ES2264214T3 - Procedimiento para la biotransformacion de compuestos de colchicona en los derivados 3-glucosilo correspondientes. - Google Patents
Procedimiento para la biotransformacion de compuestos de colchicona en los derivados 3-glucosilo correspondientes.Info
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Abstract
Un procedimiento para la preparación de compuestos 3- glucosilcolchicona de fórmula (I): en la que R1 es un resto glucósido, R2 es alcoxi C1-C6 o tioalquilo C1-C6, que comprende la biotransformación de compuestos en los que R1 es OH o metoxi mediante Bacillus megaterium.
Description
Procedimiento para la biotransformación de
compuestos de colchicona en los derivados
3-glucosilo correspondientes.
La presente invención se refiere a la
biotransformación, realizada mediante cepas microbianas
seleccionadas, de compuestos colchicinoides, en los derivados
3-O-glucosilo respectivos. El
procedimiento de la presente invención proporciona compuestos
glucosilados exclusivamente en C-3 del anillo
aromático A, partiendo de los compuestos de colchicona citados con
elevados rendimientos y pureza.
Los compuestos obtenidos mediante el
procedimiento biotecnológico de la invención, particularmente
tiocolchicosona
(3-O-glucosiltiocolchicona, es
decir, con referencia a la fórmula (I), R_{1} = -OCH_{3} y
R_{2} = -SCH_{3}), son principios activos de notable importancia
farmacológica, principalmente para la preparación de nuevos
medicamentos antitumorales.
Se han hecho numerosos esfuerzos para obtener
glucosidaciones altamente específicas de compuestos de fórmula
general (I) y compuestos colchicinoides relacionados, mediante
reacciones químicas o mediante biotransformación.
La ruta química consiste en secuencias de
reacciones complejas, no específicas, que implican de manera no
selectiva diferentes sitios moleculares, conduce a una mezcla de
derivados glucosidados, algunos de los cuales son inactivos. Por lo
tanto, los rendimientos de conversión al producto eficaz
específicamente glucosidado en C-3 del anillo
aromático, son muy bajos.
El enfoque biológico se refiere sustancialmente
a la biotransformación de compuestos colchicinoides, (que están
indirectamente relacionados con compuestos de colchicona) tales
como colchicina y tiocolchicina, cultivando Centella
Asiatica, en monoderivados glucosidados en C-2 y
en C-3 del anillo aromático; siendo dicha
transformación, por lo tanto, no muy selectiva y proporcionando
escasos rendimientos y productividad (Solet, J.M., et al.,
Phytochemistry 33, 4, 817-820, 1993).
Otros esfuerzos para biotransformar compuestos
colchicinoides dieron simplemente desmetilaciones de los grupos
metoxi unidos al anillo aromático (en C-2 y en
C-3), de todas formas caracterizados siempre por
rendimientos y productividad limitados y por una mala
regioselectividad.
Por lo tanto, Hufford C.D. et al. (J.
Pharm. Sc., 68, 10, 1239-1242, 1979), usando
Streptomyces griseus y/o Streptomyces spectabilis, y
Bellet P. et al., (documento GB-923421,
1959), usando diferente cepas de Streptomyces y de otras
especies de Bacterias y Hongos, trataron de transformar la
colchicina y sus derivados en los derivados
3-desmetilados correspondientes. Los resultados de
estos procedimientos conocidos confirman lo indicado anteriormente
en relación con la no selectividad de las enzimas microbianas
implicadas, por ejemplo en C-2, C-3
o C-10 de la molécula alcaloide. Además, los
niveles de productividad de dichos sistemas catalíticos son bastante
malos, debido a los bajos rendimientos de conversión, las reducidas
concentraciones de sustrato que pueden usarse, y la frecuente
degradación del anillo de tropolona.
Más recientemente, Poulev et al. (J.
