ES2274566T3 - Genes gag del vih sinteticos. - Google Patents
Genes gag del vih sinteticos. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2274566T3 ES2274566T3 ES98904971T ES98904971T ES2274566T3 ES 2274566 T3 ES2274566 T3 ES 2274566T3 ES 98904971 T ES98904971 T ES 98904971T ES 98904971 T ES98904971 T ES 98904971T ES 2274566 T3 ES2274566 T3 ES 2274566T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- hiv
- gag
- gene
- dna
- expression
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
- A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
- A61P31/18—Antivirals for RNA viruses for HIV
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
- A61P37/02—Immunomodulators
- A61P37/04—Immunostimulants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
- C07K14/08—RNA viruses
- C07K14/15—Retroviridae, e.g. bovine leukaemia virus, feline leukaemia virus human T-cell leukaemia-lymphoma virus
- C07K14/155—Lentiviridae, e.g. human immunodeficiency virus [HIV], visna-maedi virus or equine infectious anaemia virus
- C07K14/16—HIV-1 ; HIV-2
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2319/00—Fusion polypeptide
- C07K2319/01—Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
- C07K2319/02—Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal sequence
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2740/00—Reverse transcribing RNA viruses
- C12N2740/00011—Details
- C12N2740/10011—Retroviridae
- C12N2740/16011—Human Immunodeficiency Virus, HIV
- C12N2740/16211—Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV gagpol
- C12N2740/16222—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- AIDS & HIV (AREA)
- Zoology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Oncology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Se proporcionan moléculas de ADN sintéticas que codifican del gag VIH y modificaciones de gag VIH. Los codones de las moléculas sintéticas son los preferidos por la célula huésped estudiada. Las moléculas sintéticas se pueden usar como una vacuna polinucleotídica que proporciona una inmunoprofilaxis efectiva contra la infección por VIH mediante la estimulación de un anticuerpo neutralizante y la inmunidad por mediación celular.
Description
Genes gag del VIH sintéticos.
No se aplica.
No se aplica.
No se aplica.
Vacunas contra el VIH.
El virus de la inmunodeficiencia humana 1
(VIH-1) es el agente etiológico del síndrome de
inmunodeficiencia adquirida humana (SIDA) y afecciones
relacionadas. El VIH-1 es un virus de ARN de la
familia Retroviridae y muestra la organización
5'LTR-gag-pol-env-LTR3' de
todos los retrovirus. Además, el VIH-1 comprende
unos pocos genes con funciones reguladoras o desconocidas,
incluyendo los genes tat y rev. El gen env
codifica la glicoproteina de la envoltura vírica, que se traduce
como un precursor de 160 kilodalton (kDa) (gp160), cortado después
por una proteasa celular para dar lugar a la glicoproteina externa
de 120 kDa de la envoltura (gp120) y a la glicoproteína
transmembrana de 41 kDa de la envoltura (gp41). Las proteínas gp120
y gp41 se mantienen asociadas y se exponen en las partículas víricas
y en la superficie de las células infectadas por el VIH. La
proteína gp120 se une al receptor CD4 presente en la superficie de
los linfocitos T auxiliares, macrófagos y otras células diana.
Después de que gp120 se une a CD4, gp41 media la fusión responsable
de la entrada del virus.
La infección comienza cuando la proteína gp120
de la partícula vírica se une al receptor CD4 en la superficie de
los linfocitos T4 u otras células diana. El virus unido se fusiona
con la célula diana y transcribe de forma inversa su genoma de ARN
en el ADN de doble cadena de la célula. El ADN vírico se incorpora
en el material genético en el núcleo celular, donde dicho ADN
vírico dirige la producción de nuevo ARN vírico, proteínas víricas
y nuevas partículas víricas. Las nuevas partículas brotan a partir
de la membrana de la célula diana e infectan otras células.
La destrucción de los linfocitos T4, que son
críticos para la defensa inmunitaria, es una causa principal de la
progresiva disfunción inmunitaria que es la característica de la
infección por el VIH. La pérdida de células diana reduce gravemente
la capacidad del cuerpo de combatir a la mayor parte de los
invasores, pero tiene un impacto particularmente grave en las
defensas contra virus, hongos, parásitos y algunas bacterias,
incluyendo las micobacterias.
El VIH-1 mata las células que
infecta al replicarse, brotar de ellas y dañar la membrana celular.
El VIH-1 puede matar a las células diana
indirectamente por medio de la proteína vírica gp120 expuesta en la
superficie de una célula infectada. Dado que el receptor CD4 en las
células T tiene una fuerte afinidad por gp120, las células sanas
que expresan el receptor CD4 pueden unirse a gp120 y fusionarse con
células infectadas para formar un sincitio.
El VIH-1 puede desencadenar
también defensas inmunitarias celulares normales contra las células
infectadas. Con o sin la ayuda de anticuerpos, las células
defensivas citotóxicas pueden destruir una célula infectada que
expone proteínas víricas en su superficie. Finalmente, las proteínas
gag y gp120 libres pueden circular en la sangre de individuos
infectados por el VIH-1. La proteína gp120 libre
puede unirse al receptor CD4 de células sin infectar, haciéndolas
parecer infectadas y provocando una respuesta inmunitaria.
La infección por el VIH-1 es
casi siempre fatal y actualmente no hay cura para dicha infección
por el VIH-1. Todavía no se dispone de vacunas
eficaces para la prevención de la infección por el
VIH-1. Debido al peligro de reversión o de
infección, probablemente los virus vivos atenuados no pueden usarse
como vacuna. Los tratamientos de la infección por el
VIH-1, aunque prolongan las vidas de algunas
personas infectadas, tienen graves efectos secundarios. Por lo
tanto, existe una gran necesidad de tratamientos efectivos y vacunas
para combatir esta infección letal.
La vacunación es una forma eficaz de prevención
de enfermedades y ha demostrado tener éxito contra varios tipos de
infecciones víricas. La determinación de los modos de presentar los
antígenos del VIH-1 al sistema inmunitario humano
para provocar una inmunidad protectora humoral y celular es una
tarea difícil. Hasta la fecha, los intentos de generar una vacuna
eficaz contra el VIH no han tenido éxito. En los pacientes con SIDA
sólo hay virus libres a bajos niveles. La transmisión del
VIH-1 se potencia por las interacciones
célula-célula mediante fusión y formación de
sincitios. Por tanto, los anticuerpos generados contra los virus o
subunidades víricas libres son generalmente inefectivos para
eliminar las células infectadas por los virus.
Las vacunas explotan la capacidad del cuerpo de
"recordar" un antígeno. Después de los primeros encuentros con
un antígeno dado, el sistema inmunitario genera células que retienen
una memoria inmunológica del antígeno durante toda la vida del
individuo. La exposición posterior al antígeno estimula la respuesta
inmunitaria y resulta en la eliminación o inactivación del
patógeno.
El sistema inmunitario combate a los patógenos
de dos maneras: mediante la respuesta humoral y la respuesta
mediada por células. En la respuesta humoral, los linfocitos generan
anticuerpos específicos que se unen al antígeno, inactivando así al
patógeno. La respuesta mediada por células implica a los linfocitos
T citotóxicos y auxiliares que atacan y destruyen específicamente
las células infectadas.
El desarrollo de vacunas con el virus
VIH-1 presenta problemas porque el
VIH-1 infecta algunas de las mismas células que la
vacuna necesita activar en el sistema inmunitario (es decir, los
linfocitos T4). Sería ventajoso desarrollar una vacuna que
inactivase el VIH antes de producirse el daño en el sistema
inmunitario. Un tipo particularmente apropiado de vacuna contra el
VIH generaría una respuesta inmunitaria anti-VIH que
reconociera las variantes del VIH y que funcionara en individuos
VIH positivos que se hallan al principio de la infección.
Un reto muy importante en el desarrollo de
vacunas contra virus, particularmente contra aquéllos con una tasa
de mutación muy elevada como el virus de la inmunodeficiencia
humana, contra los que es deseable el desencadenamiento de las
respuestas inmunitarias neutralizante y protectora, es la diversidad
de las proteínas de la envoltura vírica entre distintos
aislamientos o cepas víricos. Dado que, tanto en ratones como en
humanos, los linfocitos T citotóxicos (LTC) son capaces de
reconocer los epítopos derivados de proteínas víricas internas
conservadas, y se piensa que son importantes en la respuesta
inmunitaria contra los virus, se han hecho esfuerzos dirigidos al
desarrollo de vacunas de LTC capaces de proporcionar protección
heteróloga contra distintas cepas víricas.
Se sabe que los LTC CD8+ matan las células
infectadas víricamente cuando sus receptores de células T reconocen
los péptidos víricos asociados con las moléculas del CMH de clase I.
Los péptidos víricos derivan de proteínas víricas sintetizadas
endógenamente, independientemente de la localización de dichas
proteínas o de su función en el virus. Por tanto, al reconocer los
epítopos de las proteínas víricas conservadas, los LTC pueden
proporcionar protección cruzada entre cepas. Los péptidos capaces
de asociarse con el CMH de clase I para el reconocimiento de los
LTC se originan a partir de proteínas que están presentes en o pasan
a través del citoplasma o el retículo endoplásmico. En general, las
proteínas exógenas que entran en la ruta de procesamiento endosómico
(como en el caso de los antígenos presentados por las moléculas del
CMH de clase II) no son eficaces en la generación de respuestas de
LTC CD8+.
La mayoría de los esfuerzos para generar
respuestas de LTC han usado vectores que se replican para producir
el antígeno proteico dentro de la célula o se han centrado en la
introducción de péptidos en el citosol. Estos enfoques tienen
limitaciones que pueden reducir su utilidad como vacunas. Los
vectores retrovíricos presentan restricciones en cuanto al tamaño y
la estructura de los polipéptidos que pueden expresarse como
proteínas de fusión, manteniendo la capacidad de replicación del
virus recombinante, y la efectividad de los vectores como vaccinia
para inmunizaciones posteriores puede verse comprometida por las
respuestas inmunitarias contra los vectores mismos. Además, los
vectores víricos y los patógenos modificados poseen riesgos
inherentes que pueden dificultar su uso en humanos. Adicionalmente,
la selección de epítopos peptídicos para presentar depende de la
estructura de los antígenos del CMH del individuo y, por tanto, las
vacunas peptídicas pueden tener una efectividad limitada debido a
la diversidad de los haplotipos del CMH en poblaciones
exogámicas.
Benvenisty, N. y Reshef, L. [PNAS
83:9551-9555 (1986)] mostraron que el ADN
precipitado con CaCl_{2} introducido en ratones por vía
intraperitoneal (i.p.), intravenosa (i.v.) o intramuscular (i.m.)
podía expresarse. La inyección i.m. de vectores de expresión de ADN
sin tratamiento con CaCl_{2} en ratones resultó en la absorción
del ADN por las células musculares y la expresión de la proteína
codificada por el ADN. Los plásmidos se mantuvieron en forma
episomal y no se replicaron. Posteriormente se ha observado una
expresión persistente tras la inyección i.m. en el músculo
esquelético de ratas, peces y primates y en el músculo cardíaco de
ratas. La técnica del uso de ácidos nucleicos como agentes
terapéuticos se describió en el documento WO90/11092 (4 de octubre
de 1990), en el que se usaron polinucleótidos desnudos para vacunar
vertebrados.
Para el éxito del procedimiento no es necesario
que la inmunización sea por vía intramuscular. La introducción de
microproyectiles de oro recubiertos con el ADN que codifica la
hormona del crecimiento humano (hGH) en la piel de ratones resultó
en la producción de anticuerpos anti-hGH en dichos
ratones. Se ha usado un inyector a presión para la transfección de
los tejidos dérmico, muscular, adiposo y mamario de animales vivos.
Los diversos procedimientos para la introducción de ácidos
nucleicos han sido revisados. Zhu y col., [Science
261:209-211 (9 de julio de 1993)] demostraron
que la inyección por vía intravenosa de un complejo ADN:liposoma
catiónico en ratones resultaba en la expresión sistémica de un
transgén clonado. Ulmer y col., [Science
259:1745-1749 (1993)] describieron la
protección heteróloga contra la infección por el virus de la
influenza mediante la inyección intramuscular de un ADN que
codificaba proteínas del virus de la influenza.
