ES2257564T3 - Metodo para determinar la presencia de bacterias resistentes a antibioticos que lisan las celulas. - Google Patents
Metodo para determinar la presencia de bacterias resistentes a antibioticos que lisan las celulas.Info
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Abstract
Un método para determinar la presencia de bacterias diana en una muestra, bacterias diana que son resistentes a un antibiótico que lisa las células, que comprende los pasos secuenciales de: i) incubar la muestra en un medio de incubación que incluye el antibiótico que lisa las células, ii) capturar las células no lisadas de las bacterias diana sobre un soporte sólido que comprende un agente de captura, iii) exponer las células no lisadas de las bacterias diana a un agente capaz de causar la lisis celular de las mismas, iv) determinar la presencia de material intracelular de las células lisadas de las bacterias diana.
Description
Método para determinar la presencia de bacterias
resistentes a antibióticos que lisan las células.
La presente invención se dirige a un método para
determinar la presencia de una o más bacterias diana en una muestra,
bacterias diana que son resistentes a un antibiótico o antibióticos
que lisan las células. La invención se dirige particularmente,
aunque no exclusivamente, a un método para determinar la presencia
de una o más bacterias resistentes a meticilina en una muestra
clínica.
El surgimiento de bacterias que tienen
resistencia a antibióticos comúnmente utilizados es un problema cada
vez más frecuente con serias implicaciones para el tratamiento de
individuos infectados. De hecho, estos denominados súper patógenos,
tales como Staphylococcus aureus, son a menudo resistentes a
casi todos los antibióticos más potentes. El problema se ha vuelto
particularmente grave en el entorno hospitalario, donde la infección
nosocomial de individuos con sistemas inmunes debilitados por
bacterias resistentes a los antibióticos puede llevar a serias
complicaciones e incluso la muerte. Por consiguiente, existe la
necesidad de minimizar el riesgo de infección en tal entorno. Un
modo de minimizar el riesgo se basa en la determinación temprana de
la presencia de tales bacterias, para posibilitar que los individuos
y el entorno sean monitorizados cuidadosamente y, si es necesario,
sean tratados en una fase temprana.
Los métodos actuales para la determinación de la
presencia de bacterias resistentes a antibióticos, sin embargo,
consumen mucho tiempo y requieren cultivar primero las bacterias en
forma pura y seguidamente exponerlas a una serie de antibióticos
para ver si su crecimiento se inhibe. El proceso total puede llevar
al menos dos días y puede acarrear un frecuente retraso crítico
antes de que se pueda administrar un régimen de tratamiento óptimo
a un individuo infectado. Por supuesto, tales retrasos no sólo son
perjudiciales para la salud de los individuos, si no que acarrean
también estancias más largas en el entorno hospitalario.
Por consiguiente, existe la necesidad de un
método para la determinación rápida de la presencia de bacterias
que son resistentes a ciertos antibióticos en un paciente o
entorno.
El documento WO 99/37799 enseña un método rápido
para determinar si una bacteria en particular, que se sabe está
presente en un cultivo, es susceptible o resistente a un antibiótico
en particular. El método es, sin embargo, limitado en que requiere
preferiblemente que la bacteria esté presente como un cultivo puro o
sea un aislado puro. El método, sin embargo, puede adaptarse para
determinar la resistencia o susceptibilidad a antibióticos de una
bacteria en particular en un cultivo mixto. En ese caso, el método
se basa en general en un paso de separación preliminar antes del
tratamiento con el antibiótico en particular u otra acción
específica para la bacteria en particular.
Alternativamente, y siempre que se conozca el
modo de acción del antibiótico, el método puede revelar la
resistencia o susceptibilidad a antibióticos de una bacteria en
particular que se sabe está presente en un cultivo mixto a través
de un análisis comparativo del contenido de adenilato quinasa
intracelular de cuatro alícuotas derivadas del cultivo mixto y
cultivadas en presencia de i) ningún antibiótico, ii) antibiótico,
iii) un bacteriófago específico para la bacteria y iv) una mezcla
de ambos antibiótico y bacteriófago. Una bacteria susceptible a un
antibiótico que lisa las células, por ejemplo, puede deducirse sobre
la base de que la adenilato quinasa intracelular se reduce en una
muestra cultivada con el antibiótico y el bacteriófago cuando se
compara con la muestra cultivada con el bacteriófago solo.
