ES2248797T3 - Procedimientos y formulaciones para el control de plagas de insectos. - Google Patents
Procedimientos y formulaciones para el control de plagas de insectos.Info
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Abstract
LA INVENCION DE QUE SE TRATA SE REFIERE A NUEVOS BIOPESTICIDAS Y A SU UTILIZACION PARA CONTROLAR CUCARACHAS, HORMIGAS CARPINTERAS Y HORMIGAS FARAON. ESPECIFICAMENTE, AISLADOS ALTAMENTE VIRULENTOS DE BEAUVERIA BASSIANA EN UNA COMPOSICION AGRICOLA, PUEDEN UTILIZARSE PARA CONTROLAR DE FORMA EFECTIVA ESTAS PLAGAS. SE EJEMPLIFICAN BEAUVERIA BASSIANA N BEAUVERIA BASSIANA SP111, ATCC 74038. TAMBIEN SE DESCRIBEN FORMULACIONES UNICAS QUE SON ALTAMENTE EFECTIVAS PARA DISTRIBUCION DE AGENTES DE BIOCONTROL PARA PLAGAS OBJETIVO. MEDIANTE LA UTILIZACION DE ESTAS NUEVAS COMPOSICIONES, LAS PLAGAS OBJETIVO PUEDEN SER CONTROLADAS SIN LOS RIESGOS PARA EL MEDIO AMBIENTE Y DE SEGURIDAD PUBLICA PRESENTADOS POR AGENTES QUIMICOS DE CONTROL.
Description
Procedimientos y formulaciones para el control de
plagas de insectos.
La presente invención se refiere a procedimientos
y formulaciones destinadas a su utilización en el control de
cucarachas y plagas de hormigas.
El desarrollo de agentes de control biológico
como alternativas a los insecticidas químicos destinados al control
de las especies de plagas importantes es un asunto de interés
creciente. La preocupación por el medio ambiente y la exposición de
los seres humanos a las sustancias dañinas en el aire, los alimentos
y el agua han estimulado la legislación y las restricciones con
respecto a la utilización de pesticidas químicos, en particular para
las plagas del ambiente urbano. El control de las plagas de insectos
en las áreas urbanas es altamente deseable pero la exposición a los
pesticidas químicos en los hogares, los céspedes y los jardines es
muy preocupante para el público. Si se les da una elección la
mayoría de las personas utilizaría un control biológico en lugar de
un producto químico tóxico destinado a controlar los insectos en el
ambiente urbano. El problema reside en que para la venta y
utilización pública se dispone de muy pocas alternativas biológicas
a los insecticidas químicos. Para la mayoría de las plagas de
insectos que se han de controlar en el ambiente urbano (hormigas,
cucarachas, termitas, pulgas, avispas, etc.) no se dispone de
agentes biológicos que se puedan comprar como un producto.
Las cucarachas son una plaga importante en las
zonas urbanas. Debido a que las cucarachas se encuentran en una
asociación tan próxima a los seres humanos y a que generalmente
comen alimentos putrefactos, migas y restos y frecuentan zonas
insanas tales como cloacas y depósitos sépticos, su presencia hace
sospechar un peligro para la salud humana. Se han aislado organismos
patógenos de las cucarachas recogidas en el ámbito doméstico o
peridoméstico, sin embargo, la función de las cucarachas como
vectores de los patógenos es controvertido. Contrariamente a muchos
de los artrópodos que se alimentan de sangre y cuyos hábitos
alimentarios resultan en la transmisión directa de patógenos a los
seres humanos, las cucarachas tienen el potencial de transmitir los
patógenos indirectamente por la ruta de los alimentos o los
utensilios utilizados en la preparación de los alimentos. Se ha
demostrado que las cucarachas adquieren bacterias patógenas
simplemente caminando sobre los cultivos y se ha demostrado que
dichos patógenos son transferidos a continuación a los alimentos a
través de los hábitos alimenticios de las cucarachas infectadas.
Además de las contaminaciones bacterianas de los alimentos dichos
como el tifus y la disentería, se han descrito muchas otras
enfermedades asociadas a los microorganismos aislados de las
cucarachas. Éstas comprenden la poliomielitis paralizante, la
giardiasis, la otomicosis, la neumomicosis y múltiples gusanos tales
como la tenia y el anquilostoma.
Además de la posible función de las cucarachas
como vectores de los microorganismos patógenos, se conoce que la
mera presencia de dichos insectos conduce a la morbidez humana de
otros modos. Quizás el aspecto más insidioso es el impacto
psicológico de dichas plagas debido a la ansiedad y tensión
relacionadas con la infestación, que en algunos casos pueden tomar
dimensiones patológicas. Además, las secreciones de defensa entre
las especies de cucarachas pueden producir sensaciones de quemadura,
vértigo o nausea en los individuos que se ponen en contacto con los
insectos.
