ES2284251T3 - Inmunosupresion mediante bloqueo de la señal 2 de coactivacion de celulas t (interaccion b7/cd28). - Google Patents
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Abstract
Un reactivo biológico capaz de inhibir el rechazo mediado por células T de un ogaño xenotransplantado en un organismo receptor mediante el bloqueo del suministro de JES señal 2 co-estimulatoria para impedir la activación de las células T xenoreactivas en el receptor, en que el reactivo es una forma soluble de proteína porcina. CTLA-4.
Description
Inmunosupresión mediante bloqueo de la señal 2
de coactivación de células T (interacción B7/CD28).
Esta invención se refiere a la supresión de
rechazo de xenoinjerto (xenograft).
El éxito del transplante alogeneico de órganos
se ha establecido en estas últimas décadas, pero el suministro
limitado de órganos de donantes significa que muchos pacientes
tienen poca o ninguna probabilidad de recibir un órgano
transplantado tal como un riñón, corazón o hígado. Un número
significante de estas personas fallece mientras espera un órgano.
Una solución potencial es el "xenoinjerto" o el uso de órganos
procedentes de un donante animal no humano
("xenogeneico").
Se cree que los órganos de un donante porcino
son candidatos apropiados porque los cerdos son anatómica y
fisiológicamente similares a los humanos y su oferta es abundante.
Sin embargo, los órganos porcinos se rechazan rápidamente por
revascularición mediante un proceso humoral llamado rechazo
hiperagudo (HAR). Este es causado por anticuerpos naturales o no
sintéticos en el receptor, que reconoce y transreaciona con
antígenos en las células del endotelio (ECs) del xenoinjerto o
xenograft. Este reconocimiento activa la cascada de complementos
que, a su vez, lleva al rechazo.
La patente Europea 0495852 (Imutran) sugiere que
los reguladores, vinculados a membrana, del complemento huésped se
expresaría en el xenoinjerto a fin de prevenir la activación
completa de complemento en el órgano receptor. El procedimiento o
método de estudio ha sido desarrollado y aplicado a fin de producir
animales transgénicos con órganos destinados a sobrevivir el
rechazo hiperagudo (eg. refs 1 & 2).
Sin embargo, los órganos, que sobreviven el HAR,
están sometidos a rechazo de xenoinjerto retrasado (DXR). Este se
caracteriza por la infiltración de células inflamatorias del
receptor y trombosis de vasos de injerto, que llevan a isquemia. La
WO98/42850 muestra que la expresión de inhibidores de la
coagulación sobre la superficie del xenoinjerto puede inhibir el
aspecto trombótico de este tipo de rechazo.
HAR y DXR se siguen por la respuesta mediada por
linfocitos T huésped. Hay dos vías, "directa" e
"indirecta" mediante las cuales las células T podrán
sensibilizarse contra xenoantígenos. La vía directa implica
interacciones entre células T y moléculas MHC sobre células de
donante xenogeneico, mientras que la vía indirecta implica la
presentación de xenoantígenos procesados por APCs huésped en el
contexto de MHC clase II. La respuesta indirecta de las células T es
mucho más fuerte contra xenoantígenos que contra aloantígenos [3],
que contrasta con conclusiones para la vía directa [4], indicando
que tanto las respuestas directas como indirectas de las células T
humanas contra xenoantígenos deben ser suprimidas si ha de ser
efectivo el xenotransplante.
Parece que la supresión de respuestas indirectas
de las células T al anti-injerto o
anti-xenograft serán uno de los mayores retos para
el xenotransplante (5,6). Mantener el nivel de
inmuno-supresión requerida para prevenir el rechazo
crónico del xenoinjerto o xenograft debido a la persistente
inmunogenicidad indirecta podría ser no factible al usar fármacos
inmunosupresivos sistémicos convencionales a causa de los riesgos
incrementados de infección y neoplasia [eg. 7]. Claramente, si el
xenotransplante ha de ser clínicamente exitoso, se necesitan
métodos para promover la inmunosupresión
injerto-específica a fin de reducir los requisitos
para una terapia sistémica.
La activación de células T requiere dos señales
separadas. La entrega de la señal 1 sola induce un estado
refractario "anergía", definido como la incapacidad de
producir IL-2 después de subsiguiente exposición
antigénica. Para que se presente la activación completa la célula
debe ser coestirnulada con la señal 2.
