ES2271617T3 - Metodo de hibridacion-amplificacion para detectar y tipificar virus papiloma humano. - Google Patents

Metodo de hibridacion-amplificacion para detectar y tipificar virus papiloma humano. Download PDF

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Abstract

Mezcla de iniciador de amplificación, donde dicha mezcla consiste de los iniciadores L1C1, L1C2, nuevoL1C2 que tienen SEQ. ID. NOS. 73-75, respectivamente, iniciadores que tienen SEQ. ID. NOS. 37-70, y SEQ ID NO. 35 y opcionalmente uno o más iniciadores seleccionados del grupo consistente de SEQ. ID. NOS: 70-72, SEQ. ID. NOS: 1-34 y 36.

Description

Método de hibridación-amplificación para detectar y tipificar virus papiloma humano.
Campo de la invención
El método de la presente invención se proporciona para detección y tipificación genética mejoradas del virus papiloma humano (HPV, por sus siglas en inglés).
Otro aspecto de la invención se relaciona con la formulación optimizada de reactivos y el método, adecuado para amplificar y detectar un conjunto expandido de genotipos HPB ("kits").
Antecedentes de la invención
Se determinaron numerosas secuencias del virus papiloma, ver las publicaciones HPV-6: de Villiers et al., J. Virology, 40 (1981); HPV-11: Dartmann et al., Virology 151, 124-130 (1986); HPV-16: Seedorf et al., Virology 145, 181-185 (1985); HPV-18: Cole y Danos, Journal of Molecular Biology 93, 599-608 (1987); HPV-_31: Goldsborough et al., Virology 171, 306-311 (1989); HPV-33: Cole y Streeck, J. Virology, 58, 991-995 (1986); HPV-54: Favre et al., J. Cancer 45, 40-46 (1990); HPV-56: Lörincz, J., Gen. Virol. 70, 3099 (1989).
La detección y tipificación de HPV se reporta en un número de publicaciones, además de Southern blotting y otras técnicas de hibridación, las técnicas más ampliamente usadas son los métodos con base en PCR, puesto que estos métodos proporcionan simultáneamente alta sensibilidad, especificidad y la flexibilidad del ensayo da más control para cumplir los requisitos analíticos.
El virus papiloma humano, un miembro de la familia Papillomaviridae, es un virus de ADN, con un bp 8000 de genoma circular. El virus muestra fuerte tropismo epitelial y prolifera solo en células epiteliales diferenciadas. Se sospecha que el papilomavirus tiene un rol etiológico en muchas enfermedades humanas diferentes, por ejemplo enfermedades de la piel, es decir verrugas, condiloma acuminato y tumores de la piel y en otras condiciones, tales como carcinoma cervical, carcinomas anogenitales, carcinoma de laringe. Está bien establecido que el papilomavirus humano muestra correlación fuerte con la incidencia de estos tumores y esto es cierto incluso para las lesiones pre-cancerosas (CIN, VIN, VAIN, PIN, PAIN). El HPV se puede detectar en el 99% de las pacientes con carcinoma cervical. Esta cercana relación estadística es posiblemente causada por el rol causal del HPV en la formación de carcinoma cervical. Con base en los datos epidemiológicos, los pacientes a infectarse por diferentes genotipos de HPV no tienen el mismo nivel de riesgo a desarrollar carcinoma cervical. De acuerdo con estos hallazgos los genotipos se clasifican en clases de riesgo bajo, riesgo medio y riesgo alto y además también existen genotipos no clasificados. Puesto que los riesgos son excesivamente diferentes y la incidencia de la infección de HPV es muy alta, la determinación de genotipo es de gran importancia.
El virus HPV no se puede cultivar. El diagnóstico serológico de infecciones de HPV está limitado a detectar la exposición al virus (infección pasada o actual), pero no puede identificar exactamente el genotipo, el rol está limitado más que todo a investigaciones epidemiológicas.
Para los virus papiloma no existe clasificación serológica exacta (serotipificación) y el método de clasificación ampliamente aceptado es la tipificación genética. Estos pueden dividirse en dos grupos, de acuerdo si la detección está precedida por amplificación o no. En una realización del método último, se usan sondas de RNA genómicas de longitud total para detectar los genomas de ADN de HPV desnaturizados y se detecta el heteroduplex con anticuerpos específicos (Digenos de Captura Híbrida). De acuerdo con otro método, la técnica de Southern blot se usa para detectar y tipificar genéticamente los genotipos de HPV. La desventaja de estos métodos es la insensibilidad relativa y la falta parcial de especificidad. En el caso del método de Captura Híbrida muchas publicaciones reportan diferentes reacciones cruzadas causando falsas reacciones positivas en condiciones clínicas. Los autores reportaron que las reacciones cruzadas eran aceptables sólo con un control de corte de alta concentración de ADN (1 ng/ml), que subraya el acoplamiento no deseable entre sensibilidad y especificidad.
Mediante los métodos de amplificación este problema no aparece puesto que la reacción responsable por la sensibilidad (amplificación) se lleva a cabo por separado. Generalmente las técnicas de amplificación difieren en el segmento de genoma amplificado seleccionado, numero de iniciadores y la técnica de detección aplicada. Los iniciadores usados más frecuentemente son los GP5+ - GP6+, MY9-MY11 y las diferentes reacciones de PCR de tipo específico. Las técnicas de detección más frecuentemente usadas son la hibridación de secuencia específica, el polimorfismo de restricción de longitud de fragmento (RFLP) y el ensayo de sonda de línea (LiPA). Además de estos, se usa secuenciación de amplificaciones y patrón de timidina generados por incorporación de dUTP, pero menos frecuentemente.
Las características analíticas de las técnicas de amplificación varían en rangos amplios. Los métodos pueden caracterizarse por los genotipos amplificables, la sensibilidad analítica de la amplificación genotípica y la especificidad y confiabilidad de la detección. En este campo el sistema iniciador degenerado de MY9-MY11 se considera que es la reacción de referencia. En caso del sistema MY9-MY11 MY9-MY11 existe el sistema de detección de hibridación LiPA (Innogenetics). El mayor inconveniente del sistema MY9-MY11 es la dificultad de controlar la síntesis degenerativa de los iniciadores y por eso la proporción relativa de las especies iniciador producidas en la síntesis varía de síntesis a síntesis a síntesis, lo cual puede dar lugar a cambios impredecibles de la conducta analítica de la reacción PCR; segundo, esta reacción puede amplificar la menor cantidad de tipos, en comparación con otras reacciones ampliamente usadas. Es bien conocido de la literatura que el sistema puede amplificar el genotipo 51 solo en caso de que se adicionen iniciadores de tipo específico del genotipo 51 de HPV a la reacción. Usando síntesis de iniciador degenerativa no se puede cambiar la proporción relativa de las especies de iniciador y es imposible diseñar las proporciones de iniciador para alcanzar un mejor desempeño analítico y una amplificación balanceada de genotipos.