Ferment. Bioeng. 79, 1, 33-38, 1995) han obtenido
la desmetilación específica usando microorganismos bacterianos,
aunque aún con peores rendimientos y productividad.
La actividad enzimática a partir de
microorganismos similares a los mencionados anteriormente
(Streptomyces, Bacillus, etc.) se ha aplicado a la
biotransformación de otros compuestos, tales como maitansinoides
(Patente de Estados Unidos Nº 4 361 650: Izawa, M., et al.,
J. Antibiotics, 34, 12, 1587-1590, 1981). En este
caso la reacción catalizada consistía también exclusivamente en una
desmetilación, caracterizada por bajos rendimientos de conversión y
productividad.
Se han descrito las actividades de glicosil
transferasa de \alpha-amilasa de cepas de
Bacillus megaterium (Brumm., P.J., et al., Starch, 43,
8, 319-323, 1991), siendo la especificidad del
aceptor (exclusivamente glucosa o glucósidos) particularmente alta.
Las ciclodextrin-glucosilo transferasas, producidas
por la misma fuente microbiana, catalizan una
\alpha-1,4-transglucosilación de
rubusosida
(13-O-\beta-D-glucosil-steviol
\beta-D-glucosilo éster),
partiendo de almidón. También en esta bioconversión el aceptor de la
reacción de transferasa es la fracción glúcido del sustrato
(Darise, M., et al., Agric. Bioel. Chem., 48, 10,
2483-2488, 1984). Las
ciclodextrin-glucosilo transferasas se habían usado
anteriormente para la preparación de las ciclodextrinas G6 y 30 G8
de almidón (Kitahata, S., Okada, S., Agric. Biol. Chem., 38, 12,
2413-2417, 1974).
Estos ejemplos ponen de manifiesto la alta
especificidad por el sustrato de las actividades de glucosilo
transferasa expresadas por Bacillus megaterium que implican
únicamente aceptores glucosilo, haciendo imposible, por lo tanto,
esperar cualquier reacción sobre metabolitos secundarios que tienen
una estructura molecular diferente y compleja, tales como
colchiconas. De hecho, no se conocen ejemplos del uso de dichos
microorganismos para la conversión enzimática de compuestos
colchicona a derivados 3-glucosilo.
Ahora se ha descubierto que las cepas de
Bacillus megaterium capaces de crecer en presencia de altas
concentraciones de colchicona (R_{1} = -OCH_{3}, R_{2} =
-OCH_{3}), 3-desmetil-colchicona y
los tio derivados respectivos, tienen una actividad de
biotransformación extremadamente alta y muy específica de dichos
sustratos en derivados glucosidados exclusivamente en
C-3 del anillo aromático. Dicha transformación
tiene lugar en tiempos muy cortos, y se caracteriza por rendimientos
sorprendentemente altos.
Por lo tanto, la invención se refiere a un
procedimiento para la preparación de compuestos de
3-O-glucosilcolchicona de fórmula
(I):
en la que R_{1} es un resto
glucósido, particularmente un resto O-glucósido,
R_{2} es alcoxi C_{1}-C_{6} o tioalquilo
C_{1}-C_{6}, que comprende la biotransformación
de compuestos en los que R_{1} es OH o metoxi mediante
Bacillus
megaterium.
Bacillus megaterium es una bacteria
Gram-positiva generadora de esporas con un diámetro
de célula mayor de 1,0 \mum; crece de manera aerobia en numerosos
medios de cultivo; es positiva a catalasa; hidroliza gelatina. Las
cepas de Bacillus megaterium que pueden usarse la invención
resultaron capaces de crecer satisfactoriamente y de mantenerse
viables también a altas concentraciones de colchicona,
tiocolchicona (R_{1} = -OCH_{3}, R_{2} = -SCH_{3}) y
derivados 3-desmetilo respectivos (por encima de 2
g/l), como se pone de manifiesto mediante el examen del crecimiento
y mediante análisis al microscopio. Las especies congenéricas, tales
como Bacillus cereus, ya a concentraciones de sustrato de 1
g/l ponen de manifiesto una dificultad en el crecimiento
(absorbancias de 10-15% del control).
