ES2204967T3 - Vacuna combinada de la meningitis. - Google Patents

Vacuna combinada de la meningitis.

Info

Publication number
ES2204967T3
ES2204967T3 ES95935550T ES95935550T ES2204967T3 ES 2204967 T3 ES2204967 T3 ES 2204967T3 ES 95935550 T ES95935550 T ES 95935550T ES 95935550 T ES95935550 T ES 95935550T ES 2204967 T3 ES2204967 T3 ES 2204967T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
vaccine
hib
conjugate
oligosaccharides
vaccine according
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES95935550T
Other languages
English (en)
Other versions
ES2204967T5 (es
Inventor
Costante Ceccarini
Paolo Costantino
Sandro D'ascenzi
Francesco Norelli
Aldo Giannozzi
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
GSK Vaccines SRL
Original Assignee
Chiron SRL
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=10763774&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=ES2204967(T3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Chiron SRL filed Critical Chiron SRL
Application granted granted Critical
Publication of ES2204967T3 publication Critical patent/ES2204967T3/es
Publication of ES2204967T5 publication Critical patent/ES2204967T5/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/102Pasteurellales, e.g. Actinobacillus, Pasteurella; Haemophilus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/095Neisseria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/04Immunostimulants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/60Medicinal preparations containing antigens or antibodies characteristics by the carrier linked to the antigen
    • A61K2039/6031Proteins
    • A61K2039/6037Bacterial toxins, e.g. diphteria toxoid [DT], tetanus toxoid [TT]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/70Multivalent vaccine
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S424/00Drug, bio-affecting and body treating compositions
    • Y10S424/831Drug, bio-affecting and body treating compositions involving capsular polysaccharide of bacterium, e.g. polyribosyl ribitol phosphate

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

VACUNA COMBINADA PARA LA MENINGITIS BACTERIANA QUE INCLUYE CONJUGADOS DE OLIGOSACARIDOS HIB Y MENC.

