ES2218465T3 - Pasta aplicable por serigrafia para la fabricacion de una membrana polimera porosa para un biosensor. - Google Patents
Pasta aplicable por serigrafia para la fabricacion de una membrana polimera porosa para un biosensor.Info
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Abstract
Pasta aplicable mediante serigrafía para la fabricación de una membrana polímera porosa, que contiene, al menos, un polímero, uno o varios disolventes para el polímero, con un punto de ebullición de > 100 ºC, uno o varios no disolventes (formadores de poros) para el polímero con un punto de ebullición mayor que el del / los disolventes y un modificador hidrófilo de la viscosidad.
Description
Pasta aplicable por serigrafía para la
fabricación de una membrana polímera porosa para un biosensor.
La presente invención se refiere a una pasta
aplicable por serigrafía para la fabricación de una membrana
polímera porosa, que puede ser empleada en sensores electroquímicos,
especialmente en biosensores electroquímicos, para la preparación
integrada de, especialmente, muestras de sangre completa.
Los biosensores encuentra aplicación ya en una
pluralidad de procedimientos de diagnóstico, por ejemplo para la
determinación de la concentración de diversos factores en los
líquidos corporales, tales como en la sangre. En éste caso se buscan
sensores, que no requieran una elaboración costosa de las muestras
(de sangre), sino que proporcionen ya un resultado rápido mediante
la simple aplicación del líquido corporal sobre una tira de ensayo.
En éste caso se desarrolla una reacción bioquímica específica, tal
como por ejemplo la reacción enzimática de los componentes, a ser
determinados, que provoca entonces una transferencia electrónica
entre diversos electrodos (electrodos de trabajo y de referencia),
que puede determinarse de manera cuantitativa.
El inconveniente de la mayoría de los biosensores
electroquímicos, conocidos, consiste en que puede influenciarse la
reacción bioquímica que se desarrolla cuando se aplica la sangre
sobre la zona prevista para ello de la tira de ensayo, por otros
componentes contenidos en la sangre, ante todo por los glóbulos
rojos de la sangre (eritrocitos). De éste modo, por ejemplo, el
valor en glucosa, en el caso de valores elevados de hematocrito (=
proporción en volumen de los eritrocitos en la cantidad total de
sangre en % en volumen), que se mide con ayuda de los glucosensores
de la sangre, tradicionales, menor que el valor real. Este
inconveniente se debe a que los eritrocitos influyen, mediante
absorción sobre la capa reactiva del biosensor, sobre la difusión de
la glucosa en ésta y hacia los electrodos y disminuyen la señal de
medida.
Para resolver éste problema se han propuesto
diversas membranas, que se aplican sobre la capa enzimática de la
tira de ensayo, dispuesta sobre los electrodos, para mantener
alejados a los eritrocitos de ésta.
De éste modo la patente US 5, 658, 444 describe,
por ejemplo, una membrana para la exclusión de los eritrocitos de un
sensor, que está constituido por un polímero hidrófobo, insoluble en
agua, por un polímero hidrófilo, soluble en agua, y por un agente
para la agregación de los eritrocitos y que se prepara mediante la
pulverización sobre la superficie de la tira de ensayo.
El inconveniente de ésta membrana consiste, por
un lado, en que el diámetro de los poros de la membrana varía en
función de la distancia de pulverización y de la presión de
pulverización. Además el pulverizado de la membrana significa una
etapa de trabajo adicional, diferente de la fabricación del resto de
la tira de ensayo y, por lo tanto, costosa. Lo cuál complica el
proceso de producción y, por lo tanto, lo encarece.
La tarea de la presente invención consiste, por
lo tanto, en proporcionar una pasta para la fabricación de una
membrana porosa, que no presente los inconvenientes anteriormente
citados, pudiéndose aplicar durante el proceso de fabricación del
biosensor mediante un procedimiento insertado en el desarrollo usual
y, por lo tanto, económico, y que suministra una membrana con
tamaños constantes de los poros.
Esta tarea se resuelve por medio de una pasta
para una membrana polímera porosa, según la reivindicación 1.
Realizaciones ventajosas resultan de las reivindicaciones 2 hasta
18.
A continuación se explicará la invención por
medio de las figuras, en las que
La figura 1 muestra, esquemáticamente, la
estructura de una tira de ensayo con la membrana según la
invención,
La figura 2 muestra una característica reológica
de la pasta según la invención,
La figura 3a muestra una fotografía tomada con el
microscopio electrónico de una membrana polímera con estructura
porosa conformada de manera insuficiente,
La figura 3b muestra una fotografía tomada con el
microscopio electrónico de la membrana polímera según la invención
con estructura porosa perfectamente configurada,
La figura 4 muestra, en comparación, los
resultados de la medida con dos biosensores, estando dotado uno de
ellos con una membrana según la invención, con valores crecientes de
hematocrito,
Las figuras 5a hasta 5d muestran, en comparación,
las prestaciones clínicas de cuatro sensores de glucosa en
sangre.
