmann bekannt und geläufig.
Die Erfindung betrifft auch ein Verfahren zur Herstellung eines Fermentationsgutes, das Soraphen in nachweisbarer Menge enthält und das dadurch gekennzeichnet ist, dass man einen der Scämme Sorangium cellulosum "So ce 139", "So ce 170", "So ce 191", "So ce 192", "So ce 231", "So ce 242" oder eine von diesen Stämmen ableitbaren Klon in einem Nährmedium züchtet und Soraphen in geeigneter Form gewinnt. Solche Kulturbrühen lassen sich als solche oder in konzentrierter Form,
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gegebenenfalls unter Zusatz von weiteren Trägerstoffen und/oder Verteilungsmitteln als Mittel gegen pflanzenpathogene Mikroorganismen einsetzen und sind daher ein wichtiger Teil vorliegender Erfindung.
Im engeren Sinne ist das Verfahren dadurch gekennzeichnet, dass man einen der Mikroorganismen Sorangium cellulosum "So ce 139","So ce 170", "So ce 191", So ce 192", "So ce 231" oder "So ce 242" in einem Kulturmedium enthaltend mindestens je eine assimilationsfähige C-Quelle und N-Quelle sowie entsprechende anorganische Salze, bei 10-AO0C, bevorzugt bei 10-350C, in Anwesenheit oder Abwesenheit eines Adsorberharzes kultiviert, dann die Kulturbrühe bzw. das abfiltrierte Adsorberharz mit einer geeigneten Lösungsmittelphase extrahiert, die erhaltene Lösung einengt und den verbleibenden Rückstand, sofern gewünscht, durch Chromatographie und/oder Umkristallisation reinigt.
Stammkulturen werden gehalten als Plattenkulturen auf VY/2-Agar (0,5 % Bäckerhefe nach Frischgewicht; 0,1 % CaCl2; 1,5 % Agar; pH 7,2) oder auf Filterpapier (·- Cellulosequelle) über ST21-Agar (0,1 % KNO3; 0,1 % MgSOg. 7H2O; 0,1 % CaCl2; 0,1 % K2HPO.,; 0,01 % MnSOg. 7H2O; 0,02 % FeCl3; 0,002 % Hefe-extrakt; Standard-Spurenelementlösung ; 1 % Agar). Die Platten werden bei 30° bebrütet.
Auf beiden Medien bilden die Organismen Schwarmkolonien, die sich langsam über das Substrat hin ausbreiten. Im einzelnen beobachtet man deutliche Unterschiede zwischen den 6 Stämmen.
1) "So ce 139" (DSM 5397): Auf Filterpapier über ST 21 Agar bleibt die Schwarmkolonie weitgehend auf das Filterpapier beschränkt. In älteren Kulturen reisst der Agar am Filterrand auf und Schwarm und Agar rollen sich ein. Das Filterpapier wird vollständig abgebaut, an seiner Stelle
0,02-0,5 mg Mn-, Mo-, Cu-, Co- und/oder Zn-SaIz pro Liter
[R.Y. Stanier et al. "General Microbiology" Ath Ed., p. 36 (1976)];
oder
500 mg EDTA, 300 mg FeSOu^H2O, 3 mg MnCl2-AH2O, 5 mg CoCl2 ·6Η2Ο,
1 mg CuCl2'2H2O, 2 mg NiCl2»6H2O, 3 mg Na2MoOg·2Η2Ο, 5 mg
ZnSOi1^H2O, 2 mg H3BO3 pro Liter dest. Wasser (ca. pH A) [C. Drews
"Mikrobiolog. Praktikum", A. Auflage, S. 11, Springer Verlag
Berlin, Heidelberg, New York, Tokyo [1983]
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findet man ein dichtes Feld von schwarzbraunen Fruchtköipern. Diese r.ind aus kleinen Sporangiolen von 15-30 um Durchmesser zusammengesetzt, die ihrerseits zu kleinen Paketen bis zu ausgedehnten ungegliederten Hassen verbacken sind. Die vegetativen Zellen sind schlanke zylindrische Stäbchen mit stumpf abgerundeten Enden und messen 0.7-0.9 χ 2.5-4 um. Im Phasenkontrastmikroskop erscheinen sie dunkel, oft mit hellen Polkörnchen. Auf VY/2-Agar bilden.sich sehr grosse Schwarmkolonien mit farblosen bis orange radialen Adern und vielen schwarzbraunen Fruchtkörpern von ähnlichem Bau wie oben beschrieben. Die Hefezellen des Nährmediums werden kaum angegriffen. Die vegetativen Zellen erscheinen etwas derber und sind um 1 pm dicker.
2) "So ce 170" (DSM 4795): Auf Filterpapier über ST 21 Agar dringt der Schwarm weit über das Tilter hinaus auf die Agaroberflache vor. Der Agar reisst später tief auf, und die Schwarmkolonie rollt sich ein. Auf dem Filterpapier können sich Fruchtkörper entwickeln! Diese bestehen aus kleinen dickwandigen dunkelbraunen Sporangiolen, von meist 20-30 pm 0, die in meist scharf begrenzten länglichen Paketen von etwa 50-200 pm 0 dicht zusammengedrängt sind. Stellenweise können zusammenhängende ausgedehnte Aggregate von Fruchtkörpern entstehen. Auf VY/2-Agar bilden sich knapp mittelgrosse, dickschleimige, intensiv orange Schwarmkolonien von meist 1-2 cm 0. Die Hefezellen werden langsam abgebaut. Auch hier reisst der Agar stellenweise tief auf, so dass der Schwarm ganz aus der Platte herausfallen kann. Auf der Agaroberfläche bilden sich oft orange, hellbraune bis dunkelbraune Fruchtkörper von ähnlichem Bau wie oben. Die vegetativen Zellen sind derbe, im Phasenkontrastmikroskop dunkle Stäbchen mit breit abgerundeten Enden und messen gewöhnlich 0,8-1,0 χ 2-5 pm. Der Stamm bauch auch sehr effizient Chitin ab.
3) "So ce 191" (DSM 4796) wächst auf Filterpapier über ST21-Agar, ohne auf die Agaroberfläche überzugreifen. Auch in diesem Fall kann der Agar rings um das Filterpapier tief aufreissen und die Schwarmkolonie sich einrollen. Auf VY/2-Agar entwickeln sich grosse Schwärme von 6-8 cm 0, mit feinen bis kräftigen radialen Adern, Die Hefezellen werden kaum angegriffen. Die zylindrischen vegetativen Stäbchen haben breit abgerundete Enden, sinti im Phasenkontrastmikroskop dunkel, oft ziemlich lang
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und messen meist 0,7-0,9 χ 3-8 pm. Der Stamm bildet in Reinkultur unter den genannten Kulturbsdingungen keine Fruchtkörper. Der Stamm baut effizient Chitin ab.
4) "So ce 192" (DSM 4797) breitet sich bei Kultur auf Filterpapier über ST21-Agar weit über die Agaroberflache hin aus. Der Agar kann tief aufreissen, die Schwarmkolonie sich einrollen. Auf der Agarob.erflache, besonders aber auf auf dem Filterpapier entwickeln sich viele leuchtend orange gefärbte Fruchtkörper, bestehend aus winzigen Sporangiolen von meist 10-20 pm 0 in scharf begrenzten Paketen von meist 50-500 pm Ausdehnung. Auf VY/2-Agar entwickeln sich mittelgrosse kräftige Schwärme von 2-3 cm 0, mit radialen Adern und vielen intensiv braunorange gefärbten Fruchtkörpern in und auf dem Agar von ähnlichem Bau, wie oben beschrieben. Die vegetativen Zellen sind zylindrische dunkle Stäbchen mit breiten Enden und messen meist 0,7-0,9 χ 3-5 pm. Die Hefezellen werden nicht abgebaut, dagegen baut der Stamm sehr effizient Chitin ab.
5) "So ce 231" (DSM 5393) geht in Kulturen auf Filterpapier über ST 21 Agar nicht auf die Agarplatte über. Der Agar kann am Filterrand aufreissen, doch rollen sich die Kolonien nicht ein. Das Filterpapier wird vollständig zerstört, an seiner Stelle findet man später ein sehr dichtes Feld von intensiv braunorange Fruchtkörpern. Diese sind ähnlich gebaut wie bei den anderen Stämmen, doch sind die Sporangiolen häufig in Bändern angeordnet. Auf VY/2-Agar entwickeln sich sehr grosse Schwärme mit radialen Bündeln von feinen Adern. Lokal entwickeln sich leuchtend orangebraune Fruchtkörper. Die schlanken vegetativen Stäbchen sind sehr zierlich und messen 0.6-0.8 χ 2.5-6 pm. Die Hefezellen des Nährbodens werden langsam lysiert. Der Stamm baut auch sehr effizient Chitin ab.
6) "So ce 242" (DSM 5414) dringt auf Filterpapier über ST 21 Agar vor und bildet dort auch Fruchtkörper. Der Agar reisst am Rand des Filterpapiers tief auf. Das Filterpapier wird völlig abgebaut und durch eine dichte Masse aus schwarzbraunen Fruchtköpern ersetzt. Die Sporangiolen sind in diesem oft in Ketten angeordnet. Auf VY/2-Agar entwickeln sich sehr grosse Schwärme mit feinen radialen Adern. Der Agar reisst im Schwarmbereich an vielen Stellen krallenartig auf. Ferner entstehen reichlich
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Fruchtkörper. Die Hefezellen im Substrat werden langsam abgebaut. Die vegetativen Zellen messen 0.7-1.0 ym χ 2-4 pm. Der Stamm ist ein sehr effizienter Chitinzersetzer.
Die Stämme produzieren Substanzen, welche das Wachstum zahlreicher Hefen und Hyphenpilze hemmen. Chemisch handelt es sich bei den Hemmstoffen nicht nur um Soraphene, deren Strukturen, wie unten angegeben, bereits aufgeklärt sind. Diese Gemische macrocyclischer Verbindungen vom Soraphen-Typ erscheinen in Flüssigkulturen im Kulturüberstand, können aber auch aus den Zellen isoliert warden. Die Produktion der Antibiotika erfolgt während der logarithmischen bis is die stationäre Wachstumsphase hinein.