Los procedimientos actuales destinados al control
de las cucarachas en los edificios comprenden estrategias
correctoras y preventivas. Las medidas preventivas hacen énfasis en
la sanidad para evitar acumulaciones y fuentes de alimentación, el
sellado de las rutas de acceso y la creación de ambientes inhóspitos
mediante la aplicación de ácido bórico o polvos absorbentes en los
vacíos de las paredes durante la construcción [Ebeling, W. Ann.
Rev. Entomol. 16:123-158 (1971); Ebeling, W.
Urban Entomology, Berkeley: Univ. Calif. Div. Agric. Sci. p 695
(1978)]. Sin embargo la implementación de dichos medidas es difícil
y por consiguiente limita su eficacia [Thoms, E.M., W. H. Robinson,
J. Econ. Entomol. 80:131-135 (1987)]. Las
medidas correctoras utilizadas para suprimir las infestaciones
establecidas hacen énfasis en la aplicación de insecticidas. Un
procedimiento utilizado frecuentemente es el rociado de insecticidas
con actividad residual prolongada en las zonas frecuentadas por las
cucarachas, a intervalos de tiempo fijos [Schal, C., RL. Hamilton,
Ann. Rev. Entomol. 35:521-551 (1990)]. A
pesar de la supresión a corto plazo de la población de cucarachas,
los residuos tóxicos y el desarrollo de la resistencia a los
pesticidas [Cochran, D.G., J. Econ. Entomol.,
82:336-341 (1989)] hacen que depender por
completo en dicho procedimiento sea indeseable. Las medidas
correctoras alternativas tales como la colocación de trampas con
cebos tóxicos podría proporcionar control suficiente, en condiciones
adecuadas [Thoms & Robinson (1987), supra].
La utilización de enemigos naturales en el
control biológico de las cucarachas ha sido examinado hasta cierto
punto. Aunque se han propuesto trampas que utilizan agentes de
control biológico, dichas trampas no son mejores que los agentes de
control biológico utilizados. La patente U.S. nº 5.057.315 y nº
5.057.316. La liberación en la zona de parasitoides de la cucaracha
americana y de bandas marrones produce proporciones de parasitismo
de hasta el 95% y ha generado algún optimismo en su utilización
potencial [Coler, R.R., Van Driesche, R.G. Elkinton, J.S.,
Environ. Entomol., 13:603-606 (1984);
Hagenbuch, B.E., R.S. Patterson, P.G. Koehler, J. Econ. Entomol.,
82:90-94 (1989)]. También se han sugerido como
posibles agentes de control biológico las levaduras patógenas
aisladas de las colonias de cucarachas de laboratorio, sin embargo,
se necesita más investigación para valorar su potencial [Archbold,
I.F., M.K. Rust, D.A. Reierson, J. Med. Entomol.,
24:269-272 (1987); Archbold, E.F., M.K. Rust,
D.A. Reierson, K.D. Atkinson, Environ. Entomol.,
15:221-226 (1986); Verrett, J.M., K.B. Green,
L.M. Gamble, F.C. Crochen, J. Econ. Entomol.,
80:1205-1212 (1987)]. Se ha publicado la
asociación de múltiples hongos, bacterias, protozoos y nematodos con
las cucarachas, pero su potencial como agentes de control biológico
no es significante, o no ha sido valorado por completo [Roth an
Willis, Smithsonian Misc. Coll. Vol. 141 (1960); Tsai, Y.H.,
K.M. Cahill, J. Parasitol., 56:375-377
(1970); Zervos, S. , N.Z., J. Zool.,
10:329-334 (1983); Rahmet-Alla,
M., A.F. Rowley, J. Invert. Path., 53:190-196
(1989)]. Por consiguiente, existe la necesidad, sentida desde hace
tiempo, de procedimientos más efectivos y seguros para controlar las
cucarachas.
La hormigas carpinteras, Camponotus spp.,
están distribuidas a lo largo de América del Norte. Algunas de las
especies más comunes y/o estudiadas comprenden C. modoc en el
Pacífico noroccidental, C. clarithorax en el sudeste de
California y C. floridanus en Florida. C.
pennsylvanicus, C. noveboracensis y C.
abdominalis, se encuentran en el este [Ebeling, W., Urban
Entomology, Univ. Calif., Berkeley, p. 209-213
(1978)]. La preocupación pública por las hormigas carpinteras ha
crecido debido a la mayor probabilidad de infestación estructural a
medida que el crecimiento suburbano se extiende por los ambientes
forestales de las hormigas.