La presente invención se enfrenta a la necesidad
de contar con agentes terapéuticos y profilácticos específicos
capaces de desencadenar las respuestas inmunitarias deseadas contra
patógenos y antígenos tumorales. En este enfoque terapéutico, es de
particular importancia la capacidad de inducir respuestas
inmunitarias de células T que puedan evitar las infecciones o
enfermedades causadas incluso por cepas víricas heterólogas respecto
a la cepa de la que se ha obtenido el gen antigénico. Esto es de
particular interés en el caso del VIH, ya que se ha observado que
este virus muta con rapidez y se han identificado muchos
aislamientos virulentos [véase por ejemplo, LaRosa y col.,
Science 249:932-935 (1990), con la
identificación de 245 aislamientos independientes del VIH]. En
respuesta a esta reconocida diversidad, los investigadores han
intentado generar LTC basados en inmunización peptídica. Así,
Takahashi y col., [Science 255:333-336
(1992)] describieron la inducción de células T citotóxicas de
amplia reactividad cruzada que reconocen un determinante de la
envoltura (gp160) del VIH. Sin embargo, estos investigadores
reconocieron la dificultad de conseguir una respuesta de LTC de
verdadera reactividad cruzada y sugirieron que existe una dicotomía
entre el cebado o la reestimulación de las células T, que es muy
estricto, y el desencadenamiento de la función efectora, incluyendo
la citotoxicidad, a partir de LTC ya estimulados.
Wang y col., informaron del desencadenamiento de
respuestas inmunitarias contra el VIH en ratones por inoculación
por vía intramuscular con un gen genómico (sin escindir) del VIH
clonado. Sin embargo, el nivel de respuestas inmunitarias
alcanzadas en estos estudios fue muy bajo. Además, la construcción
de ADN de Wang y col. utilizaba una pieza esencialmente genómica
del VIH, que contenía las secuencias contiguas codificantes de
Tat/rev-gp160-Tat/rev. Como se
describe en detalle a continuación, éste es un sistema subóptimo
para obtener un alto nivel de expresión de gp160. También es
potencialmente peligroso, porque la expresión de Tat contribuye a la
progresión del sarcoma de Kaposi.
El documento WO 93/17706 describe un
procedimiento para la vacunación de un animal contra un virus, en el
que las partículas portadoras se recubrieron con una construcción
génica y las partículas recubiertas se aceleraron para
introducirlas en las células del animal. Respecto al VIH, se propuso
el uso del genoma esencialmente completo, menos las repeticiones
terminales largas. Este procedimiento representa riesgos
sustanciales para los receptores. Generalmente se cree que las
construcciones del VIH deberían contener menos de aproximadamente
el 50% del genoma del VIH para garantizar la seguridad de la vacuna;
esto garantiza la eliminación de las fracciones enzimáticas y de
las proteínas reguladoras víricas, muchas de las cuales tienen
funciones desconocidas o poco comprendidas. Por tanto, aún quedan
muchos problemas para que una vacuna humana útil contra el VIH
surja de la tecnología de la transferencia
génica.
génica.
La presente invención contempla cualquiera de
los procedimientos conocidos para la introducción de polinucleótidos
en tejidos vivos para inducir la expresión de proteínas. Sin
embargo, esta invención proporciona un inmunógeno original para la
introducción del VIH y otras proteínas en la ruta de procesamiento
de antígenos para generar eficientemente LTC y anticuerpos
específicos para el VIH. El producto farmacéutico es efectivo como
vacuna para inducir las respuestas inmunitarias celular y humoral
anti-VIH y la respuesta inmunitaria neutralizante
del VIH. En la presente invención, se tratan y resuelven los
problemas mencionados anteriormente, proporcionando inmunógenos
polinucleotídicos que, al ser introducidos en un animal, dirigen la
eficiente expresión de las proteínas y epítopos del VIH sin los
riesgos acompañantes asociados con estos procedimientos. Las
respuestas inmunitarias así generadas son eficaces en el
reconocimiento del VIH, en la inhibición de la replicación del VIH,
en la identificación y destrucción de las células infectadas por el
VIH y presentan reactividad cruzada frente a muchas cepas del
VIH.
Los apareamientos de codones de los organismos
son muy poco aleatorios y difieren de organismo a organismo. Esta
información se usa para construir y expresar genes alterados o
sintéticos con los niveles deseados de eficiencia traduccional,
para determinar qué regiones en un genoma son regiones codificantes
de proteínas, para introducir sitios de pausa traduccional en genes
heterólogos y para establecer una relación o el orígen ancestral de
secuencias nucleotídicas.
La expresión de genes heterólogos extraños en
organismos transformados es ahora algo corriente. Un elevado número
de genes de mamíferos, incluyendo por ejemplo, genes murinos y
humanos, se ha insertado con éxito en organismos unicelulares. Las
técnicas convencionales a este respecto incluyen la introducción del
gen extraño que se ha de expresar en un vector, tal como un
plásmido o un fago, y la utilización de este vector para insertar
el gen en un organismo. Los promotores nativos de estos genes se
sustituyen normalmente por promotores fuertes compatibles con el
hospedador en el que se inserta el gen. La maquinaria para la
secuenciación de proteínas permite elucidar las secuencias de
aminoácidos de incluso cantidades mínimas de proteína nativa. A
partir de estas secuencias de aminoácidos pueden deducirse las
secuencias de ADN que codifican estas proteínas. La síntesis de ADN
es también una técnica en rápido desarrollo y es posible construir
fácilmente genes sintéticos que correspondan a estas secuencias de
ADN deducidas.
A pesar del conocimiento creciente de los
sistemas de expresión y del ADN recombinante, aún existen obstáculos
de importancia cuando se intenta expresar un gen extraño o
sintético en un organismo. Muchas proteínas nativas activas, por
ejemplo, se glicosilan de una forma diferente de la que tiene lugar
cuando se expresan en un hospedador extraño. Por esta razón, para
la expresión de muchos genes de mamíferos se prefieren hospedadores
eucarióticos, como las levaduras, a los hospedadores bacterianos. El
problema de la glicosilación es objeto de continua investi-
gación.
gación.
Otro problema se comprende peor. Frecuentemente,
la traducción de un gen sintético, incluso cuando está ligado a un
promotor fuerte, tiene lugar con mucha menor eficiencia de la
esperada. Lo mismo ocurre frecuentemente con genes exógenos,
extraños al organismo de expresión. Incluso cuando el gen se
transcribe de forma lo suficientemente eficiente como para producir
cantidades recuperables del producto de traducción, la proteína es
frecuentemente inactiva o diferente de otro modo en propiedades a
la proteína nativa.
\newpage
Se reconoce que el último problema se debe
normalmente a diferencias en el plegamiento de las proteínas en los
diversos organismos. La solución de este problema es difícil de
alcanzar y los mecanismos que controlan el plegamiento de las
proteínas no se comprenden bien.
Se cree que los problemas acerca de la
eficiencia traduccional están relacionados con efectos del contexto
de los codones. Las regiones codificantes de proteínas de los genes
en todos los organismos están sometidas a una amplia diversidad de
restricciones funcionales, algunas de las cuales dependen de la
necesidad de codificar una proteína que funcione adecuadamente, así
como las señales apropiadas para el inicio y la parada de la
traducción. Sin embargo, se han distinguido varias características
de las regiones codificantes de proteínas que no se comprenden
fácilmente desde el punto de vista de estas restricciones. Dos
clases importantes de estas características son aquéllas que se
refieren al uso de los codones y al contexto de los codones.
Se sabe que la utilización de los codones está
muy sesgada y varía considerablemente entre los diferentes
organismos. Se ha demostrado que los patrones de uso de los codones
guardan relación con la abundancia relativa de los ARNt
isoaceptores. Los genes que codifican proteínas muy abundantes
muestran diferencias en sus preferencias de codones frente a los
que codifican proteínas poco abundantes. Se ha discutido ampliamente
la posibilidad que los sesgos en el uso de los codones alteren las
velocidades de elongación de los péptidos. Mientras que las
diferencias en el uso de los codones están asociadas a diferencias
en las velocidades de traducción, los efectos directos de la
elección de los codones en la traducción han sido difíciles de
demostrar. Otras restricciones propuestas en los patrones de uso de
los codones incluyen maximizar la fidelidad de la traducción y
optimizar la eficiencia cinética de la síntesis de proteínas.
Aparte del uso no aleatorio de los codones, se
ha acumulado una evidencia considerable de que el reconocimiento
codón/anticodón se ve influido por secuencias fuera del codón mismo,
un fenómeno conocido como "contexto de codones". Existe una
intensa influencia de los nucleótidos cercanos en la eficiencia de
la supresión de los codones sin sentido así como de los codones de
sentido erróneo. Claramente, la abundancia de actividad supresora
en las poblaciones naturales de bacterias, así como el uso de
codones de "terminación" para la codificación de
selenocisteína y fosfoserina requiere que la terminación sea
dependiente del contexto. Se ha demostrado que efectos de contexto
similares influyen en la fidelidad de la traducción, así como en la
eficiencia de la iniciación de la traducción.
Los análisis estadísticos de las regiones de
codificación de proteínas de E. coli demuestran otra
manifestación del "contexto de codones". La presencia de un
codón particular en una posición influye intensamente en la
frecuencia de la presencia de ciertos nucleótidos en los codones
vecinos, y estas restricciones de contexto difieren notablemente en
los genes de alto nivel de expresión respecto a los de bajo nivel de
expresión. A pesar de que se ha reconocido el efecto del contexto,
el valor predictivo de las reglas estadísticas respecto a los
nucleótidos preferidos adyacentes a los codones es relativamente
bajo. Esto ha limitado la utilidad de estos datos de preferencia de
nucleótidos en la selección de codones para lograr los niveles
deseados de eficiencia traduccional.
La llegada del equipo automatizado de
secuenciación de nucleótidos ha hecho disponibles grandes cantidades
de datos de secuencias para una amplia diversidad de organismos. La
comprensión de estos datos presenta dificultades sustanciales. Por
ejemplo, es importante identificar las regiones codificantes del
genoma, para relacionar los datos de secuencia genética con
secuencias de proteínas. Además, la ascendencia del genoma de
ciertos organismos es de un interés sustancial. Se sabe que los
genomas de algunos organismos tienen una ascendencia mezclada.
Algunas secuencias de origen vírico se encuentran ahora incorporadas
de forma estable en el genoma de organismos eucarióticos. Las
secuencias víricas en sí mismas pueden haberse originado en otra
especie sin relación sustancial. La comprensión de la ascendencia
de un gen puede ser importante para establecer analogías adecuadas
entre genes relacionados y sus productos de traducción en otros
organismos.
Existe la necesidad de una mejor comprensión de
los efectos del contexto de los codones en la traducción y de un
procedimiento para determinar los codones apropiados para cualquier
efecto traduccional deseado. También existe la necesidad de un
procedimiento para identificar las regiones codificantes del genoma
a partir de los datos de secuencia nucleotídica. También existe la
necesidad de un procedimiento para controlar el plegamiento de las
proteínas y para asegurar que un gen extraño se plegará
adecuadamente al expresarse en un hospedador. Los genes modificados
o construidos de acuerdo con eficiencias traduccionales deseadas
serían de un valor significativo.
Otro aspecto de la práctica de las técnicas del
ADN recombinante para la expresión por microorganismos de proteínas
de interés industrial y farmacéutico es el fenómeno de la
"preferencia de codones". Mientras anteriormente se observó
que la maquinaria existente para la expresión génica en las células
hospedadoras transformadas genéticamente trabajará para construir
un producto deseado dado, los niveles de expresión alcanzados en un
microorganismo pueden estar sujetos a amplia variación, dependiendo
en parte de las formas alternativas específicas del código genético
de especificación de aminoácidos presentes en el gen exógeno
insertado. Un codón "triplete" de las cuatro bases
nucleotídicas posibles puede existir en 64 variantes. El que estas
formas proporcionen el mensaje para sólo 20 aminoácidos diferentes
(así como el inicio y la terminación de la transcripción) significa
que algunos aminoácidos pueden ser codificados por más de un codón.
En efecto, algunos aminoácidos tienen hasta seis codones
alternativos, "redundantes", mientras que algunos otros
requieren un único codón. Por razones que todavía no se comprenden
completamente, los codones alternativos no están presentes
uniformemente en absoluto en el ADN endógeno de tipos de células
diferentes y parece existir una jerarquía natural variable o
"preferencia" por ciertos codones en ciertos tipos de
células.
\newpage
Como ejemplo, el aminoácido leucina se
especifica por cualquiera de seis codones de ADN, incluyendo CTA,
CTC, CTG, CTT, TTA y TTG (que corresponden respectivamente a los
codones de ARNm, CUA, CUC, CUG, CUU, UUA y UUG). Un análisis
exhaustivo de las frecuencias de codones en el genoma de
microorganismos ha revelado que el ADN endógeno de E. coli
contiene con la mayor frecuencia el codón que especifica leucina
CTG, mientras que el ADN de levaduras y mohos mucilaginosos incluye
con la mayor frecuencia el codón que especifica leucina TTA. En
vista de esta jerarquía, generalmente se mantiene que la
probabilidad de obtener altos niveles de expresión de un
polipéptido rico en leucina en un hospedador E. coli
dependerá, en cierta medida, de la frecuencia del uso de codones.
