ES2198718T3 - Adn codificador de una sintasa de quitina de artropodo. - Google Patents

Adn codificador de una sintasa de quitina de artropodo.

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Abstract

Ácido nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos que codifica al menos una parte de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos, en el que la parte es un fragmento biológicamente activo o inactivo que es esencial para la actividad del enzima.

Description

ADN codificador de una sintasa de quitina de artropodo.
La presente invención se refiere a los ácidos nucleicos que comprenden una secuencia de nucleótidos codificadora de por lo menos una parte de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos, y a un método para desarrollar dichos inhibidores.
La quitina es un homopolímero de carbohidrato de N-acetilglucosamina \beta (1->4) ligada. La quitina es un polisacárido estructural que ocurre principalmente en la pared celular de algunos hongos y en el exoesqueleto de los artrópodos.
La quitina se sintetiza por la acción de enzimas especializados, llamados sintasas de quitina, que catalizan la polimerización de los residuos de
\break
N-acetilglucosaminilo en quitina a partir de 5'-difosfo-N-acetilglucosamina de uridina.
Las sintasas de quitina pertenecen a un grupo de enzimas que catalizan la síntesis de los polisacáridos estructurales lineales y son llamadas colectivamente glicosiltransferasas procesadoras. Las estructuras primarias de las glicosil transferasas procesadoras conocidas (es decir, las sintasas fúngicas de quitina, las sintasas de celulosa procariótica y eucariótica, las sintasas de hialuronano procariótica y eucariótica, las sintasas de alginato procarióticas y las sintasas rizobianas de quito-oligosacárido) presentan algunas similitudes de secuencia que sugieren que estos enzimas utilizadores de azúcar UDP presentan un modo de acción similar. A pesar de las similitudes, las diversas glucosil transferasas procesadoras presentan diferencias sustanciales principalmente en sus especificidades de sustrato, sus parámetros de activación y de inhibición, el tamaño y la conformación de sus productos.
Dado que varias especies de artrópodos están consideradas como plagas de plantas y animales, la inhibición de la maquinaria de síntesis de la quitina ha sido contemplada en particular como un objetivo atractivo para el desarrollo de un agente de control de plagas.
Los inhibidores de la síntesis de la quitina en insectos conocidos, ya sea naturales o sintéticos, entran dentro de dos categorías principales: (a) inhibidores directos de la síntesis de la quitina tales como antibióticos Streptomyces Nikkomicinas y Polioxinas y (b) reguladores del crecimiento de los insectos que interfieren indirecta pero drásticamente con la síntesis de la quitina en insectos, tales como los derivados de benzoilfenil-urea.
Aunque los estudios para la identificación de estos compuestos tienen una historia de varias décadas, todavía no se comprende adecuadamente la acción de los inhibidores de la síntesis de la quitina. Esto se debe tanto a la disponibilidad limitada de preparaciones apropiadas de enzimas de sintasa de quitina en los insectos como a la falta de un buen conocimiento molecular de la síntesis de la quitina y su regulación en los insectos.
Por tanto, el problema técnico que subyace en la presente invención es proporcionar nuevos inhibidores para la síntesis de la quitina con el fin de prevenir los daños causados por los artrópodos.
La solución al problema técnico planteado es conseguida previendo las realizaciones caracterizadas en las reivindicaciones.
En particular, se proporciona un ácido nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos codificadora de por lo menos una parte de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos, en el que la parte es un fragmento biológicamente activo o inactivo que resulta esencial para la actividad del enzima.
Los términos ``ácido nucleico'' y ``secuencia de nucleótidos'' se refieren a moléculas de ácido endógenamente expresadas, semisintéticas, sintéticas o químicamente modificadas de desoxirribonucleótidos y/o ribonucleótidos. En una realización preferida, de la presente invención, la secuencia de nucleótidos incluye secuencias como se ha ilustrado en las figuras 1 (SEQ ID Nº. 1), 2 (SEQ ID Nº. 3) y 3 (SEQ ID Nº.5), derivados alélicos de dichas secuencias y secuencias de ADN degeneradas como resultado del código genético para dichas secuencias. También incluye secuencias de ADN hibridadoras bajo condiciones estrictas con la secuencia de nucleótidos definida más arriba. Aunque dichas secuencias alélicas, degeneradoras e hibridadoras pueden tener divergencias estructurales debidas a mutaciones (que ocurren naturalmente), tales como pequeñas borraduras o sustituciones, usualmente todavía mostrarán esencialmente las mismas propiedades útiles, permitiendo su uso básicamente en las mismas aplicaciones.
En una realización preferida la presente invención se refiere a una secuencia de ADN aislada que codifica una parte de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos. Realizaciones específicas incluyen secuencias de ADN que se caracterizan por la habilidad para hibridar con la secuencia de ADN representada en la figura 1 a, por ejemplo, 55^{o}C o codificar una reacción de polipéptido con un anticuerpo contra el polipéptido que contiene la secuencia de aminoácidos deducida en las figuras 1 a 3. La invención se refiere también a una construcción de expresión de ADN que contiene las secuencias de ADN aisladas y que codifica un enzima que tiene la especificidad descrita más arriba.