Description

Vacuna combinada de la meningitis.
La presente invención se refiere a una vacuna combinada para el tratamiento de una meningitis bacteriana. En particular, la vacuna combinada protege eficientemente contra la infección por Haemophilus influenzae tipo B (Hib) y Neisseria meningitidis (meningococos) serotipos B y C (MenB, MenC).
La meningitis bacteriana causada por infección con Hib, MenB y/o MenC representa un problema mundial. La infección por estos organismos puede dar como resultado una incapacidad permanente y muerte entre los niños pequeños. Recientemente, sin embargo, una vacuna conjugada de Hib ha llegado a estar generalmente disponible (véase Force et al., 1992, Annals of Pharmacology 26:1429-1440; Vella et al., 1990, Pediatrics 85:668-675) y ha dado como resultado un control efectivo de las infecciones por Hib. Vacunas similares pronto estarán disponibles para la infección por MenC y también para la infección por MenB (véase Constantino et al., 1992, Vaccine: 10: 691-698). Se conocen vacunas no conjugadas contra Hib y contra MenC (véase Parke et al., 1977, J. Infect. Dis. 136, suple, S51-S56).
Las vacunas de Hib y meningococos se basan en conjugados entre oligosacáridos derivados de la superficie bacteriana, que definen los epitopos específicos para la bacteria en cuestión, conjugados a proteínas transportadoras, tales como mutantes no tóxicos de toxina diftérica, por ejemplo CRM197.
Las vacunas de combinación están ganando ahora amplia aceptación en los paises desarrollados. La razón que hay detrás del uso de vacunas de combinación, que comprenden más de un antígeno y son efectivas para inmunizar al receptor contra una serie de enfermedades, es que el coste de administración de la vacuna se puede reducir drásticamente cuando se compara con un número más grande de vacunas individuales. Como el coste de administración puede exceder más de diez veces el coste de una vacuna, las ventajas de vacunas de combinación son evidentes donde se consideran programas de vacunación masiva. Las vacunas de combinación están siendo promocionadas activamente por la Organización Mundial de la Salud (véanse, por ejemplo, CVI Forum, Nº. 5, Noviembre 1993, pp 212; CVI Report of the First Meeting of the Consultative Group, Ginebra, 16-17 Diciembre 1991, pp. 29-32).
Estas ventajas se han reconocido durante cierto tiempo, pero sólo tres de tales vacunas de combinación están ampliamente disponibles en la actualidad. La primera en presentarse, en los años 1950, fue la DTP, una vacuna muerta contra la difteria, el tétano y el pertussis. La formulación de esta vacuna triple no presentó problemas mayores ya que los componentes de la combinación son compatibles mutuamente y el conservante (mertiolato) y adyuvante (alúmina) usados en cada vacuna por separado fueron idénticos. Más aun, se encontró que el componente de la célula completa de pertussis potenciaba la respuesta inmune ante los toxoides de difteria y tétanos.
En los años 1960 se desarrolló una vacuna oral viva para la polio (abreviadamente en inglés OPV) que contenía los tipos 1, 2 y 3 de los virus de la polio. Un problema que se encontró en la formulación de la OPV fue la presencia de una interferencia entre los componentes de la vacuna, un problema que no ha surgido con DTP. El problema se ha minimizado optimizando la concentración de los distintos componentes.
Más recientemente se ha introducido una tercera vacuna de combinación, una vacuna viva de sarampión, paperas y rubeóla (abreviadamente en inglés MMR) en la mayoría de los países desarrollados. De nuevo la concentración de cada componente individual necesita ser ajustada para minimizar el fenómeno de interferencia entre los componentes incluidos en esta vacuna.
Actualmente hay una tendencia hacia el desarrollo de supervacunas que comprenden un número mayor de antígenos, basadas en la vacuna DTP.
Sin embargo, hay desventajas en la formulación de supervacunas basadas en DTP. La evidencia reciente ha mostrado que la adiministración de la vacuna de conjugado Hib junto con DTP reduce la efectividad del conjugado Hib en comparación con la administración separada de DTP y vacuna Hib (véase Abstract 300 del 33^{ero} ICAAC).
Existen datos conflictivos sobre el papel inmunitario de la proteína transportadora para influir en la respuesta del anticuerpo al hapteno o al componente oligosacárido de una vacuna conjugada. Tal influencia es crítica en la formulación de las vacunas de Hib/MenB/C, ya que las proteínas transportadoras usadas son invariablemente similares o idénticas a los antígenos incluidos en la vacuna DTP, la cual se administra a los niños a una edad temprana. De acuerdo con algunos estudios, la respuesta al conjugado aumenta con una exposición previa al transportador, mientras que según otros se suprime. (Barington, T. et al., Infection and Immunity 62:9-14 (1994); Schneerson, R. et al., J. Exp. Med. 152:361-376 (1980), Barington T. et al., Infect. Immun. 61:432-438 (1993); Peeters, C.C.A.M. et al., Infect. Immun. 59:3504-3510).
Recientemente se ha determinado que la exposición previa a la proteína transportadora aumenta enormemente la respuesta a la vacuna de conjugado Hib.
Según esto, el objeto de la presente invención es proporcionar una vacuna combinada de Hib y meningococo que se puede usar en la profilaxis de una meningitis bacteriana, lo cual permite una vacunación económica, segura y conveniente contra las causas prevalentes de la meningitis.
La invención, por tanto, proporciona una vacuna para la meningitis que comprende oligosacáridos conjugados Hib y MenC.
Se ha encontrado que la vacuna de combinación de la invención es eficaz para prevenir la infección por Haemophilus influenzae y Neisseria meningitidis serotipo C, aumentando los anticuerpos contra los oligosacáridos capsulares conjugados administrados después de la primera dosis. Más aun, la vacuna de combinación ha mostrado estar libre de interferencia entre los antígenos usados.
Ventajosamente la primera exposición al transportador puede aprovecharse con el fin de maximizar la respuesta a la vacuna.La primera exposición al transportador puede llevarse a cabo por administración de una vacuna DTP.
El componente MenC se puede formular en tres configuraciones diferentes preferidas: forma líquida tamponada; liofilizada con un excipiente adecuado; y producto preparado para usar con los adyuvantes. La vacuna Hib es estable después de la liofilización con un excipiente adecuado y en una forma líquida tamponada. Además las dos vacunas, MenC y Hib, se pueden liofilizar juntas con un excipiente adecuado y seguidamente resuspender antes del uso con los adyuvantes adecuados. Cualquier combinación de las formulaciones estables se puede mezclar antes de usarse.
La vacuna de la invención además puede comprender un oligosacárido capsular conjugado derivado de Neisseria meningitidis serotipo B.
La proteína transportadora a la que el componente de oligosacárido de la vacuna de la invención está conjugada puede ser cualquier proteína conocida en la técnica para tal fin. Por ejemplo, puede ser un toxoide del tétanos, toxoide diftérico, una proteína externa de membrana de Neisseria meningitidis, o un mutante o variante de los mismos.
Preferiblemente los oligosacáridos se seleccionan por tamaño y tienen ventajosamente un grado de polimerización de cuatro o más.
La invención además proporciona un procedimiento para la profilaxis o el tratamiento de la meningitis que comprende administrar a un sujeto una cantidad farmaceúticamente efectiva de una vacuna de combinación según la invención. La pauta preferida de administración es administrar a los dos, cuatro y seis meses de edad, intramuscularmente.
En un aspecto adicional de la invención se proporciona una vacuna de combinación según la invención para uso en medicina.
