ES2288306T3 - Deteccion de microorganismos. - Google Patents
Deteccion de microorganismos. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2288306T3 ES2288306T3 ES97941302T ES97941302T ES2288306T3 ES 2288306 T3 ES2288306 T3 ES 2288306T3 ES 97941302 T ES97941302 T ES 97941302T ES 97941302 T ES97941302 T ES 97941302T ES 2288306 T3 ES2288306 T3 ES 2288306T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- sterile
- sample
- microorganisms
- composition
- chamber
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims abstract description 110
- 238000001514 detection method Methods 0.000 title claims description 27
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 76
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 62
- 238000005070 sampling Methods 0.000 claims abstract description 21
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 12
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 37
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 30
- 230000008859 change Effects 0.000 claims description 25
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 21
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 21
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 9
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 9
- 239000004033 plastic Substances 0.000 claims description 7
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims description 7
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 5
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 5
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 5
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 4
- 239000000020 Nitrocellulose Substances 0.000 claims description 2
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 claims description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 claims description 2
- 229920001220 nitrocellulos Polymers 0.000 claims description 2
- 229920002492 poly(sulfone) Polymers 0.000 claims description 2
- 229920000515 polycarbonate Polymers 0.000 claims description 2
- 239000004417 polycarbonate Substances 0.000 claims description 2
- -1 polyethylene Polymers 0.000 claims description 2
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 claims description 2
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 claims description 2
- 238000011045 prefiltration Methods 0.000 claims 1
- 238000005086 pumping Methods 0.000 claims 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 69
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 68
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 18
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 16
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 13
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 12
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 11
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 11
- PLXBWHJQWKZRKG-UHFFFAOYSA-N Resazurin Chemical compound C1=CC(=O)C=C2OC3=CC(O)=CC=C3[N+]([O-])=C21 PLXBWHJQWKZRKG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 6
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 6
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 5
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 5
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 5
- 239000012488 sample solution Substances 0.000 description 5
- 239000008174 sterile solution Substances 0.000 description 5
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 4
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 4
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 4
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 4
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 description 4
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 4
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 4
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 4
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 description 3
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 3
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 3
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 3
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 3
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 238000006722 reduction reaction Methods 0.000 description 3
- 238000010079 rubber tapping Methods 0.000 description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 3
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 2
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 2
- 230000014670 detection of bacterium Effects 0.000 description 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- BFMYDTVEBKDAKJ-UHFFFAOYSA-L disodium;(2',7'-dibromo-3',6'-dioxido-3-oxospiro[2-benzofuran-1,9'-xanthene]-4'-yl)mercury;hydrate Chemical compound O.[Na+].[Na+].O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC(Br)=C([O-])C([Hg])=C1OC1=C2C=C(Br)C([O-])=C1 BFMYDTVEBKDAKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 2
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 2
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 2
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 2
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 2
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 2
- 230000033116 oxidation-reduction process Effects 0.000 description 2
- 238000006479 redox reaction Methods 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 230000000284 resting effect Effects 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- GEYOCULIXLDCMW-UHFFFAOYSA-N 1,2-phenylenediamine Chemical compound NC1=CC=CC=C1N GEYOCULIXLDCMW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BRDIFBARJKLSSY-UHFFFAOYSA-N 2,3,4-triphenyl-2h-tetrazol-2-ium;chloride Chemical compound [Cl-].C1=[NH+]N(C=2C=CC=CC=2)N(C=2C=CC=CC=2)N1C1=CC=CC=C1 BRDIFBARJKLSSY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XZKIHKMTEMTJQX-UHFFFAOYSA-N 4-Nitrophenyl Phosphate Chemical compound OP(O)(=O)OC1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 XZKIHKMTEMTJQX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 240000006054 Agastache cana Species 0.000 description 1
- FYEHYMARPSSOBO-UHFFFAOYSA-N Aurin Chemical compound C1=CC(O)=CC=C1C(C=1C=CC(O)=CC=1)=C1C=CC(=O)C=C1 FYEHYMARPSSOBO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710088194 Dehydrogenase Proteins 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- 235000010650 Hyssopus officinalis Nutrition 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 1
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 1
- 229920005439 Perspex® Polymers 0.000 description 1
- 244000088415 Raphanus sativus Species 0.000 description 1
- 235000006140 Raphanus sativus var sativus Nutrition 0.000 description 1
- 239000005708 Sodium hypochlorite Substances 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000010868 animal carcass Substances 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 238000007630 basic procedure Methods 0.000 description 1
- 235000013361 beverage Nutrition 0.000 description 1
- 239000003833 bile salt Substances 0.000 description 1
- 229940093761 bile salts Drugs 0.000 description 1
- 239000011942 biocatalyst Substances 0.000 description 1
- 230000008033 biological extinction Effects 0.000 description 1
- 108010079058 casein hydrolysate Proteins 0.000 description 1
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 1
- 230000003196 chaotropic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 1
- 229930182470 glycoside Natural products 0.000 description 1
- 150000002338 glycosides Chemical class 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 239000012948 isocyanate Substances 0.000 description 1
- 150000002513 isocyanates Chemical class 0.000 description 1
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 1
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 1
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 239000004926 polymethyl methacrylate Substances 0.000 description 1
- 230000000750 progressive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- SUKJFIGYRHOWBL-UHFFFAOYSA-N sodium hypochlorite Chemical compound [Na+].Cl[O-] SUKJFIGYRHOWBL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000011895 specific detection Methods 0.000 description 1
- 230000000153 supplemental effect Effects 0.000 description 1
- 239000012085 test solution Substances 0.000 description 1
- 229920003169 water-soluble polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000012224 working solution Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
- C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/975—Kit
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
LA INVENCION SE REFIERE A UN PROCEDIMIENTO Y UN KIT QUE PERMITE DETECTAR MICROORGANISMOS EN UNA MASA,UN LIQUIDO O UNA SUPERFICIE. ESTE PROCEDIMIENTO CONSISTE EN TOMAR UNA MUESTRA Y A COLOCARLA EN UNA CAMARA ESTERIL QUE TIENE UNA CAPACIDAD VOLUMETRICA LIMITADA. LA MUESTRA SE PONE A CONTINUACION EN CONTACTO CON UNA COMPOSICION QUE PERMITE DETECTAR LOS MICROORGANISMOS. LA CAMARA ESTERIL PUEDE CONTENER UN FILTRO QUE PERMITE AISLAR CUALQUIER MICROORGANISMO PRESENTE EN LA MUESTRA. LA INVENCION SE REFIERE TAMBIEN A INSTRUMENTOS DE MUESTREO, A UN INSTRUMENTO DE DELIMITACION,ASI COMO A UN SISTEMA DE TIPAJE DE LOS MICROORGANISMOS.
Description
\global\parskip0.920000\baselineskip
Detección de microorganismos.
Esta invención involucra un método de detección
de microorganismos de acuerdo con la reivindicación 1 y las
reivindicaciones dependientes de ésta, un kit para la detección de
microorganismos de acuerdo con la reivindicación 16, y el uso de un
kit de acuerdo con la reivindicación 17.
Esta invención se relaciona con la detección de
microorganismos y es especialmente, pero no exclusivamente,
aplicable a la detección de microorganismos patogénicos durante la
preparación de alimentos para el consumo humano.
La contaminación de productos alimenticios,
cosméticos, farmacéuticos y similares por microorganismos
indeseables representa una amenaza significativa a la salud
pública. En el pasado se han desarrollado varios métodos para
monitorear la presencia de tales microorganismos en por ejemplo
productos alimenticios, abastecimientos de agua y en superficies de
preparación de alimentos. Generalmente, estos métodos dependen de
técnicas microbiológicas convencionales, que incluyen típicamente
el crecimiento de microorganismos en medios de nutrientes selectivos
con soporte sólido, o alternativamente en medios de nutrientes
selectivos. Se llevan a cabo análisis morfológicos subsiguientes.
