ES2292744T3 - Union de endotoxinas por bacterias y bifidobacterias del acido lactico. - Google Patents
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Abstract
El empleo de por lo menos una cepa de bacterias del ácido láctico y/o Bifidobacterias seleccionadas del grupo formado por Lactobacillus johnsonii, Lactobacillus reuterii, Lactobacillus paracasei, Lactobacillus animalis, Lactoba-cillus ruminis, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus rahmnosus, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus delbrueckii subs. lactis, Bifidobacterium spp., Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium longum, Bifidobacterium pseudolongum, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium adolescentis, que tienen unas propiedades de superficie caracterizadas por un tanto por ciento de hidrofobicidad (%H) de por lo menos 80, para la preparación de una composición destinada a la prevención o tratamiento de transtornos mediados y/o asociados con endotoxinas.
Description
Unión de endotoxinas por bacterias y
bifidobacterias del ácido láctico.
La presente invención se refiere al empleo de
bacterias y/o bifidobacterias del ácido láctico, que son
hidrofóbicas, para la preparación de una composición alimenticia
destinada a la prevención o tratamiento de trastornos mediados y/o
asociados con las endotoxinas. La invención se refiere también a la
composición preparada de las mismas.
Las toxinas inductoras de la sepsis, se ha
descubierto que están asociadas con bacterias patógenas, virus,
vegetales y veneno. Entre las toxinas bacterianas bien descritas
están las endotoxinas o lipopolisacáridos (LPS) de las bacterias
gram negativas. Estas moléculas son glicolípidos, que están siempre
presentes en las membranas externas de todas las bacterias
gram-negativas, las cuales se cree que son las
responsables de la sepsis gram negativa. Este tipo de sepsis es una
condición extremadamente común, y a menudo es fatal.
Se han ensayado diferentes métodos para el
tratamiento de la sepsis. Entre los mismos están incluidos, el
empleo de anticuerpos para los LPS, el empleo de anticuerpos para el
factor de necrosis tumoral, el empleo de un receptor soluble para
el TNF, el empleo de un receptor soluble para la interleucina
(IL-1), para nombrar sólo unos pocos. Aunque cada
método tiene alguna eficacia, los resultados globales han sido
decepcionantes.
Otros han intentado diseñar y estudiar proteínas
que se unan a las LPS/endotoxinas, e informes ilustrativos de estos
intentos aparecen en Rustici, A. et al., Science (1993)
259-361-364; Matsuzaki, K. et
al. Biochemistry (1993) 32:11704-11710; Hoess,
A. et al. EMBO J (1993) 12:3351-3356; y
Elsbach, P. et al. Current Opinion in Immunology
("Opiniones corrientes en Inmunología") (1993)
5:103-107. De hecho, después de la introducción de
los LPS en la sangre, pueden unirse a una proteína llamada proteína
de unión con los lipopolisacáridos (LBP). La inhibición de la LBP,
p. ej., con un anticuerpo anti-LBP, ha sido sugerida
como terapéuticamente útil para el tratamiento de la sepsis mediada
por endotoxinas (solicitud de patente internacional nº
PCT/US90/04250, registrada el 30 de Julio de 1990). También, los
estudios de varios laboratorios han demostrado que las lipoproteínas
del plasma, en particular las lipoproteínas de alta densidad (HDL),
se unen con y neutralizan los LPS (Skarnes et al., 1968, J.
Bacteriology 95:2031; Flegel et al., 1993, Infect. Immunol.
61(12):5140) y que estas partículas pueden constituir la
actividad neutralizante de los LPS en el plasma.
Los tratamientos previos para enfermedades
mediadas por la endotoxina y/o asociadas, han sido retrospectivos
(es decir, después del desarrollo de la enfermedad clínica, y han
sido limitados a la intervención quimioterapéutica. Las medidas de
prevención no se alcanzaron con dichos tratamientos.
Por lo tanto, existe en la técnica la necesidad
de un agente efectivo para la neutralización de la endotoxina gram
negativa (esto es, los LPS), con el fin de prevenir o aliviar los
síntomas de la sepsis y el choque séptico.
