EP3134508A1 - Utilisation d'acide urique pour la culture de bactéries sensibles à la tension en oxygène - Google Patents

Utilisation d'acide urique pour la culture de bactéries sensibles à la tension en oxygène

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EP3134508A1
EP3134508A1 EP15725773.4A EP15725773A EP3134508A1 EP 3134508 A1 EP3134508 A1 EP 3134508A1 EP 15725773 A EP15725773 A EP 15725773A EP 3134508 A1 EP3134508 A1 EP 3134508A1
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EP
European Patent Office
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bacterium
uric acid
oxygen
bacteria
culture medium
Prior art date
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Withdrawn
Application number
EP15725773.4A
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German (de)
English (en)
Inventor
Didier Raoult
Saber KHELAIFIA
Michel Drancourt
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Aix Marseille Universite
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Fondation Mediterranee Infection
Original Assignee
Aix Marseille Universite
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Fondation Mediterranee Infection
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Publication date
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P5/00—Preparation of hydrocarbons or halogenated hydrocarbons
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N1/38—Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P39/00—Processes involving microorganisms of different genera in the same process, simultaneously
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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    • Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/30—Fuel from waste, e.g. synthetic alcohol or diesel

Definitions

  • the present invention relates to the cultivation in acellular medium of bacteria whose growth is sensitive to the oxygen tension, in particular bacteria that tolerate high oxygen tensions and for which optimal growth of said bacterium requires an atmosphere of oxygen.
  • relatively low oxygen content incubation with respect to the oxygen content of the air or even strict anaerobic bacteria for which oxygen is toxic and which must be cultured in total absence of oxygen or tolerating only low concentrations of oxygen oxygen.
  • microaerophilic bacteria that is to say that they are not capable of cultivating under an atmosphere comprising the ambient oxygen concentration which is about 21%, especially between 1% and 20%, most commonly at about 2-2.5%, and
  • the strict anaerobic bacteria that is to say that they are not able to cultivate in the presence of oxygen or in concentrations lower than the microaerophilic concentrations, in particular strictly less than 1%, the most commonly less than 0.1%, ideally 0%.
  • To cultivate strict anaerobic bacteria it is necessary either to cultivate them in incubators not containing oxygen, or in tubes which have been deoxygenated and they only grow at the bottom of the tube.
  • the strict anaerobic bacteria mention is made more particularly of extracellular bacteria, ie bacteria that can live only outside cells. More particularly, the present invention relates to the cultivation of bacteria with naérobies and the culture of microaerophilic bacteria in an aerobic atmosphere.
  • WO 2014/064359 it is proposed to improve and facilitate the growth conditions in acellular culture of bacteria whose growth is sensitive to the oxygen tension and in particular bacteria that are poorly tolerant of high oxygen tensions and for which growth optimal of said bacterium requires an incubation atmosphere with a relatively low oxygen content relative to the oxygen content of the air, said bacteria being chosen from the following bacteria:
  • anaerobic bacteria including strict anaerobic bacteria
  • microaerophilic bacteria of the type mentioned above.
  • microaerophilic atmosphere oxygen-depleted air with a molar proportion of oxygen of less than 10%, preferably 5%, more preferably less than 2.5%.
  • oxygen content must be close to 0%, especially less than 0.1%, as mentioned above, the tolerance to very small amounts of oxygen being variable depending on the species of anaerobic bacteria.
  • WO 2014/064359 a method for the in vitro cultivation of bacteria in acel lar culture medium, bacteria whose growth is sensitive to the oxygen content is thus provided, the optimal growth of said bacteria requiring an incubation atmosphere in which relatively low oxygen content, or even zero, relative to the oxygen content of the air, said bacteria being chosen from anaerobic bacteria and intracellular microaerophilic bacteria, characterized in that it is added in said culture medium acel lular an antioxidant compound selected from ascorbic acid, glutathione and sodium hydrosulfide, and said bacterium is cultured in said culture medium in the presence of oxygen.
  • ascorbic acid and glutathione are preferred because they are capable at precise doses of allowing culture at a higher oxygen level.
  • said antioxidant compounds are used at a concentration of 0.1 g / L to 2 g / L, or molar concentration of 10 -6 M to 10 -2 M.
  • antioxidant compounds such as sodium hydrosulfide (NaHS) or cysteine are less effective and require higher concentrations.
  • NaHS sodium hydrosulfide
  • cysteine is less effective and require higher concentrations.
  • the addition of an antioxidant compound makes it possible to tolerate growth in the presence of relatively higher oxygen content, even in an ambient air atmosphere, particularly for intracellular microaerophilic bacteria such as Coxiella burnetii or Helicobacter clnaedi and strict anaerobic bacteria such as than Bacteroides. And, this addition allows us, for certain bacteria such as Mycobacterium tuberculosis cultivable at higher oxygen tensions in the absence of antioxidant compound, to improve their growth at decreased oxygen tensions in the presence of antioxidant compound. Under certain conditions ascorbic acid appears toxic and / or too acid with respect to certain bacteria and / or for certain culture media in high doses.
  • Uric acid although having certain antioxidant properties, is not conventionally used in microbiology as an antioxidant compound because under certain conditions it has on the contrary oxidizing properties (5).
  • uric acid comes from a diet not containing meat and little vegetable, whereas uric acid comes from the deterioration of fats found in large quantities in meat products.
  • uric acid is less acidic and less toxic than ascorbic acid and much less expensive than glutathione ie about 1 Euros / g for uric acid, instead of 100 Euros / g for glutathione.
  • the subject of the present invention is therefore a method for culturing in vitro in an acellular culture medium, of a bacterium chosen from anaerobic bacteria and intracellular microaerophilic bacteria, wherein said bacterium is cultured in said culture medium in the presence of oxygen, characterized in that said uric acid culture medium is added to said culture medium at a concentration of at least 0.1 g / ml. L.
  • the said bacteria are bacteria whose growth is sensitive to the oxygen content, the optimal growth of the said bacteria requiring an incubation atmosphere with a relatively low oxygen content relative to the oxygen content of the air.
  • the uric acid is used at a concentration of at least 0.2 g / l, preferably from 0.4 to 2 g / l, in particular from 0.2 to 0.5 g / l, to obtain an equivalent or even greater effect. on the growth of said oxygen-sensitive bacteria in an aerobic atmosphere and at concentrations that are less than or equal to those of ascorbic acid and glutathione alone or as a mixture allowing a similar effect on the growth of said bacteria in the same atmospheres aerobic ambiences.
  • Uric acid can be used in admixture with ascorbic acid and / or glutathione, but uric acid can be used without additional antioxidant compounds in said culture medium. As illustrated in the exemplary embodiments of the detailed description below:
  • certain anaerobic and microaerophilic bacteria have improved growth in aerobic atmosphere with uric acid alone or in combination with ascorbic acid but no improved growth with ascorbic acid alone.
  • uric acid is used in combination with ascorbic acid, more preferably with ascorbic acid and glutathione.
  • said culture medium comprises the components that are found in culture base media capable of cultivating an anaerobic bacterium, comprising at least:
  • sources of carbon - several sources of carbon, - a source of phosphorus, preferably a phosphate salt,
  • a source of nitrogen preferably an ammonium salt
  • said culture medium is a cell-free medium is selected from an axenic medium consisting of chemical or biological substances defined qualitatively and quantitatively, and an acel-ulaire medium comprising an extract of mulateplastic tissue or lysate.
  • said medium comprises a pH regulating buffer substance to adjust the pH from 7 to 7.5.
  • said culture medium is a conventional acellular medium of microaerophilic or anaerobic bacterium, preferably a medium comprising components chosen from a multivellular tissue extract or lysate extract, an enzymatic digest, in particular an enzyme digest of casein, soybean and / or animal tissue, peptone, yeast extract, sugar such as dextrose or glucose, NaCl and / or Na 2 PO 4 salt.
  • said culture medium is a filtrate of said broyate or lysate, including blood tissue or heart tissue and / or lung, when said bacterium is an extracellular bacterium such as the so-called heart-brain broth medium, Columbia medium with 5% sheep blood or Schaedier medium as described below.
  • Other suitable conventional media are Brucella or Wilkins-Chagren media.
  • Such cell-free culture media are well known to humans of the art. These media can be used with agar (solid or semi-solid) or without agar (liquid).
  • polyvalent culture media for anaerobic microorganisms, in particular Schaedier's medium.
  • acellular culture media whether liquid, solid or biphasic are well known to those skilled in the art.
  • said culture medium of anaerobic bacteria may be in liquid or solid or semi-solid form, in particular agar or semi-agar, agar or semi-agar.
  • the said bacterium is cultured in a so-called incubation atmosphere comprising a molar proportion of oxygen greater than the maximum tolerated tension in the absence of uric acid or of an antioxidant compound for the same level of growth in the same period of time. culture.
  • the said bacterium is cultivated in a so-called incubation atmosphere comprising a molar proportion of oxygen of less than or equal to 20%.
  • said bacteria are cultured according to the present invention in an atmosphere comprising an oxygen content greater than 5%, especially in air containing 5% CO 2 (ie an oxygen content of less than 16%). or even in an aerobic atmosphere of ambient air.
  • the said intracellular microaerophilic bacterium is cultured in a microaerophilic incubation atmosphere comprising a molar proportion of oxygen less than 5%, preferably from 2 to 5%, more preferably 2.5%.