La alta selectividad y eficacia de la
biotransformación es sorprendente y poco habitual, ya que los
niveles de rendimiento varían del 70% al 95%.
Además, los microorganismos usados en la
bioconversión son capaces de mantener permanentemente la actividad
catalítica, incluso en etapas de fermentación repetidas,
proporcionando por lo tanto la bioconversión específica en
procedimientos continuos y discontinuos. Por lo tanto, este
procedimiento proporciona altos niveles de productividad y
reproducibilidad.
La destacada regioselectividad de la reacción
asegura, además de unos rendimientos de producción notables, una
alta calidad y pureza del producto resultante, proporcionándolo, de
esta manera, con una pureza del 100%, con un simple procesado aguas
abajo.
Además, son importantes ventajas la reducida
frecuencia de la etapa de purificación y recuperación del producto,
la economía del procedimiento y la afinidad y seguridad de uso.
Las secuencias operativas utilizables en el
procedimiento de la invención comprenden:
A) - Selección de cultivos de Bacillus
megaterium capaces de crecer en presencia de altas
concentraciones de sustrato de colchicona, partiendo de fuentes
naturales o de cepas recogidas.
B) - Selección de los aislados de A), para
ensayar la actividad catalítica de transformación en los derivados
3-O-glucosilo correspondientes,
mediante ensayos de bioconversión sobre los sustratos específicos,
administrados en concentraciones que aumentan gradualmente.
C) - Caracterización microbiológica de las cepas
seleccionadas en B).
D) - Aumento gradual en el rendimiento de
biotransformación, mediante una selección específica de la diana de
la población bacteriana de B).
E) - Estudio y optimización de los parámetros
críticos de fermentación, para optimizar la biotransformación.
F) - Estudio y optimización de los
procedimientos para la conservación de cultivos de alta
productividad, para garantizar inóculos estables y homogéneos para
aplicaciones productivas a escala industrial.
G) - Aumento de escala del procedimiento en
fermentador, en procedimientos discontinuos,
semi-continuos y continuos.
H) - Tratamiento y optimización de los
procedimientos para el procesado aguas abajo y para la recuperación
del producto.
Específicamente, los microorganismos utilizables
en la presente invención pueden seleccionarse partiendo de cultivos
de recogida obtenidos de los centros de depósito de cepas, o a
partir de muestras de suelo de orígenes diversos, o a partir de
cepas industriales preseleccionadas, mediante recuperación
selectiva en diferentes medios agar que contienen una fuente de
nitrógeno orgánico (peptonas, extractos de levadura, extractos
cárnicos, asparagina, etc.), una fuente de carbono (glicerina,
almidón, maltosa, glucosa, etc.), con pH de 5 a 8, preferiblemente
6-7. La temperatura de incubación varía de 20º a
45ºC, preferiblemente de 28º-40ºC.
La capacidad del cultivo para crecer en
presencia de concentraciones tóxicas de sustrato de colchicona a
transformar se evalúa mediante técnicas de dilución escalar y
colocando en placas en paralelo, sobre diferente sustratos
agarizados, habiendo añadido anteriormente a una parte de los cuales
el compuesto de colchicona (por ejemplo:
3-desmetiltiocolchicona) en concentraciones de 0,1
a 3 g/l (como para inhibir el crecimiento de la mayor parte de los
microorganismos).
Las colonias capaces de crecer en las
condiciones descritas son extraen en condiciones estériles y se
colocan en diferentes medios agarizados, par verificar su pureza y
la homogeneidad de crecimiento.