En la figura 1 se ha representado la estructura
de una tira de ensayo con la membrana polímera según la invención.
Sobre un material de soporte de poliéster 1 se encuentra una
disposición de electrodos 2, en forma de una capa de carbono, que
está cubierta, a su vez, por un aislamiento 3. Sobre la zona de la
capa de los electrodos está dispuesta una capa enzimática y de
mediador 4, que está liberada del aislamiento. En el caso de un
sensor de glucosa en sangre, ésta capa contiene, por ejemplo, el
enzima glucosaoxidasa y el mediador Fe^{3+}. La membrana polímera
según la invención 5 está dispuesta sobre la capa enzimática y de
mediador 4. El conjunto está cubierto por una capa adhesiva 6 y por
una lámina de cobertura 7.
En el caso de la fabricación a escala industrial
de biosensores se empleará el procedimiento de serigrafía para el
estampado de las diversas capas, tales como las capas de los
electrodos, aislante y enzimática. En la publicación US 5, 607, 566
se describe un sistema para la aplicación de la técnica de
serigrafía. En dicha publicación se utiliza la técnica en la
fabricación, por cargas, de contactos y membranas polímeras de
sensores, selectivos a los iones de cuerpos sólidos. Las
composiciones de la pasta para la membrana polímera contienen un
poliuretano y masas que contienen cloruro de polivinilo hidroxilado
y una masa, basada en silicona, en sistemas diluyentes adecuados
para la fabricación de pastas aplicables por serigrafía con una
viscosidad y una tixotropía adecuadas.
La presente invención proporciona una membrana,
que puede aplicarse con la misma tecnología. Esto tiene, por un
lado, la ventaja de que el estampado de la membrana y, por lo tanto,
durante todo el proceso de fabricación del sensor, puede emplearse
el mismo dispositivo de serigrafía, lo cual proporciona enorme
ventajas económicas en el caso de la producción a escala industrial.
Por otro lado puede fabricarse, mediante el procedimiento de
serigrafía, de manera reproducible, una membrana con espesor y con
tamaño de los poros constante, lo cuál no se garantiza con los otros
procedimientos, tales como sobrehilado, inmersión o
pulverización.
Con el fin de que la pasta, empleada para la
fabricación de la membrana polímera, pueda ser aplicada mediante
serigrafía, el o los disolventes para el polímero, contenidos en la
misma, deben presentar un punto de ebullición tan elevado como sea
posible (por encima de 100ºC), para evitar el secado prematuro del
material en la máquina de estampado. Además la pasta contiene un
agente no disolvente para el polímero, que actúa a modo de formador
de poros y que presenta un punto de ebullición mayor que el del, o
que el de los disolventes empleados.
Además la pasta debe tener una viscosidad
adecuada (30.000-50.000 cpi), para garantizar un
flujo homogéneo a través del tamiz durante el estampado.
Preferentemente se disminuye la viscosidad de la pasta bajo el
efecto de fuerzas de cizalla, como se ha representado en la figura 2
en la característica reológica.
Como polímero se empleará en la pasta según la
invención, preferentemente, acetato de celulosa (50 kDa).
Preferentemente está contenido en una proporción de aproximadamente
un 8% en peso en la pasta aplicable por serigrafía. Además puede
estar contenido a modo de otro polímero, nitrato de celulosa con una
proporción de hasta un 10% en peso.
Como disolventes para el polímero pueden
emplearse, por ejemplo, 1,4-dioxano (punto de
ebullición 102ºC) y/o 4-hidroximetilpentanona (punto
de ebullición 165ºC). Una composición preferente contiene desde un 0
hasta un 20% en peso, preferentemente de un 20% en peso de
1,4-dioxano y desde un 0 hasta un 70% en peso,
preferentemente un 56% en peso de
4-hidrometilpentanona, pudiendo estar reemplazada la
4-hidroximetilpentanona, alternativamente, por
acetato de etilo o por diacetato de etilenglicol.
Se observa que son adecuados, como formadores de
poros, para la pasta para la membrana, aplicable por serigrafía,
alcoholes de cadena larga con un punto de ebullición de > 150ºC;
preferentemente se emplearán n-octanol, que
presenta un punto de ebullición de 196ºC y/o
2-metil-2,4-pentanodiol
(MPD), que presenta un punto de ebullición de 197ºC.
Cuando se utiliza el
2-metil-2,4-pentanodiol
(MPD) como formador de poros, la pasta es algo más tolerante frente
a la eliminación por evaporación de dioxano. También el acetato de
celulosa permanece mayor tiempo en solución, con lo cuál se prolonga
el tiempo durante el cuál la pasta permanece en estado susceptible
de ser estampada. Este "tiempo de vida útil" mayor posibilita
la producción de mayores cargas con una calidad constante.
El formador de poros debe estar contenido en una
proporción desde un 5 hasta un 20% en peso, preferentemente desde un
12 hasta un 15% en peso.