Alle 6 Stämme müssen an das Wachstum in Flüssigmedien adaptiert werden. Sie wachsen zunächst in Form kleiner, fester, orangefarbener Knöllchen und bilden erst nach vielen Uebertragungsschritten von Flüssigmedium zu Flüssigmedium allmählich mehr oder weniger homogene Zellsuspensionen.
"So ce 191", "So ce 192", "So ce 231" und "So ce 242" Cellulose-Abbau : positiv
Glucose-Abbau : positiv
Stärke-Abbau : positiv
NHi, als N-Quelle: positiv
NOj als N-Quelle: positiv
Tabelle 1: Beispiele für Organismen, welche durch Kulturöberstände der Stämme So ce 139, So ce 170, So ce 191, So ce 192, So ce 231 und So ce 242 im Wachstum gehemmt worden
Debaryomyces hansenii st.irke Hemmung
Nematospora coryli stärkt? Hemmung
Candida albicans starke Hemmung
Saccharomyces cerevisiae mittelstarke Hemmung
Rhodotorula glutinis mittelstarke Hemmung
Hansenula anomala mittelstarke Hemmung
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Nadsonia fulvescens keine Hemmung
Torulopsis glabrata keine Hemmung
Schizosaccharomyces pombe keine Hemmung
Hyphenpilze
Alternaria solani starke Hemmung
Pythium debaryanum starke Hemmung
Mucor hiemalis starke Henmung
Rhizopus arrhizus schwache Wemmung
*Die Hemmwerte beziehen sich auf eine durchschnittliche Kulturen-Charge und sind als Verhältniswerte zueinander aufzufassen.
Die Erfindung betrifft die Soraphene C bis o~ der Formel I in reiner Form. Die Erfindung betrifft aber auch Biomassen, Rohextrakte oder Adsorberharze aus der Fermentation, c· \e die Soraphene C bis or der Formel I enthalten und als solche oder in weiterformulierter Form zur Bekämpfung von Pflanzenkrankheiten verwendet werden können. Biomassen können auch als gemahlene oder gepresste Trockensubstanzen ("cake") WGiterverwendet oder in den Handel gebracht werden.
Die beschriebenen Herstellungsverfahren einschliesslich aller Teilschritte sind ein Bestandteil der vorliegenden Erfindung.
Ueberraschenderweise wurde nun gefunden, dass Verbindungen der Formel I ein sehr günstiges biozides Spektrum gegen phytopathogene Mikroorganismen, insbesondere gegen Pilze, aufweisen. Sie besitzen sehr vorteilhafte kurative, systemische und insbesondere präventive Eigenschaften und lassen sich zum Schutz von zahlreichon Kulturpflanzen einsetzen. Mit den Wirkstoffen der Formal I können an Pflanzen oder Pflanzenteilen (Fzüchte, Blüten, Laubwerk, Stengel, Knollen, Wurzeln) von unterschiedlichen Nutzkulturen die auftretenden Schädlinge eingedämmt oder vernichtet werden, wobei auch später zuwachsende Pflanzenteile vor phytopathogenen Mikroorganismen verschont bleiben.
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Als Mikrobizide sind die Wirkstoffe der Formel I l.B. gegen die den folgenden Klassen angehörenden phytopathogenen Pilze wirksam: fungi imperfecti (z.B. insbesondere Bocrytis, ferner Pyricularia, Helminthosporium, Fusarium, Septoria, Cercospora und Alternaria); Basidiomyceten (z.B. Rhizoctonia, Hemileia, Puccinia). Darüber hinaus wirken sie gegen die Klasse der Ascomyceten (z.'1. insbesondere Venturia und Erysiphe, ferner Podosphaera, Monihinia, Uncinula) und der Oomyceten (z.B. Phytophthora, PlasmoparO. Die Verbindungen der Formel I können ferner als Beizmittel zur Behandlung von Saatgut (Früchte, Knollen, Körner) und Pflanzenstecklingen zum Schutz vor Pi.lzinfekUionen sowie «>egen im Erdboden auftretende phytopathogene Pilze eingesetzt werden.
Die Erfindung betrifft auch die Mittel, die als Wirkstoffkomponente eino oder mehrere der Soraphene C bis σ der Formel I enthalten, insbesondere pfJanzenschützende Mittel, sowie deren Verwendung auf dem Agrarsektor oder verwandten Gebiuten.
Eingeschlossen ist auch ein Verfahren zur Behandlung von Pflanzen, das sJch durch Applikation der neuen Vorbindungen Soraphen C bis or der Formel I bzw. der entsprechenden neuen Mittel auszeichnet.
Als Zielkulturen für den hierin offenbarten pflanzenschützenden Einsatz gelten im Rahmen dieser Erfindung beispielsweise folgende Pf Jar.zenarten: Getreide (Weizen, Gerste, Roggen, Hafer, Reis, Mais, Sorghum und verwandte Species); Rüben (Zucker- und Futterrüben); Kern-, .Stein- und Beerenobst (Aepfel, Birnen, Pflaumen, Pfirsiche, Mandeln, Kirschen, Erdbeeren, Himbeeren und Brombeeren); Hülsenfrüchte (Bohnen, Linsen, Erbsen, Soja); Oelkulturen (Raps, Senf, Mohn, Oliven, Sonnenblumen, Kokos, Rizinus, Kakao, Erdnüsse); Gurkengewachse (Kürbis, Gurken, Melonen); Fasergewächse (Baumwolle, Flachs, Hanf, Jute); Citrusfrüchte (Orangen, Zitronen, Pampelmusen, Mandarinen); Gemüsesorten (Spinat, Kopfsalat, Spargel, Kohlarten, Möhren, Zwiebeln, Tomaten, Kartoffeln, Paprika); Lorbeergewächse (Avocado, Cinnamonium, Kampfer) oder Pflanzen wie Tabak, Nüsse, Kaffee, Ananas, Zuckerrohr, Tee, Pfeffer, Weinreben, Hopfen, Bananen- und Nai-urknutschukgewächse sowie Zierpflanzen (Compositen). Diese Aufzählung stellt keine Limitierung dar.
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Wirkstoffe der formel I werden üblicherweise in Form von Zusammensetzungen verwendet und können gleichzeitig oder nacheinander mit weiteren Wirkstoffen auf die zu behandelnde Fläche oder Pflanze gegeben werden. Diese weiteren Wirkstoffe können sowohl Düngemittel, Spurenelemente-Vermittler oder andere das Pflanzenwachstum beeinflussende Präparate sein. Es können dabei auch selektive Herbizide sowie Insektizide, Fungizide, Bakterizide, Nenatizide, Molluskizide oder Gemische . mehrerer dieser Präparate zusammen mit gegebenenfalls weiteren in der Formulierungstechnik üblichen Trägerstoffen, Tensiden oder anderen applikationsfördernden Zusätzen Verwendung finden.
Geeignete Träger und Zusätze können fest oder flüssig sein und entsprechen den in der Formulierungstechnik zweckdienlichen Stoffen, wie z.B. natürlichen oder regenerierten mineralischen Stoffen, Lösungs-, Dispergier-, Netz-, Haft-, Verdickungs-, Binde- oder Düngemitteln.
Ein bevorzugtes Verfahren zum Aufbringen eines Wirkstoffs der Formel I bzw. eines agrochemischen Mittels, das mindestens einen dieser Wirkstoffe enthält, ist das Aufbringen auf das Blattwerk (Blattapplikatjon). Applikationsfrequenz und Aufwandmenge richten sich dabei nach dtjm Befallsdruck des betreffenden Erregers. Die Wirkstoffe der Formel I können abei. auch über den Erdboden durch das Wurzelwerk in die Pflanze gelangen (systemische Wirkung), indem man den Standort der Pflanze mit einer flüssigen Zubereitung tränkt oder die Substanzen in fester Form in den Boden einbringt, z.B. in Form von Granulat (Bodenapplikation). Dieses Granulat oder ein entsprechendes Pulvor kann auch die Trockenmasse der aus dem Fermentor anfallenden Biomasse oder das aus der Fermentationsbrühe abgesiebte und mit den Wirkstoffen der Formel I beladene Adsorberharz sein. Die Verbindungen der Formel I können auch auf Samenkörner aufgebracht werden (Coating), indem man die Körner entweder in einer flüssigen Zubereitung des Wirkstoffs tränkt oder sie mit einer festen Zubereitung beschichtet.
Die Verbindungen der Formel I wurden dabei in unveränderter Form oder vorzugsweise zusammen mit den in der Formulierungstechnik üblichen Hilfsmitteln eingesetzt. Dafür werden sie zweckmässigerweise z.B. zu Emulsionskonzentralxjn, streichfähigen Pasten, direkt versprühbaren oder
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verdünnbaren Lösungen, verdünnten Emulsionen, Spritzpulvern, löslichen Pulvern, Stäubemitteln, Granulaten, durch Verkapselungen in z.B. polymeren Stoffen in bekannter Weise verarbeitet. Die Anwendungsverfahren wie Versprühen, Vernebeln, Verstäuben, Verstreuen, Bestreichen oder Gaessen werden gleich wie die Art der Mittel den angestrebten Zielen und den gegebenen Verhältnissen entsprechend gewählt. Günstige Aufwandmengen liegen, im allgemeinen bei 10 g bis 2 kg Aktivsubstanz (AS) je h't, bevorzugt bei 50 g bis 500 g AS/ha.
Die Formulierungen d.h. die den Wirkstoff der Formel I und gegebenenfalls einen festen oder flüssigen Zusatzstoff enthaltenden Mittel werden in bekannter Weise hergestellt.
Als Lösungsmittel kommen in Frage: Aromatische und aliphatische Kohlenwasserstoffe, wie z.B. Xylolgemische, Cyclohexan oder Paraffine; dann Alkohole und Glykole sowie deren Ether und Ester, wie Ethanol, Ethylenglykol, Ethylenglykolmonomethyl·- oder -ethylether, Essigsäureester; Ketone wie Cyclohexanon, stark polare Lösungsmittel, wie N-Methyl-2-pyrrolidon, Dimethylsulfoxid oder Dimethylformamid, sowie gegebenenfalls epoxydierte Pflanzenöle wie epoxydiertes Kokosnussöl oder Sojaöl; oder Wasser.