Las bacterias y bifidobacterias hidrofóbicas del
ácido láctico de la presente invención, proporcionan compuestos
adicionales que son capaces de unirse a las endotoxinas y
aliviar/prevenir sus efectos.
Por lo tanto, la presente invención se refiere
al empleo de por lo menos una cepa de bacterias y/o bifidobacterias
del ácido láctico, que tienen propiedades hidrofóbicas en la
superficie, para la preparación de una composición destinada a la
prevención o al tratamiento de los trastornos mediados y/o asociados
con las endotoxinas.
De hecho, se ha descubierto sorprendentemente
que algunas bacterias y bifidobacterias del ácido láctico,
particularmente las que tienen una superficie hidrofóbica, poseen
la capacidad de unirse a las endotoxinas. Así pues, permiten su
empleo como agentes eficientes para la prevención del choque
endotóxico y la sepsis de origen intestinal, translocación
bacteriana, enterocolitis necrosante, enfermedad inflamatoria del
intestino, infecciones intestinales, endotoxemia crónica asociada o
causante de la inflamación catabólica y sistémica.
Las bacterias o bifidobacterias hidrofóbicas del
ácido láctico tienen un tanto por ciento de hidrofobicidad (%H) de
por lo menos 80, y con más preferencia de 85 a 100%H.
En una versión preferida, la cepa se selecciona
del grupo formado por Lactobacillus johnsonii, Lactobacillus
reuterii, Lactobacillus paracasei, Lactobacillus animalis,
Lactobacillus ruminis, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus
rahmnosus, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus delbrueckii subs.
lactis, Bifidobacterium spp., Bifidobacterium bifidum,
Bifidobacterium longum, Bifidobacterium pseudolongum,
Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium adolescentis.
En otro aspecto, la invención se refiere a una
cepa aislada de bacterias o bifidobacterias del ácido láctico que
tiene propiedades hidrofóbicas en la superficie, la cual ha sido
seleccionada por su capacidad de unirse con las endotoxinas o de
co-agregarse con las bacterias gram negativas.
En otro aspecto, la invención proporciona una
composición alimenticia para humanos o animales domésticos para
prevenir o tratar las endotoxinas mediadas y/o asociadas a
trastornos, la cual contiene por lo menos una cepa de bacterias y/o
bifidobacterias del ácido láctico que tienen las características
anteriores, asociadas con un soporte comestible o una matriz
farmacéutica.
Esta composición presenta la ventaja de
disminuir el supercrecimiento de pequeñas bacterias intestinales y
disminuir el traspaso de endotoxinas desde el intestino al medio
interno, un trastorno frecuente en los animales domésticos que
puede ocasionar episodios de diarreas, malnutrición e inflamación
intestinal y sistémica, por ejemplo.
Dentro de la siguiente descripción, "NCC"
significa "Nestlé Culture Collection" ("Colección de Cultivos
Nestlé") (Nestlé Research Centre,
Vers-chez-les-Blanc,
Lausanne, Suiza).
Con respecto al primer objeto de la presente
invención, el empleo de por lo menos una cepa de bacterias y/o
bifidobacterias del ácido láctico que tienen propiedades
hidrofóbicas en la superficie, se refiere a la preparación de una
composición destinada a la prevención o tratamiento de trastornos
mediados y/o asociados con las endotoxinas.
De hecho, se ha descubierto sorprendentemente
que algunas bacterias o bifidobacterias del ácido láctico,
particularmente aquellas que tienen una superficie hidrofóbica,
tienen la capacidad de unirse a las endotoxinas.
Ciertamente, la cepa bacteriana de acuerdo con
la invención tiene la capacidad de unirse a las endotoxinas en la
pared de la célula hidrofóbica, y por lo tanto depura este producto
proinflamatorio de las bacterias gram negativas que de otra manera
puede trasladarse desde el interior del intestino hasta la sangre y
con ello provocar reacciones inflamatorias y, en casos muy serios,
choque endotóxico.
Las bacterias y bifidobacterias del ácido
láctico de acuerdo con la invención, han sido seleccionadas entre
cepas adecuadas para el consumo animal, respecto a su tanto por
ciento de hidrofobicidad (%H) como se describe en A.G. Zavaglia
et al., Journal of Food protection ("Revista de
protección alimentaria"), vol. 61, nº 7, 1998, pág.