  • the uric acid is used with an antioxidant compound preferably chosen from ascorbic acid and glutathione ( ⁇ -L-Glutamyl-L-cystei-nylglycine) or even sodium hydrosulfide.
  • Ascorbic acid and lutathion are preferred because they are capable at precise doses of allowing culture at a higher oxygen level.
  • said antioxidant compound is used at a concentration of 1 mg / l to 2 g / l, preferably at least 100 mg / l.
  • said antioxidant compound is ascorbic acid and / or glutathione, preferably at a concentration of at least 100 mg / l.
  • said bacterium is a bacterium cultivable in said culture medium in the absence of uric acid or said oxidizing compound in an atmosphere comprising a molar proportion of oxygen less than the molar proportion of oxygen in the air, preferably less than 20%, and said bacterium is cultured in the presence of said uric acid in said culture medium under an incubation atmosphere comprising an oxygen content less than or equal to the proportion of oxygen in the air, preferably less than 20%, more preferably greater than 5%.
  • said bacterium is an extracellular anaerobic bacterium cultivable in an anaerobic atmosphere in the absence of said uric acid or said antioxidant compound, and one obtains a growth of said bacterium in the presence of oxygen with a molar proportion less than or equal to the proportion of oxygen in the air.
  • the anaerobic bacteria may be strict anaerobic bacteria or facultative anaerobic bacteria also referred to as aeroaerobic, ie anaerobic bacteria that tolerate oxygen but do not need it to grow or aerobic bacteria that support the lack of oxygen to grow.
  • anaerobic bacteria mention is made more particularly of the bacteria belonging to the genera Actinomyces, Aerococcus, Aeromonas, Aneurinibacillus, Bacillus, Bartonella, Cede, Citrobacter, Corynebacterium, Derambacter, Eikenella, Enterobacter, Enterococcus, Escherichia, Eubacterium, Gardnerella, Gemella , Granulicatella, Hafnia, Haemophilus Kingella, Klebsellia, Lactobacillus, Lactococcus, Lysinibacillus, Morganella, Paenibacillus, Pasteurella, Pediococcus, Propionibacterium, Proteus, Providencia, Serra tia, Raoultella, Rothia, Staphylococcus, Streptococcus and Weissella.
  • an anaerobic extracellular bacterium in particular a bacterium of the digestive tract, is cultured in humans or animals in an acellular medium in the presence of a molar proportion of oxygen less than or equal to that of air and in the presence of said uric acid, preferably in ambricant air atmosphere.
  • This first embodiment is illustrated in the example below by the aerobic culture of Bacteroides thetaiotaomicron in the presence of uric acid. These are strict anaerobic bacteria of the digestive tract, which are normally cultivated only under strictly anaerobes. This results when one inoculates a said bacterium in a deoxygenated tube in that a culture veil appears only in the lower part of the tube, while the upper part remains virgin culture. If uric acid according to the present invention is added at 200 ⁇ g / ml, the cultivation is practically to the surface, or even completely to the surface at the concentration of 500 ⁇ g / ml and even more preferably at 1 ⁇ g / ml.
  • said bacterium produces colonies in 24 hours after agar seeding.
  • said bacterium is an intracellular microaerophilic bacterium capable of being cultured in said acellular culture medium, under a microaerophilic atmosphere with a molar oxygen proportion of not more than 5%, preferably not more than 2.5% in the incubation atmosphere, in the absence of uric acid or antioxidant compound, and the said bacterium is cultured in the presence of uric acid in a said culture medium under a microaerophilic incubation atmosphere comprising a molar proportion of oxygen between 2.5% and 20%, preferably between 5% and 16%, especially air optionally enriched with 5% C0 2 .
  • the present invention applies more particularly to microaerophilic bacteria due, inter alia, to the addition of said uric acid.
  • intracellular microaerophilic bacteria mention is made more particularly of the genera of the genera Coxiella, Mycobacterium, Helicobacter, Campylobacter and Vagococcus.
  • This embodiment is illustrated by the aerobic culture of the bacteria Mycobacterium tuberculosis and Helicobacter cinaedi grown in ambient air.
  • Example 3 Other species of microaerophilic bacteria, strict anaerobic bacteria and facultative anaerobic bacteria mentioned in Example 3, about 250 species, have been tested with improved growths obtained in aerobes in polyvalent culture media with added uric acid.
  • Example 1 Culture of Bacteroides thetaiotaomicron with Schaedler medium.
  • a strain of anaerobic bacterium Bacteroides thetaiotaomicron has been obtained through the study "culturomics" of the inventors (2) also available in various deposit collections (CSUR P766 also deposited according to the Treaty of Budapest to the col lection of deposition of microorganisms DSMZ (Germany) on May 19, 2014 under the number DSM 28808, other strains are also available in various depot collections such as strains DSM 2079, ATCC 29148 and NCTC 10582).
  • B. thetaiotaomicron was cultured in an anaerobic atmosphere at 37 ° C. in a polyvalent culture medium. The medium of Schaedler (Reference 42098, BioMerieux, Balmes-les-Grottes, France) was tested also suitable for the culture of anaerobic bacteria.
  • the medium Schaedler (marketed by Biomereux the star, France) had the following composition for 1 liter
  • This Schaedler medium was complemented by the addition of hydrocarbon compounds, namely 1 g / l of rice starch and 1 g / l of glucose (Sigma-Aldrich, Saint-Quentin Fal lavier, France) and addition of uric acid and anti-oxidant compounds ie complemented by the addition of:
  • starch and glucose hydrocarbon compounds was intended herein to produce H2 to control the growth of the bacteria.
  • Resazurin is used as an oxidizing reducer at a concentration of 0.1 mg / ml to control the presence of oxygen (resazurin oxidized in pink, and becomes transparent in the absence of oxygen).
  • the aerobic culture in B. thetaiotaomicron ambient air was carried out by inoculating 10 5 organisms / ml in a vessel incubated at 37 ° C. containing the culture medium supplemented by the addition of anti-oxidant compounds and source compounds. carbon. The pH was adjusted to 7.5 by addition of 10M KOH.
  • the strain was grown in parallel under aerobic conditions and by the inoculation of 10 5 organisms / ml with the culture medium supplemented according to the present invention and with Schaedler medium supplemented by the hydrocarbon compounds mentioned above but on the other hand without antioxidant compounds.
  • the culture medium supplemented by adding 1 g / L of rice starch and 1 g / L of glucose inoculated anaerobically with 10 8 cells / L of B. thetaiotaomicron was introduced as a positive test and to verify the production of H2 by B. thetaiotaomicron in anaerobic culture. These checks were carried out in parallel in an ambient atmosphere (aerobic). The non-inoculated culture medium was introduced as a negative control.
  • B. thetaiotaomicron has been evaluated daily by hydrogen production.
  • the measurement of hydrogen was carried out using a GC-8A gas chromatograph (Shimadzu, Champs-sur-Marne, France) equipped with a thermal conductivity detector and a Chromosorb WAW 80/100 mail column SP100 (Alltech, Carquefou, France).
  • N2 nitrogen at a pressure of 100 kPa was used as the carrier gas.
  • the detector and the injector temperatures were 200 ° C and the column temperature was 150 ° C. Negative controls remained negative with no growth occurring after one week of incubation indicating that the results reported here are not simply the result of contamination by other microorganisms.
  • the positive controls were positive hydrogen production observed in the anaerobic B. thetaiotaomicron culture.
  • the culture of B. thetaiotaomicron inoculated aerobically with no antioxidant compounds remained negative and hydrogen was not produced.
  • the culture procedure is carried out on tubes of culture medium of the Schaedler type with 0.2% agar (Biomerieux, Marcy l'étoile, France).
  • the Schaedler medium had the following composition for 1 liter:
  • a regenerated tube without uric acid For each bacterium one inoculates 2 tubes, a regenerated tube without uric acid and a regenerated tube into which 500 ⁇ g / ml or 1 ⁇ g / ml of uric acid is added. To regenerate the tube, it is placed in a water bath at 100 ° C. until all the gas bubbles visible in the medium have disappeared. Then, for the tube with uric acid, it is expected to cool the tube at 50 ° C (schematically until it can be held in the hand without burning) and the uric acid suspension is added. Then homogenized by inversion (3-4 to ensure a good mixture).
  • the bacterium was established in culture in 24h and confirmed by mass spectrometry Maldi tof type.
  • M. tuberculosis strain H37Rv calibrated at 10 7 units colonies (CFU) and four clinical strains of M. tuberculosis calibrated at 10 5 CFU or 10 6 CFU were inoculated into sterile Petri dishes in MOD4 medium described hereinafter enriched with ascorbic acid at 100 mg / L ( MOD5), or uric acid at 100 mg / L (MOD6) or uric acid at 200 mg / L (MOD7). Five boxes were seeded for each condition.
  • Bovine serum albumin 1.65 g / L
  • the pH was adjusted to 7.5 with 10M KOH before passing through the autoclave.
  • the antioxidant compounds were dissolved in 10 mL of distilled water, filtered with a 0.2 ⁇ m microfilter and then added to the autoclaved medium at 50 ° C to be sterilized before being cooled to an agar solid form.
  • Table 1A strict anaerobic bacteria (82 species and 145 strains).