In vivo, la señal 1 se provee mediante la
interacción del complejo TCR/CD4 con MHC alogeneico o péptido
antigénico complejado con MHC en sí; la señal 2 se suministra
mediante la interacción entre moléculas B7 (B7.1 y B7.2, también
conocidos como CD80 y CD86, respectivamente) sobre la célula, que
presenta antígeno,(APC) y CD28 sobre la célula T.
Los anticuerpos monoclonales (mAbs) han
desempeñado un papel clave en el estudio de la activación de las
células T. La señal 1 se puede suministrar por mAbs dirigidos
contra el complejo TCR/CD3, y mAbs contra CD28 puede proveer la
señal 2. Realmente, las células T se pueden activar por dos mAbs
apropiados, incluso en la ausencia de APC. La activación también se
puede prever, más que proveer, usando mABs. La señal 2 se puede
boquear, por ejemplo, usando mAbs, que bloquean B7 o CD28.
La señal 2 también se puede bloquear usando
formas modificadas de CTLA-4, un ligando de alta
afinidad para B7. CTLA-4 es un regulador negativo
natural de la activación de células T, y B7 que se liga a
CTLA-4 sobre una célula T activada, antagoniza la
señal co-estimulatoria provista por la interacción
B7/CD28. Formas solubles de CTLA-4, que constan de
los dominios extracelulares de CTLA-4 unidos al
dominio constante de un anticuerpo, han sido construidas [8,924]
para bloquear la activación de células T. Estas moléculas
("CTLA4-Ig" o "CTLA4-Fc")
se comportan en un modo similar a los anticuerpos
anti-B7 y se han usado in vitro e in
vivo para prevenir las funciones coestimulatorias de B7 y, por
consiguiente, promover la tolerancia [10].
El centrado de la interacción B7/CD28 para
prevenir la sensibilización de las células T a antígenos injerto
in vivo ha demostrado ser una estrategia efectiva para
aumentar la supervivencia del injerto. Usando
CTLA4-Ig, se ha conseguido una supervivencia
prolongada en diversos modelos de xenoinjerto (eg. 11) y en un
modelo de xenoinjerto o xenograft de isleta humano a murine [12].
En el modelo de xenoinjerto o xenograft, la administración de
CTLA-Ig causó tolerancia total o completa contra
los xeno-antígenos volviendo anérgicas las células T
reactivas
directas.
directas.
Es, por consiguiente, un objeto de la invención
proveer medios para promover inmunosupresión
xenoinjerto-específica. En particular, es un objeto
de la invención inhibir el rechazo, mediado por células T, de
órganos xenotransplantados mediante la prevención de las células T
del receptor del órgano de preparar una respuesta inmune contra el
órgano. Más específicamente, es un objeto prevenir esta respuesta
inmunológica mediante la inducción de anergía en las células T del
receptor, que reconocen el órgano xenotransplantado, dando por
resultado una tolerancia de las células T
xenoinjerto-específicas.
La invención provee métodos y reactivos
biológicos para inhibir el rechazo mediado por células T, de un
órgano xenotransplantado mediante el bloqueo del suministro de
señal 2 coestimulatoria a fin de prevenir la activación de células
T xenoreactivas en el receptor.
Se previene la coestimulación por la señal 2
mediante la administración al receptor del órgano de una forma
soluble de CTLA-4 procedente del organismo del
donante xenogeneico. Si, por ejemplo, ha sido transplantado a un
ser humano (receptor) un órgano de cerdo (donante), sería
administrada al ser humano una forma soluble de
CTLA-4 porcino (véase más abajo).
Aunque CTLA-4 procedente de un
organismo (eg. cerdo) es capaz de unirse a B7 procedente de otro
organismo (e.g., ser humano), se encuentra la más alta avidez para
B7 alogeneico. Por consiguiente, aunque CTLA-4
soluble procedente del organismo donante se puede unir tanto al B7
del receptor (sobre células normales) como B7 del donante (sobre
células xenotransplantadas), une preferentemente B7 sobre el
xenoinjerto o xenograft. Esto da como resultado inmunosupresión
xenoinjerto-específico a diferencia de la
administración de CTLA-4 procedente del organismo
receptor, que tendería a conducir a inmunosupresión sistémica.
Mediante el bloqueo de la interacción entre B7 sobre las células de
donante xenogeneico y CD28 sobre células T del receptor, no se
suministra la señal 2 coestimulatoria a la célula T del receptor.
