ES2221038T3

ES2221038T3 - Metodo de control de microorganismos.

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Publication number: ES2221038T3
Application number: ES97905524T
Authority: ES
Inventors: Jan-Olof Eriksson
Original assignee: Individual
Current assignee: Individual
Priority date: 1996-02-22
Filing date: 1997-02-13
Publication date: 2004-12-16
Anticipated expiration: 2017-02-13
Also published as: WO1997030589A1; ATE265143T1; SE9600663D0; EP1018882A1; AU2237397A; SE9600663L; DE69728911T2; EP1018882B1; DE69728911D1; US6045708A; PT1018882E

Abstract

Un método para controlar las bacterias en el agua potable, caracterizado porque una composición que consiste esencialmente en percarbonato sódico se añade al agua, estando la cantidad de percarbonato sódico añadido al agua en el intervalo de 0, 01 a 2, 0% en peso y careciendo el agua resultante de residuos tóxicos.

Description

Método de control de microorganismos.

Antecedentes

Todos los organismos vivos han desarrollado numerosos mecanismos de protección frente a factores letales. En el grupo de los microorganismos esta resistencia desarrollada es especialmente significativa. Los microorganismos pueden, por ejemplo, formar esporas que son más resistentes a la sequedad, calor, productos químicos y ultrasonidos en comparación a las células vegetativas maternas. Las esporas pueden, bajo circunstancias favorables, crecer para convertirse en una célula vegetativa nuevamente.

Se entiende por esterilización el tratamiento para retirar todas las formas vivas y virus de un objeto. Un método fiable de esterilización química sería deseable en numerosas conexiones. Hasta la fecha, sólo existen unas pocas sustancias posibles. Las sustancias deben ser fácilmente eliminadas del objeto después de la esterilización y no deben dejar ningún subproducto tóxico y, simultáneamente, deben presentar un efecto biocida fuerte. Preparaciones de halógenos, tales como cloro gaseoso, hipoclorito de calcio (para la desinfección de establos y retretes químicos) y disoluciones de yodo, disolventes orgánicos, metales pesados, tales como sulfato de cobre (como fungicida frente a hongos y también frente a algas) y detergentes pueden mencionarse como ejemplos de agentes químicos esterilizadores.

Las esporas constituyen un gran problema en numerosos campos y en la actualidad no existe un método eficaz para matar esporas. Algunas esporas son extremadamente resistentes a la sequedad, radiación, productos químicos y ultrasonidos y pueden sobrevivir a la ebullición (a 100ºC) durante varias horas. Para matar las esporas se precisa esterilizar en autoclave a 121ºC o de una esterilización fraccionada, lo que, sin embargo, no proporciona seguridad completa. Para esterilizar con calor seco se precisa de una temperatura de 160ºC durante dos horas para matar las esporas (Mikrobiologi, Mikrobiologiska institutet, Lund. 1982). Estos métodos de esterilización, sin embargo, no siempre se pueden llevar a cabo en la práctica. También se emplean numerosos medios químicos para matar esporas. El formaldehído en una disolución de agua/alcohol se emplea en gran medida para "esterilizar" instrumentos quirúrgicos. Incluso si se dice que esta disolución tiene un efecto destructivo de las esporas cuando se emplea con este propósito, su efecto destructivo de esporas parece cuestionable de alguna manera (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 640 <1967>). Se ha encontrado recientemente que los dialdehídos saturados y, especialmente el glutaraldehído CHO(CH_{2})_{3}CHO, tienen un efecto esterilizador, que incluye incluso un efecto destructivo de esporas, cuando se emplea en una disolución de agua/alcohol en presencia de un agente alcalinizador, tal como el bicarbonato sódico. Se dice que el efecto destructivo bacteriano para los patógenos vegetativos ocurre en diez minutos, pero se requiere una incubación de tres horas para matar cualquier espora resistente de bacterias (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 641 <1967>). Friedl et al. han expuesto esporas de cinco microorganismos anaeróbicos (Clostridium botulinum, lentoputrescerts, perfringens, sporogenes y tetuni) y cinco aeróbicos (Bacillus anthracis, coagulans, globigii, stearothermophilus y subtilis) a óxido de etileno, el cual tiene un efecto microbicida intensivo. Cuando se expusieron a temperatura ambiente las esporas secas de Bacillus subtilis y Clostridium sporogenes sobrevivieron durante varias horas, mientras que otros organismos analizados murieron después de un período corto de tiempo. Ninguna sobrevivió a una exposición de dieciocho horas (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 641 <1967>). Estos ejemplos demuestran la enorme resistencia de las esporas frente a varios medios químicos de control.