Aunque podría suponerse que los métodos descritos
en WO 99/37799 podrían indicar simplemente la presencia de una
bacteria en un cultivo mixto que tiene resistencia a un antibiótico
en particular, en la práctica tal resultado no puede obtenerse
inequívocamente y de manera fiable especialmente cuando las
concentraciones de la bacteria resistente son bajas.
Incluso, si se pudiera, resultará evidente que la
determinación de esa presencia requiere aun así la ejecución de
varios pasos repetitivos que implican el cultivo, tratamiento y
ensayo de al menos cuatro alícuotas diferentes del cultivo mixto.
Tales repeticiones son poco elegantes y aumentan la posibilidad de
error. Además, el método comprende un retraso inherente en el hecho
de que el tratamiento de una alícuota del cultivo mixto con un
bacteriófago requiere tiempo para asegurar que las bacterias están
establecidas en la fase logarítmica de su crecimiento.
Por consiguiente, permanece la necesidad de un
método simple y rápido para determinar la presencia de bacterias
que tienen resistencia a antibióticos en una muestra. En particular,
permanece la necesidad de un método simple y rápido para determinar
la presencia de bacterias que tienen resistencia a antibióticos en
una muestra clínica.
La presente invención busca por lo tanto
proporcionar un método simple y rápido, que implique un mínimo de
pasos necesarios, para determinar si hay bacterias resistentes a
antibióticos presentes en una muestra, especialmente una muestra
clínica, tomada, por ejemplo, mediante un frotis a individuos
infectados.
La presente invención comienza a partir de la
comprensión de que una amplia variedad de bacterias son generalmente
susceptibles a los antibióticos que lisan las células y que, en
consecuencia, el material intracelular de las bacterias
susceptibles en un cultivo mixto puede descartarse de manera
ventajosa en primer lugar.
Por consiguiente, la presente invención
proporciona un método para determinar la presencia de bacterias
diana en una muestra, bacterias diana que son resistentes a un
antibiótico que lisa las células, que comprende los pasos
secuenciales de:
i) incubar la muestra en un medio de incubación
que incluye el antibiótico que lisa las células,
ii) capturar las células no lisadas de las
bacterias diana sobre un soporte sólido que comprende un agente de
captura,
iii) exponer las células no lisadas de las
bacterias diana a un agente capaz de causar la lisis celular de las
mismas,
iv) determinar la presencia de material
intracelular de las células lisadas de las bacterias diana.
En una realización de la presente invención el
método comprende además un paso de lavado y/o un paso de filtración
antes del paso iii), para separar el material intracelular derivado
de las células susceptibles al antibiótico que lisa las células.
Se entenderá que en toda esta solicitud la frase
"antibiótico que lisa las células" describe un agente que
perturba la síntesis de la pared celular bacteriana durante la
replicación celular. Así, cualesquiera de los antibióticos
\beta-lactámicos son adecuados para la ejecución
del método de la presente invención. En una realización preferida
de la presente invención el antibiótico que lisa las células es una
penicilina tal como ampicilina o meticilina.
En una realización de la presente invención el
agente de captura puede ser específico sólo para una especie en
particular de bacterias. En otras realizaciones el agente de captura
puede ser específico para una cepa en particular de bacterias. En
una realización preferida, el agente de captura es fibrinógeno que
se une a Staphylococcus aureus. Alternativamente, el agente
de captura es un anticuerpo específico para Staphylococcus
aureus.
Se comprenderá por supuesto que el método de la
presente invención puede incluir un paso o pasos de intervención
adicionales para posibilitar la determinación de la presencia de una
o más bacterias diana. Típicamente, estos pasos pueden comprender
capturar las células no lisadas de las bacterias diana sobre un
soporte sólido que comprende uno o más agentes de captura.