Los medios de cultivo usados para la
conservación del cultivo son sustratos microbiológicos típicos, que
contienen fuentes de nitrógeno orgánico (peptonas, extractos de
levadura, triptona, extractos cárnicos, etc.), una fuente de
carbono (glucosa, maltosa, glicerina, etc.), un pH de 5 a 8,
preferiblemente 6-7. La temperatura de incubación
varía de 20 a 45ºC, preferiblemente 28-40ºC.
Los microorganismos seleccionados se ensayan
después para la capacidad de crecer en cultivo sumergido, en
presencia de compuestos colchiconoides, y de transformar estos
últimos en los derivados 3-glucosilo
correspon-
dientes.
dientes.
Dichos ensayos se realizaron en matraces de 100
ml que contenían 20 ml de medio líquido, con diferentes
formulaciones del medio, que comprenden una o más fuentes de
nitrógeno orgánico (extractos de levadura, peptonas, triptona,
hidrolizados de caseína, extracto cárnico, agua de macerado de maíz,
etc.), una o más fuentes de carbono (glucosa, glicerol, almidón,
sacarosa, etc.), fuentes inorgánicas de fósforo y nitrógeno, y
sales inorgánicas de diversos iones (K^{+}, Na^{+}, Mg^{++},
Ca^{++}, Fe^{++}, Mn^{++}, etc.).
Las muestras de cultivo pueden someterse
opcionalmente a tratamientos mutagénicos, mediante las técnicas de
mutagénesis convencionales (irradiación con rayos UV, etc.) para
inducir mutantes que tienen una actividad de bioconversión
específica que puede evaluarse con el mismo procedimiento que
antes.
Las muestras de cultivo a partir de cada ensayo
de bioconversión, se analizaron para evaluar la producción de
derivados 3-glucosilo, mediante análisis por TLC y
HPLC.
La capacidad del microorganismo seleccionado
para transformar sustratos de colchicona en los derivados
3-glucosilo respectivos se confirmó mediante
ensayos de bioconversión en matraces, a una escala de 300 ml, en
los mismos caldos de cultivo que se usaron en la etapa de
selección.
Los microorganismos que dieron una respuesta
positiva se usaron en ensayos para la optimización de la
bioconversión, en diferentes caldos de cultivo, en una escala de
300 ml. Los principales parámetros de cultivo y fermentación
estudiados son: fuentes de nitrógeno orgánico, fuentes de carbono,
sales minerales, temperatura, agitación-aireación,
pH, tiempo de incubación, proporción de inóculo, etapas de
subcultivo, tiempo y forma de adición del sustrato a transformar.
Los microorganismos bacterianos seleccionados, capaces de realizar
la biotransformación de la presente invención, pueden crecer en
sustratos de cultivo sólidos y líquidos, que contienen una o más
fuentes de nitrógeno orgánico, preferiblemente extracto de
levadura, extracto cárnico, peptona, triptona, hidrolizados de
caseína, agua de macerado de maíz; etc. Las fuentes de carbono
útiles para el crecimiento y la biotransformación son glucosa,
fructosa, sacarosa, glicerol, extracto de malta, etc.,
preferiblemente glucosa, fructosa y glicerina. El medio de cultivo
contiene además fuentes de fósforo inorgánico y sales de K^{+},
Na^{+}, Mg^{++} NH_{4}^{+} etc.
Los microorganismos seleccionados pueden crecer
a temperaturas de 20º a 45ºC, preferiblemente de 28º a 40ºC, un pH
entre 5 y 8, preferiblemente 6-7. En las mismas
condiciones, los microorganismos considerados son capaces de
transformar los compuestos colchiconoides en los derivados
3-glucosilo correspondientes. Dichas
transformaciones ocurren en cultivo sumergido, en matraces
incubados en un agitador rotatorio, con agitación de 150 a 250
rpm.
