DE1926072C - Verfahren zur biochemischen Herstel lung von cyclischem Adenosin-3,5-monophosphat - Google Patents
Verfahren zur biochemischen Herstel lung von cyclischem Adenosin-3,5-monophosphatInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur biochemischen
Herstellung von cyclischem Adenosin-3',5'-monophosphat, nachstehend kurzer mit 3',5'-cyclischer
Adenykäure oder A-3',5'-MP bezeichnet.
A-3',5'-MP ist bekannt Tür seine Teilnahme an
verschiedenen chemischen Reaktionen in lebenden Zellen und für seine aktive Rolle bei der Bildung verschiedener
Hormone. Deshalb wird es als biochemisches Reagenz geschätzt. Die Herstellung dieser
Säure auf chemischem Wege verläuft über viele komplizierte Synthesestufen und konnte bisher nicht
durch ein einfacheres Verfahren abgelöst werden, überraschenderweise wurde erfindungsgemäß festgestellt,
daß die Mikroorganismen Corynebacterium murisepticum ATTC 21 374, Arthrobacter ATCC
21 375 und Microbacterium ATCC 21 376 bei ihrer Züchtung cyclisches A-3',5'-MP erzeugen können.
Gegenstand der Erfindung ist somit ein Verfahren zur biochemischen Herstellung von cyclischem Adenosin-3',5'-monophosphat,
das dadurch gekennzeichnet ist, daß man unter Einhaltung üblicher Züchtungsbedingungen Corynebact-irium murisepticum ATCC
21 374, Arthrobacter ATCC 21 375 oder Microbacterium ATCC 21 376 in Gegenwart von Adenosin,
Adenin, Inosin, Hypoxanthin, S-Amino^imidazolcarboxamid
- ribosid, 5 - Amino - 4 - imidazolcarboxamid, Succinyladenosin oder Succinyladenin im Nährmedium
züchtet.
Das Nährmedium weist vorzugsweise einen Gehalt von 0,1 bis 3,0 Gewichts-/ Volumprozent an den vorgenannten
Verbindungen Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin, 5 - Amino - 4 - imidazolcarboxamidribosid,
5-Amino-4-imidazolcarboxamid, Succinyladenosin oder Succinyladenin auf.
Aus dem Folgenden gehen die mykologischen Eigenschaften der obengenannten Stämme hervor:
I. Morphologische Eigenschaften: (Züchtung in
Nähragar und Nährbrühe bei 37 bzw. 3O0C)
Nähragar und Nährbrühe bei 37 bzw. 3O0C)
Microbacterium. ATCC 21 376
Form und Anordnung:
keulenförmige oder geschwungene Zellen wurden im Gesichtsfeld des Mikroskops beobachtet; gelegentlich wurden eckige und palisadenähnliche Anordnungen beobachtet, die durch Zerreißteilung entstanden.
Zellengröße (Alter: 16 Stunden, 30 C):
Form und Anordnung:
keulenförmige oder geschwungene Zellen wurden im Gesichtsfeld des Mikroskops beobachtet; gelegentlich wurden eckige und palisadenähnliche Anordnungen beobachtet, die durch Zerreißteilung entstanden.
Zellengröße (Alter: 16 Stunden, 30 C):
0,4 bis 0,7 · 1,5 bis 3 Mikron
Gram-Färbung: +
Sporenfärbung: (Sporenbildung)
Gram-Färbung: +
Sporenfärbung: (Sporenbildung)
Geißeln:
Beweglichkeit: -
Beweglichkeit: -
Corynebacterium murisepticum, ATCC 21 374
Ruten, zuerst längliche Zellen, verzweigte Zellen
und V-förmige Zeilen wurden beobachtet; nach 2 oder 3 Tagen zeigten die Kulturen kokkoide
Formen.
