ES2209517T3 - Deteccion de celulas madre mediante dominios especificos de union a pared celular (cbd) de proteinas de union a pared celular. - Google Patents

Deteccion de celulas madre mediante dominios especificos de union a pared celular (cbd) de proteinas de union a pared celular.

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Abstract

Procedimiento para la detección específica de células diana mediante unión, comprendiendo el procedimiento los siguientes pasos: a) selección de proteínas de unión especifica a la célula diana; b) preparación de los dominios de proteína responsables de la unión a la pared celular (CBD) como fragmentos de proteína, careciendo estos fragmentos de proteína de cualquier actividad hidrolítica; y c) puesta en contacto entre los dominios de proteína obtenidos en el paso b) y una muestra que ha de examinarse.

Description

Detección de células madre mediante dominios específicos de unión a pared celular (CBD) de proteínas de unión a pared celular.
Descripción de la invención
La presente invención trata de un procedimiento y una combinación de reactivos para la detección específica de células diana mediante el uso de dominios específicos de unión a pared celular (CBD) de proteínas de unión a pared celular de virus, bacterias o células eucarióticas, y el uso del procedimiento para marcar, inmovilizar, enriquecer, purificar y detectar células según las reivindicaciones independientes 1, 22 y 23. En las reivindicaciones subordinadas se definen ejemplos de realización preferibles.
Estado de la técnica
Para detectar y determinar células y formas permanentes de células (esporas) de microorganismos (bacterias, levaduras, mohos) y células eucarióticas (denominadas en lo sucesivo de forma abreviada células o células diana) se usan como moléculas diana a detectar, además de los metabolitos segregados por las células y/u otros componentes celulares o moléculas, frecuentemente las propias células. Para ello se usan en la mayoría de los casos anticuerpos especiales (proteínas de la clase de las inmunoglobulinas). Los anticuerpos "detectan" antígenos especiales en la superficie de los organismos diana y pueden se une arlos de forma reversible. Esta unión puede visualizarse mediante uno o varios procedimientos conocidos por el experto, por ejemplo mediante la unión directa del anticuerpo a colorantes (fluorescentes) (por ejemplo, fluoresceína), moléculas marcadoras biológicas, marcadores particulares (por ejemplo, partículas de oro) o los amplificadores más diversos (moléculas de unión altamente afines (por ejemplo, biotina, unida mediante avidina), o enzimas (por ejemplo, peroxidasa, fosfatasa), que catalizan a continuación a su vez una reacción, que proporciona un precipitado de colorantes, un desdoblamiento de colorante visible o una reacción visible de emisión de luz (quimioluminescencia, bioluminescencia). Otra posibilidad es el uso de un anticuerpo secundario (marcado), que detecta el anticuerpo (en este caso no marcado, primario) (por ejemplo, un anticuerpo anti-conejo de cabra), lo se une a y realiza por sí mismo mediante conjugación con las partículas de oro, colorantes mencionados anteriormente o enzimas que catalizan una reacción medible la reacción (de detección) medible. Aquí, también es posible el uso de moléculas de unión secundarias, que no pertenezcan a la clase de las inmunoglobulinas, como por ejemplo avidina (puede unirse a anticuerpos primarios marcados por biotina), o proteína A de Staphylococcus aureus, que se une a generalmente determinadas clases de inmunoglobulinas. Estas moléculas de unión pueden estar unidas a su vez a una o a varias de múltiples moléculas de detección (amplificadoras, véase arriba).