Als feste Trägerstoffe, z.B. für Stäubemittel und dispergierbare Pulver, werden in der Regel natürliche Gesteinsmehle verwendet, wie Calcit, Talkum, Kaolin, Montmorilonit oder Attapulgit. Zur Verbesserung der physikalischen Eigenschaften können auch hochdisperse Kieselsäure oder hochdisperse saugfähige Polymerisate zugesetzt werden. Als gekörnte, adsorptive Granulatträger kommen poröse Typen wie z.B. Bimsstein, Ziegelbruch, Sepiolit oder Bentonit, als nicht-sorptive Trägermaterialien, z.B. Calcit oder Sand, in Frage. Darüber hinaus kann eine Vielzahl von vor^ranulierten Materialien anorganischer Natur wie insbesondere Dolomit oder zerkleinerte Pflanzenrückstände verwendet werden.
Als oberflächenaktive Verbindungen kommen je nach Art des zu formulierenden Wirkstoffs der Formel I nichtionogene, kation- und/oder anionaktive Tenside mit guten Emulgier-, Dispergier- und Netzeigenschaften in Betracht. Unter Tensiden sind auch Tensidgemische zu verstehen.
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Geeignete anionische Tenside können sowohl sog. wasserlösliche Seifen, auch wasserlösliche synthetische oberflächenaktive Verbindungen sein.
Häufiger werden jedoch sog. synthetische Tenside verwendet, insbesondere Alkansulfonate, Fettalkoholsulfate, sulfonierte Benzimidazolderivate oder Alkylsulfonate.
Als nichtionische Tenside kommen Polyglykoletherderivate von aliphatischen oder cycloaliphatischen Alkoholen, gesättigten oder ungesättigten Fettsäuren und Alkylphenolen in Frage, die 3 bis 30 Glykolethergruppen und 8 bis 20 Kohlenstoffatome im (aliphatischen) Kohlenwasserstoffrest und 6 bis 18 Kohlenstoffatome im Alkylrest der Alkylphenole enthalten können.
Als weitere Beispiele nichtionischer Tenside seien Nonylphenolpolyethoxyethanole, RicinusÖlpolyglykolether, Polypropylen-Polyethylenoxydaddukte, Tributylphenoxypolyethylenethanol, Polyethylenglykol und Octylphenoxypolyethoxyethanol erwähnt.
Ferner kommen auch Fettsäureester von Polyoxyethylensorbitan wie das Polyoxyethylensorbitan-trioleat in Betracht.
Die in der Formulierungstechnik gebräuchlichen Tenside sind u.a. in folgenden Publikationen beschrieben:
"Mc Cutcheon's Detergents and Emulsifiers Annual" MC Publishing Corp., Ridgewood New Jersey, 1980 Sisley and Wood, "Encyclopedia of Surface Active Agents", Chemical Publishing Co., Inc. New York, 1980.
Besonders vorteilhafte, applikationsfördernde Zuschlagstoffe, die zu einer starken Reduktion der Aufwandmenge führen können, sind ferner natürliche (tierische oder pflanzliche) oder synthetische Phospholipide aus der Fei.he der Kephaline und Lecithine, wie z.B. Phosphatidylethanolamin, Phosphatidylserin, Phosphatidylglycerin oder Lysolecithin.
- 19 - ff?
Öle agrochemischen Zubereitungen enthalten In der Regel O1I bis 95 % Wirkstoff der Formel I, 99,9 bis 5 % eines festen oder flüssigen Zusatzstoffes und 0 bis 25 % eines Tensides.
Während als Handelsware eher konzentrierte Mittel bevorzugt werden, verwendet der Endverbraucher in der Regel verdünnte Mittel.
Die Mittel können auch weitere Zusätze wie Stabilisatoren, Entschäumer, Viskositätsregulatoren, Bindemittel, Haftmittel sowie Dünger oder andere Wirkstoffe zur Erzielung spezieller Effekte enthalten.
Die nachfolgenden Beispiele dienen zur näheren Erläuterung der Erfindung, ohne dieselben einzuschränken.
1. He rstellungsbeispieIe
Beispiel H-It Herstellung der Verbindungen der Formel I in
Gegenwart eines Adsorberharzes
Das Verfahren wird in einem Fermentationsvolumen von 1000 Litern unter Zugabe von 0,5 % (v/v) Adsorberharz XAD-1180 (Rohm und Haas) durchgeführt. Die Verfahrensbedingungen für diesen Ansatz entsprechen denen des -lachfolgenden ..aispiels H-2. An Stelle des hier verwendeten Stammes So ce 26 aus der EP-A-282,455 kann auch einer der anderen 6 genannten Stämme vorliegender Erfindung eingesetzt werden.
- 19a - UH ff if
gesiebt, in eine Glassäule gespült, mit 3 Bettvolumen Wasser gewaschen und mit 4 Bettvolumen Methanol eluiert. Das Eluat wird im Vakuum zur Trockne eingeengt.
Die weitere chromatographische Aufreinigung folgt dem Schema der beigafügten Figur 1, deren einzelne Trennungsschritte unter folgenden Bedingungen ablaufen· Die Ausbeuten sind in Klammern angegeben, (h a Stunde)
-20-
Kieselgeltrennung; Säule: 100 mm 0; 45 cm Länge; Sorbens: Lichroprep Si 100; 40-63 pm (Hersteller: Merck) Laufmittel: Dichlormethan/Aceton in Stufen 98/2, 95/5, 'J3/7, 90/10, 50/5Ü; je Stufe 2 Liter Es Werden 5 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 3 enthält Soraphen A.
Die Fraktion 4 (25 g) wird weiter aufgereinigt.
Gelchromatographie; Säule: 60 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol Es werden 5 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 3 (17 g) wird weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 76 mm 0; 70 ein Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-60-60 35-70 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 40/60 lin. Gradient in 2 h nach Methanol. Es werden 9 Fraktionen genommen.
Die Fraktionen 3 (1,3 g), 4 (1,5 g), 5 (3,5 g) und 6 (1,6 g) werden weiter aufgereinigt.
Kieselgeltrennung; Säule: 40 mm 0; 30 cm Länge; Sorbens: Lichrosorb Si 100; 7 pm (Hersteller: Merck) Laufmittel: Dichlormethan/Hexan 1/1 + 2 % Methanol Es werden 6 Fraktionen genommen.
Die Fraktionen 2 (500 mg) und 4 (88 mg) werden weiter aufgereinigt.
Kieselgeltrennung; Säule: 40 mm 0; 30 cm Länge; Sorbens: Lichrosorb Si 100; 7 pm (Hersteller: Merck) Laufmittel: Dichlormethan/Hexan 1/1 + 2 % Methanol Es werden 6 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 3 (500 mg) wird weiter aufgereinigt.
- 21 -
Kieselgeltrennung; Säule: 35 mm 0; 45 cm Länge; Sorbens: Lichroprep Si 60; 40-63 \im (Hersteller: Merck) Laufmittel: Dichlormethan lin. Gradient in 1 h nach Dichlormethan/Aceton 1/1.
Es werden 6 Fraktionen genommen.
Die Fraktionen 1 (2,4 g) und 2 (400 mg) werden weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 35 mm 0; 45 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-30-60 25-40 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 80/20.
Es werden 9 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 7 (1,4 g) wird weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Nucleosil 100-7 Cie! 7 μιη (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30.
Es werden 7 Fraktionen genommen. Die Fraktion 3 (15 mg) wird weiter aufgereinigt.
Die Fraktion 7 enthält Soraphen N (18 mg).
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Nucleosil 100-7 Cie! 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 65/35.
Es werden 7 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 3 enthält Soraphen H (7 mg).
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: HDSIL 100-Cie-lO μιη (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 65/35.
Es werden 4 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 2 enthält Soraphen D (108 mg).
Kieselgeltrennung; Säule: 40 mm 0; 30 cm Länge; Sorbens: Lichrosorb Si 100; 7 μιη (Hersteller: Merck) Laufmittel: Dichlormethan/Hexan 1/1 + 1 % Methanol. Es werden 9 Fraktionen genommen.
Die Fraktionen 4 (530 mg) und 6 (280 mg) werden weiter aufgereinigt.
-22-
Kieselgeltrennung; Säule: AO mm 0; 30 cm Länge; Sorbens: Lichrosorb Si 100; 7 μπι (Hersteller: Merck)
• Laufmittel: Dichlormethan/Hexan 1/1 + 1 % Methanol. Es werden 8 Fraktionen genommen. Die Fraktion 7 (290 mg) wird weiter aufgereinigt.
Kieselgeltrennung; Säule: 20.5 mm 0; 2L· cm Länge; Sorbens: Nucleosil Si 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert-Butylmethylether/Hexan 1/2 + 1 % Metharol. Es werden 2 Fraktionen genommen. Die Fraktion 1 (325 mg) enthält Soraphen F.
IA Reversed-Phase-Trennung; Säule! 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Nucleosil 100-7 Cie! 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 68/32.
Es werden 2 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 1 enthält Soraphen Q (3 mg).
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Nucleosil 100-7 Cie'. 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 66/34.
Es werden A Fraktionen genommen.
Die Fraktion 1 enthält Soraphen C (21 mg).
Die Fraktion 2 enthält Soraphen B (230 mg).
Reversed-Phase-Trennung·, Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Nucleosil 100-7 Cjei 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 65/35.
Es werden 10 Fraktionen genommen.
Die Fraktion A enthält Soraphen J (18 mg).
Die Fraktion 9 enthält Soraphen E (96 mg).
-23-
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge;
Sorbens: Nucleosil 100-7 Ci β! 7 μτη (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30
• Es werden 10 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 6 enthält Soraphen H (98 mg).
Physikochemische Charakterisierung der Soraphene C bis Q Soraphen C
Mz 506 IR (Film)
3411; 2939; 2831; 1725; 1461; 1382; 1266; 1230; 1187; 1152; 1098; 1068; 1023; 988; 975.
13C-NMR-Verschiebungen (CDClj; S in ppm)
10.3; 11.7; 12.5; 23.0; 26.0; 29.4; 35.2; 35.6; 35.8; 46.2; 57.3; 57.6; 68.8; 72.5; 74.6; 74.9; 76.1; 83.7; 99.4; 125.0; 126.2; 126.2; 128.2; 128.6; 137.3; 141.0; 170.6.