Tales técnicas de testeo están obstaculizadas por el hecho de que un
resultado puede demorar 24 a 48 horas o más, y el proceso es
complejo y laborioso.
La demanda de pruebas sencillas en las cuales
los resultados en cuanto al número de microorganismos patógenos
particulares presentes en una muestra se pueda obtener en menos
tiempo que las pruebas descritas más arriba ha desembocado en el
desarrollo de técnicas alternativas. Este tipo de técnicas se basa
en el cultivo de microorganismos en un medio de nutrientes en
presencia de un indicador específico a un microorganismo a detectar,
o alternativamente en un medio de cultivo selectivo. Todavía es
necesario un período de aproximadamente 12 a 24 horas para obtener
un resultado en este tipo de ensayo de prueba. Generalmente, durante
todos los aspectos de la preparación de alimentos para consumo
humano y similar esta restricción temporal es indeseable.
Otros problemas posibles asociados con los
sistemas de ensayo actuales disponibles para detectar
microorganismos patogénicos pueden incluir la falta de contención
del microorganismo durante el proceso de detección, y en el caso
del testeo de superficies de preparación de alimentos por ejemplo la
estandarización del área de la muestra.
US-A-5, 420, 017
describe un método para la detección selectiva de bacterias Gram
negativas en una muestra líquida, que abarca los siguientes
pasos:
- (a)
- agregar un detergente no iónico alquil glucósido y un compuesto caotrópico a la muestra;
- (b)
- filtrar la muestra líquida a través de un filtro que tiene un tamaño de poros lo suficientemente pequeño como para evitar el pasaje de microorganismos a través del filtro pero lo suficientemente grande para permitir el pasaje de cualquier compuesto reductor libre presente en la muestra, mientras que los microorganismos presentes en la muestra son retenidos en el filtro;
- (c)
- pasar una solución de prueba que abarca un reactivo cromóforo, en una cantidad efectiva para detectar las bacterias Gram negativas en la muestra líquida, a través del filtro con los microorganismos retenidos en él, dicho reactivo cromóforo contando con un potencial de oxidación tal que el reactivo se puede reducir por deshidrogenasa microbiana, y dicho reactivo cromóforo es seleccionado de forma tal que la reducción del reactivo cromóforo produce un producto coloreado; y
- (d)
- monitorear el filtro en busca de la formación de un producto coloreado, en donde la formación de un producto coloreado es indicativa de la presencia de bacterias Gram negativas en la muestra.
DE-A-43 14 981
se ocupa de la determinación rápida de la demanda de oxígeno
bioquímico en una probeta con un sello, según el cual el sello, el
interior de este espacio de probeta o la pared interior están
recubiertos con biocatalizadores que están inmovilizados con
polímeros solubles en agua, y abarca: (a) el agregado de la muestra
a ser testeada (muestra de prueba), hasta que rebose, opcionalmente
luego del pretratamiento; (b) colocar el sello; (c) llevar a cabo la
reacción durante un lapso temporal definido; (d) agregar un
indicador de color a los contenidos de la probeta luego del fin de
la reacción; y (e) medir la reacción química y/o física por medio
de medición de extinción.
Se reivindica también el aparato utilizado para
el proceso de más arriba, que es estable al almacenamiento, viene
listo para ser utilizado y es adecuado para permitir la medición de
cambios bioquímicos.
EP-A-O 128 527
se refiere a un método para la determinación acelerada de
susceptibilidad antimicrobiana de bacterias oxifílicas, que
abarca:
- (a)
- obtener un cultivo puro de la bacteria oxifílica a testear;
- (b)
- preparar una serie de muestras estériles de un medio de cultivo acuoso formulado para fomentar el crecimiento rápido de dicha bacteria, incluyendo por lo menos una muestra positiva de control, dichas muestras son de volumen y composición correspondiente y tienen una concentración conocida de oxígeno disuelto;
\global\parskip1.000000\baselineskip
- (c)
- incorporar en dichas muestras, excluyendo las muestras de control, concentraciones predeterminadas de un antimicrobiano soluble en agua seleccionado para forma una serie de muestras de dilución antimicrobiana progresiva;
- (d)
- inocular a dichas muestras, excluyendo las muestras de control negativas, con una cantidad predeterminada de dicho cultivo para obtener en eso una concentración seleccionada de células;
- (e)
- cultivar dichas muestras bajo condiciones favorables al crecimiento rápido de la bacteria inoculada en dicha muestra positiva de control, dicho cultivo continuado hasta un momento en la parte tardía de la fase latente o la parte temprana de la fase de crecimiento logarítmico de la bacteria con referencia a dicha muestra de control positiva; y
- (f)
- determinar el alcance del cambio en la concentración de oxígeno disuelto en la fase líquida de las muestras como medida de la susceptibilidad de la bacteria inoculada al antimicrobiano de la prueba, la reducción de oxígeno en el medio se correlaciona con la resistencia antimicrobiana y/o la concentración antimicrobiana debajo de un nivel inhibitorio de crecimiento.
EP-A-O 592 728
revela un método para detectar crecimiento microbiológico en un
recipiente de muestra sellado que abarca los pasos:
- (a)
- controlar la presión dentro del espacio de cabeza del recipiente,
- (b)
- detectar la tasa de cambio de dicha presión del espacio de cabeza, y
- (c)
- la indicación de la presencia de crecimiento microbiológico dentro del recipiente como función de dicha tasa de cambio de dicha presión del espacio de cabeza.
EP-A-O 264 221
describe un dispositivo adaptado para contener un volumen de medios
de crecimiento, dicho dispositivo se emplea para la detección de
gas producido por un microorganismo contenido putativamente dentro
de una muestra de prueba agregada al medio de crecimiento, que
abarca:
- -
- una cámara primaria que tiene una superficie superior;
- -
- un domo definido por dicha superficie superior de dicha cámara primaria y con la que se comunica, dicho domo establece un nivel de fluido y es adaptado para recoger dicho gas producido por dicho microorganismo dentro de dicho medio de crecimiento; y
- -
- una sección de llenado adyacente a y comunicándose con un extremo de dicha cámara primaria, dicha sección de llenado separada de dicho domo y extendiéndose por encima de dicho nivel de fluido, y definiendo aún más una apertura para el agregado de dicha muestra de prueba.
Es objeto de la presente invención brindar un
medio y un método mejorado de detectar microorganismos, o uno que
brinde por lo menos al público una elección útil. El método para
detectar microorganismos se define en la reivindicación 1, el kit
para la detección de microorganismos se define en la reivindicación
16, y el uso del kit se define en la reivindicación 17.
De acuerdo con un aspecto general de la presente
invención se provee un método de detectar microorganismos que
abarca los pasos de tomar una muestra de una masa, una superficie o
un fluido a testear, proveer una cámara estéril obturable de
capacidad volumétrica limitada en la cual se lleva a cabo el proceso
de detección, colocar la muestra en contacto con una composición
capaz de detectar microorganismos dentro de dicha cámara estéril
obturable, y registrar un cambio en la composición.
Preferentemente la capacidad volumétrica de
dicha cámara estéril obturable es inferior a 10 centímetros
cúbicos.
La capacidad volumétrica más preferible de dicha
cámara estéril obturable es inferior o igual a 2 centímetros
cúbicos.
Preferentemente la muestra se toma y se coloca
en contacto con dicha composición en dicha cámara estéril obturable
utilizando un instrumento estéril para la toma de muestras.
Alternativamente, la muestra se toma lavando la
superficie con una solución apropiada y recolectando
subsecuentemente la solución de lavado.
