ES2204967T3 - Vacuna combinada de la meningitis. - Google Patents
Vacuna combinada de la meningitis.Info
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Abstract
VACUNA COMBINADA PARA LA MENINGITIS BACTERIANA QUE INCLUYE CONJUGADOS DE OLIGOSACARIDOS HIB Y MENC.
Description
Vacuna combinada de la meningitis.
La presente invención se refiere a una vacuna
combinada para el tratamiento de una meningitis bacteriana. En
particular, la vacuna combinada protege eficientemente contra la
infección por Haemophilus influenzae tipo B (Hib) y
Neisseria meningitidis (meningococos) serotipos B y C (MenB,
MenC).
La meningitis bacteriana causada por infección
con Hib, MenB y/o MenC representa un problema mundial. La infección
por estos organismos puede dar como resultado una incapacidad
permanente y muerte entre los niños pequeños. Recientemente, sin
embargo, una vacuna conjugada de Hib ha llegado a estar generalmente
disponible (véase Force et al., 1992, Annals of
Pharmacology 26:1429-1440; Vella et al.,
1990, Pediatrics 85:668-675) y ha dado como
resultado un control efectivo de las infecciones por Hib. Vacunas
similares pronto estarán disponibles para la infección por MenC y
también para la infección por MenB (véase Constantino
et al., 1992, Vaccine: 10: 691-698). Se
conocen vacunas no conjugadas contra Hib y contra MenC (véase Parke
et al., 1977, J. Infect. Dis. 136, suple,
S51-S56).
Las vacunas de Hib y meningococos se basan en
conjugados entre oligosacáridos derivados de la superficie
bacteriana, que definen los epitopos específicos para la bacteria en
cuestión, conjugados a proteínas transportadoras, tales como
mutantes no tóxicos de toxina diftérica, por ejemplo CRM197.
Las vacunas de combinación están ganando ahora
amplia aceptación en los paises desarrollados. La razón que hay
detrás del uso de vacunas de combinación, que comprenden más de un
antígeno y son efectivas para inmunizar al receptor contra una serie
de enfermedades, es que el coste de administración de la vacuna se
puede reducir drásticamente cuando se compara con un número más
grande de vacunas individuales. Como el coste de administración
puede exceder más de diez veces el coste de una vacuna, las ventajas
de vacunas de combinación son evidentes donde se consideran
programas de vacunación masiva. Las vacunas de combinación están
siendo promocionadas activamente por la Organización Mundial de la
Salud (véanse, por ejemplo, CVI Forum, Nº. 5, Noviembre 1993, pp
212; CVI Report of the First Meeting of the Consultative Group,
Ginebra, 16-17 Diciembre 1991, pp.
29-32).
Estas ventajas se han reconocido durante cierto
tiempo, pero sólo tres de tales vacunas de combinación están
ampliamente disponibles en la actualidad. La primera en presentarse,
en los años 1950, fue la DTP, una vacuna muerta contra la difteria,
el tétano y el pertussis. La formulación de esta vacuna
triple no presentó problemas mayores ya que los componentes de la
combinación son compatibles mutuamente y el conservante (mertiolato)
y adyuvante (alúmina) usados en cada vacuna por separado fueron
idénticos. Más aun, se encontró que el componente de la célula
completa de pertussis potenciaba la respuesta inmune ante los
toxoides de difteria y tétanos.
En los años 1960 se desarrolló una vacuna oral
viva para la polio (abreviadamente en inglés OPV) que contenía los
tipos 1, 2 y 3 de los virus de la polio. Un problema que se encontró
en la formulación de la OPV fue la presencia de una interferencia
entre los componentes de la vacuna, un problema que no ha surgido
con DTP. El problema se ha minimizado optimizando la concentración
de los distintos componentes.
Más recientemente se ha introducido una tercera
vacuna de combinación, una vacuna viva de sarampión, paperas y
rubeóla (abreviadamente en inglés MMR) en la mayoría de los países
desarrollados. De nuevo la concentración de cada componente
individual necesita ser ajustada para minimizar el fenómeno de
interferencia entre los componentes incluidos en esta vacuna.
Actualmente hay una tendencia hacia el desarrollo
de supervacunas que comprenden un número mayor de antígenos, basadas
en la vacuna DTP.