UPLC R, = 8,6 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci3, Macherey Wagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen D C27Hi12O8 Mz 494 IR (Film)
3411; 2937; 2831; 1733; 1461; 1432; 1382; 1359; 1328; 1268; 1208; 1195; 1096; 1050; 988, 933.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl1; 6 in ppm)
10.7; 14.4; 22.8; 24.3; 25.0; 27.5; 27.7; 31.6; 35.3; 35.6; 43.2; 57.5; 58.6; 69.1; 70.8; 71.2; 74.8; 80.7; 82.6; 97.7; 126.4; 126.4; 128.0; 128.6; 128.6; 141.0; 168.6.
- 24 -
HPLC R, = 7,A min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen EC 2 9 H i| s-0 9 Mz 538 IR (Film)
3398; 2939; 2829; 1725; 1461; 1430; 1380; 1266; 1235; 1191; 1154; 1102; 1044; 971.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm)
10.3; 10.5; 11.5; 23.0; 25.0; 29.5; 30.0; 35.3; 35.5; 40.2; 46.3; 56.4; 57.4; 58.0; 69.0; 71.3; 71.7; 75.0; 76.3; 80.2; 81.1; 99.9; 126.5; 126.5; 128.1; 128.6; 140.9; 170.9.
HPLC R, = U,8 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 mn.
Soraphen FC2 gHitiOe Hz 522 IR (Film)
3394; 2937; 2827; 1729; 1710; 1461; 1382; 1326; 1314; 1266; 1253; 1232; 1189; 1154; 1104; 1075; 1048; 1021; 994; 971; 907.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl1; δ in ppm)
10.4; 11.7; 14.1; 23.0; ->4.2; 24.2; 28.3; 28.8; 33.3; 34.1; 35.2;
45.7; 57.4; 57.4; 57.9; 69.0; 70.1; 75.9; 76.3; 80.8; 82.1;
99.6; 126.6; 126.6; 128.2; 128.6; 128.6; 140.4; 171.8.
- 25 -
HPLC R, =8,1 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie» Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Lauf iittel: Methanol/Wasser 75/25; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen HC28H1, 2Ο9 Mz 522 IR (Film)
34AA; 2935; 2867; 2833; 1723; 1450; 1409; 1382; 1334; 1270; 1230; 1179; 1156; 1104; 1069; 996; 971.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm)
10.9; 11.6; 14.4; 23.4; 25.0; 28.6; 35.6; 36.3; 45.6; 57.7; 57.8;
67.5; 68.7; 69.2; 73.9; 73.9; 76-1; 81.7; 100.1; 122.9; 126.0;
126.0; 128.2; 128.7; 128.7; 138.0; 140.6; 171.5.
HPLC R, = 7,0 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 65/35; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen JC28H1,11Oa Mz 508 IR (Film)
3394; 2939; 2829; 1729; 1461; 1380; 1313; 1270; 1187; 1158; 1100; 1042; 987.
l3C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; δ in ppm)
11.5; 13.8; 14.3; 22.5; 24.1; 25.6; 25.8; 27./; 31.6; 35.2; 36.3;
49.3; 57.3; 59.4; 69.6; 70.5; 72.6; 75.7; 81.0; 84.6; 98.2;
126.3; 126.3; 128.1; 128.7: 128.7; 141.3; 172.5.
HPLC R, β 8,1 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 C1Bi Macherey Nagel; Fluss: 1 ,5 m.l./min; Laufmittel: Methanol/Wasser /0/30; Detektor: UV 210 rim.
Soraphen M
C28H11 I4Ü9
Mz 524 IR (Film)
3396; 2939; 2821; 1725; 1461; 1380; 1270; 1235; 1191; 1154; 1075; 1048; 994; 971; 898; 850;
13C-NMR-Verschiebungen (CDClj; 6 in ppm)
9.0; 10.4; 11.5; 23.1; 25.3; .28.3; 29.3; 35.1; 35.7; 40.3; 46.5, 57.2; 57.9; 68.8; 68.8; 71.9; 72.9; 74.4; 76.3; 83.8; 99.6, 126.3; 126.3; 128.0; 128.5; 128.5; 141.2; 171.0.
HPLC R, = 8,5 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 C18· Macherey Nagel; Fluss·. 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen NC 2 9 H i, u 0 9 Mz 536 IR (Film)
3444; 2966; 2939; 1731; 1451; 1380; 1309; 1268; 1224.· 1164; 1098;
13C-NMR-Verschiebungen (CDCIi; 6 in ppm)
13.8; 13.9; 23.3; 23.4; 24.2; 26.3; 26.7; 29.5; 32.1; 36.3; 50.3; 54.5; 57.6; 68.1; 75.2; 78.4; 79.9; 105.7; 125.8; 125.8; 127.5; 128.4; 128.4.
'l'-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm) 0,9 d; 1.05 d; 1.24 d; 5.23 d; 5.85 dd.
-27-
HPLC R1 = 13,A min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen Q
Mz 508 IR (Film)
3448; 2939; 2831; 1733; 1459; 1382; 1330; 1270; 1203; 1098; 1048; 987
13C-NMR-Verschiebungen (CDCI3; 6 in ppm)
11.5; 14.5; 23.1; 24.9; 26.2; 27.1; 27.6; 31.7; 35.5; 35.9; 39.5;
50.7; 57.4; 58.7; 69.5; 71.3; 71.6; 74.6; 79.4; 81.9; 102.2;
126.6; 126.6; 127.9; 128.4; 128.4; 137.9; 168.0.
HPLC R, - 7,7 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min·. Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 r, .
Beispiel H~2: Herstellung der Verbindungen der Formel I a) Vorkultur: Die Vorkultur wird im 2 Liter-Kolben mit je 500 ml eines Kulturmediums (enthaltend 0,1 % Pepton aus Casein, 0,5 % Glucose, 0,05.% CaCl2Ή2Ο, 0,0b % MgSO.,«7H2O) bei pH 7,4 ohne Puffer (oder mit 50 mM HEPES-.
2 Puffer ) bei 160 Upm und 300C auf dem Schütteltisch angezogen. Der günstigste Zeitpunkt zur Uebertragung in die Fermentor-Kultur wird nach 2-3 Tagen (obere log-Phase] erreicht. An Steile des hier verwendeten Stammes So ce 192 kann auch einer der anderen 5 Stämme vorliegender Erfindung oder der Stamm So ce 26 gemäss EP-A-282,455 eingesetzt werden.
HEPES ist d/is K- und/oder Na-SaIz der 4-(2-Hydroxy-
. ethyl)-piperazin-1-ethansulfonsäure
- 28 -
b) Fermentation:
Ein 70 Liter-Fermentor der Firma Giovanola Frdres, Monthey, Schweiz, mit 60 Litern des gleichen Kulturmediums wird mit 10 Litern Vorkultur beimpft. Die Fermentation erfolgt bei 30-32 0C. DJ-. Rührgeschwindigkeit ist 500 Upm, die Belüftungsrate 0,12 LiVeT pro Liter Medium und Stunde. Die Fermentationsdauer beträgt 7-14 Tage. Es wird darauf geachtet, daß der pH-Wert nicht unter 7,0, Insbesondere nicht unter 6,2, fällt. Die gebildeten macrocyclischen Verbindungen der Formel I befinden eich teils im Kulturüberstand, teils in den Zellen. Sie können aus den Zellen 'nit Alkoholen oder Ketonen (z. B. Aceton), aus dem Kulturüberstand mit Ethylacetat oder Butylacetat extrahiert werden. Die Fermentationsbrühe wird dann z. B. fünfmal mit je 2 Litern Ethylacetat je 5 min. ausgeschüttelt. Diese vereinigten Extrakte werden zweimal mit Wasser gewaschen und im Vakuum eingeengt. Das zurückbleibende dunkle OeI kann nach der in der Figur 2 wiedergegebenen Methode aufgetrennt werden.
Die hier beschriebene Trennung wurde mit 65 g Rohextrakt aus insgesamt 400 Litern Fermentationsbrühe durchgeführt.
Vorteilhafter jedoch werden die gebildeten Verbindungen der Formel I nach Beendigung der Fermentation mit Adsorberharz aus dem Fermentationsvolumen entfernt. Hierzu gibt man 0,5 % v/v feinkörniges Harz (z. B. XAD-1180 oder XAD-16) in die Fermentorbrühe und rührt 4 Std. lang, wonach die Verbindungen der Formel I vollständig am Harz gebunden sind. Nach Abtrennung der Fermentorbrühe durch Absieben wird das Harz in eine Glassäule gespült, mit 3 Bettvolumen Wasser gewaschen und mit 4 Bettvolumen Methanol eluiert. Das Eluat wird
- 28a -
im Vakuum zur Trockne eingeengt. Ein solches Eluat oder ein solcher Rohextrakt kann mit geeigneten Dispersions- und/oder Streckmitteln zu gewerblich verwendbaren Pflanzenschutzmitteln formuliert werden, der Rohextrakt kann aber auch, wie im folgenden und in der beigefügten Figur 2 dargestellt, zur Isolierung der einzelnen Soraphene A bis et $ aufgetrennt werden.
- 29 -
Chromatographische Aufreinigung (siehe! Trennungsgang II zur Isolierung von Soraphenen)
Kieselgeltrennung; Säule: 200 mm 0; 200 mm Länge; Sorbens: Lichroprep Si 100; 25-40 um (Hersteller: Merck) Laufmittel: Gradient in Stufen; 1. Dichlormethan; 2.-9. Dichlormethan/Aceton 98/2, 96/4, 95/5, 90/10, 85/15, 80/20, 50/50, 25/75; 10.-11. Dichlormethan/Methanol 75/25, 50/50; Es werden IA Fraktionen genommen.
Die Fraktionen 2, 3, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 werden weiter aufgereinigt.
Gelchromatographie; Säule: 60 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: iephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol
Es werden 7 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 3 enthält Soraphen A (2,5 g).
Gelchromatographie; Säule: 30 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) L lufmittel: Methanol
Es werden 5 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 2 enthält Soraphen C (6,6 g).
Gelchromatographie; Säule: 30 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol
Es werden 6 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 2 (1 g) wird weiter aufgereingt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: .um 0; 34 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-20-60 15-25 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 72/28.
Es werden 9 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 7 enthält Soraphon V (1,1 g).
-30- ///ζ (ftf
Gelchromatographie; Säule: 30 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol
' Es werden 4 Fraktionen genommen. Die Fraktion 2 (1,1 g) wird weiter aufgereingt.
