ES2236706T3 - Procedimiento para reducir las disfunciones de los sistemas inmunitario y hemostatico durante la circulacion extracorporal. - Google Patents
Procedimiento para reducir las disfunciones de los sistemas inmunitario y hemostatico durante la circulacion extracorporal.Info
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Abstract
USO DE ANTICUERPOS ANTI-C5 PARA DISMINUIR LA DISFUNCIONALIDAD DEL SISTEMA HEMOSTATICO E INMUNOLOGICO ASOCIADA A LOS PROCESOS DE CIRCULACION EXTRACORPOREA COMO ES EL CASO DE LOS PROCEDIMIENTOS DE BYPASS CARDIOPULMONAR. SE HA DESCUBIERTO QUE ESTOS ANTICUERPOS REDUCEN SIGNIFICATIVAMENTE LA ACTIVACION COMPLEMENTARIA, PLAQUETARIA, LEUCOCITARIA Y LA ADHESION PLAQUETOLEUCOCITARIA ASOCIADA A TALES PROCEDIMIENTOS.
Description
Procedimiento para reducir las disfunciones de
los sistemas inmunitario y hemostático durante la circulación
extracorporal.
El gobierno de los Estados Unidos ha pagado
licencia por la presente invención y el derecho, en circunstacias
limitadas, a exigir del titular de la patente que la licencie a
otros en términos razonables tal como se indica en los términos de
la subvención nº HL47193 otorgada por el National Institutes of
Health, Bethesda, de Maryland.
La presente invención se refiere a la reducción
de la disfunción del sistema inmunitario y hemostático en asociación
con la circulación extracorporal. En particular, la presente
invención se refiere a la utilización de anticuerpos específicos al
componente C5 del complemento humano para producir la inhibición del
brazo del complemento del sistema inmunitario para lograr dicha
profilaxia terapéutica.
La circulación extracorporal (ECC) de la sangre
es una tecnología médica importante que se utiliza en diversos
procedimientos médicos que salvan vidas. Dichos procedimientos
incluyen la hemodiálisis, plasmaféresis, plaquetaféresis,
leucoaféresis, oxigenación mediante membrana extracorporal (ECMO),
precipitación extracorporal de LDL inducida por heparina (HELP) y
"bypass" cardiopulmonar (CPB). Como tal, la ECC es ampliamente
utilizada en la práctica médica moderna.
Una de las utilizaciones más comunes de la ECC es
en el CPB. En los Estados Unidos se realizan cada año más de 400.000
procesos de CPB [Rinn, A., N. Engl. J. Med. 312:119 (1985)].
La principal aplicación médica del CPB consiste en facilitar el
injerto de "bypass" de arteria coronaria, pero también se
utiliza durante otros tipos de cirugía a corazón abierto, que
incluyen los procesos para corregir los defectos congénitos de
corazón, la enfermedad de las válvulas cardíacas u otros defectos
cardíacos. Debido a las mejoras en los procedimientos quirúrgicos y
a la oxigenación extracorporal, en general la mortalidad de dicho
proceso es baja (1% a 4%) [Allen C. M., Br. Med. J. 297:1485
(1988)].
Debido a que hasta la fecha las más extensas
investigaciones sobre los efectos de la ECC sobre el sistema
inmunitario y el hemostático han sido en el campo del CPB, la mayor
parte de la discusión sobre los efectos concretos de la ECC en la
presente solicitud está relacionada con el CPB. Sin embargo, no se
pretende que dicha exposición sea o se interprete como limitativa de
la presente invención al CPB.
Aunque la muerte durante los procesos de ECC es
rara, diversas complicaciones, agudas y crónicas, durante y a
continuación de dichos procesos generan problemas médicos que
amenazan la vida y producen costes significativos al sistema
sanitario. Muchas de tales complicaciones se han asociado a la
activación del sistema inmunitario, teniendo un papel
particularmente importante el brazo del complemento del sistema
inmunitario en el desarrollo de inflamación, disfunción plaquetaria,
trombocitopenia y otras complicaciones de la ECC. Los problemas
hemostáticos durante y después de la ECC se pueden atribuir a una
multiplicidad de factores, que incluyen la disfunción plaquetaria
mediada por el complemento y pueden producir una trombosis excesiva
y un exceso de hemorragia cuando las plaquetas primero se activan y
a continuación se gastan, se hacen no funcionales y son eliminadas
de la circulación. La gestión de la hemorragia anormal asociada al
CPB necesita frecuentemente la reoperación y está frecuentemente
asociada a la excesiva y ocasionalmente inapropiada administración
de productos de la sangre, que ocasionalmente excede la
disponibilidad de sangre. En algunos hospitales, la cirugía a
corazón abierto da cuenta de más del 25% del total de los productos
de la sangre utilizados [Woodman and Harker, Blood 76:1690
(1990)].
La activación de sistema del complemento tiene
lugar cuando el plasma sanguíneo se pone en contacto con superficies
extrañas durante la ECC. Los componentes activados del complemento
pueden iniciar respuestas inflamatorias asociadas a
vasoconstricción, perdidas capilares y activación de las plaquetas.
Más adelante, bajo el encabezamiento "Antecedentes
fisiológicos", se presenta una discusión de los diversos
mecanismos fisiológicos implicados en las disfunciones hemostáticas
e inmunitarias asociadas a la ECC.
Las múltiples estrategias anteriormente
utilizadas para controlar la activación del sistema del complemento
y los problemas asociados originados durante la ECC ilustran la
percepción de la importancia que tiene para la comunidad de
investigadores médicos el logro de dichos objetivos. Dichas
estrategias han incluido intentos para alterar los componentes
mecánicos de los circuitos de CPB, que incluyen la utilización de
oxigenadores de membrana (en contraposición a los de burbujas) y de
circuitos de "bypass" recubiertos de heparina, así como también
de diversas estrategias para la modulación farmacológica de la
activación del complemento. Desgraciadamente, dichos esfuerzos no
han eliminado los problemas con el sistema inmunitario y el
hemostático asociados a la ECC y, en muchos casos, han sido de por
sí responsables de efectos adversos adicionales.
Tal como se mencionó anteriormente, las
superficies extrañas de los circuitos de ECC causan la activación
del complemento. En el CPB, el oxigenador constituye la principal
superficie que activa al complemento. Aunque algunos estudios han
demostrado que los oxigenadores de membrana están asociados con una
menor activación de ciertos componentes del complemento que los
oxigenadores de burbujas, no existe un consenso sobre si causan en
general menos activación del complemento durante el CPB. Más bien,
la activación del complemento oscila entre dos diferentes
oxigenadores individuales, ya sean de burbujas o de membrana [Videm,
et al., Ann. Torac. Surg. 50:387 (1990)].
Recientemente, se ha demostrado que los circuitos
de paso recubiertos de heparina reducen la activación del
complemento durante el CPB. Desgraciadamente, esta estrategia
solamente inhibe parcialmente la activación del complemento
[(Nilsson, et al., Artif. Organs 14:46 (1990)).
Ninguna de las estrategias farmacológicas anteriores para reducir
específicamente la activación del complemento durante el CPB ha dado
resultados satisfactorios.
Los fármacos de esteroides antiinflamatorios son
agentes inmunosupresores que pueden modular la función del
complemento. Aunque en algunos estudios se ha asociado la
utilización de esteroides a un moderado descenso en la activación
del complemento [Cavarocchi, et al., J. Torac. Cardiovasc.
Surg., 91:252 (1986)] otros no han encontrado efectos
beneficiosos (Miyamoto, et al., ASAIO J., 31:508
(1985)] y la supresión inmunitaria general producida por los
esteroides y otros efectos secundarios asociados a la administración
de esteroides, limitan todavía más su utilidad en el tratamiento de
los pacientes de ECC.