865-873.
La cepa bacteriana de acuerdo con la invención,
tiene un %H de por lo menos 80 y con más preferencia de 85 a
100%H.
La determinación de la hidrofobicidad de la
superficie se ha logrado empleando el método MATH como se ha
descrito previamente (Pérez, P.F. et al., 1998, Appl.
Environ. Microbiol. 64: 21-26). En
resumen, 2 ml de suspensión de bacterias (aproximadamente 10^{8}
CFU/ml, en PBS) fueron extraídas con 0,4 ml de xileno mediante
agitación en torbellino de la misma durante 120 segundos. Se dejó
que las fases se separaran por decantación y se midió la
absorbancia A_{600} de la fase acuosa. La hidrofobicidad de la
superficie celular (%H) se calculó mediante la fórmula
%H = [(A_{0} - A) / A_{0}] x 100, en donde A_{0} y A son las absorbancias antes y después de la extracción con xileno respectivamente.
%H = [(A_{0} - A) / A_{0}] x 100, en donde A_{0} y A son las absorbancias antes y después de la extracción con xileno respectivamente.
En una versión preferida la cepa bacteriana
puede seleccionarse del grupo formado por Lactobacillus
johnsonii, Lactobacillus reuterii, Lactobacillus paracasei,
Lactobacillus animalis, Lactobacillus ruminis, Lactobacillus
acido- philus, Lactobacillus rahmnosus, Lactobacillus
fermentum, Lactobacillus delbrueckii subs. lactis Bifidobacterium
spp., Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium longum,
Bifidobacterium pseudolongum, Bifidobacterium infantis,
Bifidobacterium adolescentis.
En una versión muy preferida, la cepa puede ser
el Lactobacillus acidophilus NCC 2463 (CNCM-I
2623), Bifidobacterium bifidum NCC 189 (anteriormente CIDCA
536, CNCM-I-2333),
Bifidobacterium bifidum NCC 235 (anteriormente CIDCA 533,
CNCM-I-2335), Bifidobacterium
adolescentis NCC 251 (CNCM I-2168),
Bifidobacterium lactis (ATCC 27536), por ejemplo.
Entre las varias cepas seleccionadas de acuerdo
con la presente invención, las cepas siguiente fueron depositadas a
modo de ejemplo, de acuerdo con el Tratado de Budapest, en la
Collection Nationale de Cultures de Microorgasnismes (CNCM),
Instituto Pasteur, 28 rue du Docteur Roux, 75724 Paris Cedex 15,
Francia, Lactobacillus acidophilus NCC 2463 el 2.02.2001 con
la referencia CNCM I-2623, y el Bifidobacterium
bifidum NCC 189 y NCC 235 el 12.10.99 con las referencias
CNCM-I-2333 y CNCM
I-2335, respectivamente. El Bifidobacterium
adolescentis NCC 251 se depositó el 15.02.99 con la referencia
CNCM I-2168.
La cepa de Bifidobacterium lactis (Bb
12)(ATCC 27536) fué proporcionada por Hansen (Chr. Hansen A/S,
10-12 Boege Alle, P.O. Box 407,
DK-2970 Hoersholm, Dinamarca). Tiene una
hidrofobicidad de 89%H.
La cepa bacteriana de acuerdo con la presente
invención, puede emplearse para la preparación de composiciones
destinadas a la mejora de la salud humana o animal, particularmente
para la prevención o tratamiento de trastornos relacionados con las
endotoxinas en humanos y animales domésticos. La cepa bacteriana
puede emplearse como agente eficiente para la prevención del choque
endotóxico y de la sepsis de origen intestinal, translocación
bacteriana, enterocolitis necrosante, enfermedad inflamatoria del
intestino, infecciones intestinales, y endotoxemia crónica asociada
o causante de la inflamación catabólica y sistémica, por
ejemplo.
La cepa bacteriana de acuerdo con la invención
puede emplearse en su forma viable o inactivada.
En una versión preferida, la cepa de bacterias
lácticas se emplea en presencia de su medio de crecimiento
fermentado. Dicho medio puede, o bien ser esterilizado solo, o bien
junto con un alimento, extrusionado o secado por pulverización,
congelado o puede ser autoestable, por ejemplo.