Como modificadores de la viscosidad se utilizan,
por ejemplo, xerogeles de sílice hidrófilos o "Fumed Silicas"
sílices pirógenas equivalentes, bentonitas, cretas, natrosol o
negro de carbón. Estos deben añadirse a la pasta aplicable por
serigrafía en una proporción desde un 1 hasta un 10% en peso. De
manera preferente se emplearán
Cab-O-Silos hidrófilos (nombre
comercial para los xerogeles de sílice, comercializados por la firma
Cabot), tales como Cab-O-Sil M5,
Cab-O-Sil H5,
Cab-O-Sil LM150,
Cab-O-Sil LM130, con una proporción
de un 4% en peso.
Además pueden añadirse otro aditivos tales como
Tween 20, Triton X, Silvet 7600 ó 7280, laurilsulfato (SDS), otros
detergentes así como polioles tales como glicerol o polímeros
hidrófilos, tales como polivinilpirrolidona (PVP), o bien
copolímeros de vinilpirrolidona-acetato de vinilo
(PVP/VA).
La adición de uno o varios de éstos aditivos no
es obligatoria para la fabricación de la membrana; sin embargo, se
observó que mejoran la humectabilidad de la membrana y que pueden
acelerar la respuesta del sensor. De manera preferente se emplearán
PVP/VA o PVP con una proporción de un 0,1% en peso en las pastas
aplicables por serigrafía.
Además la adición de los aditivos Bioterge,
polietilenimina, BSA, dextrano, ftalato de diciclohexilo, gelatinas,
sucrosas y/o biuret puede mejorar la separación de los eritrocitos y
el plasma.
Además es posible añadir a las pastas de acetato
de celulosa ya enzima, por ejemplo la glucosa oxidasa, de manera que
en el procedimiento de fabricación del biosensor pueda eliminarse
el estampado de la capa enzimática.
Tras la aplicación de la capa homogénea de la
pasta estampada sobre un substrato, adecuado, se forma la membrana
en el proceso de secado. Se forma una capa porosa y no una película
cerrada, puesto que los disolventes empleados tienen un punto de
ebullición más bajo que el formador de los poros; de manera
correspondientes los disolventes se evaporan rápidamente y precipita
el polímero de acetato de celulosa en la película remanente del
formador de poros.
Sin embargo, en combinación con un biosensor, no
puede emplearse en el proceso para el secado una temperatura
arbitrariamente elevada, puesto que se desnaturalizan a temperaturas
demasiado elevadas los enzimas / proteínas empleados. En combinación
con un biosensor, para la determinación de la glucosa en la sangre
completa se consiguieron los mejores resultados con una temperatura
para el secado de aproximadamente 70ºC. De manera correspondiente
deben elegirse los puntos de ebullición de los disolventes empleados
y de los formadores de los poros.
Los modificadores de la viscosidad empleados
juegan un factor decisivo para la formación de los poros, que forma
un gel junto con el formador de poros, para estabilizar la
estructura polímera. En las substancias empleadas se forma el gel
mediante la interacción entre los grupos OH del xerogel de sílice y
el alcohol de cadena larga (por ejemplo octanol). La cantidad y la
distribución del gel, que se forma durante el proceso para el
secado, es decisiva finalmente para el tamaño y la forma de los
poros a ser formados.
En ausencia de adición de un modificador de la
viscosidad se forma una emulsión a partir del disolvente y del
formador de los poros, puesto que el formador de los poros no es
capaz, por sí solo, de estabilizar el esqueleto polímero. Como
resultado se obtiene una película blanca, lisa y no estructurada con
el formador de los poros ocluido, que no permite un transporte
lateral de líquidos. En comparación con lo anterior, se obtiene una
película clara, cuando no se utilice un formador de poros en la
pasa.
Cuando se utilizan pequeñas cantidades de
modificadores de la viscosidad (< 1% en peso) se obtiene una
membrana con una estructura de los poros configurada solo de manera
insuficiente, como se ha representado en la figura 3a.
Puesto que los diversos modificadores de la
viscosidad, adecuados, presentan diferentes propiedades
superficiales, podrá elegirse el modificador de la viscosidad en
función de la membrana deseada o del biosensor deseado. De manera
ejemplificativa se "tritura" el
Cab-O-Sil H5 con una elevada carga
mecánica, por ejemplo en el caso de tiempos prolongados de estampado
o cuando se estampen capas muy delgadas con elevada presión de la
rasqueta. La superficie presenta entonces bordes de rotura
microscópicos vivos, que pueden conducir al lisado de los glóbulos
rojos de la sangre.