Debido a la cinética particular de la
biotransformación en cuestión, que está relacionada con el
crecimiento microbiano, las condiciones óptimas para los propósitos
de biotransformación son las mismas condiciones que son óptimas
para el crecimiento. Por lo tanto, los medios de cultivo útiles para
promover un buen crecimiento microbiano, tales como los basados, en
los componentes orgánicos e inorgánicos citados anteriormente,
también son útiles para una buena actividad de biotransformación
del sustrato en cuestión. Este último se añade al cultivo en la
etapa de fermentación de partida, o en alícuotas fraccionales
empezando en el comienzo de la fermentación.
La biotransformación de la invención se basa en
una conversión enzimática, que empieza durante la fase de
crecimiento exponencial y continúa con una progresión paralela a la
del crecimiento; los niveles máximos de conversión a derivado
3-glucosilo (muy alto: hasta el 95%) se alcanzan en
las primeras 48-72 horas, dependiendo del tiempo de
adición del sustrato. La regioselectividad de la biotransformación
es absoluta: no se ha manifestado nunca la presencia de derivados
2-glucosilo en las muestras de cultivo. Los
productos resultantes son exclusivamente
extracelulares.
extracelulares.
El sustrato a transformar puede añadirse en una
solución en acetona o alcohol, en mezclas
alcohol-agua, en dioxano, etc. La biotransformación
de la invención puede aumentarse de escala hasta el nivel de
fermentador, manteniendo sin cambiar las condiciones de cultivo, en
particular en lo que respecta al medio de cultivo, temperatura y
tiempos de procesado. Para obtener buenos crecimientos, son
importantes unos niveles adecuados de
agitación-aireación, en particular se necesitan
niveles de aireación de 1-2 litros de aire por
litro de cultivo por minuto (vvm), preferiblemente de
1,5-2 vvm.
Los productos resultantes de la bioconversión se
extraen de los caldos de cultivo después de la separación de la
biomasa de la fracción líquida por centrifugación y recuperación
del sobrenadante, o microfiltración y recuperación del permeado. El
cultivo puede tratarse con alcoholes, en vista de una recuperación
óptima del producto.
La purificación y la recuperación de los
productos de biotransformación pueden realizarse usando técnicas
cromatográficas para la separación sobre resinas de absorción y
elución con alcoholes, preferiblemente con metanol. Las soluciones
de hidrometanol que contienen el producto pueden purificarse
adicionalmente por extracción con disolventes orgánicos lipófilos,
preferiblemente con cloruro de metileno. Después de tratamientos
adicionales con mezclas de alcoholes y disolventes orgánicos, el
producto puede obtenerse en el estado puro a partir de las
soluciones de alcohol resultantes por cristalización. La glucosa
puede sustituirse con otros azúcares, tales como fructosa o
galactosa, sin provocar la pérdida de la actividad glucosilo
transferasa.
Los siguientes ejemplos describen la invención
con mayor detalle.
Las alícuotas de cultivos de Bacillus
megaterium, aislados de suelo agrícola, se resuspenden en 20 ml
de solución salina estéril, y se someten a dilución escalar hasta
un factor de dilución de 1:10.000.000. Las suspensiones a diversas
diluciones se ponen en placas en un medio de cultivo
LB-Agar y sobre LB-Agar al que se
añade respectivamente tiocolchicona o
3-desmetiltiocolchicona, hasta una concentración
final de 2 g/l (véase la Tabla). Los cultivos se incuban a +28ºC,
durante 3-4 días, en la oscuridad. Las colonias que
crecen en el medio selectivo, añadidas con el compuesto colchicona,
se aíslan y purifican poniendo en placas en medio no selectivo;
dichas muestras se incuban como en el caso anterior, aunque durante
un tiempo más corto (24 horas).
Posteriormente, los cultivos se transfieren al
mismo medio de agar, en un tubo de ensayo, y se incuban como en el
caso anterior durante 24 horas.