Otra posibilidad es la inmovilización de las moléculas diana o células a detectar en una fase sólida (por ejemplo, placas de microvaloración de plástico de superficie tratada o tiras reactivas correspondientemente tratadas). Aquí, las células diana son unidas por anticuerpos específicos unidos a la fase sólida de forma selectiva desde una mezcla heterogénea. Después de un paso de lavado para eliminar las moléculas diana no unidas (antígenos, células) se usa, a continuación, un segundo anticuerpo, en este caso un anticuerpo libre, unido a los colorantes, moléculas marcadoras, marcadores particulares, isótopos radioactivos o amplificadoras (por ejemplo, enzimas, biotina) mencionados anteriormente, para se une ar también los antígenos ahora inmovilizados en la fase sólida (moléculas o células diana) y detectarlas de la forma descrita arriba. Este tipo y realización de reacción de detección se denomina sándwich ELISA (Enzyme-linked-Immunsosorbent assay; ensayo enzimático inmunoabsorbente).
Otra aplicación de anticuerpos específicos en el marco de la inmovilización es el enriquecimiento de células diana mediante una fase sólida móvil. Los anticuerpos o lectinas pueden acoplarse, por ejemplo, a pequeñas partículas ferromagnéticas, que después de la unión del antígeno diana en fase líquida pueden aislarse de ésta con ayuda de un campo magnético, permitiendo de esta forma un enriquecimiento selectivo de moléculas diana o células diana con otros pasos de tratamiento posteriores.
Estos procedimientos descritos arriba, basados en anticuerpos tienen algunos inconvenientes. Deben prepararse anticuerpos específicos, en primer lugar mediante inmunización de animales con el antígeno diana o un componente de éste. Aquí no está garantizado que realmente se consiga la respuesta inmunológica deseada. En caso de que el suero contenga después de un tiempo determinado un título suficientemente elevado de anticuerpos específicos contra el antígeno diana, éstos pueden obtenerse a partir del suero de los animales mediante los procedimientos conocidos por el experto para la purificación de inmunoglobulinas. Estos anticuerpos se denominan anticuerpos policlonales, independientemente de su grado de pureza. Frecuentemente se observan reacciones cruzadas no deseadas con antígenos extraños, no forzosamente derivados del antígeno diana, lo cual representa un inconveniente fundamental. Además, es posible obtener mediante técnicas de fusión conocidas por el experto, los llamados anticuerpos monoclonales en cultivos de células de algunas células inmunológicas tipo B productoras de anticuerpos y una línea celular de células tumorales de células hibridoma. No obstante, estas técnicas de hibridoma son largas y costosas. A continuación, deben acoplarse, dado el caso en otras reacciones, colorantes, marcadores particulares o amplificadores a los anticuerpos purificados, purificándose los productos de reacción. Además, no en todos los casos es posible obtener sin más un anticuerpo especial contra el antígeno diana, en particular cuando se trata aquí de células enteras, intactas. Otro inconveniente fundamental del uso de anticuerpos es el tiempo de reacción relativamente largo, necesario para la unión del anticuerpo al antígeno diana. Esto puede tardar hasta 12 horas.
El experto conoce los procedimientos de este tipo descritos arriba, así como variantes de estos procedimientos, además de estar descritos los mismos en la bibliografía. Estas reacciones se resumen según la invención como procedimientos habituales de detección. Los reactivos que son necesarios para estos procedimientos de detección se denominan los agentes indicadores habituales.
Las proteínas o enzimas que desdoblan de forma selectiva paredes celulares de células se conocen en distintas formas por la bibliografía. Se sabe que las proteínas de este tipo presentan en la mayoría de los casos una estructura de dominios, siendo capaz un tramo parcial de la cadena de polipéptidos en la estructura terciaria nativa, acabada de plegar, de detectar determinadas moléculas o conformaciones moleculares en la superficie de células y se une arlas a éstas. Moléculas de este tipo son las hidrolasas de pared celular codificadas por bacteriófagos (Microbiol. Rev. 56, páginas 430-481 (1992)); hidrolasas de pared celular bacterianas como, por ejemplo, lisostafina (Mol. Gen. Genet. 209, páginas 563-569 (1987)) y distintas autolisinas. Además pueden se une ar a las paredes celulares las moléculas receptoras codificadas por el ADN de bacteriófagos y otros virus específicos para levaduras, mohos y células eucarióticas y también todas las proteínas de pared celular asociadas de forma no covalente a la pared celular de células, codificadas por el ADN propio de la célula.