Zellengröße (Alter: 16 Stunden):
0,5 bis 0,8· 1,5 bis 4 Mikron
Gram-Färbung; +
Sporenfdrbung: (Sporenbildung)
Geißeln: -
Beweglichkeit: -Säurefestigkeit: -
40 Arthrobacter, ATCC 21
Form und Anordnung:
Ruten, zuerst längliche Zellen, verzweigte Zellen, V-förmige Zellen wurden beobachtet. Nach 1>
oder 4 Tagen zeigten die Kulturen kokkotde Formen. Zellengröße (Alter: 16 Stunden):
0,5 bis 0,8 · 2 bis 5 Mikron Gram-Färbung: verschieden Sporenfärbung: (Sporenbildung)
Geißeln:
Beweglichkeit: — Säurefestigkeit: —
II. Züchtungseigenschaften 1. Schrägge&telltes Agar-Nährmedium (schlag-
| gestelltes | Bouillon-Agar, 30cC. 48 | ATCC 21374 |
Stunden) |
| ATcr 21 37b |
mäßig faden förmig glänzend und feucht Milchweiß butterartig |
ATCC 21 375 |
|
| Wachstum.. Form Glanz Farbe Konsistenz |
mäßig stachelig glänzend und feucht Gelb butterartig |
mäßig fadenförmig glänzend und feucht Milchweiß butterartig |
2. Agar-Kolonien (Bouillon-Agar, 3O0C, 48 Stunden)
| ATCC 21 376 |
ATCC 21 374 |
ATCC 21375 |
|
| Form | rund | rund | rund |
| Oberfläche R.and |
glatt ganz konvex undurch sichtig |
glatt ganz kissen- förmig undurch sichtig |
glatt ganz kissen- förmig undurch sichtig |
| Oberflächenprofil Optische Eigen schaften |
3. Nährbrühe: (Bouillon-Brühe, 300C, 7 Tage)
Oberflächenwachstum ..
Trübung ....
Trübung ....
Wachstumsmenge
Sediment
ATCC 21 376
ringförmig mäßig trüb
mäßig spärlich, klebrig
ATCC
21
ringförmig leicht trüb
mäßig klebrig
ATCC
21
ringförmig leicht trnb
mäßig klebrig
4. Schräggestellter Kartoflel-Agar (300C, 3 Tage)
Wachstum
Farbe
ATCC 21376
mäßig OeIb
ATCC 21374
mäßig Milchweiß
ATCC 21375
kein Wachstum
5. Optimale Wachstumstemperatur
6. Thermische Widerstandsfähigkeit bei Erwärmen in 10%iger Magermilch, 15 Minuten bei 72°C und
Minuten bei 7O0C
| ATCC 21 376 | ATCC 21 374 | ATCC 21 375 |
| 37° C | 37GC | 370C |
ATCC 21 376
ATCC 21 374
ATCC 21 375
III. Physiologische Eigenschaften:
ATCC 21 376
ATCC 21 374
ATCC 21 375
1. Katalase-Reaktion (3O0C, schräg-
gestellte Bouillon)
2. Reduktion von Nitrat (Züchtung
bei30°C)