Alternativamente, la muestra se toma de la
superficie utilizando un instrumento estéril de toma de muestras,
el instrumento estéril de toma de muestras se lava con una solución
apropiada y se recolecta subsecuentemente la solución de
lavado.
\newpage
Alternativamente la muestra se toma extrayendo
una masa de un objeto a ser testeado, lavando la masa con una
solución apropiada y recolectando subsecuentemente la solución de
lavado.
Preferentemente dicho cambio en la composición
capaz de detectar microorganismos es tal que se puede visualizar
por el ojo o en un espectrofotómetro.
Preferentemente el método descrito en cualquiera
de los 8 párrafos anteriores abarca también el paso de delinear un
área de una superficie a ser testeada y ubicar el instrumento
estéril de toma de muestras en contacto con substancialmente toda
el área delineada.
Preferentemente el método descrito en cualquiera
de los 9 párrafos anteriores abarca también el paso inicial de
extraer cualquier materia extraña de dicha muestra.
Más preferentemente, el método descrito en
cualquiera de los 10 párrafos anteriores abarca también un paso
final de clasificar cualquier microorganismo detectado.
En un aspecto relacionado de la presente
invención se brinda un método para detectar microorganismos de
acuerdo al párrafo 1 de más arriba, incluyendo los pasos de tomar
una muestra de una masa, una superficie o un fluido a testear,
proveer una cámara estéril obturable, colocar la muestra en la
cámara estéril obturable, aislar substancialmente cualquier
microorganismo presente en la muestra por filtración dentro de la
cámara estéril obturable, colocar los microorganismos aislados en
contacto con una composición capaz de detectar microorganismos
dentro de una cámara estéril obturable, y registrar un cambio en la
composición.
En otro aspecto relacionado de la presente
invención se provee un método para detectar microorganismos de
acuerdo al párrafo 1 de más arriba que incluye los pasos de proveer
un instrumento de delineación, delinear un área de una superficie a
ser testeada, proveer un instrumento estéril de toma de muestras,
colocar el instrumento estéril de toma de muestras en contacto con
substancialmente el total del área delineada a ser testeada, lavar
dicho instrumento estéril en una solución apropiada, proveer una
cámara estéril obturable, colocar la solución de lavado en dicha
cámara estéril obturable, aislar substancialmente cualquier
microorganismo presente en la solución de lavado por medio de
filtración dentro de la cámara estéril obturable, colocar los
microorganismos aislados en contacto con una composición capaz de
detectar microorganismos dentro de la cámara estéril obturable, y
registrar un cambio en la composición.
En otro aspecto relacionado de la presente
invención se provee un método para detectar microorganismos de
acuerdo a cómo se describe en el párrafo 1 de más arriba, incluyendo
los pasos para proporcionar un instrumento estéril de toma
demuestras, tomar una muestra de una masa, un líquido o una
superficie a ser testeada, proveer una cámara estéril obturable que
contiene una cantidad definida de una composición capaz de detectar
microorganismos, colocar por lo menos una parte del instrumento
estéril de toma de muestras y por lo tanto la muestra en contacto
con la composición, y registrar un cambio en la composición.
En otro aspecto relacionado de la presente
invención se provee un método para detectar microorganismos como se
describe en el párrafo 1 de más arriba, incluyendo los pasos de
proveer un instrumento de delineación, delinear un área de una
superficie a ser testeada, proveer un instrumento estéril de toma de
muestras, colocar el instrumento de toma de muestras en contacto
con substancialmente el total del área delineada de la superficie a
ser testeada, proveer una cámara estéril obturable que contiene una
cantidad definida de una composición capaz de detectar
microorganismos, colocar por lo menos una parte del instrumento
estéril de toma de muestras y por lo tanto la muestra en contacto
con la composición, y registrar un cambio en la composición.
De acuerdo a otro aspecto de la presente
invención, se provee un kit para la detección de microorganismos de
acuerdo al método descrito en los 15 párrafos anteriores, que abarca
una cámara estéril obturable, una cantidad definida de una
composición adaptada para detectar microorganismos, y un medio para
recoger y colocar una muestra en contacto con dicha composición
adaptada para detectar microorganismos.
Preferentemente la composición se provee en
dicha cámara estéril obturable.
Preferentemente por lo menos una parte de la
cámara estéril obturable es translúcida.
Más peferentemente la cámara estéril obturable
contiene un medio para aislar substancialmente cualquier
microorganismo en la muestra.
Preferentemente la cámara estéril obturable es
una unidad de filtrado.
Preferentemente la unidad de filtrado contiene
un filtro de membrana con un tamaño de poro de alrededor de 0,2
micrones o inferior.
Alternativamente la cámara estéril obturable es
una probeta.
En un aspecto relacionado de la presente
invención se provee un kit de acuerdo con los 7 párrafos anteriores
que abarca además cualquiera o varios de: un instrumento estéril de
toma de muestras, un patrón estéril para delinear un área de una
superficie a testear, un medio para extraer materia extraña de la
muestra antes de poner la muestra en contacto con dicha composición
adaptada para detectar microorganismos, y un medio de determinar
substancialmente la cantidad de microorganismos en la muestra.
Preferentemente el instrumento estéril de toma
de muestras es un dispositivo de hisopado que contiene una manija y
una cabeza removible que sostiene al hisopo.
Preferentemente la cabeza del instrumento
estéril de toma de muestras está adaptada para cooperar con la boca
de la cámara estéril obturable, para formar un sellado entre dicha
cabeza y dicha boca para que en el uso dicho hisopo esté contenido
dentro de dicha cámara estéril obturable.
Preferentemente el instrumento de delineación es
un patrón definidor de área.
Alternativamente el instrumento estéril de toma
de muestras puede delinear el área de la superficie a ser
testeada.
Preferentemente los medios para extraer materia
extraña de una muestra antes de colocar la muestra en contacto con
la composición capaz de detectar microorganismos es un sistema de
filtrado que abarca una o más unidades de filtrado.
Preferentemente el medio de determinar
substancialmente la cantidad de microorganismos en la muestra es una
tabla de colores o algo similar.
Preferentemente la composición adaptada para
detectar microorganismos es como se describe aquí.
En otro aspecto relacionado de la presente
invención se provee una composición selectiva para la detección de
microorganismos que contiene un indicador, un inhibidor de
microorganismos no específicos, una fuente de proteína, y una
fuente de energía.
Se describen varias realizaciones de la presente
invención, sólo a modo de ejemplo, en referencia a los dibujos
acompañantes, en los cuales:
Las figuras 1A a 1C son representaciones
diagramáticas del aparato y del método de la primera realización
preferida de la invención;
Las figuras 2A y 2B son representaciones
diagramáticas del aparato y del método de la segunda realización
preferida de la invención.
\vskip1.000000\baselineskip
La siguiente descripción de las realizaciones
preferidas de la presente invención hace referencia a composiciones
de ensayo. En las tablas a continuación se muestran ejemplos de las
composiciones preferidas. Debe tenerse en cuenta, que estas
composiciones de ensayo pueden ser alteradas para permitir el
crecimiento y la detección específica de varios microorganismos:
los presentes ejemplos se relacionan con la detección de bacteria
coliforme (Tabla 1 y Tabla 2) y bacteria estafilocócica (Tabla
3).
Una composición de ensayo preferida de la
presente invención contiene un indicador (ej. Resazurin), un
inhibidor (ej. sales biliares) de microorganismos no específicos
(es decir aquellos microorganismos que no se está testeando), una
fuente de proteína (ej. Casitone), una fuente de energía (ej.
lactosa), y por lo menos una sal (ej. NaCl). Se describe un ejemplo
de esta composición en la Tabla 1. Además, se ha dado un rango del
porcentaje de cada componente de la composición dentro del cual la
detección de coliformes se puede todavía realizar bajo la presente
invención. En la Tabla 2 se brinda otro ejemplo específico de una
composición de ensayo.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
*Resazurin es un indicador de tinte de reacción
de oxidación-reducción [reacción redox]. Se pueden
utilizar otros indicadores similares, por ejemplo cloruro de
trifeniltetrazolio y ácido rosólico (Tabla 3).
