ES2236314T3 - Maatriz autoadhesiva hidratable para uso terapeutico topico. - Google Patents
Maatriz autoadhesiva hidratable para uso terapeutico topico.Info
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Abstract
Una matriz polimérica, autoadhesiva, biocompatible e hidratable en forma de lámina, parche o película adecuada para aplicación en superficies húmedas tanto dentro como de la superficie externa del cuerpo, comprendiendo la matriz material polimerizable y/o entrecruzable natural o sintético que ayuda a curar heridas, y un polímero sintético que tiene propiedades bioadhesivas, tales propiedades permiten a la matriz adherirse a tejido subyacente mediante enlace iónico y/o de hidrógeno.
Description
Matriz autoadhesiva hidratable para uso
terapéutico tópico.
Esta invención se refiere a una lámina, parche o
película para aplicación tópica a superficies internas y externas
del cuerpo, con fines terapéuticos. En particular, la invención se
refiere a una matriz polimérica autoadhesiva, biocompatible e
hidratable, que puede emplearse para curar heridas, unir, sellar y
reforzar tejidos debilitados, y para administrar fármacos.
El empleo de materiales terapéuticos en forma de
lámina, parche o película, para suministrar tópicamente a órganos
del cuerpo internos o externos, está bien documentada para un ámbito
amplio de aplicaciones médicas. Una desventaja de productos
disponibles actualmente es que requieren manipulación in situ
para asegurar el producto en ese lugar, particularmente
internamente. Esta manipulación comúnmente supone una unión mecánica
(p. ej. empleando suturas) o reacción química con tejido subyacente,
o bien, con la ayuda de energía aplicada externamente (p. ej.
energía lumínica o radiofrecuencia) o mediante interacción entre dos
o más componentes.
En muchos ejemplos el empleo de suturas no es
completamente eficaz (p. ej. en el pulmón), o es indeseable ya que
su introducción aumenta la debilidad del tejido en más zonas. El
empleo de energía externa para la unión puede consumir mucho tiempo
y (en algunos casos) requiere un juicio cuidadoso importante por
parte del cirujano, para evaluar cuándo se ha suministrado
suficiente energía para efectuar la unión sin dañar el tejido
subyacente. Además, la interacción química entre componentes causa
el riesgo de polimerización indeseada y posibles efectos secundarios
de la misma reacción.
La patente internacional WO 00/10618 describe una
lámina flexible, hidratable y activable para empleo terapéutico, que
se une al tejido y mantiene su actividad al unirse al mismo.
Ahora se ha inventado una forma mejorada de
lámina o similar, adecuada para aplicación tópica, internamente o
externamente, que supera o mitiga substancialmente las desventajas
anteriormente mencionadas u otras de la técnica anterior.
Según la invención, se proporciona una matriz
polimérica autoadhesiva, biocompatible e hidratable en forma de
lámina, parche o película adecuada para aplicación a superficies
húmedas tanto dentro como en la superficie externa del cuerpo, la
matriz comprende un material polimerizable y/o entrecruzable natural
o sintético que ayuda a curar heridas, y un polímero sintético que
tiene propiedades bioadhesivas, tales propiedades permiten a la
matriz adherirse a tejido subyacente mediante enlace iónico y/o de
hidrógeno.
La lámina o similar según la invención es
ventajosa principalmente porque las propiedades bioadhesivas del
polímero sintético permiten colocar de forma segura la lámina sin el
empleo de suturas u otras formas de unión física externa. La lámina
es por lo tanto fácil de usar y puede aplicarse rápidamente y con
precisión.
La lámina o similar según la invención puede
comprender además un agente efectivo terapéuticamente, esto es un
fármaco o medicamento, y puede emplearse como un vehículo de
administración de tal agente. Sin embargo, otras realizaciones de la
invención no se emplean de esta manera, y están exentas de fármaco o
medicamento.
Una característica importante de la lámina o
similar según la invención es que es adecuada para aplicación tanto
a superficies internas como externas del cuerpo, esto es, puede
aplicarse tópicamente en el exterior del cuerpo (p. ej. a la piel) o
a superficies internas como superficies de órganos internos
expuestas durante procedimientos quirúrgicos.
El componente polimerizable y/o entrecruzable de
la matriz se selecciona preferiblemente de polisacáridos,
polilactatos, polialcoholes y proteínas, y sus derivados. El
componente polimerizable de la matriz puede estar parcialmente o
totalmente entrecruzado.
En ciertas realizaciones preferidas de la
invención, el componente polimerizable y/o entrecruzable de la
matriz es una proteína o material proteináceo, en particular una
proteína o similar que puede ser entrecruzada por la aplicación de
energía calorífica o electromagnética (p. ej. una proteína
estructural como colágeno o una proteína globular como
albúmina).
Una proteína preferida particularmente para
emplear en la invención es albúmina, en particular albúmina de
mamífero como albúmina porcina, bovina o humana.
En otras realizaciones preferidas de la
invención, el componente polimerizable y/o entrecruzable de la
matriz es un polisacárido o un derivado del mismo. Polisacáridos
particulares que pueden mencionarse incluyen derivados de celulosa,
particularmente éteres de celulosa y sus derivados y sales. Ejemplos
incluyen carboximetilcelulosa y sus sales,
hidroxipropilmetilcelulosa e hidroxietilmetilcelulosa.
Carboximetilcelulosa de sodio es un ejemplo de tal polímero.
El componente polímero bioadhesivo de la matriz
puede ser cualquier polímero con propiedades bioadhesivas adecuadas,
esto es, cualquier polímero que confiera a la matriz un grado
suficiente de adhesión al tejido al que se aplica. Tales polímeros
contienen típicamente grupos químicos con una densidad iónica alta,
p. ej. grupos carboxilo, amida, hidroxilo, éter y éster y sus sales,
que interactúan de manera cooperativa con el tejido, mediante la
formación de enlaces iónicos y de hidrógeno, interacciones
dipolo-dipolo y fuerzas de Van der Waals. Polímeros
eficaces son en general de peso molecular elevado ya que el grado de
bioadhesión puede ser proporcional al número de estos grupos
disponibles. Típicamente, el peso molecular del polímero bioadhesivo
será superior a aproximadamente 100.000. Los polímeros son también
en general lineales, físicamente se enmarañan y tienen una
distribución amorfa en disolución. Preferiblemente deben ser capaces
de entrecruzarse para estabilizar y fortalecer la capa bioadhesiva
en la lámina, sin comprometer las propiedades bioadhesivas. Ejemplos
de polímeros adecuados son poli(ácidos carboxílicos) y sus derivados
(p. ej. polianhídridos, poliésteres), copolímeros de ácidos
carboxílicos y sus derivados, polialcoholes y sus derivados.
Un grupo preferido de polímeros bioadhesivos son
polímeros que consisten en unidades estructurales repetitivas que
contienen grupos amida. Preferiblemente, la unidad repetitiva es, o
contiene un grupo
1-etilenpirrolidin-2-ona
(vinilpirrolidona). Son particularmente preferidos los homopolímeros
que contienen grupos repetitivos vinilpirrolidona, esto es,
poli(vinilpirrolidona).