3. Indol-Bildung (300C, 5 Tage) ....
4. Schwefelwasserstoff-Bildung (300C,
5 Tage)
5. Verwertung von Cilrat
6. Voges-Proskauer-Reaktion (300C,
5 Tage)
7. Methylrot-Test
8. Verflüssigung von Gelatine (3O0C,
5 Tage)
9. Zersetzung von Cellulose
10. Urease-Reaktion
11. Reduktion von Methylenblau ....
12. Wirkung au* Lackmus-Milch ....
13. Pigmentbildung
14. Pathogenität
15. Verflüssigung von Stärke .
wird reduziert, sauer und peptonisiert
gelbes Pigment
wird reduziert, alkalisch und peptonisiert
wird reduziert, alkalisch und peptonisiert
16. Verwertve von Zuckern
| ATCC Säurebild |
21 376 Gasbild |
ATCC Säurebild |
21 374 Gasbild |
ATCC Säurebild |
21375 Gasbild |
|
| Glucose | + | + | ||||
| Glycerin | I I I I I I I | I I I I I I I | I I + I + I I | |||
| Xylose | + | - | - | - | - | |
| Saccharose | + | — | — | |||
| Stärke | + | ... | ||||
| Fructose | ± | |||||
| Galactose | + | ± | «. | |||
| Mannose | ||||||
| Arabinose | ||||||
| Maltose | _ | |||||
| Trehalose | ||||||
| Dextrin | ||||||
| Inulin .,,....,.....,.,, | — | |||||
AtCC 21 376
ATCC 21 374
ATCC 21 375
17. Verwertung von Nitraten
18, Verwertung von Ammoniumsalzen
Nach den Bestimmungsmethoden in Bcrgeys Manual of Determinative Bacteriology, 7. Auflage,
ist der oben beschriebene Stamm Microbacterium ATCC 21 376 pleomorph katalase-positiv, gram-positiv
aerob und gehört deshalb zur Klasse Eubacteriales, Bei weiterer Untersuchung stellte sich heraus, daß
der Stamm ATCC 21 376 in 10%iger Magermilch
bis zu einer Temperatur von 72° C für 15 Minuten und bei 7O0C für 30 Minuten hitzebeständig ist, wodurch
er sich von allen Gattungen Listeria, Erysipelothrix, Cellulomonas, Arthrobacter und Corynebacterium,
Unterfamilie Corynebacteriaceae unterscheidet; er gehört aber zur Gattung Microbacterium dieser
Familie.
Der Stamm ATCC 21 375 sollte zur Gattung Arthrobacter
gehören, da seine Gram-Reaktion unterschiedlich ist. Zu dieser Gattung gehörende Organismen
werden gemäß ihrer Fähigkeit, Nitrate, ammoniakalischen Stickstoff und Citrate zu verwerten, im
wesentlichen in zwei Gruppen eingeteilt; dieser Stamm jedoch verwertet Nitrate und ammoniakalischen Stickstoff,
aber keine Citrate, und gehört deshalb keiner der beiden vorgenannten Gruppen an. Infolgedi.isen gehört
dieser Stamm zur Gattung Arthrobacter.
Stamm ATCC 21 374 katalase-positiv, nicht beweglich, unfähig Cellulose zu verwerten, gram-positiv
und weist in 10%iger Magermilch keine Hitzebeständigkeit auf; also gehört er zur Gattung Corynebacterium.
Außerdem ist der Stamm nicht beweglich, bildet Nitrit aus Nitrat und erzeugt Säure aus Glucose,
Lactose, Saccharose und Mannit. Deshalb wurde die zusätzliche Bezeichnung »murisepticum« gewählt.
Zur erfindungsgemäßen Herstellung von cyclischem A-3',5'-MP werden Adenosin, Adenin, Inosin, Hypoxanthin,
5 - Amino - 4 - imidazolcarboxamid - ribosid, 5 - Amino - 4 - imidazolcarboxamid, Succinyladenosin
oder Succinyiadenin oder ein Gemisch dieser Verbindungen, festes oder flüssiges Material mit einer
oder mehrerer der genannten Verbindungen oder fermentierte Maische der genannten Verbindungen
einem Nährmedium zugesetzt, das assimilierbare Kohlenstoffqueüen, Stickstoffquellen und anorganisches
Phosphat und gegebenenfalls andere anorganische Salze und Bestandteile enthält. Der Mikroorganismus
wird in dem Nährmedium bei einem pH-Wert zwischen 5 und 9 bei 20 bis 40' C so lange
gezüchtet, bis man die bestmögliche Ausbeute an cycliscliem Y-3',5'-MP erhält, z. B. 10 bis 80 Stunden
lang. Andernfalls wird ein erfindungsgemäß verwendeter Stamm von Mikroorganismen zuerst dem
Medium eingeimpft und in diesem Medium bei einem pH-Wert im Bereich von 5 bis 9 bei 20 bis 400C für
eine geeignete Zeitdauer, z.B. 10 bis 40 Stunden, gezüchtet. Nach der Züchtung werden Adenosin,
Adenin, Inosin, Hypoxanthin, 5-Amino-4-imidazolcarboxamid-ribosid, 5-Amino-4-imidazolcarboxamid,
Succinyladenosin oder Succinyladenin oder ein Oe* misch dieser Verbindungen der Oärmaische in einem
Betrag von 0,1 bis 3,0 Gewichtsprozent (Gew./Vol.), bezogen auf das Gesamtvolumen des Mediums, zugesstzt.