Gelchromatographie; Säule: 30 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LK3 GmbH) Laufmittel: Methanol
Gelchromatographie; Säule: 30 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharnr.acia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol
Gelchromatographie; Säule: 60 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol
GeJchromatographie; Säule: 60 mm 0; 100 cm Länge; Sorbens: Sephadex LH-20 (Hersteller: Pharmacia LKB GmbH) Laufmittel: Methanol
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 37 mm 0; 34 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-20-60 15-25 μη\ (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser Tb/25.
- 31 -
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 35 mm 0; 45 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-30-60 25-AO um (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 80/20.
Es werden 10 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 8 enthält Soraphen E (30 mg).
Die Fraktion 4 wird weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 37 mm 0; 34 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-20-60 15-25 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 75/25.
Es werden 10 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 6 (80 mg) wird weiter aufgereinigt.
Die Fraktion 8 (20 mg) wird weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 37 mm 0; 34 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-20-60 15-25 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 75/25.
Es werden 11 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 5 enthält Soraphen X (16 mg).
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 35 mm 0; 45 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-30-60 25-40 μπι (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30 lin. Gradient in 2 h nach Methanol. Es werden 8 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 5 enthält Soraphen U (150 mg).
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 35 mm 0; 45 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-30-60 25-40 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 75/25 lin. Gradient in 1 h nach 90/10. Es werden 9 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 8 enthält Soraphon M (0,93 g).
Die Fraktion 7 (250 mg) wird weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 37 mm 0; 34 cm Länge; Sorbens: HDSIL RP-18; 18-20-60 15-25 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30.
Es werden 13 Fraktionen genommen.
- 32 -
Die Fraktion 4 (105 mg) wird weiter aufgereinigt. Die Fraktion 6 enthält Soraphen R (20 mg). Die Fraktion 7 enthält Soraphen S (490 mg). ,Die Fraktion 8 enthält Soraphen T (80 mg). Die Fraktion 9 (80 mg) wirJ weiter aufgereinigt.
Reversed-Phase-Trennung; Säule: 37 mm 0; 34 cm Länge", Sorbens: HDSIL RP-18; 18-20-60 15-25 pm (Hersteller: Labomatic) Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30.
Es werden 14 Fraktionen genommen
Die Fraktion 7 (700 mg) wird weiter aufgereinigt. Die Fraktion 8 (570 mg) wird weiter aufgereinigt. Die Fraktion 9 enthält Soraphen 6 (120 mg).
Reversed-Phase-TrennungJ Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: RP-18 Nucleosil 100-7 de! 7 pm (Hersteller: Machorey Nagel) Laufmittel: Methanol/Wasser 67/33.
Es werden 6 Fraktionen genommen.
Die Fraktion 5 enthält Soraphen y (11 mg).
Kieselgel-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tort. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 1 % Es werden 3 Fraktionen genommen
Die Fraktion 2 enthält Soraphen ν (8 mg).
Kieselgel-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 1 % Es werden 2 Fraktionen genommen
Die Fraktion 2 enthält Soraphen B (8 mg).
Kieselgel-Trennung; Säule: 20,5 mm 0; 25 cm Länge; Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 5 % Es werden 7 Fraktionen genommen.
- 33 -
Die Fraktion 1 enthält Soraphen Y (64 mg). Die Fraktion 4 enthält Soraphtin ο (5 mg). Die Fraktion 6 enthält Soraphnn ζ (7 mg).
Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 10 % Es werden 5 Fraktionen genommen. Die Fraktion 2 enthält Soraphen σ (20 mg).
Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 5 % Es werden 9 Fraktionen genommen. Die Fraktion 4 enthält Soraphen ρ (45 mg).
Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 10 % Es werden 4 Fraktionen genommen. Die Fraktion 2 enthält Soraphen ζ (26 mg).
- 34 -
Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 um (Hersteller: Macherey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 5 % Es werden 5 Fraktionen genommen
Die Fraktion 4 enthält Soraphen κ (5,5 mg).
Sorbens: Si 100 Nucleosil 100-7; 7 pm (Hersteller: Mache i-ey Nagel) Laufmittel: tert. Butylmethylether/n-Hexan/+ Methanol 1/2/+ 5 % Es werden 4 Fraktionen genommen
Die Fraktion 4 (10 mg) wird weiter aufgereinigt.
Pliysikochemische Charakterisierung der weiterhin gewonnenen Soraphene R bis V
Soraphen V
C 2 βΗι, 2Ü8
3394; 2942; 2900; 2829; 1723; 1461; 1380; 1270; 1233; 1189; 1068;988; 898; 851.
^C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm)
10.3; 11.7; 12.6; 23.2; 26.0; 32.7; 35.3; 35.6; 36.2; 46.3; 55.8;
57.3; 68.9; 72.5; 72.9; 74.6; 76.3; 84.5; 99.5; 122.1; 126.2;
126.2; 128.1; 1Γ8.5; 128.5; 139.9; 141.2; 170.9.
J'PLC R, = 9,2 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min1, Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen X
C2 βHι. 2Ο9
IR (Film, ν in cm )
3404; 2941; 1716; 1598; 1461; 1380; 1272; 1233; 1189; 1156; 1100; 1069; 988.
13C-NMR-Verschiebungen (CDClj·, 6 in ppm)
10.3; ;i.7; 12.5; 23.1; 25.9; 29.4; 35.2; 35.6; 35.7; 46.2; 57.3; 68.9; 72.5; 74.5; 75.0; 76.1; 83.8; 99.5; 113.4; 115.2; 118.0; 124.9; 129.8; 137.4; 142.7; 156.2; 170.9.
HPLC R, = 4,4 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen U
C29Hi1I1O9
3386; 3361; 2977; 2939; 2892; 2823; 1698; 1461; 1380; 1268; 1185; 1152; 1096; 1064; 1023; 975; 900; 840.
- 36 -
^C-NMR-Verschiebungen ('JDCl3; 6 in ppm)
10.1; 11.A; 12.2; 31.8; 32.9; 35.2; 35.2; 38.6; 46.3; 56.0; 57.2;
57.9; 64.2; 68.7; 72.2; 73.3; 76.2; 80.0; 84.5; 99.3; 122.2; 126.1;
126.1; 127.9; 128.4; 128.4; 140.6; 141.4; 171.7.
HPLC R1 = 5,2 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 mn.
Soraphen R
C26HlioOe
IR (Film, ν in cm"1)
3404; 2937; 1731; 1459; 1430; 1384; 1355; 1330; 1270; 1212; 1110; 1083; 1033; 988.
13C-NMR-Verschieoungen (CDCl3; 6 in ppm) 10.7; 14.5; 22.7; 23.3; 24.8; 27.9; 30.9; 31.8; 35.5; 35.3; 43.4; 58.6; 68.9; 71.0; 72.9; 73.3; 74.6; 80.5; 97.6; 126.5; 126.5; 128.0; 128.6; 128.6; 141.1; 168.8.
HPLC R, = 5,1 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosi.'. 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen S
Cj 7H1, oOe
IR (Film, ν in cm" )
3431; 2941; 1720; 1604; 1459; 1426; 1380; 1264; 1187; 1150; 1104; 1062; 977.
-37-
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; ί in pom)10.5; 11.9; 12.7; 24.9; 26.2; 35.5; ?ό.2; 36.3; 37.9; 47.5; 57.6; 69.5; 73.5; 74.1: 75.8; 76.3; 77.9; 100.6; 125.1; 127.1; 127.1; 128.7; 129.4; 129.4; 138.8; 143.3; 173.8.
HPLC R1 = 5,9 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen T
C27Hu2Oe
3427; 2941; 1720; 1461; 1382; 1268; 1191; 1154; 1106; 1068; 994;971.
13C-NMR-VerSchiebungen (CDClj; 6 in ppm) 10.4; 11.7; 14.2; 22.7; 24.8; 25.3; 28.3; 30.6; 32.8; 34.6; 35.2; 45.8; 57.3; 69.1; 69.8; 73.0; 73.3; 76.0; 76.4; 99.6; 126.5; 126.5; 128.1; 128.5; 128.5; 140.6; 171.9.
HPLC R, = 6,5 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanoi/Wasser 7C/3O; Detektor: UV 210 nm.
C27H112Oe
3440; 3311; 2937; 1731; 1600; 1461; 1380; 1340; 1185; 1096; 988;850.
-38-
13C-NMR-Verschiebungen (CDCI3; & in ppm)
10.2; 12.0; 12.7; 23.2; 25.6; 29.6; 34.9; 36.0; 37.3; 45.3; 56.2;
57.6; 70.3; 72.1; 72.6; 74.3; 74.9; 84.2; 99.5; 124.9; 126.3;
126.3; 128.0; 128.6; 128.6; 131.6; 141.2; 171.2.
HPLC R, = 7,1 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 W8> Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen y (Gamma)
C2BH112O9
IR (Film, ν in cm )
3398; 2939; 1723; 1461; 1382; 1264; 1189; 1152; 1102; 1066; 975; 894.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; δ in ppm) 8.6; 10.3; 11.5; 23.6; 25.8; .'8.8; 33.9; 35.4; 36.3; 46.6; 54.7; 57.3; 58.1; 59.2; 68.8; 69.3; 73.5; 74.3; 76.2; 83.5; 99.7; 126.1; 126.1; 128.0; 128.6; 128.6; 141.4; 170.4.
HPLC R, = 8,4 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen ν (Nu)
IR (Film, ν in cm )
3402; 2971; 2935; 2827; 1733; 1459; 1367; 1181; 1095; 1050; 990; 860.
-39-
13C-NMR-VerSchiebungen (CDCl3; S in ppm)8.7; 10.3; 11.5; 26.3; 33.4; 35.2; AO.2; 40.8; 46.2; 57.4; 58.1; 67.8; 68.9; 71.5; 73.5; 76.3; 78.9; 82.6; 99.4; 125.9; 125.9; 128.3; 128.7; 128.7; 128.8; 129.5; 140.7; 170.3.
HPLC R, = 8,5 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen B (Beta)
IR (Film, ν in cm" )
3408; 2971; 2935; 2825; 1733; 1459; 1365; 1343; 1181; 1095; 1050; 990; 958; 842; 738.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCIj', 6 in ppm)
10.1; 12.1; 12.6; 23.4; 25.5; 30.4; 35.0; 35.9; 37.2; 45.3; 56.2;
56.3; 57.9; 70.3; 72.1; 72.7; 74.2; 83.1; 84.8; 99.4; 122.6; 126.3;
126.3; 128.0; 128.6; 128.6; 140.0; 141.3; 171.3.