Las especies molestas de hormigas carpinteras se
pueden considerar una plaga debido a su actividad de forrajeo dentro
de los hogares. Un daño más significante tiene lugar cuando las
hormigas carpinteras extienden sus nidos en la madera buena. Los
lugares de anidamiento pueden estar en árboles vivos o muertos, en
ocasiones produciendo daños a los árboles de sombra. Los nidos
también se pueden establecer en las paredes y las vigas de soporte
de las estructuras o en los vacíos dentro de las puertas, paredes y
muebles. Se ha constatado la preferencia por la madera húmeda en
putrefacción, pero los lugares de anidamiento no quedan limitados a
dichas zonas. Las poblaciones de hormigas carpinteras se desarrollan
de forma relativamente lenta, con colonias de entre 300 y 2.000
obreras generadas durante un período de 2 años o más, en múltiples
especies. La presencia de reproductoras sigue tal desarrollo lento
ya que su producción se ha constatado solamente en colonias bien
establecidas [Hansen, L.D., R.D. Akre "Biology of carpenter ants
in Washington state (Hymenoptera: Formicidae:
Camponotus)", Melanderia 43:62pp.; Pricer, J.L.,
Biol. Bull., 14:177-218 (1908)]. A pesar del
lento crecimiento de la colonia, se han encontrado colonias grandes
con colonias satélites. Se produce movimiento de las obreras entre
la colonia principal y las satélites, que tienen áreas para mayor
desarrollo de la progenie y expansión de la colonia [Hansen, and
Akre (1985) supra].
Los procedimientos actuales destinados al control
de la infestación estructural de hormigas carpinteras comprenden
sanear las zonas de hormigueros potenciales y reales, minimizar el
acceso a las estructuras (p.ej., evitar el contacto de las ramas de
los árboles con la estructura) y aplicar insecticidas para repeler
(barreras de rociado en el perímetro) y/o eliminar las hormigas
carpinteras. Se ha publicado, desde hace ya 20 años, que la
utilización de ácido bórico en polvo en los espacios secos de las
paredes es efectiva (Hansen y Akre, supra).
Las recomendaciones para el control químico de
las infestaciones estructurales establecidas en los hogares están
generalmente acompañadas de avisos de posibles peligros para el
operario, así como también para niños y animales de compañía. No se
han encontrados procedimientos alternativos de control tales como
agentes de control biológico efectivos [Akre, R.D., L.D. Hansen,
A.L. Antonelli, Ext. Bull. Washington State Univ. Coop. Ext.
Serv. 1989 rev. nº EB 0818, pág. 6 (1989)]. Existe una clara
necesidad de agentes de control biológico seguros y efectivos para
las hormigas carpinteras.
Las hormigas faraón, Monomorium pharaonis,
han sido descritas como "....la infestación de hormigas caseras
más persistente y difícil de erradicar o controlar" (Smith, M.R.
(1965), USDA-ARS Tech. Bull. nº 1326, pág.
105). Se trata de una especie tropical que ha extendido su ámbito a
regiones más templadas estableciendo colonias en los edificios con
calefacción. Las hormigas faraón infestan frecuentemente los
edificios en los que se preparan alimentos y se ha descubierto que
transportan organismos patógenos [Beatson, S.H. Lancet
1:425-427 (1972)].
La dificultad para controlar las hormigas faraón
se puede atribuir a la inaccesibilidad de sus hormigueros, al rápido
crecimiento de la población y a la dispersión de las colonias. Su
pequeño tamaño les permite establecer colonias en cualquier lugar
adecuado, incluso en lugares poco habituales tales como entre libros
y ropa almacenada. Debido a las colonias de múltiples reinas y a las
condiciones templadas (30ºC) y húmedas (RH 63 a 80%) que favorecen a
las hormigas faraón, se pueden desarrollar colonias grandes
rápidamente. Partes de dichas colonias grandes se pueden dispersar
en cualquier momento para formar nuevas colonias, probablemente como
respuesta a la aglomeración y a condiciones microambientales
desfavorables. Contrariamente a otras especies de hormigas, las
hormigas faraón no muestran agresividad entre colonias. Ello permite
la adopción de hormigas de otras colonias y además puede incrementar
el establecimiento de nuevas colonias y reinfestaciones. Las
hormigas faraón también forrajean alimentos a más de 35 m del
hormiguero sin seguir una senda clara, lo que dificulta la
identificación y erradicación de los hormigueros.
Los procedimientos para el control de las
hormigas faraón hacen énfasis en la utilización de reguladores del
crecimiento de los insectos (IGR) o venenos incorporados en cebos.
Los programas de cebos adecuadamente implementados son efectivos,
sin embargo, lograr el control puede durar más de un mes. Las
aplicaciones de insecticidas, aunque actúan rápidamente,
generalmente no eliminan las colonias y pueden ser inaceptables en
ciertas zonas en las que preocupan los residuos tóxicos. Además, las
aplicaciones de insecticidas generalmente no son compatibles con los
programas de cebos. Existe la necesidad de agentes destinados al
control biológico efectivos y seguros de las hormigas faraón.