El polímero bioadhesivo puede ser
alternativamente un copolímero, p. ej. un copolímero de unidades que
contienen amida como se describió anteriormente y unidades que
contienen éster de ácido carboxílico, p. ej. unidades de acetato de
vinilo. Una forma particular de copolímero que puede ser adecuada
es, por lo tanto, copolímero de
poli(vinilpirrolidona)/poli(acetato de vinilo).
Otros grupos de polímeros que pueden exhibir
propiedades bioadhesivas adecuadas incluyen polímeros que pueden
también servir como el componente polimerizable y/o entrecruzable de
la matriz, tales como derivados de la celulosa, particularmente
éteres de celulosa y sus derivados y sales. Ejemplos incluyen
carboximetilcelulosa y sus sales, hidroxipropilmetilcelulosa e
hidroxietilmetilcelulosa. Carboximetilcelulosa de sodio es de nuevo
un ejemplo de tal polímero.
Pueden emplearse combinaciones de polímeros de
las clases descritas anteriormente. Un ejemplo preferido es una
combinación de un polímero de unidades que contienen amida como se
describe anteriormente y un derivado de celulosa como se describe
anteriormente. Una combinación particular es
poli(vinilpirrolidona) y una sal, p. ej. sal de sodio de
carboximetilcelulosa . En tal combinación, el polímero de unidades
que contienen amida, p. ej. poli(vinilpirrolidona), está
presente preferiblemente en una proporción entre 0,1 y 60 veces el
derivado de celulosa, más preferiblemente entre 1 y 40 veces. El
polímero de unidades que contienen amida es preferiblemente el
componente predominante, esto es, está presente en una proporción
mayor que el derivado de celulosa.
Si la matriz comprende tanto un polímero de
unidades que contienen amida, p. ej. poli(vinilpirrolidona),
como un derivado de celulosa, p. ej. carboximetilcelulosa, ciertas
realizaciones pueden además comprender otro material polimerizable
y/o entrecruzable, lo más preferiblemente una proteína o material
proteináceo, p. ej. albúmina.
Se puede determinar in vitro
cuantitativamente si es suficiente el grado de adhesión de la matriz
al tejido, mediante el(los) polímero(s)
bioadhesivo(s), por ejemplo realizando un ensayo de
resistencia al despegado. Este ensayo se realiza permitiendo que la
matriz se adhiera a un sustrato adecuado (asegurado en una posición
fija), aunque la matriz se une físicamente por si misma a un punto
separado de carga de un aparato de ensayo de tracción, colocado de
manera que antes del ensayo, la matriz no está bajo carga. La célula
de carga es movible a lo largo de un eje substancialmente
perpendicular al eje a lo largo del cual está colocado el sustrato.
El ensayo implica movimiento de la célula de carga lejos del
sustrato, a una velocidad constante predeterminada, hasta que la
matriz se despegue del sustrato. El resultado del ensayo es una
medida cuantitativa de la energía de rotura al despegado para esa
matriz, esto es, la cantidad acumulativa de energía requerida para
romper la interacción entre la matriz y el sustrato al cual está
adherida. Una energía de rotura al despegado acumulativa adecuada
para la matriz según la invención no sería menor que 10.000 N/m, más
preferiblemente no menor que 20.000 N/m.
La matriz preferiblemente comprende además un
plastificante para asegurar que la matriz tiene suficiente
flexibilidad, incluso después de polimerización o entrecruzamiento.
Plastificantes adecuados incluyen polialcoholes, p. ej. glicerol,
sorbitol, etc.
La matriz también puede comprender un polímero
estructural sintético o biológico para conferir fuerza y elasticidad
a la matriz. Polímeros adecuados incluyen polímeros termoplásticos
solubles en agua, en particular seleccionados del grupo que consiste
en poli(alcohol vinílico), poli(etilienglicol),
poli(ácido acrílico), poli(acrilamida) y materiales
similares.
El componente polímero bioadhesivo de la matriz,
p. ej. poli(vinilpirrolidona), puede también contribuir a las
propiedades estructurales de la matriz.
Uno o más tensioactivos, preferiblemente
tensioactivos no iónicos, se incorporarán en general a la matriz,
por ejemplo para facilitar la producción (p. ej. para evitar
formación de espuma, para la producción de estructuras cerradas, o
para fomentar la formación de espuma, para la formación de
estructuras más similares a una malla). Tensioactivos adecuados
incluyen copolímeros de bloque de óxido de etileno y óxido de
propileno, tales como aquellos vendidos con el nombre comercial
Pluronic® de BASF. En algunos ejemplos, la proporción de
tensioactivo incorporado a la matriz puede ser relativamente baja,
p. ej. menor que 1%. En otras realizaciones, que tienen una
estructura en forma de malla abierta como se describió
anteriormente, pueden emplearse proporciones mayores de
tensioactivos, p. ej. para crear y estabilizar una espuma formada
durante la producción.
La matriz en forma de lámina, parche o película
puede ser de composición homogénea o heterogénea, y puede ser de
estructura continua o discontinua. Una o ambas superficies
principales pueden tener propiedades adhesivas.
Un grupo de realizaciones preferidas de la matriz
según la invención comprende las siguientes proporciones
(porcentajes en peso) de los componentes individuales:
- a)
- material polimerizable y/o entrecruzable - de 2% a 80% en peso, más preferiblemente 5% a 60%, y lo más preferible 10 a 30%;
- b)
- polímero(s) bioadhesivo(s) - de 5% a 90% en peso, más preferiblemente 20% a 80%, y lo más preferible 30% a 60%;
- c)
- polímero estructural - de 0,01% a 20% en peso, más preferiblemente 1% a 15%, y más preferiblemente 2% a 10%;
- d)
- tensioactivo - de 0,001% a 10%, más preferiblemente 0,01% a 1%, y lo más preferible 0,01% a 0,1%;
- e)
- plastificante - de 1% a 70%, más preferiblemente 10% a 60%, y lo más preferible 20% a 40%.
La matriz puede contener entre 2% y 60% en peso
de agua, y lo más preferiblemente entre 5% y 30%. La matriz puede
estar parcialmente o totalmente hidratada con un medio acuoso
adecuado en la implantación o después (p. ej. un fluido corporal o
disolución salina).
Otras realizaciones, p. ej. aquellas preparadas
por liofilización como se describe a continuación, pueden estar
substancialmente sin agua.
La matriz puede producirse combinando
disoluciones de los diferentes componentes como sigue (todas las
cantidades están en porcentaje en peso del componente en la
disolución respectiva antes de la combinación):
a) Disolución A:
- i)
- material polimerizable y/o entrecruzable: 5 - 60%, más preferiblemente 10 - 50%, y lo más preferible 20 - 40%.
- ii)
- polímero estructural: 0,1 - 30%, más preferiblemente 1 - 20%, y lo más preferible 3-10%.
- iii)
- tensioactivo: 0,001% - 5%, más preferible 0,01% - 1%, y lo más preferible 0,05% - 0,5%.