HPLC R, β 16,8 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cj β, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: DV 210 nm.
Soraphen Y
C27Hgo09
IR (Film, ν in cn )
3436; 2937; 1721; 1459; 1376; 1268; 1199; 1114; 1048; 988; 961.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm) 10.8; 11.2; 13.8; 23.0; 23.5; 31.7; 33.4; 36.2; 40.6; 41.1; 51.1; 61.1; 70.»; 74.6; 76.4; 77.1; 78.7; 86.4; 99.9; 125.5; 125.5; 127.4; 123.4; 128.4; 142.5; 171.1; 212.4.
- 40 -
Ζ/Π ff if
HPLC R, = 6,1 min Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasier 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphon ο (Omicron) C2 9H11 IiO9
IR (Film, ν in cm"1) 3402; 3361; 2933; 2894; 1708; 1457; 1360; 1269; 1187; 1150; 1096; 1062; 975; 898; 838; 765.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCI3; 6 in ppm)
10.4; 11.6; 12.6; 31.7; 33.4; 35.3; 35.7; 38.7; 46.3; 56.3; 57.4;
58.3; 65.7; 69.0; 72.3; 74.2; 76.2; 80.0; 84.8; 99.5; 122.9; 126.3;
126.3; 128.2; 128.6; 128.6; 140.1; 140.7; 170.8.
HPLC R, = 4,8 min Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 C18, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen ζ (Xi) C2 7H11 οΟβ
IR (Film, ν in cm" ) 3402; 2969; 2933; 1731; 1459; 1367; 1179; 1095; 1050; 990.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCI3; 6 in ppm) 10.4; 11.7; 12.5; 20.1; 26.2; 31.8; 35.2; 35.7; 36.2; 46.4; 57.4; 68.9; 72.3; 73.5; 75.0; 76.1; 76.3; 99.6; 126.2; 126.2; 127.0; 128.1; 128.6; 128.6; 138.3; 141.2; 170.7.
-αϊ-
HPLC R, = 4,1 min Säule: 4 χ 250 mm Nucleosix 100-7 Cisi Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Hethanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen σ (Sigma) C2 9Hi, 1,09
IR (Film, ν in cm ) 3398; 3363; 3301; 2971; 2933; 2394; 1702; 1453; 1378; 1262; 1167; 1150; 1100; 979; 838.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl1; <S in ppm)
10.3; 11.5; 12.4; 31.6; 34.2; 35.0; 35.5; 38.9; 46.2; 56.1; 57.5;
58.5; 64.3; 69.1; 73.1; 76.1; 77.2; 79.8; 85.2; 99.7; 121.8; 126.0;
126.0; 128.0; 128.5; 128.5; 141.9; 142.0; 171.4.
HPLC R, = 6,2 min Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 C18, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min", Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen ρ (Rho)
IR (Film, ν in cm"1) 3393; 3363; 3301; 2971; 2933; 2894; 1700; 1453; 1378; 1262; 1187; 1150; 1100; 1064; 979; 898; 838; 765.
13C-NMR-VerSchiebungen (CDCl3; 6 in ppm) 8.7; 10.3; 11.4; 23.1; 25.5; 26.4; 32.3; 35.0; 36.1; 40.5; 46.6; 57.2; 68.5; 68.8; 71.8; 73.1; 73.7; 74.3; 76.4; 99.7; 126.3; 127.9; 128.5; 128.5; 141.4; 171.4.
-«- Jt t? 6 V If
HPLC R, = 4, 7 minSäule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmitt:el: Methanol/Wasser 70/30; Det-aktor: UV 210 nm.
C20IK2Ö9
3398; 2937; 1718; 1457; 1378; 1332; 1272; 1203; 1102; 978.
13C-NMR-VerSchiebungen (CDCl3; 6 in ppm)
11.8; 21.9; 25.9; 25.9; 28.7; 36.3; 39.9; 43.0; 45.7; 56.7; 57.4;
58.6; 70.6; 75.5; 76.2; 78.2; 78.2; 84.3; 98.9; 125.9; 125.9;
128.0; 128.4; 128.7; 128.7; 133.1; 141.2; 171.6.
HPLC R, = 3,5 minSäule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie· Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Di.'tektor: UV 210 nm.
Soraphe'T μ (Mü) C28Hi111O?
1 IR (Film, ν in cm )3423; 2939; 1725; 1459; 1380; 1264; 1191; 1154; 1102; 1052; 992; 971.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm)10.4; 11.7; 14.1; 21.3; 27.7; 28.2; 30.9; 32.9; 34.1; 35.2; 45.6; 57.4; (iO.7; 69.1; 70.0; 70.4; 72.1; 76.2; 76.3; 85.4; 99.6; 126.6; 126.6; J28.2; 128.6; 128.6; 140.2; 172.0.
HPLC R, = 4,7 minSäule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 1!1O nm.
02βΗι, 2Ο9
3411; 2935; 1718; 1459; 1382; 1266; 1189; 1152; 1104; 1066; 981.
l3C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; 6 in ppm)
10.2; 11.4; 12.3; 31.6; 32.9; 35.1; 35.4; 38.1; 46.2; 57.2; 57.7;
64.0; 68.8; 72.2; 73.7; 74.7; 76.2; 81.2; 99.3; 124.8; 126.1;
126.1; 127.9; 128.4; 128.4; 137.8; 141.1; 171.4.
HPLC R, = 4,6 minSäule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
C2 7Hi1OOe
3411; 2935; 1731; 1461; 1382; 1347; 1270; 1189; 1104; 1048; 990.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl3; δ in ppm)10.1; 12.1; 12.8; 23.4; 25.4; 33.5; 35.0; 36.1; 37.2; 45.4; 56.1; 70 3; 72.0; 72.7; 74.2; 74.2; 75.6; 99.4; 124.1; 126.2; 126.2; 127.9; 128.5; 128.5; 138.6; 141.3; 171.5.
HPLC R, = 4,7 minSäule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
-44-
C2 7Hi4 οΟβ
IR (Film, ν in cm"1)
3396; 3363; 3299; 2969; 2933; 2694; 1702; 1451; 1378; 1262; 1167; 1150; 1100; 979.
13C-NMR-Verschiebungen (CDCl1; δ in ppm)
10.3; 12.3; 14.6; 23.4; 25.0; 32.2; 35.6; 36.0; 36.8; 50.4; 55.9; 70.2; 71.2; 73.9; 75.0; 75.5; 98.3; 125.2; 126.2; 126.2; 128.1; 128.6; 128.6; 137.8; 141.0; 171.5.
HPLC R, = 4,9 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Ci8, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Soraphen Z
C28IU2O9
IR (Film, ν in cm )
3405; 2937; 1718; 1459; 1380; 1266; 1189; 1152; 1104; 1069; 987; 902; 850; 813; 738.
13C-NMR-Verschiebungen (CDClj; 6 in ppm)
10.5; 11.7; 12.6; 31.8; 33.5; 35.3; 35.7; 41.1; 46.3; 56.0; 57.3;
66.0; 69.0; 70.5; 72.5; 74.3; 76.2; 84.3; 99.5; 122.4; 126.2;
126.2; 128.2; 128.6; 128.6; 140.4; 140.9; 170.9.
HPLC R, = 7,7 min
Säule: 4 χ 250 mm Nucleosil 100-7 Cie, Macherey Nagel; Fluss: 1,5 ml/min; Laufmittel: Methanol/Wasser 70/30; Detektor: UV 210 nm.
Aufgrund der Röntgenstrukturanalyse des Soraphens A und der vorstehend ermittelten Daten werden für die Soraphene C bis Q die folgenden räumlichen Strukturen IC1 bis I^1 angenommen:
- 45 -
OH
2 1
2 1
20
/V \/\/Γ\/Όη
ι π ° ^ 0Η i
I Il I OCH3
(IC1)
CH3
OH
• I ·
OCH3 I
I t ?'N
V Yk/' «
OCH3
(ID1)
QCH3 OH
OCH3 I
CH3
0 I
\ /C11'
Y Y^ / o»
CH3
(IE1)
2 1
QCH3
• ·
OCH3 I j0
2 }
0 t
I Il
OCH1
(IF1)
2 1
OCH3
/\/\/S c"3
I OH OH I
i °
/ \ ,CH3
I OCH3 J
0 ?
CH3
(IJ')
OH
I OCH3 I
• 0 0
I if ι
2
(IM1)
OH
I OCH3 OCH3 I
2
; 0H| ί OCH3
CH3
(IN1)
OCH3 /\ /\ /\
I Ach3 I
! ι ! (iqI)
OCH3
0 0
Für die restlichen Verbindungen IR1, IS1, IT1, IU', IV1, IX1, IY1, IZ1, IB1, Ir1, Ιδ', Ιζ', Ιη', Ir1, Ιμ1, Ιζ1 und Ip1 werden ähnliche Konfigurationen angenommen.
OH /\
i r
Ί lloi
CHi
16I ff ° i
j Π ι I
I Il CH3 OCH3
Für dit) Soraphene o, ti und α ist die Konfiguration nicht gesichert. Ueberdies is\. ersichtlich , dass einzelne Soraphene untereinander epimer sind. Soraphen 6 ist epimer zu Soraphen C; die Sorphene κ und ζ sind untereinander und zu Soraphen S epimer, desgleichen die Sor lphone U, ο und σ. Verbindlich sind in jedem Falle die für eino bestimmte Verbindung der Formel I emittelten Messwerte, die, vie der Fachmann weiss, zuweilen keine strenge Zuordnung zu einer bestimmten Konfiguration erlauben.
- 48 - zn
Wie erwähnt, umfaßt die Erfindung sämtliche stereoisomeren Formen der einzelnen aufgeführten Verbindungen dor Formel I sowie ihre Herstellung und ihre Verwendung zur Bekämpfung bzw. Verhütung von Pflanzenkrankheiten« Des weiteren schließt die Erfindung aber insbesondere auch die Verbindungen IC bis Itf ' aufgrund ihrer physikochemischen Daten ein, für die die oben wiedergegebenen Konfigurationen angenommen werden.