La cepa de bacterias puede emplearse de manera
que la cantidad disponible para el individuo corresponda
aproximadamente a 10^{3} - 10^{14} cfu por día. Esta cantidad
depende del peso del individuo y de preferencia es aproximadamente
10^{9} - 10^{12} cfu/día para los humanos y 10^{7} - 10^{10}
cfu/día para los animales domésticos.
De acuerdo con otro aspecto, la presente
invención se refiere a una cepa aislada de bacterias o
bifidobacterias del ácido láctico que tienen propiedades
hidrofóbicas en la superficie y que tienen la capacidad de unirse a
las endotoxinas o coagregados con las bacterias gram negativas.
La capacidad de la cepa bacteriana de acuerdo
con la presente invención para unirse a las endotoxinas puede
medirse fácilmente empleando endotoxinas marcadas con FITC, midiendo
la asociación de endotoxinas radiomarcadas a células bacterianas,
en este caso, la estructura molecular de la endotoxina está
inalterada si se la compara con las posibles modificaciones que
puede experimentar la molécula después de la conjugación con FITC
(ver ejemplos).
De preferencia, se mide la capacidad de la cepa
bacteriana para eliminar las endotoxinas de la solución que
reproduce la cantidad de endotoxinas encontradas en el intestino
humano. Por ejemplo, los niveles de endotoxinas se examinaron con
el microensayo para la detección del grupo
2-ceto-3-desoxioctonato
en los lipopolisacáridos de bacterias gram negativas (Karkhanis Y D
et al., Analitical Chemistry ("Química
analítica") (1978)85: 595-601). Las
bacterias que eliminan más del 30% del contenido de endotoxina de
estas soluciones fueron seleccionadas con preferencia. Las
bacterias no hidrofóbicas estudiadas en este ensayo fueron incapaces
de modificar el contenido inicial de endotoxinas (ver
ejemplos).
Esta cepa de bacterias puede emplearse, como se
ha descrito más arriba, y particularmente como agente eficiente
para la prevención del choque endotóxico y sepsis de origen
intestinal, translocación bacteriana, enterocolitis necrosante,
enfermedad inflamatoria del intestino, infecciones intestinales,
endotoxemia asociada o promovedora de inflamación catabólica y
sistémica, por ejemplo.
De acuerdo con otro aspecto, la presente
invención se refiere a una composición alimenticia para un humano o
animal doméstico, que contiene por lo menos una cepa aislada de
bacterias y/o bifidobacterias del ácido láctico, teniendo dicha
cepa las características antes citadas, asociada con un soporte
comestible o una matriz farmacéutica.
La cepa debe seleccionarse como se describe más
arriba.
De preferencia, las bacterias o bifidobacterias
del ácido láctico pueden administrarse como suplemento a la dieta
normal o como complemento de un alimento para humanos o animales
domésticos, nutricionalmente completo.
La composición alimenticia para humanos o
animales domésticos, puede comprender por lo menos la cepa de
bacterias y/o bifidobacterias del ácido láctico, como se ha
descrito más arriba, de manera que la cantidad disponible para el
individuo corresponda aproximadamente a 10^{3} - 10^{4} cfu por
día. Esta cantidad depende del peso del individuo y es de
preferencia aproximadamente 10^{9} - 10^{12} cfu/día para los
humanos y 10^{7} - 10^{10} cfu/día para los animales
domésticos.
El alimento humano puede estar en forma de una
fórmula nutritiva, una fórmula infantil, productos basados en la
leche, productos lácteos, productos basados en cereales, por
ejemplo. Para preparar dicho producto o composición alimenticia, la
cepa bacteriana como se ha descrito más arriba, puede ser
incorporada a un alimento como un polvo de cereal, leche en polvo,
un yogur, por ejemplo durante su fabricación.