Para un sensor de azúcar en sangre esto
constituye una propiedad indeseada puesto que, de éste modo, se
aumenta la corriente fundamental del sensor. Por otro lado, éste
efecto puede optimarse y aprovecharse el plasma de las células
directamente en el sensor para la detección electroquímica. Un
ejemplo práctico sería la determinación de hemoglobina en
eritrocitos. En éste caso reacciona el mediador del biosensor, por
ejemplo hexacianoferrato (III) potásico, con el grupo Fe(II)
de la hemoglobina, con lo cuál se genera hexacianoferrato (II) de
potasio, que puede determinarse directamente en los electrodos del
biosensor. En éste caso no se requiere un enzima, como en el caso de
la determinación de la glucosa, puesto que el mediador reacciona
directamente con la hemoglobina. En la práctica puede llevarse a
cabo, así, la determinación del valor de hematocrito de un paciente
con dispositivos de medida similares a los del control para el
azúcar en sangre, con lo cuál es innecesario el empleo de tubitos
capilares y de centrífugas, que requieren mucho tiempo.
El Cab-O-Sil LM
150 está constituido por partículas más pequeñas que H5, que, por lo
tanto, son estables y no quedan dañadas por la tensión mecánica
durante el proceso de estampado. Por lo tanto, éste modificador de
la viscosidad es adecuado, de manera excelente, para la fabricación
de una membrana para sensores de azúcar en sangre.
De acuerdo con la descripción anterior, la
diferencia entre los puntos de ebullición, entre los disolventes y
los formadores de los poros, además del estabilizado del esqueleto
polímero mediante el modificador de la viscosidad, es significativa
para la formación de una membrana adecuada. En éste caso la
diferencia debería ser de aproximadamente 30ºC, con el fin de que en
el proceso para el secado se forme una película, que contenga una
concentración suficientemente elevada en formador de poros, en el
que pueda precipitar el polímero de la membrana. En caso de menores
diferencias entre los puntos de ebullición, el formador de poros
comienza a evaporarse, antes de que se alcance una proporción
crítica entre el disolvente y el formador de poros, que provoca la
precipitación del polímero de la membrana.
Tras estampado de la pasta, aplicable por
serigrafía, con la composición descrita precedentemente y
evaporación del disolvente, se forma una membrana, mediante
sedimentación del éster de celulosa, con un tamaño de poros promedio
desde 0,1 hasta 2 \mum, pudiéndose influenciar el tamaño de los
poros a través de la cantidad empleada del alcohol de cadena larga.
En la figura 3b se ha representado una fotografía de la membrana,
tomada con el microscopio electrónico. Puesto que los eritrocitos
presentan un tamaño medio desde 8 hasta 10 \mum, son retenidos a
través de la membrana por la capa enzimática, mientras que el plasma
pasa sin impedimento. Además la membrana contribuye a la estabilidad
mecánica de la capa enzimática e impide que el enzima se desprenda
de los electrodos cuando se aplique la prueba de sangre y entonces
ya no esté disponible para la reacción electroquímica.
En la figura 4 se pone de manifiesto, por medio
de una serie de medidas, que, a concentración constante en glucosa,
la tira de ensayo, dotada con una membrana según la invención,
proporciona en contra de lo que ocurre en el caso de una tira de
ensayo sin membrana, resultados constantes con valores crecientes de
hematocrito, mientras que en el caso de la tira de ensayo sin
membrana la respuesta disminuye a medida que aumenta la
concentración en eritrocitos. Debido a la mayor barrera a la
difusión entre la capa enzimática y la muestra de sangre, queda algo
disminuida, en conjunto, la respuesta en el caso del sensor con
membrana.
La invención se ilustra por medio de los ejemplos
siguientes.
De acuerdo con las relaciones cuantitativas,
indicadas en los ejemplos siguientes, se prepara una mezcla
constituida por el disolvente (por ejemplo hidroximetilpentanona,
dioxano) y el formador de poros (por ejemplo octanol, MPD) con el
fin de garantizar una distribución homogénea de ambas substancias.
En la etapa siguiente se añaden todos los aditivos (por ejemplo
PVP/AV) y, en caso necesario, se disuelven con ayuda de
ultrasonidos. A continuación se mezcla rápidamente el polímero de la
membrana (acetato de celulosa 50 kDa) bajo el disolvente
anteriormente preparado, hasta que se forme una suspensión
homogénea. Ésta suspensión se hace rotar durante 48 h en un
recipiente cerrado hasta que se forme un gel claro, al que se añade
el modificador de la viscosidad (por ejemplo
Cab-O-Sil). La pasta para el
estampado, acabada, se hace rotar durante otras 24 h para garantizar
una distribución homogénea del modificador de la viscosidad.