Hasta la fecha, la mayoría de los esfuerzos para
modular la activación del complemento durante la ECC se han
concentraron sobre el componente C3 del complemento. Un estudio
reciente valoró el potencial de una forma recombinante soluble del
receptor tipo 1 del complemento (sCR1, designada BRL55730 por
SmithKline Beecham) para reducir la activación del complemento
asociada con el CPB [Gillinov, et al., Ann. Torac. Surg.,
55:619 (1993)]. El sCR1 actúa bloqueando la conversión del
componente C3 del complemento en los componentes activados C3a y
C3b. Desgraciadamente, en dicho estudio no se evaluaron las
mediciones clave de la activación del complemento y de las plaquetas
y los resultados de los neutrófilos y otros puntos finales
fisiológicos reportados fueron decepcionantes. Además, el sCR1
bloquea al C3 y, tal como se discute en detalle más adelante, el
bloqueo de la activación del C3 interrumpe las acciones
antimicrobianas más importantes del sistema del complemento,
exponiendo a los pacientes a un creciente riesgo de infección.
Mientras que la ECC claramente causa la
activación del complemento, también está asociada a otros problemas,
que incluyen la generación de quinina, la pérdida de factores de
coagulación por hemodiálisis, la fibrinolisis, la liberación de
tromboxano A_{2} y la activación de las plaquetas y de los
neutrófilos. Muchos de estos fenómenos son, por lo menos en parte,
consecuencias secundarias de la activación del complemento. Las
terapias actuales utilizadas para resolver estos fenómenos
específicos han, hasta la fecha, dependido de agentes
antifibrinolíticos y hemostáticos de amplia base, más bien
inefectivos, ejemplos de los cuales son los siguientes.
La aprotinina, un inhibidor de las serina
proteasas de base amplia (TRASYLOL, Bayer AG), ha sido estudiada
recientemente debido sus efectos sobre la patología asociada con el
CPB. La aprotinina inhibe a la kallikreina, un enzima proteolítico
que atenúa la liberación de la elastasa de los neutrófilos, otra
proteinasa, y reduce la producción del componente C3a del
complemento. En ausencia de prueba directa alguna, se ha sugerido
que la aprotinina también podría inhibir parcialmente la actividad
C3 convertasa [Wachtfogel, et al., Blood, 69:329
(1989)]. Aunque, tal como se mencionó anteriormente, existe un
consenso en la técnica sobre el hecho de que el C3a juega un papel
fundamental en la generación de las disfunciones de los sistemas
inmunitario y hemostático asociadas a la ECC, la activación de las
plaquetas inducida por el CPB, que es (por lo menos en parte)
secundaria a la activación del complemento, no esta afectada por la
terapia con aprotinina (Bidstcrup, et al., J. Thorac.
Cardiovasc. Surg., 973:364 1989], y está claro que la disfunción
plaquetaria está directamente implicada en la patogénesis de los
problemas hemostáticos asociados a la ECC. Los efectos beneficiosos
de la administración de aprotinina están probablemente relacionados
a su capacidad para inhibir a la kallicreina, disminuyendo de esta
forma la conversión proteolítica del plasminógeno en plasmina, una
etapa clave en la coagulación de la sangre. La eficacia de la
aprotinina para reducir la pérdida de sangre durante el CPB se ha
demostrado cuando la aprotinina se administra mediante infusión
continua. Sin embargo, la administración de bolos de aprotinina de
dosis única, ha demostrado ser ineficaz.
El entusiasmo por la utilización de la aprotinina
durante el CPB ha sido atenuado por recientes resultados clínicos
que indican una creciente incidencia de los infartos de miocardio
perioperatorios (16,9% contra 8,9% para el placebo) y por una
incidencia significativa de la disfunción renal postoperatoria
asociada a la administración de aprotinina durante el CPB [Cosgrove,
et al., Ann. Thorac. Surg., 54:1031 (1992)]. En dicho
estudio, los hallazgos postmorten en algunos pacientes que murieron
después de operaciones coronarias electivas utilizando aprotinina,
incluyeron oclusiones agudas de los injertos de vena así como
también trombosis generalizada en los riñones, los vasos coronarios
nativos y los vasos cerebrales. A pesar de los riesgos asociados con
tales eventos clínicos perjudiciales, los beneficios de la
modulación farmacéutica de tales efectos adversos asociados al CPB
han conducido recientemente a la aprobación por la FDA de la
aprotinina para el tratamiento de los pacientes que reciben CPB.
El análogo sintético de la lisina EACA (AMICAR,
Lederle Laboratories) ha sido utilizado con frecuencia como agente
antifibrinolítico durante el CPB. Aunque la EACA es efectiva para
reducir la hemorragia en diversas circunstancias clínicas, su
utilización en el CPB ha sido controvertida en lo que respecta a su
potencial para reducir la pérdida de sangre postoperatoria [Copeland
et al., Ann. Thorac. Surg., 47:88 (1989)]. Además,
tanto la trombosis venosa como la trombosis arterial han complicado
la terapia con EACA en una multiplicidad de ensayos clínicos y en
general han desalentado su utilización clínica [Sonntag and Stein,
J. Neurosurg., 40:480 (1974)]. También se ha utilizado el
ácido tranexeámico por su efecto antifibrinolítico, pero también ha
sido asociado con complicaciones trombóticas excesivas [Orum, et
al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg., 105:78 (1993)].
Las propiedades hemostáticas relativamente
inespecíficas del análogo sintético de la vasopresina, el acetato de
desmopresina, la han convertido en un agente farmacéutico candidato
para el tratamiento de las alteraciones hemodinámicas asociadas con
el CPB. Sin embargo, los estudios de doble ciegos al azar en 150
pacientes consecutivos que recibieron CPB electivo no encontraron
una diferencia significativa en la pérdida de sangre o en las
necesidades post operatorias de transfusiones en los pacientes que
recibieron desmopresina [Hackmann, et al., N. England. J.
Med., 321:1437, 1989; Rocha, et al., Circulation,
77:1319 (1988)].
Klos et al., Chemical Abstracts describe
los anticuerpos monoclonales contra C3a y C5a y su utilización en
ELISAs. Además, se dan a conocer los niveles de los componentes del
complemento en las muestras de plasma de los pacientes que están
experimentando cirugía cardiopulmonar. Además, el documento
US-A-4 686 100 describe la
utilización de un anticuerpo anti-C5a en el
tratamiento del síndrome de aflicción respiratoria adulta. Además,
la utilización de anticuerpos en general para la purificación por
afinidad de sangre extracorporal se apreció antes de la fecha de
prioridad de la presente invención (WO 921730).
El documento WO 92 10096 da a conocer que la
activación excesiva del complemento tiene un papel en la disfunción
hemostática durante la circulación extracorporal de la sangre.
Además, describe compuestos sintéticos capaces de reprimir el
sistema inmunitario e inhibir el complemento. El documento
US-A-5 135 916 describe la
utilización de anticuerpos contra los componentes C7 y C9 del
complemento para inhibir la respuesta inflamatoria mediada por el
complemento y su utilización para incrementar la vida media de las
plaquetas almacenadas.
Wurzner et al., Complement and
Inflammation, 8:328-340 (1991), describe la
utilización de anticuerpos monoclonales para inhibir la formación
del complejo terminal de ataque a la membrana (MAC).
En vista del estado de la técnica anterior, es un
objetivo de la presente invención proporcionar la utilización de un
anticuerpo anti-C5 para la preparación de un
medicamento destinado a reducir la disfunción de los sistemas
inmunitario y/o hemostático durante la circulación extracorporal de
la sangre.
La utilización de la presente invención implica
la utilización de anticuerpos contra el componente C5 del
complemento como agentes farmacéuticos. Más particularmente, la
invención proporciona la utilización de una preparación de
anticuerpo anti-C5 que se une al C5 nativo del
plasma, y de este modo bloquea la generación de los componentes
activos del complemento C5a y C5b a partir de C5. Preferiblemente,
el anticuerpo es un anticuerpo monoclonal.
En ciertas formas de realización preferidas, la
invención se utiliza durante el CPB. En otra forma de realización
preferida adicional, la inhibición de la disfunción se logra
mediante la administración de una dosis única de dicha preparación
de anticuerpo anti-C5.
Tal como se muestra en los ejemplos presentados
más adelante, los anticuerpos anti-C5 pueden
bloquear completamente aspectos importantes de la actividad del
complemento humano, a la vez que mantiene importantes funciones
antiinfecciosas del sistema del complemento. En particular, los
anticuerpos bloquean completamente la generación del ensamblaje
citolítico de componentes activados del complemento conocido como el
complejo de ataque a la membrana. Además, los anticuerpos inhiben la
activación de las plaquetas, inhiben la activación de los
leucocitos, inhiben las interacciones
plaqueta-linfocito, específicamente, las
interacciones plaqueta-monocito y
plaqueta-célula polimorfonucleada e inhiben la
eliminación de glicoproteínas clave de la superficie de las
plaquetas durante la circulación extracorporal de la sangre.