*Resazurin se conoce también como sal de sodio
(7-hidroxi -3H-fenoxazin
-3-uno 10-óxido) y se puede adquirir de Sigma como
Resazurin R-2127.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
En la Tabla 3 se brinda un ejemplo de la gama de
componentes utilizados en una composición de ensayo que se pueda
utilizar para sostener el crecimiento y detección de bacteria
estafilocócica.
Se debe tener en cuenta que los componentes de
la composición de las Tablas 1, 2 o 3 se pueden variar dependiendo
de si se usa o no una solución estéril para lavar la superficie de
muestra a testear (vea la primera y segunda realización preferida
de más abajo) y la naturaleza de este tipo de solución. Por ejemplo,
si se utilizara el regulador de Butterfields para lavar la
superficie a testear la composición de reacción no contendría
cloruro de sodio suplementario como se presenta en las composiciones
de la Tabla 1. Cuando se trata de testear muestras de carne la
composición de la Tabla 1 preferentemente no contiene sal. Además,
se pueden utilizar tintes de reacción de
oxidación-reducción [reacción redox] alternativos u
otros indicadores. Lo que es más, la proteína, la sal y las fuentes
de energía de las composiciones descritas aquí se pueden alterar
para sostener el crecimiento de varios microorganismos
alternativos.
Primera realización
preferida
La siguiente descripción es una realización
preferida de la presente invención en relación a la detección de
bacteria coliforme en superficies de preparación de alimentos. Esto
debe tomarse sólo a modo de ejemplo, y debe entenderse que el
método y aparato de la invención se puede adaptar para la detección
de cualquiera de las varias clases o tipos de microorganismos sobre
cualquiera de las varias clases de superficies o alternativamente
para uso con muestras líquidas.
En primer lugar, se provee una cámara estéril de
reacción 100, que contiene aproximadamente 100
\mul-2000 \mul de una composición de reacción
101 como se describe anteriormente. Este volumen se puede alterar
para acomodar aplicaciones modificadas. La cámara estéril es
translúcida o por lo menos una parte de ella es translúcida y es
preferentemente de capacidad volumétrica pequeña; por ejemplo 10 cm
cúbicos o menos y preferentemente 2 cm cúbicos o menos.
Preferentemente la cámara de reacción es una probeta y más
preferentemente se utiliza una micro-probeta. Tal
cámara de reacción contiene una tapa 102. La tapa 102 se puede
adjuntar a la probeta por medio de una rosca de tornillo u otro
medio adecuado de conexión. La probeta puede ser construida en
plástico u otros materiales adecuados; por ejemplo, si el cambio en
la composición se medirá en un espectrofotómetro entonces el
material del que estará construida la probeta puede ser alterado
para que se corresponda con la longitud de onda a la cual se
realizará la medición. En esta realización preferida la probeta está
construida en Perspex. Además, la tapa de la probeta puede contener
una abertura a través de la cual se pueden tomar muestras de la
composición de ensayo antes o después de realizar la prueba de
reacción para análisis subsecuentes.
En segundo lugar, se provee un instrumento de
toma de muestras estéril 103 envasado asépticamente. En esta
realización preferida el instrumento de toma de muestras es un
dispositivo de hisopado que abarca una manija 104 y una cabeza 105.
La cabeza sostiene un hisopo. La manija 104 está construida
preferentemente de plástico u otro material adecuado y el hisopo
sostenido sobre la cabeza es de espuma u otro material adecuado. En
esta realización la cabeza 105 se puede desmontar de la manija 104.
Alternativamente, en la base 107 de la cabeza desmontable 105, hay
preferentemente una rosca de tornillo o un medio de conexión similar
que coopera con la boca 106 de la probeta 100 para formar un sello
(y actúa por lo tanto como tapa) y está adaptada para sostener el
hisopo apoyado sobre la cabeza 10 en su lugar dentro de la probeta
100; vea la figura 1B.
Para realizar el método de detección de
microorganismos de acuerdo a la presente realización de la invención
el instrumento de toma de muestras estéril empacado asépticamente,
o el dispositivo de hisopado 103, se extrae de su envoltorio con
cuidado de no tocar la cabeza estéril 105. Un lado de la cabeza 105
del hisopo 103 se pone en contacto con la superficie a testear y se
mueve por sobre la superficie. El dispositivo de hisopado 103 se
puede dar vuelta y un segundo lado de la cabeza 105 del dispositivo
de hisopado 103 se pone en contacto con la superficie a testear. En
este ejemplo el dispositivo de hisopado 103 se mueve por sobre la
superficie en una forma que es perpendicular a la dirección movida
cuando se puso el primer lado de la cabeza 105 del dispositivo de
hisopado 103 en contacto con la superficie a testear como se ilustra
en la figura 1A. Se pueden utilizar alternativamente otros métodos
de arrastrar el dispositivo de hisopado 103 sobre la superficie a
testear. Por ejemplo, uno puede arrastrar la cabeza del dispositivo
de hisopado 103 sobre un área a ser testeada y luego dar vuelta el
dispositivo de hisopado del otro lado y arrastrar la cabeza 105 del
dispositivo de hisopado 103 sobre un área separada del mismo objeto
que se está testeando.
Se extrae la tapa 102 de la probeta 100. La
cabeza 105 del dispositivo de hisopado 103 se ubica en la boca 106
de la probeta 100 y la manija 104 del dispositivo de hisopado 103 se
separa de la probeta 100 en sentido horizontal para que la cabeza
105 del dispositivo de hisopado 103 caiga dentro de la composición
101 contenida dentro de la probeta 100. Se vuelve a colocar
entonces la tapa 102 y la probeta 100 se agita para asegurar que la
cabeza 105 del dispositivo de hisopado 103 entre en contacto
completo con la composición 101. En una forma alternativa preferida
de esta realización (como se observa en la figura 1B) la base 107 de
la cabeza desmontable incluye preferentemente una rosca de tornillo
o un medio similar de conexión que coopera con la boca 106 de la
probeta 100 para formar un sello (y actúa por lo tanto como una
tapa) y se adapta para poder sostener el hisopo colocado sobre la
cabeza 105 en su lugar dentro de la probeta 100. En este caso la
probeta se puede incubar cabeza para abajo para que el hisopo en la
cabeza 105 del dispositivo de hisopado esté sumergida en la
composición de ensayo; figura 1B.
La probeta 100 que contiene la composición 101 y
la cabeza 105 del dispositivo de hisopado 103 se incuba a una
temperatura específica al microorganismo que la prueba quiere
identificar. En esta realización la incubación se efectúa a 98ºF
(37ºC). A esta temperatura se seleccionan todas las bacterias
coliformes. Alternativamente uno puede elegir incubar a 113ºF
(54ºC) para elegir el crecimiento de bacteria predominantemente
E. coli. Se puede alterar la temperatura para acomodar el
crecimiento de varios otros tipos de microorganismos; por ej. si se
deseara la presencia de la bacteria estafilocócica la incubación se
realizaría en el medio descrito en la tabla 3 a 37ºC.