La reacción GP5+ - GP6+ resuelve el problema solo mediante el uso de dos pares de iniciadores cuidadosamente seleccionados optimizados par alas secuencias de HPV genital, los dos sistemas de iniciador son fáciles de manejar, sin embargo la flexibilidad es más baja. El sistema GP5+ - GP6+ puede amplificar muchos genotipos de HPV conocidos, pero las características analíticas del sistema no son óptimas (la sensibilidad no está balanceada con diferentes genotipos) y el enfoque de dos iniciador se restringe en optimización, por ejemplo balancear las sensibilidades de detección para los genotipos individuales es altamente problemático (excepto la optimización limitada de la temperatura de fusión y concentración de MgCl_{2}). Es difícil adaptar el sistema GP5+ - GP6+ a la amplificación de otros genotipos, que en cualquier caso influye en su aplicación futura, puesto que la necesidad de detectar nuevos genotipos ocurre permanentemente. La identificación de los genotipos no se resuelve adecuadamente.
Otro método de amplificación de genotipo específico ampliamente conocido es el método L1C: el sistema de dos iniciadores, con dos versiones, siendo una usar (con el iniciador LC1) el iniciador L1C2 o el nuevo iniciador L1C2, para amplificar otros genotipos. La descripción detallada de la amplificación L1C se puede encontrar en la literatura [Jpn. J. Cancer Research 82, 524-531 (1991)].
Básicamente se deben cumplir dos criterios por medio de los métodos de detección de post-amplificación: aplicabilidad de diagnóstico rutinaria (simplicidad, costes, tiempo) y la requisición de potencia de nivel adecuado de discriminación de potencia de discriminación. Un grupo significativo de métodos que no son adecuados en términos de potencia de discriminación. Por lo tanto la aplicación de RFLP es limitada y debido a las regiones amplificadas cortas no hay suficientes sitios de restricción de diagnóstico, los genotipos solamente pueden clasificarse en grupos. En otro ejemplo la técnica SSCP es difícil para referir los patrones complejos de la SSCP a genotipos, y la robusteza de estas reacciones no es satisfactoria tampoco. El poder de discriminación es especialmente importante desde el punto de vista de cumplir los requisitos de las autoridades reguladoras. A partir de los aspectos de la simplicidad y del poder de secuenciación de discriminación es el enfoque ideal, puesto que su automatización se resuelve y es capaz de detectar cada uno de los genotipos (o incluso subtipos de los mismos), si la muestra no es una mezcla de genotipos. Pero en la práctica no es ampliamente usado, debido a que es caro y consume tiempo, y su aplicación en laboratorios de diagnóstico rutinario no es aceptable y en caso de muestras mezcladas ninguno de los genotipos se puede
determinar.
La ventaja de los métodos de hibridación es que su potencia de discriminación o severidad puede cambiarse fácilmente, puesto que se pueden variar varios parámetros en rangos amplios y algunas formas se automatizan fácilmente, la reacción es menos cara y en caso de implementación paralela (con algunas formas) incluso el tiempo necesitado es insignificante.
Por lo tanto existe la necesidad de un nuevo método de amplificación/detección de HPV que elimina las desventajas de los métodos actuales y que sea barato, fácil de reproducir y automatizar. La invención describe un ensayo de amplificación e hibridación en el cual los iniciadores son moléculas sintetizadas independientemente, por lo tanto su proporción relativa puede controlarse y optimizarse fácilmente y la amplificación tiene una sensibilidad balanceada. Las reacciones de hibridación llevadas a cabo de manera altamente paralela cumplen con los criterios de una reacción de bajo costo, rápida, flexible y susceptible de automatizarse.
Resumen de la invención
La presente especificación describe una región genómica de papilomavirus humano que está dentro de una amplímero de consenso (que es una región capaz de ampliarse con iniciadores enlazados a secuencias conservadas que flanquean al amplímero o amplicon). En donde estas regiones genómicas se caracterizan por tener secuencia de ADN de genotípico específico, que es adecuada para diseñar sondas de hibridación de genotipo específico.
Existe otra región genómica de HPV en este amplímero (amplicon) de consenso donde estas regiones genómicas se caracterizan por tener secuencia de ADN conservado, específica para el gen de HPV, que es adecuada para diseñar sondas de hibridación específicas para el gen.
Un elemento esencial de la invención es la presencia de dos segmentos genómicos dentro de una amplímero consensual que son adecuados para diseñar sondas de hibridación específicos para el gene y el genotipo.
La invención describe el uso de iniciadores en reacción de amplificación, las secuencias de ADN y sus concentraciones, y las condiciones del ciclo de reacción a ser optimizada para la amplificación de sensibilidad balanceada de los genotipos del papiloma virus humano. Así, en un aspecto la invención proporciona una mezcla de iniciador de amplificación, donde dicha mezcla consiste de L1C1, L1C2, nuevos iniciadores L1C2 (SEQ. ID. NOS. 73-75), SEQ. ID. NOS: 37-40, y SEQ ID NO. 35, y opcionalmente uno o más iniciadores seleccionados del grupo consistente de SEQ. ID. NOS: 70-72, SEQ. ID. NOS: 1-34 y 36. Esta mezcla de iniciador se puede usar para amplificar los genotipos 3, 4, 6, 7, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 16, 18, 20, 24, 26, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 39, 40, 41, 42, 44, 45, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 58, 59, 60, 61, 66, 67, 68, 72, 74 y 77 del virus papiloma humano.
La presente invención proporciona un método para detectar uno o más genotipos de HPV en una muestra biológica, que comprende los pasos de:
a) preparar uno o más amplímeros (amplicon) usando la mezcla de iniciador de la reivindicación 1 a partir de moléculas de ácido nucleico extraídas de la muestra biológica; y
b1) hibridizar el amplímero obtenido en (a) bajo condiciones severas con una sonda de hibridación específica de genotipo; y opcionalmente
b2) hibridizar el amplímero obtenido en (a) en condiciones severas con una sonda de gen específico de HPV.
En otro aspecto la invención proporciona un kit para detectar y tipificar HPV que incluye
i) la mezcla de iniciador de la reivindicación 1;
ii) opcionalmente iniciador de control interno;
iii) sondas de hibridación que comprenden o hibridizan a cualquiera de SEQ ID NOS. 77, 79, 81, 83, 85, 87, 89, 91, 93, 95, 97, 99, 101, 103, 105, 107, 109 ó 111 y opcionalmente cualquiera de SEQ. ID NOS. 76, 78, 80, 82, 84, 86, 88,90, 92, 94, 96, 98, 100, 102, 104, 106, 108, ó 110; y
En resumen el método proporcionado en la presente invención se puede usar para la amplificación/detección de un grupo dado de genotipos de HPV, dando lugar a la detección de ADN genómico de HPV del mismo con sondas de gen específico, y la tipificación genética colectiva (agrupada) o individual de los genomas de HPV. El método se puede usar para acceder al riesgo o para determinar aquellos individuos que están en riesgo de condiciones o enfermedades posteriores, causadas o asociadas por los virus HPV encontrados en los pacientes en un tiempo dado y especialmente con la detección de tipo específico de los mismos. El método suministrado por la invención también es adecuada para tamizar o cribar la presencia de HPV en una población dada y también para aumentar, apoyar o confirmar un diagnóstico citológico en un individuo dado (screening o cribado).