El objetivo de la invención aquí expuesta es proporcionar procedimientos en los que las células diana sean detectadas específicamente por una secuencia de aminoácidos conocida mediante el uso de polipéptidos definidos (dominios de la proteína), pudiendo se une arse y marcarse específicamente mediante la unión de los polipéptidos a estas células. Estos polipéptidos definidos son tramos subordinados especiales (dominios de unión a pared celular, en ingl.: cell wall- binding domains, denominados en lo sucesivo CBD) de proteínas asociadas a la pared celular y de unión a pared celular o proteínas enzimáticamente activas (enzimas) de células o virus, así como combinaciones de los mismos entre sí. Los tramos genéticos codificantes de estos CBD se determinan a partir de las informaciones genéticas codificantes correspondientes de las proteínas de unión a pared celular de las células o de los virus. Estos tramos parciales correspondientes se aíslan y multiplican a continuación mediante técnicas de la biología molecular conocidas por el experto. A continuación, estos tramos genéticos se combinan mediante técnicas conocidas por el experto con nuevas señales (para la transcripción y traducción) y estructuras de replicación (por ejemplo, plásmidos), lo que permite la preparación independiente de estos fragmentos de proteína (polipéptidos) en organismos heterólogos. Estos tramos genéticos recombinados, codificantes para proteínas (novedosas), se incorporan mediante técnicas conocidas por el experto en organismos adecuados (por ejemplo, bacterias Escherichia coli o levaduras Pichia pastoris), para la obtención de los productos génicos recombinantes (proteínas, polipéptidos). A continuación o también durante la expresión recombinante, las cadenas de polipéptidos deben acoplarse a marcadores particulares adecuados, amplificadores enzimáticos, colorantes, isótopos o genes marcadores, como por ejemplo, proteínas fluorescentes (por ejemplo, proteína fluorescente verde (GFP) de la medusa Aequoria victoria; Science 263, páginas 802-805 (1994); o preferiblemente GFP modificada con mayor intensidad de emisión (GFP-mut1, GFP- mut2); Gene 173, páginas 33-38 (1996) o también proteína fluorescente azul (BFP) u otras proteínas fluorescentes.
Los polipéptidos CBD tienen propiedades comparables con anticuerpos de unión a pared celular específicos. Detectan epítopos específicos (proteínas, hidratos de carbono, lípidos o compuestos con éstos) en o dentro de la pared celular y se unen a estos epítopos. No obstante, los polipéptidos CBD tienen ventajas en cuanto a la preparación sencilla y económica. Una diferencia y ventaja fundamental de los polipéptidos CBD frente a anticuerpos de la clase de las inmunoglobulinas es la posibilidad de la unión directa a moléculas reporter adecuadas mediante fusión genética de la secuencia ADN codificante de CBD obteniéndose secuencias ADN codificantes de moléculas reporter y/o amplificadores como, por ejemplo, proteínas GFP o amplificadores enzimáticamente activos. Este procedimiento permite proporcionar proteínas de fusión de CBD y las mencionadas moléculas reporter y/o amplificadores, con dominios funcionales correspondientemente distintos para la detección y unión a las células diana (dominio CBD), así como la visualización y la posibilidad de detección de esta unión específica mediante el dominio molécula informadora/amplificador.
El objeto de la invención son procedimientos para la visualización específica y la detección específica de células en una muestra (procedimientos diagnósticos) mediante la unión específica de CBD a células diana definidas y mediante una reacción de detección posterior, que es mediada por marcadores particulares, amplificadores, colorantes, isótopos o preferiblemente proteínas fluorescentes (preferiblemente GFP modificada) adecuados, acoplados a los CBD especiales. Este acoplamiento puede realizarse mediante fusión directa por traducción o mediante modificación de los CBD después de la preparación y purificación de los polipéptidos.