Durante la incubación la composición 101 debe
ser inspeccionada ocasionalmente y comparada con un control
negativo (una probeta no utilizada que contenga la composición de
ensayo). Con el transcurso del tiempo la composición cambiará su
color (si en la muestra hay bacterias coliformes), en esta
realización de azul a color rojo/rosado. Este cambio de color es el
resultado de reacciones de oxidación/reducción que involucran un
tinte (Resazurin: vea las Tablas 1 y 2) presente dentro de la
composición. La tasa a la que ocurre este cambio depende de la
cantidad de coliformes presentes en la muestra inicial tomada (vea
la Tabla 4). Hay que tomar nota de la hora en que se observa un
cambio de color en comparación con el control negativo. Durante los
30 a 60 minutos siguientes el color cambiará a un rojo/rosado
definido. Es preferible que la aproximación de la cantidad de
microorganismos presentes en la muestra original se determine por
comparación del color de reacción con una tabla de colores.
Alternativamente se puede utilizar un
espectrofotómetro para medir el cambio de color antes de que sea
visible al ojo. En este caso, durante el período de incubación la
probeta 100 que contiene la composición y la cabeza 105 del
dispositivo de hisopado 103 se puede colocar directamente en un
espectrofotómetro y las medidas de absorción se pueden realizar a
600 nm y 560 nm. Un cambio en la tasa 600/500 nm comparada con
aquella del control negativo indicará la presencia de coliformes en
la muestra inicial tomada 30 a 90 minutos antes de que un cambio de
color pueda ser visualizado por el ojo. Hay que tomar nota de la
hora en que ocurre esto. A modo de ejemplo, un cambio en la tasa
600/500 nm de más de 15% comparado con el control negativo indicará
la presencia de 200 coliformes en el área del que se tomó la
muestra después de 7 horas (vea la Tabla 4 para más ejemplos).
En esta realización preferida de la invención
son aplicables la/s composición/es de ensayo descritas en la
sección anterior (Composiciones de ensayo preferidas).
El método y aparato descrito más arriba pueden
abarcar también el uso de un patrón estéril que delinea y por lo
tanto estandariza el área de muestra a testear. En esta realización
preferida el patrón define un área de 6,45 cm^{2} (1 pulgada
cuadrada). Sin embargo, esta área se podría alterar para adaptarse a
varios otros tipos de aplicaciones o para incrementar la
sensibilidad o la velocidad del ensayo. El patrón 108 se puede
construir en plástico u otro material adecuado. Es preferible que el
patrón contenga un medio para manipularlo al mismo tiempo que lo
mantiene substancialmente estéril, por ejemplo, la lengüeta 109 de
la Figura 1C. En el uso, el patrón estéril 108 se coloca sobre una
superficie a testear, por ejemplo una superficie de preparación de
alimentos. El patrón 108 se sostiene preferiblemente mediante la
lengüeta 109 para mantener al patrón substancialmente estéril. Se
puede tomar una muestra del área a ser testeada utilizando el método
y dispositivo de hisopado descrito más arriba; es preferible que el
hisopo entre en contacto substancialmente con la totalidad del área
definida por el patrón.
El método descrito arriba se puede modificar con
el agregado de un paso en el cual luego de la toma de la muestra de
la superficie con el dispositivo de hisopado 103 el hisopo apoyado
sobre la cabeza 105 se lava con una solución estéril apropiada (vea
la sección anterior de más arriba) y una muestra de esta solución
posterior al lavado se usa subsecuentemente en el ensayo de
detección. En este caso la muestra se mezclará con la composición
de ensayo contenida dentro de la probeta 100 y la reacción se
permitirá que continúe como se describe previamente.
Preferentemente la composición de ensayo se proveerá en la probeta
100 en un estado de secado en frío en este caso. Este método es
aplicable también cuando un hisopado no se usa sino que la
superficie a ser testeada se lava en una solución apropiada o
regulador (vea la sección previa de más arriba) y se testea la
muestra líquida. Además, este método es aplicable a la detec-
ción de microorganismos en líquidos, por ejemplo abastecimientos de agua, preparaciones de laboratorio y bebidas.
ción de microorganismos en líquidos, por ejemplo abastecimientos de agua, preparaciones de laboratorio y bebidas.
Segunda realización
preferida
La siguiente es una descripción de una segunda
realización preferida de la presente invención en relación a la
detección de bacteria coliforme en superficies de preparación de
alimentos. Esto debe tomarse sólo a modo de ejemplo. Sin embargo,
al igual que con la realización descrita anteriormente, debe
entenderse que el método o el aparato de la invención se puede
adaptar para la detección de cualquiera de una variedad de
microorganismos sobre cualquiera de varias clases de superficies o
alternativamente muestras líquidas.
En esta realización preferida de la invención
la/s composición/es de ensayo descritas en la sección anterior de
más arriba (Composiciones de ensayo preferidas) son aplicables.
Como se indica en la Figura 2 el área de una
superficie a ser testeada se lava inicialmente con una solución
estéril adecuada como agua o un regulador apropiado (vea el ejemplo
de más arriba bajo Composiciones de ensayo preferidas). Una tal
superficie puede abarcar una amplia variedad de objetos; por ejemplo
una mesada para la preparación de productos alimenticios,
cosméticos, farmacéuticos y similar o los productos alimenticios
mismos por ejemplo carcasas de animales. También, una masa medida de
un producto alimenticio (por ejemplo) a ser testeada puede ser
lavada con una solución estéril adecuada. Alternativamente, se puede
tomar una muestra líquida desde una solución como por ejemplo un
abastecimiento de agua. Lo que es más, se puede utilizar un
dispositivo de hisopado como se describe en la primera realización
preferida para obtener una muestra de una superficie a ser
testeada, lavada en una solución estéril adecuada y una muestra de
esa solución posterior al lavado del dispositivo de hisopado se
puede utilizar en la presente realización. Una muestra de la
solución posterior al lavado de la superficie (o dispositivo de
hisopado), o la muestra de líquido misma, se filtra luego a través
de un filtro estéril preferentemente con un tamaño de poro de 0,2
\mum o inferior. El filtro es preferentemente un filtro de
membrana construido en materiales adecuados de filtrado como ester
de celulosa, nitrocelulosa, polietileno, polisulfona, policarbonato
o similar. El filtro está preferentemente alojado en un
compartimento translúcido, o en un compartimento del cual por lo
menos una parte es translúcida, construido de materiales plásticos
o similares y del tipo que contiene una espita de entrada 111 y una
espita de salida 112 o similar como se muestra en la Figura 2A.
Este filtro y el compartimento forman la unidad de filtrado 110. La
espita de entrada puede contener preferentemente una válvula de un
solo sentido. Lo que es más, la unidad de filtrado 110 es
preferentemente de capacidad volumétrica relativamente pequeña; por
ejemplo menos de 2 cm cúbicos.
La muestra se puede desplazar a través del
filtro por cualquier método convencional: por ejemplo inyección o
bombeado. Los medios para pasar la muestra a través del filtro
pueden depender del tamaño de la unidad de filtrado 110 y la
naturaleza y el volumen de la muestra.
Luego de la filtración cualquier microorganismo
presente en la solución de muestra será retenido sobre o en la
membrana de filtrado y contenido dentro de la unidad de filtrado
110.
Luego, un volumen apropiado de una composición
utilizada para detectar un tipo particular de microorganismo se
inserta, preferiblemente por inyección, dentro de la unidad de
filtrado 110 a través de la espita de entrada 111 o salida 112 y
por lo tanto entra en contacto con cualquier microorganismo retenido
sobre o dentro del filtro. Un ejemplo de tal volumen apropiado de
la composición de esta realización preferida es 1 ml. La composición
de ensayo se provee preferentemente en un contenedor estéril
obturado como una jeringa o frasco ampolla de plástico de una
capacidad volumétrica de 1,5 a 2,0 ml.
La unidad de filtrado 110 que contiene la
composición de esta realización preferida y los microorganismos de
muestra (si están presentes en la muestra) se incuba a una
temperatura específica al microorganismo que la prueba quiere
identificar. En esta realización la incubación se efectúa a 37ºC
(98ºF).