Las alícuotas de cultivos, seleccionadas como se
ha descrito, se usan para inocular matraces Erlenmeyer de 100 ml
que contenían 20 ml de medio de cultivo ST (Tabla), al que se había
añadido tiocolchicona o 3-desmetiltiocolchicona,
hasta una concentración final de 0,4 mg/ml. Dichos cultivos se
incuban durante una noche a 28ºC, en un agitador rotatorio, a 200
rpm.
La transformación del sustrato de colchicona se
comprueba mediante un análisis de alícuotas de caldos de cultivo,
tomadas cada 3-4 horas, por TLC 30 sobre gel de
sílice, con un sistema eluyente de acetona:acetato de etilo:agua
5:4:1.
Después de 4 días de incubación, las alícuotas
de los cultivos, que demostraron una actividad catalítica evidente
hacia el derivado 3-glucosilo, se recuperan sobre
placas, mediante dilución escalar como se ha descrito anteriormente,
para la preparación del nuevo inóculo en el tubo de ensayo. El
ensayo de biotransformación en el matraz se repite en las mismas
condiciones del caso anterior, aunque usando concentraciones
finales mucho mayores de tiocolchicona y
3-desmetiltiocolchicona (1 mg/ml). Los cultivos
sencillos más activos (conversión de sustrato igual a o mayor del
70%) se usan para la preparación de inóculos en criotubos
congelados.
| 1) LB-Aqar | 10 g/l |
| Triptona | 5 g/l |
| Extracto de levadura | 10 g/l |
| NaCl | 15 g/l |
| Agar Agar | |
| pH 7 | |
| Esterilización: 121ºC x 20' | |
| 2) Caldo ST | |
| Glucosa | 20 g/l |
| Glicerol | 10 g/l |
| Peptona | 15 g/l |
| Extracto de levadura | 5 g/l |
| NaCl | 3 g/l |
| NH_{4}Cl | 3 g/l |
| K_{2}HPO_{4} | 8 g/l |
| KH_{2}PO_{4} | 3 g/l |
| MgSO_{4}, 7H_{2}O | 0,5 g/l |
| pH 7 | |
| Esterilización: 121ºC x 20' |
Se repite el procedimiento descrito en el
Ejemplo 1, empezando con cultivos de Bacillus megaterium,
derivados de la siguiente colección de cepas (Deutsche Sammlung von
Mikroorganismen, Braunschweig, Alemania):
DSM 90
DSM 322
DSM 333
DSM 1667
DSM 1670
DSM 1671.
Los cultivos se seleccionan como en el Ejemplo 1
y se les añade tiocolchicona (1 mg/ml) se incuban durante 4 días en
un cultivo líquido: el análisis por TLC detecta la transformación
que le ocurre al sustrato en tiocolchicosona, con rendimientos de
conversión que varían del 30 al 70%.
Las alícuotas de muestras de cultivo en tubo de
ensayo, seleccionadas como se ha descrito en el ejemplo anterior,
se usan para inocular matraces Erienmeyer de 100 ml que contienen
20 ml de caldo ST.
Los caldos de cultivo se incuban a +30ºC, en un
agitador rotatorio a 200 rpm, durante una noche. Después de la
incubación, a los cultivos se les añade una solución estéril de
glicerol hasta una concentración final del 20%. Los cultivos se
dispensan después en criotubos de 2 ml y se sumergen inmediatamente
en nitrógeno líquido.
Después de algunos días, el 10% de los cultivos
se descongela rápidamente a 37ºC. Las alícuotas de cada criotubo se
usan para inocular matraces Erienmeyer de 100 ml que contienen 20
ml de medio ST, que se-incuban posteriormente a
+28ºC, durante una noche (precultivo), a 200 rpm. Después de la
incubación, se transfieren 2 ml de cada precultivo en condiciones
estériles a 20 ml de medio ST nuevo, al que se ha añadido
3-desmetiltiocolchicona hasta una concentración
final de 1 g/l. La biotransformación se realiza y se comprueba en
las condiciones descritas en el Ejemplo 1. El análisis confirmó que
la transformación del sustrato en el derivado
3-glucosilo ocurrió en los términos cuantitativos
descritos anteriormente (70% y mayor), proporcionando de esta
manera la estabilidad catalítica de los cultivos
congelados.
congelados.