Por consiguiente las células T del recetor xenoreactivas se vuelven
anérgicas.
Así pues, la invención provee un método de
inducción de la tolerancia del xenotransplante en un receptor de
órgano, que comprende la administración a dicho receptor de una
forma soluble de la proteína CTLA-4 procedente del
organismo donante xenogeneico.
La forma soluble de CTLA-4
comprende, de preferencia, un fragmento de la
CTLA-4 procedente del organismo donante, que retiene
la capacidad de unirse a B7. Este fragmento es, de preferencia, el
dominio extracelular completo de CTLA-4.
De preferencia, la proteína soluble comprende,
además, el dominio constante de una inmunoglobulina [e.g., la
cadena C\gamma1 de IgG1). Con preferencia, esta procede del
organismo receptor, a fin de prevenir una inmunorespuesta contra
esta porción de la molécula.
En el caso de una forma de realización típica
para transplante cerdo a ser humano, por consiguiente, la proteína
soluble comprenderá el dominio extracelular de
CTLA-4 porcina fusionada a una secuencia C\gamma1
humana.
Formas solubles de CTLA-4
procedente de otros organismos se describen por ejemplo, en
referencia 8 (región constante humano CTLA-4/humano
Ig\gamma1) y 9 (CTLA-4 murina/ Ig\gamma1
humana).
La invención también provee el uso de una forma
soluble de CTLA-4 xenogeneica en la preparación de
un medicamento para inducir tolerancia al xenoinjerto o xenograft
en un receptor de órgano.
La proteína se podrá administrar antes, durante
o después del xenotransplante. La administración prexenotransplante
es muy útil cuando el receptor se está sometiendo a programa de
inmunización pretransplante, que implica exposición a células
xenogeneicas.
En el contexto de un cerdo, que es el organismo
donante, la invención provee una proteína, que comprende la
secuencia de aminoácidos, predentada en la figura 2 como SEQ ID:1,
que es CTLA-4 clonada de células porcinas. Esta es
la forma preferida de CTLA-4 para su uso en la
invención. En la figura 2 también se muestra el dominio
extracelular de esta proteína.
La invención también provee ácido nucleico, que
codifica proteína SEQ ID: 1 (o fragmentos de ésta). Esta comprende
preferentemente la secuencia de nucleotidos representada en la
figura 3 como SEQ ID:2.
\newpage
Además, la invención provee un vector, que
comprende el ácido nucleico de la invención, y una célula
transformada con tal como un vector.
Como se usa más arriba, el término "ácido
nucleico" incluye tanto DNA como RNA, aunque también se incluyen
ácidos nucleicos sintéticos y modificados. Por ejemplo, el ácido
nucleico pudiera se sintético (e.g., PNA) o podría tener enlaces
inter-nucleotidos modificados (e.g.,
fosforotioatos). Además, el término incluye secuencias de ácidos
nucleicos tanto sentido como antisentido, así como secuencias de
doble trenzado.
Preferentemente el ácido nucleico comprende
secuencias apropiadas para la regulación de expresión de proteína
de acuerdo con la invención. Esta expresión puede controlarse
preferentemente, p.ej., corno control
célula-específico, control inducible o control
temporal.
Como se usa más arriba, el término "vector"
significa una molécula que es capaz de transferir ácido nucleico a
una célula huésped, y en la técnica se conocen numerosos vectores
apropiados.
Con preferencia el vector es adecuado para la
producción de un animal transgénico no humano. En las referencias
13, 14, 15, 16 y 17 se describen, por ejemplo, vectores idóneos
para la generación de cerdos transgéni-
cos.
cos.
Como se usa más arriba, el término "sistema de
suministro" se refiere a medios para suministrar material
genético a una célula blanco.
Algunos vectores como descritos anteriormente
también podrían funcionar como sistemas de suministro apropiados.
Igualmente, algunos sistemas de suministro también pudieran ser
inherentemente vectores, pero esto no siempre es el caso. Por
ejemplo, un vector vital también puede funcionar como un sistema de
suministro, mientras que un sistema de suministro liposomal no es un
vector. El sistema de suministro podrá ser viral o no viral. Los
sistemas no virales, tales como los liposomas, evitan algunas de las
dificultades asociadas con sistemas badados en virus, tal como el
coste de producción a escala, pobre persistencia de expresión y
consideraciones respecto a la seguridad. Preferentemente el sistema
de suministro es apropiado para su uso en geneterapia. En la técnica
se conocen numerosos sistemas de suministro apropiados.