- iv)
- plastificante: 1% - 80%, más preferiblemente 10% - 60%, y lo más preferible 15% - 35%.
b) Disolución B:
- i)
- polímero(s) bioadhesivo(s): 1 - 60%, más preferiblemente 5 - 40%, y lo más preferible 10 - 30%;
- ii)
- plastificante: 1 - 60%, más preferiblemente 5 - 40%, y lo más preferible 10 - 30%.
En una realización preferida, en donde sólo una
superficie, o una parte de la misma seleccionada, es bioadhesiva, la
matriz puede prepararse vertiendo disolución A en un molde
antiadherente adecuado (p. ej. PTFE), y provocando o permitiendo que
se endurezca por evaporación. Sobre esta se vierte luego la
disolución B, que también se provoca o permite que endurezca.
Durante este proceso, la segunda disolución penetra, y se une
químicamente a la matriz formada por la primera disolución, de
manera que la matriz final se compone de una única lámina con
gradientes de concentración de los distintos
compo-
nentes.
nentes.
Alternativamente, la matriz puede prepararse de
una única disolución que comprende todos los componentes, o por
combinación de disoluciones múltiples para crear matrices
multilaminares (p. ej. bioadhesivo-matriz
polimérica-bioadhesivo).
El procedimiento de vertido empleado para
conseguir el espesor deseado de la lámina puede suponer vertido,
extendido manual o pulverizado de las disoluciones componentes.
Si se prepara como se describió anteriormente, la
matriz según la invención puede tener un espesor de 20 - 1000
\mum, y típicamente un espesor de 100 – 500 \mum
aproximadamente. Dimensionalmente, el parche o película puede tener
un área superficial de sólo unos cuantos milímetros cuadrados que se
puede extender hasta varias decenas de centímetros.
Para algunos empleos, puede ser deseable
modificar la estabilidad de la lámina - tal que la semivida del
producto se extiende (para empleo en refuerzo de tejido debilitado)
o reduce (para administración de fármaco). Esta modificación de
estabilidad puede efectuarse controlando la extensión de formación
de enlaces covalentes entre moléculas en la matriz (p. ej. formación
de enlaces disulfuro entre moléculas de proteínas). Si se desea un
aumento en la estabilidad del parche, la matriz puede pretratarse
para inducir la formación de enlaces covalentes intermoleculares. La
capa estructural en particular puede estar parcialmente o
completamente entrecruzada.
Los métodos de pretratamiento que pueden
emplearse para modificar la estabilidad de la matriz son:
- 1)
- Calor: puede emplearse calor para entrecruzar proteínas parcialmente o totalmente y para eliminar el agua del componente bioadhesivo. Temperaturas de 30-70ºC fomentarán un desenmarañamiento de las cadenas de polipéptidos, que puede reducir la solubilidad en agua de la proteína. La exposición de la matriz a temperaturas entre 70ºC y 120ºC fomentará la formación de enlaces covalentes entre moléculas de albúmina. Esto aumentará la estabilidad de las láminas, el grado de estabilidad logrado depende del tiempo, y temperatura exactos de este pretratamiento.
- 2)
- Irradiación: la radiación electromagnética (que incluye luz visible y UV, radiación gamma y haces de electrones) puede promover entrecruzado de moléculas de albúmina, y polimerizará las moléculas bioadhesivas. Este es un método potencial por el cual láminas grandes podrían pretratarse de forma que aumenten su estabilidad.
- 3)
- Químico: hay una gran diversidad de reactivos químicos de entrecruzamiento que podrían emplearse potencialmente para la formación de enlaces covalentes en la matriz, incluyendo tintes cromóforos como el azul de metileno.
En una realización particularmente preferida la
lámina o el parche según la invención se prepara a partir de dos o
tres capas separadas, y la producción del parche supone la
exposición tanto a calor como a radiación ionizante. La capa
estructural que contiene una proteína como albúmina se prepara
primero, y es parcialmente o totalmente polimerizada por exposición
al calor durante un periodo dado de tiempo. Una o dos capas
bioadhesivas adicionales se vierten sobre la capa estructural
preformada - estas se exponen al calor para eliminar el agua por
evaporación, que puede si no impedir la naturaleza bioadhesiva del
producto final. El parche completo se envasa e irradia con radiación
gamma que logran la polimerización tanto inter como intramolecular
de la capa bioadhesiva y esterilización del parche. Lo primero es
necesario para optimizar la resistencia de la capa bioadhesiva y
crear una estructura fuertemente enlazada que no se deslaminará,
mientras que lo último es necesario para implantación en la cavidad
del cuerpo.
En una realización alternativa, el parche puede
presentarse en forma liofilizada, (para mejorar estabilidad y
mejorar su capacidad de absorción). El proceso de liofilización (que
supone congelación del parche entre -20ºC y -70ºC, y posteriormente
la exposición del parche congelado a vacío para eliminar el agua
residual) debe tener lugar después de exponer el parche a radiación
electromagnética. El agua residual en el parche puede ser
parcialmente o totalmente eliminada durante este procedimiento para
lograr el grado requerido de absorción y elasticidad.
En una realización relacionada más, el parche
puede presentarse en forma de esponja, con forma de malla, y de
estructura manifiestamente abierta, estando ocupada por material
sólido sólo una proporción menor del volumen total de la estructura.
En este caso el parche es producido y expuesto a radiación \gamma,
y después hinchado en agua o un tampón hasta el grado requerido.
Otras soluciones acuosas pueden emplearse para hinchar el parche
para incluir el soluto en el producto final. El parche hinchado es
finalmente liofilizado como anteriormente, para eliminar parte o
todo el agua.
Realizaciones de la invención que tienen
estructuras abiertas, en forma de malla, pueden comprender las
siguientes proporciones (porcentajes en peso) de los componentes
individuales:
- a)
- material bioadhesivo polimerizable y/o entrecruzable: de 1% a 30% en peso, más preferiblemente 5% a 30%, y lo más preferible 10% a 25%;
- b)
- tensioactivo: de 0,01% a 20%, más preferible 0,1% a 15%, y lo más preferible 1% a 15%.
- c)
- plastificante: de 1% a 50%, más preferiblemente 5% a 30%, y lo más preferible 10% a 25%.
Tales realizaciones pueden producirse por
combinación de soluciones espumadas de los diferentes componentes
como sigue (todas las cantidades son porcentajes en peso del
componente en la disolución respectiva anterior a la
combinación):
a) Disolución A:
- i)
- material bioadhesivo polimerizable y/o entrecruzable: 5 - 35%, más preferiblemente 10 - 30%, y lo más preferible 20 - 30%.
- ii)
- tensioactivo: 0,01 - 20%, más preferible 0,1 - 15%, y lo más preferible 1 - 15%.
b) Disolución B:
- i)
- material bioadhesivo polimerizable y/o entrecruzable: 1 - 30%, más preferiblemente 5 - 30%, y lo más preferible 10 - 25%.
- ii)
- plastificante: 1 - 90%, más preferiblemente 10 - 60%, y lo más preferible 10 - 50%.
- iii)
- Tensioactivo: 0,01 - 20%, más preferiblemente 0,1 - 15% y lo más preferiblemente 1 - 15%.