  • Parabacteroides Parabacteroides distasonis 1 48H
  • Porphyromonas Porphyromonas asaccharolityca 1 72H Prevotella Prevotella buccalis 1 72H
  • the bacteria tested were: Bacteroides ovatus, Clostidium massilioamazoniensis, Anaerosalibacter bizertensis, Clostrididum paraperfringens, Clostridium sporogenes, Peptoniphilus harei, Finegoldia magna, Turicibacter sanguinis, Propionibacterium acnes, Bacteroides timonensis, Eikenella corrodens, Clostridium glycolicum, Bifidobacterium bv, Campylobacter ureolyticus.
  • Example 5 Effect of acid in a liquid blood culture medium on the growth of anaerobic bacteria.
  • Blood cultures of strict anaerobic bacteria were inoculated at 10 5 cfu / mL on culture medium: BD BACTEC TM Plus Aerobic / F. comprising 25 ml enriched Soy Trypticase broth, with resins (Reference: 442192) at 37 ° C in an aerobic atmosphere with uric acid at 400mg / L and without uric acid and in anaerobic atmosphere without uric acid. Detection of growth was by detection of C02 production with the BD BACTEC TM 9000 Series Instrumented Blood Culture Systems.

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Abstract

La présente invention concerne un procédé de culture in vitro en milieu de culture acellulaire, de bactérie dont la croissance est sensible à la teneur en oxygène, ladite bactérie étant choisie parmi les bactéries anaérobies et les bactéries microaérophiles intracellulaires, caractérisé en ce que l'on ajoute dans le dit milieu de culture acellulaire de l'acide urique, et l'on cultive la dite bactérie dans ledit milieu de culture en présence d'oxygène.

Description

Utilisation d'acide urique pour la culture de bactéries sensibles à la tension en oxygène
La présente invention concerne la culture en milieu acellulaire de bactéries dont la croissance est sensible à la tension en oxygène, notamment des bactéries qui tolèrent ma l des tensions élevées d'oxygène et pour lesquelles une croissance optimale de la dite bactérie requière une atmosphère d'incubation à teneur en oxygène relativement réduite par rapport à la teneur en oxygène de l'air voire des bactéries anaérobies strictes pour lesquelles l'oxygène est toxique et qui doivent être cultivées en absence totale d'oxygène ou ne tolérant que de faibles concentrations d'oxygène.
On distingue donc parmi les bactéries sensibles à l'oxygène :
- les bactéries microaérophiles c'est-à-dire qu'elles ne sont pas capables de cultiver sous une atmosphère comprenant la concentration d'oxygène ambiante qui est de environ 21%, notamment entre 1% et 20%, le plus communément à environ 2-2,5%, et
- les bactéries anaérobies strictes c'est-à-dire qu'elles ne sont pas capables de cultiver en présence d'oxygène ou dans des concentrations inférieures aux concentrations de microaérophilie, notam ment strictement inférieure à 1%, le plus comm unément inférieure à 0.1%, idéalement 0%. Pour cultiver les bactéries anaérobies strictes, il faut soit les cultiver dans des étuves ne comportant pas d'oxygène, soit dans des tubes qui ont été désoxygénés et elles ne poussent alors qu'au fond du tube. Parmi les bactéries anaérobies strictes, on cite plus particulièrement les bactéries extracell ulaires, c'est à dire des bactéries qui ne peuvent vivre qu'à l'extérieur de cellules. Plus particulièrement, la présente invention concerne la culture de bactéries a naérobies et la culture de bactéries microaérophiles en atmosphère aérobie.
Dans WO 2014/064359, on propose d'améliorer et faciliter les conditions de croissance en culture acellulaire des bactéries dont la croissance est sensible à la tension en oxygène et notamment des bactéries qui tolèrent mal des tensions élevées d'oxygène et pour lesquelles une croissance optimale de la dite bactérie requière une atmosphère d'incubation à teneur en oxygène relativement réduite par rapport à la teneur en oxygène de l'air, lesdites bactéries étant choisies parmi les bactéries suivantes :
- les bactéries anaérobies, y compris les bactéries anaérobies strictes, et
- les bactéries microaérophiles du type citées ci-dessus. On entend ici par «atmosphère microaérophile», de l'air appauvri en oxygène avec une proportion molaire en oxygène inférieure à 10%, de préférence 5%, de préférence encore inférieure à 2, 5% . Pour les bactéries anaérobies strictes, la teneur en oxygène doit être proche de 0%, notamment inférieu re à 0.1%, comme mentionné ci-dessus, la tolérance à de très faibles quantités d'oxygène étant variable selon les espèces de bactéries anaérobies.
Dans WO 2014/064359, on propose d'ajouter certains composés antioxydants à savoir l'acide ascorbique, le glutathion et l'hydrosulfure de sodium dans un milieu de culture acellulaire pouvait permettre de : - améliorer la croissance des dites bactéries en obtenant plus rapidement des bactéries en concentration suffisante pour être détectables après multiplication et/ou en augmentant la concentration en bactéries après un délai donné de culture, c'est-à-dire par unité de temps, et - cultiver avec au moins un même niveau de croissance voire à un niveau pl us élevé, des bactéries anaérobies strictes en présence de quantité plus élevées d'oxygène qu'en l'absence de composé antioxydant, c'est-à-dire en atmosphère microaérophile, notamment avec des teneurs en oxygène de 2 à 5%, mais aussi des teneurs en oxygène supérieures à 5%, voire en aérobie, c'est-à-dire en présence d'un taux d'oxygène équivalent à la tension en oxygène proche de l'air ambiant soit environ 21%, et
- cultiver avec au moins un même niveau de croissance, dans une atmosphère contenant des tensions d'oxygène pl us élevées, desdites bactéries intracellulaires microaérophiles, cultivables en l'absence de composé antioxydant, en atmosphère microaérophile, voire avec un niveau de croissance pl us élevé comme c'est le cas pour la bactérie Coxiella burnetii; et - cultiver avec un niveau de croissance plus élevé, en atmosphère microaérophile, des bactéries cultivables, en l'absence de composé antioxydant, dans une atmosphère contenant une tension d'oxygène plus élevée, mais inférieu re à la teneur en oxygène de l'air, comme c'est le cas pour la bactérie intracellulaire facultative Mycobacterium tuberculosis.
Dans WO 2014/ 064359, on fournit donc un procédé de culture in vitro de bactéries en milieu de culture acel l ulaire, de bactéries dont la croissance est sensible à la teneur en oxygène, la croissance optimale desdites bactéries exigeant une atmosphère d'incubation à teneur en oxygène relativement réduite, voire nulle, par rapport à la teneur en oxygène de l'air, lesdites bactéries étant choisies parmi les bactéries anaérobies et les bactéries microaérophiles intracellulaires, caractérisé en ce que l'on ajoute dans le dit milieu de culture acel lulaire un composé antioxydant choisi parmi l'acide ascorbique, le gl utathion et l'hydrosulfure de sodium, et l'on cultive la dite bactérie dans ledit milieu de culture en présence d'oxygène. Dans WO 2014/ 064359, l'acide ascorbique et le gl utathion sont préférés car ils sont capables à des doses précises de permettre la culture à un niveau d'oxygène pl us élevé.
Dans WO 2014/064359, plus particulièrement encore, lesdits com posés antioxydants, sont mis en œuvre à une concentration de 0, 1 g/L à 2 g/L, ou concentration molaire de 10"6 M à 10"2 M .
D'autres composés antioxydants tels que l'hydrosulfure de sodium (NaHS) ou la cystéine sont moins efficaces et requièrent des concentrations plus élevées. L'ajout d'un composé antioxydant permet de tolérer une croissance en présence de teneur en oxygène relativement pl us élevée, voire en atmosphère d'air ambiant notamment pour les bactéries microaérophiles intracellulaires telles que Coxiella burnetii ou Helicobacter clnaedi et les bactéries anaérobies strictes telles que Bacteroides. Et, cet ajout permet a ussi pour certaines bactéries telles que Mycobacterium tuberculosis cultivables à des tensions d'oxygènes plus élevées en l'absence de composé antioxydant, d'améliorer leu r croissance à des tensions en oxygène diminuées en présence de composé antioxydant. Dans certaines conditions l'acide ascorbique apparaît toxique et/ou trop acide vis à vis de certaines bactéries et/ou pour certain milieux de culture à fortes doses. Ceci a été mis en évidence notam ment pour Mycobacterium tuberculosis (4) . D'autre pa rt, le glutathion est très onéreux. Selon la présente invention, les inventeurs ont découvert de façon fortuite qu'un effet équivalent sur la croissance des dites bactéries anaérobies ou sensibles à l'oxygène pouvait également être obtenu en ajoutant dans le dit milieu de culture de l'acide urique (7,9- dihydro- lH-purine-2,6,8(3H)-trione ou 2,6,8-trioxypurine) à la place des composés antioxydants décrits dans WO 2014/064259, l'acide urique étant mis en œuvre dans des concentrations si milaires ou inférieure à celles de l'acide ascorbique et du glutathion tel que décrit dans WO 2014/064359.
L'acide urique, bien qu'ayant dans certaines conditions des propriétés antioxydantes, n'est pas classiquement utilisé en microbiologie à titre de composé antioxydant car dans certaines conditions il présente au contraire des propriétés oxydantes (5).