De manera ventajosa, el medio de cultivo para
ejecutar la presente invención comprende un caldo líquido. En esta
realización el soporte sólido puede comprender perlas magnéticas
recubiertas con un anticuerpo adecuado u otro agente de captura.
Alternativamente, el soporte sólido puede comprender una espátula,
pala o filtro recubierto al menos en parte con un anticuerpo
adecuado u otro agente de captura.
En una realización adicional de la presente
invención, el agente capaz de causar la lisis celular es selectivo
frente a las bacterias diana. Preferiblemente el agente es selectivo
para Staphylococcus aureus. Aún más preferiblemente el
agente capaz de causar la lisis celular es lisostafina.
En otra realización de la presente invención, el
agente capaz de causar la lisis celular es un bacteriófago
selectivo frente a las bacterias diana o un derivado de lisina del
mismo. En una realización adicional el agente capaz de causar la
lisis celular es una colicina.
Por supuesto, se comprenderá también que el
método de la presente invención puede incluir varios de tales pasos
para que la presencia de otras bacterias diana pueda también
determinarse.
La determinación del material intracelular
derivado de las células lisadas de las bacterias diana puede
comprender cualquier ensayo apropiado, como se conoce en la
técnica. Preferiblemente, el ensayo comprende un ensayo de
bioluminiscencia. Aún más preferiblemente, el ensayo de
bioluminiscencia se basa en la adenilato quinasa (AK) como se
describe, por ejemplo, en los documentos WO 94/17202 y WO 96/02665.
Sin embargo, el ensayo puede comprender alternativamente un ensayo
colorimétrico o fluorimétrico basado en marcadores enzimáticos
intracelulares - por ejemplo, fosfatasa o peroxidasa.
Un aspecto de la presente invención proporciona
estuches ("kits") de ensayo para ejecutar el método de la
invención. Preferiblemente, el "kit" de ensayo es un "kit"
de ensayo desechable. El "kit" de ensayo puede comprender
componentes adecuados para permitir llevar a cabo el ensayo elegido.
Preferiblemente, el "kit" de ensayo comprende un medio de
cultivo adecuado que contiene un antibiótico elegido que lisa las
células. Aún más preferiblemente, el "kit" de ensayo comprende
un soporte sólido que incluye un agente de captura específico para
las bacterias diana, una solución de lavado y un agente capaz de
causar la lisis celular de las bacterias diana.
En una realización de la presente invención, el
"kit" de ensayo comprende un caldo líquido que comprende
meticilina. Preferiblemente, el caldo líquido que contiene
meticilina se suministra en forma liofilizada.
De manera ventajosa, el "kit" de ensayo
puede suministrarse en forma de un recipiente con múltiples pocillos
tal como el que se describe en la solicitud de patente GB
0110476.9.
Una ventaja del método de la presente invención
proporciona una determinación rápida (aproximadamente 3 horas) de
la presencia de bacterias resistentes a un antibiótico que lisa las
células, que implica un único ensayo para el material intracelular.
Además, el método evita la necesidad de ensayos múltiples
comparativos y confiere adicionalmente la ventaja de que los
resultados pueden interpretarse de un modo independientemente
cualitativo inequívoco, más que de un modo comparativo o
cuantitativo.
La presente invención se describirá a
continuación por referencia a realizaciones no limitantes y a los
siguientes dibujos, en los que
la Figura 1 es una ilustración esquemática de los
pasos esenciales del método de la presente invención;
la Figura 2 es una gráfica que destaca la
diferencia entre ensayos negativos y positivos;
la Figura 3 es una gráfica que muestra resultados
de ensayos con cepas resistentes a meticilina y sensibles a
meticilina de Staphylococcus aureus tras una incubación de
3,5 horas con 50 \mug/ml de ampicilina o 4 \mug/ml de
meticilina; y
la Figura 4 es una vista en corte de un
"kit" de ensayo según la presente invención.
Con referencia ahora a la Figura 1, una muestra
tomada en forma de frotis, por ejemplo de un paciente, y que
comprende una mezcla de bacterias que contiene las bacterias 11, en
general resistentes a meticilina, y, las bacterias 12, en general
susceptibles, se cultiva a 37ºC en un caldo líquido de
aproximadamente 1 ml de volumen que contiene aproximadamente 4
\mug de antibiótico.