Con preferencia, el sistema de suministro será
direccionado de tal manera que las moléculas de acuerdo con la
invención se absorben por células adecuadas para xenotransplante, o
células que han sido transplantadas. Más preferentemente el sistema
de suministro será específico para estas células. Por ejemplo, el
sistema de suministro se podría centrar en un órgano específico,
tal como el corazón o el riñón, o en un tipo de célula específica,
tal como células endoteliales o APC profesional.
Para lograr esto el sistema de suministro podría
ser, por ejemplo, un sistema de suministro mediado por el receptor,
que es direccionado a receptores encontrados en células blanco u
objetivo. Por ejemplo, el sistema de suministro pudiera ser
direccionado a receptores encontrados en células del corazón, o
pudiera ser direccionado a receptores encontrados en células del
endotelio, con preferencia a receptores encontrados exclusivamente
en células
endoteliales.
endoteliales.
Con preferencia, el sistema de suministro es
apropiado para la generación de un animal transgénico no humano.
Por ejemplo, el sistema de entrega pudiera ser direccionado a un
gameto, un zigoto o una célula madre o troncal embriónica.
Los vectores y los sistemas de suministro de la
invención se pueden usar para transfectar células a fin de producir
células de acuerdo con la invención. La transfección puede ocurrir
in vivo o ex vivo.
El término "tejido biológico" como se usa
más arriba incluye colecciones de células, tejidos y órganos. En
consecuencia la definición incluye, por ejemplo, fibroblastos, una
córnea, tejido nervioso, un corazón, un hígado o un riñón.
Ahora se describirá la invención con referencia
a los dibujos anexos, en los cuales:
La figura 1 ilustra la invención. "X"
representa una célula xenogeneica (o, en la vía de activación
indirecta, un APC del receptor, que presenta xenoantígeno), y
representa una célula T de receptor. En la invención, el suministro
de la señal 2 co-estimulatoria se previene usando
una forma soluble de CTLA-4. En la forma de
realización comparativa II, se usa
anti-CTLA-4 para antagonizar la
señal 2. En la forma de realización comparativa III, X expresa
MHC-II del receptor, pero no expresa B7.
La figura 2 muestra la secuencia de aminoácidos
de pCTLA-4 (SEQ ID NO:1). Las siguientes uniones se
ilustran por una "*": señal peptido/dominio extracelular;
dominio extracelular/dominio transmembrana; dominio
transmembrana/dominio citoplásmico. También se muestra una
alineación con las secuencias humano y bovino. Las homologías con
pCTLA-4:
La figura 3 muestra una alineación similar, pero
a un nivel de nucleótidos. Las homologías son como sigue:
La figura 4 muestra la secuencia de aminoácidos
de la construcción pCTLA-4-Ig. La
secuencia subrayada muestra el linker flexible GGSGGAA, que también
denota la unión entre pCTLA4 y los dominios IgGI.
La figura 5 muestra los resultados del análisis
citométrico de flujo de hCTLA4-Ig (o & \Box)
y pCTLA4-Ig (0 & \Delta) que se ligan a
fibroplastos humanos transfectados con B7 humano (dos líneas
inferiores) o B7 porcino (dos líneas superiores).
La figura 6 muestra la inhibición selectiva de
proliferación por pCTLA4-Ig (o & \Delta)
comparado con hCTLA 4-Ig (\Box & 0) cuando
co-estimulado por B7 humano (\Box & o) o B7
porcino (0 & \Delta).
La figura 7 muestra la inhibición de CD4^{+}
proliferación de células T por hCTLA4-Ig (\Box) o
pCTLA4-Ig (0) cuando se usaron como estimuladores
en una reacción de leucocitos mezclados de cinco días células
humanas (7A) o porcinas (7B), que expresan MHC-clase
II.
La figura 8 muestra (A) la secuencia de
nucleotidos y (B) la secuencia de aminoácidos de
CTLA-4 humana. Se subraya el codon de partida. En
la posición -21, la secuencia difiere de la secuencia GenBank
L15006, y en la posición 110 la secuencia difiere tanto de L15006
como de M74363.