Ejemplos adicionales de la dificultad de controlar microorganismos son las bacterias de los fangos y las algas. En la industria de pasta papelera, por ejemplo, estos organismos causan problemas graves. Los microorganismos se pueden controlar en parte mediante cloro. En la actualidad, como la industria de la pasta de papel se ha visto forzada a no seguir usando cloro y a utilizar, en su lugar, peróxido de hidrógeno, se han incrementado los problemas con las algas y con las bacterias de los fangos. Hoy en día no existe ningún agente eficaz frente a estos organismos, que esté adaptado al medio ambiente.

En la industria cervecera un problema importante se debe a las levaduras. Se dice que las levaduras representan el 90% de la destrucción de las bebidas carbonatadas (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 647 <1967>).

El agua contaminada con bacterias también causa problemas importantes. Muchas enfermedades se propagan, por ejemplo, mediante el agua potable. El permanganato de potasio, empleado anteriormente en la desinfección del agua potable, ya no se usa en la actualidad debido a la toxicidad de los residuos de manganeso (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 623 <1967>). En la actualidad, numerosos productos químicos se emplean para matar bacterias en el agua potable, especialmente cloro, que constituye, obviamente, una alternativa inaceptable para el medio ambiente. Un agente que sea aceptable para el medio ambiente y proporcione agua sin bacterias sería muy deseable.

A partir del documento CA-A1-2129489 se sabe cómo controlar el crecimiento de los microorganismos mediante una combinación de un biocida no oxidante y de ácido peracético en una disolución ácida. De este modo, el contenido de biocida podría reducirse. El ácido peracético en sí mismo no proporciona ningún efecto especial en el control del crecimiento y, en consecuencia, los biocidas no pueden excluirse en su totalidad.

Se sabe ya que el percarbonato sódico, debido a su efecto oxidante y a su gran alcalinidad es corrosivo y tóxico para los organismos vivos. Debido a la presencia de peróxido de hidrógeno, una disolución acuosa de percarbonato sódico es muy oxidante. Una disolución de percarbonato sódico que genera un contenido de peróxido de hidrógeno de 0,1 a 0,25% es, por ejemplo, suficiente para matar Salmonella typhosa, E. coli y Staphylococcus aureus en una hora (Kirk Othmer, segunda edición, volumen 2, página 623 <1967>). Este contenido de peróxido de hidrógeno se corresponde a una concentración de percarbonato sódico de aproximadamente 0,4 a 1,0% en peso. El polvo seco de percarbonato sódico es corrosivo y se emplea, por ejemplo, para controlar insectos parásitos de las fajinas de maíz. Un 3,5% de esta sustancia entre los granos mata a los insectos en quince días (Emberi L.C., Nwufo M.I <1990>, Agric Ecosyst Environ 32 <1-2>, 69-76).

El documento WO 94/24869 describe una composición germicida que contiene (A) un peróxido inorgánico, (B) un éster incompleto de un alcohol polihidroxilado con un ácido orgánico y (C) una sal de metal alcalinotérreo. La descripción menciona la desinfección de aguas urbanas. Cuando contiene percarbonato sódico éste alcanza hasta un 5% en peso en el producto y la concentración después de hidratación es de 100 ppm en todos los ejemplos dados. La descripción menciona como deseable una concentración de 25-100 ppm en agua. Mientras que se reivindican buenas propiedades de almacenamiento y unos efectos esterilizadores excelentes, el documento WO 94/24869 no menciona nada respecto al sabor y al olor del agua que siguen al tratamiento.