| Polímero (s): | |
| acetato de celulosa (Mw 30.000) | 7,5% en peso |
| Disolvente: | |
| diacetato de etilenglicol (punto de ebullición 186^{o}C) | 65,5% en peso |
| Formador de poros: | |
| n-decanol (punto de ebullición 231^{o}C) | 25,0% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil M5 | 2,0% en peso |
| Polímero (s): | |
| acetato de celulosa (Mw 50.000) | 8,0% en peso |
| Disolvente: | |
| 1,4-dioxano (punto de ebullición 102^{o}C) | 35,0% en peso |
| acetato de etilo (punto de ebullición 154^{o}C) | 35,0% en peso |
| Formador de poros: | |
| n-octanol (punto de ebullición 196^{o}C) | 18,0% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil M5 | 4,0% en peso |
| Polímero (s): | |
| acetato de celulosa (Mw 50.000) | 8,0% en peso |
| Disolvente: | |
| 1,4-dioxano (punto de ebullición 102^{o} C) | 20,0% en peso |
| 4-hidroximetilpentanona (punto de ebullición 165^{o}C) | 56,0% en peso |
| Formador de poros: | |
| n-octanol (punto de ebullición 196^{o}C) | 12,0% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil M5 | 4,0% en peso |
| Aditivos: | |
| PVP/VA | 0,1% en peso |
| Polímero (s): | |
| acetato de celulosa (Mw 50.000) | 7,4% en peso |
| Disolvente: | |
| 1,4-dioxano (punto de ebullición 102^{o}C) | 18,5% en peso |
| 4-hidroximetilpentanona (punto de ebullición 165^{o}C) | 55,6% en peso |
| Formador de poros: | |
| 2-metil-2,4-pentanodiol | 14,8% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil M5 | 3,7% en peso |
| Aditivos: | |
| PVP/VA | 0,1% en peso |
La figura 5 muestra las prestaciones clínicas de
los sensores de glucosa en sangre
a) sin membrana polímera
b) con membrana polímera (composición según el
ejemplo 2)
c) con membrana polímera (composición según el
ejemplo 3)
d) con membrana polímera (composición según el
ejemplo 4)
En los ensayos clínicos comparativos se
compararon los resultados de la medida de los diversos tipos de
sensores con los resultados de la medida del método de referencia
(YSI Model 2300 Stat Plus) y se representaron las desviaciones en
porcentaje frente a los valores de hematocrito de las muestras de
sangre individuales. En el caso ideal se obtiene una línea de medida
horizontal al eje x. La pendiente de ésta línea de medida, que se ha
representado en la tabla 1, proporciona información sobre la
interferencia de hematocrito del sistema sensor empleado.
| Pendiente de la línea de medida | Pendiente en % | |
| Tipo 1 (ausencia de membrana) | -0,8253 | 100% |
| Tipo 2 (membrana del ejemplo 2) | -0,4681 | 56% |
| Tipo 3 (membrana del ejemplo 3) | -0,2946 | 35% |
| Tipo 4 (membrana del ejemplo 4) | -0,0273 | 3,3% |
Los datos permiten reconocer, claramente, la
mayor prestación del sistema sensor con la membrana preferente
(composición según el ejemplo 4). Ésta mejora se consigue mediante
la separación entre la sangre completa y el plasma inmediatamente
antes del electrodo, puesto que la capa de difusión de Nernst ya no
se extiende por delante del electrodo en la zona con eritrocitos y,
por lo tanto, tampoco puede ser influenciada ya por los valores
diferentes de hematocrito.
En los ejemplos comparativos siguientes se
describen pastas para el estampado en las que no existe una
coordinación adecuada entre el formador de poros, los disolventes y
el modificador de la viscosidad.
Ejemplo comparativo
1
| Polímero (s): | |
| acetato de celulosa (Mw 50.000) | 8,0% en peso |
| Disolvente: | |
| diacetato de etilenglicol (punto de ebullición 186^{o}C) | 76,0% en peso |
| Formador de poros: | |
| n-octanol (punto de ebullición 196^{o}C) | 12,0% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil M5 (hidrófilo) | 4,0% en peso |
| Aditivos: | |
| PVP/VA | 0,1% en peso |
Ejemplo comparativo
2
| Polímero (s): | |
| acetato de celulosa (Mw 50.000) | 8,0% en peso |
| Disolvente: | |
| 1,4-dioxano (punto de ebullición 102^{o}C) | 20,0% en peso |
| 4-hidroximetilpentanona (punto de ebullición 165^{o}C) | 56,0% en peso |
| Formador de poros: | |
| n-octanol (punto de ebullición 196^{o}C) | 12,0% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil TS720 (hidrófobo) | 4,0% en peso |
| Aditivos: | |
| PVP/VA | 0,1% en peso |
Ejemplo comparativo
3
| Polímero (s): | |
| acetatopropionato de celulosa (Mw 75.000) | 8,0% en peso |
| Disolvente: | |
| 1,4-dioxano (punto de ebullición 102^{o}C) | 20,0% en peso |
| 4-hidroximetilpentanona (punto de ebullición 165^{o}C) | 56,0% en peso |
| Formador de poros: | |
| n-octanol (punto de ebullición 196^{o}C) | 12,0% en peso |
| Modificador de la viscosidad: | |
| Cab-O-Sil M5 (hidrófilo) | 4,0% en peso |
| Aditivos: | |
| PVP/VA | 0,1% en peso |
En el ejemplo comparativo 1 no se forma una
membrana porosa debido a la pequeña diferencia entre los puntos de
ebullición del disolvente (diacetato de etilenglicol), empleado en
la pasta para el estampado y el formador de poros
(n-octanol). Si, por el contrario, se utiliza
n-decanol como formador de poros (como se ha
descrito en el ejemplo 1), se obtiene una membrana porosa después
del proceso del secado, puesto que es suficientemente grande la
diferencia entre el punto de ebullición del disolvente y del
formador de poros.