La CTLA-4 porcina
("pCTLA4") se clonó procedente de células T cerdo
PHA-activada. Se preparo RNA usando técnicas
estándar y se amplificó pCTLA4 por PCR usando primers:
| 5'-TTGAAGCTTAGCCATGGCTTGCTCTGGA-3' |
| (5' primer) |
| 5'-TAATGAATTCTCAATTGATGGGAATAAAATAAG-3' |
| (3' primer) |
El fragmento 700 bp resultante se subclonó a
EcoRI/HindIII digerido pBluescript, y se determinó la secuencia de
nucleotidos usando el T3 estándar y los primers T7. La secuencia de
un único clon se muestra en la figura 3, que también muestra una
comparación con las secuencias CTLA-4 humana y
bovina.
La predicha secuencia de aminoácidos de pCTLA4
se muestra en la figura 2, con una comparación con la de humano y
ganado. Es significativa la diferencia de aminoácidos predicha en
el residuo 97, que es importante en el enlace B7, que forma parte
del motivo hexapéptido conservado MYPPPY. En pCTLA4, residuo 97 es
la leucina (que da LYPPPY), mientras que otras especies tienen
metionina (aunque también se ha encontrado leucina en CD28 [21]
bovina). Esta importante diferencia de aminoácidos se cree que es de
importancia para el enlace o ligazón diferencial ventajosa de
pCTLA4 a B7 humano y de cerdo.
El dominio extracelular de pCTLA4 se amplifico
usando el primer 5' descrito anteriormente y
5'-
CGGTTCTGCAGCACACCGGAGCCACCATCAGAATCTGGGCATGGTTCTGGATCAATGAC-3'
Este amplificado desde posición 484, introdujo
un segmento de 18 base-pares, que codifica un
linker GGSGGAA secuencia (subrayada), e introdujo un sitio
PstI (bold) para permitir una ligación; en bastidor a la
región bisagra de IgG1 humana. El fragmento 500 bp resultante se
subclonó en HindIII/PstI digerido
pBluescript-IgG1, que contiene DNA genómico, que
codifica secuencias intrónicas y la bisagra, CH2, CH3 y 3' exones
no transladados de IgG1 humano entre sitios
Pstj/NotI. En la figura 4 se muestra la secuencia de
aminoácidos de la pCTLA4-Ig soluble resultante.
Se descargó de pBluescript la quimérica
secuencia de pCTLA4-Ig DNA como un fragmento
HindII/BstXI y se subclonó en el vector de expresión
pHooK-3^{TM} (invitrógeno). Este se usó para
transfectar células DAP.3 o CHO-K1 usando una
precipitación estándar de fosfato de calcio. Se separaron células
resistentes a G418 usando el sistema de CaptureTec^{TM}. Estas
células transfectadas crecieron en frascos para cultivo de tejidos
hasta confluente, momento en el cual se cambió el medio y las
células se mantuvieron en cultivo durante 3 días más. En esta fase
se cosechó y se filtró el medio a través de columna de proteína G.
Se eluyó pCTLA-4-Ig bajo unas
condiciones de ácido. Se calculó la concentración de la proteína
eluida usando ELISA con un anticuerpo dirigido contra IgGl humana y
una proteína de mieloma IgG1 humana estándar.
Las características de ligazón de
pCTLA4-Ig se compararon con las de
CTLA4-Ig humana usando análisis citométrico de flujo
con fibroblastos humanos transfectados con B7-1
humano o B7-2 porcino. Para estos experimentos, la
concentración de CTLA4-Ig humana y de cerdo fue
equivalente como valorado por ELISA. Como queda ilustrado en la
figura 5, la CTLA4-Ig humana y porcina parecieron
tener similares características de ligazón sobre células humanas que
expresan B7 porcino. Sin embargo, a diferencia de la
CTLA4-Ig humana, la pCTLA4-Ig dejó
de unirse a B7 humana, implicando o dando a entender que
pCTLA4-Ig se une preferentemente a B7 porcino y es
útil como un reactivo específico de la especie.
pCTLA4-Ig se utilizó para
inhibir las respuestas proliferas de células T humanas a una
variedad de estimuladores. En estos ensayos, se proveyó la
coestimulación de la respuesta de las células T por B7 porcino o
humano, expresada mediante transfección o naturalmente en APCs
profesional. Estos experimentos se demuestran en las figuras 6 y
7.