Las bacterias resistentes a meticilina 11
sobreviven y pueden multiplicarse. Las bacterias susceptibles a
meticilina 12, sin embargo, tras una fase inicial de crecimiento,
desarrollan las paredes celulares debilitadas 13 y se lisan,
liberando su material intracelular 14 al caldo líquido.
Tras un periodo de 2 a 4 horas, el caldo líquido
comprende por lo tanto una mezcla de bacterias no lisadas,
resistentes a meticilina, y las bacterias lisadas susceptibles a
meticilina.
La presencia de las bacterias en particular,
Staphylococcus aureus por ejemplo, se determina seguidamente
por la adición al caldo líquido de las perlas paramagnéticas 15
recubiertas con fibrinógeno. El fibrinógeno es un agente de unión
específico para Staphylococcus aureus. Tras un periodo de 2 a
10 minutos las perlas se eliminan magnéticamente del caldo y se
lavan antes de un paso de análisis.
Las perlas 15 y las bacterias diana unidas 11 se
tratan seguidamente en un recipiente separador con un detergente
capaz de lisar las células. El material intracelular así obtenido se
analiza para buscar la adenilato quinasa usando un protocolo de
bioluminiscencia con luciferina-luciferasa. La
presencia del Staphylococcus aureus resistente a meticilina
se revela por una señal 16. La señal 16 puede, a los efectos de
cerciorarse, compararse con una señal control adecuada, para
excluir anomalías provenientes de las concentraciones de fondo de
adenilato quinasa.
Resultará evidente que sólo aquellas células que
permanecen impermeables a la meticilina y se inmovilizan sobre las
perlas magnéticas proporcionan una señal significativa en respuesta
al ensayo de adenilato quinasa.
Por supuesto, la presencia de otras especies
diana resistentes a meticilina puede investigarse por un paso o
pasos alternativos o adicionales que comprenden la adición que
perlas que comprenden otros recubrimientos o perlas que incluyen
uno o más agentes de captura en sus recubrimientos.
Alternativamente o adicionalmente, la
especificidad puede introducirse en el método dirigiéndose a una
variedad en particular de las especies bacterianas en el paso de
lisis celular final. Por ejemplo, puede usarse un bacteriófago o
una combinación de detergentes que sea específica para
Staphylococcus aureus.
La Figura 2 muestra los resultados de
bioluminiscencia obtenidos para la determinación de la presencia de
Staphylococcus aureus en una serie de muestras clínicas. Como
puede verse, un resultado positivo del ensayo (muestras números
M421000M y M421148L) se distingue fácilmente de un resultado
negativo del ensayo (muestras números M421117S y
M421131P).
M421131P).
La Figura 3 muestra los resultados de
bioluminiscencia obtenidos para diferentes cepas de
Staphylococcus aureus cultivadas en presencia de ampicilina,
así como de meticilina. En cada caso el método distingue la
presencia de las cepas resistentes a los antibióticos de las cepas
susceptibles a los antibióticos.
Con referencia ahora a la Figura 4, un "kit"
de ensayo para usar en el método de la presente invención comprende
una caja sólida de polipropileno moldeado por inyección, en general
designada 17, que comprende varios pocillos 18, 19, 20, 21, 22 que
actúan como cámaras de almacenaje y/o cámaras de reacción para
varios reactivos o herramientas adecuados (como se describen más
abajo).
La cámara 18 almacena un caldo líquido 22 que
contiene un antibiótico que lisa las células, que es adecuado para
incubar una muestra de un frotis obtenido de un individuo infectado.
La cámara 18 está provista de un bastoncillo sólido 23 que lleva un
hisopo 24 para obtener esta muestra. El bastoncillo 23 lleva una
porción transversal 25 que actúa como asa para el bastoncillo 18 y
proporciona convenientemente una tapa 26, que sella el caldo
líquido 22 que contiene el antibiótico que lisa las células en la
cámara 18.