La patente
US-A-4925663 da a conocer un
hongo con gran actividad contra las hormigas de fuego. Dicho
aislado, denominado Beauveria bassiana aislado numero 447, ha
sido depositado en la American Type Culture Collection con número de
acceso ATCC 20872 (fecha de depósito 29 de diciembre 1987).
La patente
WO-A-90/10389 y Chemical Abstracts
(1969) 70(11), número de resumen 46398j, dan a conocer que
las cepas de B. bassiana se pueden utilizar para controlar
las plagas de cucarachas y hormigas faraón, respectivamente.
Según un aspecto de la presente invención, un
procedimiento destinado a controlar las cucarachas, las hormigas
faraón, comprende aplicar el aislado de Beauveria bassiana
ATCC20872 a las cucarachas, hormigas carpintero u hormigas faraón,
respectivamente, o a sus alrededores. El biopesticida fúngico se
puede aplicar a una plaga determinada en cualquiera de sus hábitats
normales. El hongo se puede aplicar, por ejemplo, directamente a la
plaga, en bandejas, a sus alrededores o en cualquier lugar en el que
la plaga es un problema.
Según otro aspecto de la presente invención, una
composición destinada al control de una plaga de cucarachas u
hormigas comprende una fuente de alimento y el aislado definido
anteriormente, estando la composición en forma de un polvo seco que
puede pasar a través de un tamiz US mesh 65. Esta formulación no
repele las hormigas de fuego y otras plagas. El presente
descubrimiento es inesperado, debido a que se conoce que las plagas
son repelidas por muchas formulaciones de agentes microbianos.
El hongo entomopatogénico Beauveria
bassiana es un hongo imperfecto (Fungi Imperfecti) dentro
de la subdivisión Deuteromicotonia. El género Beauveria Vuill
pertenece a la clase Deuteromicetos y se distingue de otros géneros
por tener conidios únicos, no encadenados, con la parte fértil del
conidióforo en forma de zig-zag teniendo el extremo
estirado. La especie Beauveria bassiana tiene conidios
esféricos no elípticos con un tamaño de 2 a 3 \mum por 2 a 2,5
\mum y los conidióforos forman puñados densos.
Para que un agente de control microbiano sea
efectivo a nivel práctico para el control de las cucarachas, las
hormigas carpintero y las hormigas faraón, es esencial que el agente
muestre patogenicidad contra dichas plagas y que sea virulento.
Cuanto más virulento sea, mejor es como agente de control biológico.
Aunque se ha demostrado que algunos aislados de hongos son
patogénicos para estas plagas, dichos aislados no mostraron la
virulencia esencial para funcionar como agentes de control
biológico. No se conoce la forma de convertir un aislado de hongo
patógeno no virulento en un aislado patógeno virulento. Por
consiguiente, el descubrimiento del nuevo aislado de la presente
invención logra un objetivo perseguido desde hace tiempo.
Como la mayoría de los hongos entomógenos,
Beauveria bassiana inicia la infección mediante una
espora germinante (conidio) que se une y a continuación penetra la
cutícula del insecto huésped. Ventajosamente, e inesperadamente, los
aislados de Beauveria bassiana que se reivindican se adhieren
muy fuertemente a la cutícula de las cucarachas y de las hormigas y
típicamente no se sueltan con las actividades de acicalamiento del
insecto. Ello puede dar cuenta hasta cierto punto de la elevada
virulencia del hongo. A la vez que el hongo penetra la cutícula del
insecto, las hifas invasivas comienzan a entrar en los tejidos del
insecto y a ramificarse por el hemocoelo. Los cuerpos de las hifas o
los segmentos de las hifas se distribuyen a través del hemocoelo,
llenando de micelio al insecto moribundo. Las hifas emergentes
crecen hacia fuera a través del integumento del insecto y producen
esporas en la superficie externa del huésped. Dichas esporas, o
conidios, se dispersan y tienen la capacidad para infectar nuevos
insectos huésped. Las esporas de B. bassiana se pueden
dispersar por el nido mediante la actividad de la plaga.
Las formulaciones de la presente invención fueron
particularmente efectivas para el control de las hormigas de fuego y
otras plagas. En una forma de realización preferida, la formulación
comprende un polvo seco con el agente fúngico de control biológico y
un componente de alimento. Preferentemente, la formulación contiene
además un agente desecante. Opcionalmente, la formulación puede
comprender también un atrayente. La formulación preferida no es
repelente y comprende una fuente de alimento de modo que la plaga
diana recogerá y reclutará otros compañeros de nido en la actividad
de forrajeo. Además, se ha descubierto que la formulación de la
presente invención se adhiere ventajosamente al cuerpo de la plaga
diana, facilitando así la colonización de la plaga mediante el
agente fúngico de control biológico. La capacidad de adherencia a la
plaga hace que la formulación de la presente invención sea muy
diferente de otras formulaciones que se utilizan en la actualidad
para administrar pesticidas químicos.