Además, la invención proporciona un conjugado de oligosacárido de Hib y un conjugado de oligosacárido de Neisseria meningitidis serotipo C para una administración simultanea, separada o secuencial.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 muestra la media geométrica respectiva para las concentraciones de anticuerpo \pm 2 SE (95% de intervalo de confianza) en sueros obtenidos inmediatamente antes y un mes después de las inyecciones de recuerdo en pacientes previamente expuestos y no expuestos; respuesta de anticuerpos a la vacunación PRP a los doce meses de edad en relación a una vacunación previa con conjugado y una exposición previa con DT;
La Figura 2 muestra el perfil analítico de los oligosacáridos de H. influenzae tipo b después de una hidrólisis ácida;
La figura 3 muestra la imagen de una técnica de barrido de azúcares para oligosacáridos FACE de preparaciones de oligosacárido antes y después de una separación por tamaños;
La Figura 4 muestra un perfil analítico cromatográfico de los oligómeros de bajo peso molecular derivados de polisacáridos de H. influenzae tipo b después de la separación por tamaños; las tres especies principales se caracterizan según los análisis de espectrografía de masas mostrados en la tabla 4;
La figura 5 muestra el perfil analítico cromatográfico de los oligómeros de alto peso molecular derivados de polisacáridos de H. influenzae tipo b, después de la separación por tamaños, y
La figura 6 muestra la reactividad serológica de oligosacáridos de MenC de longitudes variables; Elisa competitivo, serie de sueros humanos de adultos vacunados con la vacuna de polisacárido Men A + C inhibidos por oligosacáridos de Men C de diferentes longitudes de cadena.
Descripción detallada de la invención
Los conjugados Hib y MenC se pueden preparar según la tecnología de conjugación establecida usando oligosacáridos y proteínas transportadoras conocidos en la técnica. Preferiblemente, sin embargo, los conjugados se preparan de acuerdo con un procedimiento que implica conocer el tamaño de los oligosacáridos con el fin de excluir oligómeros de cadena corta.
En el caso de la vacuna Hib los oligómeros de cadena corta han mostrado ser pobremente inmunogénicos (Peeters et al., J. Infect. Immun. 60, 1826-1833). Además, de igual modo se ha mostrado ahora que los oligómeros de bajo peso molecular de MenC son pobremente inmunogénicos. Los oligosacáridos que tienen un grado de polimerización de menos de cuatro no son efectivos para inhibir la reacción entre los anticuerpos humanos y los polisacáridos nativos en un ensayo ELISA.
Las vacunas según la invención pueden ser tanto profilácticas (para prevenir la infección) como terapéuticas (para tratar la enfemedad después de la infección).
Tales vacunas comprenden el antígeno o antígenos normalmente en combinación con "vehículos farmaceúticamente aceptables", que incluyen cualquier vehículo que no induzca por sí mismo la producción de anticuerpos dañinos para el individuo que recibe la composición. Los vehículos adecuados son típicamente macromoléculas grandes lentamente metabolizadas tales como proteínas, polisacáridos, ácidos polilácticos, ácidos poliglicolicos, aminoácidos poliméricos, copolímeros de aminoácidos, agregados lipídicos (tales como gotas de aceite o liposomas), y partículas virales inactivas. Tales vehículos son bien conocidos por los expertos en la técnica. Adicionalmente, estos vehículos pueden funcionar como agentes inmunoestimulantes adicionales ("coadyuvantes"). Además, el antígeno se puede conjugar al toxoide bacteriano, tal como un toxoide de patógenos de difteria, tétanos, cólera, H. Pylori, etc.
Las composiciones inmunogénicas (por ejemplo, antígeno, vehículo farmaceúticamente aceptable, y coadyuvante) contendrán típicamente diluyentes, tales como agua, solución salina, glicerol, etanol, etc. Adicionalmente, pueden estar presentes en dichos vehículos sustancias auxiliares, tales como agentes humidificantes o emulsionantes, sustancias tamponadoras del pH, y similares.
Las composiciones inmunogénicas usadas como vacunas comprenden una cantidad inmunologicamente eficaz del coadyuvante y un antígeno, así como cualquier otro componente de los mencionados anteriormente, si es necesario. Se entiende por "cantidad inmunologicamente eficaz" que la administración de esa cantidad a un individuo, tanto en dosis única o como parte de una serie, es eficaz para el tratamiento o la prevención. Esta cantidad varía dependiendo de la salud y la condición física del individuo a tratar, del grupo taxonómico del individuo a tratar (por ejemplo primates no humanos, primates, etc.), de la capacidad del sistema inmune del individuo para sintetizar anticuerpos, del grado de protección deseado, de la formulación de la vacuna, del criterio de tratamiento por parte del médico de la situación médica, y otros factores relevantes. Se espera que la cantidad se encontrará en un intervalo relativamente amplio que puede determinarse mediante ensayos de rutina. El intervalo preferido está entre 2 y 10 \mug por dosis.
El tratamiento de dosificación puede planificarse en dosis única, aunque se prefiere una planificación de dosis múltiple B.
Ejemplos Ejemplo 1 Determinación del efecto de la exposición previa al transportador con la vacuna conjugada Hib Vacunas y sujetos
El ensayo clínico se realizó en los sitios de estudio de St. Louis (N=83) y Minneapolis (N=20). Se distribuyeron al azar 103 niños sanos de aproximadamente un mes de edad para recibir una inyección única de la vacuna de los toxoides de difteria y tétanos (grupo expuesto previamente a DT), o no fueron vacunados. La vacuna DT (lote 1L21121, Connaught Laboratories, Inc, Swiftwater, PA) se administró intramuscularmente, usando una dosis de 0,5 ml. La media \pm DE de las edades de los 52 niños a los que se les administró DT fue de 1,1 \pm 0,1 meses (intervalo: 0,8 a 1,3 meses). A los dos meses de edad, los niños de cada grupo se distribuyeron además al azar para recibir o tres dosis de HbOC (lote M695HK), o tres dosis de PRP-T (lote S2440), administrado intramuscularmente a los 2, 4 y 6 meses de edad. La dosis de HbOC fue de 10 \mug de sacárido y de 25 \mug de proteína CRM en 0,5 ml, y la dosis de PRP-T fue de 10 \mug de sacárido y 20 \mug de proteína, también administrado en 0,5 ml. Se administraron inyecciones separadas de la vacuna DTP (0,5 ml, intramuscularmente, del lote 2G31010, Connaught Laboratories), en la pierna contraria a la de las vacunaciones del congugado Hib. A los 12 meses de edad, se administraron subcutáneamente 5 \mug de vacuna PRP no conjugada en 0,1 ml. La vacuna PRP se proporcionó por NIAID, NIH y se ha descrito previamente (Granoff et al., J. Inf. Dis. 1993; 168:663 - 671). Las muestras de suero se obtuvieron inmediatamente antes de cada una de las dosis de conjugado Hib/DTP, aproximadamente 4 semanas después de la tercera dosis de conjugado, e inmediatamente antes y 1 mes después de la vacunación PRP. Noventa y cuatro de los 103 niños (91%) completaron el protocolo de vacunación conjugada y son los sujetos incluidos en el análisis del que se informa aquí. Los nueve niños restantes se excluyeron por la siguientes razones: dificultad para obtener muestras de sangre (1); los padres se trasladaron de la ciudad (1); no quisieron participar más (2); no se hizo seguimiento (1); se les administró la vacuna equivocada fuera del estudio sin darse cuenta (2); diagnóstico de inmunodeficiencia subyacente (1); y una convulsión febril no relacionada con la vacunación (1). Las características demográficas de los cuatro grupos de tratamiento usados en los análisis se resumen en la Tabla 1. Los grupos fueron similares respecto a género, raza y edad en la primera dosis de la vacunación conjugada.