Otro objeto de la invención es el uso de los polipéptidos CBD para procedimientos para la inmovilización específica de células, uniéndose los polipéptidos CBD mediante procedimientos conocidos por el experto a una fase sólida, siendo inmovilizados después del contacto con una muestra (preferiblemente líquida) que contiene las células diana mediante su capacidad de unión específica a la pared celular de las células en la fase líquida. En un paso posterior, puede detectarse ahora mediante CBD marcados (como se ha explicado anteriormente) a modo de un ensayo CBD tipo sándwich, la presencia de células diana inmovilizadas. Si como fase sólida se usan partículas magnéticas, el procedimiento de inmovilización también es adecuado para el enriquecimiento de células desde una mezcla heterogénea de otras células y otras sustancias extrañas.
Finalmente son también objeto de la invención combinaciones de reactivos (kits) adecuados para los procedimientos específicos indicados arriba para marcar, detectar, inmovilizar y enriquecer células, conteniendo las mismas además de los agentes indicadores habituales, uno o varios polipéptidos CBD especiales, o purificados, o unidos a fases sólidas o uniones con estos mismos.
Ejemplos para las hidrolasas de pared celular codificadas por bacteriófagos conocidas por el experto, hidrolasas de pared celular bacterianas, autolisinas, las moléculas receptoras codificadas por el ADN de bacteriófagos y otros virus de forma específica para levaduras, mohos y células eucarióticas, y también todas las proteínas de pared celular asociadas a la pared celular de células de forma no covalente, codificadas por el ADN de la propia célula, están descritos en los documentos indicados arriba y en la bibliografía especializada conocida. Las enzimas que hidrolizan la pared celular de bacteriófagos (lisinas de fagos, endolisinas, lisinas) pueden ser muy específicas para la hidrólisis de la pared celular bacteriana. Forman parte de estas enzimas las lisinas que son codificadas por bacteriófagos para bacterias del género Listeria y que se forman durante la posterior expresión génica en la multiplicación de fagos. En el documento DE4326617 se describe, por ejemplo, el uso de lisinas de fagos de Listeria como medio específico para combatir listerias; en el documento DE19506615 se describe el uso de lisinas de fagos para la desintegración específica de células. Los genes para estas lisinas de fagos son conocidos (Mol. Microbiol. 16, páginas 1231-1241 (1995); Microbiology 141, página 2577-2584 (1995). En el documento US 4,329,151 se describe el uso de moléculas estreptolisina O no descompuestas, adsorbidas en partículas de poliestireno-látex, para la detección de infecciones patógenas.
Es posible determinar mediante distintos procedimientos los dominios de unión a pared celular (CBD) dentro de la estructura, por ejemplo, de estas lisinas de fagos, por ejemplo, mediante comparaciones de homología de los genes codificantes (secuencias de nucleótidos) o los productos génicos (secuencias de aminoácidos) o mediante la expresión independiente de tramos parciales de los genes codificantes en cultivos de bacterias recombinantes con posterior determinación de la capacidad de unión de la pared celular de los fragmentos individuales presentes de la molécula de proteína original. Aquí es importante que no exista ninguna actividad hidrolítica de los distintos fragmentos obtenidos sólo por la expresión del dominio CBD o que la misma se destruya de forma selectiva mediante mutaciones o deleciones.
Ejemplo
El siguiente ejemplo debe explicar más detalladamente la idea de la invención; no representa ninguna limitación del alcance de la invención.