Por ejemplo, un gen rico en codones TTA, muy probablemente se
expresará poco en E. coli, mientras que un gen rico en CTG
mostrará probablemente una elevada expresión del polipéptido. De
forma similar, cuando son células de levadura las células
hospedadoras que se proyecta transformar para la expresión de un
polipéptido rico en leucina, un codón preferido para usar en un ADN
insertado sería TTA. Seed y col. [documento WO 96/09378 y
Current Biology 6:31 (1996)] describen la expresión
mejorada de las proteínas Env del VIH in vitro tras una
optimización de codones.
Las implicaciones del fenómeno de la preferencia
de codones en las técnicas de ADN recombinante son manifiestas y el
fenómeno puede servir para explicar muchos fracasos anteriores en la
consecución de altos niveles de expresión de genes exógenos en
organismos hospedadores transformados con éxito - es posible que un
codón menos "preferido" esté presente repetidamente en el gen
insertado y que la maquinaria celular del hospedador para la
expresión no trabaje tan eficientemente. Este fenómeno sugiere que
los genes sintéticos que se han diseñado de modo que incluyan los
codones preferidos de la célula hospedadora proyectada proporcionan
una forma preferida de material genético extraño para la práctica
de las técnicas de ADN recombinante.
La diversidad de funciones que tipifica a las
células eucarióticas depende de la diferenciación estructural de
sus membranas delimitantes. Para generar y mantener estas
estructuras, las proteínas deben ser transportadas desde su lugar
de síntesis en el retículo endoplásmico a sus destinos
predeterminados en toda la célula. Esto requiere que las proteínas
en tránsito expongan señales de clasificación que sean reconocidas
por la maquinaria molecular responsable de la selección de la ruta,
localizada en los puntos de acceso a las principales rutas de
tránsito. Las decisiones de clasificación para la mayor parte de las
proteínas sólo necesitan realizarse una vez mientras atraviesan sus
rutas biosintéticas, ya que su destino final, la localización
celular en la que realizan su función, será su residencia
permanente.
El mantenimiento de la integridad intracelular
depende en parte de la clasificación selectiva y del transporte
preciso de las proteínas a sus destinos correctos. A lo largo de los
últimos años, se ha estudiado intensamente la disección de la
maquinaria molecular para el direccionamiento y la localización de
las proteínas. Se han identificado motivos de secuencia definidos
en las proteínas que pueden actuar como "etiquetas de
dirección". Los péptidos líder o señal, como el del activador
del plasminógeno tisular, tPA, sirven para transportar una proteína
a la ruta de secreción celular a través del retículo endoplásmico y
el aparato de Golgi. Se ha descubierto una serie de señales de
clasificación asociadas con los dominios citoplásmicos de las
proteínas de membrana, tal como motivos aminoacídicos de
di-leucina o secuencias basadas en tirosina, que
pueden dirigir las proteínas a los compartimentos lisosómicos. Para
el VIH, el transporte y la extrusión a partir de la célula de las
partículas víricas depende de la miristoilación del resto de
glicina número dos en el extremo amino de gag.
Se proporcionan moléculas de ADN sintéticas que
codifican el gen gag del VIH y modificaciones del gen
gag del VIH. Específicamente, se proporciona un vector de
vacuna de ADN plasmídico según la reivindicación 1 en lo sucesivo.
Los codones de las moléculas sintéticas incluyen los codones
preferidos por las células hospedadoras proyectadas. Las moléculas
sintéticas pueden usarse como una vacuna polinucleotídica que
proporciona una inmunoprofilaxis eficaz contra la infección por el
VIH, a través de inmunidad por anticuerpos neutralizantes e
inmunidad mediada por células. Esta invención proporciona
polinucleótidos que, cuando se introducen directamente en un
vertebrado in vivo, incluyendo mamíferos como primates y
humanos, inducen la expresión en el animal de las proteínas
codificadas.
La figura 1 muestra la expresión relativa
de gag y tPA-gag en transfectantes de la línea
celular 293 después de la transfección con el ADN de gag del
VIH.
La figura 2 muestra respuestas séricas
anti-gag mediadas por vacunas del ADN de gag o
tPA-gag del VIH optimizados en ratones.
La figura 3 muestra respuestas de LTC
anti-gag de esplenocitos obtenidos de ratones
después de la vacunación con el ADN de gag o
tPA-gag del VIH optimizados.
La figura 4 muestra la secreción de
citocinas específicas para el antígeno gag de esplenocitos obtenidos
de ratones después de la vacunación con el ADN de gag o
tPA-gag del VIH optimizados.
La figura 5 muestra LTC
anti-gag del VIH de ratones vacunados con los ADN de
gag p55 del VIH.
Se proporcionan moléculas de ADN sintéticas que
codifican el gen gag del VIH y moléculas de ADN sintéticas
que codifican formas modificadas del gen gag del VIH. Los
codones de las moléculas sintéticas están diseñados para usar los
codones preferidos por la célula hospedadora proyectada. Las
moléculas sintéticas pueden usarse como una vacuna polinucleotídica
que proporciona una inmunoprofilaxis eficaz contra la infección por
el VIH a través de inmunidad por anticuerpos neutralizantes e
inmunidad mediada por células. Las moléculas sintéticas pueden
usarse como una composición inmunogénica. Esta invención proporciona
polinucleótidos que, cuando se introducen directamente en un
vertebrado in vivo, incluyendo mamíferos como primates y
humanos, inducen la expresión en el animal de las proteínas
codificadas.
Como se usa en este documento, un polinucleótido
es un ácido nucleico que contiene elementos reguladores esenciales,
de modo que al ser introducido en una célula viva de vertebrado, es
capaz de dirigir la maquinaria celular para producir los productos
de traducción codificados por los genes que comprende el
polinucleótido. En una realización de la invención, el
polinucleótido es un ácido polidesoxirribonucleico que comprende al
menos un gen del VIH ligado operativamente a un promotor
transcripcional. Si la proteína codificada por el polinucleótido no
se encuentra normalmente en el animal excepto en condiciones
patológicas (es decir, una proteína heteróloga), como las proteínas
asociadas con el virus de inmunodeficiencia humana (VIH), el agente
etiológico del síndrome de inmunodeficiencia adquirida humana
(SIDA), el sistema inmunitario del animal se activa para
desencadenar una respuesta inmunitaria protectora. Dado que estas
proteínas exógenas son producidas por los tejidos animales, las
proteínas expresadas se procesan por el sistema mayor de
histocompatibilidad (CMH), de forma análoga a cuando tiene lugar
una infección real por el organismo relacionado (VIH). El resultado,
como se muestra en esta descripción, es la inducción de respuestas
inmunitarias contra el patógeno relacionado.
Por consiguiente, los presentes inventores han
preparado ácidos nucleicos que, al ser introducidos en el sistema
biológico, inducen la expresión de proteínas y epítopos del VIH. La
respuesta de anticuerpos inducida es a la vez específica de la
proteína del VIH expresada y neutraliza el VIH. Además, se inducen
linfocitos T citotóxicos que reconocen y destruyen específicamente
las células infectadas por el VIH.
La presente invención hace posible un
procedimiento para el uso de un polinucleótido que, al ser
introducido en el tejido de mamíferos, induce la expresión de
productos génicos discretos en una célula individual, in
vivo. La presente invención proporciona una solución diferente
que no requiere manipulaciones múltiples de los genes del VIH
dependientes de Rev para obtener genes independientes de Rev. El
sistema de expresión independiente de Rev descrito en este
documento es útil en sí mismo y es un sistema para demostrar la
expresión de un producto génico individual deseado en una célula
individual in vivo.
Debido a que muchas de las aplicaciones de la
presente invención se aplican a la vacunación antiviral,
frecuentemente se hace referencia a los polinucleótidos como vacuna
de polinucleótidos o VPN. Esto no quiere decir que usos adicionales
de estos polinucleótidos, en la estimulación inmunitaria y en la
terapéutica antitumoral, se consideren fuera del alcance de la
invención.
En una realización de esta invención se
incorpora un gen que codifica un antígeno gag del VIH en un vector
de expresión. El vector contiene un promotor transcripcional
reconocido por una polimerasa de ARN eucariótica y un terminador
transcripcional en el extremo de la secuencia codificante del gen
del VIH. En una realización preferida, el promotor es el promotor
de citomegalovirus con la secuencia del intrón A
(CMV-intA), aunque los expertos en la materia
reconocerán que puede usarse cualquiera de una serie de otros
promotores conocidos, como el fuerte promotor de la inmunoglobulina
u otros promotores de genes eucarióticos. Un terminador
transcripcional preferido es el terminador de la hormona de
crecimiento bovino. Se prefiere particularmente la combinación de
CMVintA-terminador de BGH.
Para asistir en la preparación de los
polinucleótidos en células procarióticas se prefiere también incluir
en el vector de expresión un marcador de resistencia a antibióticos
bajo el control transcripcional de un promotor procariótico, de
modo que la expresión del antibiótico no tiene lugar en las células
eucarióticas. Pueden usarse genes de resistencia a ampicilina,
genes de resistencia a neomicina y otros marcadores de resistencia
a antibióticos aceptables farmacéuticamente. Para ayudar a la
producción de altos niveles del polinucleótido por fermentación en
organismos procarióticos, es ventajoso que el vector contenga un
origen de replicación procariótico y que sea de elevado número de
copias. Una serie de vectores de clonación procarióticos disponibles
comercialmente proporcionan estas ventajas. Es deseable eliminar
las secuencias de ADN que no sean esenciales. También es deseable
que los vectores no sean capaces de replicarse en células
eucarióticas. Esto minimiza el riesgo de integración de las
secuencias de la vacuna polinucleotídica en el genoma del receptor.
Los promotores o potenciadores específicos de tejidos pueden usarse
siempre que se desee limitar la expresión del polinucleótido a un
tipo de tejido particular.
En una realización se usa el vector de expresión
pnRSV, en el que la repetición terminal larga (LTR) del virus del
sarcoma de Rous (RSV) se usa como promotor. En otra realización se
usa V1, un vector pBR322 mutado en el que se han clonado el
promotor de CMV y el terminador transcripcional de bGH. En otra
realización se han combinado los elementos de V1 y pUC19 para
producir un vector de expresión denominado V1J. En V1J o en otro
vector de expresión deseable se clona un gen del VIH, gag,
que puede inducir una respuesta inmunitaria
anti-VIH. En otra realización el gen de resistencia
a ampicilina se elimina de V1J y se sustituye por un gen de
resistencia a neomicina, para generar V1J-neo, en el que se
clona el gen gag del VIH para el uso según esta invención.
En otra realización, el vector es V1Jns, que es el mismo que
V1J-neo, excepto porque se ha creado un sitio único
de restricción Sfi1 en el sitio único Kpn1 en la
posición 2114 de V1J-neo. La incidencia de sitios
Sfi1 en el ADN genómico humano es muy baja (aproximadamente
un sitio por 100.000 bases). Por tanto, este vector permite una
cuidadosa monitorización de la integración del vector de expresión
en el ADN del hospedador, simplemente mediante digestión con
Sfi1 del ADN genómico extraído. En un refinamiento adicional
el vector es V1R. En este vector se ha "recortado" del vector
tanto ADN no esencial como ha sido posible para producir un vector
muy compacto. Este vector es un derivado de V1Jns. Este vector
permite usar insertos mayores, con menos riesgo de que se
codifiquen secuencias no deseables y optimiza la absorción por las
células.
Una realización de esta invención incorpora los
genes que codifican gag de cepas del VIH adaptadas a condiciones de
laboratorio, tales como IIIB o CAM-1. Los expertos
en la materia reconocerán que se esperará que el uso de los genes
de otras cepas del VIH-1 o de cepas del
VIH-2 con funciones análogas a los genes del
VIH-1 genere respuestas inmunitarias análogas a las
descritas en este documento para las construcciones del
VIH-1. Los procedimientos de clonación y
manipulación para obtener estos genes son conocidos por los expertos
en la materia.