Les inventeurs dans le cadre de travaux sur la maladie de Kwashiorkor, une forme de mal n utrition infantile, ont découvert l'importance de l'acide urique pour la croissance des bactéries anaérobies. Ils ont observé chez ces enfants une flore microbienne du tube digestif très particulière en ce qu'elle comporte très peu de bactéries anaérobies d'une part et une carence en acide urique d'autre part. Cette carence en acide uriq ue provient d'une ali mentation ne comportant pas de viande et peu de légume alors que l'acide urique provient de la dégradation des pu rines que l'on trouve en quantité importante dans les aliments carnés. Pour expliquer la spécificité de la flore de ces patients, ils ont voulu vérifier si l'acide urique suffirait à permettre la culture en aérobiose des bactéries théoriquement anaérobies ce qui les a conduit à découvrir que des doses faibles d'acide urique présent normalement dans le tube digestif permet effectivement de rétablir la croissance des bactéries anaérobioses absentes chez ces patients déficients en acide urique.
Cette découverte est particulièrement importante et avantageuse car l'acide urique est moins acide et moins toxique que l'acide ascorbique et beaucoup moins onéreux que le glutathion à savoir environ 1 Euros /g pour l'acide urique, au lieu de 100 Euros /g pour le glutathion .
La présente invention a donc pour objet un procédé de culture in vitro en milieu de culture acellula ire, de bactérie choisie parmi les bactéries anaérobies et les bactéries microaérophiles intracellulaires, dans lequel on cultive la dite bactérie dans ledit milieu de culture en présence d'oxygène, caractérisé en ce que l'on ajoute da ns le dit milieu de culture de l'acide urique à une concentration d'au moins 0, 1 g/L.
Les dites bactéries sont des bactéries dont la croissance est sensible à la teneur en oxygène, la croissance optimale de la dite bactérie exigeant une atmosphère d'incubation à teneur en oxygène relativement réduite par rapport à la teneur en oxygène de l'air.
Plus particulièrement, l'acide urique est mis en œuvre à une concentration d'au moins 0,2 g/L, de préférence de 0.4 à 2g/L, notamment de 0.2 à 0.5g/L, pour obtenir u n effet équivalent voire supérieur sur la croissance des dites bactéries sensibles à l'oxygène, en atmosphère aérobie et à des concentrations inférieures ou égales à celles de l'acide ascorbique et du glutathion seuls ou en mélange permettant un effet semblable sur la croissance des dites bactéries dans les mêmes atmosphères ambia ntes aérobies.
L'acide urique peut être mis en œuvre en mélange avec l'acide ascorbique et/ou le glutathion mais l'acide urique peut être mis en œuvre sans composé antioxydant additionnel dans le dit milieu de culture. Comme illustré dans les exemples de réalisation de la description détaillée ci-après:
- de très nombreuses bactéries anaérobies et microaérophiles ont une croissance améliorée en atmosphère aérobie avec l'acide urique en combinaison avec l'acide ascorbique et glutathion, et - pour certaines bactéries, les résultats de croissance avec de l'acide urique étaient supérieurs à ceux obtenus avec un mélange d'acide ascorbique et gl utathion, et
- certaines bactéries anaérobies et microaérophiles ont une croissance améliorée en atmosphère aérobie avec l'acide urique seul ou en combinaison avec l'acide ascorbique mais pas de croissance améliorée avec l'acide ascorbique seul .
De préférence, l'acide urique est mis en œuvre en combinaison avec l'acide ascorbique, de préférence encore avec l'acide ascorbique et le glutathion .
Plus particulièrement, ledit milieu de culture comprend les composants que l'on retrouve dans les milieux de base de culture aptes à cultiver une bactérie anaérobie, comprenant au moins:
- plusieurs sources de carbone, - une source de phosphore, de préférence un sel de phosphate,
- une source d'azote, de préférence un sel d'ammonium,
- au moins un sel de métaux choisi parmi K, Mg, Na, Ca, de préférence NaCI .
Plus particulièrement, ledit milieu culture est un milieu acellulaire est choisi parmi un milieu axénique constitué de substances chimiques ou biologiques défini qualitativement et quantitativement, et un milieu acel l ulaire comprenant un extrait de broyât ou lysat de tissu pluricellulaire. De préférence, ledit milieu comprend une substance tampon régulateur de pH pour ajuster le pH de 7 à 7,5. Plus particulièrement, ledit milieu de culture est un milieu acellulaire conventionnel de bactérie microaérophile ou anaérobie, de préférence un milieu comprenant des composant choisis parmi u n extrait de broyât ou lysat de tissu pluricellulaire, un digestat enzymatique, notam ment un digestat enzymatique de caséine, soja et/ou de tissu animal, une peptone, un extrait de levure, un sucre tel que dextrose ou gl ucose, un sel NaCI et/ou Na2P04.
Plus particulièrement encore, ledit milieu de culture est un filtrat de dit broyât ou lysat, notamment de tissu sanguin ou tissu de cœur et/ou poumon, lorsque ladite bactérie est une bactérie extracellulaire tel que les milieux dits bouillon de type cœur-cervelle, milieux Columbia à 5% de sang de mouton ou milieu Schaedier tels que décrits ci-après. D'autres milieux conventionnels appropriés sont les milieux Brucella ou Wilkins-Chagren . De tels milieux de culture acellulaires sont bien connus de l'homme de l'a rt. Ces milieux sont utilisables avec agar (solide ou semi-solide) ou sans agar (liquide) .
On peut utiliser en particulier des milieux de culture polyvalents pour microorganismes anaérobies, notamment le milieu de Schaedier. De tels milieux de culture acellulaires qu'ils soient liquides, solides ou biphasiques sont bien connus de l'homme de l'art. Plus particulièrement, le dit milieu de cu lture de bactéries anaérobies peut se trouver sous forme liquide ou solide ou semi-solide, notamment gélosé ou semi gélosé, gélosé ou semi gélosé. Plus particulièrement, on cultive la dite bactérie dans une dite atmosphère d'incubation comprenant une proportion molaire en oxygène supérieure à la tension maximale tolérée en l'absence d'acide urique ou de composé antioxydant pour un même niveau de croissance dans une même durée de culture. En pratique, pl us particulièrement encore, on cultive la dite bactérie dans une dite atmosphère d'incubation comprenant une proportion molaire en oxygène inférieure ou égale à 20%.
Plus particulièrement encore, on cultive lesdites bactéries selon la présente invention dans une atmosphère comprenant une teneu r en oxygène supérieure à 5%, notamment dans de l'air contenant 5% de C02 (soit une teneur en oxygène i nférieure à 16%), voire dans une atmosphère aérobie d'air ambiant.
Plus particulièrement encore, dans certains cas, com me explicité ci-après, on cultive la dite bactérie microaérophile intracellulaire da ns une dite atmosphère d'incubation microaérophile comprenant une proportion molaire en oxygène inférieure à 5%, de préférence de 2 à 5%, de préférence encore 2,5% .
Plus particulièrement, l'acide urique est mis en œuvre avec un composé antioxydant choisi de préférence parmi l'acide ascorbique et le glutathion (γ-L-Glutamyl-L-cystei nylglycine) voire l'hydrosulfure de sodium . L'acide ascorbique et le g lutathion sont préférés car ils sont capables à des doses précises de permettre la culture à un niveau d'oxygène plus élevé. Plus particulièrement encore, le dit composé antioxydant est mis en œuvre à une concentration de 1 mg/l à 2 g/1, de préférence au moins 100 mg/l .
De préférence, le dit composé antioxydant est l'acide ascorbique et/ou le gl utathion, de préférence à une concentration d'au moins 100 mg/l .
Plus particulièrement, la dite bactérie est une bactérie cultivable dans un dit milieu de culture en l'absence d'acide u rique ou de dit composé oxydant sous une atmosphère comprenant une proportion molaire en oxygène inférieure à la proportion molaire d'oxygène dans l'air, de préférence inférieure à 20%, et on cultive la dite bactérie en présence de dit acide urique dans le dit milieu de culture sous une atmosphère d'incubation comprenant une teneur en oxygène inférieure ou égale à la proportion d'oxygène dans l'air, de préférence inférieure à 20%, de préférence encore supérieure à 5%.
Selon un premier mode de réalisation, la dite bactérie est une bactérie anaérobie extracellulaire cultivable en atmosphère anaérobie en l'absence de dit acide urique ou de dit composé antioxydant, et l'on obtient une croissance de la dite bactérie en présence d'oxygène avec une proportion molaire inférieure ou égale à la proportion d'oxygène dans l'air.
Les bactéries anaérobies peuvent être des bactéries anaérobies strictes ou bactéries anaérobies facultatives aussi dénom mées aéro anaérobies c'est-à-dire des bactéries anaérobies qui tolèrent de l'oxygène mais n'en n'ont pas besoin pour croître ou bactéries aérobies qui supportent l'absence d'oxygène pour croître.
Parmi les bactéries anaérobies strictes, on cite plus particul ièrement les bactéries appartenant aux genres Acidaminococcus, Alistipes, Anaerococcus, Anaerosalibacter, Amazonia, Atopobium, Bifidobacterium, Blautia, Bacteroides, Barnesiella, Clostridium, Collinsella, Dielma, Eggerthella, Finegoldia, Flavonifractor, Fusobacterium, Gordonibacter, Guyana, Holdemania, Odoribacter, Parabacteroides, Parvimonas, Prevotella, Peptostreptococcus, Peptoniphilus, Porphyromonas, Prevotella, Solobacterium, Tissierella, Turicibacter, Ruminococcus et Veillonella.