Descripción detallada de la invención
Para ayudar a entender la invención se definen diversos términos abajo.
Los términos "ácido nucleico" y "oligonucleotido" se refieren a sondas, iniciadores y otros ADN, RNA, PNA (ácido nucleico péptido) y otros oligómeros químicos capaces de enlazarse en una secuencia específica sobre una plantilla de ADN, RNA o PNA (molécula objetivo o diana).
El término "hibridación" se refiere al enlazamiento en secuencia específica de dos secuencias de ácido nucleico. Las condiciones usadas determinan de manera significativa la severidad de hibridación, por lo tanto puede ocurrir hibridación en condiciones menos severas, incluso si los ácidos nucleicos no son exactamente complementarios. En algunos casos podría ser necesarios que la sonda de ácido nucleico se enlace con un grupo de secuencias que son familiares más cercanos o más lejanos unas de otras. Aquellos versados en el arte de la tecnología de ácido nucleico pueden determinar las condiciones que si se cumplen entonces el enlazamiento es adecuadamente específico o no específico.
El término "sonda" se refiere a un conjunto de oligonucleótidos que muestran hibridación de secuencia específica en presencia de ácidos complementariamente o parcialmente complementariamente nucleicos. La estructura de los oligonucleotidos se puede modificar para hacer ejecución de los pasos que siguen una posible hibridación, o para cambiar sus propiedades de hibridación.
El término "sonda de tipo específico" se refiere a un conjunto de oligonucleótidos que en condiciones severas se enlazan solo a la región objetivo que es exactamente complementaria con ellos. Las condiciones de hibridación adecuadas para este requisito son bien conocidas en el arte (ver, por ejemplo Sambrook et al., 1985, Molecular Cloning Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y. USA). Genenarlmente, las condiciones severas se seleccionan para que estén cerca de 5ºC más bajo que el punto de fusión térmico (Tm) para la secuencia específica a una fuerza iónica y pH definidos. La Tm es la temperatura (a una fuerza iónica y pH definidos) a la que el 50% de la sonda se asocia en presencia de la molécula objetivo complementariamente. Relajar la severidad de las condiciones de hibridación (por ejemplo aumentar la concentración de sal o bajar la temperatura) permitirá enlaces de secuencias no exactamente complementarias. En caso de planilla no exactamente complementaria, los nucleótidos que no se enlazan al ácido nucleico plantilla son los "nucleótidos mal encajados".
El término "iniciador" se refiere a nucleótidos capaces de actuar como punto de inicio de la síntesis de ADN (imprimación) en condiciones en las que se induce síntesis de un producto de extensión de iniciador hacia una cadena de ácido nucleico sobre una plantilla de ácido nucleico, es decir, en presencia de cuatro trifosfatos nucleosidos diferentes y un agente para polimerización (es decir polimerasa o transcriptasa invertida de ADN) en un búfer apropiado y a una temperatura adecuada. Un iniciador es preferiblemente una molécula de ADN monocatenaria. La longitud apropiada de un iniciador abarca típicamente desde 15 hasta 40 nucleótidos.
Un iniciador no necesita reflejar la secuencia exacta de la plantilla, por lo tanto cambiar la temperatura del grupo de enlace (reacción) de moléculas similares objetivos puede servir como plantilla para la síntesis (amplímero consensual). Los grupos químicos con ciertas características ventajosas pueden usarse para etiquetar el oligonucleótido iniciador para hacerlo capaz de enlazarse a la fase sólida y para otros propósitos.
El término "iniciador" - en la presente invención - también se refiere a un grupo de oligonucleótidos secuencialmente relacionados, donde el grupo de oligonucleótidos es capaz de imprimación (tal como se describe arriba) sobre cierto grupo de secuencias plantilla o de molde. Adicionalmente, los miembros del grupo pueden consistir de oligonucleótidos que pueden formar malos emparejamientos con algunos o todos los miembros de un conjunto dado de ácidos nucleicos de plantilla o molde. Pero en condiciones apropiadas estos iniciadores también pueden participar en la imprimación. El término "iniciadores consensuales" se refiere a un iniciador o grupo de iniciadores que se pueden usar para la imprimación de ciertas regiones de ácidos nucleicos de molde relacionados. Las características de estas regiones es que su variabilidad es significativamente más baja que la variabilidad de todo el ácido nucleico, es decir, ellas se conservan, por lo tanto en estas secuencias los iniciadores consensuales seleccionados pueden hacer imprimación incluyendo el grupo entero de secuencias de ácido nucleico de molde. El iniciador consensual no es necesariamente un iniciador individual, puede ser un grupo de iniciadores.
El término "enzima de polimerasa termoestable" se refiere a una enzima que es relativamente estable a 95ºC y cataliza la polimerización de trifosfatos nucleosidos para formar productos de extensión de iniciador que son complementarios para una de las cadenas de ácido nucleico de la secuencia objetivo. Una enzima polimerasa purificada termoestable se describe en U.S. Pat. No. 4,889,818, y se encuentra comercialmente disponible por ejemplo en
Applera.
En la presente invención la amplificación de ADN se lleva a cabo por reacción de cadena depolimerasa (PCR, por sus siglas en inglés), divulgada en U.S. Pat. Nos. 4,683,195, 4,683,202, and 4,965,158.
En la presente invención se han desarrollado condiciones optimizadas de PCR para los propósitos de la amplificación de un número grande de diferentes genotipos HPV con optimización de concentraciones de iniciador, secuencias de iniciador condiciones de ciclización. La primera parte de la amplificación amplifica con severidad constantemente creciente, con el objetivos de que la amplificación de los genotipos, para los cuales los iniciadores contienen más nucleótidos mal emparejados, pueda empezar a amplificar con la misma eficacia que los otros genotipos, pero más tarde la temperatura de enlace creciente aumenta desplaza la reacción hacia el uso de iniciadores, que se encuentran en cantidades más grandes. Con una mezcla optimizada de iniciadores este proceso, en teoría, desplazará las secuencias de enlace de iniciador hacia una secuencia consensual, creando así la posibilidad de amplificación de sensibilidad balanceada de los genotipos.
Aunque la reacción en cadena de polimerasa es el método de amplificación preferido, las regiones genómicas mencionadas y nucleótidos pueden usarse en cualquier método conocido. Por ejemplo la reacción en cadena de ligasa (Wu y Wallace 1989, Genomics 4:_560-569), El sistema de amplificación TAS (Kwoh et al., 1989, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:_1173-1177) y la replicación de secuencia auto-sostenida (Guatelli et. al., 1990, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:_1874-1878) pueden ser también adecuados para la amplificación correcta de la secuencia objetivo. De manera similar, en el sistema Q-beta-replicasa (Kramer y Lizardi, 1989, Nature 339:401-402) se pueden amplificar sondas de secuencia específica.