Las secuencias de numerosos genes de numerosas
cepas del VIH están ahora disponibles públicamente en el banco de
datos GENBANK y puede disponerse de tales aislamientos de campo
primarios del VIH a partir del National Institute of Allergy and
Infectiuos Diseases (NIAID), que tiene un contrato con la empresa
Quality Biological, Inc., (7581 Lindbergh Drive, Gaithersburg,
Maryland 20879, EEUU) para hacer esas cepas disponibles. Estas
cepas también pueden obtenerse de la Organización Mundial de la
Salud (OMS) (Network for HIV Isolation and Characterization Vaccine
Development Unit, Office of Research, Global Programme on AIDS,
CH-1211 Ginebra 27, Suiza). A partir de este
trabajo, los expertos en la materia reconocerán que una de las
utilidades de la presente invención es proporcionar un sistema para
el ensayo y análisis tanto in vivo como in vitro, de
modo que pueda establecerse una correlación entre la diversidad de
secuencias del VIH y la serología de la neutralización del VIH, así
como otros parámetros. La incorporación de genes de aislamientos
primarios de cepas del VIH proporciona un inmunógeno que induce
respuestas inmunitarias contra aislamientos clínicos del virus y,
por tanto, satisface una necesidad aún no satisfecha en el campo.
Además, el inmunógeno puede modificarse a medida que los
aislamientos virulentos cambian para reflejar las nuevas secuencias
como sea necesario.
Para mantener una terminología coherente, en
este documento se sigue la siguiente convención para describir las
construcciones inmunogénicas polinucleotídicas: "nombre del vector
- cepa del VIH - gen - elementos adicionales". Los elementos
adicionales que se añaden a la construcción se describen con más
detalle posteriormente. Al cambiar la cepa etiológica del virus,
puede cambiar el gen concreto óptimo para su incorporación en el
producto farmacéutico. Sin embargo, como se demuestra a
continuación, dado que se inducen respuestas de LTC capaces de
proteger contra cepas heterólogas, la variabilidad de cepas es menos
crítica en el inmunógeno y las vacunas de esta invención en
comparación con las vacunas basadas en el virus entero o en
subunidades polipeptídicas. Además, dado que el producto
farmacéutico se manipula fácilmente para insertar un nuevo gen, éste
es un ajuste que puede realizarse fácilmente por las técnicas
convencionales de la biología molecular.
El término "promotor" como se usa en este
documento se refiere a un sitio de reconocimiento en una cadena de
ADN al que se une la ARN polimerasa. El promotor forma un complejo
de iniciación con la ARN polimerasa para iniciar y hacer funcionar
la atividad transcripcional. El complejo puede modificarse activando
secuencias denominadas "potenciadores" o inhibiendo secuencias
denominadas "silenciadores".
El término "líder" como se usa en este
documento se refiere a una secuencia de ADN en el extremo 5' de un
gen estructural que se transcribe junto con el gen. La presencia del
líder resulta normalmente en que la proteína tiene una extensión
peptídica N-terminal llamada a veces presecuencia.
Para las proteínas destinadas para su secreción al medio
extracelular o a una membrana, esta secuencia señal, que
generalmente es hidrofóbica, dirige la proteína al retículo
endoplásmico, desde el que se descarga al destino apropiado.
El término "intrón" como se usa en este
documento se refiere a una sección de ADN que se encuentra en medio
de un gen y que no codifica ningún aminoácido en el producto génico.
El ARN precursor del intrón se escinde y por tanto no se transcribe
en ARNm ni se traduce a proteína.
El término "casete" se refiere a la
secuencia de la presente invención que contiene la secuencia de
ácido nucleico que ha de expresarse. El casete es similar en
concepto a la cinta de casete. Cada casete tendrá su propia
secuencia. Así, intercambiando el casete, el vector expresará una
secuencia diferente. El casete puede fácilmente insertarse,
eliminarse o sustituirse por otro casete gracias a los sitios de
restricción en los extremos 5' y 3'.
El término "región 3' no traducida" o "3'
UTR" se refiere a la secuencia en el extremo 3' de un gen
estructural que generalmente se transcribe con el gen. Esta región
contiene normalmente la secuencia de poli A. Aunque la 3' UTR se
transcribe a partir del ADN, se escinde antes de la traducción a
proteína.
El término "región no codificante" o
"NCR" se refiere a la región contigua a la región 3' UTR del
gen estructural. La región NCR contiene una señal de terminación de
la transcripción.
El término "sitio de restricción" se
refiere a un sitio de corte específico de endonucleasas de
restricción.
El término "vector" se refiere a algún
medio por el que pueden introducirse fragmentos de ADN en un
organismo hospedador o en un tejido hospedador. Hay varios tipos de
vectores incluyendo plásmidos, bacteriófagos y cósmidos.
El término "cantidad eficaz" significa que
se inyecta suficiente VPN para producir los niveles adecuados de
polipéptido. El experto en la materia reconocerá que este nivel
puede ser variable.
Para proporcionar una descripción de la presente
invención, se proporcionan los siguientes antecedentes respecto al
VIH. El virus de la inmunodeficiencia humana tiene un genoma de
ácido ribonucleico (ARN). Este genoma de ARN debe transcribirse de
forma inversa según los procedimientos conocidos en la técnica para
producir una copia de ADNc para su clonación y manipulación según
los procedimientos que se muestran en este documento. En cada
extremo del genoma hay una repetición terminal larga que actúa como
promotor. Entre estos extremos, el genoma codifica
gag-pol-env, en diversos
marcos de lectura, como principales productos génicos: gag es
el antígeno específico de grupo; Pol es la transcriptasa inversa o
polimerasa; en esta región también se codifica, en otro marco de
lectura, la proteasa vírica responsable del procesamiento
post-traduccional, por ejemplo, de gp160 a gp120 y
gp41; env es la proteína de la envoltura; Vif es el factor de
infectividad del virión; rev es el regulador de la expresión de las
proteínas del virión; Nef es el factor de regulación negativa; vpu
es el factor "u" de productividad de viriones; Tat es el
transactivador de la transcripción; vpr es la proteína vírica r. La
función de cada uno de estos elementos ha sido
descrita.
descrita.
En una realización de esta invención, un gen que
codifica una proteína gag del VIH se liga directamente a un
promotor transcripcional. Sin embargo, la expresión de gag queda
reprimida en ausencia de rev, debido a que los genes no escindidos
no se exportan fuera del núcleo. Para la comprensión de este
sistema, el ciclo vital del VIH debe describirse con mayor
detalle.
En el ciclo vital del VIH, al infectar una
célula hospedadora, el genoma de ARN del VIH se transcribe de forma
inversa en un ADN provírico que se integra en el ADN genómico del
hospedador como una sola unidad transcripcional. La LTR proporciona
el promotor que transcribe los genes del VIH en la dirección 5' a 3'
(gag, pol, env) para formar un transcrito sin
escindir del genoma completo. El transcrito sin escindir funciona
como el ARNm a partir del cual se transcriben gag y
pol, mientras que para la expresión de los genes codificados
por env ha de tener lugar una escisión limitada. Para que se
exprese el producto génico regulador Rev, debe tener lugar más de
una etapa de escisión, porque rev y env están
superpuestos en el entorno genómico, como se muestra en la figura
1. La transcripción de rev debe pararse para que tenga lugar
la transcripción de env y viceversa. Además, la presencia de
Rev se requiere para la exportación de ARN sin escindir fuera del
núcleo. Sin embargo, para que Rev funcione de esta manera, un
elemento de respuesta a Rev (RRE) debe estar presente en el
transcrito [Malim y col., Nature
338:254-257 (1989)].
En la vacuna polinucleotídica de esta invención,
la escisión obligatoria de ciertos genes del VIH se elimina
proporcionando genes completamente escindidos (es decir: se
proporciona un marco de lectura abierto completo para el producto
génico deseado sin la necesidad de cambios en el marco de lectura o
de la eliminación de regiones no codificantes; los expertos en la
materia reconocerán que cuando se escinde un gen particular hay una
cierta flexibilidad en la secuencia exacta que resulta; esto es
aceptable, sin embargo, siempre que se obtenga una secuencia
codificante funcional). Así, en una realización, la secuencia
completa de gag se escinde de modo que no se requiere la expresión
intermitente de cada producto génico.
La respuesta inmunitaria doble, humoral y
celular, generada según esta invención es de particular importancia
para la inhibición de la infección por el VIH, dada la propensión
del VIH a mutar dentro de la población, así como en los individuos
infectados. Para formular una vacuna protectora eficaz contra el VIH
es deseable generar tanto una respuesta de anticuerpos
multivalentes, por ejemplo, contra gp160 (env está conservado
aproximadamente en el 80% entre diversas cepas del clado B del
VIH-1, que son las cepas corrientes en las
poblaciones humanas de EEUU), la principal diana de neutralización
en el VIH, como de células T citotóxicas reactivas contra las
porciones conservadas de gp160 y las proteínas víricas internas
codificadas por gag. Hemos preparado una vacuna contra el
VIH que comprende los genes para gp160 seleccionados de cepas
comunes de laboratorio; de los aislamientos víricos primarios
predominantes encontrados dentro de la población infectada; genes
para gp160 mutados, designados para desenmascarar los epítopos de
anticuerpos de neutralización cruzada entre cepas; y otros genes
representativos del VIH, como los genes gag y pol
(conservados aproximadamente en el 95% entre los aislamientos
del
VIH).
VIH).
Prácticamente todos los pacientes seropositivos
para el VIH que aún no han avanzado hacia un estado inmunodeficiente
contienen LTC anti-gag, mientras que aproximadamente el 60%
de esos pacientes muestran LTC específicos para gp160 de acción
cruzada entre cepas. Sin embargo, la cantidad de LTC específicos
para el VIH que se encuentran en individuos infectados que han
progresado al estado de enfermedad conocido como SIDA es mucho más
bajo, demostrando la importancia de nuestro descubrimiento dado que
se pueden inducir respuestas de LTC cruzadas entre cepas.
Se han demostrado respuestas inmunitarias
inducidas por nuestras construcciones de vacunas polinucleotídicas
de env y gag en ratones y primates. La monitorización
de la producción de anticuerpos contra Env en ratones permite
confirmar que una construcción dada es adecuadamente inmunogénica,
es decir, una alta proporción de los animales vacunados muestra una
respuesta de anticuerpos. Los ratones proporcionan también el modelo
animal más fácil, adecuado para comprobar la inducción de LTC por
nuestras construcciones y, por tanto, se usan para evaluar si una
construcción particular es capaz de generar tal actividad. Los monos
(verde africano, Rhesus, chimpancés) proporcionan especies
adicionales, incluyendo primates, para la evaluación de anticuerpos
en animales de mayor tamaño, no roedores. Estas especies también se
prefieren a los ratones para los ensayos de neutralización de
antisueros, debido a los altos niveles de actividades neutralizantes
endógenas contra los retrovirus que se han observado en sueros de
ratón. Estos datos demuestran que nuestras vacunas producen una
inmunogenicidad suficiente para alcanzar protección en experimentos
en un modelo de exposición de chimpancés al VIH_{IIIB}, basado en
los niveles protectores conocidos de anticuerpos neutralizantes para
este sistema. Sin embargo, la definición de protección que está
surgiendo actualmente y aumentando en aceptación en la comunidad
científica está apartándose de la denominada "inmunidad
esterilizante", que indica la protección completa contra la
infección por el VIH, hacia la prevención de la enfermedad. Una
serie de correlaciones con este objetivo incluye un título vírico
reducido en la sangre, medido por PCR, actividad de la transcriptasa
inversa del VIH, por la infectividad de muestras de suero, por
ensayo ELISA de la concentración de p24 u otro antígeno del VIH en
la sangre, aumento de la concentración de células T CD4+ y por el
aumento de las tasas de supervivencia [véase, por ejemplo, Cohen,
J., Science 262:1820-1821 (1993) para
una discusión sobre la definición en evolución de la eficacia de
las vacunas anti-VIH]. Los inmunógenos de la
presente invención generan también respuestas inmunitarias
neutralizantes contra aislamientos infecciosos (campo
primario,
clínico).
clínico).
Un ensayo ELISA se usa para determinar si los
vectores de vacuna con gag optimizado, que expresan
tPA-gag secretada o gag nativa son eficaces para la
producción de anticuerpos específicos para gag. Un análisis
de inmunotransferencia de lisados de células transfectadas con gag
optimizado proporciona la caracterización inicial in vitro
de la expresión de gag por nuestros vectores de vacunación. Estos
datos confirman y cuantifican la expresión de gag utilizando
antisueros anti-VIH para visualizar la expresión de
gag por las células transfectadas.
Generación de respuestas de LTC. Las
proteínas víricas que se sintetizan dentro de las células originan
respuestas de LTC restringidas por el CMH-I. Cada
una de estas proteínas desencadena la producción de LTC en pacientes
seropositivos. Nuestras vacunas también son capaces de desencadenar
la producción de LTC en ratones y monos Rhesus. La inmunogenética
de las cepas de ratón es propicia para estos estudios, como se ha
demostrado con la proteína NP del virus de la influenza [véase
Ulmer y col., Science 259:1745-1749
(1993)]. Se han definido varios epítopos para las proteínas env,
rev, nef y gag del VIH [Frankel, F. R. y col., J.