Parmi les bactéries anaérobies facultatives, on cite plus particulièrement les bactéries appartenant aux genres Actinomyces, Aerococcus, Aeromonas, Aneurinibacillus, Bacillus, Bartonella, Cède ce a, Citrobacter, Corynebacterium, Derambacter, Eikenella, Enterobacter, Enterococcus, Escherichia, Eubacterium, Gardnerella, Gemella, Granulicatella, Hafnia, Haemophilus Kingella, Klebsellia, Lactobacillus, Lactococcus, Lysinibacillus, Morganella, Paenibacillus, Pasteurella, Pediococcus, Propionibacterium, Proteus, Providencia, Serra tia, Raoultella, Rothia, Staphylococcus, Streptococcus et Weissella.
Selon ce premier mode de réalisation plus particulier, on cultive une bactérie extracellulaire anaérobie notamment une bactérie du tube digestif chez l'homme ou l'animal dans un dit milieu acellulaire en présence d'u ne proportion molaire d'oxygène inférieure ou égale à celle de l'air et en présence de dit acide urique, de préférence en atmosphère d'air am biant.
Ce premier mode de réa lisation est ill ustré dans l'exemple ci- après par la culture aérobie de Bacteroides thetaiotaomicron en présence d'acide urique. II s'agit de bactéries anaérobies strictes du tube digestif, qui normalement ne se cultivent que dans des conditions strictement anaérobies. Ceci se traduit quand on inocule une dite bactérie dans un tube désoxygéné par le fait qu'un voile de culture n'apparaît que dans la partie basse du tube, tandis que la partie haute reste vierge de culture. Si on ajoute, de l'acide urique selon la présente invention à 200pg/ml, la culture se fait pratiquement jusqu'à la surface, voire complètement jusqu'à la surface à la concentration de 500pg/ml et encore mieux à 1 g/1 avec l'acide urique comme avec un mélange d'acide ascorbique à 500pg/ml et de gluthation à 500pg/m l . La bactérie produit en 24h des colonies après ensemencement en gélose. Dans un autre mode de réalisation, la dite bactérie est une bactérie microaérophile intracellulaire a pte à être cultivée dans un dit milieu de culture acell ulaire, sous atmosphère microaérophile avec une proportion molaire en oxygène de pas plus de 5%, de préférence pas plus de 2,5% dans l'atmosphère d'incubation, en l'absence d'acide urique ou de composé antioxydant, et on cultive la dite bactérie en présence d'acide urique dans un dit milieu de culture sous une atmosphère d'incubation microaérophile comprenant une proportion molaire en oxygène entre 2,5% et 20%, de préférence entre 5% et 16%, notamment de l'air éventuellement enrichi à 5% de C02. La présente invention s'applique plus particulièrement aux bactéries microaérophiles du fait, entre autres, de l'ajout dudit acide urique.
Parmi les bactéries microaérophiles intracellulaires, on cite plus particulièrement les bactéries des genres Coxiella, Mycobacterium, Helicobacter, Campylobacter et Vagococcus.
Ce mode de réalisation est illustré par la culture aérobie de la bactérie Mycobacterium tuberculosis et Helicobacter cinaedi cultivé à l'air ambiant.
D'autres espèces de bactéries microaérophiles, bactéries anaérobies strictes et des bactéries anaérobies facultatives citées à l'exemple 3 soit environ 250 espèces, ont été testées avec des croissances améliorées obtenues en aérobies dans des milieux de culture polyvalent additivés d'acide u rique.
D'autre caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la l umière de la description détai llée des exem ples de réalisations suivants.
Exemple 1 ; Culture de Bacteroides thetaiotaomicron avec un milieu Schaedler.
Une souche de bactérie anaérobie Bacteroides thetaiotaomicron a été obten ue au travers de l'étude "culturomics" des inventeurs (2) aussi accessible dans divers collections de dépôt (CSUR P766 aussi déposée selon le Traité de Budapest à la col lection de dépôt de microorganismes DSMZ (Allemagne) le 19 mai 2014 sous le numéro DSM 28808, d'autres souches sont aussi accessibles dans divers collections de dépôt telles que les souches DSM 2079, ATCC 29148 et NCTC 10582). Pour leur production en quantité suffisante, B. thetaiotaomicron a été cultivée en atmosphère anaérobie à 37°C dans u n milieu de culture polyvalent. On a testé le milieu de Schaedler (Référence 42098 ; BioMérieux, La Balmes-les-Grottes, France) approprié aussi pour la culture de bactéries anaérobies.
Le milieu Schaedler (commercialisé par Biomerïeux l'étoile, France) présentait la composition suivante pour 1 litre
- Digestat enzymatique de caséine 5.6 g
- Digestat enzymatique de tourteau de soja 1 9
- Digestat enzymatique de tissus animal 5 g
- Extrait de levure 5 g
- NaCI 1.7 g
- Phosphate de potassium 0.82 g
- Dextrose 5.82 g
- Tris (hydroxymethyl) Aminomethane 3 g
- Hemine 0.01 g - L-cysteine 0.4g
Ce milieu Schaedler a été com plémenté par l'ajout des composés hydrocarbonés à savoir de 1 g/L d'amidon de riz et de 1 g/L de glucose (Sigma-AIdrich, Saint-Quentin Fal lavier, France) et l 'ajout d'acide urique et composés anti-oxydants à savoir complémenté par l'ajout de :
- soit 0.1 g/L d'acide ascorbique (VWR International, Louvain, Belgique), 0, 1 g/L d'acide urique et 0, 1 g/L de gl utathion (Sigma- AIdrich, Saint-Quentin Fallavier, Fra nce),
- soit.0. 1 ; 0.2 ou 0.3 g/L d 'acide urique seul comme composé antioxydant.
L'ajout de composés hydrocarbonés amidon et gl ucose visait ici à pour produite H2 pour contrôler la croissance de la bactérie.
La résazurine est mise en œuvre com me un i ndicateur d'oxydo- réduction à une concentration de 0, lmg/mL pour contrôler la présence d'oxygène (la résazurine oxydée a u ne couleur rose, et devient transparente en l'absence d'oxygène) .
La culture aérobie en air ambiant B. thetaiotaomicron a été effectuée par l'inoculation de 105 organismes/m L dans un récipient incubé à 37°C contenant le milieu de culture complémenté par l'ajout de composés anti-oxydants et composés source de carbone. Le pH a été ajusté à 7,5 par ajout de KOH 10M .
La souche a été cultivée pa rallèlement en condition aérobie et par l'inoculation de 105 organismes/m L avec le milieu de culture complémenté selon la présente invention et avec le milieu Schaedler complémenté par les composés hydrocarbonés mentionnés ci-dessus mais en revanche sans composés anti-oxydants.
Le milieu de culture supplémenté en ajoutant 1 g/L d'amidon de riz et de 1 g/L de glucose inoculé en anaérobie par 108 cel lules/L de B. thetaiotaomicron a été introduit com me témoi n positif et pour vérifier la production de H2 par B. thetaiotaomicron en culture anaérobie. Ces contrôles ont été effectués en parallèle en atmosphère ambiante (aérobie) . Le milieu de culture non-inoculé a été introduit comme contrôle négatif.
La croissance de B. thetaiotaomicron a été évaluée quotidiennement par la production d'hydrogène. La mesure d'hydrogène a été réalisée l'aide d'un chromatographe en phase gazeuse GC-8A (Shimadzu, Champs-sur-Marne, France) équipé d'un détecteur de conductivité thermique et une Chromosorb WAW 80/100 mail les colonne SP100 (Alltech, Carquefou, France) . L'azote N2 à une pression de 100 kPa a été utilisé comme gaz porteur. Le détecteur et les températures de l'injecteur étaient de 200°C et la température de la colonne était de 150°C. Les contrôles négatifs sont restés négatifs sans croissance survenant après une semaine d'incubation indiquant que les résultats rapportés ici ne sont pas simplement le résultat d'une contamination par d'autres microorganismes.
Les contrôles positifs étaient positifs une production d'hydrogène observée dans la culture anaérobie B. thetaiotaomicron. La culture de B. thetaiotaomicron inoculée en aérobie sans composés antioxydants est restée négative et l'hydrogène n'a pas été produit.
Après une incubation de 24 heures à 37°C en air ambiant (dans des conditions aérobies), u n milieu de culture sans composés anti- oxydants a conservé sa couleur rose indiquant la présence d'oxygène et la culture est restée négative pour la souche testée. Le milieu de culture aérobie avec l'acide urique ou les dits composés anti-oxydants est devenu transparent indiquant l'a bsence d'oxygène.
Les cultures de B. thetaiotaomicron réalisées dans des conditions aérobies avec l'acide urique ou les dits composés anti-oxydants donnaient toutes une culture positive pour B. thetaiotaomicron avec production d'hydrogène après une incubation de 24 heures.
Les résultats de croissance avec de l'acide urique sans dit composé antioxydant étaient équivalents à ceux obtenus avec un mélange d'acide urique avec d'acide ascorbique et de glutathion lorsque la concentration en acide urique seul était d'au moins 0.2 g/L et supérieur avec 0.3g/L d'acide urique seul .
Ces résultats indiquent qu'i l est possible de cultiver à l'air ambiant (condition aérobie) des bactéries réputées strictement anaérobies, dans un milieu approprié contenant un mélange approprié d'antioxydants et en particulier avec de l'acide uriq ue seul sans antioxydant.