Es ist zu beachten, daß die macrocyclischen Soraphene der Formel I normalerweise in der angegebenen Hemiacetalform vorliegen, diese Form jedoch eine reversible Ringöffnung nachdem Schema
8 8
HO-?!^ /CH2"B0 6 *
Λ 4 5'
0R„
erfahren kann. Oe nach Herstellungs- bzw. nach Aufarbeitungsmethodik fallen, abhängig vom pH-Wert und vom Lösungsmittel, die Soraphenein der einen oder anderen Form oder als Gemisch beider Formen an. Charakteristisch für die Ringöffnung ist die Verschiebung des C-NMR-Signals in der 3-Position und die der H-NMR-Signale in bestimmten anderen Positionen. Beim Soraphen A werden beispielsweise folgende Veränderungen beobachtet: 13C-NMR(CDCl3, 0* in ppm) 99,5—» 203,1(3-C). 1H-NMR(CDCl3, O* in ppm): 3,14 —»3.72(2-H); 3,18—>4,5(4-H); 3,83—>3,16(7-H); 5,86—>5,7( 17-H). Ähnliche Verschiebungen werden auch bei den Soraphenen B bis ρ beobachtet. Die Formel I vorliegender Erfindung umfaßt grundsätzlich sowohl die bei niedrigen pH-Worten bevorzugte 3-Hemiacetalform wie auch die geöffnete 3-Keto-7-hydroxyform,
| a) | b) | c) |
| 25 % | 40 % | 50 % |
| 5 % | 8 % | 6 % |
| 5 % |
- 49 -
2. Formulierungsbeispiele für einen oder mehrere der Wirkstoffe der Formel I (% = Gewichtsprozent)
Wirkstoff bedeutet im folgenden eines der Soraphene in reiner Form oder mehrere der Soraphene C bis (f oder ein aus der mikrobiologischen Herstellung gewonnenes F Vj at in flüssiger Form oder aj.s getrockneter Rückstand, worin di ι unaufgetrennte Ge- ->n-tmenge der Soraphene enthalten ist.
2.1 Emul,ions-Konzentrate Wirkstoff
Ca-Dodecylbenzolsulfonat
Ricinusöl-polyethylenglykolether (36 Mol Ethylenoxid)
Tributylphenol-polyethylenglykol- - 12 % 4 % ether (30 Mol Ethylenoxid)
Cyclohexanon - 15 % 20 %
Xylolgemisch 65 % 25 % 20 %
Aus solchen Konzentraten können durch Verdünnen mit Wasser Emulsionen jeder gewünschten Konzentration hergestellt werden.
2.2 Lösungen Wirkstoff
Ethylenglykol-monomethyl-ether Polyethylenglykol MG 400 N-Methyl-2-pyrrolidon Epoxydiertes Kol.osnussöl Benzin (Siedegrenzen 160-1900C) (MG = Molekulargewicht)
Die Lösungen sind zur Anwendung in Form kleinster Tropfen geeignet.
| a) | b) | c) | d) |
| 80 % | 10 % | 5 % | 95 % |
| 20 % | - | - | - |
| - | 70 % | - | |
| - | 20 % | - | |
| - | - | 1 % | 5 % |
| 94 % | _ |
| 2.3 Granulate | a) | b) |
| Wirkstoff | 5 % | 10 % |
| Kaolin | 94 % | - |
| Hochdisperse Kieselsäure | 1 % | - |
| Attapulgit | _ | 90 % |
- 50 -
Der Wirkstoff wird in Methylenchlorid gelöst, auf den Träger aufgesprüht und das Lösungsmittel anschliessend im Vakuum abgedampft.
| 2.4 Stäubemittel | a) | b) |
| Wirkstoff | 2 % | 5 % |
| Hochdisperse Kieselsäure | 1 % | 5% |
| Talkum | 97 % | - |
| Kaolin | _ | 90 % |
Durch inniges Vermischen der Trägerstoffe mit dem Wirkstoff erhält man gebrauchsfertige Stäubemittel. Diese lassen sich durch weiteren Zusatz der drei Trägerstoffe auf anwendungsfertige Stäube mit 0,001 % Wirkstoff vermählen.
| 2.5 Spritzpulver | a) | b) | C |
| Wirkstoff | 25 % | 50 % | 75 |
| Na-Ligninsulfonat | 5 % | 5 % | - |
| Na-Laurylsulfat | 3 % | - | 5 |
| Na-Diisobutylnaphthaiinsulfonat | - | 6 % | 10 |
| Octylphenolpolyethylenglykolether (7-8 Mol Ethylenoxid) | - | 2 % | — |
| Hochdisperse Kieselsäure | 5 % | 10 % | 10 |
| Kaolin | 62 % | 27 % |
Der Wirkstoff wird mit den Zusatzstoffen gut vermischt und in einer geeigneten Mühle gut vermählen. Man erhält Spritzpulver, die sich mit Wasser zu Suspensionen jeder gewünschten Konzentration verdünnen lassen.
2.6 Umhüllungs-Granulat Wirkstoff 3 %
Polyethylenglykol (MG 200) 3 % Kaolin 94 %
(MG = Molekulargewicht)
- 51 -
Der fein gemahlene Wirkstoff wird in einem Mischer auf das mit PoIyethylenglykol angefeuchtete Kaolin gleichmässig aufgetragen. Auf diese Weise erhält man staubfreie Umhüllungs-Granulate.
2.7 Suspensions-Konzentrat
Wirkstoff 40 %
Ethylenglykol 10 %
Nonylphenolpolyethylenglykolether 6 % (15 Mol Ethylenoxid)
N-Ligninsulfonat 10 %
Carboxymethylcellulose 1 %
37%ige wässrige Formaldehyd-Lösung 0,2 % Silikonöl in Form einer 75%igen
wässrigen Emulsion 0,8 %
Wasser 32 %
Der fein gemahlene Wirkstoff wird mit den Zusatzstoffen innig vermischt. Man erhält so ein Suspensions-Konzentrat, aus welchem durch Verdünnen mit Wasser Suspensionen jeder gewünschten Konzentration hergestellt werden können.
2.8 Bioinasse-Konzentrat
Die aus der Produktionskultur anfallende Biomasse wird getrocknet, vermählen und im Gewichtsverhältnis 80:20 mit Ethylenglykol-monomethylether gemischt. Ein solches Konzentrat lässt sich beliebig mit Wasser zu Sprühsuspensionen verdünnen.
3. Biologische Beispiele an Pflanzen (Im folgenden bedeutet "Wirkstoff" einen der Soraphene C bis α gemäss vorliegender Erfindung)
a) Residual-protektive Wirkung Weizenpflanzen werden 6 Tage nach der Aussaat mit einer aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellten Spritzbrühe (0,02 % Aktivsubstanz) besprüht. Nach 24 Stunden werden die behandelten Pflanzen mit einer Uredosporensuspenion des Pilzes infiziert. Nach einer Inkubation während 48 Stunden bei 95-100 % relativer Luftfeuchtigkeit und ca. 200C werden
- 52 -
die infizierten Pflanzen in einem Gewächshaus bei ca. 22°C aufgestellt. Die Beurteilung der Rostpustelnentwicklung erfolgt 12 Tage nach der Infektion.
b) Systemische Wirkung
Zu Weizenpflanzen wird 5 Tage nach der Aussaat eine aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellte Spritzbrühe gegossen (0,002 % Aktivsubstanz bezogen auf das Bodenvolumen). Nach 48 Stunden werden die behandelten Pflanzen mit einer Uredosporensuspension des Pilzes infiziert. Nach einer Inkubation während 48 Stunden bei 95-100 % relativer Luftfeuchtigkeit und ca. 2O0C werden die infizierten Pflanzen in eircm Gewächshaus bei ca. 22°C aufgestellt. Die Beurteilung der Rostpustelnentwicklung erfolgt 12 Tage nach der Infektion.
Der Pilzbefall wurde in beiden Versuchen vollständig durch den Wirkstoff gehemmt.
Unbehandelte aber infizierte Kontrollpflanzen wiesen dagegen einen Puccinia-Befall von 100 % auf.
a) Residual-protektive Wirkung
Tomatenpflanzen wurden nach 3-wöchiger Anzucht mit einer aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellten Spritzbrühe (0,02 % Aktivsubstanz) besprüht. Nach 24 Stunden wurden die behandelten Pflanzen mit einer Sporangiensuspension des Pilzes infiziurt. Die Beurteilung des Pilzbefalls erfolgte nach einer Inkubation der infizierten Pflanzen wählend 5 Tagen bei 90-100 % relativer Luftfeuchtigkeit und 2O0C.
b) Systemische Wirkung
Zu Tomatenpflanzen wurde nach 3-wöchiger Anzucht eine aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellte Spritzbrühe gegossen (0,006 % Aktivsubstanz bezogen auf das Erdvolumen). Es wurde dabei darauf geachtet, dass die Spritzbrühe nicht mit den oberirdischen Pflanzenteilen in Berührung kam. Nach 48 Stunden wurden die bei andelten Pflanzen mit einer Sporangien-
-53-
suspension des Pilzes infiziert. Die Beurteilung des Pilzbefalls erfolgte nach einer Inkubation der infizierten Pflanzen während 5 Tagen bei 90-100 % relativer Luftfeuchtigkeit und 200C.
In beiden Versuchen wurde bei der Auswertung kein Pilzbefall beobachtet, während die infizierten Kontrollpflanzen vollständig befallen waren.
Beispiel 3.3: Wirkung gegen Plasmopara viticola auf Raben Residual-protektive Wirkung
Im 4-5 Blattstadium werden Rebensämlinge mit einer aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellten Spritzbrühe (0,006 % Aktivsubstanz) besprüht. Nach 24 Stunden werden die behandelten Pflanzen mit einer Sporangiensuspension des Pilzes infiziert. Nach einer Inkubation während 6 Tagen bei 95-100 % relativer Luftfeuchtigl !t und 200C wird der Pilr.befall beurteilt.
Im Gegensatz zu den unbehandelten, aber infizierten Kontroilpflanzen mit 100 % Pilzbefall waren die mit dem Wirkstoff I behandelten Pflanzen befallsfrei.