La presente invención se refiere también a moléculas recombinantes que comprenden el ácido nucleico como se ha descrito más arriba opcionalmente ligado a una secuencia de control de expresión. Tales vectores pueden ser útiles en la producción de por lo menos dicha parte de un enzima en células estables o transformadas transitoriamente. Se puede usar varios sistemas de animales, plantas, hongos y bacterias para la transformación y proceso de cultivo subsiguiente. Con preferencia, los vectores de expresión que se puede usar en la invención contienen secuencias necesarias para la replicación en la célula huésped y son replicables de forma autónoma. También es preferible usar vectores que contienen genes marcadores seleccionables que se pueden seleccionar fácilmente para células transformadas. La preparación necesaria es bien conocida por los expertos en la materia.
Es otro objeto de la invención proporcionar una célula huésped transformada por un plásmido de expresión de la invención y capaz de producir al menos dicha parte de un enzima. Ejemplos de células huésped apropiadas incluyen varias células eucarióticas y procarióticas, tales como E. coli, células de insectos, células de plantas, células de mamíferos, y hongos tales como levadura.
Otro objeto de la presente invención es proporcionar un polipéptido que comprende al menos la parte arriba definida de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos. El término ``polipéptido'' incluye el enzima completo o un fragmento biológicamente activo o inactivo del mismo codificado por las secuencias descritas más arriba y que son esenciales para los rasgos biológicos de dicho enzima. Las secuencias de aminoácidos de polipéptidos especialmente preferidos contienen las secuencias representadas en las figuras 1 (SEQ IN Nº. 2), 2 (SEQ ID Nº. 4) y 3 (SEQ ID Nº. 6).
Es otro aspecto de la invención proporcionar un proceso para la producción del polipéptido antes mencionado. Tal proceso comprende el cultivo de una célula huésped que se transforma con una secuencia de ácido nucleico de la presente invención en un medio de cultivo apropiado y purificando el polipéptido producido. Así, este proceso permite la producción de suficiente cantidad del polipéptido deseado para usar en aplicaciones descritas más abajo. Se puede obtener la célula huésped a partir de bacterias tales como E. coli, de hongos tales como levadura, de plantas tales como tabaco, patata, o Arabidopsis, y de animales, en particular células de vertebrados tales como células CHO.
La invención se refiere también a los métodos para ensayar los efectos de varios compuestos en la expresión y la actividad biológica de las sintasas de quitina de los artrópodos. En estos métodos, el polipéptido en forma enzimáticamente activa, preferiblemente el enzima sintasa de quitina de un artrópodo es producido por técnicas de ADN recombinante en las que una secuencia de ADN aislada que codifica el enzima se expresa a partir de la construcción de expresión de ADN como se ha esbozado más arriba.
Las figuras muestran:
Las figuras 1 a 3 muestran secuencias de ADN (SEQ ID Nºs. 1, 3 y 5) y las secuencias de aminoácidos deducidas (SEQ ID Nºs. 2, 4 y 6) de una parte de sintasa de quitina de Drosophila melanogaster.
Las figuras 4 y 5 muestran múltiples alineamientos de secuencias de proteínas de la parte de sintasa de quitina de Drosophila melanogaster con las regiones correspondientes de un nematodo, tres sintasas de quitina de levadura y una sintasa de quito-oligosacárido rizobiano. En particular, los múltiples alineamientos de secuencias muestran la parte aislada de sintasa de quitina de Drosophila melanogaster (Dmechs1 en la figura 4, y Dmechs2 en la figura 5) con las correspondientes regiones de la sintasa de quitina de nematodo (Celchs), la sintasa de quitina 1 (Scechs1), la sintasa de quitina 2 (Scechs2) y sintasa de quitina 3 (Scechs3) de levadura y la sintasa de quito-oligosacárido rizobiana (RlenodC). Los puntos de encima del alineamiento indican similitud y los asteriscos, identidad.
En lo que sigue se esbozan con más detalle realizaciones preferidas de la presente invención.
Con el aislamiento de la primera sintasa de quitina de insecto aquí descrita, la de Drosophila melanogaster (mosca de la fruta), puede usarse metodología recombinante para la expresión, purificación e identificación de sintasas de quitina. Estos métodos empleados en ensayos para la evaluación y caracterización de inhibidores de sintasa de quitina de insectos pueden conducir al desarrollo de nuevos agentes potentes de control de las plagas.
La presente invención fue posibilitada con identificación de la secuencia de ADN mostrada en las figuras 1 a 3, codificando una parte de sintasa de quitina de Drosophila melanogaster.
Una búsqueda del banco de datos GENBANK usando la secuencia de aminoácidos deducida de la secuencia Drosohpila melanogaster reveló similitudes significativas con una secuencia de nematodos que codifica al parecer una sintasa de quitina, con varias secuencias que codifican sintasas de quitina fúngica, y con varias sintasas de quito-oligosacárido rizobiano. Los múltiples alineamientos de secuencia de la sintasa de quitina de Drosophila melanogaster con estas secuencias están presentadas en las figuras
\hbox{4 y 5.}
A pesar de las similitudes de secuencia de la sintasa de quitina de Drosohpila melanogaster con los enzimas antes descritos, se pudo observar la hibridación del ADN de Drosophila melanogaster ni en el nematodo ni en el ADN genómico fúngico incluso en condiciones de baja limitación (0,75M [Na^{+}], 55ºC).