En una forma de realización, la formulación de la
presente invención contiene entre 25 y 40% de material a base de
cacahuete, entre 45 y 60% de almidón de maíz, entre 2 y 20% de
agente fúngico de control biológico y entre 0 y 15% de agente
desecante. En una forma de realización específica, la formulación
puede comprender aproximadamente un 35% de material a base de
cacahuete, aproximadamente un 50% de almidón de maíz,
aproximadamente un 5% de agente desecante y aproximadamente un 10%
de hongo. El agente desecante puede ser cualquiera de entre los
muchos materiales conocidos en la materia en forma de partículas
pequeñas pero con una elevada proporción de área superficial a
volumen para eliminar efectivamente la humedad y los aceites de la
formulación con el fin de crear un polvo seco. Preferentemente, el
agente desecante puede ser tierra de diatomeas o un silicato cálcico
sintético tal como Micro-Cel®.
El componente de cacahuete en la formulación se
prepara preferentemente mediante el molido de cacahuetes tostados
para obtener un polvo. Para lograr un polvo seco, lo mejor es moler
los cacahuetes en combinación con almidón de maíz y/o el agente
desecante. Preferentemente, los componentes de la composición son
partículas pequeñas y pasarán a través de un tamiz de 60 mesh.
Típicamente, el almidón de maíz y el agente desecante pasarán a
través de un tamiz mucho menor tal como uno de 300 mesh.
Preferentemente, la formulación es un polvo fino que fluye
libremente y no se agrega en grumos. Según la presente invención
también se pueden utilizar otros alimentos a parte de cacahuetes o
almidón de maíz. La elección de la fuente de alimento dependerá de
la plaga en particular que es la diana que debe controlarse. Además,
se pueden utilizar múltiples atrayentes conocidos en la materia.
Dichos atrayentes pueden ser, por ejemplo, feromonas o múltiples
extractos.
Para evaluar el control logrado mediante la
utilización de los materiales y procedimientos de la presente
invención, se realizaron ensayos destinados a comparar el control de
plagas logrado con ciertos pesticidas comerciales. Tal como se
describe a continuación, dichos ensayos demostraron que las
formulaciones fúngicas de la presente invención son muy efectivas
para controlar las plagas.
A continuación se presentan ejemplos que ilustran
los procedimientos, comprendiendo las mejores formas de poner en
práctica la presente invención. Dichos ejemplos no se deben
considerar limitativos. Todos los porcentajes se dan en peso y todas
las mezclas de disolventes se dan en volumen a menos que se indique
de otro modo.
Ejemplo
1
El hongo sujeto se puede producir en bandejas con
un medio a base de arroz. Se utiliza un inóculo del aislado de hongo
para iniciar el crecimiento de hongo en las bandejas.
El inóculo inicial se prepara en placas de Petri.
Las esporas puras se transfieren a continuación a jarras que
contienen arroz blanco estéril sin las pieles.
El medio en las bandejas se prepara como
sigue:
- 1.
- Se cocina el arroz durante 10 minutos.
- 2.
- Se colocan 750 gramos de arroz cocido en bolsas de polietileno y se esterilizan en un autoclave a 120ºC durante 30 minutos.
- 3.
- En una campana de flujo laminar se añade a cada una de las bolsas preparadas con medio estéril una cucharilla de esporas y arroz de la jarra de inóculo.
- 4.
- Se cierra fuertemente cada una de las bolsas doblando y grapando el extremo abierto.
- 5.
- Se transfieren las bolsas a una habitación estéril con presión positiva, una temperatura de entre 25,0 y 27,0ºC, humedad relativa sobre el 70% y 16 horas de fotofase. Dicha habitación se conoce como la "habitación de ambiente".
Transcurridos 3 días en la habitación de
ambiente, se seleccionan las bolsas con el micelio y se transfiere
su contenido a bandejas de plástico. El tamaño de las bandejas es
tal que cada bandeja acomoda el contenido de 2 a 3 bolsas. Las
bandejas y sus contenido se dejan en la habitación de ambiente
durante entre 12 y 15 días. Al final del período de 12 a 15 días, se
transfieren las bandejas a una habitación con una corriente de aire
limpio frío (10 a 20ºC). Las bandejas se dejan en dicha habitación
hasta que el aire frío ha secado la mezcla de arroz y hongo.
Las bandejas de arroz no contaminadas cubiertas
con hongo se pueden cosechar y preparar para la aplicación o el
almacenamiento. Si el hongo se aplicara a cucarachas u hormigas en
las próximas 1 a 2 semanas siguientes a la producción, se pueden
recoger los conidios sacudiendo y tamizando. El polvo resultante
contiene las esporas y algo de micelio y se puede aplicar
directamente al insecto diana o se puede utilizar para preparar una
formulación como líquido, polvo o cebo.