Controles paralelos de los caldos de cultivos,
puestos en LB Agar inmediatamente después de la descongelación,
confirman la viabilidad, homogeneidad pureza de los cultivos
congelados.
Las alícuotas de cultivos en criotubo, después
de la descongelación, se usan para inocular matraces Erienmeyer de
300 ml que contienen 50 ml de medio ST (precultivo). Después de la
incubación durante una noche á 30ºC, a 250 rpm, se transfieren 5 ml
de precultivo a 50 ml del mismo medio al que se ha añadido
3-desmetil-tiocolchicona hasta una
concentración final de 1 g/l. Los cultivos se incuban durante 4
días, en las mismas condiciones como se ha descrito
anteriormente.
Cada 4 horas, se toman muestras para evaluar el
crecimiento del nivel (midiendo la absorbancia a 600 nm), la
producción de tiocolchicosona; (TLC y HPLC, la esterilidad (sobre
LB Agar), y para el examen morfológico con microscopio.
El análisis por TLC se realiza como se ha
descrito en el Ejemplo 1. Para el análisis por HPLC, a fracciones
de 1 ml de caldos de cultivo se les añaden 9 ml de metanol y se
centrifugan a 13.000 rpm durante 2 minutos. El contenido de
derivado 3-glucosilo del sobrenadante se analiza por
HPLC en fase inversa, con elución isocrática, mediante el sistema
eluyente agua:acetonitrilo 80:20.
El análisis por HPLC demuestra que, después de
72-96 horas, la bioconversión del sustrato a
tiocolchisona se ha completado sustancialmente.
Los rendimientos finales al derivado
3-glucosilo, obtenidos mediante la bioconversión
varían entre el 70 y el 85%.
Se repite el procedimiento descrito en el
Ejemplo 4, aunque se añade 3-desmetiltiocolchicona
a los cultivos en dos fracciones: 0,25 g/l al principio y 0,74 g/l
después de 24 horas.
Las respuestas de crecimiento y producción de
los cultivos son similares a las obtenidas en el Ejemplo 4, con
rendimientos de tiocolchisona de aproximadamente el 90%.
Un litro de caldo ST en un matraz Erlenmeyer
(inóculo) se inocula con un cultivo de criotubo. Los matraces se
incuban durante una noche a +30º, 250 rpm. El inóculo se transfiere
en condiciones estériles a un fermentador de 14 l, que contiene 9 l
de caldo STL estéril. Se añade
3-desmetiltiocolchicona hasta una concentración
final de 1 g/l (25% al principio, el resto después de 20 horas). La
fermentación se realiza manteniendo niveles adecuados de
agitación-aireación (agitación hasta 900 rpm;
aireación de 1 a 1,5 vvm, dependiendo del crecimiento del
cultivo).
Cada 2 horas, se toman muestras de los caldos de
cultivo y se someten al siguiente análisis:
- Densidad óptica (OD) a 600 nm,
- Análisis de esterilidad y pureza de la cepa
(en LB Agar);
- Morfología al microscopio (tinción Gram);
- Análisis del contenido de tiocolchicosona, por
TLC y HPLC, como se ha descrito en los Ejemplos 1 y 4,
respectivamente.
Después de aproximadamente 48 horas de
fermentación, la transformación del sustrato a tiocolchisona está
casi acabada. El rendimiento final es de aproximadamente el
85%.