Immunol. 155:4775-82 (1995)] en ratones
Balb/c, facilitando así los ensayos in vitro de cultivo y
citotoxicidad de los LTC. Alternativamente, podría usarse el gen
completo que codifica gp160, gp120, pol o gag. Para una
revisión adicional de este tema, véase por ejemplo (HIV Molecular
Immunology Database 1995, Korber y col., eds., Los Alamos National
Laboratory, Los Alamos, NM, EEUU). Como se usa en este documento, la
función efectora de las células T está asociada con el fenotipo
maduro de las células T, por ejemplo, citotoxicidad, secreción de
citocinas para la activación de las células B y/o reclutamiento o
estimulación de macrófagos y neutrófilos.
Medición de las actividades T_{H}. Se
analizan cultivos de células de bazo derivados de animales vacunados
en cuanto a su memoria para antígenos específicos mediante la
adición de proteína recombinante o de epítopos peptídicos. La
activación de las células T por tales antígenos, presentados por las
células acompañantes presentadoras de antígenos del bazo, CPA, se
monitoriza por la proliferación de estos cultivos o por la
producción de citocinas. El patrón de producción de citocinas
permite también la clasificación de la respuesta T_{H} como del
tipo 1 o del tipo 2. Debido a que las respuestas dominantes
T_{H}2 parecen correlacionarse con la exclusión de la inmunidad
celular en pacientes seropositivos inmunocomprometidos, es posible
definir el tipo de respuesta engendrada en los pacientes por una
VPN dada, permitiendo la manipulación de las respuestas inmunitarias
resultantes.
Basándose en los estudios inmunológicos
anteriores, es predecible que nuestras vacunas serán eficaces en
vertebrados contra el ataque por VIH virulentos. Estos estudios se
han llevado a cabo en un modelo de exposición de chimpancés al
VIH_{IIIB} después de la vacunación suficiente de estos animales
con una construcción de VPN o un cóctel de construcciones de VPN,
compuesto de gp160_{IIIB}, gag_{IIIB}, nef_{IIIB} y
REV_{IIIB}. La cepa IIIB es útil a este respecto dado que
el título de dosis letales de esta cepa para el chimpancé ha sido
establecido. Sin embargo, se prevén los mismos estudios usando
cualquier cepa del VIH y los epítopos específicos o heterólogos de
la cepa dada. Un segundo modelo de vacunación/exposición, además de
los chimpancés, es el ratón SCID-hu PBL. Este
modelo permite analizar el sistema inmunitario de linfocitos humano
y nuestra vacuna con la posterior exposición al VIH en un ratón
hospedador. Este sistema es ventajoso, ya que se adapta fácilmente
al uso con cualquier cepa del VIH y proporciona evidencia de
protección contra múltiples cepas de aislamientos de campo
primarios del VIH. Un tercer modelo de exposición utiliza virus
híbridos VIH/VIS (VIHS), algunos de los cuales se ha demostrado que
infectan monos Rhesus y conducen a la enfermedad de
inmunodeficiencia que resulta en la muerte [véase Li, J. y col.,
J. AIDS 5:639-646 (1992)]. La
vacunación de monos Rhesus con nuestras construcciones de vacunas
polinucleotídicas protege contra la posterior exposición a dosis
letales del VIHS.
La eficacia protectora del los inmunógenos
polinucleotídicos del VIH contra la posterior exposición vírica se
demuestra por la inmunización con el ADN plasmídico sin capacidad de
replicación de esta invención. Esto es ventajoso porque no implica
ningún agente infeccioso, no se requiere el ensamblaje de partículas
víricas y se permite una selección determinante. Además, dado que
la secuencia de gag está conservada entre diversas cepas del
VIH, se posibilita la protección contra posteriores exposiciones a
una cepa virulenta del VIH homóloga, así como a cepas heterólogas
de la cepa de la que se ha obtenido el gen.
\newpage
Esta invención ofrece un procedimiento para
inducir inmunidad protectora cruzada entre cepas sin la necesidad
de agentes o adyuvantes autorreplicativos. Además, la inmunización
con los presentes polinucleótidos ofrece una serie de ventajas
adicionales.
La facilidad de la producción y purificación de
construcciones de ADN se compara favorablemente con los
procedimientos tradicionales de purificación de proteínas,
facilitando así la generación de vacunas de combinación. Por
consiguiente, pueden prepararse, mezclarse y coadministrarse
construcciones múltiples que codifican, por ejemplo gp160, gp120,
gp41, gag o cualquier otro gen del VIH. Dado que la expresión
de las proteínas se mantiene después de la inyección de ADN, la
persistencia de la memoria de células B y T puede aumentarse,
engendrando de este modo inmunidad humoral y mediada por células de
larga duración.
Las técnicas convencionales de biología
molecular para la preparación y purificación de construcciones
posibilitan la preparación de los inmunógenos de ADN de esta
invención. Por tanto, mientras las técnicas convencionales de
biología molecular son suficientes para la producción de los
productos de esta invención, las construcciones específicas
descritas en este documento proporcionan inmunógenos
polinucleotídicos originales con sorprendente neutralización
cruzada entre cepas y de aislamientos primarios del VIH de los
productos, un resultado hasta ahora inalcanzable con las vacunas
convencionales con el virus completo inactivado o con subunidades
proteicas.
La cantidad de ADN expresable o de ARN
transcrito que ha de introducirse en el receptor de una vacuna
dependerá de la fuerza de los promotores transcripcionales y
traduccionales usados y de la inmunogenicidad del producto génico
expresado. En general, una dosis inmunológicamente o
profilácticamente eficaz de aproximadamente 1 ng a 100 mg y
preferentemente de aproximadamente 10 \mug a 300 \mug se
administra directamente en el tejido muscular. También se
contemplan la inyección subcutánea, la introducción por vía
intradérmica, la impresión a través de la piel y otros modos de
administración, como las vías intraperitoneal, intravenosa o por
inhalación. También se contempla que han de proporcionarse vacunas
de refuerzo. Después de la vacunación con el inmunógeno
polinucleotídico del VIH se contempla también el refuerzo con
inmunógenos de proteínas del VIH, como los productos génicos gp160,
gp120 y gag. También es ventajosa la administración por vía
parenteral, así como por vías intravenosa, intramuscular,
subcutánea u otra forma de administración, de la proteína
interleucina-12, simultáneamente o posteriormente a
la introducción por vía parenteral de la VPN de esta invención.
El polinucleótido puede estar desnudo, es decir,
sin asociar a proteínas, adyuvantes u otros agentes que afectan al
sistema inmunitario del receptor. En este caso, es deseable que el
polinucleótido se encuentre en una disolución fisiológicamente
aceptable, tal como, pero sin limitarse a, disolución salina estéril
o disolución salina tamponada estéril. Alternativamente, el ADN
puede estar asociado con liposomas, tal como liposomas de lecitina
u otros liposomas conocidos en la técnica, como una mezcla
ADN/liposoma, o el ADN puede estar asociado con un adyuvante
conocido en la técnica para reforzar las respuestas inmunitarias,
tal como una proteína u otro vehículo. Los agentes que asisten en
la absorción celular del ADN, tal como, pero sin limitarse a, iones
de calcio también pueden usarse para su favorecimiento.
Generalmente, en este documento se hace referencia a estos agentes
como reactivos facilitantes de la transfección y vehículos
farmacológicamente aceptables. Las técnicas de recubrimiento de
microproyectiles con polinucleótidos son conocidas en la técnica y
son también de utilidad en conexión con esta
invención.
invención.
Los siguientes ejemplos se ofrecen a modo de
ilustración y no pretenden limitar la invención de ningún modo.
Los genes estructurales del VIH, como env
y gag, requieren la expresión del gen regulador del VIH,
rev, para producir eficientemente proteínas de longitud
completa. Hemos encontrado que la expresión de gag
dependiente de rev produce bajos niveles de proteína y que rev misma
puede ser tóxica para las células. Aunque hemos conseguido niveles
relativamente altos de expresión dependiente de rev de gp160 in
vitro, esta vacuna produjo bajos niveles de anticuerpos contra
gp160 después de la inmunización in vivo con el ADN de
rev/gp160. Esto puede ser el resultado de los conocidos
efectos citotóxicos de Rev, así como del aumento de la dificultad
de obtener que rev funcione en miotúbulos que contienen
cientos de núcleos (la proteína rev necesita estar en el
mismo núcleo que un transcrito dependiente de rev para que
tenga lugar la expresión de las proteínas de gag o
env). Sin embargo, ha sido posible obtener una expresión
independiente de rev usando modificaciones seleccionadas del
gen env.
En general, nuestras vacunas han utilizado
fundamentalmente los genes env y gag del VIH (IIIB, MN
o CAM-1) para optimizar la expresión dentro de
nuestro vector de vacunación generalizado, V1Jns, que está
compuesto por un promotor inmediato temprano (IE) de CMV, el sitio
de poliadenilación de bGH y un esqueleto de pUC. Es posible
conseguir eficiencias variables, dependiendo de la longitud del
segmento de ADN usado (por ejemplo, gp120 frente a gp160) en la
expresión de env independiente de Rev, sustituyendo su
péptido líder de secreción nativo por el del gen del activador del
plasminógeno tisular (tPA) y expresando el gen quimérico resultante
detrás del promotor CMVIE con el intrón A de CMV.
Como se ha afirmado previamente, consideramos
que la realización de los siguientes objetivos es esencial para
maximizar nuestras posibilidades de éxito con este programa: (1)
vectores basados en env capaces de generar fuertes
respuestas de anticuerpos neutralizantes en primates; (2) vectores
con gag y env que desencadenan fuertes respuestas de
linfocitos T, como se caracterizan por las funciones efectoras de
LTC y auxiliar en primates; (3) uso de los genes env y
gag de cepas de importancia clínica del VIH-1
en nuestras vacunas y caracterización de las respuestas
inmunológicas que desencadenan, especialmente la neutralización de
aislamientos primarios; (4) demostración de la protección en un
modelo de exposición animal, como chimpancé/VIH(IIIB) o
Rhesus/VISH usando vacunas optimizadas apropiadas; y (5)
determinación de la duración de las respuestas inmunitarias
apropiadas para uso clínico. Se ha realizado un progreso importante
en los tres primeros objetivos y se están llevando a cabo
experimentos para determinar si nuestras recientes construcciones de
vacunación para gp160 y gag mejorarán estos resultados
iniciales.
Fue necesario eliminar el gen amp^{r}
usado para la selección por antibiótico de las bacterias que
contienen V1J, debido a que la ampicilina no puede usarse en
fermentadores a gran escala. El gen amp^{r} del esqueleto
de pUC de V1J se eliminó por digestión con las enzimas de
restricción SspI y Eam1105I. El resto del plásmido se
purificó por electroforesis en gel de agarosa, se generaron extremos
romos con la polimerasa de ADN de T4 y después se trató con
fosfatasa alcalina de intestino de ternera. El gen kan^{r},
disponible comercialmente, derivado del transposón 903 y contenido
en el plásmido pUC4K, se escindió usando la enzima de restricción
PstI, se purificó por electroforesis en gel de agarosa y se
generaron extremos romos con la polimerasa de ADN de T4. Este
fragmento se ligó con el esqueleto de V1J y los plásmidos derivados,
con el gen kan^{r} en cada orientación se designaron V1Jneo,
números 1 y 3. Cada uno de estos plásmidos se confirmó por análisis
de digestión con enzimas de restricción y secuenciación de ADN de
las regiones de unión y se demostró que producían cantidades de
plásmido similares a las de V1J. La expresión de los productos
génicos heterólogos con estos vectores V1Jneo fue también
comparable a la de V1J. Como construcción de expresión,
seleccionamos arbitrariamente V1Jneo3, al que se hace referencia de
aquí en adelante como V1Jneo, que contiene el gen kan^{r}
en la misma orientación que el gen amp^{r} en V1J.
Se añadió un sitio de restricción SfiI a V1Jneo
para facilitar los estudios de integración. Un ligador SfiI de13
pares de bases disponible comercialmente (New England Biolabs) se
añadió al sitio KpnI dentro de la secuencia de bGH del vector.
V1Jneo se linealizó con KpnI, se purificó en un gel, se generaron
extremos romos con la polimerasa de ADN de T4 y se ligó con el
ligador romo SfiI. Los aislamientos clonales se seleccionaron por
cartografía de restricción y se verificaron por secuenciación a lo
largo del ligador. El nuevo vector se designó V1Jns. La expresión
de genes heterólogos en V1Jns (con SfiI) fue comparable a la
expresión de los mismos genes en V1Jneo (con KpnI).