TABLA 1 Características demográficas de los grupos de estudio
1
Reacciones adversas
Se les solicitó a los padres completar un breve cuestionario para anotar las reacciones locales en los sitios de inyección, temperaturas diarias, y otras posibles reacciones sistémicas que sucediesen durante las 72 horas siguientes a cada dosis de la vacunación DTP/conjugado. Estas observaciones se complementaron con entrevistas telefónicas realizadas por las enfermeras del estudio, y una revisión de las posibles reacciones adversas en el momento de de cada visita programada al consultorio. La vigilancia activa de las reacciones adversas no se realizó después de la vacunación DT, a un mes de edad; sin embargo, se obtuvo información sobre posibles reacciones graves a esta vacunación en la visita del segundo mes, antes de comenzar con la vacunación DTP/conjugado.
Laboratorio
Se enviaron los viales codificados duplicados de suero congelado a la Universidad de Washington en St. Louis para medir concentraciones totales de anticuerpo anti-PRP, y a Connaught Laboratories, Inc, Swiftater, PA, para la medición de las concentraciones de anticuerpo ante los toxoides de difteria y tétanos. Todos los ensayos se realizaron sin conocimiento del estado de exposición previa a DT, o de la vacuna conjugada asignada.
Las concentraciones totales de anticuerpos anti-PRP se midieron mediante un ensayo de unión de radioantígeno RABA (Granoff et al., J. Inf. Dis. 1986; 154: 257-264). La curva patrón para el RABA consistió en diluciones de la serie de suero de referencia de Hib, obtenido del Center for Biologic Evaluation and Research (CBER), U.S. Food and Drug Administration, Bethesda, MD. La concentración total de anticuerpo anti-PRP de este banco se estimó que era de 80 \mug/ml. Los ensayos individuales incluyeron series de suero de control representativos de un amplio intervalo de concentraciones de anticuerpo (Granoff et al., J. Pediatr. 1992; 121: 187-194; Colmes et al., J. Pediatr. 1991; 118:364-371).
\newpage
Se midieron las concentraciones del anticuerpo de toxoide antitétanos y toxoide antidifteria en muestras de suero de aproximadamente un 90% de muestras de los sujetos, seleccionados basándose en la finalización del protocolo de recuerdo PRP antes de abril de 1993, y en la disponibilidad de cantidades suficientes de suero para los ensayos.
Las valoraciones de los anticuerpos del toxoide antitétanos se determinaron mediante ELISA. Brevemente, se incubaron placas de microensayo durante una noche a temperatura ambiente con toxoide del tétanos purificado en tampón carbonato, pH 9,6. Las placas se lavaron, y se transfirieron muestras de 50 \mul de diluciones en series dobles de los sueros de ensayo y sueros control a las placas recubiertas. Después de la incubación durante 3 horas a temperatura ambiente, las placas se lavaron, y el anticuerpo unido se detectó usando IgG, IgA e IgM de cabra antihumano conjugadas a fosfatasa alcalina- (Kirkegaard and Perry Laboratory, Gaithersburg MD). Las concentraciones de anticuerpo anti-toxoide del tétanos se asignaron a los sueros ensayados, en unidades/ml, mediante comparación con la curva de valoración de la unión de anticuerpo de una serie de suero de referencia, preparado en Connaught Laboratory a partir de suero de adultos vacunados con toxoide del tétanos. A esta serie de suero se le asignó arbitrariamente una concentración de 1 unidad/ml de antitoxina.
Los anticuerpos neutralizantes antidifteria se midieron mediante un ensayo de inhibición micrometabólica (Miyamura et al., J. Biol. Stand. 1974; 2:203-209; Keeftenberg et al., J. Biol. Stand. 1985; 13:229-234). Brevemente, se añadieron 50 \mul de diluciones en serie dobles de sueros de ensayo a pocillos de placas de cultivo de tejido de 96 pocillos de base plana (número de catálogo 25861, Corning Laboratory Sciences, Corning NY). Se añadió toxina de la difteria (25 \mul de una concentración 4 veces en exceso de la dosis citopática mínima) a todos los pocillos de muestra. Se añadieron células VERO (riñón de mono verde africano) (25 \mul de 150.00 células/ml), y se incluyó un indicador de pH en el medio de cultivo celular. Las células se incubaron a 37ºC durante 7 días, tiempo durante el cual las células metabolizantes muestran una caida a pH < 7,20, mientras que se inhibe la actividad metabólica de las células intoxicadas con difteria y no tiene lugar un descenso de pH. Las valoraciones de anticuerpo se determinaron mediante la dilución más alta de suero, dando un pH < 7,20 después de siete días de incubación. Las concentraciones de anticuerpo antidifteria de los sueros de ensayo se asignaron en unidades/ml por comparación con la actividad antitoxina de las diluciones de un suero estándar estadounidense conocido (Lote A52, proporcionado por CBER, U.S. Food and Drug Administration, Bethesda, MD), ensayado en paralelo con las muestras de ensayo. Nótese que una unidad de anticuerpo de toxina antidifteria y una unidad de anticuerpo de toxoide antitétanos no son equivalentes en base a su peso o actividad. Por tanto, la magnitud de las concentraciones respectivas de anticuerpo no se puede comparar directamente.
Análisis estadísticos
Los datos de frecuencia se compararon usando el ensayo de Chi cuadrado o ensayo exacto de Fisher , cuando fue necesario para pequeñas frecuencias esperadas. Las concentraciones de anticuerpo se transformaron logarítmicamente, y la media geométrica de las concentraciones de anticuerpo se comparó mediante análisis de la varianza. Para estos cálculos, a las concentraciones de anticuerpo menores que el mínimo detectado en el ensayo se les asignaron valores del 50% del mínimo (por ejemplo, a concentraciones de anticuerpo anti-PRP < 0,07 \mug/ml, concentraciones de anticuerpo antitétanos < 0,01 unidades/ml, y concentraciones de anticuerpo antidifteria < 0,01 unidades/ml se les asignaron valores de 0,035 \mug/ml, 0,005 unidades/ml, y 0,005 unidades/ml, respectivamente. Las respuestas de anticuerpo conjugado ante las vacunaciones con DT/DTP de los niños en Minneapolis y St. Louis se combinaron, ya que no había diferencias estadísticas significativas en los resultados entre los dos sitios de estudio.
Resultados Reacciones adversas
Las pautas de vacunación se toleraron bien. No hubo reacciones graves, incluyendo reacciones hipotensivas-hiporesponsivas, convulsiones, episodios de llanto prolongado, temperaturas > 39,9ºC, en ninguno de los niños. En los cuatro grupos, estuvo presente una temperatura > 37,8ºC en el 20% a 33% de los niños después de la primera dosis de DTP/conjugado, 23% a 29% después de la segunda dosis, y 21% a 35% después de la tercera dosis. Ninguna de las diferencias respectivas entre los grupos de vacunas fue significativa (p>0,10).
Inmunogenicidad Respuestas del anticuerpo anti-PRP ante la vacunación conjugada
La Tabla 2 resume el efecto de la exposición previa a la vacuna DT a un mes de edad en las respuestas de anticuerpo anti-PRP ante la vacuna de conjugado Hib administrada a los 2, 4 y 6 meses de edad. Antes de la primera dosis de la vacuna conjugada, no hubo diferencias significativas en la media geométrica de las concentraciones de anticuerpo anti-PRP de los cuatro grupos. Para los niños a los que se les administró PRP-T, la vacunación DT a un mes de edad aumentó la media geométrica de las respuestas del anticuerpo anti-PRP en 2 a 3 veces después de cada una de las tres dosis de vacuna conjugada comparada con las medias geométricas respectivas de las respuestas de los niños vacunados con PRP-T que no se expusieron previamente a DT. Para los niños a los que se les administró Hb0C, estuvo presente también un aumento de 2 a 3 veces en la respuesta del anticuerpo anti-PRP en el grupo expuesto previamente con DT comparado con aquel grupo no expuesto previamente, pero solo después de las dosis 1ª y 2ª conjugadas (Tabla 2).