El documento WO 96/03046 describe composiciones microbicidas que se adaptan para proporcionar la liberación dirigida y/o sostenida de microbicidas peroxigenados, procedimientos para su preparación, así como procedimientos para la desinfección de líquidos, incluida el agua. El percarbonato sódico se menciona como la fuente sólida más preferida de compuesto peroxigenado a causa de sus propiedades medioambientales favorables. Esta u otras fuentes de compuestos peroxigenados se inmovilizan entonces en una matriz que contiene poli(caprolactona), lo que da como resultado una composición en capas de lenta liberación. La composición flota en agua y se emplea para tratar extensiones de agua dulce tales como lagos, depósitos, estanques, canales de drenaje, acequias, piscinas, peceras, estanques de peces, particularmente estanques de barbos y truchas, manantiales y balnearios naturales, particularmente manantiales sulfurosos. El procedimiento y el producto, de acuerdo con el documento WO 96/03046, pueden emplearse también para tratar extensiones de agua salada, incluyendo áreas del mar y estuarios.

El documento EP 47 015 describe una formulación de saneamiento mejorada que contiene un compuesto de peroxidrato, un ablandador del agua no fosfatado, una fuente de ion magnesio como estabilizador parcial del peróxido de hidrógeno, un agente quelante para metales de transición y un tensioactivo no iónico. Aunque se menciona que la formulación puede ser de utilidad para diversidad de saneamientos, blanqueos, limpiezas, desodorizaciones, eliminación de manchas y otros propósitos en lavanderías domésticas o institucionales, la descripción se centra en el tratamiento de pañales de bebé.

El documento de EE.UU. 4,926.795 enseña un método de restablecer un sabor aceptable a barbos que presentan un sabor terroso y mohoso inaceptable que comprende tratar un acuífero con un peróxido inorgánico que libera peróxido de hidrógeno en el medio acuático y mantener a los peces en el medio tratado durante un tiempo suficiente para restablecer el sabor aceptable. El peróxido de hidrógeno en sí mismo o un peróxido inorgánico, que libera peróxido de hidrógeno, tal como el peroxihidrato de percarbonato sódico, pueden usarse. El restablecimiento del sabor se lleva a cabo en tan sólo 72 horas.

Breve descripción del invento

El presente inventor ha encontrado que incluso concentraciones muy bajas de percarbonato sódico actúan como agentes preventivos del crecimiento de bacterias; este descubrimiento proporciona posibilidades de purificar el agua potable con percarbonato sódico. El presente invento proporciona un método para el control de las bacterias en el agua potable, de acuerdo con la reivindicación 1, y el empleo de percarbonato sódico con este objetivo, de acuerdo con la reivindicación 3.

Descripción detallada del invento

El presente inventor ha descubierto mediante estudios extensivos que el percarbonato sódico, conocido previamente por sus propiedades oxidativas y destructoras de bacterias, también tiene un efecto destructor activo frente a microorganismos de difícil control tales como esporas, algas, levaduras y bacterias de los fangos. El peróxido sódico proporciona un efecto similar al percarbonato sódico, pero requiere condiciones controladas con precisión debido a los riesgos en el manejo.

Los tipos de microorganismos mencionados anteriormente difieren esencialmente de las bacterias por su resistencia a medios de control químicos. Los agentes activos para matar esporas, algas, levaduras y bacterias de los fangos no se encuentran disponibles hasta la fecha. Debido a los numerosos problemas causados por estos microorganismos, entre otros, en la industria el presente invento introduce, por medio de sus propiedades únicas, un producto muy deseable.