Sin embargo, hay desventajas en la formulación de
supervacunas basadas en DTP. La evidencia reciente ha mostrado que
la adiministración de la vacuna de conjugado Hib junto con DTP
reduce la efectividad del conjugado Hib en comparación con la
administración separada de DTP y vacuna Hib (véase Abstract 300 del
33^{ero} ICAAC).
Existen datos conflictivos sobre el papel
inmunitario de la proteína transportadora para influir en la
respuesta del anticuerpo al hapteno o al componente oligosacárido de
una vacuna conjugada. Tal influencia es crítica en la formulación de
las vacunas de Hib/MenB/C, ya que las proteínas transportadoras
usadas son invariablemente similares o idénticas a los antígenos
incluidos en la vacuna DTP, la cual se administra a los niños a una
edad temprana. De acuerdo con algunos estudios, la respuesta al
conjugado aumenta con una exposición previa al transportador,
mientras que según otros se suprime. (Barington, T. et al.,
Infection and Immunity 62:9-14 (1994); Schneerson,
R. et al., J. Exp. Med. 152:361-376 (1980),
Barington T. et al., Infect. Immun.
61:432-438 (1993); Peeters, C.C.A.M. et al.,
Infect. Immun. 59:3504-3510).
Recientemente se ha determinado que la exposición
previa a la proteína transportadora aumenta enormemente la respuesta
a la vacuna de conjugado Hib.
Según esto, el objeto de la presente invención es
proporcionar una vacuna combinada de Hib y meningococo que se puede
usar en la profilaxis de una meningitis bacteriana, lo cual permite
una vacunación económica, segura y conveniente contra las causas
prevalentes de la meningitis.
La invención, por tanto, proporciona una vacuna
para la meningitis que comprende oligosacáridos conjugados Hib y
MenC.
Se ha encontrado que la vacuna de combinación de
la invención es eficaz para prevenir la infección por Haemophilus
influenzae y Neisseria meningitidis serotipo C,
aumentando los anticuerpos contra los oligosacáridos capsulares
conjugados administrados después de la primera dosis. Más aun, la
vacuna de combinación ha mostrado estar libre de interferencia entre
los antígenos usados.
Ventajosamente la primera exposición al
transportador puede aprovecharse con el fin de maximizar la
respuesta a la vacuna.La primera exposición al transportador puede
llevarse a cabo por administración de una vacuna DTP.
El componente MenC se puede formular en tres
configuraciones diferentes preferidas: forma líquida tamponada;
liofilizada con un excipiente adecuado; y producto preparado para
usar con los adyuvantes. La vacuna Hib es estable después de la
liofilización con un excipiente adecuado y en una forma líquida
tamponada. Además las dos vacunas, MenC y Hib, se pueden liofilizar
juntas con un excipiente adecuado y seguidamente resuspender antes
del uso con los adyuvantes adecuados. Cualquier combinación de las
formulaciones estables se puede mezclar antes de usarse.
La vacuna de la invención además puede comprender
un oligosacárido capsular conjugado derivado de Neisseria
meningitidis serotipo B.
La proteína transportadora a la que el componente
de oligosacárido de la vacuna de la invención está conjugada puede
ser cualquier proteína conocida en la técnica para tal fin. Por
ejemplo, puede ser un toxoide del tétanos, toxoide diftérico, una
proteína externa de membrana de Neisseria meningitidis, o un
mutante o variante de los mismos.
Preferiblemente los oligosacáridos se seleccionan
por tamaño y tienen ventajosamente un grado de polimerización de
cuatro o más.
La invención además proporciona un procedimiento
para la profilaxis o el tratamiento de la meningitis que comprende
administrar a un sujeto una cantidad farmaceúticamente efectiva de
una vacuna de combinación según la invención. La pauta preferida de
administración es administrar a los dos, cuatro y seis meses de
edad, intramuscularmente.
En un aspecto adicional de la invención se
proporciona una vacuna de combinación según la invención para uso en
medicina.
Además, la invención proporciona un conjugado de
oligosacárido de Hib y un conjugado de oligosacárido de Neisseria
meningitidis serotipo C para una administración simultanea,
separada o secuencial.