Con el aislamiento del nuevo gen de sintasa de quitina de insecto, el de D. melanogaster, se puede emplear el uso de metodología recombinante en la producción, caracterización e identificación de sintasas de quitina de artrópodos.
Con referencia a la secuencia de ADN citada a continuación, se puede usar métodos de hibridación, inmunoquímicos o amplificación de reacción de cadena polimerasa para el aislamiento bien sea ANDc o ADN genómico de sintasa de quitina a partir de esta especie. Se puede usar el mismo enfoque para la identificación y el aislamiento de ADN que codifica las sintasas de quitina de otras especies de artrópodos.
Las secuencias de ADN aisladas que entran en el ámbito de esta invención pueden usarse para expresar las sintasas de quitina codificadas en grandes cantidades en célula huésped bien sea procariótica o eucariótica.
En otro aspecto, la invención se refiere a métodos para desarrollar agentes de control de plagas. Se puede producir sintasas de quitina de artrópodos por metodología de ADN recombinante como se esboza más arriba y se usa en ensayos de enzimas para la evaluación y caracterización de inhibidores de sintasa de quitina específicos. Estas preparaciones pueden usarse también en el tamizado para la identificación de nuevos inhibidores de síntesis de la quitina.
Además, puede usarse construcciones de ADN de las sintasas de quitina de artrópodos fundidas con genes informadores (lacZ, GPF, luciferasa) para obtener insectos transgénicos o líneas celulares transformadas como se ha esbozado más arriba. Estos animales y líneas celulares pueden usarse en la evaluación del efecto que tienen los reguladores de crecimiento de los insectos en la biosíntesis de la quitina.
La presente invención será ilustrada adicionalmente por los siguientes ejemplos.
Ejemplo 1
Se inserta un fragmento de ADN conteniendo la secuencia de ADN aislada y que codifica la sintasa de quitina de insecto, en un vector de expresión conteniendo un promotor inducible lac. Se usa la construcción para transformar células E. coli. Se cultiva células en medio LB a fase semi-log y se induce la expresión de la sintasa de quitina por la adición de 1 mM IPTG.
Al cabo de 4 horas se recoge las células por centrifugación y se lisan por sonicación. Se centrifuga el homogenado a 2000 g. durante 30 minutos a 4ºC y se ultracentrifuga el sobrenadante de la centrifugación a 100 000 g. durante una hora. El pélet conteniendo la fracción de membrana fue resuspendido en un tampón conteniendo 25 mM de Tris HCl pH 7,0 y 10 mM de cloruro de magnesio. Esta preparación de membrana se usa posteriormente en ensayos de inhibición de sintasa de quitina.
Se lleva a cabo los ensayos incubando una muestra de la fracción de membrana con UDP-GlcNAc 5mM y se prueba los compuestos en la inhibición de la síntesis de la quitina. Se evalúa la actividad de sintasa de quitina por medición o bien por incorporación de GlcNAc radiomarcado procedente de UDP-GlcNAc en quitina o por la estimación espectrofotométrica del UDP liberado por el método del ensayo de reacciones enzimáticas acopladas. Se usa comparación de la actividad medida con la obtenida bajo condiciones de control (no se añade compuesto) para la evaluación de los compuestos como inhibidor de sintasa de quitina.
Ejemplo 2
Se fusiona un fragmento de ADN codificador del promotor y una parte de las regiones codificadoras de la sintasa de quitina de insecto con el gen informador lacZ. Se usa la construcción de ADN conteniendo la fusión traslacional de sintasa de quitina lacZ para la transformación de las células de insecto Kc. Después de la selección y el aislamiento de los transformantes estables se usa la línea celular transformada para la prueba o el tamizado del compuesto que afecta a la activación transcripcional del gen de sintasa de quitina. En estos ensayos se incuba la línea celular con los compuestos durante 24 horas y se evalúa el efecto de los compuestos midiendo y comparando la actividad beta-galactosidasa con la del control.
Ejemplo 3
Se usa 100 ng del fragmento de ADN, codificando la secuencia presentada en la figura 2, para la incorporación de nucleótidos radioactivos en ADN de doble cordón de acuerdo con la metodología de ``traslación nick'' estándar. Las sondas de ADN radiactivas, generadas por este método, se usan para la identificación y el aislamiento de clones que codifican las sintasas de quitina a partir de una biblioteca cósmida ADN genómica de D. melanogaster. Se pone (empapa) sobre el ADN de los cósmidos recombinantes sobre filtros de nitrocelulosa, desnaturalizado e híbrida finamente con la sonda de ADN radiactiva. Se ejecuta la hibridación en condiciones poco rigurosas (0,75N [Na^{+}], 55ºC). Luego se lava y expone los filtros para auto-radiografía.
Los cósmidos que hibridaron con la sonda (clones positivos), se aíslan y después se caracterizan con análisis enzimático de restricción y análisis de secuencia de ADN.
A partir del procedimiento descrito más arriba se identifica un segundo gen (Dmechs2) codificador de la sintasa de quitina en esta especie y se secuencia parcialmente. La secuencia de ADN y la secuencia de aminoácidos deducida son presentadas en la figura 3.
La figura 5 muestra el alineamiento de secuencias de proteínas múltiples de la porción Dmechs2 con las correspondientes regiones de un nematodo, tres sintasas de quitina de levadura y una sintasa de quito-oligosacárido rizobiano.