Die Züchtung wird weiter durchgeführt, bis die Menge der im Nährmedium gebildeten Substanz
ein Maximum, z. B. nach 10 bis 80 Stunden, erreicht.
Das genannte Medium enthält Kohlenhydrate, wie Glucose, Stärkehydrolysate oder Glycerin als Kohlenstoftquellen,
Ammoniumsulfat, Ammoniumchlorid, Harnstoff, Aminosäuren, Protein- oder Peptidhydrolysate
und Zellextrakte, z.B: Maisquellwasser und Hefeextrakt, als Stickstoffquellen, Kaliumdihydrogenphosphat
oder Nntriumdihydrogenphosphat, Dikaliumhydrogenphosphat oder Dinatriumhydrogenpbospbnt
oder Ammoniumphosphat als anorganische Phoa
phatquellen, sowie gegebenenfalls andere anorganische Salze, z, B. Magnesiumsulfat, Magnesiumchlorid,
Eisen(III) - sulfat oder Eisen(II) - sulfat, Eisen(III)-chlorid
oder Eisen(II)-chlorid, Zinksulfat oder Zinkchlorid, Kobaltsulfat oder Kobaltchlorid. Die Züchtung
wird nach irgendeiner geeigneten Methode, z. B. unter Schütteln, unter Rühren, aerob durchgeführt.
Wenn die Bildung von cyclischem A-3',5'-MP im
Nährmedium ihr Maximum erreicht, wird die Züchtung beendet und die Säure aus der Gärmaische
isoliert und gereinigt. Bei der Isolierung und Reinigung der Säure können Aktivkohle, ein Anionenharzaustauscher
,.id ein cyclisches A-3',5'-MP nicht
lösendes Lösungsmittel verwendet werden. Zum Beispiel wird die Gärmaische nach Entfernung der
Zellen mit Aktivkohle zur Adsorption des in der Fermentationsflüssigkeit enthaltenen cyclischen
A-3',5'-MP behandelt, worauf die Aktivkohle mit Ammoniak-Äthanol-Lösung oder Ammoniak-Aceton-Lösung
zur Elution der genannten Säure gewaschen wird. Das erhaltene Eluat wird unter vermindertem
Druck eingedampft, um überschüssiges Ammoniak und Äthanol zu entfernen, und mit einem Anionenaustauscherharz,
wie einem stark basischen Anionenaustauscher mit quartären Ammoniumgruppen in
der Chloridform oder Formiatform, weiterbehandeh und mit einem geeigneten Lösungsmittel. 7. B. mit
verdünnter Salzsäure oder calciumchloridhaitiger verdünnter
Salzsäure für den Anionenaustauscher in der Chloridform bzw. mit verdünnter Ameisensäure oder
Natriumformiat enthaltender verdünnter Ameisensäure für den Anionenaustauscher in der Formiatform,
zur Elution des cyclischen A-3',5'-MP gewaschen. Das Eluat wird wieder an Aktivkohle
adsorbiert, mit Ammoniak-Äthanol-Lösung oder Ammoniak-Aceton-Lösung gewaschen, unter vermindertem
Druck eingedampft, um überschüssiges Ammoniak und Äthanol zu entfernen, an einem Kationenaustauscherharz,
z. B. einem stark sauren Kationenaustauscher mit Sulfonsäureresten, in der H +-Form
adsorbiert und schließlich mit verdünnter Salzsäure eluiert. Das so erhaltene Eluat wird unter vermindertem
Druck eingedampft, in dsr Kälte stehengelassen
oder mit einem Lösungsmittel, wie Äthanol oder Aceion, welche cyclisches A-3',5'-MP nicht lösen,
versetzt, wodurch man die Säure in kristalliner Form erhält.