Marcado y detección de células Listeria
Según la invención pudo localizarse el CBD en el área carboxiterminal de la enzima Ply500, codificada por el fago A500 Listeria. Para ello se realizaron en primer lugar comparaciones de la secuencia de aminoácidos de Ply500 con todas las demás proteínas conocidas en las bases de datos habituales, de acceso general (GenBank, SwissProt). Se mostró que la parte aminoterminal de la proteína presenta similitudes con los dominios enzimáticamente activos de otras enzimas hidrolíticas de pared celular, mientras que la parte carboxiterminal parece ser completamente independiente. A continuación, se obtuvieron mediante cebadores especiales de oligonucleótidos y la reacción en cadena de la polimerasa fragmentos definidos del gen codificante (ply500), que en el extremo 5' están provistos de un sitio de unión de ribosoma propio y un codón iniciador ATG. Este procedimiento permite la expresión independiente de estos fragmentos de genes en organismos heterólogos como la bacteria Escherichia coli. Los fragmentos de genes obtenidos se introdujeron en un vector plásmido adecuado (pSP72) y se transformaron en E. coli. Después de la inducción de la expresión y la comprobación de los productos génicos sintetizados para verificar si hay una actividad lítica sobre células Listeria con ayuda de un bioensayo, se mostró que sólo el gen completo, intacto muestra una actividad hidrolítica. La parte aminoterminal de Ply500 no pudo desdoblar las paredes celulares de Listeria sin la parte carboxiterminal. El dominio carboxiterminal (aminoácido His133 a Lys289) tenía que permitir, por lo tanto, la unión a la pared celular y representó un posible CBD. Ahora se preparó con ayuda de técnicas de la biología molecular conocidas por el experto y procedimientos de clonación una fusión genética de las secuencias de nucleótidos codificantes de proteína fluorescente verde (GFP) con la fusión para CBD de Ply500, se clonó en un vector de expresión controlándose un promotor inducible y se transformó en bacterias de la especie E. coli. El producto génico formado por la expresión del gen de fusión en las bacterias representa una proteína de fusión de una cadena de polipéptidos, representando la GFP la parte aminoterminal y Ply500 CBD la parte carboxiterminal. Después de la síntesis en bacterias recombinantes y el desacoplamiento de éstas mediante procedimientos adecuados por medio de procedimientos conocidos por el experto, la proteína puede purificarse de los lisados celulares y prepararse para posteriores ensayos. La proteína de fusión GFP-CBD500 purificada se absorbe en un tampón acuoso (por ejemplo, 50 mM de TrisCl, pH 8,0, 200 mM de NaCl, 5 mM de MgSO_{4}) y puede almacenarse a -20ºC.
Para la unión a la pared celular y la detección de células Listeria (por ejemplo, Listeria monocytogenes, cepa ScottA, Serovar 4b) se concentra un cultivo de crecimiento denso (por ejemplo, 1 ml) concentrado mediante centrifugación, se resuspende, por ejemplo, en 500 \mul del tampón indicado arriba, se mezcla con una cantidad correspondiente (por ejemplo, 20 \mul, que corresponden, por ejemplo, a 20 \mug de proteína) de GFP-CBD500 y se incuba durante 5 minutos a temperatura ambiente (por ejemplo, 10-35ºC). A continuación, las células de las bacterias se centrifugan en una microcentrífuga (por ejemplo, durante 60 s con 13.000 x g), se elimina cuidadosamente el sobrenadante que contenía la GFP-CBD500 no unida y se resuspendieron los sedimentos en, por ejemplo, 500 \mul del tampón indicado arriba. Se aplicó una alícuota (por ejemplo, 10 \mul) en un portaobjetos y se examinó con ayuda de un microscopio de epifluroescencia usándose un juego de filtros adecuado para la protección contra luz ultravioleta. Según la invención se mostró que la molécula se une de forma muy rápida y eficiente a la pared celular de células de la especie Listeria, por lo que se mantienen por completo las propiedades deseadas de los dominios individuales de la molécula (dominio GFP fluorescente, dominio CBD500 se unen ate de pared celular. En la figura 1 se puede ver la unión de GFP-CBD500 a células de Listeria monocytogenes cepa ScottA. Las células se mezclaron con la proteína de fusión purificada, se separaron mediante centrifugación, se purificaron mediante centrifugación y se examinó una pequeña muestra con ayuda de un microscopio de epifluorescencia como se indica arriba. Las células Listeria están marcadas con una fluorescencia verde clara (en la foto de blanco y negro irradian una luz clara). El área de aminoácido His133 a Lys289 forma un CBD capaz de funcionar.