Como consecuencia de dichas actividades, los
anticuerpos ayudan a mantener el sistema inmunitario y hemostático
en su estado normal durante la ECC.
En ciertas formas de realización, la presente
invención comprende la utilización de un anticuerpo que se une
específicamente al componente C5 del complemento en la preparación
de un medicamento para reducir la disfunción de los sistemas
inmunitario y/o hemostático durante la circulación extracorporal de
la sangre mediante la reducción de por lo menos una de entre
activación del complemento, activación de las plaquetas, activación
de los leucocitos o la adhesión entre plaquetas y leucocitos
resultantes del paso de la sangre circulante a través de un conducto
con una superficie de lumen que comprende un material capaz de
producir por lo menos una de entre activación del complemento,
activación de los leucocitos, adhesión de plaquetas y leucocitos en
la sangre de un paciente.
Las figuras adjuntas, que se incorporan y
constituyen parte de la memoria, ilustran ciertos aspectos de la
invención, y junto con la descripción, sirven para explicar los
principios de la presente invención. Se debe entender, desde luego,
que tanto las figuras como la descripción son solamente explicativas
y no limitan la invención.
Figura 1- Ensayo hemolítico que demuestra la
inhibición por un anticuerpo monoclonal anti-C5 de
la actividad del complemento asociada con la sangre humana circulada
a través de un circuito extracorpóreo. Los ensayos se realizaron
antes de la adición del anticuerpo o del inicio del circuito de CPB
("Pre Tx") utilizando sangre sin diluir ("undil") y sangre
diluida ("dil") tal como se describe en el Ejemplo 1. Las
muestras de sangre diluida a las que se ha añadido el anticuerpo
("Post Tx") se ensayaron en los tiempos indicados una vez
iniciado el circuito de CPB.
Figura 2- Ensayo de los niveles del componente
C3a del complemento que demuestra que la generación del componente
C3a del complemento en la sangre humana entera circulada a través de
un circuito extracorpóreo no es inhibida por la adición de un
anticuerpo monoclonal anti-C5 a dicha sangre entera.
Los ensayos se realizaron antes de la adición del anticuerpo o el
inicio del circuito de CPB ("Pre Tx") utilizando sangre no
diluida ("undil") y sangre diluida ("dil") tal como se
describe en el Ejemplo 1. Las muestras de sangre diluida a las que
se había añadido anticuerpo ("Post Tx") se ensayaron en los
tiempos indicados una vez iniciado el circuito de CPB.
Figura 3- Ensayo de los niveles de
C5b-9 soluble en la sangre humana circulada a través
de un circuito extracorpóreo que demuestra que la adición de un
anticuerpo monoclonal anti-C5 a dicha sangre entera
inhibe la formación del ensamblaje terminal del complemento
C5b-9. Los ensayos se realizaron antes de la adición
del anticuerpo o el inicio del circuito de CPB ("Pre Tx")
utilizando sangre sin diluir ("undil") y sangre diluida
("dil") según se describe en el Ejemplo 1. Las muestras de
sangre diluida a las que se había añadido anticuerpo ("Post
Tx") se ensayaron en los tiempos indicados después de iniciarse
el circuito de CPB.
Figura 4- Análisis por FACS de los niveles de
GPIb ("GP1b") en todas las plaquetas,
GPIIb-IIIa en todas las plaquetas
(independientemente de la expresión de P-selectina,
"GPIIb-IIIa"), P-selectina en
todas las plaquetas ("%PLT activ") GPIIb-IIIa
en las plaquetas positivas para P-selectina
("IIb-IIIa-act"),
GPIIb-IIIa en las plaquetas negativas para
P-selectina
("IIb-IIIa-inact"), enlace
plaqueta neutrófilo ("PLT/PMN"), enlace
plaqueta-monocito ("PLT/MONO"), niveles de
CD11b en neutrófilos ("PMN CD11b") y niveles de CD11b en
monocitos ("MONO CD11b"), demostrando la inhibición de todos
excepto los dos últimos de tales parámetros mediante la adición de
un anticuerpo monoclonal anti-C5 a la sangre humana
entera durante la ECC.
Tal como se describió anteriormente, la presente
invención se refiere a la inhibición de las disfunciones del sistema
inmunitario y hemostático durante la ECC. Para proporcionar
antecedentes para la descripción de las formas de realización
preferidas y a los ejemplos que se presentan más adelante, se hará
referencia en primer lugar a discusiones generales en el contexto de
la ECC de los aspectos relevantes de los sistemas inmunitario y
hemostático, en particular de ciertos aspectos del brazo del
complemento del sistema inmunitario, el brazo celular del sistema
inmunitario y la fisiología de las plaquetas.
Un cambio patofisiológico clave en la sangre
asociado con la ECC es la rápida activación de la cascada del
complemento. La activación de los componentes del complemento que
median en la inflamación e inciden sobre las propiedades
hemostáticas de la sangre tiene lugar cuando las sangre se pone en
contacto directo con diversos componentes no biológicos del circuito
de ECC [Videm, et al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg.,
97:764-770 (1989)] y se puede inhibir hasta
cierto punto con ciertos fármacos, en particular la heparina y la
protamina, que se administran a los pacientes durante los procesos
de ECC [Jones, et al., Anaesthesia,
37:629-633 (1982)].
Tanto en el sistema inmunitario como en el
sistema hemostático se observan perturbaciones interdependientes
durante el CPB y otros tipos de ECC. Muchos de dichos cambios se
cruzan al nivel de la función de las plaquetas, ya que las acciones
del brazo del complemento del sistema inmunitario pueden producir la
activación de las plaquetas.
Además de sus efectos sobre las plaquetas y el
brazo del complemento del sistema inmunitario, la ECC también afecta
al brazo celular del sistema inmunitario tanto a través de efectos
sobre los leucocitos como a través de efectos sobre las
interacciones plaqueta-leucocito.
Las plaquetas son elementos celulares de la
sangre sin núcleo, vitalmente importantes para la formación de
coágulos sanguíneos y evitar el exceso de hemorragia. Un número de
plaquetas anormalmente bajo en la sangre, un síndrome conocido como
trombocitopenia, generalmente produce contusiones graves, hemorragia
en las membranas mucosas y una considerable pérdida de sangre
después de la cirugía y otras heridas.
La disfunción plaquetaria ha sido asociada al
contacto de las plaquetas con la superficie no biológica del
oxigenador extracorpóreo y a la hipotermia asociada con el CPB.
También se han implicado diversos otros mecanismos, solos o en
combinación, como contribuyentes a la disfunción plaquetaria. Por
ejemplo, el trauma mecánico debido al esfuerzo de cizalla, la
adherencia a las superficies y la turbulencia en el oxigenador
extracorpóreo puede producir la fragmentación de la membrana de las
plaquetas. Los componentes activados del complemento, sin embargo,
son argumentablemente los factores más importantes que contribuyen a
la disfunción de las plaquetas asociada a la ECC.
El CPB afecta a adversamente al número y a la
función de las plaquetas. La hemodilución durante el CPB causa el
rápido descenso del número de plaquetas poco después del inicio del
CPB, que disminuye hasta aproximadamente el 50% del nivel
preoperatorio. Dicho nivel de plaquetas circulantes, si ocurriese en
el contexto del funcionamiento de las plaquetas de un individuo
normal, es poco probable que contribuyese a hemorragia clínica. De
mayor significado para el desarrollo de la morbidez asociada al CPB
es, sin embargo, la pérdida progresiva de la función de las
plaquetas observada durante y después del CPB. En minutos después
del inicio del CPB, se prolonga significativamente el tiempo de
hemorragia y se deteriora la agregación de las plaquetas. Dichos
cambios en el tiempo de hemorragia son independientes del número de
plaquetas y empeoran a la vez que progresa el CPB. Los tiempos de
hemorragia, normalmente inferiores a 10 minutos, se pueden acercar a
los 30 minutos después de 2 horas de CPB.