En una versión, puede prepararse una fórmula
nutritiva que comprende una fuente de proteínas y por lo menos una
cepa bacteriana de acuerdo con la invención. Se prefiere utilizar
proteínas dietéticas como fuentes de proteínas. Las proteínas
dietéticas pueden ser cualquier proteína dietética adecuada; por
ejemplo proteínas animales (tales como proteínas de la leche,
proteínas de la carne, proteínas del huevo), proteínas vegetales
(tales como proteína de soja, trigo, arroz o guisante), mezclas de
aminoácidos libres o combinaciones de los mismos. Las proteínas de
la leche tales como la caseína, las proteínas del suero de leche y
las proteínas de soja son particularmente preferidas. La
composición puede contener también una fuente de hidratos de carbono
y una fuente de grasa.
Si la fórmula nutricional incluye una fuente de
grasa, dicha fuente de grasa proporciona de preferencia
aproximadamente de un 5% a aproximadamente un 55% de la energía de
la fórmula nutricional; por ejemplo aproximadamente de un 20% a
aproximadamente un 50% de la energía. Los lípidos que completan la
fuente de grasa pueden ser cualquier grasa o mezclas de grasas
adecuadas. Las grasas vegetales son particularmente adecuadas; por
ejemplo el aceite de soja, aceite de palma, aceite de coco, aceite
de cártamo, aceite de girasol, aceite de maíz, aceite de canola,
lecitina y similares. Las grasas animales tales como las grasas de
la leche pueden también añadirse, si se
desea.
desea.
Si la fórmula nutritiva incluye una fuente de
hidratos de carbono, la fuente de hidratos de carbono proporciona
aproximadamente de un 40% a un 80% de la energía de la fórmula
nutritiva. Puede emplearse cualquier hidrato de carbono adecuado,
por ejemplo la sacarosa, lactosa, glucosa, fructosa, sólidos de
jarabe de maíz, y maltodextrinas, y mezclas de los mismos.
Pueden añadirse también fibras dietéticas si se
desea. Son adecuados numerosos tipos de fibras dietéticas. Fuentes
adecuadas de fibras dietéticas pueden incluir entre otros, la soja,
guisantes, avena, pectina, goma guar y goma arábiga. Si se emplea,
la fibra dietética comprende de preferencia hasta aproximadamente el
5% de la energía de la fórmula nutritiva. Pueden incluirse
vitaminas y minerales adecuados en la fórmula nutritiva de manera
habitual para cumplir las normas apropiadas. Si se desea, pueden
incorporarse uno o más emulsionantes de calidad alimenticia a la
fórmula nutritiva; por ejemplo ésteres del ácido diacetiltartárico
de monodiglicéridos, lecitina y mono y diglicéridos. De forma
similar, pueden incluirse sales y estabilizantes adecuados.
La fórmula nutritiva es administrable de
preferencia, entéricamente; por ejemplo, en forma de un polvo, un
concentrado líquido, o una bebida lista para beber.
La fórmula nutritiva puede prepararse de
cualquier manera adecuada. Por ejemplo, la fórmula nutritiva puede
prepararse mezclando conjuntamente la fuente dietética de proteínas,
la fuente de hidratos de carbono y la fuente de grasas, en
proporciones adecuadas. Si se emplean, los emulsionantes pueden
incluirse en la mezcla. Las vitaminas y minerales pueden añadirse
en este punto pero habitualmente se añaden más tarde para evitar la
degradación térmica. Cualesquiera vitaminas lipofílicas,
emulsionantes y similares, pueden disolverse en la fuente de grasa
antes de mezclar. A continuación puede mezclarse agua, de
preferencia agua que ha sido sometida a ósmosis inversa, para
formar una mezcla líquida. La temperatura del agua es
convenientemente aproximadamente de 50ºC a aproximadamente 80ºC
para ayudar a la dispersión de los ingredientes. Pueden emplearse
licuefacientes comercialmente disponibles para formar la mezcla
líquida. La mezcla líquida se homogeneiza a continuación; por
ejemplo en dos etapas.