El percarbonato sódico disuelto en agua se descompone en peróxido de hidrógeno y carbonato sódico. Es la cooperación entre el peróxido de hidrógeno y el carbonato sódico la que proporciona el efecto biocida activo. Cada componente por separado no tiene el mismo efecto. La disolución activa de percarbonato sódico tiene un valor de pH entre 8 y 11, en particular de aproximadamente 10. Una de las ventajas del percarbonato sódico como medio para matar esporas, algas, levaduras y bacterias de los fangos es que sólo genera agua y carbonato sódico como residuos, es decir, dos compuestos que no son en absoluto tóxicos. Esto significa que el percarbonato sódico, a pesar de su potente efecto biocida, no libera ningún residuo peligroso que pueda afectar al medio ambiente de una manera negativa. Al usar percarbonato sódico los biocidas empleados previamente pueden excluirse completamente, se puede obtener un resultado mejor y, simultáneamente, se puede cuidar el medio ambiente.

Además, el presente inventor ha encontrado que el percarbonato sódico actúa como agente que evita el crecimiento de bacterias incluso a concentraciones muy bajas y que el peróxido de hidrógeno formado por el percarbonato sódico se degrada rápidamente a temperaturas elevadas. De este modo, el presente inventor ha descubierto que el percarbonato sódico proporciona un producto muy útil para purificar el agua potable. La velocidad de degradación del peróxido de hidrógeno en una disolución de agua se muestra más adelante, en el ejemplo 7. El percarbonato sódico, según se esboza en las reivindicaciones, no se ha empleado previamente para depurar agua potable. Estos hechos sobre el efecto del percarbonato sódico a bajas concentraciones son nuevos y sorprendentes y abren nuevas posibilidades de purificación del agua potable. Véanse también los ejemplos 2 y 6.

El efecto del percarbonato sódico se ve afectado por la temperatura y la concentración. Un intervalo de concentración activa para matar:

-: esporas es de 5 a 10% en peso, preferiblemente de 6 a 7% en peso, durante una incubación de una hora a temperatura ambiente,

-: algas, levaduras y bacterias de los fangos es de 0,3 a 1,0% en peso, preferiblemente de 0,4-0,6% en peso, en una incubación de 1 hora a temperatura ambiente,

-: bacterias es de 0,01 a 2,0% en peso, concentraciones de aproximadamente 0,01 a 0,02 usadas posiblemente a temperaturas elevadas y concentraciones de aproximadamente 0,8 a 2,0% en peso son efectivas a temperatura ambiente. A una concentración de 0,01 a 0,02% en peso el percarbonato sódico controla el crecimiento a temperatura ambiente.

Concentraciones más elevadas de percarbonato sódico son eficaces, pero no proporcionan ventajas adicionales. En todos los casos pueden usarse concentraciones más bajas a temperaturas más elevadas. La expresión temperaturas elevadas no se refiere a ninguna temperatura en particular, sino a una temperatura superior a 45ºC, particularmente entre 45 y 60ºC.

El presente invento se ilustra más en detalle por medio de los siguientes ejemplos, en los que:

El ejemplo 1 es un ensayo para determinar la concentración más baja de percarbonato sódico para matar esporas a temperatura ambiente,

El ejemplo 2 describe el control del crecimiento y el efecto destructor del percarbonato sódico a temperatura ambiente,

Los ejemplos 3 a 4 describen ejemplos sobre posibles campos de aplicación para el percarbonato sódico como agente destructor de esporas,

El ejemplo 5 describe el empleo de percarbonato sódico como agente destructor de algas, levaduras y bacterias de los fangos, entre otros, en la limpieza de un depósito,

El ejemplo 6 describe el empleo de percarbonato sódico como un medio destructor de bacterias para purificar agua potable,

El ejemplo 7 muestra la velocidad de degradación del peróxido de hidrógeno en una disolución de agua a varias temperaturas.

Ejemplo 1 Muerte de bacterias formadoras de esporas (realizado por FOA ABC-skydd, Ume\ring{a})

Las colonias de bacterias se aislaron de depósitos de la maquinaria de productos lácteos en Nomnejerier, Ume\ring{a}. Entre otras, una bacteria gram positiva formadora de esporas se aisló y se asignó al género Bacillus. Investigaciones bioquímicas adicionales identificaron la especie como B. cereus alt. B. mycoides. B. mycoides es en la mayoría de sus características idéntica a B. cereus y muchos especialistas de toxinas la contemplan como inseparable de B. cereus.