Se repite el procedimiento descrito en el
Ejemplo 6, aunque después de 48 horas de fermentación, solo se
recupera el 90% de los caldos de cultivo, para extraer el producto
(fracción 1). El 10% residual se añade en condiciones estériles al
fermentador con 9 l de medio ST estéril nuevo que contenía 10 g de
3-desmetiltiocolchicona. La fermentación se realiza
como se ha descrito en el Ejemplo 6. Después de 48 horas, se recogen
9 l de caldos de cultivo y se extraen (fracción 2).
El volumen residual de los caldos de cultivo se
añade en condiciones estériles con 9 litros más de medio ST estéril
nuevo que contiene 3-desmetiltiocolchicona nuevo
(10 g). La fermentación se realiza como en el caso anterior.
Después de 48 horas el caldo de cultivo se recoge completamente y se
extrae (fracción 3). La actividad de biotransformación de la cepa
permaneció estable durante las tres pruebas, con rendimientos de
conversión de aproximadamente el 80%.
El caldo de cultivo final de la fermentación
(volumen total: aproximadamente 27 l) se concentra al vacío hasta
dar un residuo blando y se recoge con etanol.
Después de la separación por filtración, la
fracción agua-etanol se concentra a agua, al vacío,
y sé purifica por extracciones repetidas con cloruro de metileno.
Las fracciones acuosas se concentran y, después de ajustar el pH a
10 con hidróxido sódico, se extraen con mezclas
clorometileno-etanol.
Las fases orgánicas combinadas se concentran al
vacío. A la suspensión resultante se le añade etanol, se concentra
y se deja cristalizar. Se realiza una segunda cristalización con
etanol después de las etapas adicionales de redisolución del sólido
en mezclas clorometileno-etanol.
Claims (16)
1. Un procedimiento para la preparación de
compuestos 3-glucosilcolchicona de fórmula (I):
en la que R^{1} es un resto
glucósido, R^{2} es alcoxi C_{1}-C_{6} o
tioalquilo C_{1}-C_{6}, que comprende la
biotransformación de compuestos en los que R_{1} es OH o metoxi
mediante Bacillus
megaterium.
2. Un procedimiento para la preparación de los
compuestos de fórmula (I) en los que R_{1} es un resto
O-glucósido.
3. Un procedimiento de acuerdo con las
reivindicaciones 1-2, en el que las cepas de
Bacillus megaterium se seleccionan por su capacidad de crecer
en presencia de altas concentraciones de sustrato de colchicona a
transformar.
4. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 3 en el que dichas concentraciones varían de 0,1 a 3
g/l.
5. Un procedimiento de acuerdo con las
reivindicaciones 1-4, en el que Bacillus
megaterium se cultiva en un medio sólido o líquido.
6. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 5, en el que dicho medio comprende al menos una
fuente de nitrógeno orgánico.
7. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 6, en el que dicha fuente de nitrógeno orgánico se
selecciona entre el grupo constituido por extracto cárnico,
peptona, triptona, hidrolizados de caseína, agua de macerado de
maíz.
8. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 5, en el que el medio comprende al menos una fuente
de carbono.
9. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 8, en el que dicha fuente de carbono se selecciona
entre el grupo constituido por glucosa, fructosa, glicerol.
10. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 5, en el que dicho medio comprende al menos una
fuente de sales inorgánicas de K^{+}, Na^{+}, Mg^{++}
NH_{4}^{+}.
11. Un procedimiento de acuerdo con las
reivindicaciones 1-10, que se realiza a un pH que
varía de 5 a 8.
12. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 11, en el que dicho pH varía de 6 a 7.
13. Un procedimiento de acuerdo con las
reivindicaciones 1-12, que se realiza a una
temperatura que varía de 20º a 45ºC.
14. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 13, en el que dicha temperatura varía de 28 a
40ºC.
15. Un procedimiento de acuerdo con las
reivindicaciones 1-14, que se realiza a un nivel de
aireación máximo de 1 a 2 litros de aire por litro de cultivo por
minuto (vvm).
16. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 15 en el que dicho nivel varía de 1,5 a 2 vvm.
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