Las cámaras adyacentes 19, 20 almacenan
respectivamente una solución acuosa que contiene una suspensión de
perlas magnéticas 27 y una solución de lavado salina acuosa
tamponada con fosfato, 28. Las perlas magnéticas adecuadas son las
obtenidas de Dynal con el nombre Dynalbeads^{TM}. Como se ha
mencionado previamente, las perlas están recubiertas con un agente
capaz de capturar las bacterias diana.
La cámara 21, que actúa como la cámara de
reacción del "kit", está provista de una solución tampón acuosa
29 adecuada para la ejecución del ensayo de bioluminiscencia basado
en la adenilato quinasa. La cámara está provista también de las
cápsulas selladas con una hoja 30, 31 por encima de la solución
tampón 29, que contienen respectivamente un reactivo
bioluminiscente basado en luciferina/luciferasa y una solución
acuosa de difosfato de adenosina que contiene un detergente o
agente capaz de lisar las células de las bacterias diana. Una fuente
de magnesio, tal como acetato de magnesio, que actúa como un
promotor para el ensayo de bioluminiscencia, se proporciona en el
espacio 32 que divide las cápsulas selladas con una hoja.
La cámara 22 está provista de una varilla hueca
33 que lleva una punta cónica afilada 34 adecuada para agujerear
las cápsulas selladas con una hoja 30, 31. La varilla 33 está
provista de una porción transversal 35 que lleva un medio de
engranaje (p. ej., ranuras - no mostrado) para engranar un mecanismo
adecuado para mover la varilla 33 en dirección vertical y
horizontal, bajo el control de hardware o software de control (no
mostrado). La porción transversal 35 está provista también de una
apertura (no mostrada) que permite a la varilla 33 recibir un imán
cilíndrico retractable (no mostrado).
Las cámaras 19, 20, 21, 22 están provistas de un
medio de sellado laminado en forma de una hoja de metal 36. En
contraste con el medio de sellado proporcionado para la cámara 18,
el medio de sellado laminado no pretende ser reutilizable una vez
que se ha roto.
Al usarlo, el bastoncillo sólido 23 que lleva el
hisopo 24 se retira manualmente de la cámara 18 mediante el asa 25
y se usa para obtener una muestra de un individuo infectado. El
bastoncillo 23 se devuelve inmediatamente a la cámara de tal forma
que el hisopo 24 se sumerge en el caldo líquido 22 y se vuelve a
formar el sellado entre la tapa 26 y la cámara 18.
El "kit" de ensayo se mantiene en
condiciones adecuadas durante un periodo de aproximadamente 3 h para
incubar la muestra del paciente. Al final de este periodo, el
bastoncillo 23 se retira de la cámara 18 y se retiran las hojas de
metal que sellan las cámaras 19, 20, 21, 22.
La varilla hueca 33 (que contiene el imán
retractable) se engrana con el mecanismo en movimiento. Bajo el
control del hardware o software de control, la varilla 33 se mueve
hacia la cámara 19 donde recoge las perlas magnéticas de la
suspensión 27 y desde allí a la cámara 18, donde la retracción del
imán mediante, por ejemplo, medios accionados por tornillo sinfín,
causa que las perlas se depositen en el caldo.
Tras un periodo de tiempo adecuado, y agitando si
es apropiado, se hace regresar el imán a la varilla 33 para que
recoja las perlas. La varilla 33 se retira seguidamente hacia la
cámara 20, donde las perlas se depositan en la solución de lavado
28 y, tras un periodo de tiempo adecuado adicional, se recuperan
como se ha descrito previamente.
La varilla 33 que lleva las perlas lavadas se
retira subsiguientemente hacia la cámara de reacción 21, de tal
forma que se hace que la punta cónica afilada 34 libere los
contenidos de las cápsulas selladas con una hoja 30, 31 a la
solución tampón 29. Las perlas se liberan seguidamente a la solución
29 por retracción del imán de la varilla 33, y la varilla se
devuelve a la cámara 22.
Un fotomultiplicador (no mostrado) colocado bajo
la cámara 21 de la caja de polipropileno 17 detecta la luz emitida
proveniente de la reacción de bioluminiscencia que sigue. (Una
descripción detallada de la reacción se da en los documentos WO
94/17202 y WO 96/02665).