Se pueden utilizar diferentes temperaturas
dependiendo del tipo de bacteria que uno desea detectar. La
incubación y el registro de un cambio de color en la composición de
ensayo deben realizarse de acuerdo a aquellos de la primera
realización preferida. Nuevamente, en esta realización preferida una
tabla de colores se puede utilizar en algún momento durante o al
terminar el ensayo para indicar la cantidad de microorganismos
presentes en la solución de muestra inicial; es decir comparando el
color de la reacción de prueba en un momento determinado con el de
la tabla de colores.
En una alternativa de la segunda realización
preferida el método para detectar microorganismos como se describe
más arriba puede incluir también el paso de emplear un sistema de
prefiltrado aguas arriba de la unidad de filtrado 110 para extraer
cualquier materia extraña contenida en la solución de muestra. Un
tal sistema de prefiltrado incluye preferentemente una unidad de
filtrado que contiene un filtro con un tamaño de poro de 60 \mum
y una unidad de filtrado que contiene un filtro con un tamaño de
poro de 5 \mum para que la solución de muestra sea filtrada
primero a través de la unidad de filtrado de 60 \mum, y luego la
unidad de filtrado de 5 \mum antes de ser filtrada a través de la
unidad de filtrado 110 como se describe más arriba.
Subsecuentemente a los pasos de prefiltrado
descritos más arriba el método de detección de microorganismos
puede realizarse como se describe anteriormente.
El método de detección de microorganismos como
se describe anteriormente puede incluir también un primer paso de
definir un área de la superficie a ser testeada utilizando un patrón
estéril 108 como se muestra en la figura 2B y de acuerdo a la
descripción de la primera realización preferida. Siguiendo la
colocación del patrón 108 se puede utilizar un dispositivo de
hisopado 103 como se describe en la primera realización preferida
para tomar una muestra del área definida a ser testeada. Esto debe
realizarse de acuerdo al método descrito en la primera realización
preferida. Subsecuentemente el hisopo sobre la cabeza 105 del
dispositivo de hisopado 103 se puede lavar en una solución estéril
adecuada y la solución de muestra resultante se puede filtrar a
través de la unidad de filtrado 110.
Luego de la filtración la prueba se realiza como
se describe aquí.
Tercera realización
preferida
Las realizaciones preferidas descritas
anteriormente pueden incluir también un paso adicional al concluir
el ensayo de cualquiera de las realizaciones preferidas, en el cual
los microorganismos detectados son tipificados para identificar el
tipo o clase de microorganismo presente. Un tal paso se realiza
preferentemente utilizando anticuerpos ligados a la enzima
específicos a un género particular y/o especies de microorganismos.
Alternativamente, se puede utilizar un anticuerpo marcado con
fluorocromo.
Por ejemplo, en el caso de la detección de
microorganismos que se realiza en la unidad de filtrado 110 la
unidad de filtrado se inunda con un volumen de un regulador
apropiado (solución salina tamponada con fosfato (PBS), por
ejemplo) para extraer la composición de ensayo. Subsecuentemente una
cantidad apropiada de una solución que contiene anticuerpos ligados
a la enzima específicos a un microorganismo particular se puede
insertar (utilizando preferentemente un medio de inyección o
similar) dentro de la unidad de filtrado 110.
Una solución madre de un anticuerpo ligado a la
enzima particular a ser utilizada en esta realización preferida
contiene 1,3 g de anticuerpo ligado a la enzima por litro de
solución. Dependiendo del anticuerpo particular a ser utilizado
esta solución madre luego se diluye hasta una solución de trabajo de
1 en 500 a 1 en 5000. En esta realización preferida de la invención
el volumen de anticuerpo ligado a la enzima es preferentemente
desde 0,2 – 2,0 ml. Este volumen se puede alterar para acomodarse a
unidades de filtrado de diferentes tamaños. Si hay microorganismos
presentes en el filtro que reaccionan específicamente con el
anticuerpo ligado a la enzima agregado a la unidad de filtrado 110
el anticuerpo ligado a la enzima será retenido en el filtro (es
decir que se ligará a los microorganismos presentes). Si no hay
microorganismos específicos presentes el anticuerpo ligado a la
enzima pasará a través de la unidad de filtrado. Las enzimas
preferidas para ligarse a los anticuerpos específicos son
Peroxidasa de Rábano (HRP) y Fosfatasa Alcalina.
A continuación de la inserción del anticuerpo
ligado a la enzima se insertará dentro de la unidad de filtrado 110
una solución de sustrato específica al anticuerpo ligado a la
enzima. Tales sustratos son muy conocidos para aquellos
capacitados. Por ejemplo, si se utiliza un anticuerpo ligado a HRP,
o fenilediamina se utilizaría como un sustrato; en el caso de
Fosfatasa Alcalina el sustrato puede ser
p-nitrofenil fosfato. La unidad de filtrado puede
ser incubada subsecuentemente y se registrará el cambio en la
solución de sustrato de acuerdo a las técnicas convencionales (por
ejemplo un cambio de color). Si se obtiene un resultado negativo (es
decir que no hubo cambios en la muestra observada) se pueden añadir
subsecuentes anticuerpos ligados a enzimas y sustratos apropiados a
la unidad de filtrado 110 hasta que se obtenga un resultado
positivo, que indique que el microorganismo está presente en la
muestra original. La unidad de filtrado 110 debe inundarse (con PBS
por ejemplo) entre cada inserción subsecuente dentro de la unidad de
filtrado 110 de un anticuerpo ligado a la enzima.
En una alternativa a lo anterior, la solución de
anticuerpo ligado a la enzima se pasa a través de la unidad de
filtrado 110, recogiendo el filtrado en un contenedor y agregando
subsecuentemente un volumen apropiado de un sustrato específico a
ese contenedor. Si los microorganismos presentes en el filtro no
reaccionaron con la solución de anticuerpo ligado a la enzima
pasado a través de la unidad de filtrado 110 el anticuerpo ligado a
la enzima pasaría a través de la unidad de filtrado hacia el
contenedor de recolección. Al agregar la solución de sustrato al
contenedor de recolección se obtendría un resultado positivo,
indicando que ese microorganismo particular no estaba presente
dentro de la unidad de filtrado 110.
Además, se pueden agregar más soluciones
específicas de anticuerpos ligados a enzimas a la unidad de filtrado
110 o al filtrado luego de un resultado positivo para poder
subclasificar el microorganismo identificado.
Es preferible que las soluciones de anticuerpos
ligados a enzima y soluciones de sustrato se provean en contenedores
estériles sellados, como un frasco ampolla de plástico al que se le
pueda romper el sellado y luego apretarlo para insertar la solución
dentro de la unidad de filtrado 110 o una jeringa.
En el caso de que la prueba de la presente
invención se lleve a cabo en una probeta (como se describe en la
primera realización preferida y se ilustra en las figuras 1A y 1B)
una muestra de la solución de reacción se puede tomar al finalizar
la reacción de detección. Una tal muestra se puede tomar de la
probeta 100 a través de una abertura por ejemplo, lo que puede
obviar la necesidad de abrir el frasco ampolla que puede contener
una cantidad substancial de microorganismos patogénicos y por lo
tanto puede evitar la contaminación del ambiente que lo rodea. Una
tal abertura puede estar presente en la tapa 102 en el caso descrito
en la primera realización preferida con referencia a la Figura 1A o
en la base 107 de la cabeza 105 en el caso del ejemplo ilustrado en
la Figura 1B. Una vez que se haya tomado la muestra se la puede
combinar con los anticuerpos ligados a la enzima y el sustrato y se
la puede clasificar por medios clásicos para determinar la especie
de microorganismo en la muestra original. Finalmente, se puede
agregar un agente antibacteriano como hipoclorito de sodio para
descontaminar la unidad de prueba.