Las disoluciones A y B pueden agitarse para
formar espumas, de naturaleza bastante viscosa típicamente, que
después se mezclan. La mezcla resultante puede tener forma de gel.
Antes del congelado-secado (liofilización), la
mezcla o gel es preferiblemente entrecruzada (lo más preferiblemente
por exposición a radiación ionizante) e hinchada en agua o una
disolución tampón.
Puede que exposición adicional a la radiación
ionizante siga a la liofilización, para conseguir
esterilización.
Tales realizaciones de la invención pueden estar
provistas de una superficie con una cubierta continua de un material
polimérico sintético o natural. Tal material puede, por ejemplo ser
un polímero termoplástico soluble en agua, en particular
seleccionado del grupo que consiste en poli(alcohol
vinílico), poli(etilenglicol), poli(ácido acrílico),
poli(acrilamida) y materiales similares.
Según un aspecto adicional de la invención, se ha
proporcionado por lo tanto un procedimiento para la producción de
una matriz polimérica autoadhesiva biocompatible e hidratable en
forma de lámina, parche o película adecuada para aplicación a
superficies húmedas tanto dentro como en la superficie externa del
cuerpo, cuyo procedimiento comprende la formación de una disolución
espumada de un material polimerizable y/o entrecruzable natural o
sintético que ayuda a curar heridas, y un polímero sintético que
tiene propiedades bioadhesivas, y que somete dicha disolución
espumada a liofilización.
El procedimiento puede comprender espumar una
disolución que contiene todos los componentes de la matriz.
Alternativamente, el proceso puede suponer espumar una primera
disolución del material polimerizable y/o entrecruzable natural o
sintético, y una segunda disolución del polímero sintético que tiene
propiedades bioadhesivas, haciendo espuma la primera disolución y la
segunda, y mezclando después la primera y la segunda disolución.
La producción de la matriz según la invención se
realiza preferiblemente a pH reducido, preferiblemente a pH menor
que 4,0, más preferiblemente menor que 3,0 p. ej. alrededor de pH
2,0. Si los componentes de la matriz contienen grupos carboxilo, p.
ej. si la matriz incluye carboximetilcelulosa, se cree que el pH
reducido aumenta el número de grupos carboxilo protonados presente.
Esto, a su vez, aumenta la capacidad de formar enlaces de hidrógeno
de los grupos carboxilo (enlace de hidrógeno tiene lugar por ejemplo
entre los grupos carboxilo de la carboximetilcelulosa y grupos
carbonilo presentes en un polímero de unidades repetitivas que
contienen amida). Este enlace de hidrógeno aumentado refuerza la red
de polímero del gel, que, a su vez, limita el grado de hinchamiento
que sufre el gel. Esto proporciona beneficios para el producto en
términos de facilidad de producción, manejo mejorado e integridad
estructural mejorada después de implantación. Además, la producción
e hinchamiento a pH bajo puede proporcionar producto con ventajosas
propiedades efectivas tales como un ambiente fisiológico localizado
optimizado para desencadenar la cascada de coagulación sanguínea,
conduciendo así a rápida hemostasis.
Si el proceso de producción supone el empleo de
pH reducido, las disoluciones de los distintos componentes pueden
estar fabricadas en un tampón de pH bajo, mejor que en agua, y/o se
puede emplear un tampón de pH reducido para hinchar el gel producido
en el curso de la producción.
Realizaciones de la invención preparadas por
liofilización de soluciones espumadas pueden tener espesores de 0,1
a 10 mm o más, típicamente 0,5 a 8 mm, más comúnmente 0,5 a 5
mm.
La lámina, parche o película según la invención
es particularmente adecuada para aplicaciones quirúrgicas en las
siguientes áreas:
Torácico / cardiovascular
Cirugía general
ENT
Urología
Oral / maxilofacial
Ortopedia
Neurología
Gastroenterología
Oftalmología
Ginecología / obstetricia
A continuación se describen empleos posibles en
mayor detalle.
La naturaleza biodegradable de la lámina
significa que puede ayudar y fomentar la cura de heridas tanto en
procedimientos internos como de uso tópico. Una vez que la lámina
comience a degradarse los fibroblastos se instalarán y empezarán a
depositar componentes de la matriz extracelular. Por lo tanto, la
lámina puede emplearse como apósito interno o externo. Además,
factores como factores de crecimiento y cAMP que son conocidos por
fomentar la proliferación de células de piel pueden añadirse a la
lámina para ayudar en el proceso de cura. La lámina puede actuar
como una barrera para la humedad y agentes infecciosos, y de este
modo, ser particularmente útil en el tratamiento de quemaduras.
La lámina puede aplicarse tópicamente para
promover el cierre de heridas (como una alternativa a las suturas).
Esto puede tener efectos beneficiosos ya que puede reducir
cicatrices, y la lámina puede, de este modo, ser útil para
propósitos cosméticos en cirugía de poca gravedad (p. ej. en
departamentos de accidentes y emergencias). Las propiedades
autoadhesivas del parche harían fácil aplicarlo rápidamente.
Una forma estabilizada de la lámina puede
emplearse para proporcionar refuerzo en procedimientos de reparación
de hernia. El acoplamiento autoadhesivo supera el problema potencial
afrontado por la cirugía convencional reforzando los productos de
malla, que requieran suturar o grapar en una zona ya debilitada. El
parche para un procedimiento tal puede diseñarse para tener
durabilidad corta o larga, según el grado de reparación tisular
requerido.
La formulación del parche autoadhesivo descrita
aquí proporciona un medio de sellado rápido de, y prevención de
pérdidas en, estructuras tubulares unidas tales como vasos
sanguíneos, e injertos vasculares y de vejiga, y el tracto GI. La
capacidad del parche para mantener la reparación tisular puede ser
de interés especial aquí si se emplea en reparación de nervio.
Las propiedades de buen sellado y de manejo de la
humedad/sequedad del parche, combinadas con sus propiedades
autoadhesivas y capacidad de ser producido para cubrir una gran
superficie, significan que puede ser de empleo especial en el
sellado de superficies de tejido reseccionado en especial aquellas
donde el sangrado difuso es un problema (p. ej. el hígado). El
parche también proporciona una matriz ideal de soporte para
reparación de tejidos en tales sitios. Esto también podría ser
aplicable para limitar pérdida de fluido
cerebro-espinal que sigue a la cirugía
neurológica.
Además de las propiedades de parche descritas
anteriormente, la elevada resistencia a la tracción y la buena
elasticidad inherente del parche, lo hacen particularmente adecuado
para sellar pérdidas de aire en el pulmón, particularmente después
de una resección de pulmón. De nuevo, después de efectuar un
sellado, el parche proporciona una matriz de soporte ideal para
reparación de tejidos en dichos sitios.