Las plaquetas sufren alteraciones bioquímicas y
morfológicas profundas cuando son activadas por ciertos estímulos.
Cuando son producidas por estímulos asociados a condiciones que
requieren una hemostasis rápida, dichas alteraciones están asociadas
a la función normal de las plaquetas. Cuando son producidas por la
ECC, tienen consecuencias patofisiológicas. Las alteraciones de las
características de las plaquetas asociadas a su activación incluyen
la desgranulación exocítica con liberación del contenido de diversos
orgánulos de almacenamiento, los cambios de forma y la inducción de
la adhesividad, agregación y producción de tromboxano.
Una proteína específica integral de la membrana,
la P-selectina (también conocida como CD62, CD62P,
GMP-140 y PADGEM), que también se localiza en la
superficie interna de los gránulos \alpha de las plaquetas, se
desplaza a la superficie de las plaquetas cuando dichos orgánulos se
invierten durante la exocitosis. Por consiguiente, la aparición de
P-selectina en la superficie de las plaquetas sirve
como un marcador de la activación de las plaquetas.
Una multiplicidad de pruebas sugiere que la
expresión de P-selectina y el agotamiento temporal o
la modificación de alguno de los componentes funcionales de la
membrana de las plaquetas son indicios clave de la funcionalidad de
las plaquetas. Múltiples estudios han reportado un descenso
significativo en la cantidad de las glicoproteínas antígenos de
membrana GPIb (CD45b), GPIIb y GPIIIa en las plaquetas circulantes a
continuación del CPB. En particular la perdida de GPIIIa de las
plaquetas está asociada a una reducción en el número total de
lugares de unión al fibrinógeno. Tales plaquetas con superficie
alterada muestran de tal modo una pobre capacidad hemostática.
La eliminación de las glicoproteínas de membrana
de las plaquetas puede estar mediada por la actividad de enzimas
proteolíticos tales como la plasmina y la elastasa. La capacidad del
inhibidor de las proteinazas, la aprotinina (discutido
anteriormente) para minimizar la perdida de glicoproteínas
(específicamente, GPIb) después del CPB proporciona pruebas que
implican directamente a la proteolisis de las glicoproteínas de la
membrana de las plaquetas en el desarrollo de la disfunción
plaquetaria [Wenger, et al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg.,
97:235 (1989)].
Los efectos de la ECC sobre las plaquetas son
particularmente significativos porque las plaquetas solamente se
pueden activar una vez, es decir, la activación de las plaquetas
disminuye el número de plaquetas funcionales disponible cuando a
continuación se necesitan las funciones de las plaquetas. La
importancia de los efectos de la ECC sobre las plaquetas la
demuestra el descubrimiento de que la disfunción hemostática
observada después de las operaciones cardíacas es principalmente
atribuible a la disfunción de las plaquetas [Mohr, et al.,
J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 96:530 (1968)].
La molécula P-selectina, que
aparece en la superficie de la membrana de las plaquetas activadas,
se conoce que media en la unión de las plaquetas con diversos tipos
de células blancas sanguíneas (WBCs, leucocitos) sin que se necesite
la activación de las WBCs para que tenga lugar dicha unión. Dichas
WBCs incluyen los leucocitos polimorfonucleados (PMNs, neutrófilos,
granulocitos) y los monocitos y la unión mediada por la
P-selectina resulta en la formación de conjugados de
plaqueta-PMN y plaqueta-monocito
[Larsen, et al., J. Biol. Chem.
267:11104-11110 (1992), Corral, et al.,
Biochem. Biophys. Res. Commun., 172:1349-1353
(1990)]. Una consecuencia de la formación de tales conjugados es la
eliminación de las plaquetas de la circulación, un fenómeno que
puede contribuir al desarrollo de trombocitopenia [Rinde, et
al., Transfusion, 31:408-414 (1991)].
Dicha adhesión leucocito-plaqueta
también se cree que tiene importancia fisiológica en la dirección de
los leucocitos hacia los lugares adecuados de inflamación y/o
hemorragia y en la modulación de la función de los leucocitos. La
relevancia de dicho direccionamiento ha sido demostrada
recientemente in vivo en un modelo de babuino en el que el
bloqueo de la P-selectina con un anticuerpo
monoclonal produjo una disminución en la acumulación de monocitos en
un injerto vascular artificial y una actividad procoagulante
disminuida [Palabrica et al., Nature,
359:848-851 (1992)]. Dicha adhesión
leucocito-plaqueta causada por la
P-selectina se ha descubierto que es inducida por el
CPB [Rinder, et al., Blood,
79:1201-1205 (1992)].
La modulación de la función de los leucocitos
mediada por la unión plaqueta-leucocito asociada a
la ECC incluye la regulación positiva de la principal molécula
procoagulante de los monocitos conocida como el "factor
tisular" (TF). Los datos reportados por Catalett, et al.,
Blood, 78(supl 1):279a (1991), sugieren que la
P-selectina induce la regulación positiva del TF en
los monocitos durante un período de cuatro horas. Dicha regulación
positiva del TF incrementa los efectos procoagulantes de los
leucocitos [Altieri, Blood, 81:569-579
(1993)]. En un modelo simulado de CPB de ciclo cerrado, Kappelmayer,
et al., Circ. Res., 72:1075-1081
(1993), han demostrado recientemente la regulación positiva asociada
al CPB de tanto la cantidad como la actividad del TF en los
monocitos circulantes. La expresión del TF de los monocitos varias
horas después de la conclusión del proceso de CPB, en combinación
con otros eventos pro coagulantes que tienen lugar durante el CPB
[Evangelista, et al., Blood,
77:2379-2388 (1991); Higuchi, et al.,
Blood, 79:1712-1719 (1992); Weitz, et
al, J. Exp. Med., 166:1836-1850 (1987)]
se cree que predispone al paciente a los eventos trombóticos
tardíos, tales como la reoclusión de los injertos vasculares.
Además de la regulación positiva del TF en los
monocitos, la regulación positiva asociada al CPB de los ligandos de
adhesión celular, que contienen la \beta_{2} integrina CD18, en
particular, el ligando adhesivo heterodimérico que contiene CD18 y
CD11b (conocido como CD11b/CD18 o MAC-1) , ha sido
descrita en los monocitos y en los neutrófilos [Rinder, et
al., Blood, 79:1201-1205 (1992)]. Dicha
regulación positiva es particularmente relevante en el daño inducido
por el CPB ya que el CD11b/CD18 es responsable de la adhesión y
penetración a través del endotelio de los leucocitos (diapédesis)
mediada por la unión a las moléculas de adhesión intercelular
ICAM-1 e ICAM-3 en los endotelios
"activados" [Staunton, et al., Cell,
52:925-933 (1988); Staunton, et al.,
Nature, 339:61-64 (1989); Purie, et
al., J. Immunol., 148:2395-2404
(1992)].
En los sistemas experimentales, la administración
de anticuerpos monoclonales que bloquean la actividad del CD11b/CD18
a demostrado evitar el daño por reperfusión [Simpson, et al.,
J. Clin. Invest., 81:624-629 (1988); Arnaout,
Blood, 75:1037-1050 (1990); Dreyer, et
al., Circ., 84:400-411 (1991)]. Además,
el incremento en la expresión de CD11b/CD18 en los leucocitos ha
sido relacionado a las complicaciones asociadas con la hemodiálisis
[Arnaout, et al., N. Engl. J. Med., 312:457 (1985)].
Por consiguiente, el CD11b/CD18 puede contribuir a los problemas
médicos asociados con la ECC.
Además de lo anterior, la parte CD11b funciona
como receptor para el componente del complemento iC3b y para los
elementos del sistema de coagulación soluble dependiente del
contacto, que incluyen el fibrinógeno, la fibronectina y el Factor
X [Altieri, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
85:7462-7465 (1988); Nathan, et al.,
J. Cell Biol., 109:1341-1399 (1989)]. Las
interacciones del CD11b con el fibrinógeno podrían ser de particular
importancia en la patología asociada con la ECC, ya que, tal como se
discutió anteriormente, el complejo de glicoproteínas de la
superficie de las plaquetas GPIIb-IIIa también está
asociado a la unión del fibrinógeno, proporcionando así un mecanismo
potencial para la adhesión plaqueta-leucocito, es
decir, mediante una unión
CD11b-fibrinógeno-GPIIb-IIIa
[Altieri, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
85:7462-7465 (1988)]. La inducción de una
explosión respiratoria asociada a la inflamación en los granulocitos
como respuesta a diversas citocinas también parece necesitar
CD11b/CD18 en el microambiente adherente local.