Metodología

Se esporuló B. mycoides y la disolución con esporas se calentó a 100ºC durante diez minutos. Los organismos que sobrevivieron a este tratamiento se definieron subsecuentemente como esporas. Inicialmente 2,5 g de percarbonato sódico se disolvieron en 9,8 ml de agua desionizada esterilizada a 50ºC, después de lo cual la disolución se dejó enfriar a temperatura ambiente. Se llevó a cabo una serie de diluciones a partir de la disolución original hasta concentraciones finales de 25%, 12,5%, 6,3%, 3,13% y 0%. 100 microlitros de la disolución de esporas (correspondientes a aproximadamente 100 esporas) se añadieron a todas las disoluciones, a partir de lo cual se incubaron durante una hora a temperatura ambiente. Después de la incubación, las disoluciones se centrifugaron a 12.000 x g. A partir de ahí, los sedimentos se suspendieron en agua y la disolución se centrifugó de nuevo de la misma forma que anteriormente. Esto se repitió una vez más. Después de la última centrifugación, los sedimentos se disolvieron y se distribuyeron en cantidades iguales sobre tres placas de agar para cada concentración. Se emplearon placas TGEA (triptón-glucosa-extracto-agar, mezclado según las instrucciones del productor Unipata Ltd, Basingstoke, Hampshire, Reino Unido), sin excepción. Las placas se incubaron durante 48 horas a 30ºC. Después, las colonias crecidas se contabilizaron a mano.

Resultados TABLA 1

1

La concentración original de esporas añadida a cada concentración de percarbonato sódico se estableció mediante determinación del contenido vivo (contaje viable) en ensayos separados. El valor medio demostró que la concentración original era de 10^{5} esporas por 100 microlitros. La diferencia con respecto a la concentración cero en la tabla se debe a las pérdidas durante las tres centrifugaciones que se llevaron a cabo en cada ensayo. A partir de este ejemplo puede observarse que el percarbonato sódico a una concentración de 6,25% en peso a temperatura ambiente destruye las esporas eficazmente.

Ejemplo 2 Control del crecimiento y muerte de bacterias (realizado por FOA) Organismos sometidos a ensayo

Dos compuestos diferentes que destruyen bacterias se aislaron a partir de depósitos de la maquinaria de productos lácteos en Nomnejerier, Ume\ring{a}. Uno de los aislamientos fue una bacteria gram positiva formadora de esporas, B. mycoides, véase el ejemplo 1. El otro aislamiento se identificó como Pseudomonas spp. Ambas cepas se identificaron mediante api 20E (Api 20 E bioMérieux, 69280 Marcy L'Etorel, RCS Lyon, Francia). Además, Salmonella typhimcerium LT2A se empleó como organismo control (Ames B, Zinder N D, Lederberg, J <1962> Genetic exchange in Salmonella, J Bacteriol 64:679-699).

a) Concentración inhibidora mínima

Inicialmente se llevó a cabo un ensayo control donde se seleccionó el intervalo de concentración que proporcionaba inhibición. Se emplearon placas de agar TGEA como medio de cultivo, tanto para el ensayo inicial como para el ensayo principal. Durante el sembrado de las placas se añadió percarbonato sódico a varias concentraciones. La adición se efectuó después de la esterilización en autoclave. Como control se emplearon placas TGEA sin adición de percarbonato sódico. Una cantidad fija de bacterias se extendió sobre las placas de cultivo que contenían las diversas concentraciones de percarbonato sódico. Después de la incubación durante 24 horas a 30ºC, la concentración de bacterias se determinó determinando el contenido vivo, las bacterias se resuspendieron en PBS (disolución salina de tampón fosfato) hasta una absorbancia correspondiente a 1,0 a 650 nm. Subsecuentemente se llevó a cabo una serie de diluciones desde 10^{-1} a 10^{-7} y 100 \mul de las diversas diluciones se extendieron en placas de TGEA sin adiciones y se incubaron a 30ºC durante 24 horas. Después las colonias de bacterias se contabilizaron manualmente y la concentración de bacterias se calculó de una manera ya conocida per se.