Para proporcionar la secuencia heteróloga de un
péptido líder a proteínas secretadas y/o proteínas de membrana, se
modificó V1Jn incluyendo el líder del activador del plasminógeno
tisular (tPA). Dos oligómeros sintéticos complementarios se
alinearon y después se ligaron a V1Jn digerido con BglII. Estos
oligómeros tienen bases sobresalientes compatibles para el
ligamiento con secuencias cortadas conBglII. Después del ligamiento,
se destruye el sitio BglII secuencia arriba, mientras que el sitio
BglII secuencia abajo se mantiene para ligaciones
posteriores. Ambos sitios de unión, así como la secuencia líder
completa de tPA se verificaron por secuenciación de ADN. Además,
para ajustarse a nuestro vector optimizado consenso V1Jns (=V1Jneo
con un sitio SfiI), se incluyó un sitio de restricción SfiI en el
sitio KpnI dentro de la región del terminador de bHG en
V1Jn-tPa, generando extremos romos en el sitio KpnI
con la polimerasa de ADN de T4, seguido del ligamiento con un
ligador SfiI (n° de catálogo 1138, New England Biolabs). Esta
modificación se verificó por digestión de restricción y
electroforesis en gel de agarosa.
En un esfuerzo para continuar optimizando
nuestro vector básico de vacunación, preparamos un derivado de V1Jns
designado como V1R. El propósito de la construcción de este vector
fue obtener un vector de vacuna de tamaño mínimo, es decir sin las
secuencias de ADN innecesarias, que aún mantuviese las
características generales optimizadas de expresión de genes
heterólogos y los elevados rendimientos plasmídicos que ofrecen V1J
y V1Jns. A partir de la bibliografía, así como experimentalmente,
determinamos que (1) las regiones del esqueleto de pUC que
comprenden el origen de replicación de E. coli podían
eliminarse sin afectar al rendimiento plasmídico en bacterias; (2)
la región 3' del gen kan^{r} que sigue al marco de lectura
abierto para kanamicina podía eliminarse si se insertaba en su
lugar un terminador bacteriano; y (3) que podían eliminarse
aproximadamente 300 pb de la mitad 3' del terminador de bGH sin
afectar a su función reguladora (después del sitio original para la
enzima de restricción KpnI en el elemento
de bGH).
de bGH).
V1R se construyó usando PCR para sintetizar tres
segmentos de ADN de V1Jns que representan los elementos, promotor
CMVintA/terminador de bGH, origen de replicación y resistencia a
kanamicina, respectivamente. Al extremo de cada segmento se
añadieron sitios para enzimas de restricción únicos para cada
segmento usando los oligómeros obtenidos por PCR: SspI y XhoI para
CMVIntA/bGH; EcoRV y BamHI para el gen kan^{r}; yBclI y
SalI para el ori^{r}. Estos sitios para enzimas de restricción se
eligieron porque permiten el ligamiento direccional de cada uno de
los segmentos de ADN derivados de PCR con la subsiguiente pérdida de
cada sitio: EcoRV y SspI dejan segmentos de ADN de extremos
romos que son compatibles para ligamiento, mientras que
BamHI y BclI dejan salientes complementarios, al igual
que SalI y XhoI. Después de la obtención de estos
segmentos por PCR, cada segmento se digirió con las enzimas de
restricción apropiadas indicadas anteriormente y después se ligaron
todos juntos en una única mezcla de reacción conteniendo los tres
segmentos de ADN. El extremo 5' del ori^{r} se diseñó para
que incluyera la secuencia terminadora independiente de Rho, T2,
que se encuentra normalmente en esta región, de modo que pudiera
proporcionar información de terminación para el gen de resistencia
a kanamicina. El producto ligado se confirmó por digestión con
enzimas de restricción (>8 enzimas), así como por secuenciación
de ADN de las uniones de ligamiento. Los rendimientos en ADN
plasmídico y la expresión heteróloga usando genes víricos en V1J
parece ser similar a los de V1Jns. La reducción neta alcanzada en
el tamaño del vector fue 1346 pb (V1Jns = 4,86 kb; V1R =
3,52 kb).
3,52 kb).
Los segmentos génicos se convirtieron en
secuencias de traducción idéntica pero con un uso de codones
alternativo como se define por R. Lathe en un artículo de
investigación de J. Mol. Biol. vol. 183, págs.
1-12 (1985) con el título "Synthetic
Oligonucleotide Probes Deduced from Amino Acid Sequence Data:
Theoretical and Practical Considerations". La metodología
descrita a continuación para aumentar la expresión de los segmentos
del gen gag del VIH se basó en nuestra hipótesis de que la
conocida incapacidad para expresar eficientemente este gen en
células de mamíferos es una consecuencia de la composición general
de los transcritos. Por tanto, el uso de codones alternativos que
codifican la misma secuencia de proteína puede eliminar las
limitaciones para la expresión de gag. El procedimiento
específico de sustitución de codones empleado puede describirse
como sigue:
1. Identificar la posición de los codones para
un correcto marco de lectura abierto.
2. Comparar el codón de tipo natural en cuanto a
la frecuencia de uso observada para los genes humanos.
3. Si el codón no es el empleado con mayor
frecuencia, sustituirlo por un codón óptimo para alta expresión en
células humanas.
4. Repetir este procedimiento hasta haber
sustituido la totalidad del segmento génico.
5. Inspeccionar las nuevas secuencias génicas
por la presencia de secuencias no deseadas generadas por estas
sustituciones de codones (por ejemplo, secuencias "ATTTA",
creación inadvertida de sitios de reconocimiento para la escisión
de intrones, sitios para enzimas de restricción no deseados, etc.) y
sustituir los codones que eliminen estas secuencias.
6. Ensamblar los segmentos génicos sintéticos y
analizar la mejora de la expresión.
Estos procedimientos se usaron para crear los
siguientes segmentos génicos sintéticos para gag del VIH,
creando un gen que consta enteramente de un uso de codones óptimo
para la expresión. Mientras el procedimiento anterior proporciona
un resumen de nuestra metodología para diseñar genes de codones
optimizados para vacunas de ADN, el experto en la materia
comprenderá que una eficacia de vacunas similar o un aumento en la
expresión génica puede conseguirse mediante menores variaciones del
procedimiento o menores variaciones en la secuencia.
Esta es una orf completa del gen gag del
VIH-1 (CAM1) que consta de codones óptimos.
\hskip1.7cm(ID SEC N°:1)
La expresión in vitro se ensayó en
células humanas de rabdomiosarcoma (RD) o células 293 transfectadas
con estas construcciones. La cuantificación de gag a partir de
células 293 transfectadas mostró que los vectores
V1Jns-opt gag y
V1Jns-tPA-opt gag produjeron gag
secretada.
Los procedimientos descritos en esta sección
ilustran el ensayo como se usa para ratones vacunados. Un ensayo
esencialmente similar puede usarse con primates, excepto porque
deben establecerse líneas de células B autólogas para usarlas como
células diana para cada animal. Esto puede conseguirse para humanos
usando el virus de Epstein-Barr y para el mono
Rhesus usando el virus del herpes B.
Se obtienen células mononucleares de sangre
periférica (CMSP) a partir de sangre recién extraída o del bazo
usando centrifugación sobre Ficoll-Hypaque para
separar los eritrocitos de los leucocitos. Para ratones pueden
usarse también los ganglios linfáticos. Los LTC efectores pueden
prepararse a partir de las CMSP por cultivo in vitro en
IL-2 (20 U/ml) y concanavalina A (2 \mug/ml)
durante 6-12 días o usando un antígeno específico
usando un número igual de células irradiadas presentadoras de
antígenos. El antígeno específico puede consistir en péptidos
sintéticos (9-15 aminoácidos normalmente) que son
epítopos conocidos para el reconocimiento por el haplotipo del CMH
de los animales usados, o construcciones del virus vaccinia
modificadas para expresar el antígeno apropiado. Las células diana
pueden ser singénicas o líneas celulares correspondientes al
haplotipo del CMH, que han sido tratadas para presentar el antígeno
apropiado como se describe para la estimulación in vitro de
los LTC. Para los ratones Balb/c, el péptido gag de Paterson (J.
Immunol., 1995) se usó a una concentración de 10 \muM para
reestimular los LTC in vitro, usando esplenocitos singénicos
irradiados y puede usarse a 1-10 \muM para
sensibilizar las células diana durante el ensayo de citotoxicidad,
por incubación a 37°C durante aproximadamente dos horas antes del
ensayo. Para estos ratones del haplotipo H-2^{d}
del MCH, la línea celular de mastocitoma murino, P815, proporciona
células diana adecuadas. Las células diana sensibilizadas por el
antígeno se cargan con Na^{51}CrO_{4}, el cual se libera del
interior de las células diana al ser destruidas por los LTC, por
incubación de las dianas durante 1-2 horas a 37°C
(0,2 mCi para aproximadamente 5 x 10^{6} células) seguida de
varios lavados de dichas células diana. Poblaciones de LTC se
mezclan con las células diana en relaciones variables de efectores
a dianas tales como 100:1, 50:1, 25:1, etc, se sedimentan
conjuntamente y se incuban durante 4-6 horas a 37°C
antes de recoger los sobrenadantes, que se ensayan después en
cuanto a la liberación de radiactividad usando un contador gamma. La
citotoxicidad se calcula como un porcentaje del total de cuentas
que pueden liberarse de las células diana (obtenido usando un
tratamiento con el 0,2% de Triton X-100), del que
se ha sustraído la liberación espontánea de las células diana.
Se diseñaron ensayos ELISA para detectar los
anticuerpos generados contra el VIH usando cualquier proteína
recombinante específica gag p24 como antígenos sustrato. Placas de
microtítulo de 96 pocillos se recubrieron a 4°C durante toda la
noche con el antígeno recombinante a 2 \mug/ml en disolución de
PBS (solución salina tamponada con fosfato) usando 50
\mul/pocillo en una plataforma agitadora de balanceo. Los
antígenos consistieron en gag p24 recombinante (Intracell). Las
placas se lavaron cuatro veces usando tampón de lavado (PBS/0,05%
Tween 20) seguido de la adición de 200 \mul/pocillo de tampón de
bloqueo (disolución de leche evaporada Carnation al 1% en PBS/0,05%
Tween 20) durante 1 hora a temperatura ambiente con agitación por
balanceo. Los presueros y sueros inmunitarios se diluyeron en
tampón de bloqueo en el intervalo de diluciones deseado y se
añadieron 100 \mul por pocillo. Las placas se incubaron durante 1
hora a temperatura ambiente con agitación por balanceo y después se
lavaron cuatro veces con tampón de lavado. A cada muestra se
añadieron entonces anticuerpos secundarios conjugados con
peroxidasa de rábano (anti-Ig de Rhesus, Southern
Biotechnology Associates; anti-Ig de ratón y
anti-Ig de conejo, Jackson Immuno Research),
diluidos 1:2000 en tampón de bloqueo, a 100 \mul/pocillo, y se
incubó durante 1 hora a temperatura ambiente con agitación por
balanceo. Las placas se lavaron cuatro veces con tampón de lavado y
después se revelaron mediante la adición de 100 \mul/pocillo de
una disolución de o-fenilendiamina
(o-PD, Calbiochem) de 1 mg/ml en tampón citrato 100
mM a pH 4,5. Las placas se leyeron determinando la absorbancia a
450 nm, tanto cinéticamente (en los primeros 10 minutos de la
reacción), como en los puntos finales a 10 y a 30 minutos (lector
de microplacas Thermo max, Molecular Devices).
Se obtuvieron CMSP y se ensayaron en función de
las respuestas de memoria frente un antígeno específico como se
determina por la proliferación dentro de la población de CMSP. La
proliferación se monitoriza usando ^{3}H-timidina,
que se añade a los cultivos celulares durante las últimas
18-24 horas de incubación antes de su recogida. Los
recogedores de células retienen el ADN que contiene isótopos en
filtros si ha habido proliferación, mientras que las células
quiescentes no incorporan el isótopo, que no se retiene en el filtro
en forma libre. Para cada especie de roedor o primate se aplican 4
x 10^{5} células en placas de microtítulo de 96 pocillos, en un
total de 200 \mul de medio completo (RPMI/10% suero bovino fetal).
Las respuestas de proliferación de fondo se determinan usando CMSP
y medio solamente, mientras que las respuestas no específicas se
generan usando lectinas, como fitohemaglutinina (PHA) o
concanavalina A (Con A), a concentraciones de 1-5
\mug/ml para servir de control positivo. El antígeno específico
consiste en epítopos peptídicos conocidos, proteína purificada o
virus inactivados. Las concentraciones de antígeno oscilan de
1-10 \muM para los péptidos y de
1-10 \mug/ml para las proteínas. La proliferación
inducida por lectinas muestra un pico a los 3-5 días
de la incubación de los cultivos celulares, mientras que las
respuestas específicas para el antígeno muestran un pico a los
5-7 días. Una proliferación específica tiene lugar
cuando las cuentas de radiación obtenidas son al menos tres veces
superiores al fondo medio y se indica frecuentemente como una
relación respecto al fondo o índice de estimulación (IE).