La mezcla líquida puede a continuación, tratarse
térmicamente para reducir la carga bacteriana. Por ejemplo, la
mezcla líquida puede calentarse rápidamente a una temperatura en el
margen de aproximadamente 80ºC a aproximadamente 150ºC durante
aproximadamente de 5 segundos a aproximadamente 5 minutos. Esto
puede efectuarse mediante inyección de vapor, autoclave o mediante
un intercambiador de calor; por ejemplo, un intercambiador de calor
de placa. La mezcla líquida puede enfriarse a continuación a
aproximadamente 60ºC a aproximadamente 85ºC; por ejemplo mediante
un enfriamiento flash. La mezcla líquida puede a continuación
homogeneizarse de nuevo, por ejemplo en dos etapas a
aproximadamente de 7 MPa a aproximadamente 40 MPa en la primera
etapa, y aproximadamente 2 MPa a aproximadamente 14 MPa en la
segunda etapa. La mezcla homogeneizada puede enfriarse más para
añadir cualquier componente sensible al calor; tales como vitaminas
y minerales. El pH y el contenido en sólidos de la mezcla
homogeneizada se estandariza convenientemente en este punto.
Si se desea, para producir una fórmula nutritiva
en polvo, la mezcla homogeneizada se transfiere a un aparato de
secado adecuado tal como un secador por pulverización o un
liofilizador y se convierte en polvo. El polvo debe tener un
contenido en humedad inferior a aproximadamente el 5% en peso.
Si se desea producir una fórmula líquida, la
mezcla homogeneizada se envasa de preferencia asépticamente en
recipientes adecuados. El llenado aséptico de los recipientes puede
efectuarse mediante precalentamiento de la mezcla homogeneizada
(por ejemplo de aproximadamente 75 a 85ºC) y a continuación
inyectando vapor en la mezcla homogeneizada para alcanzar una
temperatura de aproximadamente 140 a 160ºC; por ejemplo a
aproximadamente 150ºC. La mezcla homogeneizada puede enfriarse a
continuación, por ejemplo mediante enfriamiento flash, a una
temperatura de aproximadamente 75 a 85ºC. La mezcla homogeneizada
puede a continuación homogeneizarse, enfriarse después
aproximadamente a temperatura ambiente, y envasarse en recipientes.
Aparatos adecuados para efectuar un llenado aséptico de esta
naturaleza están comercialmente disponibles. La fórmula líquida
puede estar en forma de una fórmula lista para alimentar con un
contenido en sólidos de aproximadamente 10 a aproximadamente 14% en
peso, o puede estar en forma de un concentrado, habitualmente con un
contenido en sólidos de aproximadamente 20 a aproximadamente 26% en
peso. Pueden añadirse saborizantes a las fórmulas líquidas de manera
que las fórmulas se presenten en forma de bebidas convenientes, con
un sabor agradable, listas para beber.
En otra versión, un producto alimenticio
habitual puede enriquecerse con la cepa bacteriana de acuerdo con
la presente invención. Por ejemplo, una leche fermentada, un yogur,
un queso fresco, una leche cuajada, una barra de confitería, copos
o barras de cereales para desayuno, bebidas, leche en polvo,
productos a base de soja, productos fermentados no lácteos o
suplementos nutricionales para nutrición clínica.
En otra versión, puede prepararse una
composición alimenticia nutricional completa para animales
domésticos. Puede ser en polvo, en forma seca, semi húmeda, o un
producto alimenticio para animales domésticos húmedo, refrigerado o
autoestable. Puede ser también suplementos dietéticos para animales
domésticos o composiciones farmacéuticas. Estos alimentos para
animales domésticos pueden ser producidos de manera convencional.
Además de la cepa de bacterias, estos alimentos para animales
domésticos pueden incluir una o más fuentes de almidón, una fuente
de proteína y una fuente de lípido.
Fuentes adecuadas de almidón son por ejemplo,
granos y legumbres tales como maíz, arroz, trigo, cebada, avena,
soja y mezclas de los mismos. Fuentes adecuadas de proteína pueden
seleccionarse de cualquier fuente de proteínas animales o
vegetales; por ejemplo, carne y harina, harina de pollo, harina de
pescado, concentrados de proteína de soja, proteínas de leche,
gluten y similares. Para animales mayores, es preferible para la
fuente de proteína que contenga una proteína de alta calidad.
Fuentes de lípidos adecuadas incluyen carnes, grasas animales y
grasas vegetales. Además, pueden incorporarse, si se desea, otros
ingredientes varios, por ejemplo, azúcar, sal, especies,
condimentos, vitaminas, minerales, agentes saborizantes, grasas y
similares, al alimento para animales domésticos.