La procédure de culture est réalisée sur des tubes de milieu de culture du type Schaedler avec 0,2% d'agar (Biomerieux, Marcy l'étoile, France) .
Le milieu Schaedler présentait la composition suivante pour 1 litre :
- Digestat enzymatique de caséine 5.6 g
- Digestat enzymatique de tourteau de soja i g
- Digestat enzymatique de tissus animal 5 g
- Extrait de levure 5 g
- NaCI 1.7 g
- Phosphate de potassium 0.82 g
- Dextrose 5.82 g
- Tris (hydroxymethyl) Aminomethane 3 g
- Hemine 0.01 g
- L-cysteine 0.4g
- Agar (milieu semi-solide) 0.2%
Pour chaque bactérie on inocule 2 tubes, un tube régénéré sans acide urique et un tube régénéré dans lequel on ajoute 500pg/ml ou lmg/ml d'acide urique. Pour régénérer le tube, on le place au bain marie à 100°C jusqu'à ce que toutes les bulles de gaz visibles dans le milieu aient disparu . Ensuite, pour le tube avec acide urique, on attend le refroidissement du tube à 50°C (schématiquement jusqu'à pouvoir le tenir dans la main sans se brûler) et on ajoute la suspension d'acide urique. On homogénéise ensuite par retournement (3-4 pour assurer un bon mélange) . Pour chaque bactérie un inoculum de 107 bactéries /m l a été inoculé sur toute la hauteur des tubes Schaedler 0,2%, un normal et un complémenté en acide urique. Les tubes ont été incubés à 37°C dans une étuve anaérobie stricte durant 24-48 heures.
Dans ces conditions, il a été observé une croissance habituel le des bactéries depuis le fond du tube jusqu'à 1, 5 cm en dessous de la surface du milieu en absence d'acide urique témoignant du caractère anaérobie de cette bactérie, et une croissance jusqu'à la surface en présence de 500 Mg/ml (28 X 10"4 M ) d'acide urique indiquant une croissance en présence d'une tension d'oxygène plus grande qu'en l'absence d'acide urique.
Des tests en tous points identiques ont été réalisés soit avec du gluthation ou de l'acide ascorbique à 500pg/ml . Avec l'acide urique seul, la croissance est identique à ce qui est observé avec l'acide ascorbique.
Enfin, afin de valider définitivement la capacité de ce composé acide urique à autoriser la croissance de bactéries anaérobies strictes en présence d'oxygène, on a préparé des milieux solides constitués de milieu Columbia avec 5% de sang de sang de mouton dans lesquels ont été ajouté de l'acide urique à 500pg/ml ou lmg/m l, ou un mélange gluthation à 500 g/m l + acide ascorbique à 500pg/m l ou de l'acide ascorbique à lmg/ml . Ces géloses inoculées de bactéries anaérobies ont été incubées soit en air ambiant soit en air ambiant enrichi de 5% de C02. La meilleure pousse ayant été obtenue avec de l'acide urique ou l'acide ascorbique à lmg/ml indifféremment.
Ces tests ont été réalisés avec un milieu Col umbia 5% de de mouton présentant la composition suivante pour 1 litre:
-Digestat enzymatique de caséine 5 g -Digestat enzymatique de tissus animal 8 g
-Peptone enrichie de levure 10 g
-Amidon de maïs 1 g
-NaCI 5 g
-Agar (si milieu gélosé) 14 g -Sang de mouton 5%
Exemple 2 : Effet de l'acide urique sur la culture Helicobactex cinaedi.
On a utilisé une souche DSMZ 5359 cultivée da ns le même milieu de culture Schaedler que décrit à l'exemple 1 et dans les mêmes conditions opératoires d'aérobiose aux mêmes concentrations d'acide urique excepté que l'on n'a pas complémenté le milieu de culture par l'ajout de composés hydrocarbonés amidon et glucose.
La bactérie a été établie en culture en 24h et confirmée par spectrométrie de masse de type Maldi tof.
Exemple 3 : Effet de l'acide urique sur la croissance de Mycobacterium tuberculosis.
Dans cet exemple, les inventeurs ont com paré la croissance de la mycobactérie Mycobacterium tuberculosis, agent de la tuberculose humaine et animale, sur trois milieux solides, dans des conditions identiques de température (37°C) et d'atmosphère (5% C02) . La souche type M. tuberculosis H37Rv calibrée à 107 unités formant colonies (CFU) et quatre souches cliniques de M. tuberculosis calibrées à 105 CFU ou 106 CFU ont été inoculées da ns des boîtes de Pétri stériles dans un milieu MOD4 décrit ci-après enrichi en acide ascorbique à 100 mg/L (MOD5), ou en acide urique à 100 mg/L (MOD6) ou en acide urique à 200 mg/L (MOD7). Cinq boîtes ont été ensemencées pour chaque condition .
Les résultats des temps de détection à l'œil nu de colonies en jours sont présentés dans le tableau ci-après.
Ces résultats montrent qu'il n'y a une amélioration de croissance significative par ajout d'acide urique ou acide ascorbique et pas de différence significative dans la croissance de M. tuberculosis entre l'acide ascorbique et l'acide urique, montrant la possibilité d'utiliser l'acide urique com me antioxydant pour la culture en atmosphère aérobie des mycobactéries, à une concentration au moins égale à 100 mg/L.
Patient 1 : 10? UFC/mL MOD 5 MOD 6 MOD 7 j
Moyenne
4 4,25 3,25
(jours)
Écart-type 0,81649658 1,25830574 1,89296945
Patient 2 : 10 UFC/mL MOD 5 MOD 6 MOD 7
Moyenne
6,5 4,5 5,25 (jours)
Écart-type 1,29099445 1,29099445 0,5
i
Patient 3 : ÎO UFC/mL MOD 5 MOD 6 MOD 7
Moyenne
2,25 2,75 4,75 (jours)
Ecrat-type
0,95742711 0,95742711 1,5
Patient 4 ; 105 UFC/mL MOD 5 MOD 6 MOD 7
Moyenne
5,75 0,5 3,75 (jours)
r
Écart-type 1,5 0,57735027 1,5
j
Les résultats permettent de conclure à une détection plus rapide des colonies par ordre décroissant avec une détection à :
- t= environ en moyenne 3 à 5 jours pour un milieu MOD6 ou MOD 7 (acide urique) ou MOD 5 (acide ascorbique) indifféremment, et - t= environ 8.5 à 10 jours (107cfu/mL) pourMOD4. Tableau A : composition de Milieu MOD4
Composants Quantité
Sulfate de magnésium 0.05g/L
Citrate d'ammonium ferrique 0.04 g/L
Citrate de sodium 0.4 g/L
Sulfate d'ammonium 0.5 g/L
Glutamate de monosodium 0.5 g/L
Phosphate de disodium 1.5 g/L
Phosphate de monopotassium 1.5 g/L
Tween 80 5 g/L
Pyridoxine 1.0 mg/L
Sulfate de zinc 1.0 mg/L
Sulfate de cuivre 1.0 mg/L
Biotine 0.5 mg/L
Chlorure de calcium 0.5 mg/L
OADC 100.0 ml/L
Glycérol 5.0 ml/L
Sang de mouton 50 ml/L
Sérum de veau feotal décomplémenté 150 ml/L
Lecithine d'œuf 5g/L
Extrait de levure 1.0 g/L digestat de caséine pancréatique 1.0 g/L
Glucose 2.0 g/L
Albumine de sérum bovin 1.65 g/L
Nicotinamide Adenine Dinucleotide (NAD) 22 g/L
Vinylpyrrolidine Copolymère 2 ml/L
Acide citrique 101 mg/L
Hémine 330 pg/L
Agar 13 g/L Exemple 4 : Effet de l'acide urique dans un milieu solide Shaedler sur la croissance d'un panel de bactéries.
1) Les bactérie anaérobies et microaérophiles suivantes ont été cultivées en aérobie (sous atmosphère d'air ambiant) à 37°C avec des 5 croissances améliorées dans un milieu de culture solide consistant en un milieu Schaedler à 0.2% agar (Sigma-AIdrich, Saint-Quentin Fallavier, France) décrit à l'exemple 1 supplémenté avec lg/L acide ascorbique (VWR, Leuven, Belgium) + 100 mg/L de gl utathion (Sigma, Quentin Fallavier, France) + 400 mg/L d'acide urique (Sigma, Quentin 10 Fallavier, France).
Le pH était ajusté à 7.5 avec 10M KOH avant passage dans l'autoclave. Les composés antioxydants étaient dissous dans 10 mL d'eau distil lée, filtré avec un microfiltre de 0.2 pm puis ajouté dans le milieu autoclavé à 50°C pour être stérîlé avant d'être refroidi sous 15 forme solide en gélose.
Dans les tableaux ci-après les temps de croissance correspondent à l'apparition des premières colonies visibles à l'œil nu .
Tableau 1A: bactéries anaérobies strictes (82 espèces et 145 souches).