Cuando se usa un anticuerpo ligado a fluorocromo
se sigue el mismo procedimiento básico. Sin embargo, no hay
necesidad de agregar un sustrato al filtro o filtrado porque los
fluorocromos se pueden detectar directamente en la muestra
monitoreando su emisión característica. Los fluorocromos adecuados
incluyen Fluoresceína y Rodamina (isocianato de
tetrametilrodamina). En el caso de los Fluorocromos es preferible
que el filtrado se use para determinar la presencia o ausencia de
microorganismos específicos.
La presente invención utiliza sólo un volumen
pequeño de una composición de ensayo para brindar un método
relativamente rápido de detectar microorganismos sobre una variedad
de superficies o en una variedad de substancias. Puede también
contar con la ventaja de que los componentes de la invención son
tales que contienen los microorganismos durante la prueba de
detección y por lo tanto ayudan a evitar cualquier contaminación
mayor.
\newpage
Además, se puede proveer un patrón que se adapta
para estandarizar el área de superficie a ser testeada. Esto puede
resultar ventajoso cuando es necesario realizar una comparación de
resultados entre pruebas.
Además, la presente invención se aplica
fácilmente a una variedad de ambientes e industrias en las cuales
la higiene es importante y la contaminación un problema, por ejemplo
la preparación y elaboración de cosméticos, la preparación de
farmacéuticos, ambientes de laboratorio, consultorios veterinarios y
quirúrgicos, etc.
La composición de la presente invención puede
ser alterada para sostener el crecimiento y detección de
microorganismos diferentes a aquellos de los ejemplos dados en esta
especificación sin salirse del alcance de la presente
invención.
Será también apreciado que el tamaño del poro de
los filtros descritos en las realizaciones preferidas de esta
especificación se pueda alterar para usos específicos sin alejarse
del alcance de la invención.
La realización preferida describe el uso de un
instrumento de toma de muestras estéril y un patrón que define el
área de muestreo y prueba. Estaría dentro del alcance de la
invención que el instrumento estéril delineara el área de
muestreo.
La composición de la presente invención se puede
alterar para sostener el crecimiento y detección de microorganismos
diferentes a la bacteria coliforme sin alejarse del alcance de la
presente invención.
Claims (17)
1. Un método para detectar microorganismos que
abarca los pasos de tomar una muestra de una masa, superficie o un
líquido a ser testeado, y proveer una cámara estéril obturable (100,
110) de capacidad volumétrica substancialmente limitada en la cual
se llevará a cabo el proceso de detección, y caracterizado
porque los pasos abarcan además el colocar la muestra en la cámara
estéril obturable (100, 110), aislando substancialmente cualquier
microorganismo presente en la muestra por filtración (110) dentro
de la cámara estéril obturable (100, 110), colocar los
microorganismos aislados en contacto con una composición (101) capaz
de detectar microorganismos dentro de dicha cámara estéril
obturable (100, 110), y registrar un cambio en la composición.
2. Un método para detectar microorganismos según
la reivindicación 1, caracterizado porque la capacidad
volumétrica de dicha cámara estéril obturable se selecciona del
grupo que abarca: una cámara que es inferior o igual a
aproxidamamente 10 centímetros cúbicos, y una cámara que es
inferior o igual a aproximadamente 2 centímetros cúbicos.
3. Un método para detectar microorganismos según
cualquier reivindicación precedente, caracterizado porque la
muestra se toma y se coloca en contacto con dicha composición en
dicha cámara estéril obturable (100, 110) utilizando un instrumento
de toma de muestras estéril (103).
4. Un método para detectar microorganismos según
la reivindicación 3, caracterizado porque el método abarca
los pasos de proveer un instrumento de delineación (108), delinear
un área de una superficie a ser testeada, y colocar el instrumento
estéril de toma de muestras (103) en contacto con substancialmente
la totalidad del área delineada de la superficie a testear.
5. Un método para detectar microorganismos según
cualquier reivindicación precedente, caracterizado porque por
lo menos parte de la cámara estéril obturable (100, 110) es
transparente y el cambio en la composición capaz de detectar
microorganismos es tal que se puede visualizar por el ojo o en un
espectrómetro.
6. Un método para detectar microorganismos según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, caracterizado
porque el método abarca también uno o más de los siguientes pasos:
delinear un área de una superficie a ser testeada y colocar el
instrumento estéril de toma de muestras (103) en contacto con
substancialmente la totalidad del área delineada, extraer cualquier
materia extraña de dicha muestra antes de colocar la muestra en
contacto con la composición adaptada para detectar microorganismos,
y clasificar cualquier microorganismo detectado luego de registrar
un cambio en la composición adaptada para detectar
microorganismos.
7. Un método para detectar microorganismos según
cualquiera de las reivindicaciones 4 a 6, caracterizado
porque el método abarca además los pasos de colocar una solución en
dicha cámara estéril obturable (100, 110), aislar substancialmente
cualquier microorganismo presente en la solución por filtración
(110) dentro de la cámara estéril obturable (100, 110), colocar los
microorganismos aislados en contacto con una composición (101)
capaz de detectar microorganismos dentro de la cámara estéril
obturable (100, 110), y registrar un cambio en la composición.
8. Un método para detectar microorganismos según
cualquiera de las reivindicaciones precedentes,
caracterizado porque la filtración (110) se realiza por un
filtro de membrana construido de materiales de filtrado adecuados
seleccionados del grupo que abarca ester de celulosa, nitrocelulosa,
polietileno, polisulfona y policarbonato.
9. Un método según la reivindicación 8,
caracterizado porque el filtro (110) tiene un tamaño de poro
de 0,2 \mum o inferior.
10. Un método según la reivindicación 8 o 9,
caracterizado porque el filtro (110) está alojado en un
compartimento translúcido (100, 110) formado de material de
plásticos, que tiene una espita de entrada (111) y una espita de
salida (112).
11. Un método según la reivindicación 10,
caracterizado porque la espita de entrada (111) posee una
válvula de un solo sentido.
12. Un método según cualquier reivindicación
precedente, caracterizado porque la muestra se pasa por el
filtro (110) por inyección o bombeado.
13. Un método para detectar microorganismos
según cualquier reivindicación precedente, caracterizado
porque el método abarca también el paso de emplear un sistema de
prefiltrado aguas arriba de la cámara estéril obturable para
extraer cualquier materia extraña contenida en la muestra.
14. Un método según la reivindicación 13,
caracterizado porque el sistema de prefiltrado abarca una
unidad de filtrado que contiene un filtro con un tamaño de poro de
60 \mum y una unidad de filtrado que contiene un filtro con un
tamaño de poro de 5 \mum, ubicados de tal manera que la muestra
se filtra primero por la unidad de filtrado de 60 \mum, y luego
por la unidad de filtrado de 5 \mum, antes de ingresar en la
cámara estéril obturable.
15. Un método según cualquier reivindicación
precedente, caracterizado porque los microorganismos
detectados son tipificados utilizando anticuerpos ligados a
enzimas.
16. Kit para la detección de microorganismos
(110, 111, 112, 101) de acuerdo al método según cualquier
reivindicación precedente, que abarca una cámara estéril obturable
(111, 110, 112) bajo la forma de una unidad de filtrado (110), una
cantidad definida de una composición (101) adaptada para detectar
microorganismos, y medios para recoger y colocar dicha composición
(101) en contacto con una muestra, donde los medios (111, 112)
abarcan una espita de entrada (111) que contiene una válvula de un
solo sentido y una espita de salida (112) ambas en comunicación con
la unidad de filtrado (110), y los medios (111, 112) se adaptan para
desplazar una muestra o composición a través de la unidad de
filtrado (110) por inyección.