Para alimentos secos para animales domésticos,
un procedimiento adecuado es la cocción por extrusión, aunque puede
emplearse la cocción en el horno y otros procesos adecuados. Cuando
se emplea la cocción por extrusión, el alimento seco para animales
domésticos se obtiene generalmente en forma de galleta desmenuzada.
Si se emplea un prebiótico, este prebiótico puede mezclarse con los
otros ingredientes del alimento seco para animales domésticos antes
del procesado. Un procedimiento adecuado se describe en la solicitud
de patente europea nº 0850569, la descripción del cual se incorpora
como referencia. Si se emplea un microorganismo probiótico, el
organismo se recubre de preferencia o se incorpora en el alimento
para animales domésticos, seco. Un procedimiento adecuado se
describe en la solicitud de patente europea nº 0862863; la
descripción de la cual se incorpora como referencia.
Para los alimentos húmedos, el procedimiento
descrito en las patentes US 4.781.939 y 5.132.137 puede emplearse
para producir productos imitando la carne. Las descripciones de
dichas patentes se incorporan como referencia. Pueden emplearse
también otros procedimientos para la producción de productos tipo en
pequeños pedazos; por ejemplo, por cocción en un horno a vapor.
Alternativamente, pueden producirse productos en forma de hogaza,
emulsionando un material cárnico adecuado para producir una emulsión
de carne, añadiendo un agente gelante adecuado y calentando la
emulsión de carne antes de envasarlo en latas u otros
recipientes.
La cantidad de prebiótico en el alimento para
animales domésticos es de preferencia aproximadamente el 20% en
peso; especialmente aproximadamente el 10% en peso. Por ejemplo, el
prebiótico puede comprender aproximadamente el 0,1% al 5% en peso
del alimento para animales domésticos. Para alimentos para animales
domésticos que emplean achicoria como prebiótico, la achicoria
puede incluirse hasta comprender aproximadamente del 0,5% a
aproximadamente el 10% en peso de la mezcla para alimento, con
mayor preferencia aproximadamente del 1% a aproximadamente el 5% en
peso.
Si se emplea un microorganismo probiótico, el
alimento para animales domésticos contiene de preferencia
aproximadamente 10^{4} a aproximadamente 10^{10} células del
microorganismo probiótico por gramo del alimento para animales
domésticos; con mayor preferencia aproximadamente 10^{6} a
aproximadamente 10^{8} células del microorganismo probiótico por
gramo. El alimento para animales domésticos puede contener
aproximadamente del 0,5% a aproximadamente el 20% en peso de la
mezcla del microorganismo probiótico; de preferencia,
aproximadamente del 1% a aproximadamente el 6% en peso; por
ejemplo, aproximadamente del 3% a aproximadamente el 6% en peso.
Los alimentos para animales domésticos pueden
contener otros agentes activos tales como ácidos grasos de cadena
larga. Ácidos grasos de cadena larga adecuados incluyen el ácido
alfa-linoleico, ácido gamma linoleico, ácido
linoleico, ácido eicosapentanoico, y ácido docosahexanoico. Los
aceites de pescado son una fuente adecuada de ácidos
eicosapentanoico y docosahexanoico. El aceite de borraja, aceite de
semilla de casis y aceite de onagra, son fuentes adecuadas de ácido
gamma linoleico. Aceites de cártamo, aceites de girasol, aceites de
maíz y aceites de soja son fuentes adecuadas de ácido linoleico. Si
es necesario, los alimentos para animales domésticos se suplementan
con minerales y vitaminas de forma que sean nutricionalmente
completos.
Además, si es necesario, las cepas de bacterias
pueden estar encapsuladas; por ejemplo, en una matriz de azúcar,
una matriz de grasa o una matriz de polisacárido.
La cantidad de alimento para animales
domésticos, a consumir por animal doméstico para obtener un efecto
beneficioso dependerá del tamaño del animal doméstico, del tipo de
animal doméstico y edad del animal doméstico. Sin embargo, una
cantidad del alimento para animales domésticos para proporcionar una
cantidad diaria de aproximadamente 10^{3} - 10^{4} cfu de por
lo menos una cepa de bacterias o bifidobacterias de ácido láctico
serían habitualmente adecuadas. De preferencia, se administran por
ejemplo, aproximadamente 10^{9} - 10^{10} cfu/día para perros ó
10^{7} - 10^{10} cfu/día para gatos.