\newpage
Para ambos grupos de vacunas conjugadas, la proporción de niños que respondieron a la segunda dosis de la vacuna conjugada con > 1 \mug/ml de un anticuerpo anti-PRP fue mayor para los niños expuestos previamente con DT que para los niños no expuesto previamente (Hb0C: 38% frente al 4%, p< 0,01; PRP-T: 88% frente al 67%, p= 0,10). Las diferencias correspondientes no fueron significativamente diferentes después de una dosis de la vacuna conjugada (Hb0C: 0% frente al 0%; PRP-T: 20% frente al 4%, p> 0,10); o después de tres dosis (Hb0C: 86% frente al 88%; PRP=t: 96% frente al 96%, p> 0,90).
(Tabla pasa página siguiente)
2
Memoria de las respuestas de anticuerpo ate la vacunación de recuerdo PRP
El PRP no conjugado se administró a los 12 meses de edad a 74 de los 94 niños (79%) que completaron la vacunación conjugada. La Figura 1 resume la media geométrica respectiva de las concentraciones de anticuerpo \pm 2 DE (intervalo de confianza del 95%) en sueros obtenidos inmediatamente antes y 1 mes después de la inyección de recuerdo. Entre los niños vacunados con PRP-T, la media geométrica de la concentración de anticuerpo anti-PRP del grupo expuesto previamente a DT fue de 2,6 \mug/ml inmediatamente antes al de refuerzo PRP frente a 1,6 \mug/ml en los niños correspondientes que no recibieron DT (p= 0,11). Un mes después del recuerdo PRP, la media geométrica de la concentración de anticuerpo fue de 26,4 \mug/ml en el grupo expuesto previamente a DT frente a 8,6 \mug/ml en niños que no recibieron DT (p.=0,01). En los niños a los que se les administró Hb0C, no hubo diferencias significativas en la media geométrica respectiva de las concentraciones anti-PRP entre los expuestos previamente a DT y los no expuestos previamente antes del recuerdo PRP (1,2 frente a 1,1 \mug/ml), o 1 mes después de PRP (6,0 frente a 8,8 \mug/ml, p= 0,34).
Respuestas de anticuerpos antidifteria y antitétanos
Con una excepción, no hubo difertencias significativas a los dos meses de edad en la media geométrica respectiva de las concentraciones de anticuerpo anti D o anti T de los niños vacunados con DT al mes de edad y aquellos que no fueron vacunados con DT (Tablas 3 y 4). La excepción fue que los niños distribuidos al azar para recibir PRP-T en el grupo previamente expuesto a DT tuvieron una media geométrica 2 veces más alta de concentración de anticuerpo anti T que los correspondientes al grupo no expuesto previamente (0,06 frente a 0,03 unidades/ml, p=0,02). Este resultado puede haber sucedido por casualidad,ya que se observó la tendencia opuesta en los correspondientes grupos distribuidos al azar para recibir Hb0C (0,05 frente a 0,07 unidades/ml, p> 0,10, Tabla 3).
La exposición previa a DT a 1 mes potenció las respuestas del anticuerpo anti D para las siguientes inyecciones de DTP y conjugado administradas a los 2, 4 y 6 meses. Después de la primera vacunación con DTP/conjugado, los infantes expuestos previamente tuvieron entre 1,5 a 2 veces más alta la media geométrica de las concentraciones de anticuerpo anti D y anti T que la media geométrica respectiva de los niños no expuestos previamente (p< 0,60); después de la segunda vacunación, las medias geométricas respectivas de los niños expuestos previamente fueron de 3 a 5 veces más altas que aquellas de los niños no expuestos previamente (p< 0,001). Después de la tercera vacunación DTP/conjugado, parece que hubo una interacción entre la vacuna conjugada específica y la respuesta de anticuerpos anti D o anti T respectiva. Los niños expuestos previamente a DT vacunados con PRP-T/DP tuvieron concentraciones concentraciones de anticuerpo anti T 2 veces mayores que los niños no expuestos previamente (p< 0,001), pero las respuestas respectivas anti D no fueron significativamente diferentes (p> 0,20). En contraste, los niños expuestos previamente vacunados con Hb0C/DTP tuvieron unas concentraciones de anticuerpo anti D 2 veces mayores que los niños no expuestos previamente (p< 0,01), pero las respuestas respectivas anti T no fueron significativamente diferentes (p> 0,24).
(Tabla pasa página siguiente)
3
4
Ejemplo 2 Selección del tamaño de los oligómeros inmunogénicos
Como ejemplo, se describe la selección de los oligómeros inmunogénicos de Haemophilus influenzae tipo B. Después de la hidrólisis ácida controlada a temperatura elevada, las preparaciones de oligosacáridos obtenidas comprenden oligómeros de longitu de cadena variable, desde oligómeros sencillos hasta de cadena relativamente larga. Las figuras 2 y 3 (carril B) ilustran la heterogeneidad de dicho hidrolisado. En el caso ilustrado, se calculó que aproximadamente la mitad de las especies de oligómeros, en relación molar, tienen una cadena de azúcar de menos de 5 residuos de azúcar. Cuando tal hidrolisado se conjuga con una proteína transportadora, por ejemplo CRM-197, producirían un producto de vacuna que sería probablemente poco inmunogénico.
Para eliminar las especies de cadena corta, no deseadas, los inventores han desarrollado un procedimiento cromatográfico que permite exquisitamente la separación de oligómeros de azúcar de cadena larga de las especies de cadena corta. El procedimiento desarrollado se basa en el uso de una matriz cromatográfica específica, Q-Sepharose Fast Flow, y concentraciones iónicas definidas de sal e ión hidrógeno. La concentración de sal requerida para eliminar las especies de bajo peso molecular puede estar entre 0,05 M y 0,150 M. Preferiblemente, se usa el cloruro de sodio. La concentración de ión hidrógeno debería estar entre 10^{-5} y 10^{-8} M, y se usaron preferiblemente sales acetato. Las figuras 3 y 4 (carril F) muestran el perfil de las especies de bajo peso molecular, que son poco inmunogénicas.
Los oligosacáridos para usar en la preparación de la vacuna se eluyen con una concentración de sal entre 0,25 M y 1,0 M, preferiblemente cloruro de sodio. El perfil cromatográfico de estas especies de alto peso molecular, usadas para la preparación de la vacuna, se ilustran en la figura 5. Para reforzar adicionalmente que este procedimiento cromatográfico puede proporcionar un producto de vacuna totalmente definido se han analizado tres preparaciones diferentes, y estas se muestran en la figura 3, carriles C,D y E.
Usando análisis de espectroscopía de masas, se ha establecido que este procedimiento además elimina de hecho las especies de bajo peso molécular, y estas tienen la longitud de cadena esperada, como se muestra por los análisis de espectroscopía de masas reseñado en la Tabla 5. Este procedimiento de fraccionamiento permite el fraccionamiento y la selección específica de oligosacáridos de entre 1 a 60 mg/ml de soporte matriz.
TABLA 5
5
Las especies de oligosacárido seleccionadas se pueden conjugar a la proteina transportadora CRM-197 usando la química enumerada a continuación (Costantino et al., Vaccine 10:691-698)
a) Aminación reductora de los oligosacáridos seleccionados introduciendo un grupo amino primario en su extremo reductor;
b) Transformación de los amino-oligosacáridos en un éster activo mediante reacción con diéster de N-hidroxisuccinimida de ácido atípico;
c) Acoplamiento de los oligosacáridos activados a CRM-197; y finalmente la purificación del conjugado para la fabricación de la vacuna.
d) El procedimiento aquí descrito ha sido aplicado exitosamente a oligosacáridos de meningococo C y puede aplicarse claramente a todos los polímeros de azúcar que contienen un resto de carga negativa, como los meningococo A y B al igual que otros. La figura 6 muestra la naturaleza poco inmunogénica de los oligosacáridos Men C que tienen un grado de polimerización de menos de cuatro.