En la presente invención se eligen los iniciadores de un grupo de secuencias más o menos complementarias adecuadas para amplificar amplímeros consensuales de HPV. Se logra imprimación efectiva en presencia de nucleótido mal emparejado usando temperatura de hibridación y concentraciones relativas de los iniciadores diseñadas cuidadosamente.
En la presente invención los iniciadores de la invención (SEQ. ID. NO: 1-40, 70-72) se usan con los iniciadores conocidos (SEQ. ID. NO: 73-75) en la forma de reactivos adecuados. Esto permite la detección un conjunto extendido de genotipos HPV, por lo menos 47 genotipos conocidos. Se puede ver en el ejemplo 4 que la amplificación del genotipo 35 HPV de acuerdo con la invención se puede llevar a cabo incluyendo el iniciador SEQ. ID. NO. 37 en la reacción. Sin este iniciador que incluye solo los iniciadores conocidos en la reacción el genotipo HPV-35 no se amplifica. Otro aspecto de la invención se refiere a los iniciadores de tipo específico para el gen HPV L1, los cuales incluyen una de las secuencias nucleótidas descritas en las secuencias SEQ. ID. NO: 1-36.
La invención se refiere a la mezcla de iniciadores que incluyen los iniciadores L1C1, L1C2 o nuevos iniciadores LlC2 (SEQ. ID. NOS. 73-75), SEQ. ID. NOS: 37-40, y SEQ ID NO. 35, y opcionalmente uno o más iniciadores seleccionados del grupo que consiste de SEQ. ID. NOS: 70-72, SEQ. ID. NOS: 1-34 y 36. Además, la invención se refiere a la aplicación de una mezcla de iniciadores así para la amplificación de genotipos de HPV 3, 4, 6, 7, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 16, 18, 20, 24, 26, 28, 29., 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 39, 39, 40, 41, 42, 44, 45, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 58, 49, 60, 61, 66, 67, 68, 72, 74 ó 77.
Un elemento esencial de la presente invención es la presencia de segmentos genómicos genéricos y de tipo específico en los amplímeros. Estos segmentos genómicos posibilitan la realización de hibridación y detección altamente específica. Por lo tanto la presente invención también describe un segmento genómico de los amplímeros caracterizado por un segmento genómico diverso, de genotipo específico, que se estira desde el 3' extreme del amplímero (en dirección 3'-5') desde el -80 bp hasta -30 bp. Estos segmentos genómicos son secuencias de ADN bicatenario de alrededor de 40 bp de largo, dadas en las secuencias SEQ. ID. NO: 77, 79, 81, 83, 85, 87, 89, 91, 93, 95, 97, 99, 101, 103, 105, 107, 109, 111.
La presente invención describe otro segmento de los amplímeros, que se estiran 3'-5' desde el extremo 3' del amplímero desde los -150 bp hasta -105 bp, y se caracteriza por secuencias de baja complejidad altamente conservadas entre genotipos, lo cual muestra especificidad de gen HPV genérico. Estos segmentos genómicos son ADN bi-catenarios, usualmente contienen 23 bp, y su cadena superior tiene una de las siguientes secuencias: SEQ. ID. NO: 76, 78, 80, 82, 84, 86, 88, 90, 92, 94, 96, 98, 100, 102, 104, 106, 108, 110.
Durante la detección de hibridación de los amplímeros, se usan sondas de hibridación de tipo específico, diseñadas para los segmentos genómicos mencionados arriba. Las sondas oligonucleótidas genéricas son generalmente aplicables para detección de los amplímeros de HPV, que son el ADN de HPV amplificado, mientras las sondas de tipo específico se pueden usar para más tipificación de las mismas, es decir para detectar los genotipos individuales. Ambas sondas de hibridación pueden ser ADN, RNA o PNA al natural.
Las sondas genéricas usadas en el método de la invención tienen propiedades similares a los iniciadores consensuales con la diferencia de que el extremo 5' no se prefiere para la posición de pares nucleótidos mal emparejados. En la presente invención ellos se usan como sondas, estas sondas genéricas pueden usarse tanto como sondas de hibridación como iniciadores.
Las sondas de hibridación genéricas (consensuales) o iniciadores de la invención incluyen una de las secuencias listadas en las secuencias SEQ. ID. NO: 41-49.
En un método preferido de la invención se usan las siguientes sondas como sondas genéricas: SEQ. ID. NO: 41-49.
En caso de sondas de tipo específico las sondas son 100% complementarias a la secuencia del genotipo correspondiente. Durante su diseño es importante excluir la posibilidad si otros genotipos muestran complementación de alto nivel con la sonda o parte de ella. Puesto que el segmento de tipo específico es alrededor de 40 bp de largo en los amplímeros de la invención, es posible seleccionar incluso secuencias de sonda que se solapan, las cuales son las más adecuadas tanto teórica- como experimentalmente. Se demuestra en el ejemplo 5 que se pueden diseñar y usar sondas adecuadas que tienen alta especificidad (en comparación con los 70 genotipos investigados) y mantienen su especificidad incluso a temperatura ambiente con las condiciones de hibridación usadas. Puesto que la hibridación de las sondas es adecuadamente específica en condiciones de hibridación idénticas, también se puede usar la mezcla de las sondas. Por lo tanto desde el punto de vista práctica se pueden usar condiciones de reacción más uniformes. Por lo tanto la invención divulga las secuencias de las sondas de tipo específico que se pueden en amplificación y detección de de HPV y ensayos de genotipificación, e incluyen una de las secuencias listadas en SEQ. ID. NO: 50-67.
La invención se refiere a cualquier realización de la hibridación pero comercialmente se prefiere la hibridación de fase sólida.
La tal llamada hibridación de fase sólida (adelante) enlaza las sondas a ácido nucleico objetivo inmovilizado (amplímero), mientras que la hibridación invertida enlaza el ácido nucleico objetivo (amplímero) a sondas inmovilizadas. Se retiran productos de reacción no enlazados con diferentes soluciones de lavado en el proceso. En el primer caso la sonda debe etiquetarse adecuadamente para un desarrollo posterior, Mientras en la invertida forman el amplímero etiquetado. Ambos sistemas se pueden realizar en placas de microtitulación. Puesto que la capacidad de inmovilización es limitada, en la presente invención el sistema de hibridación adelante se prefiere debido al gran número de las sondas individuales que constituyen la mezcla de sondas usadas.
El método descrito en US 6,214,979 puede ser aplicable de manera similar, cuando las sondas se adicionan a la reacción durante la amplificación. Durante el proceso la actividad exonucleasa 5'-3' de la polimerasa Taq descompone las sondas, y la detección de la descomposición producida puede usarse para detectar la presencia del ácido nucleico objetivo. Pero también se conocen otros sistemas de detección, llamados de tiempo real, en su mayoría con base en hibridación, pero estos difieren sólo en su método de implementación y detección y no en una realización teóricamente diferente del enlazamiento de amplímero de sonda de secuencia específica.