17. Uso de un kit según la reivindicación
16.
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| NZ29938696 | 1996-09-13 | ||
| NZ299386 | 1996-09-13 | ||
| NZ328426 | 1997-07-25 | ||
| NZ32842697 | 1997-07-25 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2288306T3 true ES2288306T3 (es) | 2008-01-01 |
Family
ID=26651668
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES97941302T Expired - Lifetime ES2288306T3 (es) | 1996-09-13 | 1997-09-12 | Deteccion de microorganismos. |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6051394A (es) |
| EP (1) | EP0927353B1 (es) |
| AU (1) | AU4324397A (es) |
| CA (1) | CA2264772C (es) |
| DE (1) | DE69737718T2 (es) |
| ES (1) | ES2288306T3 (es) |
| WO (1) | WO1998011250A2 (es) |
Families Citing this family (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20020192741A1 (en) * | 2000-09-28 | 2002-12-19 | Mckillip John L. | Selective medium for gram-positive bacteria |
| DE60237005D1 (de) | 2001-02-28 | 2010-08-26 | Bio Merieux Inc | Integrierte filtrations- und detektionsvorrichtung |
| US6482642B2 (en) | 2001-03-29 | 2002-11-19 | Environmental Biodetection Products.Com | Testing kit and methodology for testing for the presence of microorganisms |
| US6440149B1 (en) | 2001-04-23 | 2002-08-27 | Dasan Potti | Tongue and tooth cleaning device |
| JP3907508B2 (ja) * | 2001-07-30 | 2007-04-18 | 松下エコシステムズ株式会社 | 微生物採取チップ、微生物採取キット、微生物計量方法及び微生物計量装置 |
| US8183052B2 (en) * | 2004-08-19 | 2012-05-22 | Blood Cell Storage, Inc. | Methods and apparatus for sterility testing |
| US20060039899A1 (en) * | 2004-08-23 | 2006-02-23 | Winn Robert T | Animal nutritional product that increases weight gain and reduces diarrhea morbidity, mortality and severity by stimulation of natural immune response, nutritional support of immune function and supplemental nutricines and probiotics |
| EP2173851A1 (de) * | 2007-08-06 | 2010-04-14 | Siemens Aktiengesellschaft | Verfahren zum anwesenheitsnachweis von mikroorganismen in einem bioreaktor, bioreaktor und anordnung |
| ES2683032T3 (es) | 2010-12-17 | 2018-09-24 | Biomerieux, Inc | Métodos de aislamiento, acumulación, caracterización y/o identificación de microorganismos utilizando un dispositivo de filtración y transferencia de muestra, y dicho dispositivo |
| US8563265B2 (en) | 2011-04-21 | 2013-10-22 | Mocon, Inc. | Analytical instrument and method for evaluating microbial contamination of an object |
| US9040307B2 (en) | 2011-05-27 | 2015-05-26 | Blood Cell Storage, Inc. | Fluorescent pH detector system and related methods |
| EP3402411A1 (en) * | 2016-01-13 | 2018-11-21 | The Procter and Gamble Company | Oral sampling swab and uses thereof |
| NL1044990A (en) * | 2024-11-12 | 2026-06-12 | Trojka Tegen Pandemieen | Systems, sample means and methods for rapidly detecting and identifying micro-organisms on surfaces. |
Family Cites Families (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB1499265A (en) * | 1976-03-19 | 1978-01-25 | Intertech | Device for detecting microbe infections |
| US4203440A (en) * | 1978-10-23 | 1980-05-20 | Alza Corporation | Device having variable volume chamber for dispensing useful agent |
| EP0128527A3 (en) * | 1983-06-09 | 1986-06-11 | Marvin Murray | Accelerated determination of antimicrobial susceptibility of bacteria |
| EP0244148A1 (en) * | 1986-04-30 | 1987-11-04 | Calgon Corporation | Method and device for enumerating microorganisms |
| EP0576753B1 (en) * | 1986-06-24 | 1997-11-05 | Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem | Devices for carrying out a plurality of microbiological tests |
| US4925789A (en) * | 1986-06-30 | 1990-05-15 | Edberg Stephen C | Method and medium for use in detecting target microbes in situ in a specimen sample of a possibly contaminated material |
| US4868110A (en) * | 1986-10-06 | 1989-09-19 | Biocontrol Systems, Inc. | Methods and device for detection of microorganisms |
| US5429803A (en) * | 1991-04-18 | 1995-07-04 | Lamina, Inc. | Liquid specimen container and attachable testing modules |
| US5232839A (en) * | 1990-06-14 | 1993-08-03 | Difco Laboratories Incorporated | Detecting microbiological growth |
| US5420017A (en) * | 1991-01-24 | 1995-05-30 | Orion Corporation Ltd. | Method and kit for the detection of microorganisms |
| DE4314981C2 (de) * | 1992-05-15 | 1996-09-12 | Lange Gmbh Dr Bruno | Vorrichtung und Verfahren zur Schnellbestimmung des biochemischen Sauerstoffbedarfs (BSB) |
| GB9216582D0 (en) * | 1992-08-05 | 1992-09-23 | Bristol Polytechnic | Determination of enzyme activity |
| US5342790A (en) * | 1992-10-30 | 1994-08-30 | Becton Dickinson And Company | Apparatus for indirect fluorescent assay of blood samples |
| GB9510928D0 (en) * | 1995-05-31 | 1995-07-26 | Celsis Int Plc | Analysis of biological material |
-
1997
- 1997-09-12 EP EP97941302A patent/EP0927353B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-09-12 CA CA002264772A patent/CA2264772C/en not_active Expired - Fee Related
- 1997-09-12 ES ES97941302T patent/ES2288306T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1997-09-12 US US09/254,801 patent/US6051394A/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-09-12 DE DE69737718T patent/DE69737718T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1997-09-12 WO PCT/NZ1997/000116 patent/WO1998011250A2/en not_active Ceased
- 1997-09-12 AU AU43243/97A patent/AU4324397A/en not_active Abandoned
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0927353B1 (en) | 2007-05-09 |
| DE69737718D1 (de) | 2007-06-21 |
| CA2264772A1 (en) | 1998-03-19 |
| WO1998011250A2 (en) | 1998-03-19 |
| AU4324397A (en) | 1998-04-02 |
| WO1998011250A3 (en) | 1998-04-23 |
| EP0927353A2 (en) | 1999-07-07 |
| EP0927353A4 (en) | 2001-09-12 |
| US6051394A (en) | 2000-04-18 |
| CA2264772C (en) | 2007-04-24 |
| DE69737718T2 (de) | 2008-01-31 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US8642323B2 (en) | Container for testing for micro-organisms | |
| US5856175A (en) | Device for detecting microorganisms | |
| ES2317647T3 (es) | Dispositivo y metodos para detectar microorganismos. | |
| US5217876A (en) | Method for detecting microorganisms | |
| EP0333253B1 (en) | Apparatus and device for detecting microorganisms | |
| US5366873A (en) | Device and method for use in detecting microorganisms in a sample | |
| BR112013010096B1 (pt) | Método de detecção de uma atividade biológica | |
| US5897993A (en) | Method of determining the number of bacteria quickly and a device for determining the number of bacteria | |
| US6051394A (en) | Detection of microorganisms | |
| CA2016872C (en) | Apparatus and method for detection of microorganisms | |
| EP2041297B8 (en) | Colorimetric method for bacterial load detection | |
| AU2004208722B2 (en) | Detection of Micro-Organisms | |
| AU2011204782B2 (en) | Container for testing for micro-organisms | |
| NZ503154A (en) | Detection of microorganisms | |
| BIOCHEMICALS | old'fashioned service and quality | |
| unit above is Amsco | Sterilizing Systems |