Gemäß einer anderen Verfahrensweise wird das in der Gärmaische gebildete cyclische A-3'.5'-MP
j5 nach Entfernung der Zellen aus der Brühe an Akti. kohle
adsorbiert und mit Ammoniak-Äthanol-Lösung oder Ammoniak-Aceton-Lösung eluierf. Das Eluat
wird nach Efitferming von Überschüssigem Ammoniak
und Äthanol, z, B. durch Eindampfen unter ver* mindertem Druck, mit Salzsäure angesäuert und mit
einem organischen Lösungsmittel, wie Alkohol oder Aceton, versetzt, wodurch man rohes cyclisches
A-3',5'-MP erhält. Das so erhaltene rohe cyclische A-3',5'-MP kann mittels eines Anionenaustauscher*
harzes oder eines Kationenaustaüscherharzes, wie erwähnt, gereinigt werden. Das erhaltene rohe cyclische
A-3 ',5 '-M P wird in Wasser gelöst, mit Salzsäure oder Phosphorsäure angesäuert, mit einem Ent far-
1 92θ 072
bungsharz (vgl, Ullmatins Bneyeloeadte der tech*
nisehen Cheitiig, Bd, 8 [1957]» S, 813) entfärbt und
mit Äthanol, Aceton oder anderen da» cyclische A'3',5'-MP flieht lösenden Lösungsmitteln versetzt,
woduföh man eyetlsehes Α4\5'·ΜΡ Sn kristalliner
Form erhält,
ÖernäÖ eitlem weiteren Trenn* und Reinlgungs*
rtrfahrcn wird die Öärmaische flach Entfernung der
Zellen direkt mit einem Anionen- oder Kationenaustauscherharz zur Adsorption des cyclischen
A-3.5-MP behandelt. Nach der Behandlung des
erhaltenen Eluats mit Aktivkohle oder einem Entfarbungsharz erhält man cyclische« A-.V,5'-MP in
kristalliner Form durch Zugabe eines nicht lösend wirkenden Lösungsmittels.
Das nach dem Verfahren der Erfindung hergestellte Produkt ergab in bezug auf Elementaranalyse, R ibose-
oder Phosphorgehalt und UV-Spektrum und IR-Spektrum die gleichen Ergebnisse wie eine authentische Probe von cyclischen! A-3.5-MP
Das Verfahren der Erfindung ist ein Einstufenverfahren. Bisher konnte cyclische» A-3'.3'-MP nur
in einem komplizierten Mehrstufenverfahren auf chemischem Wege hergestellt werden.
Microbacterium ATCC 21 376 wurde einem schräggestellten Nährmedium, das 0.5% Ammoniumsulfat,
0,5% Kaliumdihydrogenphosphat, 0.05% Magnesiumsulfat. 1,0% Aminosäuren aus Casein. 0,3%
Hefeextrakt. 1.0% Glucose und 10% Agar-Agar enthielt und dessen pH-Wert mit 3 n-Kalila«ge auf
7.0 eingestellt wurde, eingeimpft und darauf gezüchtet.
Getrennt davon wurden je 40 ml eines Nährme» drerns. das 0,01% Zmksuhat. 5.0% Ohtcose, 0.5%
Harnstoff, 0.5% Ammonramsulfat, 1.0% Kalromdihydrogenphosphat. 1,0% Dikariurepphat, 1.0% Polypepton. 0.1 ml pro Liter MaisqueH-wasser. 0.3% Inosin und 1.0% Magrttsiumsulfet
enthielt und dessen pH-Wert mit 3 e-Ral9aege aaf
8,0 eingestellt wurde, in SOtKml-SchütteauKurflaachen
abgefüllt. Nach 12mieutigem Aatoklavieren bei 115° C
wurde die oben erhaltene Anzuchtkufter Oermatsche eingeimpft and 32 Stunden unter Schütteln
bei 300C gezüchtet. Es badeten steh 3,1 mg pro
Milliliter cycfoches A-3\5'-MP in der Oätwaeche.