La Figura 1 muestra la media geométrica
respectiva para las concentraciones de anticuerpo \pm 2 SE (95% de
intervalo de confianza) en sueros obtenidos inmediatamente antes y
un mes después de las inyecciones de recuerdo en pacientes
previamente expuestos y no expuestos; respuesta de anticuerpos a la
vacunación PRP a los doce meses de edad en relación a una vacunación
previa con conjugado y una exposición previa con DT;
La Figura 2 muestra el perfil analítico de los
oligosacáridos de H. influenzae tipo b después de una
hidrólisis ácida;
La figura 3 muestra la imagen de una técnica de
barrido de azúcares para oligosacáridos FACE de preparaciones de
oligosacárido antes y después de una separación por tamaños;
La Figura 4 muestra un perfil analítico
cromatográfico de los oligómeros de bajo peso molecular derivados de
polisacáridos de H. influenzae tipo b después de la
separación por tamaños; las tres especies principales se
caracterizan según los análisis de espectrografía de masas mostrados
en la tabla 4;
La figura 5 muestra el perfil analítico
cromatográfico de los oligómeros de alto peso molecular derivados de
polisacáridos de H. influenzae tipo b, después de la
separación por tamaños, y
La figura 6 muestra la reactividad serológica de
oligosacáridos de MenC de longitudes variables; Elisa competitivo,
serie de sueros humanos de adultos vacunados con la vacuna de
polisacárido Men A + C inhibidos por oligosacáridos de Men C de
diferentes longitudes de cadena.
Los conjugados Hib y MenC se pueden preparar
según la tecnología de conjugación establecida usando oligosacáridos
y proteínas transportadoras conocidos en la técnica.
Preferiblemente, sin embargo, los conjugados se preparan de acuerdo
con un procedimiento que implica conocer el tamaño de los
oligosacáridos con el fin de excluir oligómeros de cadena corta.
En el caso de la vacuna Hib los oligómeros de
cadena corta han mostrado ser pobremente inmunogénicos (Peeters
et al., J. Infect. Immun. 60, 1826-1833).
Además, de igual modo se ha mostrado ahora que los oligómeros de
bajo peso molecular de MenC son pobremente inmunogénicos. Los
oligosacáridos que tienen un grado de polimerización de menos de
cuatro no son efectivos para inhibir la reacción entre los
anticuerpos humanos y los polisacáridos nativos en un ensayo
ELISA.
Las vacunas según la invención pueden ser tanto
profilácticas (para prevenir la infección) como terapéuticas (para
tratar la enfemedad después de la infección).
Tales vacunas comprenden el antígeno o antígenos
normalmente en combinación con "vehículos farmaceúticamente
aceptables", que incluyen cualquier vehículo que no induzca por
sí mismo la producción de anticuerpos dañinos para el individuo que
recibe la composición. Los vehículos adecuados son típicamente
macromoléculas grandes lentamente metabolizadas tales como
proteínas, polisacáridos, ácidos polilácticos, ácidos
poliglicolicos, aminoácidos poliméricos, copolímeros de aminoácidos,
agregados lipídicos (tales como gotas de aceite o liposomas), y
partículas virales inactivas. Tales vehículos son bien conocidos por
los expertos en la técnica. Adicionalmente, estos vehículos pueden
funcionar como agentes inmunoestimulantes adicionales
("coadyuvantes"). Además, el antígeno se puede conjugar al
toxoide bacteriano, tal como un toxoide de patógenos de difteria,
tétanos, cólera, H. Pylori, etc.
Las composiciones inmunogénicas (por ejemplo,
antígeno, vehículo farmaceúticamente aceptable, y coadyuvante)
contendrán típicamente diluyentes, tales como agua, solución salina,
glicerol, etanol, etc. Adicionalmente, pueden estar presentes en
dichos vehículos sustancias auxiliares, tales como agentes
humidificantes o emulsionantes, sustancias tamponadoras del pH, y
similares.
Las composiciones inmunogénicas usadas como
vacunas comprenden una cantidad inmunologicamente eficaz del
coadyuvante y un antígeno, así como cualquier otro componente de los
mencionados anteriormente, si es necesario. Se entiende por
"cantidad inmunologicamente eficaz" que la administración de
esa cantidad a un individuo, tanto en dosis única o como parte de
una serie, es eficaz para el tratamiento o la prevención. Esta
cantidad varía dependiendo de la salud y la condición física del
individuo a tratar, del grupo taxonómico del individuo a tratar (por
ejemplo primates no humanos, primates, etc.), de la capacidad del
sistema inmune del individuo para sintetizar anticuerpos, del grado
de protección deseado, de la formulación de la vacuna, del criterio
de tratamiento por parte del médico de la situación médica, y otros
factores relevantes. Se espera que la cantidad se encontrará en un
intervalo relativamente amplio que puede determinarse mediante
ensayos de rutina. El intervalo preferido está entre 2 y 10 \mug
por dosis.