Las estrategias que empleamos están diseñadas
para inducir tanto la respuesta de linfocitos T citotóxicos (LTC)
como la respuesta de anticuerpos neutralizantes contra el VIH,
dirigidas principalmente contra los productos génicos de gag
(conservado aproximadamente en el 95%) y env (gp160 o gp120;
conservados en el 70-80%) del VIH. La proteína
gp160 contiene los únicos epítopos de anticuerpos neutralizantes
conocidos en la partícula del VIH, mientras que la importancia de
las respuestas de LTC anti-Env y anti-gag se
ponen de relieve por la conocida asociación del comienzo de estas
inmunidades celulares con el aclaramiento de la viremia primaria
después de la infección, que tiene lugar antes de la aparición de
los anticuerpos neutralizantes [Koup y col., Virol.
68:4650 (1994)], así como el papel de los LTC en el
mantenimiento del estado libre de enfermedad. Aunque el VIH es
conocido por su diversidad genética, esperamos obtener una mayor
amplitud de anticuerpos neutralizantes, incluyendo varios genes
env representativos derivados de aislamientos clínicos y gp41
(conservada aproximadamente en el 90%; y contiene el epítopo
neutralizante más conservado 2F5), mientras que el muy conservado
gen gag debería generar amplias respuestas de LTC cruzadas
entre cepas. Dado que esta estrategia de vacuna genera fuertes
inmunidades humoral y celular contra el VIH en primates no humanos,
este enfoque ofrece ventajas únicas comparado con otras estrategias
disponibles de vacunación contra el VIH.
Basado en nuestros experimentos para la
expresión del gen env del VIH, utilizando genes que constan
de codones óptimos para la expresión en humanos, se diseñó y
sintetizó un gen sintético de gag p55 (opt gag) que contenía un uso
de codones óptimo a lo largo de todo el gen, resultando en
aproximadamente 350 mutaciones silenciosas (de un total de 1500 nt)
y se clonó en V1R. También se construyó una segunda forma del vector
de opt gag que contenía la secuencia codificante del péptido señal
de tPA en el extremo NH_{2}, similar al descrito anteriormente
para el gen env del VIH, y también eliminaba un motivo de
secuencia de localización nuclear situado en esta posición en el
gen de tipo natural. Esta modificación se diseñó para analizar si la
alteración de los patrones normales de tránsito intracelular para
gag en la ruta de secreción ER/Golgi podía alterar la
inmunogenicidad de la vacuna del ADN de gag. La adición del péptido
líder de tPA a gag ocasionó niveles mucho mayores de secreción de
gag y la proteína secretada migró como una forma de mayor peso
molecular comparada con gag de tipo natural. Esto indicó que una
modificación posttraduccional, probablemente glicosilación, tuvo
lugar como resultado de la modificación con el péptido líder de
tPA.
Los ratones que habían sido inmunizados con una
cualquiera de las dos construcciones de gag p55 optimizado
(V1R-opt gag \pm líder de tPA) o con
V1R-gag se analizaron en cuanto a respuestas de LTC
anti-péptidos gag después de una inyección (dosis
de vacunación = 10, 3,3 ó 1 \mug/ratón). Se generaron altos
niveles de LTC anti-gag con los ADN de los dos
V1R-opt gag a todas las dosis, dando
V1R-tPA-opt gag la mayor eficiencia
destructora específica (aproximadamente el 85% para E/D = 3 con la
dosis de 1 \mug). La comparación de las curvas de citotoxicidad
para cada dosis de ADN demostró que la vacunación con
V1R-tPA-opt gag produjo respuestas
de LTC 100 veces más fuertes que V1R gag (tipo natural). En
general, las respuestas inmunitarias para los tres tipos de vacunas
mostraron las mismas potencias relativas para las respuestas de LTC,
T auxiliares y anticuerpos (en orden de mayor a menor respuesta):
V1R-tPA-opt gag >
V1R-opt gag > V1R gag (tipo natural). En resumen,
las respuestas de LTC, humoral y de células T auxiliares son mucho
mayores para las construcciones de gag optimizado, especialmente
con un líder de tPA.
Una persona con necesidad de una inmunización
terapéutica o profiláctica contra la infección por el virus de la
inmunodeficiencia humana recibe la inyección de un ADN del VIH que
codifica todo o parte del gen gag o combinaciones del mismo
con la totalidad o parte de los genes env o pol. La
inyección puede ser intraperitoneal, subcutánea, intramuscular o
intradérmica. El ADN del VIH puede usarse como un cebador de la
respuesta inmunitaria o puede usarse como un refuerzo de la
respuesta inmunitaria. La inyección de ADN puede anteceder,
coincidir o seguir a la inyección de la persona con una composición
farmacéutica que comprende el VIH inactivado, VIH atenuado,
composiciones con proteínas derivadas del VIH o combinaciones de los
mismos.
Una persona con necesidad de un tratamiento
terapéutico para la infección por el virus de la inmunodeficiencia
humana se trata con un agente antiviral anti-VIH o
combinaciones del mismo. El individuo tratado es inyectado con las
composiciones farmacéuticas con el ADN del VIH de la presente
descripción.
Claims (7)
1. Un vector de vacuna de ADN plasmídico
para uso en la inducción de una respuesta inmunitaria contra el
virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) en un hospedador
mamífero, comprendiendo dicho vector de vacuna de ADN plasmídico
una secuencia polinucleotídica que codifica un antígeno gag del VIH,
y comprendiendo dicha secuencia polinucleotídica un marco de
lectura abierto completo para el antígeno gag del VIH como se
establece en ID SEC N°:1.
2. El vector de vacuna de ADN plasmídico
de la reivindicación 1, en el que la secuencia polinucleotídica que
codifica el antígeno gag del VIH consiste en el marco de lectura
abierto completo para el antígeno gag del VIH como se establece en
ID SEC N°:1.
3. Un vector de vacuna de ADN plasmídico
según la reivindicación 1 o la reivindicación 2 que comprende un
promotor inmediato-temprano de CMV operable y el
intrón A de CMV del lado 5' de la secuencia polinucleotídica que
codifica un antígeno gag del VIH.
4. El vector de vacuna de ADN plasmídico
de la reivindicación 3, que comprende una secuencia señal de tPA
del lado 3' del promotor inmediato-temprano de
CMV/intrón A de CMV, y en el que la secuencia polinucleotídica que
codifica un antígeno gag del VIH está en el lado 3' de la secuencia
señal de tPA.
5. El vector de vacuna de ADN plasmídico
de la reivindicación 3 o la reivindicación 4 que comprende además
una secuencia operable de terminación de BGH en el extremo 3' de la
secuencia polinucleotídica que codifica un antígeno gag del
VIH.
6. Una formulación farmacéutica que
comprende un vector de vacuna de ADN plasmídico según una cualquiera
de las reivindicaciones 1 a 5 y un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
7. El uso de un vector de vacuna
plasmídico como se define en una cualquiera de las reivindicaciones
1 a 5, para la preparación de un medicamento para la inducción de
una respuesta inmunitaria contra el virus de la inmunodeficiencia
humana en un hospedador mamífero.
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US3785497P | 1997-02-07 | 1997-02-07 | |
| US37854P | 1997-02-07 | ||
| GBGB9705040.5A GB9705040D0 (en) | 1997-03-12 | 1997-03-12 | Synthetic HIV GAG genes |
| GB9705040 | 1997-03-12 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2274566T3 true ES2274566T3 (es) | 2007-05-16 |
Family
ID=26311165
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES98904971T Expired - Lifetime ES2274566T3 (es) | 1997-02-07 | 1998-02-03 | Genes gag del vih sinteticos. |
Country Status (16)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0969862B1 (es) |
| JP (1) | JP2001512308A (es) |
| KR (1) | KR20000070865A (es) |
| CN (1) | CN1252075A (es) |
| AT (1) | ATE342916T1 (es) |
| AU (1) | AU743616B2 (es) |
| CA (1) | CA2280195A1 (es) |
| DE (1) | DE69836206T2 (es) |
| DK (1) | DK0969862T3 (es) |
| EE (1) | EE9900343A (es) |
| ES (1) | ES2274566T3 (es) |
| IL (1) | IL131131A0 (es) |
| NO (1) | NO993810L (es) |
| PL (1) | PL335050A1 (es) |
| SK (1) | SK106699A3 (es) |
| WO (1) | WO1998034640A2 (es) |
Families Citing this family (68)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6228128B1 (en) | 1997-11-10 | 2001-05-08 | Charlotte Johansen | Antimicrobial activity of laccases |
| GB9803351D0 (en) * | 1998-02-17 | 1998-04-15 | Oxford Biomedica Ltd | Anti-viral vectors |
| US7935805B1 (en) | 1998-12-31 | 2011-05-03 | Novartis Vaccines & Diagnostics, Inc | Polynucleotides encoding antigenic HIV Type C polypeptides, polypeptides and uses thereof |
| AU2221600A (en) * | 1998-12-31 | 2000-07-31 | Chiron Corporation | Improved expression of hiv polypeptides and production of virus-like particles |
| AU2487300A (en) * | 1998-12-31 | 2000-07-31 | Chiron Corporation | Polynucleotides encoding antigenic hiv type c polypeptides, polypeptides and uses thereof |
| WO2000029561A2 (en) | 1999-03-29 | 2000-05-25 | Statens Serum Institut | Nucleotide construct with optimised codons for an hiv genetic vaccine based on a primary, early hiv isolate and synthetic envelope |
| US8647864B2 (en) | 1999-04-14 | 2014-02-11 | Novartis Ag | Compositions and methods for generating an immune response utilizing alphavirus-based vector systems |
| BR0010077A (pt) * | 1999-04-26 | 2002-01-15 | K U Leuven Res & Dev Universit | Gene sintético para expressão de uma proteìna retroviral ativa em eucariotas |
| CA2378539A1 (en) | 1999-07-06 | 2001-01-11 | Merck & Co., Inc. | Adenovirus carrying gag gene hiv vaccine |
| EP1212358B1 (en) * | 1999-08-25 | 2004-12-15 | Merck & Co., Inc. | Synthetic papillomavirus genes optimized for expression in human cells |
| US6316253B1 (en) | 1999-11-01 | 2001-11-13 | Chiron Corporation | Expression vectors, transfection systems, and method of use thereof |
| US6656706B2 (en) | 1999-12-23 | 2003-12-02 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Molecular clones with mutated HIV gag/pol, SIV gag and SIV env genes |
| US7655774B2 (en) * | 2000-02-18 | 2010-02-02 | University Of Washington | Ancestral and COT viral sequences, proteins and immunogenic compositions |
| DE60026199T2 (de) | 2000-05-18 | 2006-11-23 | Geneart Ag | Synthetische Gene für gagpol und deren Verwendungen |
| GB0014288D0 (en) | 2000-06-10 | 2000-08-02 | Smithkline Beecham Biolog | Vaccine |
| HK1056195B (en) * | 2000-07-21 | 2007-06-22 | Glaxo Group Limited | Codon-optimized papilloma virus sequences |
| US6680059B2 (en) | 2000-08-29 | 2004-01-20 | Tripep Ab | Vaccines containing ribavirin and methods of use thereof |
| US6858590B2 (en) | 2000-08-17 | 2005-02-22 | Tripep Ab | Vaccines containing ribavirin and methods of use thereof |