Claims (15)

1. Una vacuna combinada para la meningitis que comprende conjugados de oligosacáridos Hib y Men C.
2. Una vacuna según la reivindicación 1, que además comprende un conjugado de oligosacáridos Men B.
3. Una vacuna según la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en la que los oligosacáridos se seleccionan por tamaño.
4. Una vacuna según la reivindicación 3, en la que los oligosacáridos se seleccionan por tamaño para excluir los oligómeros de cadena corta que tienen un grado de polimerización de menos de cuatro.
5. Una vacuna según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en la que los conjugados de oligosacáridos MenC y/o Hib está/están en forma líquida tamponada.
6. Una vacuna según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en la que los conjugados de oligosacárido MenC y/o Hib está/están en forma liofilizada.
7. Una vacuna según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en la que los conjugados de oligosacáridos MenC y/o Hib está/están conjugados a un toxoide del tétanos, toxoide de la difteria, o a una proteína de membrana externa de Neisseria meningitidis.
8. Una vacuna según la reivindicación 7, en la que los conjugados de oligosacáridos Men C y/o Hib está/están conjugados a CRM-197.
9. Una vacuna según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, que comprende además un coadyuvante.
10. Una vacuna según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores para uso en medicina.
11. Un conjugado de oligosacárido Hib y un conjugado de oligosacárido Men C para administración simultanea, separada o secuencial.
12. Un conjugado de oligosacárido Hib, un conjugado de oligosacárido Men C y un conjugado de oligosacárido Men B para administración simultanea, separada o secuencial
13. El uso de conjugados de oligosacáridos Hib y MenC en la fabricación de un medicamento para la profilaxis o el tratamiento de la meningitis
14. El uso de la reivindicación 13, en el que la administración del medicamento se usa después de una etapa de exposición previa al transportador.
15. El uso de la reivindicación 14, en el que la exposición previa se consigue mediante la administración de una vacuna DTP.
ES95935550T 1994-11-02 1995-11-02 Vacuna combinada de la meningitis. Expired - Lifetime ES2204967T5 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB9422096A GB9422096D0 (en) 1994-11-02 1994-11-02 Combined meningitis vaccine
GB9422096 1994-11-02