El tratamiento de dosificación puede planificarse
en dosis única, aunque se prefiere una planificación de dosis
múltiple B.
El ensayo clínico se realizó en los sitios de
estudio de St. Louis (N=83) y Minneapolis (N=20). Se distribuyeron
al azar 103 niños sanos de aproximadamente un mes de edad para
recibir una inyección única de la vacuna de los toxoides de difteria
y tétanos (grupo expuesto previamente a DT), o no fueron vacunados.
La vacuna DT (lote 1L21121, Connaught Laboratories, Inc, Swiftwater,
PA) se administró intramuscularmente, usando una dosis de 0,5 ml. La
media \pm DE de las edades de los 52 niños a los que se les
administró DT fue de 1,1 \pm 0,1 meses (intervalo: 0,8 a 1,3
meses). A los dos meses de edad, los niños de cada grupo se
distribuyeron además al azar para recibir o tres dosis de HbOC (lote
M695HK), o tres dosis de PRP-T (lote S2440),
administrado intramuscularmente a los 2, 4 y 6 meses de edad. La
dosis de HbOC fue de 10 \mug de sacárido y de 25 \mug de
proteína CRM en 0,5 ml, y la dosis de PRP-T fue de
10 \mug de sacárido y 20 \mug de proteína, también administrado
en 0,5 ml. Se administraron inyecciones separadas de la vacuna DTP
(0,5 ml, intramuscularmente, del lote 2G31010, Connaught
Laboratories), en la pierna contraria a la de las vacunaciones del
congugado Hib. A los 12 meses de edad, se administraron
subcutáneamente 5 \mug de vacuna PRP no conjugada en 0,1 ml. La
vacuna PRP se proporcionó por NIAID, NIH y se ha descrito
previamente (Granoff et al., J. Inf. Dis. 1993; 168:663 -
671). Las muestras de suero se obtuvieron inmediatamente antes de
cada una de las dosis de conjugado Hib/DTP, aproximadamente 4
semanas después de la tercera dosis de conjugado, e inmediatamente
antes y 1 mes después de la vacunación PRP. Noventa y cuatro de los
103 niños (91%) completaron el protocolo de vacunación conjugada y
son los sujetos incluidos en el análisis del que se informa aquí.
Los nueve niños restantes se excluyeron por la siguientes razones:
dificultad para obtener muestras de sangre (1); los padres se
trasladaron de la ciudad (1); no quisieron participar más (2); no se
hizo seguimiento (1); se les administró la vacuna equivocada fuera
del estudio sin darse cuenta (2); diagnóstico de inmunodeficiencia
subyacente (1); y una convulsión febril no relacionada con la
vacunación (1). Las características demográficas de los cuatro
grupos de tratamiento usados en los análisis se resumen en la Tabla
1. Los grupos fueron similares respecto a género, raza y edad en la
primera dosis de la vacunación conjugada.
Se les solicitó a los padres completar un breve
cuestionario para anotar las reacciones locales en los sitios de
inyección, temperaturas diarias, y otras posibles reacciones
sistémicas que sucediesen durante las 72 horas siguientes a cada
dosis de la vacunación DTP/conjugado. Estas observaciones se
complementaron con entrevistas telefónicas realizadas por las
enfermeras del estudio, y una revisión de las posibles reacciones
adversas en el momento de de cada visita programada al consultorio.
La vigilancia activa de las reacciones adversas no se realizó
después de la vacunación DT, a un mes de edad; sin embargo, se
obtuvo información sobre posibles reacciones graves a esta
vacunación en la visita del segundo mes, antes de comenzar con la
vacunación DTP/conjugado.
Se enviaron los viales codificados duplicados de
suero congelado a la Universidad de Washington en St. Louis para
medir concentraciones totales de anticuerpo
anti-PRP, y a Connaught Laboratories, Inc,
Swiftater, PA, para la medición de las concentraciones de anticuerpo
ante los toxoides de difteria y tétanos. Todos los ensayos se
realizaron sin conocimiento del estado de exposición previa a DT, o
de la vacuna conjugada asignada.