Nombre de Temps de
Phylum Genre espèces
souches testées Croissance
Actinobacteria Bifidobacterium Bifidobacterium adolescentis 1 72H
Bifidobacterium brevis 1 72H
Bifidobacterium catenulatum 1 72H
Bifidobacterium longum 1 72H
Bifidobacterium pseudocatenulatum 1 72H
Collinsella Collinsella aerofaciens 1 96H
Collinsella massilioamazoniensis 2 72H
Collinsella tanakaei 2 96H
Eggerthella Eggerthella lenta 2 48H
Gordonibacter Gordonibacter pamelaeae 1 72H
Bacteroidetes Alistipes A listipes finegoldii 2 96H
Alistipes indistinctus 4 96H
Alistipes putredinis 1 96H
Alistipes shahii 2 96H Bacteroides Bacteroides caccae 6 7211
Bacteroides fragilis 2 48H
Bacteroides intestnalis 5 48H
Bacteroides nordii 1 48H
Bacteroides ovatus 3 48H
Bacteroides stercoris 1 48H
Bacteroides thetaiotaomicron 1 48H
Bacteroides timonensis 1 72H
Bacteroides uniformis 1 48H
Bacteroides vulgatus 1 48H
Barnesiella Barnesiella intestinihominis 2 48H
Odoribacter Odoribacter splanchnicus 1 48H
Parabacteroides Parabacteroides distasonis 1 48H
Parabacteroides johnsonii 1 48H
Parabacteroides merdae 1 48H
Porphyromonas Porphyromonas asaccharolityca 1 72H Prevotella Prevotella buccalis 1 72H
Firmicutes Acidaminococcus Acidaminococcus intestini 2 48H
Amazonia Amazonia massiliensis 1 48H
Anaerococcus Anaerococcus vaginalis 7 72H
Anaerosalibacter Anaerosalibacter bizertensis 2 72H
Anaerosalibacter massiliensis 3 72H
Blautia Blautia coccoides 1 96H
Clostridium Clostridium amazonitimonense 1 72H
Clostridium amylolyticum 1 72H
Clostridium anorexicamassiliensis 2 72H
Clostridium anorexicus 3 72H
Clostridium baratii 1 72H
Clostridium bartlettii 1 72H
Clostridium bifermentans 1 72H
Clostridium bolteae 1 72H
Clostridium butyricum 4 72H
Clostridium clostridioforme 2 72H
Clostridium cochlearium 1 72H
Clostridium dakarense 1 72H
Clostridium difficile 1 96H
Clostridium glycolicum 3 72H
Clostridium hathewayi 3 48H
Clostridium jeddahense 2 72H
Clostridium lituseburense 1 72H
Clostridium paraputrificum 3 72H
Clostridium perfringens 2 72H
Clostridium ramosum 1 72H Clostridi m rubiinfantis 1 72H
Clostridi m sartagoforme 1 72H
Clostridium sénégalaise 4 72H
Clostridium sordellii 4 48H
Clostridium sporogenes 3 72H
Clostridium subterminale 3 72H
Clostridium symbiosum 1 72H
Clostridium tertium 2 48H
Diel a Dielma fastidiosa 1 48H
Finegoldia Finegoldia magna 1 48H
Flavonifractor Flavonifractor plautii 2 48H
Guyana Guyana massiliensis 1 72H
Holdemania Holdemania massiliensis 1 72H
Parvimonas Parvimonas micra 1 72H
Peptoniphilus Peptoniphilus asaccharolyticus 3 72H
Peptoniphilus harei 1 72H
Peptoniphilus senegalensis 2 72H
Peptostreptococcus asaccharolyticus 1 72H
Ruminococcus Ruminococcus gnavus 1 48H
Tissierella Tissierella praeacuta 1 72H
Turicibacter Turicibacter sanguinis 1 72H
Veillonella Veillonella dispar 2 48H
Veillonella parvula 1 48H
Fusobacteria Fusobacterium Fusobacterium necrophorum 2 48H
Fusobacterium nucleatum 1 48H
Tableau 1B: bactéries microaéroph i les (7 espèces, 7 souches testées)
Temps de
Phylum Genres espèces Nombre de souches croissance
Actinobacteria Mycobacterium Mycobacterium smegmatis 1 96H
Proteobacteria Campylobacter Campylobacter coli 1 48H
Campylobacter concisus 1 48H
Campylobacter cuniculorum 1 48H
Campylobacter fétus 1 48H
Campy lobacter je juni 1 48H
Firmicutes Vagococcus Vagococcus fluvialis 1 48H Tableau 1C: bactéries anaérobies facultatives (154 espèces, 421 souches)
Nombre de Temps de
Phylum Genres espèces
souches croissance
Actinobacteria Actinomyces Actinomyces neuii 2 48H
Actinomyces oris 4 48H
Actinomyces radingae 1 48H
Actinomyces urogenitalis 1 48H
Corynebacteriuin Corynebacterium accolens 2 48H
Corynebacteriuin afermentans 5 48H
Corynebacterium amycolatum 3 48H
Corynebacteriuin aurimucosum 1 48H
Corynebacterium efficiens 1 48H
Corynebacteriu jeikeiuin 2 48H
Corvnebacterium minutissimum 1 48H
Corynebacterium propinquum 1 48H
Corynebacterium pseudodiphtheriticum 4 48H
Corynebacterium simulans 2 48H
Corynebacterium striatum 2 48H
Corynebacterium suicordis 1 48H
Corynebacterium urealyticum 2 48H
Corynebacterium ihumii 1 48H
Coi nebacterium tuberculosteariciim 3 48H
Corynebacterium ureicelerivorans 1 48H
Dermabacter Dermabacter hominis 2 48H
Gardnerella Gardnerella vaginalis 2 24H
Propionibacterium Propionibacterium acnés 4 24H
Propionibacterium avidum 2 24H
Rothia Rothia aeria 1 48H
Rothia dentocariosa 2 24H
Firmicutes Aerococcus Aerococcus urinae 2 48H
Aerococcus viridans 2 48H
Aneurinibacillus Aneurin ibacillus migulanus 1 24H
Bacillus Bacillus amyloliquefaciens 2 36H
Bacillus aquimaris 1 48H
Bacillus arsenicus 1 24H
Bacillus badins 1 24H
Bacillus bataviensis 1 24H
Bacillus cereus 7 24H
Bacillus circulons 3 24H
Bacillus clausii 1 24H
Bacillus coagulons 1 24H
Bacillus firmus 2 24H
Bacillus flexus 4 24H Bacillus koreensis 1 24H
Bacillus lentus 1 24H
Bacillus liqueniformis 4 24H
Bacillus massilioamazoniensis 1 24H
Bacillus megaterium 1 24H
Bacillus oleronius 1 24H
Bacillus pumilus 3 24H
Bacillus rubiinfantis 1 24H
Bacillus siralis 4 24H
Bacillus subtilis 6 24H
Bacillus thermoamylovorans 3 24H
Bacillus vallismortis 1 24H
Enterococcous Enterococcus avium 9 24H
Enterococcus casseliflavus 3 24H
Enterococcus cecorum 1 24H
Enterococcus dispar 2 24H
Enterococcus durons 9 24H
Enterococcus faecalis 13 24H
Enterococcus faecium 10 24H
Enterococcus gallinarum 10 24H
Enterococcus hirae 8 24H
Enterococcus malodoratus 2 24H
Enterococcus phoeniculicola 1 24H
Enterococcus pseudoavium 1 24H
Enterococcus raffinosus 1 24H
Eubacterium Eubacterium limosum 2 24H
Eubacterium tenue 3 24H
Gemella Gemella morbillorum 2 24H
Granulicatella Granulicatella elegans 1 72H
Lactobacillus Lactobacillus agilis 3 24H
Lactobacillus fermentum 3 24H
Lactobacillus gasseri 2 24H
Lactobacillus johnsonii 1 24H
Lactobacillus kalixensis 1 24H
Lactobacillus mucosae 2 24H
Lactobacillus paracasei 2 24H
Lactobacillus plantarum 2 24H
Lactobacillus reuteri 3 24H
Lactobacillus sakei 4 24H
Lactococcus Lactococcus garvieae 1 24H
Lactococcus lactis 1 24H
Lysinibacillus Lysinibacillus boronitolerans 2 24H
Lysinibacillus fusiformis 1 24H Lysinibacillus meyeri 1 2 I I
Lysinibacillus sphaericus 2 2411
Paenibacillus Paenibacill s lactis 2 48 H
Pediococcus Pediococcus acidilactici 1 48 H
Pediococcus pentosaceus 2 48 H
Staphylococcus Staphylococcus aureus 4 24H
Staphylococcus capitis 6 2411
Staphylococcus caprae 4 24H
Staphylococcus colviii 7 2411
Staphylococcus epidermidis 2 24H
Staphylococcus faecalis 2 24 H
Staphylococcus haemolyticus 6 24 H
Staphylococcus hominis 3 24H
Staphylococcus intermedius 3 2411
Staphylococcus lugdunensis 6 24 H
Staphylococcus pasteuri 3 24H
Staphylococcus pettenkoferi 2 2411
Staphylococcus saprophyticus 3 24H
Staphylococcus schleiferi 2 24H
Staphylococcus simulons 5 2411
Staphylococcus warneri 4 24 H
Streptococcus Streptococcus agalactiae 3 24 H
Streptococcus anginosus 4 2411
Streptococcus constellatus 2 2411
Streptococcus cristatus 3 24H
Streptococcus dysgalactiae 5 24H
Streptococcus equinus 4 2411
Streptococcus gallolyticus 2 2411
Streptococcus gordonii 2 24 H Streptococcus intermedius 3 2411 Streptococcus lutetiensis 7 24 H
Streptococcus mitis 5 24 H
Streptococcus oralis 5 24H
Streptococcus parasanguinis 4 24H
Streptococcus pneumoniae 3 24ΙΊ
Streptococcus pyogenes 1 24 H
Streptococcus salivarius 3 2411
Streptococcus sanguinis 2 48H Weissella Weissella cibaria 2 48H
Proteobacteria Aeromonas Aeromonas urinae 2 48H
Aeromonas hydrophila 1 48H
Bartonella Bartonella henselae* 1 120H
Cedecea Cedecea lapagei 1 2411 Cedecea neteri 1 24H
Citrobacter Citrobacter braakii 4 24H
Citrobacter freundii 2 24H
Citrobacter koseri 3 24H
Citrobacter sedlakii 1 24H
Enterobacter Enterobacter aerogenes 4 24H
Enterobacter asburiae 2 24H
Enterobacter cloacae 5 24H
Enterobacter kobei 2 24H
Eikenella Eikenella corrodens 1 48H
Escherichia Escherichia coli 10 24H
Hafnia Hafnia alvei 2 48H
Haemophilus Haemophilus influenzae* 3 48H
Haemophilus parainfluenzae* 3 48H
Kingella Kingella kingae 1 24H
Klebsiella Klebsiella oxytoca 2 24H
Klebsiella pneumoniae 3 24H
Morganella Morganella morganii 2 48H
Pasteurella Pasteurella multocida 3 48H
Prote s Proteus mirabilis 2 24H
Proteus vulgaris 3 24H
Providentiel Providencia heimbachae 1 24H
Providencia rettgeri 2 24H
Providencia stuartii 2 24H
Serratia Serratia liquefaciens 2 24H
Serratia marcescens 3 24H
Serratia ureilytica 1 24H
Raoultella Raoultella ornithinolytica 1 48H
2) 13 bactéries anaérobies et 1 bactérie microaérophile (Campylobacter) ont été testée comparativement cultivées en aérobie (sous atmosphère d'air ambiant) à 37°C avec des croissances améliorées dans un milieu de culture solide consistant en un milieu Schaedier à 0.2% agar non supplémenté ou supplémenté avec :
- soit lg/L acide ascorbique,
- soit 400 mg/L d'acide urique, et - soit lg/L acide ascorbique + 400 mg/L d'acide urique.