Si se ha de almacenar el hongo, la mezcla se
puede mezclar con almidón de maíz o talco y se puede colocar en
recipientes de plástico estériles fuertemente sellados que se
almacenan en un refrigerador a 4ºC o en una habitación con una
temperatura comprendida entre 10 y 25ºC y sin luz solar directa. La
elevada virulencia del B. bassiana puede quedar comprometida
por las contaminaciones bacterianas o fúngicas. Por consiguiente, a
través de la preparación del hongo, se han de tener mucho cuidado en
mantener la esterilidad de los todos los instrumentos y el
equipo.
Tal como demuestran los siguientes ejemplos, el
producto que contiene hongo se puede aplicar a las plagas diana y a
sus nidos como un líquido, un polvo o se puede colocar como una
trampa cebada para que la plaga forrajee infectándose y llevando el
inóculo de vuelta al nido.
Ejemplo
2
Se puede utilizar el rociado para tratar hormigas
o cucarachas individualmente o pequeños grupos de dichas plagas. Una
suspensión de hongo que contiene entre 1,0 x 10^{7} y 1,0 x
10^{9} esporas por mililitro de agua se puede rociar sobre la
plaga diana utilizando un pincel de aire u otro medio de
aplicación.
Ejemplo
3
Se puede mezclar una mezcla de micelio y esporas
con almidón de maíz o talco y se puede aplicar al entorno de la
plaga como un polvo seco.
El polvo seco se prepara como en el anterior
Ejemplo 1. El polvo tamizado de B. bassiana que contiene el
arroz, esporas y micelio se mezcla con almidón de maíz o talco. La
aplicación de dicho polvo al nido o directamente a la plaga puede
facilitar el crecimiento rápido y muy extendido del hongo en el nido
y en la plaga.
La aplicación se puede lograr utilizando un
aplicador de aire comprimido provisto de un aditamento que
distribuye la mezcla por las ranuras y grietas de un edificio
infestado por la plaga. Durante y después de la aplicación, se
observara la plaga recubierta de polvo blanco. Dichas plagas
infectadas morirán entre 1 y 5 días y las esporas que producen serán
infecciosas para otras plagas. Deberá producirse un marcado descenso
de actividad en 1 a 3 días y la muerte se deberá producir en 1 a 2
semanas después de la aplicación. Las esporas activas permanecerán
en el entorno del nido, proporcionando inóculo para infectar otras
cucarachas y hormigas.
Ejemplo
4
El polvo de hongo se puede utilizar en una trampa
en la que las entradas están contaminadas con inóculo de hongo.
Preferentemente, se utilizan esporas de hongo. El cebo atrayente
será forrajeado por las cucarachas y hormigas y los forrajeadores
quedarán infectados. Los individuos infectados regresarán
contaminados al nido y de tal modo introducirán la enfermedad
fúngica en el nido. Se puede añadir un aceite vegetal u otra
sustancia líquida al cebo en la trampa para hacerlo más atractivo a
la plaga. En la materia son bien conocidos múltiples atrayentes, que
comprenden compuestos de feromonas. Las trampas cebadas se deben
colocar en alacenas, a lo largo de los rodapiés, alfeizares de
ventanas, etc. Cada trampa deberá contener una cantidad de entre 0,5
y 2,0 gramos de la mezcla fúngica que contiene esporas y micelio. El
número de trampas utilizadas en una zona dependerá del nivel de
infección.
Ejemplo
5
Se expusieron hormigas carpintero (Camponotus
floridanus) a Beauveria bassiana nº 447. Cada tratamiento
consistió en exponer dos grupos de 50 hormigas cada uno a conidios
del aislado. Se recubrieron las hormigas con una mezcla de
conidios/almidón, mediante una ligera agitación de las hormigas y
las esporas juntas en un recipiente cubierto. El tratamiento control
constó solamente de almidón de maíz. A continuación se mantuvieron
las hormigas en cajas de plástico abiertas que contenían una celda
nido (placa Petri de 100 mm cubierta, con la parte inferior de la
placa llena con yeso que se humedeció periódicamente con agua) y
agua con miel como alimento.
Se registró la mortalidad diariamente durante 18
días empezando el segundo día a continuación de la exposición. El
ensayo finalizó después de 28 días. Las hormigas muertas se
mantuvieron individualmente bajo una elevada humedad y se examinaron
para determinar esporulación y la proporción de infecciones.
Las hormigas carpintero expuestas a aislados de
B. bassiana mostraron una mortalidad del 95% (Figura 1). Por
lo menos el 49% de las hormigas muertas desarrollaron cuerpos
esporulantes del hongo al que fueron expuestos, lo que indica que
dicho aislado puede crecer y reproducirse en las hormigas
carpintero.