Las concentraciones totales de anticuerpos
anti-PRP se midieron mediante un ensayo de unión de
radioantígeno RABA (Granoff et al., J. Inf. Dis. 1986; 154:
257-264). La curva patrón para el RABA consistió en
diluciones de la serie de suero de referencia de Hib, obtenido del
Center for Biologic Evaluation and Research (CBER), U.S. Food and
Drug Administration, Bethesda, MD. La concentración total de
anticuerpo anti-PRP de este banco se estimó que era
de 80 \mug/ml. Los ensayos individuales incluyeron series de suero
de control representativos de un amplio intervalo de concentraciones
de anticuerpo (Granoff et al., J. Pediatr. 1992; 121:
187-194; Colmes et al., J. Pediatr. 1991;
118:364-371).
\newpage
Se midieron las concentraciones del anticuerpo de
toxoide antitétanos y toxoide antidifteria en muestras de suero de
aproximadamente un 90% de muestras de los sujetos, seleccionados
basándose en la finalización del protocolo de recuerdo PRP antes de
abril de 1993, y en la disponibilidad de cantidades suficientes de
suero para los ensayos.
Las valoraciones de los anticuerpos del toxoide
antitétanos se determinaron mediante ELISA. Brevemente, se incubaron
placas de microensayo durante una noche a temperatura ambiente con
toxoide del tétanos purificado en tampón carbonato, pH 9,6. Las
placas se lavaron, y se transfirieron muestras de 50 \mul de
diluciones en series dobles de los sueros de ensayo y sueros control
a las placas recubiertas. Después de la incubación durante 3 horas a
temperatura ambiente, las placas se lavaron, y el anticuerpo unido
se detectó usando IgG, IgA e IgM de cabra antihumano conjugadas a
fosfatasa alcalina- (Kirkegaard and Perry Laboratory, Gaithersburg
MD). Las concentraciones de anticuerpo anti-toxoide
del tétanos se asignaron a los sueros ensayados, en unidades/ml,
mediante comparación con la curva de valoración de la unión de
anticuerpo de una serie de suero de referencia, preparado en
Connaught Laboratory a partir de suero de adultos vacunados con
toxoide del tétanos. A esta serie de suero se le asignó
arbitrariamente una concentración de 1 unidad/ml de antitoxina.
Los anticuerpos neutralizantes antidifteria se
midieron mediante un ensayo de inhibición micrometabólica (Miyamura
et al., J. Biol. Stand. 1974; 2:203-209;
Keeftenberg et al., J. Biol. Stand. 1985;
13:229-234). Brevemente, se añadieron 50 \mul de
diluciones en serie dobles de sueros de ensayo a pocillos de placas
de cultivo de tejido de 96 pocillos de base plana (número de
catálogo 25861, Corning Laboratory Sciences, Corning NY). Se añadió
toxina de la difteria (25 \mul de una concentración 4 veces en
exceso de la dosis citopática mínima) a todos los pocillos de
muestra. Se añadieron células VERO (riñón de mono verde africano)
(25 \mul de 150.00 células/ml), y se incluyó un indicador de pH en
el medio de cultivo celular. Las células se incubaron a 37ºC durante
7 días, tiempo durante el cual las células metabolizantes muestran
una caida a pH < 7,20, mientras que se inhibe la actividad
metabólica de las células intoxicadas con difteria y no tiene lugar
un descenso de pH. Las valoraciones de anticuerpo se determinaron
mediante la dilución más alta de suero, dando un pH < 7,20
después de siete días de incubación. Las concentraciones de
anticuerpo antidifteria de los sueros de ensayo se asignaron en
unidades/ml por comparación con la actividad antitoxina de las
diluciones de un suero estándar estadounidense conocido (Lote A52,
proporcionado por CBER, U.S. Food and Drug Administration, Bethesda,
MD), ensayado en paralelo con las muestras de ensayo. Nótese que una
unidad de anticuerpo de toxina antidifteria y una unidad de
anticuerpo de toxoide antitétanos no son equivalentes en base a su
peso o actividad. Por tanto, la magnitud de las concentraciones
respectivas de anticuerpo no se puede comparar directamente.