Claims (20)
1. Un método para determinar la presencia de
bacterias diana en una muestra, bacterias diana que son resistentes
a un antibiótico que lisa las células, que comprende los pasos
secuenciales de:
i) incubar la muestra en un medio de incubación
que incluye el antibiótico que lisa las células,
ii) capturar las células no lisadas de las
bacterias diana sobre un soporte sólido que comprende un agente de
captura,
iii) exponer las células no lisadas de las
bacterias diana a un agente capaz de causar la lisis celular de las
mismas,
iv) determinar la presencia de material
intracelular de las células lisadas de las bacterias diana.
2. Un método según la Reivindicación 1, en el que
el paso iii) está precedido por un paso de lavado y/o
filtración.
3. Un método según la Reivindicación 1 o
Reivindicación 2, en el que el agente de captura es un anticuerpo
específico para Staphylococcus aureus.
4. Un método según la Reivindicación 1 o
Reivindicación 2, en el que el agente de captura es fibrinógeno.
5. Un método según la Reivindicación 4, en el que
el agente capaz de causar la lisis celular es selectivo frente a
Staphylococcus aureus.
6. Un método según la Reivindicación 5, en el que
el agente capaz de causar la lisis celular es lisostafina.
7. Un método según cualquiera de las
Reivindicaciones 1 a 4, en el que el agente capaz de causar la
lisis celular es un bacteriófago.
8. Un método según cualquier Reivindicación
precedente, en el que el medio de cultivo es un caldo líquido.
9. Un método según cualquier Reivindicación
precedente, en el que el soporte sólido comprende perlas
magnéticas.
10. Un método según cualquiera de las
Reivindicaciones 2 a 9, en el que el paso iv) comprende un ensayo
de bioluminiscencia.
11. Un método según la Reivindicación 10, en el
que el ensayo de bioluminiscencia se basa en la adenilato
quinasa.
12. Un método según cualquiera de las
Reivindicaciones 2 a 9, en el que el paso iv) comprende un ensayo
colorimétrico o fluorimétrico basado en un marcador enzimático
intracelular.
13. Un método según cualquier Reivindicación
precedente, en el que el antibiótico que lisa las células es
meticilina.
14. Un "kit" de ensayo que comprende
una caja sólida de polipropileno moldeado por inyección como se
muestra en la Fig. 4, para determinar la presencia en una muestra de
bacterias diana resistentes a un antibiótico que lisa las células,
que comprende un medio de cultivo que contiene el antibiótico que
lisa las células, uno o más soportes sólidos que comprenden un
agente de captura específico para las bacterias diana, uno o más
agentes capaces de causar la lisis celular de las bacterias diana y
reactivos para determinar la presencia de material intracelular de
las células lisadas de las bacterias diana.
15. Un "kit" de ensayo según la
Reivindicación 14, en el que el antibiótico que lisa las células es
meticilina.
16. Un "kit" de ensayo según la
Reivindicación 14 o Reivindicación 15, en el que los uno o más
agentes de captura incluyen un agente de captura específico para
Staphylococcus aureus.
17. Un "kit" de ensayo según cualquiera de
las Reivindicaciones 14 a 16, en el que los uno o más agentes de
captura comprenden fibrinógeno.
18. Un "kit" de ensayo según cualquiera de
las Reivindicaciones 14 a 17, en el que los uno o más agentes que
lisan las células comprenden lisostafina.
19. Un "kit" de ensayo según cualquiera de
las Reivindicaciones 14 a 18, en el que los reactivos para
determinar la presencia de material intracelular de las células
lisadas de las bacterias diana son adecuados para efectuar un
ensayo de bioluminiscencia, colorimétrico o fluorimétrico para un
marcador enzimático intracelular.
20. El uso de un "kit" de ensayo como se
reivindica en las Reivindicaciones 14-19 para
determinar la presencia de bacterias diana en una muestra,
bacterias diana que son resistentes a un antibiótico que lisa las
células, y ejecutar un método como se reivindica en las
Reivindicaciones 1-13.
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