En el ejemplo comparativo 2 tiene lugar
únicamente una formación insuficiente de gel entre el formador de
poros y el modificador de la viscosidad y, por lo tanto, no tiene
lugar una estabilización suficiente del esqueleto polímero, debido
al empleo de Cab-O-Sil hidrófobo,
que no es capaz de reaccionar con los grupos OH del formador de
poros. De éste modo se impide la formación de una membrana
porosa.
En el ejemplo comparativo 3, en el que el
polímero empleado (acetatopropionato de celulosa) presenta una
solubilidad demasiado elevada en el formador de poros, tampoco se
forma una membrana porosa.
Claims (18)
1. Pasta aplicable mediante serigrafía para la
fabricación de una membrana polímera porosa, que contiene, al menos,
un polímero, uno o varios disolventes para el polímero, con un punto
de ebullición de > 100ºC, uno o varios no disolventes (formadores
de poros) para el polímero con un punto de ebullición mayor que el
del / los disolventes y un modificador hidrófilo de la
viscosidad.
2. Pasta aplicable mediante serigrafía según la
reivindicación 1, caracterizada porque la diferencia de los
puntos de ebullición entre el disolvente y el formador de poros es,
al menos, de 30ºC.
3. Pasta aplicable por serigrafía según las
reivindicaciones 1 ó 2, caracterizada porque la pasta
contiene acetato de celulosa como polímero.
4. Pasta aplicable por serigrafía según la
reivindicación 3, caracterizada porque la pasta contiene
1,4-dioxano y/o
4-hidroximetilpentanona y/o acetato de etilo como
disolvente.
5. Pasta aplicable por serigrafía según al menos
una de las reivindicaciones 1 a 4, caracterizada porque la
pasta contiene un alcohol de cadena larga como formador de
poros.
6. Pasta aplicable por serigrafía según la
reivindicación 5, caracterizada porque la pasta contiene
n-octanol y/o
2-metil-2,4-pentanodiol
como formador de poros.
7. Pasta aplicable por serigrafía según la
reivindicación 6, caracterizada por que está contenido
n-octanol y/o
2-metil-2,4-pentanodiol
en una proporción de un 5 a un 20% en peso.
8. Pasta aplicable por serigrafía según al menos
una de las reivindicaciones precedentes, caracterizada porque
la pasta contiene xerogel de sílice hidrófilo como modificador de la
viscosidad.
9. Pasta aplicable por serigrafía según la
reivindicación 8, caracterizada porque el xerogel de sílice
está contenido en una proporción desde un 1 hasta un 10% en
peso.
10. Pasta aplicable por serigrafía según al menos
una de las reivindicaciones precedentes, caracterizada porque
la pasta contiene, además, copolímero de
vinilpirrolidona-acetato de vinilo (PVP/VA) y/o
polivinilpirrolidona (PVP).
11. Pasta aplicable por serigrafía según la
reivindicación 10, caracterizada porque contiene el PVP/VA o
bien el PVP en una proporción de un 0,1% en peso.
12. Pasta aplicable por serigrafía según al menos
una de las reivindicaciones precedentes, caracterizada porque
la pasta contiene, además, uno o varios enzimas.
13. Procedimiento para la fabricación de una
pasta aplicable por serigrafía, en el que
se prepara una mezcla constituida por uno o
varios disolventes para un polímero y uno o varios no disolventes
para un polímero (formadores de poros),
el polímero se mezcla hasta la formación de una
suspensión homogénea,
la suspensión se hace rotar hasta la formación de
un gel claro,
se añade un modificador hidrófilo de la
viscosidad y
el conjunto se hace rotar hasta la distribución
homogénea del modificador de la viscosidad,
en el que el / los disolventes presenta /
presentan un punto de ebullición de > 100ºC y el / los no
disolventes presentan un punto de ebullición mayor que el del / los
disolventes.
14. Uso de la pasta según al menos una de las
reivindicaciones 1 a 12, para la fabricación de una membrana
polímera, porosa.
15. Uso según la reivindicación 14, en el que la
membrana polímera se aplica en una tira de ensayo de biosensor.
16. Uso según la reivindicación 14,
caracterizado porque el biosensor está configurado para la
medida de la concentración de glucosa en sangre.
17. Uso según la reivindicación 15,
caracterizado porque el biosensor está configurado para la
determinación del valor de hematocrito.
18. Membrana polímera, porosa, fabricada a partir
de la pasta, aplicable por serigrafía, según al menos una de las
reivindicaciones 1 a 12.