Los datos de frecuencia se compararon usando el
ensayo de Chi cuadrado o ensayo exacto de Fisher , cuando fue
necesario para pequeñas frecuencias esperadas. Las concentraciones
de anticuerpo se transformaron logarítmicamente, y la media
geométrica de las concentraciones de anticuerpo se comparó mediante
análisis de la varianza. Para estos cálculos, a las concentraciones
de anticuerpo menores que el mínimo detectado en el ensayo se les
asignaron valores del 50% del mínimo (por ejemplo, a concentraciones
de anticuerpo anti-PRP < 0,07 \mug/ml,
concentraciones de anticuerpo antitétanos < 0,01 unidades/ml, y
concentraciones de anticuerpo antidifteria < 0,01 unidades/ml se
les asignaron valores de 0,035 \mug/ml, 0,005 unidades/ml, y 0,005
unidades/ml, respectivamente. Las respuestas de anticuerpo conjugado
ante las vacunaciones con DT/DTP de los niños en Minneapolis y St.
Louis se combinaron, ya que no había diferencias estadísticas
significativas en los resultados entre los dos sitios de
estudio.
Las pautas de vacunación se toleraron bien. No
hubo reacciones graves, incluyendo reacciones
hipotensivas-hiporesponsivas, convulsiones,
episodios de llanto prolongado, temperaturas > 39,9ºC, en ninguno
de los niños. En los cuatro grupos, estuvo presente una temperatura
> 37,8ºC en el 20% a 33% de los niños después de la primera dosis
de DTP/conjugado, 23% a 29% después de la segunda dosis, y 21% a 35%
después de la tercera dosis. Ninguna de las diferencias respectivas
entre los grupos de vacunas fue significativa (p>0,10).
La Tabla 2 resume el efecto de la exposición
previa a la vacuna DT a un mes de edad en las respuestas de
anticuerpo anti-PRP ante la vacuna de conjugado Hib
administrada a los 2, 4 y 6 meses de edad. Antes de la primera dosis
de la vacuna conjugada, no hubo diferencias significativas en la
media geométrica de las concentraciones de anticuerpo
anti-PRP de los cuatro grupos. Para los niños a los
que se les administró PRP-T, la vacunación DT a un
mes de edad aumentó la media geométrica de las respuestas del
anticuerpo anti-PRP en 2 a 3 veces después de cada
una de las tres dosis de vacuna conjugada comparada con las medias
geométricas respectivas de las respuestas de los niños vacunados con
PRP-T que no se expusieron previamente a DT. Para
los niños a los que se les administró Hb0C, estuvo presente también
un aumento de 2 a 3 veces en la respuesta del anticuerpo
anti-PRP en el grupo expuesto previamente con DT
comparado con aquel grupo no expuesto previamente, pero solo después
de las dosis 1ª y 2ª conjugadas (Tabla 2).
\newpage
Para ambos grupos de vacunas conjugadas, la
proporción de niños que respondieron a la segunda dosis de la vacuna
conjugada con > 1 \mug/ml de un anticuerpo
anti-PRP fue mayor para los niños expuestos
previamente con DT que para los niños no expuesto previamente (Hb0C:
38% frente al 4%, p< 0,01; PRP-T: 88% frente al
67%, p= 0,10). Las diferencias correspondientes no fueron
significativamente diferentes después de una dosis de la vacuna
conjugada (Hb0C: 0% frente al 0%; PRP-T: 20% frente
al 4%, p> 0,10); o después de tres dosis (Hb0C: 86% frente al
88%; PRP=t: 96% frente al 96%, p> 0,90).