Resultados del ensayo inicial

El resultado del ensayo inicial muestra que no pudo tener lugar ningún crecimiento para ninguna de las tres bacterias sometidas a ensayo desde una concentración de 0,10% a 5,0%.

Resultados del ensayo principal TABLA 1

2

La tabla muestra que una concentración de sólo el 0,01% en peso de percarbonato sódico controla el crecimiento de todas las bacterias analizadas.

b) Muerte de bacterias

Se disolvió percarbonato sódico en PBS a 50-60ºC y entonces se le permitió enfriarse a temperatura ambiente. Una cantidad constante de las tres bacterias anteriormente mencionadas se mezcló en PBC que contenía varias concentraciones de percarbonato sódico y se incubó durante una hora a temperatura ambiente. Después de la incubación las disoluciones se centrifugaron a 12.000 x g. Tras esto, el sedimento se resuspendió en PBS y la disolución se centrifugó de nuevo de la misma forma a la descrita. El procedimiento se repitió una vez más. Después de la última centrifugación los sedimentos se disolvieron y se distribuyeron en cantidades iguales en tres placas de agar TGEA para cada concentración. Las placas se incubaron durante 24 horas a 30ºC. A continuación se contabilizaron a mano las colonias crecidas.

Resultados

Inicialmente se llevó a cabo un ensayo preliminar para seleccionar el intervalo de concentración en el que las tres cepas diferentes de bacterias morían. Los resultados del análisis principal se muestran en la tabla 2.

TABLA 2

3

La tabla muestra que una concentración superior al 0,8% en peso mata a las bacterias a temperatura ambiente.

Ejemplo 3 Muerte de esporas en paño de ubres

Se coloca el paño de ubres usado en un cubo. A continuación se añaden unos 5 litros de agua templada (> 45ºC) y 0,3 kg (aproximadamente 3,5 dl) de percarbonato sódico en polvo (6% en peso).

Después de al menos una hora todas las esporas y bacterias se han muerto. Los paños deben preferentemente mantenerse en la disolución durante 30 minutos antes del próximo ordeño. Los paños se aclaran en agua tibia antes de usarse.

Ejemplo 4 Muerte de esporas de moho

Se añaden 0,3 kg (aproximadamente 3,5 dl) de percarbonato sódico a 5 litros de agua templada (> 45ºC) (6% en peso), se agita y la disolución se vierte en un pistola de baja pulverización y los establos, los guantes de estiércol, las paredes y si es posible el techo y los espacios de almacenamiento de forraje se pulverizan. Se deja actuar durante un par de minutos. No se precisa aclarado y no queda ningún residuo químico peligroso. Incluso el mal olor de, entre otros, el estiércol desaparece eficazmente por medio de la disolución.

Ejemplo 5 Aclarado de un depósito

Se llena el depósito con agua y, después, se añade percarbonato sódico en polvo de acuerdo a las instrucciones de dosificación indicadas a continuación. El depósito se llena hasta el borde con agua, no necesariamente templada, y se deja sin tapa durante al menos 12 horas. A continuación, el depósito se vacía y se aclara con agua. De este modo, se consigue un depósito limpio y cualquier alga, levadura y bacteria de los fangos presente se muere y se elimina de manera eficaz. Para eliminar cualquier bacteria de los fangos que esté pegada a la pared del depósito se recomienda emplear una concentración mayor, entre un 0,6 y un 6% en peso, dependiendo de la cantidad de bacterias de los fangos.

La disolución de aclarado tiene tan baja toxicidad después de 24 horas que la disolución no debiera provocar ninguna enfermedad dañina si fuese consumida.

Dosificación para la aplicación en varios campos

-: Depósitos de agua dulce: 250 ml de polvo por 40 litros de volumen de depósito (aproximadamente un 0,5% en peso).

-: Depósitos de aguas residuales: 250 ml de polvo por 25 litros de volumen de depósito (aproximadamente un 0,8% en peso).

-: Pozos negros: deben añadirse 50 ml de polvo.