Por consiguiente dicho complejo de integrina
\beta_{2} ejerce sus efectos en las intersecciones críticas del
sistema del complemento, el sistema inmunitario celular y la senda
de coagulación celular soluble. La expresión de CD11b/CD18 en la
superficie de los leucocitos se puede por consiguiente ensayar como
indicador pronóstico relacionado a la probabilidad de ocurrencia de
eventos asociados al complemento, la inmunidad y la coagulación.
El sistema del complemento actúa en conjunción
con otros sistemas inmunológicos del cuerpo para defenderlo contra
la intrusión de patógenos celulares y víricos. Existen por lo menos
25 proteínas del complemento, que se encuentra como una compleja
colección de proteínas del plasma y cofactores de membrana. Las
proteínas del plasma constituyen aproximadamente el 10% de las
globulinas en el suero de los vertebrados. Los componentes del
complemento logran sus funciones de defensa inmunitaria
interactuando en una intrincada pero precisa serie de eventos de
corte enzimático y enlace a la membrana. La resultante cascada de
complemento conduce a la producción de productos con funciones
opsónicas, inmunoreguladoras y líticas.
La cascada del complemento progresa a través de
la senda clásica o a través de la senda alternativa. Dichas sendas
comparten muchos componentes y aunque difieren en las etapas
iniciales, convergen y comparten los mismos componentes del
"complemento terminal" responsables de la activación, ataque y
destrucción de las células diana.
Típicamente, la senda clásica del complemento se
inicia por el reconocimiento de y la unión a un lugar antigénico por
un anticuerpo en una célula diana. La senda alternativa es
generalmente independiente de los anticuerpos y puede ser iniciada
por ciertas moléculas en la superficie de los patógenos. Las dos
sendas convergen en el punto en el que el componente C3 del
complemento es cortado por una proteinasa activa (que es diferente
en cada una de las sendas) para producir C3a y C3b. Otras sendas que
activan el ataque del complemento pueden actuar más adelante en la
secuencia de eventos que conduce a los diversos aspectos de la
función del complemento.
El C3a es una anafilotoxina (ver más adelante).
El C3b se une a las bacterias y a otras células y las marca para que
sean eliminadas de la circulación. En este papel el C3b es conocido
como opsonina. Se considera que la función de opsonina del C3b es la
acción antiinfecciosa más importante del sistema del complemento.
Los pacientes con lesiones genéticas que bloquean la función del C3b
son propensos a las infecciones por una multiplicidad de organismos
patógenos, mientras que los pacientes con lesiones más adelante en
la secuencia de la cascada del complemento, es decir, los pacientes
con lesiones que bloquean las funciones del C5, se observa que son
más propensos solamente a las infecciones por Neisseria, y solamente
algo más propensos [Fearon, en Intensive Review of Internal
Medicine, 2ª Ed., Fanta and Minaker, eds. Brigham and Women's and
Beth Israel Hospital, 1983].
El C3b también forma parte de un complejo con
otros componentes únicos de cada una de las sendas para formar la
convertasa clásica o alternativa del C5, que corta el C5 en C5a y
C5b. El C3 es por consiguiente considerado como la proteína central
en la secuencia de reacciones del complemento ya que es esencial
tanto para la senda alternativa como para la clásica [Wurzner, et
al., Complement Inflamm., 8:328-340
(1991)]. Esta propiedad del C3b está regulada por la proteinasa del
suero Factor I, que actúa sobre el C3b para producir iC3b. Aunque
todavía funcional como opsonina, el iC3b no puede constituir una
convertasa C5 activa.
El C5a es otra anafilotoxina (ver más adelante).
El C5b se combina con el C6, el C7 y el C8 para formar el complejo
C5b-8 en la superficie de la célula diana. Cuando se
unen múltiples moléculas de C9 se forma el complejo de ataque a la
membrana (MAC, C5b-9, complejo terminal del
complemento-TCC). Cuando se inserta en la membrana
de la célula diana un número suficiente de MACs las aperturas que
estos crean (poros MAC) inducen la rápida lisis osmótica de la
célula diana. Las concentraciones inferiores, no líticas, de MACs
pueden producir otros efectos. En particular, la inserción en la
membrana de las células endoteliales y de las plaquetas de un
número pequeño de complejos C5b-9 puede producir una
activación celular perjudicial. En algunos casos la activación puede
preceder la lisis celular.
Ciertos aspectos del mecanismo de activación de
las plaquetas mediado por el C5b-9 han sido
descritos [Sims, et al., J. Biol. Chem., 264:19228
(1989)]. Las concentraciones inferiores a las líticas de poros MAC
en la superficie de las plaquetas permiten la entrada de iones de
calcio extracelular en las plaquetas. Los niveles elevados de
iones de calcio intraplaquetario resultantes actúan como una señal
de activación e inducen la expresión en la superficie de
P-selectina que es característica de las plaquetas
activadas. Ya que, tal como se describió anteriormente, la
P-selectian media en la unión
plaqueta-monocito y dicha unión dispara la
liberación del factor tisular de los monocitos, la formación de
poros MAC en la membrana de la superficie de las plaquetas puede
tener efectos nocivos en el paciente. Por ejemplo, la activación de
las plaquetas por los poros MAC puede predisponer a un paciente de
CPB a eventos trombóticos tardíos, tales como la reoclusión de los
injertos vasculares.
Tal como se mencionó anteriormente, C3a y C5a son
anafilotoxinas. Tales componentes del complemento activado pueden
disparar la desgranulación de las células mast, que liberan
histamina y otros mediadores de la inflamación, produciendo la
contracción de la musculatura lisa, el incremento de la
permeabilidad capilar, la activación de los linfocitos y otros
fenómenos inflamatorios. El C5a también actúa como un péptido
quimotáctico que sirve para atraer a los granulocitos
pro-inflamatorios a los lugares de activación del
complemento. Además, la activación directa de las células
endoteliales por el C5a induce la liberación de la glicoproteína
inhibidora de la coagulación sulfato de heparano. La liberación de
sulfato de heparano puede tener como efecto la disminución del nivel
de dicha molécula inhibidora de la coagulación en la superficie de
las células endoteliales, con la consecuencia de aumentar el
potencial trombogénico de la superficie celular endotelial [Platt,
et al., J. Exp. Med., 171:1363 (1990)].
La activación y el consumo de los componentes del
complemento durante la ECC, específicamente durante el CPB, es
puesta en evidencia por niveles de actividad del complemento
hemolítico muy inferiores, al final del CPB, a los que se podrían
explicar por hemodilución solamente. Un rápido efecto sobre los
componentes del complemento acompaña el comienzo de la circulación
extracorporea; los indicios de una senda alternativa de activación
se observan minutos después del inicio del CPB. La activación de la
senda clásica también se ha observado durante el CPB [Haslam, et
al., Anaesthesia, 35:22 (1980)].
Se ha encontrado que los niveles de la
anafilotoxina C3a aumentan dramáticamente durante el CPB y existe
una fuerte asociación estadística entre los niveles elevados de C3a
y la disfunción postoperatoria de los sistemas de órganos manifiesta
por el deterioro y/o fallo cardíaco, renal y pulmonar, diatesis
hemorrágica y la necesidad de ventilación artificial [Kirklin et
al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg.,
86:845-847 [1983)]. Dicha asociación ha llevado
a la creencia de que el C3a es un mediador clave de los efectos
nocivos asociados a la activación del complemento durante el
CPB.
Está bien establecido que las plaquetas pueden
activarse mediante el ensamblaje de componentes
C5b-9 del complemento terminal en su superficie. El
ensamblaje de dichos componentes del complemento en la superficie de
las plaquetas se conoce que ocurre durante la ECC [Finn, et
al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg., 105:234 (1993)]. La
activación de las plaquetas mediada por el complemento, por otra
parte, conduce a la liberación de gránulos alfa, el incremento en la
expresión de P-selectina y la pérdida de GPIb. La
generación de los productos de activación del complemento, tales
como el C3a, C5a y C5b-9, produce, además, la
formación de vesículas en la membrana de las plaquetas y la
consecuente formación de micropartículas.