Con un resultado similar puede repetirse el ensayo usándose otros CBD de lisinas de fagos de Listeria, por ejemplo, usándose los CBD de Ply118 y los CBD de Ply511. No obstante, no es posible derivar los dominios CBD a libre elección unos de otros, es decir, el dominio CBD funcional debe determinarse y probarse de nuevo para cada proteína individual de forma independiente, debido a la secuencia especial y la estructura de proteína secundaria/terciaria.

Claims (23)

1. Procedimiento para la detección específica de células diana mediante unión, comprendiendo el procedimiento los siguientes pasos:
a) selección de proteínas de unión especifica a la célula diana;
b) preparación de los dominios de proteína responsables de la unión a la pared celular (CBD) como fragmentos de proteína, careciendo estos fragmentos de proteína de cualquier actividad hidrolítica; y
c) puesta en contacto entre los dominios de proteína obtenidos en el paso b) y una muestra que ha de examinarse.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, en el que las proteínas de unión específica a la célula diana se seleccionan entre el siguiente grupo:
hidrolasas de pared celular codificadas por bacteriófagos; hidrolasas de pared celular bacterianas; autolisinas; moléculas receptoras de bacteriófagos y otros virus específicos para levaduras, mohos y células eucarióticas; y proteínas de pared celular asociadas a la pared celular de forma no covalente.
3. Procedimiento según la reivindicación 2, caracterizado porque se trata de endolisinas, lisinas de fagos, lisinas, hidrolasas de mureína y/o hidrolasas de peptidoglicano.
4. Procedimiento según la reivindicación 3, caracterizado porque se codifican las lisinas de bacteriófagos para bacterias del género Listeria.
5. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque las células diana se seleccionan entre el grupo formado por bacterias y esporas bacterianas, levaduras, mohos y esporas de mohos, células vegetales y células animales.
6. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque los dominios de polipéptido de unión a pared celular (CBD) se derivan y obtienen de la secuencia de nucleótidos de genes y/o de la secuencia de aminoácidos de productos génicos (proteínas).
7. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque los productos génicos comprenden también aquellos productos génicos que no se vuelven funcionales y eficaces hasta después de una modificación post-traduccional.
8. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque los CBD usados están unidos directamente a un marcador que ha de detectarse mediante fusiones genéticas traduccionales.
9. Procedimiento según la reivindicación 8, caracterizado porque el marcador que ha de detectarse son proteínas fluorescentes, en particular GFP, BFP, de forma especialmente preferible GFP mut-1 o GFP mut-2.
10. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque los CBD usados están unidos directamente a un amplificador que ha de detectarse en otras reacciones mediante fusiones genéticas traduccionales.
11. Procedimiento según la reivindicación 10, caracterizado porque el amplificador es peroxidasa o fosfatasa u otra enzima con un efecto comparable.
12. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque, después de modificaciones posteriores, los CBD usados están provistos de marcadores particulares, colorantes, amplificadores o isótopos radioactivos que han de detectarse.
13. Procedimiento según la reivindicación 12, en el que el colorante son colorantes fluorescentes.
14. Procedimiento según la reivindicación 12 ó 13, caracterizado porque el amplificador es biotina, peroxidasa, fosfatasa o enzimas comparables.
15. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, en el que los CBD se unen mediante distintos procedimientos y/o reacciones químicas o físicas a una fase sólida, permitiendo posteriormente la inmovilización de las células diana en una superficie sólida mediante unión a las paredes celulares de las células diana.
16. Procedimiento según la reivindicación 15, en el que la fase sólida es poliestireno activado, vidrio o silicio activado, látex activado, oro o compuestos de oro activados, distintos materiales soporte ferromagnéticos o plásticos hidrófobos.
17. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque las células diana inmovilizadas mediante CBD unidos a fase sólida pueden ser marcadas y detectadas a modo de un ensayo CBD sándwich con moléculas CBD secundarias marcadas y/o modificadas.
18. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones 1 a 16, caracterizado porque las células diana inmovilizadas mediante CBD unidos a fase sólida pueden ser marcadas y detectadas a modo de un ensayo CBD sándwich ELISA con anticuerpos secundarios marcados y/o modificados de la clase de las inmunoglobulinas.
19. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones 1 a 16, caracterizado porque las células diana inmovilizadas mediante anticuerpos primarios unidos a fase sólida de la clase de las inmunoglobulinas pueden ser marcadas y detectadas a modo de un ensayo IG-CBD sándwich con moléculas CBD secundarias marcadas y/o modificadas.
20. Procedimiento según una o varias de las reivindicaciones 1 a 16, caracterizado porque un CBD se une ado a una fase sólida móvil puede unir células diana a partir de mezclas de células diluidas o heterogéneas, permitiendo en pasos posteriores el enriquecimiento selectivo, el aislamiento, la purificación o la detección de éstas.
21. Procedimiento según la reivindicación 20, en el que en la fase móvil se trata de partículas ferromagnéticas.
22. Uso del procedimiento según una o varias de las reivindicaciones 1 a 21 para el marcado, detección, diagnóstico, inmovilización y enriquecimiento de células.
23. Combinación de reactivos para procedimientos según una o varias de las reivindicaciones precedentes que, además de los indicadores habituales, contiene uno o varios CBD purificado(s) definido(s) según el paso b) en la reivindicación 1.
ES99952414T 1998-08-20 1999-08-12 Deteccion de celulas madre mediante dominios especificos de union a pared celular (cbd) de proteinas de union a pared celular. Expired - Lifetime ES2209517T3 (es)

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Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10129815A1 (de) 2001-06-24 2003-01-09 Profos Ag Verfahren zur Aufreinigung von Bakterienzellen und Zellbestandteilen
GB0202556D0 (en) 2002-02-04 2002-03-20 Danisco Novel Protein
US20040197833A1 (en) * 2003-04-03 2004-10-07 Danisco A/S Method for the enrichment of target cells by use of CBDs
DE102005040347A1 (de) * 2005-08-25 2007-03-01 Profos Ag Verfahren und Mittel zur Anreicherung, Entfernung und zum Nachweis von Listerien
DE102006061002A1 (de) * 2006-12-22 2008-06-26 Profos Ag Verfahren und Mittel zur Anreicherung, Entfernung und zum Nachweis von gram-positiven Bakterien
EP2157100A1 (en) * 2008-08-19 2010-02-24 Profos AG Artificial peptidoglycan lysing enzymes and peptidoglycan binding proteins
DE102013106462B3 (de) * 2013-06-20 2014-10-09 Airbus Defence and Space GmbH Detektionsverfahren zur Detektion von Bakterien, Verfahren zur Herstellung von Fusionsproteinen und Fusionsprotein

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4329151A (en) * 1979-08-17 1982-05-11 Icl Scientific Stable diagnostic reagent and method for qualitative determinations of streptococci infections
AU8108587A (en) * 1986-10-08 1988-05-06 David Bernstein Method for exposing group a streptococcal antigens and an improved diagnostic test for the identification of group a streptococci
DE4326617C1 (de) * 1993-08-07 1994-06-30 Scherer Siegfried Univ Prof Dr Verfahren zur selektiven Bekämpfung von Listeria monocytogenes in Lebensmitteln durch Phagolysine aus Listeriaphagen
AU3522795A (en) * 1994-09-09 1996-03-27 Jsd Technologies, Ltd. Decomposition of bacteria cells by phage lysins
DE19506615A1 (de) * 1995-02-24 1996-08-29 Merck Patent Gmbh Aufschluß von Bakterienzellen durch Phagenlysine

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