(Tabla pasa página
siguiente)
El PRP no conjugado se administró a los 12 meses
de edad a 74 de los 94 niños (79%) que completaron la vacunación
conjugada. La Figura 1 resume la media geométrica respectiva de las
concentraciones de anticuerpo \pm 2 DE (intervalo de confianza del
95%) en sueros obtenidos inmediatamente antes y 1 mes después de la
inyección de recuerdo. Entre los niños vacunados con
PRP-T, la media geométrica de la concentración de
anticuerpo anti-PRP del grupo expuesto previamente a
DT fue de 2,6 \mug/ml inmediatamente antes al de refuerzo PRP
frente a 1,6 \mug/ml en los niños correspondientes que no
recibieron DT (p= 0,11). Un mes después del recuerdo PRP, la media
geométrica de la concentración de anticuerpo fue de 26,4 \mug/ml
en el grupo expuesto previamente a DT frente a 8,6 \mug/ml en
niños que no recibieron DT (p.=0,01). En los niños a los que se les
administró Hb0C, no hubo diferencias significativas en la media
geométrica respectiva de las concentraciones
anti-PRP entre los expuestos previamente a DT y los
no expuestos previamente antes del recuerdo PRP (1,2 frente a 1,1
\mug/ml), o 1 mes después de PRP (6,0 frente a 8,8 \mug/ml, p=
0,34).
Con una excepción, no hubo difertencias
significativas a los dos meses de edad en la media geométrica
respectiva de las concentraciones de anticuerpo anti D o anti T de
los niños vacunados con DT al mes de edad y aquellos que no fueron
vacunados con DT (Tablas 3 y 4). La excepción fue que los niños
distribuidos al azar para recibir PRP-T en el grupo
previamente expuesto a DT tuvieron una media geométrica 2 veces más
alta de concentración de anticuerpo anti T que los correspondientes
al grupo no expuesto previamente (0,06 frente a 0,03 unidades/ml,
p=0,02). Este resultado puede haber sucedido por casualidad,ya que
se observó la tendencia opuesta en los correspondientes grupos
distribuidos al azar para recibir Hb0C (0,05 frente a 0,07
unidades/ml, p> 0,10, Tabla 3).
La exposición previa a DT a 1 mes potenció las
respuestas del anticuerpo anti D para las siguientes inyecciones de
DTP y conjugado administradas a los 2, 4 y 6 meses. Después de la
primera vacunación con DTP/conjugado, los infantes expuestos
previamente tuvieron entre 1,5 a 2 veces más alta la media
geométrica de las concentraciones de anticuerpo anti D y anti T que
la media geométrica respectiva de los niños no expuestos previamente
(p< 0,60); después de la segunda vacunación, las medias
geométricas respectivas de los niños expuestos previamente fueron de
3 a 5 veces más altas que aquellas de los niños no expuestos
previamente (p< 0,001). Después de la tercera vacunación
DTP/conjugado, parece que hubo una interacción entre la vacuna
conjugada específica y la respuesta de anticuerpos anti D o anti T
respectiva. Los niños expuestos previamente a DT vacunados con
PRP-T/DP tuvieron concentraciones concentraciones de
anticuerpo anti T 2 veces mayores que los niños no expuestos
previamente (p< 0,001), pero las respuestas respectivas anti D no
fueron significativamente diferentes (p> 0,20). En contraste, los
niños expuestos previamente vacunados con Hb0C/DTP tuvieron unas
concentraciones de anticuerpo anti D 2 veces mayores que los niños
no expuestos previamente (p< 0,01), pero las respuestas
respectivas anti T no fueron significativamente diferentes (p>
0,24).
(Tabla pasa página
siguiente)
Como ejemplo, se describe la selección de los
oligómeros inmunogénicos de Haemophilus influenzae tipo B.
Después de la hidrólisis ácida controlada a temperatura elevada, las
preparaciones de oligosacáridos obtenidas comprenden oligómeros de
longitu de cadena variable, desde oligómeros sencillos hasta de
cadena relativamente larga. Las figuras 2 y 3 (carril B) ilustran la
heterogeneidad de dicho hidrolisado. En el caso ilustrado, se
calculó que aproximadamente la mitad de las especies de oligómeros,
en relación molar, tienen una cadena de azúcar de menos de 5
residuos de azúcar. Cuando tal hidrolisado se conjuga con una
proteína transportadora, por ejemplo CRM-197,
producirían un producto de vacuna que sería probablemente poco
inmunogénico.
Para eliminar las especies de cadena corta, no
deseadas, los inventores han desarrollado un procedimiento
cromatográfico que permite exquisitamente la separación de
oligómeros de azúcar de cadena larga de las especies de cadena
corta. El procedimiento desarrollado se basa en el uso de una matriz
cromatográfica específica, Q-Sepharose Fast Flow, y
concentraciones iónicas definidas de sal e ión hidrógeno. La
concentración de sal requerida para eliminar las especies de bajo
peso molecular puede estar entre 0,05 M y 0,150 M. Preferiblemente,
se usa el cloruro de sodio. La concentración de ión hidrógeno
debería estar entre 10^{-5} y 10^{-8} M, y se usaron
preferiblemente sales acetato. Las figuras 3 y 4 (carril F) muestran
el perfil de las especies de bajo peso molecular, que son poco
inmunogénicas.