10-15 cm hohe Erdnusspflanzen werden mit einer aus Spritzpulver der Wirksubstanz hergestellten Spritzbrühe (0,006 % Aktivsubstanz) besprüht und 48 Stunden später mit einer Konidiensuspension des Pilzes infiziert. Die infizierten Pflanzen werden während 72 Stunden bei ca. 210C und hoher Luftfeuchtigkeit inkubiert und anschliessend bis zum Auftreten der typischen Blattflecken in einem Gewächshaus aufgestellt. Die Beurteilung der fungiziden Wirkung erfolgt 12 Tage nach der Infektion basierend auf Anzahl und Grosse der auftretenden Flecken.
Die mit dem Wirkstoff I behandelten Pflanzen waren ohne Befall. Die mit Seraphen A behandelten Pflanzen zeigten auch bei Anwendung einer Spritzkonzentration von 0,002 % am Schluss der Auswertung keinen Befall. Unbehandelte aber infizierte Kontrollpflanzen wiesen dagegen einen Cercospora-Befall von 100 % auf.
Ztf (ρ
Beispiel 3.5: Wirkung gegen Venturia inaequalis auf Apfeltrieben Residual-protekMve Wirkung
Apfelstecklinge mit 10-20 cm langen Frischtrieben werden mit einer aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellten Spritzbrühe (0,02 % Aktivsubstanz) besprüht. Nach 24 Stunden werden die behandelten Pflanzen mit einer Konidiensuspension des Pilzes infiziert. Die Pflanzen werden dann während 5 Tagen bei 90-100 % relativer Luftfeuchtigkeit inkubiert und während 10 weiteren Tagen in einem Gewächshaus bei 2O-24°C aufgestellt. Der Schorfbefall wird 15 Tage nach der Infektion beurteilt.
Die mit dem Wirkstoff behandelten Stecklinge waren befallsfrei, Kontrollpflanzen dagegen vollständig befallen.
Beispiel 3.6: Wirkung gegen Botrytis cinerea an Apfelfrüchten Residual-protektive Wirkung
Künstlich verletzte Aepfel werden behandelt, indem eine aus Spritzpulver der Wirksubstanz hergestellte Spritzbrühe (0,02 % Aktivsubstanz) auf die Verletzungsstellen aufgetropft wird. Die behandelten Früchte werden anschliessend mit einer Sporensuspension des Pilzes inokuliert und während einer Woche bei hoher Luftfeuchtigkeit und ca. 2O0C inkubiert. Bei der Auswertung werden die angefaulten Verletzungsstellen gezählt und daraus die fungizide Wirkung der Testsubstanz abgeleitet.
Der Wirkstoff hemmte den Pilzwuchs vollständig. Unbehandelte aber infizierte Kontrollpflanzen wiesen dagegen 100 % Botrytis-Befall ,auf.
a) Residual-protektive Wirkung
Ca. 8 cm hohe Gerstenpflanzen werden mit einer aus Spritzpulver des Wirkstoffer, hergestellten Spritzbrühe (0,006 % Aktivsubstanz) besprüht.
Nach 3-4 Stunden werden die behandelten Pflanzen mit Konidien des Pilzes bestäubt. Die infizierten Gerstenpflanzen werden in einem Gewächshaus bei ca. 22°C aufgestellt und der Pilzbefall nach 10 Tagen beurteilt.
- 55 -
b) Systemische Wirkung
Zu ca. 8 cm hohen Gerstenpflanzen wird eine aus Spritzpulver des Wirkstoffes hergestellte Spritzbrühe gegossen (0,002 % Aktivsubstanz bezogen auf das Erdvolumen). Es wurde dabei darauf geachtet, dass die Spritzbrühe nicht mit den oberirdischen Pflanzenteilen in Berührung kam. Nach 48 Stunden werden die behandelten Pflanzen mit Konidien des Pilzes bestäubt. Die infizierten Gerstenpflanzen werden in einem Gewächshaus bei ca. 22°C aufgestellt und der Pilzbefall nach 10 Tagen beurteilt.
Die Pflanzen waren in beiden Versuchen befallsfrei, die Kontrollpflanzen vollständig befallen.
pf lanze'.i)
12 Tage alte Reispflanzen werden mit einer aus einer Formulierung des Wirkstoffes hergestellten Spritzbrühe (0,02 % Aktivsubstanz), ohne oberirdische Pflanzenteile zu kontaminieren, angegossen. Zur Infizierung der behandelten Pflanzen wird eine Suspension von Myzel und Sklerotien von R. solani auf die Bodenoberfläche gegeben. Nach 6-tägigei Inkubation bei 27°C (Tag), bzw. 230C (Nacht) und 100 % rel. Luftfeuchtigkeit (Feuchtkasten) in der Klimakammer wird der Pilzbefall auf Blattscheide, Blactern und Stengel beurteilt.
Nach Behandlung mit deni Wirkstoff trat kein Befall auf, während die infizierten Kontrollpflanzen vollen Rhizoctonia-Befall zeigten.
Claims (13)
- - 56 -Patentansprüche1.'Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der Formel IV I"riii ; ;i.n s;*s OR3 y j\ . !w f T !,/V V1Vk/NOH19worin der macrocyclische Ring entweder gesättigt oder wahlweise in der 8,9-Stellung oder in der 9,ΙΟ-Stellung oder in der 14,15-Stellung eine Doppelbindung gemäss nachfolgender Substituentenkcmbination enthält und die Substituenten Ri bis R5, A, B, X und Y in folgenden kombinierten Bedeutungen vorliegen:- 57 -unter Einschluss ihrer Stereoisomeren, gekennzeichnet durch aerobeZüchtung wahlweise eines StammesSorangium cellulosum "So ce 26" (NCIB 12411),Sorangium cellulosum "So ce 139" (DSM 5397),Sorangium cellulosum "So ce 170" (DSM 4795),Sorangium cellulosum "So ce 191" (DSM 4796),Sorangium cellulosum "So ce 192" (DSM 4797),Sorangium cellulosum "So ce 231" (DSM 5393) oderSorangium cellulosum "So ce 242" (DSM 5414)- 58 -oder einer von diesen ableitbaren Kultur in einem geeigneten Nährmedium, und, sofern gewünscht, nachfolgende Abtrennung der erhaltenen Verbindungen der Formel I, mit der Messgabe, dass der Stamm "So ce 26" (NCIB 12411) nicht für die Gewinnung der Verbindungen IA und ID eingesetzt wird.
- 2. Verfahren gemäss Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass, man einen der genannten sieben Stämme von Sorangium cellulosum in einem Kulturmedium enthaltend mindestens je eine assimilationsfähige C-Quelle und N-Quelle sowie entsprechende anorganische Salze, bei 1O-AO°C in Anwesenheit oder Abwesenheit eines Adsorberharzes kultiviert, dann die Kulturbrühe bzw. das abfiltrierte Adsorberharz mit einer geeigneten Lösungsmittelphase extrahiert, die erhaltene Lösung einengt und den verbleibenden Rückstand, sofern gewünscht, durch Chromatographie und/oder Umkristallisation reinigt.
- 3. Verfahren gemäss Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Fermentation bei 1O-35°C mit einem der Stämme"So ce 170" (DSM 4795)
"So ce 191" (DSM 4796)
"So ce 192" (DSM 4797)
durchgeführt wird.A. Die nach dem Verfahren gemäss Anspruch 1 erhaltenen Verfahrensprodukte . - 5. Macrocyclische Verbindungen der Formel I gemäß Anspruch und ihre Stereoisomeren in reiner Form, mit Ausnahme der Verbindungen IA und 13.
- 6. Die Verbindung IY und die Verbindung Ip (=Rho) gemäß Anspruch .1. in reiner Form.
- 7. Mittel zur Bekämpfung bzw. Verhütung von Pflanzenkrankheiten, dadurch gekennzeichnet, daß es als Wirkstoff ein Verfahrensprodukt der Formel I des Verfahrens gemäß Anspruch 1 mit Ausnahme der Verbindungen IA und 13 neben einem geeigneten Trägermaterial und gegebenenfalls sonstigen Verteilungsmitteln enthält.ZtU 99
- 8. Nittal nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß der Wirkstoff aus den Kulturmedien, dia die Verfahransprodukte der Formel I enthalten, besteht.9. Verwendung dar erfindungsganiäß hergestellten Verfarir?.-^- produkte, dadurch gekennzeichnet, daß sie zur Bekämpfung bzw. Verhütung von Pflanzenkrankheiten eingesetzt vrarden, tiLi Ausnahme der Verbindungen IA und 13.
- 10.. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß nacrocyclische Verbindungen der Formel I und ihre Stereoisomeren in reiner Form, -ait Ausnahme der Verbindungon IA und IB vorliegen.
- 11. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß dip Verbindungen IY und IQ (=aho) in reiner Fora vorliegen.
- 12. Mikroorganismus, der befähigt ist, eine Verbindung der Formel I gemäss Anspruch 1 herzustellen, mit Ausnahme des Mikroorganismus Sorangium (Polyangium) cellulosum "So ce ?.6" (NCI3 12Ml) oder einer Mutante oder einer Rekombinante von diesem letzteren.
- 13. Eine biologisch reine Kultur, ausgewählt aus Sorangiun cellulosum "So ce 139" (DSM 5397),Soranqium cellulosum "So ce 170" (DSM &795),Sorangium cellulosum "So ce 191" (DSM 4796) ,Sorangium cellulosum "So ce 192" (DSM 4797),Sorangium cellulosum "So ce 231" (DSM 5393)und Sorangium cellulosum "So ce 242" (DSM 4797),die befähig,, ist, mindestens eine Verbindung der Formel I gemäss Anspruch 1 herzustellen.
- 14. Eine biologisch ableitbare Kultur eines der Mikroorganismen gemäss Anspruch 13, die zur Produktion einer Verbindung der Formel I befähigt ist.
- 15. Eine biologisch ableitbare Kultur gemäss Anspruch 13, die zur Produktion von mindestens zvoi Verbindungen dar Formel I, unter Einschluss der Verbindung A, befähigt ist.
Applications Claiming Priority (1)
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|---|---|---|---|
| DD33248689A DD287644A5 (de) | 1988-09-09 | 1989-09-08 | Mikrobiologisches verfahren zur herstellung agrarchemisch verwendbarer wirkstoffe |
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| Country | Link |
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- 1989-09-08 ZA ZA896874A patent/ZA896874B/xx unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ZA896874B (en) | 1992-05-27 |
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