Otros efectos nocivos de la activación del
complemento durante el CPB pueden incluir la activación de los
granulocitos, que conduce a la desgranulación parcial y a la
regulación positiva del CD11b/CD18 y el daño a los órganos. Dichos
efectos nocivos son en gran parte debidos a la acción de ciertos
productos de la activación del complemento, especialmente a las
anafilotoxinas C3a y C5a, que, a su vez, se pueden convertir en las
formas desArg, con niveles de actividad alterados, mediante la
carboxipeptidasa plasmática. Estos componentes del complemento
activado producen la activación y la agregación de los neutrófilos.
Tales células activadas, a su vez, se acumulan en los vasos
pulmonares y los lechos vasculares, tal como se ha demostrado
mediante biopsias seriadas del tejido pulmonar antes y después del
CPB [Howard, et al., Arch. Surg.,
123:1496-1501 (1998)]. El hígado, el cerebro y
los pulmones también sufren dichos daños, que pueden producir
disfunciones postoperatorias en tales órganos.
Aunque los datos circunstanciales indican que los
componentes del complemento activado C3a, C5a y
C5b-9 tienen un papel crítico en la patofisiología
del CPB, hasta la fecha no hay pruebas definitivas. Además, la
contribución relativa de dichos componentes individuales del
complemento a la generación de los procesos inflamatorios asociados
con el CPB ha permanecido indefinida.
Tal como se discutió anteriormente, la presente
invención se refiere a la utilización de anticuerpos
anti-C5 en la ECC. Más generalmente, la presente
invención se refiere a la utilización de anticuerpos
anti-C5 en cualquier proceso que implique la
circulación de la sangre de un paciente desde un vaso sanguíneo del
paciente, a través de un conducto y de vuelta al vaso sanguíneo del
paciente, teniendo el conducto una superficie de lumen que comprende
un material capaz de producir por lo menos una de entre activación
del complemento, activación de las plaquetas, activación de los
leucocitos, o la adhesión plaqueta-leucocito. Dichos
procesos incluyen, sin quedar limitadas, todas las formas de ECC,
así como también los procesos que implican la introducción de un
órgano artificial o extraño, tejido, o vaso en el circuito de la
sangre de un paciente.
Los materiales de los conductos que tienen los
anteriores efectos en la sangre incluyen aquellos actualmente
conocidos en la técnica así como aquellos que se puedan desarrollar
en el futuro. Dichos materiales incluyen los materiales sintéticos
tales como los diversos tipos de plásticos y polímeros sintéticos
utilizados en los circuitos de CPB, circuitos de hemodiálisis,
injertos vasculares y órganos artificiales, así como también los
materiales biológicos de origen xenogénico.
El anticuerpo anti-C5 se utiliza
para reducir por lo menos una de entre la activación del
complemento, activación de las plaquetas, activación de los
leucocitos o adhesión plaqueta-leucocito producidas
por la circulación de la sangre del paciente a través de tal
conducto. La reducción de la activación del complemento se puede
medir mediante procedimientos bien conocidos en la técnica, por
ejemplo, mediante el procedimiento de hemolisis de heritrocitos de
pollo descrito más adelante en el Ejemplo 1. Preferiblemente, se
utiliza la cantidad suficiente de anticuerpo para reducir en por lo
menos el 50% el incremento de la actividad hemolítica del plasma que
resulta de la activación del complemento causada por el contacto con
el conducto.
La reducción de la activación de las plaquetas se
puede medir mediante diversos procedimientos bien conocidos en la
técnica, por ejemplo, mediante el análisis por inmunofluorescencia
de la expresión de los marcadores de activación de las plaquetas
GPIIb-IIIa o P-selectina mediante
los procedimientos descritos más adelante en los Ejemplos 1 y 4. Es
preferible utilizar una cantidad suficiente de anticuerpo para
lograr por lo menos una reducción del 50% en el incremento de
expresión de por lo menos uno de los marcadores de activación de las
plaquetas que resulta del contacto con el conducto.
La reducción de la activación de los leucocitos
se puede medir mediante múltiples procedimientos bien conocidos en
la técnica, por ejemplo, mediante el análisis por
inmunofluorescencia de la expresión del marcador de la activación de
los leucocitos CD11b/CD18. Tal como se describe en el Ejemplo 4, la
expresión de dicho marcador se puede determinar mediante la medición
de la expresión de CD11b. Otra vez, es preferible utilizar una
cantidad suficiente de anticuerpo para lograr por lo menos una
reducción del 50% en el incremento de la expresión del marcador de
activación de los leucocitos en por lo menos un tipo de leucocito,
p. ej. PMNs, que resulta del contacto con el conduc-
to.
to.
La reducción de los niveles de adhesión
plaqueta-leucocito, específicamente la adhesión
plaqueta-monocito y la adhesión
plaqueta-neutrófilo, se puede medir mediante los
procedimientos de análisis de fluorescencia descritos más adelante
en el Ejemplo 4, p. ej., como el incremento porcentual de los
leucocitos que se leen como GPIb o GPIIb/IIIa positivos. De nuevo,
es preferible utilizar una cantidad de anticuerpo suficiente para
lograr por lo menos un 50% de reducción en el incremento del
porcentaje de monocitos y neutrófilos GPIb o GPIIb/IIIa positivos
que resulta del contacto con el conducto.
Para lograr las deseadas reducciones, los
anticuerpos anti-C5 se pueden administra en una
multiplicidad de formas de dosis unitarias. La dosis oscilará según,
por ejemplo, el anticuerpo en particular, la forma de
administración, el proceso en particular que se realiza y su
duración, la naturaleza del conducto o conductos utilizados para el
proceso, la salud en general, la afección, el tamaño y la edad del
paciente y el juicio del médico que receta. Los niveles de dosis
para sujetos humanos oscilan generalmente entre aproximadamente 1 mg
por kg y aproximadamente 100 mg por kg por paciente por tratamiento
y preferiblemente entre aproximadamente 5 mg por kg y
aproximadamente 50 mg por kg por paciente por tratamiento. En
algunos casos, solamente se puede administrar una dosis única de
anticuerpo anti-C5 a un paciente para lograr un
efecto terapéutico.
El anticuerpo anti-C5 se
administra preferiblemente antes del contacto de la sangre con el
conducto. Además, se puede continuar la administración mientras la
sangre esté en contacto con el conducto e incluso después de ese
tiempo, si se desea. En el caso de administración previa, se puede
utilizar una sola dosis. Para la administración continua durante el
proceso y/o a continuación, se pueden utilizar dosis periódicas del
anticuerpo anti-C5 o una infusión continua.
Un proceso típico, según la presente invención,
incluye por consiguiente las siguientes etapas. Se prepara al
paciente para la cirugía según la práctica estándar y en la hora
anterior al inicio de la cirugía, pero generalmente antes del inicio
de la cirugía, se administra la primera dosis de la preparación
farmacéutica que contiene el anticuerpo anti-C5.
Generalmente, tal como juzgue el médico, también se puede
administrar una serie de dosis durante y a continuación del proceso.
Por el contrario, durante y una vez concluido el proceso, los
niveles de actividad del complemento en el suero del paciente se
siguen mediante la utilización de los procedimientos descritos más
adelante en el Ejemplo 1 para determinar si se necesitan dosis
adicionales, siendo dichas dosis administradas según sea necesario
para mantener una reducción de por lo menos el 50% y preferiblemente
una reducción de aproximadamente el 95% en la actividad del
complemento en el suero.
En general se realizará la administración de
anticuerpos anti-C5 por vía intra vascular, p. ej.,
mediante infusión intravenosa mediante inyección. Si se desea se
pueden utilizar otras vías. Las formulaciones adecuadas para la
inyección se encuentran en Remingont's Pharmaceutical Sciences, Mack
Publishing Company, Philadelphia, PA, 17th ed. (1985) por Remington.