Para la inmovilización se pueden etiquetar los amplímeros. De las diversas posibilidades en la presente invención se prefiere el etiquetado biotina de los iniciadores y el uso de iniciador etiquetado en reacciones de amplificación. En presencia de avidina o estreptavidina absorbida a la biotina de fase sólida da lugar a la inmovilización del amplímero, como una consecuencia del enlazamiento de avidina-biotina altamente específico y muy estable. En una reacción dada solo iniciadores que hibridicen una u otra cadena se biotinilan para que la otra cadena se pueda retirar antes de hibridación.
Para propósitos de detección las sondas se pueden etiquetar y sus etiquetas se pueden detectar mediante diversos métodos, por ejemplo mediante métodos de detección que se basen en fluorescencia, radioactividad, colorimetría, difracción de rayos X, absorción, magnetismo, actividad de la enzima, etc. Por lo tanto el etiquetado adecuado puede incluir pero no limitarse a lo siguiente: fluoroforos, cromóforos, isótopos, substancias electrodensas, enzimas o ligandos capaces de formar enlazamiento específico. También se puede usar una combinación de los sistemas mencionados arriba. En la presente invención se prefiere el enlazamiento específico de fluoresceína con anticuerpo HRPO anti-fluoresceína que se detecta mediante la reacción de oxidación de peroxidasa de rábano en la presencia de substrato de HPPA y H_{2}O_{2} (ver ejemplo 2). En la presente invención se usan iniciadores delanteros o invertidos. Tanto el etiquetado de las sondas como la HRPO anti-fluoresceína se encuentran disponibles comercialmente. Los químicos necesarios para los lavados y las diversas soluciones también se encuentran disponibles por lo general. Se puede armar o usar un sistema que usa fosfatasa alcalina o cualquier otra enzima cuya actividad se pueda detectar. Además de la detección fluorescente, la luminometría y colorimetría también son métodos de detección aceptables para aplicación de diagnóstico médico del sistema.
Incluir un control interno durante la aplicación de diagnóstico del método de la invención brinda la posibilidad de reconocer reacciones falsas negativas y se prefiere desde un punto de vista de diagnóstico. Se pueden usar diversas fuentes de ADN natural o artificial para control interno. Se prefieren aquellos sistemas que no aumenten el número de los iniciadores usados en la reacción y se estandarizan adecuadamente la cantidad y las propiedades analíticas del ácido nucleico objetivo. En la presente invención a la muestra se adiciona una secuencia artificial de ácido nucleico (SEQ. ID. NO: 68) en forma de plasmida recombinante (ejemplo 6). En la presente invención la detección del control interno se lleva a cabo paralelamente con la detección de hibridación de ADNA de HPV, y solo se separa el desarrollo de los substratos. La sonda se etiqueta con digitoxigenina (SEQ. ID. NO: 69) y detectable con fosfatasa alcalina conjugada con anticuerpo anti-digitoxigenina. Sin embargo también son adecuadas otras técnicas de detección para detección de sonda interna.
Pero la detección del control interno también se puede llevar a cabo con base en las diferencias de movilidad, usando electroforesis de gel agarosa u otra técnica adecuada.
Para la amplificación y la detección de ADN de HPV el método de la presente invención es adecuado para producir una unidad armonizada de los reactivos (kit). En esta forma el kit contiene todos los siguientes reactivos o cualquier combinación de ellos, y otros reactivos: iniciadores, mezcla de iniciadores, búferes, polimerasa termostable, ADN de HPV de control positivo, ADN de no HPV, ADN de control interno, sondas o mezcla de sondas, conjugado anticuerpo-enzima.
La descripción de secuencias de los iniciadores y sondas de la invención es solo ilustrativa. Se pueden diseñar muchas variantes de sondas tanto genéricas como de tipo específico usando la región genómica de HPV de tipo específico, para aquellos versados en el arte, por lo tanto las variaciones en cuanto sean elegidas de la región genómica de la invención están cubiertas por el alcance de la presente invención.
La invención se presenta en más detalle con los siguientes ejemplos. Aunque el método, que es la base de la invención es aplicable a la amplificación de cualquier genoma de HPV, en los siguientes ejemplos solo se usan genomas de HPV genital, que son de mayor importancia médica. Se debe notar que los ejemplos son solo ilustrativos y no deben considerarse como limitantes del alcance de la invención.
Ejemplo 1 Síntesis de iniciadores oligonucleótidos
Los iniciadores oligonucleosidos usados en el método de la invención fueron de fuentes comerciales (IDT, USA). Los iniciadores se sintetizaron con un grupo amino 5'. Se usó éster NHS para etiquetado de biotina, fluoresceína y digitoxigenina. Los nucleótidos etiquetados se purificaron con HPLC.
Ejemplo 2 Procesamiento de los especímenes, preparación de ADN
Se tomaron muestras por parte de ginecólogos usando citoescobilla, se transportaron muestras en solución PBS (Salmuera de fosfato tamponada de 10 mM pH=7,4, Sigma, NaCl 138 mM, KCl 2,7 mM). Se hizo pretratamiento de las muestras en los tubos de muestreo: antes de lisado las muestras se centrifugaron (2000 g, 10 minutos), se descartaron los sobrenadantes y se adicionó 1 ml de solución de PBS, se pasó por vórtex, se centrifugó, descartando el sobrenadante. Al final del proceso se adicionaron 250 \mul de solución para lisado a las muestras (proteinase-K 0,5 mg/ml, 0,01 M TRIS-HCl pH=8, 0,001 M EDTA pH=8, en agua destilada), cuya solución contiene el control interno de la prueba de HPV (SEQ. ID. NO: 68), se pasó por el vórtex y se incubó por 30 minutos a 56ºC. A partir de este punto todas las tareas de manipulación se llevaron a cabo en el robot TECAN RSP150, se añadieron 200 \mul de solución de enlazamiento (5,5 M GUSCN, 20 mM EDTA, 10 mM TRIS-HCl pH=6,5, 65 mM ditiotreitol, 40 g/l sílice, SIGMA Cat. No.: 28,851-3, agua destilada), y el sílice se preparó mediante filtración al vacío a partir de los componentes solubles. Se usó de nuevo filtración para lavar el sílice dos veces con 200 \mul de solución de enlazamiento sin sílice (5,5 M GUSCN, 20 mM EDTA, 10 mM TRIS-HCl pH=6,5, 65 mM ditiotreitol, agua destilada), y se usan dos veces 200 \mul de solución de lavado (25% de isopropilalcohol, 25% de etanol al 96%, 50% de agua destilada, 0,1 M NaCl), finalmente se aplica con 200 \mul etanol al 96%. Después de secar al aire, se eluyó ADN en 200 \mul de solución TRIS a un pH=8,0. El ADN se almacena congelado a -20ºC hasta su uso posterior.