Ejemplo
6
Se expusieron hormigas faraón a una mezcla que
contenía conidios de B. bassiana nº 447 como ingrediente
activo. En una placa Petri se pulverizaron individualmente con
conidios tres colonias de entre aproximadamente 100 y 200 hormigas y
se las permitió arrastrarse a una celda nido (placa Petri de
plástico, 15 x 40 mm con la base llena de yeso y agujeros de entrada
en la tapa). Los controles consistieron en tres colonias no
empolvadas. Las colonias se mantuvieron por separado en placas Petri
más grandes junto con las celdas nido y agua con miel. La mortalidad
se registró cada día durante 25 días. Las hormigas muertas se
esterilizaron individualmente en la superficie y se mantuvieron bajo
una elevada humedad para determinar la proporción de infección.
La exposición de las hormigas faraón a B.
bassiana nº 447 produjo una mortalidad del 90% después de 8 días
(Figura 2). Además, se confirmo que todas las hormigas muertas
tenían esporas del hongo, lo que indica que el hongo se puede
desarrollar con éxito en las hormigas faraón.
Ejemplo
7
En la cucaracha alemana (Blattella
germanica) se ensayó B. bassiana nº 447 con el fin de
determinar la capacidad de sus conidios para infectar y matar al
huésped. Se anestesiaron grupos de 50 cucarachas macho con CO_{2}
y a continuación se empolvaron con conidios, en un recipiente
cubierto de 227 g (8 oz). Los controles consistieron en un grupo de
20 cucarachas. Las cucarachas empolvadas se transfirieron
individualmente a placas Petri separadas (10 x 35 mm) que contenían
papel de filtro humedecido. Se registró la mortalidad a partir del
segundo día después de la aplicación de los conidios y diariamente a
continuación. Las cucarachas muertas se mantuvieron individualmente
en una cámara húmeda durante 10 días para identificar los hongos
esporulantes.
Para la cucaracha americana, Periplaneta
americana, se aplicó B. bassiana nº 447 pintando los
conidios sobre las cucarachas anestesiadas. Las cucarachas se
mantuvieron en una placa Petri tal como se describió anteriormente,
a 26ºC.
En el ensayo con cucarachas alemanas el aislado
fúngico de B. bassiana nº 447 (Figura 3) produjo una
mortalidad del 100% después del contacto con las esporas. La
esporulación de hongo fue evidente en el 82% de las cucarachas
muertas. En las exposiciones de cucaracha americanas, el aislado de
B. bassiana produjo una mortalidad del 90% o superior después
de 8 días (Figura 4). La esporulación fúngica ocurrió en todas las
cucarachas americanas muertas.
Ejemplo
8
Se ofrecieron formulaciones de cebos con material
a base de cacahuetes molidos a colonias de hormigas de fuego
trabajadoras en cajas de plástico (\approx 22 x 12 x 10 cm) que
contenían un pequeño plato de agua y una placa Petri de plástico
(diámetro 60 mm) como celda nido. Se establecieron las colonias
durante 2 a 4 días antes de iniciar el experimento para permitir que
las hormigas se adaptasen a su nuevo ambiente. Las formulaciones
(0,5 g) se ofrecieron en papeles de pesar con un área de 635
mm^{2} (1 pulgada cuadrada) o en platos pequeños y se dejaron en
la caja durante 3 a 4 días. Se utilizaron dos controles: un control
limpio que no recibió formulación pero recibió agua y un control de
cebo que recibió la formulación de cebo sin hongo. Para el aislado
de hongo que contenía aproximadamente un 10% de B. bassiana
nº 447 se obtuvo una mortalidad corregida por Abbott superior al 70%
en el día 14 después del tratamiento.
Ejemplo
9
Los cebos químicos que se compararon fueron de:
trampa para hormigas MAX, trampa para hormigas RAID y trampa para
hormigas COMBAT. Los cebos químicos se extrajeron de las trampas y
se ofrecieron a las hormigas sobre papel. El control recibió la
misma formulación que el tratamiento con hongo pero sin conidios. La
formulación fúngica contuvo material a base de cacahuete, almidón de
maíz y 10% de conidios de B. bassiana nº 447. MAX y las
composiciones fúngicas produjeron una mortalidad similar, aunque MAX
hizo que la mortalidad incrementase mucho más rápidamente que los
hongos, tal como se esperaba, ya que el hongo necesita entre 3 y 4
días para infectar y matar los insectos. Tal como se muestra en la
Figura 5, COMBAT y RAID fueron menos eficaces que MAX y Beauveria
bassiana.