Los oligosacáridos para usar en la preparación de
la vacuna se eluyen con una concentración de sal entre 0,25 M y 1,0
M, preferiblemente cloruro de sodio. El perfil cromatográfico de
estas especies de alto peso molecular, usadas para la preparación de
la vacuna, se ilustran en la figura 5. Para reforzar adicionalmente
que este procedimiento cromatográfico puede proporcionar un producto
de vacuna totalmente definido se han analizado tres preparaciones
diferentes, y estas se muestran en la figura 3, carriles C,D y
E.
Usando análisis de espectroscopía de masas, se ha
establecido que este procedimiento además elimina de hecho las
especies de bajo peso molécular, y estas tienen la longitud de
cadena esperada, como se muestra por los análisis de espectroscopía
de masas reseñado en la Tabla 5. Este procedimiento de
fraccionamiento permite el fraccionamiento y la selección específica
de oligosacáridos de entre 1 a 60 mg/ml de soporte matriz.
Las especies de oligosacárido seleccionadas se
pueden conjugar a la proteina transportadora CRM-197
usando la química enumerada a continuación (Costantino et
al., Vaccine 10:691-698)
a) Aminación reductora de los oligosacáridos
seleccionados introduciendo un grupo amino primario en su extremo
reductor;
b) Transformación de los
amino-oligosacáridos en un éster activo mediante
reacción con diéster de N-hidroxisuccinimida de
ácido atípico;
c) Acoplamiento de los oligosacáridos activados a
CRM-197; y finalmente la purificación del conjugado
para la fabricación de la vacuna.
d) El procedimiento aquí descrito ha sido
aplicado exitosamente a oligosacáridos de meningococo C y puede
aplicarse claramente a todos los polímeros de azúcar que contienen
un resto de carga negativa, como los meningococo A y B al igual que
otros. La figura 6 muestra la naturaleza poco inmunogénica de los
oligosacáridos Men C que tienen un grado de polimerización de menos
de cuatro.
Claims (15)
1. Una vacuna combinada para la meningitis que
comprende conjugados de oligosacáridos Hib y Men C.
2. Una vacuna según la reivindicación 1, que
además comprende un conjugado de oligosacáridos Men B.
3. Una vacuna según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, en la que los oligosacáridos se seleccionan por
tamaño.
4. Una vacuna según la reivindicación 3, en la
que los oligosacáridos se seleccionan por tamaño para excluir los
oligómeros de cadena corta que tienen un grado de polimerización de
menos de cuatro.
5. Una vacuna según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que los conjugados de
oligosacáridos MenC y/o Hib está/están en forma líquida
tamponada.
6. Una vacuna según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que los conjugados de
oligosacárido MenC y/o Hib está/están en forma liofilizada.
7. Una vacuna según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que los conjugados de
oligosacáridos MenC y/o Hib está/están conjugados a un toxoide del
tétanos, toxoide de la difteria, o a una proteína de membrana
externa de Neisseria meningitidis.
8. Una vacuna según la reivindicación 7, en la
que los conjugados de oligosacáridos Men C y/o Hib está/están
conjugados a CRM-197.
9. Una vacuna según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que comprende además un
coadyuvante.
10. Una vacuna según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores para uso en medicina.
11. Un conjugado de oligosacárido Hib y un
conjugado de oligosacárido Men C para administración simultanea,
separada o secuencial.
12. Un conjugado de oligosacárido Hib, un
conjugado de oligosacárido Men C y un conjugado de oligosacárido Men
B para administración simultanea, separada o secuencial
13. El uso de conjugados de oligosacáridos Hib y
MenC en la fabricación de un medicamento para la profilaxis o el
tratamiento de la meningitis
14. El uso de la reivindicación 13, en el que la
administración del medicamento se usa después de una etapa de
exposición previa al transportador.
15. El uso de la reivindicación 14, en el que la
exposición previa se consigue mediante la administración de una
vacuna DTP.
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