Ejemplo 3 Descripción general de la detección de HPV Amplificación
El volumen total de reacción fue de 25 \mul, incluyendo los siguientes componentes: 10 \mul de ADN, 2,5 \mul 10X búfer de polimerasa (concentración final: 10 mM de TRIS-HCl (pH=9,0), 50 mM KCl, 0,1% Triton X-100 (Promega)), 2 mM MgCl_{2}, cada dNTP (ATP, CTP, GTP, TTP) de 250 \muM, 4 \muM de una mezcla de iniciadores: SEQ. ID. NO: 35, 37-40, 73-75, y 1U de Taq polimerasa de ADN (Promega). La reacción se llevó a cabo en un ciclador térmico GeneAmp 9700 PCR, con los siguientes parámetros:
Ciclo 1: 4 minutos a 95ºC;
Ciclos 2-40: 30 segundos a 94ºC, 1 minuto a 48ºC y 45 segundos a 72ºC;
Ciclo 41: 3 minutos a 72ºC.
Hibridación y detección
La hibridación se llevó a cabo en fase sólida. 24 horas antes las placas de poliestireno de 96 ozos (Costar) se cubrieron con estreptavidina (0,02 mg/ml de estreptavidina en solución de PBS). Se incubaron las placas a temperatura ambiente y 24 horas más tarde las placas se lavaron dos veces con 250 \mul de solución de lavado [25 mM TRIS pH=7,5, 125 mM NaCl, 20 mM MgCl_{2}, 3% Tween-20]. Se diluyeron 20 \mul del producto de la reacción de PCR con 140 \mul de agua destilada, y se mezclaron 5 \mul de esta solución con 45 \mul de búfer de enlazamiento [25 mM TRIS pH=7,5, 125 mM NaCl, 5 mM EDTA-Na2, 5X de solución de Denhardt, 0,1% Tween-20] y se dispensó a los pozos de la plaqueta revestida de estreptavidina. La reacción se incubó a temperatura ambiente por 30 minutos, con agitación constante. Luego se adicionaron 50 \mul de búfer de elución [100 mM NaOH, 300 mM NaCl] a la mezcla, incubada por 3 minutos a temperatura ambiente, y las placas se lavaron 3 veces con 250 \mul de solución de lavado [25 mM TRIS pH=7,5, 125 mM NaCl, 20 mM MgCl_{2}, 3% Tween-20]. Después de lavar el búfer de hibridación (5xSSC (0,3 M citrato de Na pH=7, 3 M NaCl), solución de 1xDenhardt, 0,1% SDS], que contiene sondas etiquetadas de fluoresceína (5 nM por sonda) se adicionó a los pozos. La mezcla se incubó por 30 minutos a 50ºC con agitación constante, y se lavó 6 veces con 250 \mul de solución de lavado con alta astringencia [0,05 x SSC, 0,3% Tween-20]. Después de esto a la reacción se añadieron 50 \mul de búfer de conjugación [25 mM TRIS pH=7,5, 125 mM NaCl, 2 mM MgCl_{2}, 0,3% Tween-20, 1% BSA], que contiene anticuerpo POD antifluorescente (Roche) (0,0015 E/reacción). Las placas se incubaron por 30 minutos a temperatura ambiente con agitación y se lavaron 6 veces con 250 \mul de solución de lavado de alta astringencia [25 mM TRIS pH=7,5, 125 mM NaCl, 20 mM MgCl_{2}, 3% Tween-20]. Para desarrollo se añadieron 135 ml de solución substrato (5 volúmenes [45 mM ácido hidroxifenil-propiónico (HPPA), disueltos en búfer 0,1 M TRIS-HCl pH=9,0], + 1 volumen [0,6 g/l H_{2}O_{2} en búfer citratao fosfato de 20 mM]). Para detener la reacción se agregaron 65 \mul de solución de detención [0,75 M glicina pH=10,3] a la mezcla de reacción después de 20 minutos. La señal fluorescente se midió con fluorómetro de placas SpectraMax a 324/410 nm. Las muestras se consideraron positivas si su valor era más alto que tres veces el promedio de 3 valores de muestra de control paralela negativa.
Ejemplo 4 Estudio comparativo de amplificación
Las muestras se picaron a razón de 10 ng/reacción por plasmidas que contienen una región clonada HPV L1 de diferentes genotipos y usada para amplificar y detectar ADN HPV mediante el método de la invención. La reacción e hibridación PCR se llevó a cabo de acuerdo con la descripción del ejemplo 3, con la diferencia de que la composición de los iniciadores fue cambiada. La reacción sin el L1F2 (SEQ. ID. NO: 37) no dio lugar a amplificación con el genotipo HPV 35, mientras que usar iniciador L1F2 dio lugar a la detección efectiva del genotipo HPV 35.
Ejemplo 5 Detección de varios genotipos de HPV
Se picaron muestras a razón de 10 ng/reacción por plasmidas que contienen la región HPV L1 clonada de diferentes genotipos y se usó para amplificar y detectar ADN HPV por el método de la invención. La reacción e hibridación PCR se realizó de acuerdo con el ejemplo 3. Se emprendió la amplificación y tipificación de los siguientes genotipos de HPV: 1-24, 26-42, 45, 47-68, 72-74, 76-77, 86. La amplificación de los siguientes genotipos se demostró con electroforesis de gel agarosa: 3, 6-7, 10-11, 13-14, 16, 18, 20, 24, 26, 29, 30-36, 39-40, 42, 45, 51, 52-55, 58-62, 66-68, 72. Usando la mezcla de las sondas de gen específico SEQ. ID. NO: 41-49 (usando las condiciones descritas en el ejemplo 3) los siguientes genotipos fueron detectables: 3-4, 6-7, 9-14, 16, 18, 20, 24, 26, 29, 30-37, 39-42, 45, 51, 52-55, 58-62, 66-68, 72, 74, 77. Los datos muestran que una porción de los genotipos puede detectarse solo mediante hibridación, lo cual no es sorprendente, puesto que la hibridación es cerca de 10-100- veces más sensible que la electroforesis de gel agarosa. También se puede ver a partir de los datos que la hibridación de gen específico sí detectó todos los genotipos positivos de electroforesis de gel agarosa indicando su verdadera naturaleza de gen específico.
Ejemplo 6 Detección del tipo HPV-35
Las muestras se picaron a razón de 10 ng/reacción por plasmidas que contienen la región HPV L1 clonada desde diferentes genotipos y usada para amplificar y detectar ADN de HPV mediante el método de la invención. La reacción e hibridación PCR se llevaron a cabo de acuerdo con la descripción del ejemplo 3. la sonda de hibridación fue el oligonucleótido diseñado para el genotipo HPV 35 (SEQ. ID. NO: 58). Se emprendió la detección de amplímeros de los siguientes genotipos: 3-4, 6-7, 9-14, 16, 18, 20, 24, 26, 29, 30-37, 39-42, 45, 51, 52-55, 58-62, 66-68, 72, 74, 77. La sonda detectó solo el amplímero de genotipo HPV 35 correspondiente.