Ejemplo
10
Los cebos químicos que se compararon fueron de:
trampa para hormigas MAX, trampa para hormigas RAID y trampa para
hormigas RAID. Se extrajeron los cebos de las trampas y se
ofrecieron a las hormigas sobre papel. El control recibió la misma
formulación que el tratamiento fúngico pero sin conidios. La
formulación de hogo contuvo material a base de cacahuete, almidón de
maíz y un 10% de conidios de B. bassiana nº 447. Los
resultados de dicho experimento se muestran en la Figura 6.
Ejemplo
11
Los cebos químicos que se compararon fueron de:
trampa para hormigas MAX, trampa para hormigas RAID y trampa para
hormigas COMBAT. Los cebos químicos se extrajeron de las trampas y
se ofrecieron a las hormigas en papel. El control recibió la misma
formulación que el tratamiento con hongo pero sin conidios. Las
formulaciones de hongo contuvieron material a base de cacahuete,
almidón de maíz y 10% de condios de B. bassiana nº 447. En
todos los experimentos, el cebo con Beauveria bassiana
produjo una mortalidad similar o superior a la causada por los cebos
químicos. Ver la Figura 7 para los resultados de uno de dichos
experimentos.
Ejemplo
12
Los cebos químicos que se compararon fueron de:
trampa para hormigas MAX, trampa para hormigas RAID y trampa para
hormigas COMBAT. Los cebos químicos se extrajeron de las trampas y
se ofrecieron a las hormigas sobre papel. El control recibió la
misma formulación que el tratamiento con hongos pero sin conidios.
La formulación de hongos contuvo material a base de cacahuete,
almidón de maíz y un 10% de conidios de B. bassiana nº 447.
Tal como se puede observar en la figura 8, la formulación de hongo
tuvo una eficacia similar a, o ligeramente superior a, la de los
cebos de MAX y RAID, y solamente ligeramente inferior a la de
COMBAT. Tanto COMBAT como el hongo tuvieron mostraron efecto
retardado en relación con RAID y MAX, pero el retraso en el efecto
del hongo fue superior al de COMBAT.
Ejemplo
13
Se valoraron cebos químicos AMDRO®. El cebo en un
experimento contuvo también un 10% de insecticida en polvo para
hormigas de fuego ACEPHATE. En cada tratamiento, se proporcionó
medio gramo de formulación por arena en papel de pesar. La
formulación se retiró después de 4 días. El control recibió la misma
formulación que el tratamiento con hongo pero sin conidios. La
formulación con hongos contuvo material a base de cacahuete, almidón
de maíz y un 10% de conidios de B. bassiana nº 447.
ACEPHATE (que normalmente no es una formulación
para cebos) mata las hormigas casi inmediatamente. La mortalidad con
AMDRO aumentó más lentamente, pero al día 4, \approx el 80% de las
población estaba muerta. La mortalidad con el hongo aumentó a una
velocidad inferior pero la mortalidad final después de 2 a 4 semanas
fue similar a la obtenida con los pesticidas químicos (Figura
9).
Claims (9)
1. Procedimiento para el control de cucarachas,
que comprende aplicar el aislado nº 447 de Beauveria
bassiana, que tiene las características de la ATCC 20872, a las
cucarachas o a su entorno.
2. Procedimiento para el control de las hormigas
carpinteras, que comprende aplicar el aislado nº 447 de Beauveria
bassiana que tiene las características de ATCC 20872, a las
hormigas carpinteras o a su entorno.
3. Procedimiento para el control de las hormigas
faraón, que comprende aplicar el aislado nº 447 de Beauveria
bassiana, que tiene las características de la ATCC 20872, a las
hormigas faraón o a su entorno.
4. Composición para el control de una plaga de
cucarachas u hormigas, que comprende una fuente de alimento y el
aislado definido en la reivindicación 1, estando la composición en
forma de un polvo seco capaz de pasar a través de un tamiz US mesh
65.
5. Composición según la reivindicación 4, que
comprende un material a base de cacahuete, almidón de maíz y el
aislado.
6. Composición según la reivindicación 4 o la
reivindicación 5, que comprende además un material desecante.
7. Composición según la reivindicación 5 ó la
reivindicación 6, que comprende además entre el 25 y el 40% de
material a base de cacahuete, entre el 45 y el 60% de almidón de
maíz, entre el 0 y el 15% de agente desecante y entre el 2 y el 20%
del aislado.
8. Composición según la reivindicación 7, que
comprende entre el 30 y el 40% de material a base de cacahuete,
entre el 45 y el 55% de almidón de maíz, aproximadamente el 10% de
agente desecante y aproximadamente el 10% del aislado.
9. Composición según la reivindicación 7, que
comprende aproximadamente el 35% de material a base de cacahuete,
aproximadamente el 50% de almidón de maíz, aproximadamente el 5% de
agente desecante y aproximadamente el 10% del aislado.
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