Die erhaltene Gärmaische wurde znr Entfernung der Zellen Astigr und der Obetstaod wurde
mit konzentrierter Salzsäure auf de« pH-Wert 2,0 eingestellt und dann mit Aktivkohle zur Adsorption
des cyclischen A-3\5'-MP behandelt. Die an der Aktivkohle adsorbierte Säure wurde mit einer
l,4%igen Ammoniak-Äthanol-Lösung duiert, und
das Etaat wurde zur Entfernung des Ammoniaks und
des Äthanols unter vermindertem Druck eingedampft Dann wurde das dabei erhaltene Eluat bei einem
pH-Wert von 8,0 an einem stark basisdien Anioöeö-
* in der Forrxriatform (Korngröße 044
eingeengt. Die erhaltene Lösung wurde mit ver*
dünntet Sälüsaufe auf elften pH-Wert vcm 2,0 ginge»
stellt und an einem stark säuren Katlöfienaustausöner
In der H+'Form (Korngröße 0,14 Ws 0,074 mm)
chfomaiögfaphieft, IeI der Blatten mit 0,1 n*Sala·
saure erhielt man eine Fraktion mit eyeliwhem
Μ'4'ΉΡ, Die Fraktion wufd§ unter vefffilndeitem
BriMfc eingeengt und def Rückstand in einem Kühlraum bei 2 oder 3"C stehengelassen. Man erhielt aus
to 300 ml Gärmaische 920 mg kristallines cyclische«
A-3.5-MP
i) w»ude einem schräggestellten Nährmedium, das 0.3%
Ammoniumsulfat. 0.5% Kaliumdihydrogenphosphat, 0,005% Magnesiumsulfat, 1% Aminosäuren aus Casein. 0.3% Hefeextrakt. 1.0% Glucose und 2,0%
Agar-Agar enthielt und mit 3 η-Kalilauge auf den
w pH-Wert von 7.0 eingestellt wurde, eingeimpft und
darauf gezüchtet.
Getrennt davon wurden je 30 ml eines Nähr· tnediuirs, das 3,0% Glucose, 0,3% Ammoniumchlorid, 1.0% Dikaliumhydrogenphosphat, 1.0% Katiunv
i) dihydrogenphosphat, 1,0% Polypepton, 0,5% Hefeextrakt und 0,0027% Zinksulfat enthielt und dessen
iH-Wert mit 3 η-Kalilauge auf 8,0 emgertellt wurde.
5TOmI-^huttelkulturflaschen abgefüllt. Nach
lOminutigem Autoklavieren dieses Nährmediums bei
115" C und nach Zusatz von 3% getrennt sterilisiertem Catciumcarbonat wurde die Anzuchtkultur dieser
Gärmaische eingeimpft und 10 Stunden unter Schottern bei 30° C gezüchtet. Dann wurden 60 mg Inosin
ragesetzt, und die Züchtung wurde bei derselben
Temperatur unter Schütteln 70 Stunden fortgesetzt
wobei cycise A-3\5'-MP in einer Menge von 21 mg/ml gebildet wurde.
Die erhaltene Gfirmaische wurde zur Entfernung
der ZeBen ru, der überstand wurde mit
Φ 3 n-8aJaa«re auf den pH-Wert 4.0 eingestellt und
rar Adsorption des darm enthaltenen cyclischen
A-3\5'-MP mit Aktivkohle behandelt Die an der
Aktivkohle adsorbierte Säure wurde mit «net l,4%igen Aamoaiak-AtiMkBot-Ldsaag eruiert. Das
4$ Eleat werde zur EntfenMBg BbeischftMigen Ammo»
staks as einem schwach snuien tCattoMsaustaescbcr
β oer ti -roon cBroBimS)triipnicn βοα <wnn enter
vermndertem Discs. etagedaiQpfl. Noch Zusatz voe
Alkohol zum Rückstand erhielt matt 830 mg kri-
so s^uliniescTsicK^^A^'^lliPaelxn
Microbacterium ATCC 21 376 wurde einem schräggestellten Nahrffledhim, das 0\5% Ammonramsutfat,
bis 0,074 mm) chromatographiert. Bei der Elution mit
einem Gemisch aus 0,1 n-Anwäsensäure und 0,1
n-Natriumformrat wurde eioe Fraktion mit cydischem Α-3%5'-ΜΊ>
erhalten,
Die erhaltene FraktiOB Winde Wieder an Aktivkohle adsorbiert; öle Aktivkohle wurde mit Wasser
n und mit einer t,4%ipB Ammoniak-Äthanol-Lösung flach der oben beschriebenen Methode
ehäert Das Eloat wurde unter vermindertem Druck
^ygip,,g
sulfat, 1,0% Ammosäuren aas Casern, 0,3% Hefeextrakt, 1,0% Glucose und 2,0% Agar-Agar entbM
und dessen pH-Wert mit 3 n-RahfäUge und 1,0 &üge^lellt wurde, emgennpft und darauf geznditöL
Getrenöt davoo wtttdett je 40 ml eines Nährmedroms, das 4,0% Glycerin, (.