Ejemplo 7 Detección de HPV con control interno
La detección de las muestras preparadas de acuerdo con el ejemplo 2 se llevó a cabo de acuerdo con el ejemplo 3, con la diferencia de que la sonda del control internó etiquetada con digitoxigenina (su cantidad fue la misma que las sondas de tipo específico) fue empleada con las sondas de tipo específico y los anticuerpos de POD anti-fluoresceína y ALP anti-alp [1:2000, Jackson Immuno Research] estaban simultáneamente presentes en el paso de conjugación. Después del desarrollo de la reacción de POD (ver ejemplo 2), se realizó desarrollo de ALP de acuerdo con lo siguiente: la solución substrato era 6,25 mg/100 ml de 4-metil-umbeliferil-fosfato en 100 mM de TRIS pH=9,0; 0,5 mM de búfer MgCl_{2}. Después del desarrollo de la HPPA se lavó una vez la placa de microtitulación con [25 mM TRIS pH=7,5, 125 mM NaCl, 20 mM MgCl_{2}, 3% Tween-20], y se adicionaron 150 \mul de solución substrato a cada uno de los pozos de reacción. Después de 30 minutos de incubación se midió la señal fluorescente con un fluorómetro de placa SpectraMax a 355/460 nm. Las muestras fueron consideradas positivas si su valor era mayor de tres veces el promedio de 3 valores de muestra de control positiva paralela.
Las sondas de tipo específico detectaron los tipos adecuados solamente. La detección del control interno fue positivo en cada reacción excepto en aquellas reacciones donde ocurrió una fuerte competencia entre la amplificación de HPV y el control interno. No hubo reacciones inhibidas. (ADN de HPV o ADN de control interno amplificado en todas las muestras). El control interno excluyó adecuadamente la posibilidad de resultados falsos negativos.
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Takács, Tibor
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatataggg tatttagggt t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF33)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgtt ttccatattt tttta
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR33)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatataggg tttttagggt c
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF35)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaagcta tcccatattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR35)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatacagag tatttagagt a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF39)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgta ttccctattt ttttc
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR39)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatataggg tatttcgcgt g
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF45)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgta ttccctattt ttttg
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR45)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cagtataggg tgtttagagt a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF51)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgta taccctattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR51)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatacaggg tatttagggt a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF52)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gcgtaaacgt tttccatatt ttttt
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR52)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatacaggg tatttagaat t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF56)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgta ttccctattt ttttt
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR56)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tcaatatagg gtatttaggg ta
\hfill
22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF58)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
acgtaaacgt tttccatatt ttttt
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR58)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cagtataggg tctttagggt g
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF59)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgtg ttccctattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR59)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatacagag tatttagggt t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF66)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ccgtaaacgt attccctatt ttttt
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR66)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cagtatagag tgtttagggt a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CF68)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacacc ttccttattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1CR68)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatacagag tgtttagggt t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1F2)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaagcta taccatattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1F3)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacacg ttccatattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1F4)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgtg tttcctattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1R2)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cagtacagag tttttagaat t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK1)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaaca tattttatta tgg
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK2)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tctattatta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK3)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK4)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccagta tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK5)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tttactatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK6)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaact acttttacca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK7)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaccagta ttttctacca cgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK8)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaggca tatattacta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sonda de hibridación de gen específico (PK9)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaaca tatattatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-6 sonda de hibridación de tipo específico (P6)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttttgttagc ccgttttatg
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-11 sonda de hibridación de tipo específico (P11)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
acaactgttt ttgttaactt ttt
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-42 sonda de hibridación de tipo específico (P42)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgtcttattt ggcctttttg
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-44 sonda de hibridación de tipo específico (P44)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtcttgtttg ctggtcgtat
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-16 sonda de hibridación de tipo específico (P16)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ctaatatttt gttattgtta ggttt
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-18 sonda de hibridación de tipo específico (P18)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tatcctgctt attgccacc
\hfill
19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-31 sonda de hibridación de tipo específico (P31)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ggattgtcag atttaggtat gg
\hfill
22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 57
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-33 sonda de hibridación de tipo específico (P33)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tttttagcgt tagtaggatt ttt
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 58
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-35 sonda de hibridación de tipo específico (P35)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 58
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgctatttta ttagaatctt gtttt
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-39 sonda de hibridación de tipo específico (P39)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
accaccattc atacccact
\hfill
19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 60
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-45 sonda de hibridación de tipo específico (P45)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 60
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
acctgcacca ttaggtacaa
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-51 sonda de hibridación de tipo específico (P51)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 61
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gcgttgaggt tttaggtatt
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 62
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-52 sonda de hibridación de tipo específico (P52)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 62
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caattaccac tactggtgtt t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 63
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-56 sonda de hibridación de tipo específico (P56)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 63
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgtttgtttt ggtattgtcc t
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-58 sonda de hibridación de tipo específico (P58)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gttattggga cttttgatgg
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-59 sonda de hibridación de tipo específico (P59)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tcctgtctac cattaccacc
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-66 sonda de hibridación de tipo específico (P66)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttggtaccag atttggaaac
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-68 sonda de hibridación de tipo específico (P68)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cccagacata ggaaccttaa
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 198
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Molécula de oligonucleótido de control interno
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\vskip1.000000\baselineskip
100
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Sonda de hibridación de amplímero específico de control interno (IC-P1)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgacatagat ccccatagac a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1F5)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgta ttccctattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1F6)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgtt ttccatattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1R3)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cagtacagag tttttagagt g
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1C1)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaaacgtt ttccctattt tttt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (L1C2)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatacagag tatttagggt a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> PCR iniciador (new L1C2)
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caatataggg tatttagggt a
\hfill
21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 76
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Tipo 6 de virus papiloma humano
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Sitio de enlazamiento de sonda de gen específico de amplímero HPV-6
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 76
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaaca tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Tipo 6 de virus papiloma humano
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Sitio de enlazamiento de sonda de tipo específico de amplímero HPV-6
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ccttattttt ccataaaacg ggctaacaaa actgttgtg
\hfill
39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Papiloma virus humano tipo 11
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Sitio de enlace de sonda de gen específico de amplímero HPV-11
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaaca tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Papiloma virus humano tipo 11
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> Característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Sitio de enlace de sonda de tipo específico de amplímero HPV-11
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ccatattact ctatcaaaaa agttaacaaa acagttgta
\hfill
39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 42
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-42
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaact acttttacca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 42
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-42
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ccttattact ctattacaaa aagccaaata agacatctat cc
\hfill
42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 44
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-44
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccaaca tatattacca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 44
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-44
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ccttattttg ccatacgacc agcaaacaag acacttgtg
\hfill
39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 84
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 16
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-16
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 84
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaaaca tatattatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 85
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 16
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-16
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 85