Fármacos y otros agentes terapéuticos (incluyendo
agentes activos biológicamente tales como factores de crecimiento, e
incluso componentes celulares) pueden añadirse a la(s)
solución(es) empleada(s) para formar el producto del
parche, o pueden unirse covalentemente a componentes anteriores a su
empleo en la formación del parche. Una vez que el parche está
colocado, después de la aplicación en el sitio deseado, el fármaco
se liberará lentamente del parche, por difusión desde la lámina, o
por las características técnicas de la lámina de forma que según se
degrade con el tiempo el fármaco se libere. La velocidad de
liberación puede controlarse por diseño apropiado de la matriz. De
este modo, el parche proporciona un medio de administrar una
cantidad conocida de fármaco sistemáticamente o en un lugar preciso.
El fármaco puede unirse directamente a la proteína, intercalarse
entre dos capas del parche o simplemente dispersarse en la
matriz.
La adhesión post-quirúrgica, la
formación de tejido conectivo indeseado entre dos tejidos
adyacentes, es un problema serio que puede derivar complicaciones
post-quirúrgicas graves. Es un problema especial en
cirugía del intestino donde puede causar, por ejemplo, enrollado del
intestino que puede necesitar luego intervención quirúrgica
adicional. Se ha encontrado que la aplicación de material en lámina
que tiene propiedades autoadhesivas según la invención a tejidos
expuestos en un procedimiento quirúrgico puede ser eficaz en la
prevención postquirúrgica de adhesiones entre ese tejido y tejidos
vecinos.
De este modo, según otro aspecto de la invención,
se proporciona un método para la prevención o inhibición de adhesión
postquirúrgica, que comprende aplicar a uno o más tejidos expuestos
en un procedimiento quirúrgico una matriz polimérica hidratable en
forma de lámina, parche o película, la matriz comprende un material
polimerizable y/o entrecruzable natural o sintético y un polímero
sintético que tiene propiedades bioadhesivas.
Un aspecto relacionado de la invención
proporciona el empleo de una matriz polimérica hidratable en forma
de lámina, parche o película, la matriz comprende un material
polimerizable y/o entrecruzable natural o sintético y un polímero
sintético que tiene propiedades bioadhesivas, en la fabricación de
una composición para la prevención o inhibición de adhesión
post-quirúrgica.
La invención se describirá ahora en mayor
detalle, sólo a modo de ilustración, con referencia a los siguientes
ejemplos.
Una disolución en agua que comprendía 28,6% de
albúmina porcina, 17% de glicerol, 5% de PVA y 0,1% de Pluronic 25R2
se vertió en una superficie plana cubierta con PTFE y se extendió
hasta un espesor de 70 \mum. Esta disolución se calentó hasta
100ºC durante 10 minutos y se dejó enfriar.
Una segunda disolución en agua, que comprendía
9,6% de PVP K-90D, 9,7% de CMC90 y 9,5% de glicerol
fue de igual manera vertida sobre la capa previamente formada, hasta
un espesor de 600 \mum. La matriz se calentó adicionalmente hasta
100ºC durante 10 minutos, y de nuevo se dejó enfriar.
El parche bicapa de hidrogel resultante
(aproximadamente 140 \mum de espesor) se cortó a tamaño y se selló
dentro de una bolsita de papel metalizado. Los parches individuales
se irradian con radiación \gamma posteriormente. En un estudio
para evaluar la utilidad de esos parches para sellar anastomosis
suturadas contra pérdida de sangre, un parche autoadhesivo de tamaño
2 cm x 2 cm se aplicó sobre anastomosis de arteria carótida
convencionalmente suturada extremo con extremo en seis conejos. Los
animales se recuperaron y mantuvieron durante 21 días. La pérdida de
sangre grave por anastomosis tratada con los parches (media = 0,14
g) fue significantemente más baja (p =
0,011) que la de controles sólo de sutura (media =
2,7 g). La cura posterior de la anastomosis tratada fue comparable con aquella de controles sólo de sutura, demostrando que el parche mantiene reparación tisular y procedimientos de cura naturales.
0,011) que la de controles sólo de sutura (media =
2,7 g). La cura posterior de la anastomosis tratada fue comparable con aquella de controles sólo de sutura, demostrando que el parche mantiene reparación tisular y procedimientos de cura naturales.
Una disolución en agua que comprendía 28,3% de
albúmina porcina, 18,1% de glicerol, 5% de PVA y 0,1% de Pluronic
25R2 se vertió sobre una superficie plana cubierta con PTFE y se
extendió hasta un espesor de 140 \mum. Esta disolución se calentó
hasta 100ºC durante 10 minutos y se dejó enfriar.
Una segunda disolución en agua, que comprendía
23,2% de PVP K-90D y 12,6% de glicerol fue de igual
manera vertida sobre la capa previamente formada, también hasta un
espesor de 140 \mum. La matriz se calentó adicionalmente hasta
100ºC durante 10 minutos, y de nuevo se dejó enfriar.
Una tercera disolución en agua, que comprendía
17,8% de PVP K-90D, 9,7% de glicerol y 0,01% de CMC
AF3285, se vertió sobre la segunda capa, y se extendió hasta un
espesor de 600 \mum. La matriz entera se calentó hasta 100ºC
durante 15 minutos, y de nuevo se dejó enfriar.
El parche de hidrogel tricapa resultante
(aproximadamente 330 \mum de espesor) se cortó a tamaño y se selló
dentro de bolsitas de papel metalizado. Los parches individuales se
irradiaron con radiación \gamma posteriormente.
De manera separada, se formó un hidrogel viscoso
que comprendió PVP K90-D (9,8% p/p),
CMC-90 (9,4% p/p) y glicerol (9,5% p/p). Este se
introdujo en una jeringa, se selló en una bolsita de papel
metalizado y se irradió con radiación \gamma.
Se realizó un estudio preclínico en conejos para
evaluar la utilidad del gel + parche autoadhesivo para sellar
defectos de tejidos contra pérdida de sangre. Se realizó una biopsia
por punción a 6 mm en el hígado de cada uno de los seis animales.
Primero se aplicó el gel a la herida para llenar la lesión, y luego
se colocó un parche autoadhesivo de 4 cm^{2} sobre el lugar de la
herida, y se dejó que se adhiriera. Los animales se recuperaron y se
mantuvieron durante 16 días. La pérdida de sangre aguda de heridas
tratadas con los parches (media = 1,3 g) fue significantemente menor
(p =0,033) que aquella de controles sin tratar (media =13,0 g). La
cura posterior de heridas tratadas con parche + gel fue comparable a
aquella de los controles en los que la herida se estabilizó con
parche hemostático con base de celulosa vendido con el nombre
comercial de Surgicel, demostrando que el parche ayuda a la
reparación tisular.
Una disolución en agua que comprendía 28,3% de
albúmina porcina, 18,1% de glicerol, 5% de PVA y 0,1% de Pluronic
25R2 se vertió en una superficie plana cubierta con PTFE y se
extendió hasta un espesor de 210 \mum. Esta disolución se calentó
hasta 90ºC durante 5 minutos y se dejó enfriar.
Una segunda disolución en agua, que comprendía
13,2% de PVP K-90D, 13,7% de glicerol y 13,6% de
CMC-90, fue de igual manera vertida sobre la capa
previamente formada, hasta un espesor de 1200 \mum. La matriz se
calentó adicionalmente hasta 100ºC durante 20 minutos, y de nuevo se
dejó enfriar.