0,5% Kafioiadihyd'ogerJpBosp^at, 0,5%
xantlriti uwi 0j002/% Snksaifet eät6ielt nod dteseo
pH-Wert mit t n^Kahiaege anf f,0 eägg«äft WBide,
m 500-mi-Sdschen ab^efelL Nach
Jti Aatoklavierefj des NahftifedHHns bei
115° C und Zusatz von 3% getrennt sterilisiertem
Caiciutnearbonat wurde die oben erhaltene Ansucht'
kultur durch Suspension eingeimpft und uflter Schiit*
teln 30 Stunden bei 3O0C gezüchtet, wobei cyclische*
A*3',5'*MP in einer Menge Vöfi 1,5 mg/ftit gebildet
wurde.
Die erhaltene Öärniaische wurde zur Entfernung
der Zellen zentrifugiert und auf dieselbe Weise, wie
im Beispiel 1 beschrieben, behandelt. Man erhielt
350 mg cyclische* A-.V.5-MP aus 500 ml Gärmaische. to
Arihrobacter AT(V 21 .175 wurde auf einem schräggestellten Nährmedium der gleichen Zusammensetzung wie im Beispiel 2 bei W Γ 24 Stunden gezüchtet.
Die erhaltene Anzuchtkultur wurde in 50O-ml-Schüttelkulturflaschen in je 40 ml Nährmedium eingeimpft,
das 5.0% Glucose. 0.5% Ammoniumsulfat. 1% Dikaliumhydrogenphosphat. 0.5% Harnstoff. 1.0% Kaliumdihydrogenphosphat. 1.0% Polypepton. 1.0%
Magnesiumsulfat. 0.5% Hefeextrakt. 0.2% 5-Amino-4-imida?olcarboxamid-ribosid und 0.001% Kobaltsulfat enthielt, dessen pH-Wert mit 3 η-Kalilauge auf
7.0 eingestellt wurde, das 12 Minuten bei 115 C
autoklaviert und mit 3% getrennt sterilisiertem CaI-ciumcarbonat versetzt worden war. Man züchtete
40 Stunden bei 30" Γ unter Schütteln und erhielt 1.8 mg/ml cyclische« A-3'.5'-MP.
Die erhaltene Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert und auf die gleiche Weise.
wie im Beispiel 1 beschrieben, behandelt. Man erhielt
415 mg cyclische* A-3'.5'-MP aus 500 ml Garmaische.
Arthrobacter ATCC 21 375 wurde in einem schräg· J5
gestellten Nährmedium der gleichen Zusammensetzung wie im Beispiel 2 bei 30° C 24 Stunden angeiüchtet. Die erhaltene Anzuchtkultur wurde in
ftO-ml-SchUttelkulturflaschen in je 40 ml Nihrmedium eingeimpft, das 5% Glucose. 0.5% Ammonium-
sulfat. 1% Dikaliumhydrogcnphosphat, 0.5% Harnstoff. 1% Kaliumdihydrogenphosphat, 1% Polypepton. 0.5% Magnesiumsulfat. 0.5% Hefeextrakt. 02%
5*Amino-4-imtdazolcarbo*amid und 0.001% Kobaltsulfat enthielt, mit 3 n-KaKtaoge auf den pH-Wert
7,0 eingestellt und autoklaviert wurde, und bei 30° C 72 Stunden unter Schütteln gezüchtet. Es bildeten
sHi 1,4 mg/ml cycsc A-3'.5'-M P im Nährmedhim.
Die Garmaische wurde auf die gleiche Weise, wie im Beispiel 1 beschrieben, behandelt Man erhielt
332 mg cyclischen A-3',5'-MP aus 500 ml Garmaische.