En los experimentos que usan estimuladores de
fibroblastos transfectados (que expresan HLA clase II y B7 humano o
porcino), hCTLA4-Ig inhibió todas las respuestas
proliterativas (figura 6, \Box). Por contraste,
pCTLA4-Ig sólo inhibió completamente la respuesta
cuando los estimuladores expresaron B7 porcino (\Delta); la
respuesta proliferativa a las células, que expresan B7 humano se
afectó solo mínimamente (\medcirc).
En experimentos similares,
pCTLA4-Ig dejó de tener un efecto inhibitorio
significante sobre las respuestas proliferativas a células humanas,
que expresan MCH clase II y B 7 humano, pero inhibió la respuesta a
estimuladores porcinos (figura 7).
Estos resultados ponen de relieve las
propiedades inhibitorias efectivas de pCTLA4-Ig
cuando se proveen señales coestimulatorias de células T por B7
porcino. La falta de prevenir la proliferación de células T cuando
la coestimulación es mediada por B7 humana también demuestra la
acción específica de las especies. Se puede concluir que
pCTLA4-Ig muestra ligazón específica de la especie a
la inhibición de los efectos funcionales de B7 porcino, pero no B7
humano.
Las características de ligazón de
pCTLA4-Ig a las moléculas tanto de la familia B7
humana como porcina se podrían comparar con las de
hCTLA4-Ig, por ejemplo usando los siguientes
tests:
- (i)
- análisis citométrico de flujo de ligazón a APC porcino y humano, y a transfectantes, que expresan B7 porcino o humano (véase arriba)
- (ii)
- caracterización cuantitativa de ligazón usando Biacore^{TM}
- (iii)
- análisis funcional de los efectos de CTLA4-Ig sobre cultivos de linfocitos humano anti-cerdo y humano alogeneicos mezclados o mixtos
- (iv)
- valoración funcional de la capacidad de pCTLA4-Ig de prolongar la supervivencia de xenoinjertos de isletas porcinas después de transplante a B6 ratones.
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antígeno en la ausencia de coestimulación PNAS
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Claims (18)
1. Un reactivo biológico capaz de inhibir el
rechazo mediado por células T de un ogaño xenotransplantado en un
organismo receptor mediante el bloqueo del suministro de JES señal
2 co-estimulatoria para impedir la activación de
las células T xenoreactivas en el receptor, en que el reactivo es
una forma soluble de proteína porcina. CTLA-4.
2. El reactivo de la reivindicación 1, en que
dicha forma soluble de la proteína CTLA-4 comprende
un fragmento de la CTLA-4 porcina, la cual retiene
o conserva la capacidad de ligarse a B7.
3. El reactivo de la reivindicación 2, en que el
fragmento comprende el dominio extracelular completo de la
CTLA-4 porcina.
4. El reactivo de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, que comprende el dominio constante de una
inmunoglobulina.
5. El reactivo de la reivindicación 4, en que el
dominio constante es la cadena C\gammal de IgG1.
6. El reactivo de la reivindicación 4 ó 5, en
que el dominio constante proviene del organismo receptor.
7. El reactivo de una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, que comprende una secuencia humana
C\gammal.
8. El reactivo de una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, para su uso como un medicamento.
9. Utilización de un reactivo biológico según
una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 en la preparación de
un medicamento para inducir una tolerancia específica al
xenoinjerto en un receptor de órgano.
10. Utilización de la reivindicación 9, en que
el reactivo biológico se administra antes del xenotransplante.
11. Una proteína que comprende: la secuencia de
aminoácidos SEQ ID: 1; o un fragmento de dicha secuencia de
aminoácidos, que conserva la capacidad de ligarse a B7.
12. Ácido nucleico, que codifica la proteína
según la reivindicación 11.
13. Ácido nucleico de la reivindicación 12, que
comprende SEQ ID: 2.
14. Un vector que comprende el ácido nucleico de
la reivindicación 12 ó de la reivindicación 13.
15. Una célula aislada transformada con el
vector de la reivindicación 14.
16. La proteína de la reivindicación 11 o el
ácido nucleico de la reivindicación 12 o la reivindicación 13 para
su uso como un medicamento.
17. Utilización de la proteína de la
reivindicación 11 o el ácido nucleico de la reivindicación 12 o de
la reivindicación 13, en la fabricación de un medicamento para
inhibir el rechazo mediado por células T de un órgano
xenotransplantado por un organismo receptor.
18. Utilización de la reivindicación 17, en la
que el organismo receptor es un ser humano.
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