El parche bicapa hidrogel que resulta
(aproximadamente 360 \mum espesor) se cortó a tamaño y se selló en
bolsitas de papel metalizado. Los parches individuales se irradiaron
con radiación \gamma posteriormente.
Se formó un hidrogel viscoso por separado, que
comprendía PVP K90-D (9,8% p/p),
CMC-90 (9,4% p/p) y glicerol (9,5% p/p). Este se
puso en una jeringa, se selló en una bolsita de papel metalizado y
se irradió con radiación \gamma.
Se realizó un estudio preclínico detallado en
conejos para evaluar la utilidad del gel + parche autoadhesivo para
sellar una lesión en tejido del pulmón contra pérdidas de aire. Se
realizó una incisión circular (aproximadamente 10 mm de diámetro y
5mm de profundidad) en un pulmón de cada uno de los cinco animales.
Se aplicó primero el gel a la lesión para rellenar el defecto, y
luego se colocó en el lugar de la herida un parche autoadhesivo de 4
cm^{2}, se permitió que se adhiriera al tejido subyacente. Se
observó cada lesión tratada durante un máximo de 10 minutos. En
todos los casos, la pérdida de aire de la lesión tratada fue
marcadamente inferior que en la lesión sin tratar y en 3 casos, no
hubo pérdida de aire observada en las lesiones tratadas.
Una disolución en agua que comprendía 28,6% de
albúmina porcina, 17% de glicerol, 5% de PVA y 0,1% de Pluronic 25R2
se vertió en una superficie plana cubierta con PTFE y se extendió
hasta un espesor de 70 \mum. Esta disolución se calentó hasta
100ºC durante 10 minutos y se dejó enfriar.
Una segunda disolución en agua, que comprendía
9,6% de PVP K-90D, 9,7% de CMC90 y 9,5% de glicerol,
fue de igual manera vertida sobre la capa previamente formada, hasta
un espesor de 600 \mum. La matriz se calentó adicionalmente hasta
100ºC durante 10 minutos, y de nuevo se dejó enfriar.
El parche bicapa resultante se irradió con
radiación \gamma (25 - 40 kGy) para lograr entrecruzado. El parche
se congeló después a -30ºC durante 12h. La muestras se liofilizaron
después a -20ºC durante 48h seguido de 12 horas a 0ºC y finalmente
24 horas a 25ºC. Las muestras secas se esterilizaron para terminar
por radiación \gamma (25-40 kGy).
Disolución A: copolímeros Pluronic
F-68 (2,5 g) y Pluronic F-127 (2,5
g) se añadieron lentamente a 68,5 g de agua para inyección agitada a
300 rpm. Se mantuvo el mismo nivel de agitación hasta que los
copolímeros se disolvieron. La velocidad del agitador se incrementó
a 2500 rpm para formar una espuma que típicamente tenía 4 veces el
volumen de la disolución original. Se añadió entonces
poli(vinilpirrolidona)K-90D (26,5 g)
al vórtice de la espuma para evitar la formación de grumos. La
disolución viscosa espumosa se dejó asentar durante 12 horas antes
de usarla.
Disolución B: se mezcló glicerol (12,6 g) con
69,9 gramos de agua para inyección empleando un agitador rotor
ajustado a 300 rpm. Los copolímeros Pluronic F-68
(2,5 g) y Pluronic F-127 (2,5 g) se añadieron
lentamente a la disolución agua/glicerol y se mantuvo el mismo nivel
de agitación hasta que los copolímeros se disolvieron. La velocidad
del agitador se incrementó a 2500 rpm para formar una espuma que
típicamente tenía 4 veces el volumen de la disolución original. Se
añadió entonces carboximetilcelulosa de sodio Blanose 7LF (12,6 g)
al vórtice de la espuma para evitar la formación de grumos. La
disolución viscosa hecha espuma se dejó asentar durante 12 horas
antes de usarla.
Se mezclaron completamente 63 g de disolución B
con 37 g de disolución A. El gel resultante se colocó en moldes
adecuados y se irradió con radiación \gamma (25- 40 kGy). Este
procedimiento produjo un gel entrecruzado que fue luego hinchado en
agua para inyección o en tampón de pH 2 (esto es, ácido cítrico
0,03M/NaCl 0,061M/HCl 0,0082M) durante 72 horas.
Los geles hinchados se transfirieron a bandejas y
se congelaron a -30ºC durante 12 horas. Las muestras se liofilizaron
después a -20ºC durante 48 horas seguido de 12 horas a 0ºC y
finalmente 24 horas a 25ºC. Las muestras secas se esterilizaron
finalmente por radiación \gamma (25-40 kGy).
Disolución A: copolímeros Pluronic
F-68 (2,5 g) y Pluronic F-127 (2,5
g) se añadieron lentamente a 68,5 g de tampón pH 2 (es decir, ácido
cítrico 0,03M/NaCl 0,061M/HCl 0,0082M) agitado a 300 rpm. Se mantuvo
el mismo nivel de agitación hasta que los copolímeros se
disolvieron. La velocidad del agitador se incrementó a 2500rpm para
formar una espuma que típicamente tenía 4 veces el volumen de la
disolución original. Se añadió luego poli(vinilpirrolidona)
K-90D (26,5 g) al vórtice de la espuma para evitar
la formación de grumos. La disolución viscosa hecha espuma se dejó
asentar durante 12 horas antes de usarla.
Disolución B: se mezcló glicerol (12,6 g) con
69,9 g de tampón pH 2 (p. ej. ácido cítrico 0,03M/NaCl 0,061M/HCl
0,0082M) empleando un agitador rotor ajustado a 300 rpm. Copolímeros
Pluronic F-68 (2,5 g) y Pluronic
F-127 (2,5 g) se añadieron lentamente a la
disolución acuosa y se mantuvo el mismo nivel de agitación hasta que
los copolímeros se disolvieron. La velocidad del agitador se
incrementó a 2500 rpm para formar una espuma que típicamente tenía 4
veces el volumen de la disolución original. Se añadió entonces
carboximetilcelulosa de sodio Blanose 7LF (12,6 g) al vórtice de la
espuma para evitar la formación de grumos. La disolución viscosa
hecha espuma se dejó asentar durante 12 horas antes de usarla.
Se mezclaron completamente 63 g de disolución B
con 37 g de disolución A. El gel resultante se colocó en moldes
adecuados y se irradió con radiación \gamma (25 - 40 kGy). Este
procedimiento produjo un gel entrecruzado que fue luego hinchado en
agua para inyección o en tampón de pH 2 (esto es, ácido cítrico
0,03M/NaCl 0,061M/HCl 0,0082M) durante 72 horas.
Los geles hinchados se transfirieron a bandejas y
se congelaron a -30ºC durante 12 horas. Las muestras se liofilizaron
entonces a -20ºC durante 48 horas seguido de 12 horas a 0ºC y
finalmente 24 horas a 25ºC. Las muestras secas se esterilizaron
finalmente por radiación \gamma (25 - 40 kGy).