Corynebacterhim murisepticum ATGC 21374,
wurde auf die gleiche Weise wie im Beispiel 5 in einem Anzuchtnähnnedium angezüchtet und ic ein Nährmedium eingeimpft, das die gleiche Zusammensetzung wie hn Beispiel 4 hatte, mit einer Ausnahme,
daß ah Stelle von 5-Ammo^imidazoIcarboxamidribosid 0,2% Succinyladenosiri zugesetzt wurden.
Bei 30° C wurde 40 Stunden Unter Schütteln gezüchtet Es bildeten sich 1,2 mg/ml cycfiscfieVA>3^5'-MP.
Die Garmaische wurde zur Entfernung def Zeilen
zentrifugiert und wie im Beispiel 1 behandelt; ma*
erhielt 180 mg cyclische« A'3',5''MP aus SÖÖfti
OMrmaische.
Midrobactorium ATCC 21 376 wurde müh dem
gleichen Anzucht verfahren wie Im Beispiel 4 angeaitehfef
und in ein Nähmedium eingeimpft, das dt«
gleiche Zusammensetzung wie im Beispiel 5 hatte, mit einer Ausnahme, daß an Stelle von VAmino-4-imiJazolcarboxamid 0.2% Succinyladenin zugesetzt
wurden. Nach 70stUndigem Züchten unter Schütteln bei 30C wurden 0,7mg/ml cyclisches A-3.5-MP
erzeugt. Die Gärmaische wurde zur Entfernung dei Zellen zentrifugiert und wie im Beispiel I behandelt;
man erhielt 121 mg cyclisches A-3.5-MP aus 500 ml Gärmeische.
Microbacterium ATCC 21 376 wurde in demselben
Anzuchtmedium wie im Beispiel 5 angezüchtet, in ein Nährmedium eingeimpft, das dieselben Bestandteile wie im Beispiel 6 hatte, mit der Ausnahme, daO
an Stelle von Succinyladenosin 0,2% Adenosin zugesetzt wurden, und unter Schuttein 40 Stunden bei
30°C gezüchtet. Man erhielt 2,0 mg/ml cyclisches
A-3'.5'-MP. Die Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert und wie im Beispiel 2 behandelt: man erhielt 750 mg cyclisches A-3'.5'-MP aus
500 ml Gärmaische.
Microbacterium ATCC 2t 376 wurde m gleichen
Teilen Anzuchtnährmedium wie im Beispiel 4 gezüchtet, in ein Nährmedium eir geimpft, das die
gleiche Zusammensetzung wie hn Beispiel 5 hatte, mit der Ausnahme, daß an Stelh von 5-Ammo-4-rmidazolcarboxamid 0.1% Adenin zugesetzt wurde,
und unter Schütteln 70 Stunden bei 3(TC gezechtet. Man erhielt U mg/ml cyclisches A-3\5'-MP. Die
Gärmaische wurde zur Entfernung der Zellen zentrifugiert und aaf die gleiche Weise wie im Beispiel I
behandelt. Man erhielt 230 mg cyclisches A-3'.5'-MP aus 500 ml Girmatsche
Claims (2)
1. Verfahren zur biochemischen Herste, ung
von cyclische« Adenosin - 3'4'- fBcmophosphat,
dadurch gekennzeichnet, daß man
unter Einhaltung üblrcfier Züchfmigsbedmgtmgen
Corynebacterium murisepticum ATCC 21 374, Arthrobacter ATCC 21 375 oder Microbacterium
ATCC 21 376 in Gegenwart von Adenosin, Adenin, Inösin, Hypoxanthm, S-Amino^imidazolcarboxamid-ribosid, S-Äiümo^-nnidazoIcarboxafflid, Succmyfadenosin öder Succmyladenm
im Nahrmedium züchtet
2. Verfahren nach Anspruch I, dadurch gefcennzeichnet, daß der Gehalt des Nährmediums an
Adenosin, Adeäin, Isosra^ HypGxanthin, 5-Amino-4-imidazolcaiboxamid-nT3ösM,5-Amino-4-imid-;
azolearboxainid, Succinyladenosm öder SuccmyladeninO,! bis 3,0 Gewichts/Vohiinprozent beträgt
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