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttttcctatt aaaaaaccta acaataacaa aatattagtt
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 86
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 18
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-18
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 86
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cccacaagca tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 18
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-18
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 87
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
attttagggt tcctgcaggt ggtggcaata agcaggatat t
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 88
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 31
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-31
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 88
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgaaccaaca tatattatca cgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 89
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 31
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV -31
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 89
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttccatacct aaatctgaca atcctaaaaa aatagttgta
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 33
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-33
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 90
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tttattatta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 91
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 33
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-33
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 91
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttctattaaa aatcctacta acgctaaaaa attattggta
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 92
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 35
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-35
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 92
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaaaca tctactatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 35
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-35
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 93
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ctatgctatt aaaaaacaag attctaataa aatagcagta
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 94
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 39
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-39
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 94
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaggca tatattatta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 95
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 39
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-39
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 95
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
attttaaagt gggtatgaat ggtggtcgca agcaggacat t
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 96
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 45
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-45
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 96
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 97
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 45
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-45
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 97
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tagggttgta cctaatggtg caggtaataa acaggctgtt
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 98
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 51
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-51
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 98
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcaccggca tatattacta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 99
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 51
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-51
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 99
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ctattttcca atacctaaaa cctcaacgcg tgctgctatt
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 100
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 52
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> HPV-_52 sitio de enlace de gen específico de amplímero
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 100
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tctattatta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 101
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 52
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-52
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 101
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
taaaaacacc agtagtggta atggtaaaaa agttttagtt c
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 102
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 56
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-56
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 102
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcactagta tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 103
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 56
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-56
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 103
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ctattactct gtgactaagg acaataccaa aacaaacatt c
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 104
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 58
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-58
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 104
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcacaagca tttattatta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 105
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 58
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-58
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 105
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttccatcaaa agtcccaata acaataaaaa agtattagtt c
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 106
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 59
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-59
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 106
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaccagta ttttctacca cgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 107
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 59
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-59
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 107
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttttaaagta cctaaaggtg gtaatggtag acaggatgtt c
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 108
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> virus papiloma humano Tipo 66
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-66
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 108
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgtaccagta tattttatca tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 109
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> virus papiloma humano Tipo 66
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-66
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 109
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttattactct gtttccaaat ctggtaccaa aacaaacatc c
\hfill
41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 110
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> virus papiloma humano Tipo 68
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de gen específico de amplímero HPV-68
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 110
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgcactggca tgtattacta tgc
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 111
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> virus papiloma humano Tipo 68
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> sitio de enlace de tipo específico de amplímero HPV-68
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 111
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttttaaggtt cctatgtctg ggggccgcaa gcagggcatt
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 112
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 244
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 44
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-44
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 112
\vskip1.000000\baselineskip
1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 113
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 253
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-35
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 113
\vskip1.000000\baselineskip
2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 114
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 253
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 39
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-39
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 114
\vskip1.000000\baselineskip
3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 115
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 256
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 45
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-45
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 115
\vskip1.000000\baselineskip
4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 250
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 51
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-51
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 116
\vskip1.000000\baselineskip
5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 250
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 56
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-56
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 117
\vskip1.000000\baselineskip
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 253
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus papiloma humano tipo 59
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-59
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 118
\vskip1.000000\baselineskip
7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 250
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Tipo 6 de virus papiloma humano 6
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-66
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 119
\vskip1.000000\baselineskip
8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 253
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Tipo 6 de virus papiloma humano 8
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> característica misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> amplímero HPV-68
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 120
\vskip1.000000\baselineskip
9

Claims (9)

1. Mezcla de iniciador de amplificación, donde dicha mezcla consiste de los iniciadores L1C1, L1C2, nuevoL1C2 que tienen SEQ. ID. NOS. 73-75, respectivamente, iniciadores que tienen SEQ. ID. NOS. 37-70, y SEQ ID NO. 35 y opcionalmente uno o más iniciadores seleccionados del grupo consistente de SEQ. ID. NOS: 70-72, SEQ. ID. NOS: 1-34 y 36.
2. Uso de la mezcla de iniciadores de la reivindicación 1 para la amplificación de los genotipos 3, 4; 6, 7, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 16,18, 20, 24, 26, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 39, 40, 41, 42, 44, 45, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 58, 59, 60, 61, 66, 67, 68, 72, 74 y 77 del virus papiloma humano.
3. Método para detector uno o más genotipos de HPV en una muestra biológica, que comprende los pasos de:
a) Preparar uno o más amplímeros (amplicons) usando la mezcla de iniciadores de la reivindicación 1 a partir de moléculas de ácido nucleico extraídas de la muestra biológica; y
b1) Hibridizar el amplímero obtenido en (a) en condiciones severas con una sonda de hibridación de genotipo específico; y opcionalmente
b2) Hibridizar el amplímero obtenido en (a) en condiciones severas con una sonda de gen específico de HPV.
4. El método tal como se reivindica en la reivindicación 3 donde dicha sonda de gen específico de HPV es:
i) una sonda consensual o iniciador de HPV que hibridiza a cualquiera de la SEQ. ID NOS. 76, 78, 80, 82, 84, 86, 88, 90, 92. 94, 96, 98, 100, 102, 104, 106, 108, ó 110;
ii) una sonda complementaria a la sonda en (i); ó
iii) cualquiera de SEQ. ID NOS. 41-49.
5. El método tal como se reivindica en la reivindicación 3 donde dicha sonda de hibridación de genotipo específica es:
i) una sonda de genotipo específico de HPV que hibridiza a cualquiera de SEQ. ID NOS. 77, 79, 81, 83, 85, 87, 89, 91, 93, 95, 97, 99, 101, 103, 105, 107, 109 ó 111;
ii) una sonda complementaria a (i); o
iii) cualquiera de SEQ. ID NOS. 50-67.
6. El método de cualquiera de las reivindicaciones 3 a 5, donde se detectan los grupos de genotipo de HPV de bajo y alto riesgo.
7. El método tal como se reivindica en cualquiera de las reivindicaciones 3 a 6, comprendiendo además un oligonucleótido sintético en calidad de control interno.
8. El método de la reivindicación 7, en el cual la secuencia SEQ. ID. NO: 68 se usa en calidad de control interno y para detector esto se usa SEQ. ID. NO: 69 en calidad de sonda de hibridación.
9. Un kit para detectar y tipificar HPV, que incluye
i) la mezcla de iniciadores de la reivindicación 1;
ii) opcionalmente un iniciador de control interno;
iii) sondas de hibridación que comprenden o hibridizan hasta cualquiera de SEQ ID NOS. 77, 79, 81, 83, 85, 87, 89, 91, 93, 95, 97, 99, 101, 103, 105, 107, 109 or 111 y opcionalmente cualquiera de SEQ. ID NOS. 76, 78, 80, 82, 84, 86, 88,90, 92, 94, 96, 98, 100, 102, 104, 106, 108, ó 110; y
iv) opcionalmente sondas de hibridación para detectar el control interno.
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