| JP5175417B2 (ja) | 2000-08-17 | 2013-04-03 | トリペップ アクチ ボラゲット | リバビリンを含むワクチンおよびその使用方法 |
| US7022830B2 (en) * | 2000-08-17 | 2006-04-04 | Tripep Ab | Hepatitis C virus codon optimized non-structural NS3/4A fusion gene |
| US6733993B2 (en) | 2000-09-15 | 2004-05-11 | Merck & Co., Inc. | Enhanced first generation adenovirus vaccines expressing codon optimized HIV1-gag, pol, nef and modifications |
| ES2340499T3 (es) | 2001-06-05 | 2010-06-04 | Curevac Gmbh | Arnm de antigeno tumoral estabilizado con un contenido de g/c aumentado. |
| ES2331909T3 (es) | 2001-06-14 | 2010-01-20 | The Scripps Research Institute | Factor viii estabilizado con enlaces disulfuro modificados geneticamente. |
| EP2280074A3 (en) | 2001-07-05 | 2011-06-22 | Novartis Vaccines and Diagnostics, Inc. | Polynucleotides encoding antigenic HIV type B and/or type C polypeptides, polypeptides and uses thereof |
| EP1411770A4 (en) | 2001-07-05 | 2006-05-10 | Chiron Corp | POLYNUCLEOTIDES CODING FOR ANTIGENIC C-TYPE HIV POLYPEPTIDES, POLYPEPTIDES AND THEIR USE |
| WO2003012117A1 (en) * | 2001-07-28 | 2003-02-13 | The Secretary Of State For Defence | Dna vaccine |
| AR045702A1 (es) | 2001-10-03 | 2005-11-09 | Chiron Corp | Composiciones de adyuvantes. |
| DE10162480A1 (de) | 2001-12-19 | 2003-08-07 | Ingmar Hoerr | Die Applikation von mRNA für den Einsatz als Therapeutikum gegen Tumorerkrankungen |
| FR2845918A1 (fr) * | 2002-10-16 | 2004-04-23 | Pasteur Institut | Preparations immunogenes et vaccinantes a base d'arn |
| WO2003059381A2 (en) * | 2002-01-18 | 2003-07-24 | Curevac Gmbh | Immunogenic preparations and vaccines on the basis of mrna |
| DE10260805A1 (de) * | 2002-12-23 | 2004-07-22 | Geneart Gmbh | Verfahren und Vorrichtung zum Optimieren einer Nucleotidsequenz zur Expression eines Proteins |
| KR101080628B1 (ko) | 2003-03-24 | 2011-11-08 | 머크 샤프 앤드 돔 코포레이션 | 효모에서 hpv 31 l1의 최적 발현 |
| US7731967B2 (en) | 2003-04-30 | 2010-06-08 | Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. | Compositions for inducing immune responses |
| GB0321615D0 (en) | 2003-09-15 | 2003-10-15 | Glaxo Group Ltd | Improvements in vaccination |
| GB0321614D0 (en) * | 2003-09-15 | 2003-10-15 | Glaxo Group Ltd | Vaccines |
| MY140664A (en) | 2003-09-29 | 2010-01-15 | Merck Sharp & Dohme | Optimized expression of hpv 45 l1 in yeast |
| MY139500A (en) | 2003-11-12 | 2009-10-30 | Merck Sharp & Dohme | Optimized expression of hpv 58 l1 in yeast |
| WO2005063286A1 (en) | 2003-12-23 | 2005-07-14 | Arbor Vita Corporation | Antibodies for oncogenic strains of hpv and methods of their use |
| MY148656A (en) | 2004-03-24 | 2013-05-15 | Merck Sharp & Dohme | Optimized expression of hpv 52 l1 in yeast. |
| DE102004037611B4 (de) * | 2004-08-03 | 2013-10-02 | Geneart Ag | Induzierbare Genexpression |
| CN101072585A (zh) | 2004-11-01 | 2007-11-14 | 诺华疫苗和诊断公司 | 产生免疫应答的组合方法 |
| KR101158756B1 (ko) | 2006-12-20 | 2012-06-22 | (주) 에빅스젠 | 코돈 최적화시킨 hiv의 nc 폴리뉴클레오티드, 상기폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터 및 이를 이용한 nc단백질의 생산방법 |
| US8071561B2 (en) | 2007-08-16 | 2011-12-06 | Chrontech Pharma Ab | Immunogen platform |
| EP3067048B1 (en) | 2007-12-07 | 2018-02-14 | GlaxoSmithKline Biologicals SA | Compositions for inducing immune responses |
| UY32341A (es) | 2008-12-19 | 2010-07-30 | Glaxo Group Ltd | Proteínas de unión antígeno novedosas |
| PE20170687A1 (es) | 2010-01-28 | 2017-06-13 | Glaxo Group Ltd | Proteinas de enlace a cd127 |
| UA108227C2 (xx) | 2010-03-03 | 2015-04-10 | Антигензв'язуючий білок | |
| AR081556A1 (es) | 2010-06-03 | 2012-10-03 | Glaxo Group Ltd | Proteinas de union al antigeno humanizadas |
| JP5883443B2 (ja) | 2010-07-22 | 2016-03-15 | グラクソスミスクライン バイオロジカルズ ソシエテ アノニム | 新規の抗原結合タンパク質 |
| WO2012019168A2 (en) | 2010-08-06 | 2012-02-09 | Moderna Therapeutics, Inc. | Engineered nucleic acids and methods of use thereof |
| WO2012021730A2 (en) | 2010-08-11 | 2012-02-16 | Genvec, Inc. | Respiratory syncytial virus (rsv) vaccine |
| EP2625189B1 (en) | 2010-10-01 | 2018-06-27 | ModernaTX, Inc. | Engineered nucleic acids and methods of use thereof |
| AU2012236099A1 (en) | 2011-03-31 | 2013-10-03 | Moderna Therapeutics, Inc. | Delivery and formulation of engineered nucleic acids |
| US9464124B2 (en) | 2011-09-12 | 2016-10-11 | Moderna Therapeutics, Inc. | Engineered nucleic acids and methods of use thereof |
| DE19216461T1 (de) | 2011-10-03 | 2021-10-07 | Modernatx, Inc. | Modifizierte nukleoside, nukleotide und nukleinsäuren und verwendungen davon |
| CA3018046A1 (en) | 2011-12-16 | 2013-06-20 | Moderna Therapeutics, Inc. | Modified nucleoside, nucleotide, and nucleic acid compositions |
| US9254311B2 (en) | 2012-04-02 | 2016-02-09 | Moderna Therapeutics, Inc. | Modified polynucleotides for the production of proteins |
| US9283287B2 (en) | 2012-04-02 | 2016-03-15 | Moderna Therapeutics, Inc. | Modified polynucleotides for the production of nuclear proteins |
| WO2013151665A2 (en) | 2012-04-02 | 2013-10-10 | modeRNA Therapeutics | Modified polynucleotides for the production of proteins associated with human disease |
| US9572897B2 (en) | 2012-04-02 | 2017-02-21 | Modernatx, Inc. | Modified polynucleotides for the production of cytoplasmic and cytoskeletal proteins |
| WO2013166099A1 (en) | 2012-05-01 | 2013-11-07 | Glaxosmithkline Llc | Novel antibodies |
| PL2922554T3 (pl) | 2012-11-26 | 2022-06-20 | Modernatx, Inc. | Na zmodyfikowany na końcach |
| US8980864B2 (en) | 2013-03-15 | 2015-03-17 | Moderna Therapeutics, Inc. | Compositions and methods of altering cholesterol levels |
| WO2015048744A2 (en) | 2013-09-30 | 2015-04-02 | Moderna Therapeutics, Inc. | Polynucleotides encoding immune modulating polypeptides |
| EP3052521A1 (en) | 2013-10-03 | 2016-08-10 | Moderna Therapeutics, Inc. | Polynucleotides encoding low density lipoprotein receptor |
| WO2015062738A1 (en) | 2013-11-01 | 2015-05-07 | Curevac Gmbh | Modified rna with decreased immunostimulatory properties |
| WO2016059602A2 (en) | 2014-10-16 | 2016-04-21 | Glaxo Group Limited | Methods of treating cancer and related compositions |
| US12070495B2 (en) | 2019-03-15 | 2024-08-27 | Modernatx, Inc. | HIV RNA vaccines |
Family Cites Families (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AP129A (en) * | 1988-06-03 | 1991-04-17 | Smithkline Biologicals S A | Expression of retrovirus gag protein eukaryotic cells |
| EP0510054A1 (en) * | 1990-01-05 | 1992-10-28 | United Biomedical, Inc. | Hiv-1 core protein fragments |
| EP0565794A1 (en) * | 1992-04-14 | 1993-10-20 | British Biotech Pharmaceuticals Limited | Induction of CTL responses |
| HU219767B (hu) * | 1993-01-26 | 2001-07-30 | Leslie R. Coney | Készítmények és eljárások genetikai anyag sejtbe történő beviteléhez |
| US5795737A (en) * | 1994-09-19 | 1998-08-18 | The General Hospital Corporation | High level expression of proteins |
| US5786464C1 (en) * | 1994-09-19 | 2012-04-24 | Gen Hospital Corp | Overexpression of mammalian and viral proteins |
| PL328730A1 (en) * | 1996-02-22 | 1999-02-15 | Merck & Co Inc | Synthetic hiv genes |
| US6114148C1 (en) * | 1996-09-20 | 2012-05-01 | Gen Hospital Corp | High level expression of proteins |
-
1998
- 1998-02-03 EE EEP199900343A patent/EE9900343A/xx unknown
- 1998-02-03 DK DK98904971T patent/DK0969862T3/da active
- 1998-02-03 JP JP53490598A patent/JP2001512308A/ja active Pending
- 1998-02-03 DE DE69836206T patent/DE69836206T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1998-02-03 KR KR1019997007130A patent/KR20000070865A/ko not_active Withdrawn
- 1998-02-03 IL IL13113198A patent/IL131131A0/xx unknown
- 1998-02-03 CN CN98803975A patent/CN1252075A/zh active Pending
- 1998-02-03 CA CA002280195A patent/CA2280195A1/en not_active Abandoned
- 1998-02-03 EP EP98904971A patent/EP0969862B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1998-02-03 AU AU62711/98A patent/AU743616B2/en not_active Ceased
- 1998-02-03 PL PL98335050A patent/PL335050A1/xx unknown
- 1998-02-03 AT AT98904971T patent/ATE342916T1/de not_active IP Right Cessation
- 1998-02-03 WO PCT/US1998/002293 patent/WO1998034640A2/en not_active Ceased
- 1998-02-03 ES ES98904971T patent/ES2274566T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1998-02-03 SK SK1066-99A patent/SK106699A3/sk unknown
-
1999
- 1999-08-06 NO NO993810A patent/NO993810L/no not_active Application Discontinuation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| IL131131A0 (en) | 2001-01-28 |
| PL335050A1 (en) | 2000-03-27 |
| AU6271198A (en) | 1998-08-26 |
| DE69836206T2 (de) | 2007-08-23 |
| JP2001512308A (ja) | 2001-08-21 |
| AU743616B2 (en) | 2002-01-31 |
| EP0969862A2 (en) | 2000-01-12 |
| DE69836206D1 (de) | 2006-11-30 |
| CA2280195A1 (en) | 1998-08-13 |
| KR20000070865A (ko) | 2000-11-25 |
| DK0969862T3 (da) | 2007-02-12 |
| EP0969862B1 (en) | 2006-10-18 |
| CN1252075A (zh) | 2000-05-03 |
| EE9900343A (et) | 2000-02-15 |
| WO1998034640A3 (en) | 1998-11-19 |
| NO993810L (no) | 1999-10-07 |
| SK106699A3 (en) | 2000-06-12 |
| NO993810D0 (no) | 1999-08-06 |
| ATE342916T1 (de) | 2006-11-15 |
| WO1998034640A2 (en) | 1998-08-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2274566T3 (es) | Genes gag del vih sinteticos. | |
| ES2251734T3 (es) | Genes sinteticos de hiv. | |
| US6696291B2 (en) | Synthetic HIV gag genes | |
| JP3967374B2 (ja) | 同調的インビボ遺伝子発現 | |
| ES2230596T3 (es) | Mezcla de vectores de vaccinia recombinantes como vacunas poligueur contra el vih. | |
| Coney et al. | Facilitated DNA inoculation induces anti-HIV-1 immunity in vivo | |
| US20030229214A1 (en) | Vaccines comprising synthetic genes | |
| JP2000516445A (ja) | 合成遺伝子を含むワクチン | |
| US6004799A (en) | Recombinant live feline immunodeficiency virus and proviral DNA vaccines | |
| JPH08509694A (ja) | 遺伝物質送達のための組成物および方法 | |
| US7122180B2 (en) | DNA vectors containing mutated HIV proviruses | |
| JP2010001290A (ja) | 遺伝子ワクチンのための弱毒化vifDNA免疫化カセット | |
| JPH08500965A (ja) | ハイブリッドウイルス発現ベクター,その使用および新規アッセイ | |
| ES2329768T3 (es) | Poxvirus recombinantes para las proteinas quimericas del virus de inmunodeficiencia humana. | |
| JP2004537303A (ja) | 抗原性b型hivポリペプチドおよび/または抗原性c型hivポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、それらのポリペプチドおよびそれらの使用 | |
| PT969862E (pt) | Genes sintéticos gag de hiv | |
| US20030087225A1 (en) | Synthetic HIV genes | |
| MXPA99007248A (es) | Genes gag de vih sinteticos | |
| MXPA98006842A (es) | Genes sinteticos de vih | |
| CZ276699A3 (cs) | Syntetické GAG geny HIV | |
| CA2245646A1 (en) | Synthetic hiv genes |