Les bactéries testées étaient : Bacteroides ovatus, Clostidium massilioamazoniensis, Anaerosalibacter bizertensis, Clostrididum paraperfringens, Clostridium sporogenes, Peptoniphilus harei, Finegoldia magna, Turicibacter sanguinis, Propionibacterium acnés, Bacteroides timonensis, Eikenella corrodens, Clostridium gtycolicum, Bifidobacterium b revis, Campylobacter ureolyticus.
Les résultats rapportés au tableau 2 montrent que 5 bactéries soit environ 1/3 des bactéries n'ont une croissance améliorée qu'avec l'acide urique (AU) seul ou en combinaison avec l'acide ascorbique (AA) et pas avec l'acide ascorbique seul .
Dans le tableau 2 : - «o» signifie: aucune colonie détectée à l'œil nu à t=96h, et -« positive » signifie: colonies détectée à l'œil nu à t=96h . Tableau 2
Exem ple 5 : Effet de l'acide uriq ue da ns un milieu liq uide d'hémoculture sur la croissance de bactéries anaérobies.
On a réalisé des hémocultures de bactéries anaérobies strictes inoculée à 105 cfu/m L sur milieu de culture : BD BACTEC™ Plus Aerobic/F. comprenant 25 ml de bouillon Trypticase soja enrichi, avec résines (Référence : 442192) à 37°C en atmosphère aérobie avec acide urique à 400mg/L et sans acide urique et en atmosphère anaérobie sans acide urique. La détection de la croissance se faisait par détection de production de C02 avec le dispositif BD BACTEC™ 9000 Séries Instrumented Blood Culture Systems.
Les résultats comparatifs de croissance rapportés au tableau B ci-après établissent que la détection de croissance est légèrement plus rapide en atmosphère aérobie avec acide urique (« AU » dans le tableau B) à 400mg/L qu'en atmosphère anaérobie et considérablement plus rapide qu'en aérobie sans acide urique.
Tableau B
Temps de Temps de Temps de
croissance croissance croissance Moyennes écart types
Clostridium Aérobie
tertium avec AU 4h 5h 4h 4,33333333 0,57735027
Clostridium Aérobie
tertium Sans AU 96h 96h 96h 96 0
Clostridium Anaérobie
tertium Sans AU 6h 4h 6h 5,33333333 1,15470054
Clostridium Aérobie
perfringens avec AU 7h 5h 6h 6 1
Clostridium Aérobie
perfringens Sans AU 96h 96h 96h 96 0
Clostridium Anaérobie
perfringens Sans AU 5,5h 4h 4,5h 4,66666667 0,76376262
Clostridium Aérobie
butirycum avec AU 8h 6h 6h 6,66666667 1,15470054
Clostridium Aérobie
butirycum Sans AU 96h 96h 96h 96 0
Clostridium Anaérobie
butirycum Sans AU 4h 6h 5h 5 1 Références bibliographiques
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Claims

015/162377 REVEN DICATIONS
1. Procédé de culture in vitro en milieu de cultu re acellulaire, de bactérie choisie parmi les bactéries anaérobies et les bactéries microaérophiles intracell ulaires, dans lequel on cultive la dite bactérie dans ledit m ilieu de culture en présence d'oxygène, caractérisé en ce que l'on ajoute dans le dit milieu de culture de l'acide u rique à une concentration d'au moins 0, 1 g/L.
2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'acide urique est mis en œuvre à une concentration d'au moi ns 0, 2 g/L, de préférence encore de 0,4 à 2 g/L.
3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'acide urique est mis en œuvre sans composé antîoxydant additionnel dans le dit milieu de culture.
4. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que l'acide urique est mis en œuvre avec au moins un composé antioxydant additionnel dans le dit milieu de culture.
5. Procédé selon la revendication 4 caractérisé en ce que l'acide urique est mis en œuvre en combinaison avec au moins u n composé antioxydant additionnel choisi parm i l'acide ascorbique et le gl utathion, de préférence l'acide ascorbique.
6. Procédé selon la revendication 5 caractérisé en ce q ue l'acide urique est mis en œuvre en combinaison avec l'acide ascorbique et le glutathion .
7. Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le dit milieu acel lulaire est choisi parmi :
- un milieu axénique constitué de substances chimiques ou biologiques défini qualitativement et quantitativement, et - un milieu comprenant un extrait de broyât ou lysat de tissu pluricellulaire.
8. Procédé selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que l'on cultive la dite bactérie dans une atmosphère comprenant une proportion molaire en oxygène supérieure à la tension maximale tolérée en l'absence d'acide urique ou de composé antioxydant pour un même niveau de croissance dans une même durée de culture.
9. Procédé selon l'une des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que la dite bactérie est une bactérie cultivable dans un dît milieu de culture en l'absence d'acide urique ou de composé antioxydant sous une atmosphère comprenant une proportion molaire en oxygène inférieure à la proportion molaire d'oxygène dans l 'air, de préférence inférieure à 20%, et on cultive la dite bactérie en présence de dit acide urique dans le dit milieu de culture sous une atmosphère d'incubation comprenant une teneur en oxygène inférieure ou égale à la proportion d'oxygène dans l'air.
10. Procédé selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que la dite bactérie est une bactérie anaérobie stricte ou aéro- anaérobie.
11. Procédé selon l 'une des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que la dite bactérie est une bactérie anaérobie extracellulaire cultivable en atmosphère anaérobie en l'absence d'acide urique ou de composé antioxydant, et l'on obtient une croissance de la dite bactérie avec un milieu de cultu re comprenant de l'acide urique en présence d'oxygène avec une proportion molai re inférieure ou égale à la proportion d'oxygène dans l 'air.
12. Procédé selon l'une des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que l'on cultive une bactérie extracellulaire anaérobie dans un dit milieu acellulaire, ledit milieu de culture est un milieu acellulaire conventionnel de bactérie anaérobie, de préférence un milieu comprenant des com posant choisis parmi un extrait de broyât ou lysat de tissu pluricellulaire, un digestat enzymatique, notam ment un digestat enzymatique de caséine, soja et/ou de tissu animal, une peptone, un extrait de levure, un sucre tel que dextrose ou g lucose, un sel NaCI et/ou Na2P04.
13. Procédé de culture selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que la dite bactérie est une dite bactérie microaérophile i ntracellulaire.
14. Procédé de culture selon l'une des revendications 13 caractérisé en ce que la dite bactérie est apte à être cultivée dans un milieu de culture acellulaire, sous atmosphère microaérophile avec une proportion molaire en oxygène de pas pl us de 5%, de préférence pas plus de 2.5% dans l'atmosphère d'incubation, en l'absence de dit composé antioxydant, et on cultive la dite bactérie en présence de dit composé oxydant dans un dit milieu de culture sous une atmosphère d'incubation comprenant une proportion molaire en oxygène entre 2,5% et 20%, de préférence entre 5% et 16%.
15. Procédé selon l'une des revendications 1 à 13 caractérisé en ce qu'on cultive la bactérie m icroaérophile intracellulaire sous une atmosphère d'air ambiant.
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