Dichas formulaciones deberán ser estériles y no pirógenas y
generalmente incluirán un vehículo farmacéutico efectivo, tal como
disolución salina, disolución salina tamponada (p. ej. tamponada con
fosfato), disolución de Hank. Disolución de Ringer, disolución
salina/dextrosa, disoluciones de glucosa y semejantes. Las
formulaciones pueden contener sustancias auxiliares
farmacéuticamente aceptables según sea necesario, tales como agentes
para ajustar la tonicidad, agentes humectantes, agentes
bactericidas, preservantes, estabilizadores y semejantes.
Las formulaciones (agentes farmacéuticos) de la
invención se pueden distribuir como artículos de fabricación que
comprenden un material de empaquetamiento y el anticuerpo
anti-C5. El material de empaquetamiento incluirá una
etiqueta que indique que la formulación es para una utilización
asociada a un proceso de circulación extracorporal, p. ej., un
proceso de "bypass" cardiopulmonar.
Preferiblemente el anticuerpo
anti-C5 es un anticuerpo monoclonal, aunque, si se
desea también se pueden utilizar anticuerpos policlonales ensayados
por procedimientos convencionales. Preferiblemente, los anticuerpos
anti-C5 son inmunoreactivos contra los epitopos de
la cadena beta del componente C5 del complemento humano purificado
(es decir, la parte de la molécula C5 que se convierte en C5b) y son
capaces de bloquear la conversión de C5 en C5a y C5b por la C5
convertasa. Dicha capacidad se puede medir utilizando el
procedimiento descrito en Wurzner, et al., Complement
Inflamm., 8:328-340 (1991). La cantidad de
reducción de la actividad C5 convertasa es preferiblemente de por lo
menos el 50% del incremento en actividad convertasa resultante del
contacto con el conducto.
Los hibridomas que producen anticuerpos
monoclonales que reaccionan con el componente C5 del complemento se
pueden obtener según lo publicado por Sims, et al., en la
patente US nº 5.135.916. Tal como se discute en esta publicación,
los anticuerpos se preparan utilizando como inmunógenos los
componentes purificados del complejo de ataque a la membrana del
complemento. Según la presente invención, se utiliza preferiblemente
como inmunógeno el componente C5 ó C5b del complemento. Según la
presente invención, los anticuerpos preferiblemente deben evitar el
corte de C5 para generar C5a y C5b, evitando así la generación de la
actividad anafilotóxica asociada a C5a y evitando el ensamblaje del
complejo de ataque a la membrana asociado a C5b. En una forma de
realización particularmente preferida, estos anticuerpos
anti-C5 no impedirán la función de opsonización
asociada a la activación del componente C3 del complemento por una
C3 convertasa. La actividad C3 convertasa del plasma se puede medir
mediante el ensayo de la presencia de C3a en el plasma tal como se
describe más adelante en el Ejemplo 2. Preferiblemente, el
anticuerpo anti-C5 no produce una reducción esencial
de los niveles de C3a del plasma.
Los procedimientos generales para la inmunización
de animales (en este caso con C5 o C5b), el aislamiento de células
productoras de anticuerpo, la fusión de tales células con células
inmortales (p. ej., células de mieloma) para generar los hibridomas
que segregan anticuerpos monoclonales, el ensayo de los
sobrenadantes de los hibridomas para determinar la reactividad de
los anticuerpos monoclonales con los antígenos deseados (en el
presente caso C5 ó C5b), la preparación de cantidades de tales
anticuerpos en los sobrenadantes de los hibridomas o de los fluidos
ascíticos y para la purificación y almacenamiento de tales
anticuerpos monoclonales, se pueden encontrar en numerosas
publicaciones. Estas incluyen: Coligan, et al., eds.
Current Protocols in Immunology, John Wiley and Sons, New
York, 1992; Harlow and Lane, Antibodies, A Laboratory
Manual., Cold Spring Harbor Laboratory, New York, 1988; Liddell
and Cryer, A Practical Guide to Monoclonal Antibodies., John Wiley
and Sons, Chichester, West Sussex, England, 1991; Montz, et
al., Cellular Immunol., 127:337-351
(1990); Wurzner, et al., Complement Inflamm.,
8:328-340 (1991) y Mollnes, et al.,
Scand. J. Immunol., 28:307-312 (1988).
Tal como se utiliza en la presente solicitud, el
término "anticuerpos monoclonales" se refiere a las
inmunoglobulinas producidas por un hibridoma y a los fragmentos que
se unen a los antígenos (p. ej. las preparaciones de Fab') de tales
inmunoglobulinas, así como también a las proteínas expresadas de
forma recombinante que se unen a antígenos, que incluyen
inmunoglobulinas, inmunoglobulinas quiméricas, inmunoglobulinas
"humanizadas", los fragmentos que se unen a los antígenos de
tales inmunoglobulinas, los anticuerpos de cadena única y otras
proteínas recombinantes que contienen dominios que se unen a los
antígenos derivados de las inmunoglobulinas. Las publicaciones que
describen procedimientos para la preparación de dichos anticuerpos
monoclonales, además de las descritas anteriormente, incluyen:
Reichmann, et al., Nature, 332:323-327
(1988); Winter and Milstein, Nature,
349:293-299 (1991); Clackson, et al.,
Nature, 352:624-628 (1991); Morrison,
Annu. Rev. Immunol., 10:239-265 (1992);
Haber, Immunol. Rev., 130:189-212 (1992) y
Rodrigues, et al., J. Immunol.,
151:6952-6961 (1993).
Sin pretender limitarla en forma alguna, la
presente invención se describirá más ampliamente mediante los
siguientes ejemplos.
Los efectos de un anticuerpo monoclonal generado
contra el C5 humano sobre la activación del complemento se evaluaron
utilizando un modelo de CPB de bucle cerrado para la circulación
extracorporal de la sangre humana. El anticuerpo monoclonal C5 se
produjo en ratones contra la proteína C5 humana (Wurzner, et
al., Complement Inflamm. 8:328-340
(1991); N19-8 mAb) y se propagó, recuperó y purificó
como la fracción IgG de un fluido ascítico de ratón (Antibodies,
A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, New York,
1988, Current Protocols in Immunology, John Wiley and Sons,
New York, 1992.
Para realizar estos experimentos, 300 ml de
sangre humana entera se extrajeron de un donante humano saludable y
adicionalmente se extrajo una muestra de 1 ml como muestra control
para analizar más adelante. La sangre se diluyó a 600 ml añadiendo
solución de lactato de Ringer con 10 U/ml de heparina. El mAb
bloqueante anti-C5 (30 mg en PBS estéril) se añadió
a la sangre diluida hasta obtener una concentración final de 50
\mug/ml. En un experimento control, se añadió un volumen igual de
PBS estéril a la sangre diluida. La sangre se utilizó a continuación
para cebar el circuito extracorpóreo de una máquina de CPB con
oxigenador de membrana COBE CML EXCEL (Cobe BCT, Inc., Lakewood, CO)
y se inició el circuito. El circuito se enfrió a 28ºC y se hizo
circular durante 60 minutos. El circuito se calentó a continuación a
37ºC y se hizo circular durante 30 minutos adicionales. A
continuación se terminó el experimento. Se extrajeron muestras a
múltiples tiempos y se evaluó la actividad del complemento (Figura
1).
A cada punto de tiempo se tomo una alícuota de
sangre entera, se dividió en tres muestras y A) se diluyo 1:1 en 2%
paraformaldehido en PBS para valorar los parámetros de activación de
las plaquetas y las células sanguíneas (Ejemplo 4); B) se
centrifugó para eliminar todas las células y el plasma se diluyó 1:1
en disolución conservante para muestras Quidel (Quidel Corporation,
San Diego, CA) y se almacenó a -80ºC para valorar la generación de
C3a y C5b-9 (Ejemplos 2 y 3, respectivamente) y C)
se centrífugó para eliminar todas las células y el plasma se congeló
a -80ºC para ensayos de hemolisis para valorar la actividad del
complemento (Ejemplo 1).
Para valorar la actividad del complemento, las
muestras de plasma congeladas se descongelaron y se realizaron
análisis de hemolisis tal como sigue. Eritrocitos de poyo se lavaron
bien en GVBS [Rollins, et al., J. Immunol.