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Families Citing this family (94)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6036924A (en) | 1997-12-04 | 2000-03-14 | Hewlett-Packard Company | Cassette of lancet cartridges for sampling blood |
| US6391005B1 (en) | 1998-03-30 | 2002-05-21 | Agilent Technologies, Inc. | Apparatus and method for penetration with shaft having a sensor for sensing penetration depth |
| US20050103624A1 (en) | 1999-10-04 | 2005-05-19 | Bhullar Raghbir S. | Biosensor and method of making |
| US8641644B2 (en) | 2000-11-21 | 2014-02-04 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means |
| GB0030929D0 (en) | 2000-12-19 | 2001-01-31 | Inverness Medical Ltd | Analyte measurement |
| US9427532B2 (en) | 2001-06-12 | 2016-08-30 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| US7025774B2 (en) | 2001-06-12 | 2006-04-11 | Pelikan Technologies, Inc. | Tissue penetration device |
| EP1404232B1 (en) | 2001-06-12 | 2009-12-02 | Pelikan Technologies Inc. | Blood sampling apparatus and method |
| US7981056B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-07-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Methods and apparatus for lancet actuation |
| US9226699B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-01-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface |
| US8337419B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-12-25 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| ATE485766T1 (de) | 2001-06-12 | 2010-11-15 | Pelikan Technologies Inc | Elektrisches betätigungselement für eine lanzette |
| AU2002348683A1 (en) | 2001-06-12 | 2002-12-23 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for lancet launching device integrated onto a blood-sampling cartridge |
| JP4209767B2 (ja) | 2001-06-12 | 2009-01-14 | ペリカン テクノロジーズ インコーポレイテッド | 皮膚の性状の一時的変化に対する適応手段を備えた自動最適化形切開器具 |
| ATE494837T1 (de) | 2001-06-12 | 2011-01-15 | Pelikan Technologies Inc | Integriertes system zur blutprobenanalyse mit mehrfach verwendbarem probennahmemodul |
| DE60239132D1 (de) | 2001-06-12 | 2011-03-24 | Pelikan Technologies Inc | Gerät zur erhöhung der erfolgsrate im hinblick auf die durch einen fingerstich erhaltene blutausbeute |
| US9795747B2 (en) | 2010-06-02 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Methods and apparatus for lancet actuation |
| US7344894B2 (en) | 2001-10-16 | 2008-03-18 | Agilent Technologies, Inc. | Thermal regulation of fluidic samples within a diagnostic cartridge |
| US8221334B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-07-17 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7648468B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-01-19 | Pelikon Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7892183B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-02-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| US7713214B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-05-11 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device with optical analyte sensing |
| US7582099B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-09-01 | Pelikan Technologies, Inc | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7976476B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-07-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Device and method for variable speed lancet |
| US7410468B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-08-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7331931B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-02-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7717863B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-05-18 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7374544B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-05-20 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8372016B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-02-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| US9795334B2 (en) | 2002-04-19 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7674232B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-03-09 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7141058B2 (en) | 2002-04-19 | 2006-11-28 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a body fluid sampling device using illumination |
| US7175642B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-02-13 | Pelikan Technologies, Inc. | Methods and apparatus for lancet actuation |
| US8360992B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-01-29 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8267870B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-09-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation |
| US7524293B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-04-28 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US9248267B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-02-02 | Sanofi-Aventis Deustchland Gmbh | Tissue penetration device |
| US7229458B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7491178B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-02-17 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7291117B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-11-06 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US9314194B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-04-19 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| US7244265B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-07-17 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8579831B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-11-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7909778B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8702624B2 (en) | 2006-09-29 | 2014-04-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Analyte measurement device with a single shot actuator |
| US7901362B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-08 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7371247B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-05-13 | Pelikan Technologies, Inc | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7547287B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-06-16 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7297122B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-11-20 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| WO2003088824A2 (en) | 2002-04-19 | 2003-10-30 | Pelikan Technologies, Inc. | Device and method for variable speed lancet |