-: Pozo de las bombas: debe añadirse 1 litro a 100 litros de volumen de depósito.

Ejemplo 6 Muerte de bacterias en agua potable

Se añadieron 0,1 kg de percarbonato sódico a 1.000 litros de agua (> 45ºC) (0,01% en peso). Se deja actuar durante una hora. Después de una hora, las bacterias se han muerto y después de 24 horas el agua es potable (véase el ejemplo 7a).

El percarbonato sódico podría, por ejemplo, añadirse al agua en forma de un comprimido efervescente; estando el comprimido adaptado, por ejemplo, de manera que un comprimido proporcione la concentración deseada en 5 litros de agua.

Ejemplo 7 Degradación del percarbonato sódico en una disolución acuosa (llevado a cabo mediante FOA) a) Estabilidad a aproximadamente 50ºC

El contenido de oxígeno activo en la disolución de percarbonato sódico se determina por medio de titración yodométrica (A I Vogel, Quantitative inorganic analysis, página 363), 20,0 mg de percarbonato sódico se disolvieron en 200 ml de agua (100 mg/l, 0,01% en peso) a 50ºC mientras se agita lentamente. Cuando se ha disuelto todo, comienzan las mediciones. Cada vez se toma una muestra de 10 ml y se determina la concentración de oxígeno activo y de peróxido de hidrógeno.

Tiempo en minutos	H_{2}O_{2}, ppm	Porcentaje de oxígeno activo
2	11,2	73
10	7,6	50
20	3,7	24
30	1,1	7
40	1,2	8
60	0,5	3

b) Estabilidad a 30ºC después de disolverse a 60ºC

Se disuelven 50 mg de percarbonato sódico en 500 ml de agua (100 mg/l, 0,01% en peso) a 60ºC. Se permitió que la disolución se enfriase hasta 30ºC y se mantuvo a esa temperatura. La concentración de oxígeno activo y de peróxido de hidrógeno se determinó después de 30 y después de 60 minutos. El volumen del ensayo fue de 5 ml.

Tiempo en minutos	H_{2}O_{2}, ppm	Porcentaje de oxígeno activo
0	11,0	72
30	10,4	68
60	8,6	56

Los resultados muestran que el peróxido de hidrógeno se degrada hasta niveles no perjudiciales en una hora a 50ºC. A temperaturas inferiores la degradación es más lenta.

Para concluir, la presente descripción muestra que las esporas y otros microorganismos de difícil control mueren eficazmente con percarbonato sódico a 6,25% en peso. Además se muestra que algas, levaduras y bacterias de los fangos pueden destruirse eficazmente y eliminarse con percarbonato sódico a una concentración de 0,5% en peso. Además, se muestra que puede obtenerse agua potable sin bacterias mediante la adición de percarbonato sódico a 0,01% en peso a una temperatura elevada. En ningún caso se forman residuos tóxicos.

El percarbonato sódico proporciona, de este modo, un agente eficaz adaptado al medio ambiente para matar tanto esporas y algas como bacterias y hongos.

Claims

1. Un método para controlar las bacterias en el agua potable, caracterizado porque una composición que consiste esencialmente en percarbonato sódico se añade al agua, estando la cantidad de percarbonato sódico añadido al agua en el intervalo de 0,01 a 2,0% en peso y careciendo el agua resultante de residuos tóxicos.

2. El método, de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la cantidad de percarbonato sódico está en el intervalo de 0,01 a 0,02% en peso.

3. El método, de acuerdo con las reivindicaciones 1 ó 2, en el que el agua tras la adición de percarbonato sódico se mantiene a una temperatura de al menos 45ºC durante al menos una hora.

4. El empleo de percarbonato sódico para la fabricación de una composición para el control de las esporas, levaduras y bacterias de los fangos en el agua potable, caracterizado porque dicha composición consiste esencialmente en percarbonato sódico y que el percarbonato sódico se incluye en un comprimido efervescente en una cantidad tal que un comprimido proporciona una concentración de 0,01 a 0,5% en peso en 5 l de agua.