Disolución A: Se añadió lentamente
poli(alcohol vinílico) 80% hidrolizado (2,8 g) a 70,4 g de
agua para inyección agitada a 300 rpm, se mantuvo el mismo nivel de
agitación hasta que el polímero se disolvió. La velocidad del
agitador se incrementó a 2500 rpm para formar una espuma que
típicamente tenía 4 veces el volumen de la disolución original. Se
añadió después poli(vinilpirrolidona) K-90D
(26,8 g) al vórtice de la espuma para evitar la formación de grumos.
La disolución viscosa hecha espuma se dejó asentar durante 12 horas
antes de usarla.
Disolución B: se mezcló glicerol (13 g) con 72,5
g de agua para inyección empleando un agitador rotor ajustado a 300
rpm. Poli(alcohol vinílico) 80% hidrolizado (1,5 g) se añadió
lentamente a la disolución acuosa y se mantuvo el mismo nivel de
agitación hasta que el polímero se disolvió. La velocidad del
agitador se incrementó a 2500 rpm para formar una espuma que
típicamente tenía 4 veces el volumen de la disolución original. Se
añadió entonces carboximetilcelulosa de sodio Blanose 7LF (13 g) al
vórtice de la espuma para evitar la formación de grumos. La
disolución viscosa hecha espuma se dejó asentar durante 12 horas
antes de usarla.
Se mezclaron completamente 62,6 g de disolución B
con 37,4 g de disolución A. El gel resultante se colocó en moldes
adecuados y se irradió con radiación \gamma (25- 40 kGy). Este
procedimiento produjo un gel entrecruzado que fue luego hinchado en
agua para inyección o en tampón de pH 2 (esto es, ácido cítrico
0,03M/NaCl 0,061M/HCl 0,0082M) durante 72 horas.
Los geles hinchados se transfirieron a bandejas y
se congelaron a -30ºC durante 12 horas. Las muestras se liofilizaron
entonces a -20ºC durante 48 horas seguido de 12 horas a 0ºC y
finalmente 24 horas a 25ºC. Las muestras secas se esterilizaron
finalmente por radiación \gamma (25 - 40 kGy).
Se disolvieron 12,5 g de poli(alcohol
vinílico) 28-99 (MM = 145.000, 99 - 99,8%
hidrolizado) en 100 ml de agua para inyección a 95ºC. Se dejó
enfriar la disolución hasta temperatura ambiente.
Muestras de 5 x 5 cm de material liofilizado
preparado en el ejemplo 5 se cubrieron uniformemente con 0,5 ml de
la disolución de PVA 28-99 anterior. Los parches
cubiertos se colocaron en un congelador ajustado a -20ºC durante 12
horas. Las muestras se descongelaron a temperatura ambiente a vacío
y se congelaron a -20ºC durante otras 12 horas. Finalmente, los
parches se descongelaron a temperatura ambiente a vacío, se
envasaron en bolsitas de papel de aluminio y para terminar se
esterilizaron por radiación \gamma (25 - 40 kGy).
Claims (56)
1. Una matriz polimérica, autoadhesiva,
biocompatible e hidratable en forma de lámina, parche o película
adecuada para aplicación en superficies húmedas tanto dentro como de
la superficie externa del cuerpo, comprendiendo la matriz material
polimerizable y/o entrecruzable natural o sintético que ayuda a
curar heridas, y un polímero sintético que tiene propiedades
bioadhesivas, tales propiedades permiten a la matriz adherirse a
tejido subyacente mediante enlace iónico y/o de hidrógeno.
2. Una matriz según la reivindicación 1, que
comprende además un fármaco o medicamento, sirviendo la matriz como
vehículo de administración del fármaco o el medicamento.
3. Una matriz según la reivindicación 1, que está
exenta de fármaco o medicamento.
4. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el componente polimerizable
y/o entrecruzable de la matriz se selecciona de polisacáridos,
polilactatos, polialcoholes y
proteínas.
proteínas.
5. Una matriz según la reivindicación 4, en la
que el componente polimerizable y/o entrecruzable de la matriz es
una proteína o material proteináceo que puede entrecruzarse por la
aplicación de calor o energía electromagnética.
6. Una matriz según la reivindicación 5, en la
que la matriz comprende albúmina.
7. Una matriz según la reivindicación 6, en la
que la albúmina es albúmina de mamífero como albúmina porcina,
bovina o humana.
8. Una matriz según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que el componente de la matriz
polimerizable y/o entrecruzable es un polisacárido o un derivado del
mismo.
9. Una matriz según la reivindicación 8, en la
que el polisacárido es un derivado de celulosa.
10. Una matriz según la reivindicación 9, en la
que el derivado de celulosa es un éter de celulosa o un derivado o
una de sus sales.
11. Una matriz según la reivindicación 9, en la
que el derivado de celulosa es carboximetilcelulosa de sodio.
12. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el componente polímero
bioadhesivo de la matriz contiene grupos carboxilo, amida,
hidroxilo, éter o éster.
13. Una matriz según la reivindicación 12, en la
que el polímero bioadhesivo se selecciona del grupo que consiste en
poli(ácidos carboxílicos) y sus derivados, copolímeros de ácidos
carboxílicos y sus derivados, y polialcoholes y sus derivados.
14. Una matriz según la reivindicación 12, en la
que el polímero bioadhesivo consiste en unidades estructurales
repetitivas que contienen grupos
amida.
amida.
15. Una matriz según la reivindicación 14, en la
que la unidad repetitiva es, o contiene, un grupo
1-etilenpirrolidin-2-ona
(vinilpirrolidona).
16. Una matriz según la reivindicación 14, en la
que el polímero es poli(vinilpirrolidona).
17. Una matriz según la reivindicación 12, en la
que el polímero bioadhesivo es un copolímero de unidades que
contienen amida y unidades que contienen éster del ácido
carboxílico.
18. Una matriz según la reivindicación 17, en la
que el copolímero es copolímero
poli(vinilpirrolidona)/poli(acetato de vinilo).
19. Una matriz según la reivindicación 1, en la
que el polímero que tiene propiedades bioadhesivas es un derivado de
celulosa.
20. Una matriz según la reivindicación 19, en la
que el derivado de celulosa es un éter de celulosa o un derivado o
una de sus sales.
21. Una matriz según la reivindicación 20, en la
que el derivado de celulosa es carboximetilcelulosa de sodio.
22. Una matriz según la reivindicación 1, que
comprende una combinación de un polímero de unidades que contienen
amida y un derivado de celu-
losa.
losa.
23. Una matriz según la reivindicación 22, que
comprende poli(vinilpirrolidona) y un derivado de
carboximetilcelulosa o una de sus sales.
24. Una matriz según la reivindicación 23, que
comprende carboximetilcelulosa de sodio.
25. Una matriz según la reivindicación 22, en la
que el polímero de unidades que contienen amida está presente en una
proporción entre 0,1 y 60 veces la de derivado de celulosa.
26. Una matriz según la reivindicación 25, en la
que el polímero de unidades que contienen amida está presente en una
proporción mayor que el derivado de celulosa.
27. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que tiene una energía de rotura al
despegado no inferior a 10.000 N/m.
28. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que además comprende un
plastificante.
29. Una matriz según la reivindicación 28, en la
que el plastificante es un polialcohol.
30. Una matriz según la reivindicación 29, en la
que el plastificante es glicerol.
31. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en la que la matriz además comprende
un polímero estructural sintético o biológico para conferir
resistencia y elasticidad a la
matriz.
matriz.
32. Una matriz según la reivindicación 31, en la
que el polímero estructural se selecciona del grupo que consiste en
poli(alcohol vinílico), poli(etilenglicol), poli(ácido
acrílico), poli(acrilamida) y materiales similares.
33. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que comprende además uno o más
tensioactivos.
34. Una matriz según la reivindicación 33, que
comprende un tensioactivo en forma de un copolímero de óxido de
etileno y óxido de propileno.
35. Una matriz según la reivindicación 1, que
comprende:
- a)
- material polimerizable y/o entrecruzable - de 2% a 80% en peso, más preferiblemente 5% a 60%, y lo más preferible 10 a 30%;
- b)
- polímero(s) bioadhesivo(s) - de 5% a 90% en peso, más preferiblemente 20% a 80%, y lo más preferible 30% a 60%;
- c)
- polímero estructural - de 0,01% a 20% en peso, más preferiblemente 1% a 15%, y lo más preferible 2% a 10%;
- d)
- tensioactivo - de 0,001% a 10%, más preferible 0,01% a 1%, y lo más preferible 0,01% a 0,1%;
- e)
- plastificante - de 1% a 70%, más preferiblemente 10% a 60%, y lo más preferible 20% a 40%.
36. Una matriz según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que contiene entre 2% y 60% en peso de
agua, y preferiblemente entre 5% y 30%.
37. Un procedimiento para la producción de una
matriz según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, cuyo
procedimiento comprende formar disoluciones de las siguientes
composiciones:
a) Disolución A:
- i)
- material polimerizable y/o entrecruzable: 5 - 60%, más preferiblemente 10 - 50%, y lo más preferible 20 - 40%,
- ii)
- polímero estructural: 0,1 - 30%, más preferiblemente 1 - 20%, y lo más preferible 3 - 10%,
- iii)
- tensioactivo: 0,001 - 5%, más preferible 0,01 - 1%, y lo más preferible 0,05 - 0,5%,
- iv)
- plastificante: 1 - 80%, más preferiblemente 10 - 60%, y lo más preferible 15 - 35%,
b) Disolución B:
- i)
- polímero(s) bioadhesivo(s): 1 - 60%, más preferiblemente 5 - 40%, y lo más preferible 10 - 30%;
- ii)
- plastificante: 1 - 60%, más preferiblemente 5 - 40%, y lo más preferible 10 - 30%;
combinar la disolución A con la
disolución B, y provocar o permitir que las disoluciones combinadas
se
endurezcan.
38. Un procedimiento según la reivindicación 37,
en el que dicha combinación comprende verter disolución A en un
molde y provocar o permitir que se endurezca por evaporación para
formar una primera capa, y verter la disolución B sobre la primera
capa.
39. Una matriz según la reivindicación 1, que
tiene forma de una esponja, con forma de malla, y de estructura
manifiestamente abierta, estando ocupada por material sólido sólo
una proporción menor del volumen total de la estructura.
40. Una matriz según la reivindicación 39, que
comprende:
- a)
- material bioadhesivo, polimerizable y/o entrecruzable - de 1% a 30% en peso, más preferiblemente 5% a 30%, y lo más preferible 10% a 25%;
- b)
- tensioactivo - de 0,01% a 20%, más preferiblemente 0,1% a 15%, y lo más preferible 1% a 15%;
- c)
- plastificante - de 1% a 50%, más preferiblemente 5% a 30%, y lo más preferible 10% a 25%.
41. Una matriz según las reivindicaciones 39 ó
40, una superficie que tiene un revestimiento continuo de un
material polimérico sintético o natural.
42. Un procedimiento para la producción de una
matriz según una cualquiera de las reivindicaciones 39 a 41, cuyo
procedimiento comprende formar disoluciones de las siguientes
composiciones:
a) Disolución A:
- i)
- material bioadhesivo, polimerizable y/o entrecruzable: 5 - 35%, más preferiblemente 10 - 30%, y lo más preferible 20 - 30%,
- ii)
- tensioactivo: 0,01 - 20%, más preferible 0,1 - 15%, y lo más preferible 1 - 15%;
b) Disolución B:
- i)
- material bioadhesivo, polimerizable y/o entrecruzable: 1 - 30%, más preferiblemente 5 - 30%, y lo más preferible 10 - 25%;
- ii)
- plastificante: 1 - 90%, más preferiblemente 10- 60%, y lo más preferible 10 - 50%;
- iii)
- tensioactivo: 0,01 - 20%, más preferiblemente 0,1 - 15%, y lo más preferible 1 - 15%, agitando las disoluciones A y B para formar espuma, mezclando las disoluciones A y B para formar un gel, y liofilizando el gel.
43. Un procedimiento según la reivindicación 42,
que además comprende entrecruzamiento del gel.
44. Un procedimiento según la reivindicación 43,
en el que el entrecruzamiento se realiza exponiendo el gel a
radiación ionizante.
45. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 42 a 44, que además comprende hinchamiento del
gel.
46. Un procedimiento para la producción de una
matriz polimérica hidratable, biocompatible y
auto-adhesiva, en forma de lámina, parche o película
adecuada para aplicación a superficies húmedas tanto dentro como en
la superficie externa del cuerpo, tal procedimiento comprende formar
una disolución espumada de un material polimerizable y/o
entrecruzable natural o sintético que ayuda a curar heridas, y un
polímero sintético que tiene propiedades bioadhesivas, y someter
dicha disolución espumada a liofilización.
47. Un procedimiento según la reivindicación 46,
que comprende espumar una disolución que contiene todos los
componentes de la matriz.
48. Un procedimiento según la reivindicación 46,
que comprende formar una primera disolución del material
polimerizable y/o entrecruzable natural o sintético, y una segunda
disolución del polímero sintético que tiene propiedades
bioadhesivas, espumar la primera disolución y la segunda disolución,
y mezclar después las disoluciones primera y segunda.
49. Un procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 42 a 48, que se realiza a pH redu-
cido.
cido.
50. Un procedimiento según la reivindicación 49,
que se realiza a un pH menor que 4,0.
51. Un procedimiento según la reivindicación 49,
que se realiza a un pH menor que 3,0.
52. Un procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 49 a 51, que supone formar una o más disoluciones
en un tampón de pH bajo.
53. Un procedimiento según las reivindicaciones
49 a 52, que supone hinchar el gel en un tampón de pH bajo.
54. Una matriz según la reivindicación 1, que
tiene un espesor de 20 – 1000 \mum.
55. Una matriz según la reivindicación 39, que
tiene un espesor de 0,1 a 10 mm.
56. El empleo de una matriz según cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 36 ó 39 a 41 en la producción de una
composición para la prevención o inhibición de adhesión
postquirúrgica.
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