Claims (8)

1. Acido nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos que codifica al menos una parte de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos, en el que la parte es un fragmento biológicamente activo o inactivo que es esencial para la actividad del enzima.
2. Acido nucleico de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la secuencia de nucleótidos contiene la secuencia de ADN como se muestra en SEQ ID Nºs. 1, 3 ó 5.
3. Molécula recombinante que comprende un ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2.
4. Molécula recombinante de acuerdo con la reivindicación 3, en la que dicha secuencia de ácido nucleico está ligada funcionalmente a una secuencia de control de expresión.
5. Huésped que contiene el ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, o la molécula recombinante de acuerdo con la reivindicación 3 ó 4.
6. Polipéptido que comprende al menos una parte de un enzima que cataliza la síntesis de la quitina en los artrópodos, en el que la citada parte es un fragmento biológicamente activo o inactivo que es esencial para la actividad del enzima.
7. Polipéptido de acuerdo con la reivindicación 6, en la que la parte contiene la secuencia de aminoácidos como se muestra en SEQ ID Nºs. 2, 4 ó 6.
8. Método para desarrollar inhibidores de sintasa de quitina, comprendiendo los pasos consistentes en:
(a)
producir un polipéptido como se ha definido en las reivindicaciones 6 ó 7 usando tecnología de ADN recombinante, y
(b)
caracterizar inhibidores de sintasa de quitina específicos en ensayos enzimáticos.
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Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2004092391A2 (en) * 2003-04-11 2004-10-28 Arkion Life Sciences Llc Metabolic engineering for enhanced production of chitin and chitosan in microorganisms
JP2005215892A (ja) * 2004-01-28 2005-08-11 Canon Inc 認証システム、その制御方法、及びプログラム、並びに記憶媒体

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69421644T2 (de) * 1993-05-25 2000-03-09 American Cyanamid Co. Calcofluor-Screening von Chitin-Biosynthese-Hemmstoffen
US5614377A (en) * 1994-02-28 1997-03-25 Myco Pharmaceuticals, Incorporated Methods for identifying inhibitors of fungal pathogenicity
US5824545A (en) * 1995-11-01 1998-10-20 Millennium Pharaceuticals, Inc. Identification of eukaryotic growth-related genes and promoter isolation vector and method of use

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WO1998053053A2 (en) 1998-11-26

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WO2003102193A1 (fr) Chondroitine synthetase et acide nucleique codant pour cette enzyme
Namekawa et al. DNA ligase IV from a basidiomycete, Coprinus cinereus, and its expression during meiosis
Marcel et al. Two novel plant cDNAs homologous to animal type-2 phosphatidate phosphatase are expressed in cowpea leaves and are differently regulated by water deficits