Publications (2)

Publication Number Publication Date
ES2204967T3 true ES2204967T3 (es) 2004-05-01
ES2204967T5 ES2204967T5 (es) 2008-07-01

Family

ID=10763774

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES95935550T Expired - Lifetime ES2204967T5 (es) 1994-11-02 1995-11-02 Vacuna combinada de la meningitis.

Country Status (12)

Country Link
US (1) US6251401B1 (es)
EP (3) EP2204185A1 (es)
JP (3) JP3989951B2 (es)
AT (1) ATE246936T1 (es)
CA (2) CA2204277C (es)
CY (1) CY2423B1 (es)
DE (1) DE69531501T3 (es)
DK (1) DK0789587T4 (es)
ES (1) ES2204967T5 (es)
GB (1) GB9422096D0 (es)
PT (1) PT789587E (es)
WO (1) WO1996014086A1 (es)

Families Citing this family (35)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9422096D0 (en) * 1994-11-02 1994-12-21 Biocine Spa Combined meningitis vaccine
US6048527A (en) 1996-08-27 2000-04-11 Chiron Corporation Antibodies that define unique Meningococcal B epitopes and vaccine compositions
ES2166097T5 (es) 1996-08-27 2007-03-16 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. Glicoconjugados de neisseria meningitidis de serogrupo b y procedimientos para usarlos.
EP0980257A1 (en) * 1997-05-01 2000-02-23 Chiron Corporation Use of virus-like particles as adjuvants
ATE372376T1 (de) * 1997-05-28 2007-09-15 Novartis Vaccines & Diagnostic Kulturmedium mit sojabohnenextrakt als aminosäuren-quelle und ohne proteinkomplexe tierischen ursprungs
US20040087020A1 (en) 1997-05-28 2004-05-06 Chiron S.P.A. Culture medium with yeast or soy bean extract as amino acid source and no protein complexes of animal origin
US20070259007A1 (en) * 1999-10-19 2007-11-08 Kruzel Marian L Lactoferrin: an adjuvant for vaccines
PT1233784E (pt) * 1999-12-02 2008-11-03 Novartis Vaccines & Diagnostic Composições e métodos para a estabilização de moléculas biológicas após a liofilização
GB0108364D0 (en) * 2001-04-03 2001-05-23 Glaxosmithkline Biolog Sa Vaccine composition
HU227893B1 (en) * 2000-06-29 2012-05-29 Glaxosmithkline Biolog Sa Vaccine compositions
CN1306956C (zh) 2001-04-17 2007-03-28 希龙公司 诱导功能活性抗体的脑膜炎球菌b抗原表位的分子模拟物
GB0115176D0 (en) 2001-06-20 2001-08-15 Chiron Spa Capular polysaccharide solubilisation and combination vaccines
AR045702A1 (es) 2001-10-03 2005-11-09 Chiron Corp Composiciones de adyuvantes.
MX339524B (es) 2001-10-11 2016-05-30 Wyeth Corp Composiciones inmunogenicas novedosas para la prevencion y tratamiento de enfermedad meningococica.
GB0302218D0 (en) * 2003-01-30 2003-03-05 Chiron Sri Vaccine formulation & Mucosal delivery
MXPA04011249A (es) * 2002-05-14 2005-06-06 Chiron Srl Vacunas mucosales con adyuvante de quitosano y antigenos meningococicos.
US20030124139A1 (en) * 2002-11-20 2003-07-03 Irina Esikova Compositions and methods for stabilizing biological molecules upon lyophilization
ES2461350T3 (es) 2003-01-30 2014-05-19 Novartis Ag Vacunas inyectables contra múltiples serogrupos de meningococos
US7731967B2 (en) 2003-04-30 2010-06-08 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. Compositions for inducing immune responses
CN103357002A (zh) 2003-10-02 2013-10-23 诺华疫苗和诊断有限公司 多种脑膜炎球菌血清群的液体疫苗
GB0500787D0 (en) * 2005-01-14 2005-02-23 Chiron Srl Integration of meningococcal conjugate vaccination
US8398983B2 (en) 2005-06-27 2013-03-19 Glaxosmithkline Biologicals, S.A. Immunogenic composition
AR064642A1 (es) 2006-12-22 2009-04-15 Wyeth Corp Polinucleotido vector que lo comprende celula recombinante que comprende el vector polipeptido , anticuerpo , composicion que comprende el polinucleotido , vector , celula recombinante polipeptido o anticuerpo , uso de la composicion y metodo para preparar la composicion misma y preparar una composi
CA2688268A1 (en) * 2007-06-04 2008-12-11 Novartis Ag Formulation of meningitis vaccines
WO2009050586A1 (en) * 2007-10-19 2009-04-23 Novartis Ag Meningococcal vaccine formulations
EP3067048B1 (en) 2007-12-07 2018-02-14 GlaxoSmithKline Biologicals SA Compositions for inducing immune responses
KR101594228B1 (ko) 2010-08-23 2016-02-15 와이어쓰 엘엘씨 네이세리아 메닌기티디스 rLP2086 항원의 안정한 제제
NZ607224A (en) 2010-09-10 2014-11-28 Wyeth Llc Non-lipidated variants of neisseria meningitidis orf2086 antigens
SA115360586B1 (ar) 2012-03-09 2017-04-12 فايزر انك تركيبات لعلاج الالتهاب السحائي البكتيري وطرق لتحضيرها
MX359256B (es) 2012-03-09 2018-09-19 Pfizer Composiciones de neisseria meningitidis y metodos de las mismas.
US9802987B2 (en) 2013-03-08 2017-10-31 Pfizer Inc. Immunogenic fusion polypeptides
RU2662968C2 (ru) 2013-09-08 2018-07-31 Пфайзер Инк. Иммуногенная композиция против neisseria meningitidis (варианты)
AU2016221318B2 (en) 2015-02-19 2020-06-25 Pfizer Inc. Neisseria meningitidis compositions and methods thereof
AU2018215585B2 (en) 2017-01-31 2022-03-17 Pfizer Inc. Neisseria meningitidis compositions and methods thereof
EP4034157A1 (en) 2019-09-27 2022-08-03 Pfizer Inc. Neisseria meningitidis compositions and methods thereof