| US7485128B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-02-03 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7232451B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8784335B2 (en) | 2002-04-19 | 2014-07-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling device with a capacitive sensor |
| US7563232B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-07-21 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| CA2504574C (en) * | 2002-10-30 | 2012-03-27 | Inverness Medical Limited | Apparatus and method for controlling registration of print steps in a continuous process for the manufacture of electrochemical sensors |
| US7244264B2 (en) | 2002-12-03 | 2007-07-17 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Dual blade lancing test strip |
| US8574895B2 (en) | 2002-12-30 | 2013-11-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels |
| EP2238892A3 (en) | 2003-05-30 | 2011-02-09 | Pelikan Technologies Inc. | Apparatus for body fluid sampling |
| ES2490740T3 (es) | 2003-06-06 | 2014-09-04 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Aparato para toma de muestras de fluido sanguíneo y detección de analitos |
| US7462265B2 (en) * | 2003-06-06 | 2008-12-09 | Lifescan, Inc. | Reduced volume electrochemical sensor |
| US20040251132A1 (en) * | 2003-06-06 | 2004-12-16 | Leach Christopher Philip | Reduced volume strip |
| WO2006001797A1 (en) | 2004-06-14 | 2006-01-05 | Pelikan Technologies, Inc. | Low pain penetrating |
| US7604592B2 (en) | 2003-06-13 | 2009-10-20 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a point of care device |
| WO2004113903A1 (ja) | 2003-06-19 | 2004-12-29 | Arkray, Inc. | 絶縁膜に開口部を設けた分析用具 |
| KR100785670B1 (ko) | 2003-06-20 | 2007-12-14 | 에프. 호프만-라 로슈 아게 | 폭이 좁은 균질한 시약 시트립을 제조하는 방법 및 시약 |
| US7452457B2 (en) | 2003-06-20 | 2008-11-18 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for analyte measurement using dose sufficiency electrodes |
| US7604721B2 (en) | 2003-06-20 | 2009-10-20 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| US7597793B2 (en) | 2003-06-20 | 2009-10-06 | Roche Operations Ltd. | System and method for analyte measurement employing maximum dosing time delay |
| EP1671096A4 (en) | 2003-09-29 | 2009-09-16 | Pelikan Technologies Inc | METHOD AND APPARATUS FOR PROVIDING IMPROVED SAMPLE CAPTURING DEVICE |
| WO2005037095A1 (en) | 2003-10-14 | 2005-04-28 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a variable user interface |
| US7822454B1 (en) | 2005-01-03 | 2010-10-26 | Pelikan Technologies, Inc. | Fluid sampling device with improved analyte detecting member configuration |
| US8668656B2 (en) | 2003-12-31 | 2014-03-11 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture |
| US8828203B2 (en) | 2004-05-20 | 2014-09-09 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Printable hydrogels for biosensors |
| US9820684B2 (en) | 2004-06-03 | 2017-11-21 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a fluid sampling device |
| US9775553B2 (en) | 2004-06-03 | 2017-10-03 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a fluid sampling device |
| US7569126B2 (en) | 2004-06-18 | 2009-08-04 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for quality assurance of a biosensor test strip |
| US7556723B2 (en) | 2004-06-18 | 2009-07-07 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Electrode design for biosensor |
| AU2005295106B2 (en) | 2004-10-12 | 2012-03-15 | Bayer Healthcare Llc | Concentration determination in a diffusion barrier layer |
| JP4643222B2 (ja) * | 2004-10-27 | 2011-03-02 | 日機装株式会社 | バイオセンサーおよびその製造方法 |
| US8652831B2 (en) | 2004-12-30 | 2014-02-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for analyte measurement test time |
| US8744546B2 (en) * | 2005-05-05 | 2014-06-03 | Dexcom, Inc. | Cellulosic-based resistance domain for an analyte sensor |
| US9386944B2 (en) | 2008-04-11 | 2016-07-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for analyte detecting device |
| US20090294302A1 (en) * | 2008-05-28 | 2009-12-03 | John Pasqua | Use of Alginate to Reduce Hematocrit Bias in Biosensors |
| US9375169B2 (en) | 2009-01-30 | 2016-06-28 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system |
| US8025788B2 (en) * | 2009-04-24 | 2011-09-27 | Lifescan Scotland Limited | Method for manufacturing an enzymatic reagent ink |
| US20100273249A1 (en) * | 2009-04-24 | 2010-10-28 | Lifescan Scotland Limited | Analytical test strips |
| KR101239219B1 (ko) * | 2009-10-15 | 2013-03-06 | 한국전자통신연구원 | 바이오 칩 및 바이오 칩 검출 방법 |
| US8965476B2 (en) | 2010-04-16 | 2015-02-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| CN103328588B (zh) * | 2010-10-28 | 2015-08-19 | 深圳智慧天使投资有限公司 | 一种w/o乳液油墨组合物及其应用 |
| US8486717B2 (en) | 2011-01-18 | 2013-07-16 | Symbolics, Llc | Lateral flow assays using two dimensional features |
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|---|---|---|---|---|
| US4425263A (en) * | 1981-06-03 | 1984-01-10 | E. I. Du Pont De Nemours & Co. | Flexible screen-printable conductive composition |
| US5607566A (en) * | 1989-06-23 | 1997-03-04 | The Board Of Regents Of The University Of Michigan | Batch deposition of polymeric ion sensor membranes |
| US5645778A (en) * | 1992-11-16 | 1997-07-08 | Althin Medical, Inc. | Process of making a cellulose acetate semipermeable membrane |
| GB9309797D0 (en) * | 1993-05-12 | 1993-06-23 | Medisense Inc | Electrochemical sensors |
| US5378408A (en) * | 1993-07-29 | 1995-01-03 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Lead-free thick film paste composition |
| US5556576A (en) * | 1995-09-22 | 1996-09-17 | Kim; Yong C. | Method for producing conductive polymeric coatings with positive temperature coefficients of resistivity and articles made therefrom |
| US5886059A (en) * | 1997-07-08 | 1999-03-23 | Memtec America Corporation | Highly asymmetric polyethersulfone filtration membranes |
| US6134461A (en) * | 1998-03-04 | 2000-10-17 | E. Heller & Company | Electrochemical analyte |
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