144:3478-3483 (1990)] y se resuspendieron a una
concentración 2x10^{8}/ml en GVBS. Se añadió a las células un
anticuerpo contra eritrocitos de poyo (fracción IgG de un antisuero
contra RBC de poyo, Intercell Technologies, Hopewell, NJ) a una
concentración final de 25 \mug/ml. Las células se incubaron
durante 15 minutos a 23ºC. Las células se lavaron 2 veces con GVBS y
se suspendieron 5 x 10^{6} células en un volumen final de 130
\mul de GVBS con 5% de plasma. Después de una incubación de 30
minutos a 37ºC, el % de hemolisis se calculó con relación a una
muestra control de suero humano (Figura 1). La hemolisis se
determinó centrifugando las células y midiendo la hemoglobina
liberada en el sobrenadante como la densidad óptica a 415 nm.
Tal como se puede observar en la Figura 1, la
adición del anticuerpo anti-C5 al circuito
extracorpóreo produjo una reducción del 95% en la actividad del
complemento del suero. La actividad del complemento permaneció
inhibida durante el transcurso del experimento (90 minutos).
Las muestras de plasma recién congeladas que
anteriormente habían sido diluidas en disolución Quidel para la
conservación de muestras (ver Ejemplo 1) se ensayaron para
determinar la presencia del componente cortado C3a del complemento
mediante la utilización del equipo C3a EIA de Quidel (Quidel
Corporation, San Diego CA). Tales mediciones se realizaron según las
especificaciones del fabricante. El C3a liberado se expresa en
ng/pocillo tal como se determina mediante la comparación con una
curva estándar generada a partir de muestras que contienen
cantidades conocidas de C3a humano.
Tal como se observa en la Figura 2, la adición
del anticuerpo anti-C5 no tuvo efecto en la
producción de C3a durante el experimento de CPB. La generación de
C3a incrementó dramáticamente durante los 30 minutos finales del
experimento y se correlaciona con el calentamiento de la
muestra.
Las muestras de plasma recién congeladas que
previamente habían sido diluidas en disolución Quidel para la
preservación de muestras (ver el Ejemplo 1) se ensayaron para
determinar la presencia del complejo terminal del complemento humano
C5b-9 utilizando el equipo C5b-9 de
Quidel (Quidel Corporation, San Diego, CA). La cantidad de
C5b-9 en cada muestra se determinó utilizando las
especificaciones del fabricante y se expresa en unidades arbitrarias
de absorbancia (AU).
Tal como se observa en la Figura 3, el anticuerpo
anti-C5 inhibió completamente la generación de
C5b-9 durante la circulación extracorporal de forma
que los niveles de C5b-9 durante el transcurso
completo del ensayo fueron equivalentes a los puntos de tiempo
control (t_{0}). Los resultados de este experimento y los de los
Ejemplos 1 y 2 muestran que la adición de un anticuerpo mAb
anti-C5 durante la circulación extracorporal inhibe
efectivamente tanto la actividad hemolítica del complemento (Figura
1) como la generación de C5b-9 (Figura 3), pero no
la generación de C3a (Figura 2).
Las muestras de sangre entera fijadas en
paraformaldehido tomadas a T = 0 y T = 90 minutos durante el
experimento de circulación extracorporal (ver Ejemplo 1) se
lavaron, marcaron con anticuerpos fluorescentes dirigidos contra
diversas moléculas marcadoras de la superficie celular y fueron
analizadas por citometría de flujo (FACS). Los anticuerpos primarios
utilizados en este experimento fueron
anti-GPIIb-IIIa (clon RUUSP2.41,
AMAC, Inc., Westbrook, ME); anti-CD11b
(Anti-CR3 (leu-15) clon D12,
Becton-Dickinson Immunocytometry Systems, San Jose,
CA); anti-P-selectina, (1E3
proporcionado por el Dr. Kenneth Ault, Maine Medical Center Research
Institute, Portland, ME); anti-GPIb (CD42b), (IOP42b
clon SZ2, AMAC, Inc., Westbrook,ME) y anti-CD45 (un
marcador tanto de monocitos como de PMNs, que se distinguen mediante
las características de dispersión frontal y lateral de los perfiles
de FACS de las células positivas a CD45)
(Anti-Leucocite (HLe-1; CD45) clon
2D1, Becton-Dickinson Immunocytometry Systems, San
Jose, CA). El cambio porcentual en la expresión en la superficie
celular de diversos receptores de la superficie celular (Plaquetas
GPIb, Plaquetas GPIIb-IIIa,
P-selectina, CD11b) se calculó mediante la
comparación de los valores FL-1 medios obtenidos
para cada anticuerpo mediante el siguiente cálculo: T = 90/T = 0 X
100
La unión plaqueta monocito (PLT/MONO) y la unión
plaqueta-neutrófilo (PLT/PMN) se determinó
calculando el porcentaje de neutrófilos o monocitos que dan lectura
positiva para el receptor específico de plaquetas GPIb.
Tal como se puede observar en la Figura 4, la
adición de un anticuerpo anti-C5 a la sangre en el
circuito de ECC tuvo un efecto dramático sobre diversos aspectos de
la activación de las plaquetas y las células sanguíneas. En
presencia del anticuerpo anti-C5, las plaquetas
retuvieron un 50% más de GPIb en comparación con los controles no
tratados. De modo semejante, las plaquetas retuvieron virtualmente
la totalidad de su GPIIb-IIIa superficial mientras
que las plaquetas no tratadas perdieron el 80% de este receptor. La
activación de las plaquetas tal como se determina mediante la
expresión de P-selectina fue inhibida por completo
por la adición de anticuerpo anti-C5. La formación
de conjugados de plaquetas y monocitos y/o plaquetas y neutrófilos
fue inhibida mediante la adición de anticuerpo
anti-C5. Además, la expresión de CD11b en los
neutrófilos fue bloqueada en un 75% por el anti-C5
mientras que la expresión de CD11 en los monocitos no fue
afectada.
Estos resultados muestran que el anticuerpo
anti-C5 es un potente inhibidor de la activación de
las plaquetas inducida por el complemento, de la activación de los
leucocitos, específicamente, la activación de los PMN y de la
adhesión entre plaquetas y leucocitos durante la circulación
extracorporal y que los componentes terminales del complemento, y no
el C3a, son mayoritariamente responsables de la inflamación mediada
por el complemento y de la disfunción de las plaquetas.
A lo largo de la presente solicitud se hace
referencia a diversas publicaciones, patentes y solicitudes de
patente. Las enseñanzas y descripciones de dichas publicaciones,
patentes y solicitudes de patente se incorporan en su totalidad a la
presente solicitud por referencia para describir más ampliamente el
estado de la técnica a la que pertenece la presente solicitud.
Aunque las formas de realización preferidas y
otras formas de realización de la presente invención han sido
descritas en la presente memoria, los expertos en la materia
apreciarán que son posibles otras formas de realización sin
apartarse por ello del alcance de la invención tal como se define en
las reivindicaciones adjuntas.
Claims (6)
1. Utilización de un anticuerpo
anti-C5 para la preparación de un medicamento
destinado a reducir las disfunciones de los sistemas inmunitario y/o
hemostático durante la circulación extracorporal de la sangre.
2. Utilización de un anticuerpo que se une
específicamente al componente C5 del complemento, para la
preparación de un medicamento destinado a reducir las disfunciones
de los sistemas inmunitario y/o hemostático durante la circulación
extracorporal de la sangre mediante la reducción de por lo menos una
de entre activación del complemento, activación de las plaquetas,
activación de los leucocitos o adhesión entre plaquetas y leucocitos
resultantes del paso de la sangre circulante a través de un conducto
con una superficie de lumen que comprende un material capaz de
producir por lo menos una de entre activación del complemento,
activación de los leucocitos y adhesión
plaqueta-leucocito en la sangre de un paciente.
3. Utilización según las reivindicaciones 1 ó 2,
en la que el anticuerpo reduce la conversión del componente C5 del
complemento en los componentes C5a y C5b del complemento.
4. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el anticuerpo se une de forma
específica a C5b.
5. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, en la que el anticuerpo no inhibe
sustancialmente la formación del componente C3b del complemento.
6. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el proceso de circulación
extracorporal de la sangre es un proceso de "bypass"
cardiopulmonar.
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