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4902506A (en) * 1983-07-05 1990-02-20 The University Of Rochester Immunogenic conjugates
US4451446A (en) * 1982-03-04 1984-05-29 Smithkline-Rit Process for the preparation of polysaccharide-protein complexes from bacterial capsules, obtained products and immunogenic compositions containing them
US4619828A (en) * 1982-07-06 1986-10-28 Connaught Laboratories, Inc. Polysaccharide exotoxoid conjugate vaccines
US4459286A (en) * 1983-01-31 1984-07-10 Merck & Co., Inc. Coupled H. influenzae type B vaccine
IT1187753B (it) * 1985-07-05 1987-12-23 Sclavo Spa Coniugati glicoproteici ad attivita' immunogenica trivalente
US5371197A (en) * 1991-09-24 1994-12-06 Merck & Co., Inc. Protein-dimeric polysaccharide conjugate vaccine
GB9202219D0 (en) * 1992-02-03 1992-03-18 Connaught Lab A synthetic heamophilus influenzae conjugate vaccine
IT1262896B (it) * 1992-03-06 1996-07-22 Composti coniugati formati da proteine heat shock (hsp) e oligo-poli- saccaridi, loro uso per la produzione di vaccini.
GB9422096D0 (en) * 1994-11-02 1994-12-21 Biocine Spa Combined meningitis vaccine
US5628496A (en) 1995-06-07 1997-05-13 Avm, Inc. Pneumatic spring
US6048527A (en) * 1996-08-27 2000-04-11 Chiron Corporation Antibodies that define unique Meningococcal B epitopes and vaccine compositions

Also Published As

Publication number Publication date
EP0789587A1 (en) 1997-08-20
JP2011016850A (ja) 2011-01-27
GB9422096D0 (en) 1994-12-21
CY2423B1 (en) 2004-11-12
DE69531501T2 (de) 2004-06-24
EP2204185A1 (en) 2010-07-07
EP2204185A8 (en) 2010-10-27
WO1996014086A1 (en) 1996-05-17
JP3989951B2 (ja) 2007-10-10
PT789587E (pt) 2003-12-31
EP1312377A3 (en) 2004-02-04
DK0789587T4 (da) 2008-08-04
JP2007169302A (ja) 2007-07-05
ATE246936T1 (de) 2003-08-15
CA2204277A1 (en) 1996-05-17
JP4871770B2 (ja) 2012-02-08
EP0789587B1 (en) 2003-08-13
DK0789587T3 (da) 2003-12-01
DE69531501T3 (de) 2008-11-13
ES2204967T5 (es) 2008-07-01
CA2204277C (en) 2010-02-02
CA2689871A1 (en) 1996-05-17
DE69531501D1 (de) 2003-09-18
US6251401B1 (en) 2001-06-26
JPH10509701A (ja) 1998-09-22
EP0789587B2 (en) 2008-04-02
EP1312377A2 (en) 2003-05-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2204967T3 (es) Vacuna combinada de la meningitis.
Eskola et al. Pneumococcal conjugate vaccines
Frasch Vaccines for prevention of meningococcal disease
FERRECCIO et al. The clinical and immunologic response of Chilean infants to Haemophilus influenzae type b polysaccharide-tetanus protein conjugate vaccine coadministered in the same syringe with diphtheria-tetanus toxoids-pertussis vaccine at two, four and six months of age
Anderson et al. Safety and immunogenicity of meningococcal A and C polysaccharide conjugate vaccine in adults
Cohen et al. Safety and immunogenicity of investigational Shigella conjugate vaccines in Israeli volunteers
Einhorn et al. Immunogenicity in infants of Haemophilus influenzae type B polysaccharide in a conjugate vaccine with Neisseria meningitidis outer-membrane protein
Gold et al. Kinetics of antibody production to group A and group C meningococcal polysaccharide vaccines administered during the first six years of life: prospects for routine immunization of infants and children
ÅHMAN et al. Pentavalent pneumococcal oligosaccharide conjugate vaccine PncCRM is well-tolerated and able to induce an antibody response in infants
Peltola et al. Evaluation of two tetravalent (ACYW135) meningococcal vaccines in infants and small children: a clinical study comparing immunogenicity of O-acetyl-negative and O-acetyl-positive group C polysaccharides
Lepow et al. Safety and immunogenicity of Haemophilus influenzae type b-polysaccharide diphtheria toxoid conjugate vaccine in infants 9 to 15 months of age
Austrian Pneumococcal polysaccharide vaccines
Schneerson et al. Evaluation of monophosphoryl lipid A (MPL) as an adjuvant. Enhancement of the serum antibody response in mice to polysaccharide-protein conjugates by concurrent injection with MPL
Vella et al. Immunogenicity of a new Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine (Meningococcal protein conjugate)(PedvaxHIBTM)
Devi et al. Preclinical evaluation of group B Neisseria meningitidis and Escherichia coli K92 capsular polysaccharide-protein conjugate vaccines in juvenile rhesus monkeys
Wahdan et al. Controlled field trial of a typhoid vaccine prepared with a nonmotile mutant of Salmonella typhi Ty2
Panpitpat et al. Elevated levels of maternal anti-tetanus toxin antibodies do not suppress the immune response to a Haemophilus influenzae type b polyribosylphosphate-tetanus toxoid conjugate vaccine
Steinhoff et al. Group C Neisseria meningitidis variant polysaccharide vaccines in children
Decker et al. The multicenter acellular pertussis trial: an overview
Eskola Analysis Of Haemophilus Infiuenzae Type B Conjugate And Diphtheria-Tetanuspertussis Combination Vaccines
Knutsson et al. Immunogenicity and reactogenicity of diphtheria, tetanus and pertussis toxoids combined with inactivated polio vaccine, when administered concomitantly with or as a diluent for a Hib conjugate vaccine
Wilkins et al. Further characterization of responses of infants and children to meningococcal A polysaccharide vaccine
Migasena et al. Immunogenicity of two formulations of oral cholera vaccine comprised of killed whole vibrios and the B subunit of cholera toxin
Beuvery Immunisation against bacterial meningitis
Brüssow et al. Tetanus and diphtheria immunization coverage in Ecuadorian children after a national vaccination campaign