La composición de acuerdo con la invención está
pensada particularmente para el empleo en la profilaxis o
tratamiento de infecciones relacionadas con las bacterias gram
negativas, bacterias que producen endotoxinas tales como
Helicobacter spp, Samonella spp, y también con el
sobrecrecimiento de pequeñas bacterias intestinales (SIBO), todo lo
cual puede manifestarse clínicamente con diarreas, condiciones
inflamatorias intestinales o sistémicas, o catabolismo y mala
nutrición.
Este empleo puede destinarse particularmente a
la profilaxis o tratamiento de infecciones relacionadas con las
bacterias gram negativas, bacterias productoras de endotoxinas tales
como el Helicobacter spp, Samonella spp y también con el
sobrecrecimiento de pequeñas bacterias intestinales (SIBO), todo lo
cual puede manifestarse clínicamente con diarreas, condiciones
inflamatorias intestinales o sistémicas, o catabolismo y mala
nutrición.
Los siguientes ejemplos se dan a título de
ilustración solamente. Todos los porcentajes están expresados en
peso a no ser que se indique otra cosa. Los ejemplos vienen
precedidos de una breve descripción de las figuras.
Figura 1: Histograma gráfico para el
Bifidobacterium, bifidum cepa NCC 189 (anteriormente CIDCA
536, CNCM I-2333) que representa la unión
FITC-LPS. A: control sin FITC-LPS.
B: incubación con 50 \mul/ml de FITC-LPS. Se
analizaron por lo menos 16000 casos.
Figura 2: Efecto de la albúmina sobre la unión
FITC-LPS mediante las bacterias y bifidobacterias
del ácido láctico. A: cepa Bifidobacterium bifidum NCC 200
(anteriormente CIDCA 538, CNCM I-2334). B: cepa
Lactobacillus acidophilus NCC 2463 (CNCM
I-2623). C: cepa Bifidobacterium bifidum NCC
189 (anteriormente CIDCA 536, CNCM I-2333).
Figura 3: Cinética de crecimiento y de la unión
FITC-LPS para la cepa Bifidobacterium bifidum
NCC 189 (anteriormente CIDCA 536, CNCM I-2333. Los
valores son las medias de dos experimentos independientes.
Figura 4: Unión de los LPS mediante la cepa
Bifidobacterium, detectada mediante el microensayo para determinar
el
2-ceto-3-desoxioctonato
(KDO) en lipopolisacáridos. La concentración inicial de la solución
fue de 100 \mug/ml. Las barras muestran la concentración final
después de la incubación de la solución con las cepas
bifidobacterianas hidrofóbicas NCC 189 y NCC 251 (CNCM
I-2168) comparadas con una cepa no hidrofóbica de
bifidobacterias (NCC 200 (CNCM I-2334)).
Figura 5: Actividad proinflamatoria
(IL-8 (ng/ml)) de solución de LPS preincubada con
bacterias hidrofóbicas sobre células epiteliales humanas
HT-29.
Se analizaron muestras de control de DMEM, leche
humana (HM) 2%, LPS (2,5 \mug/ml) solos, cepa Bifidobacterium
bifidum NCC 189 (1,5e8 cfu/ml) sola, para determinar la
actividad estimuladora de fondo. Se compararon soluciones de
análisis de LPS + leche humana (fuente de sCD14) con una solución
conteniendo LPS 2,5 \mug/ml + HM 2%, preincubados con la cepa NCC
189 de Bifidobacterium bifidum (1,5e8 cfu/ml).
La selección de bacterias hidrofóbicas se basó
inicialmente en el % de partición de células bacterianas entre una
fase orgánica (hidrofóbica) y una fase acuosa. La determinación de
la hidrofobicidad de la superficie se efectuó utilizando el método
MATH descrito anteriormente (Pérez, P.F. et al., 1998,
Appl. Environ. Microbiol. 64:21-26).
Resumiendo, se extrajeron 2 ml de suspensión bacteriana
(aproximadamente 10^{8} CFU/ml, PBS), con 0,4 ml de xileno,
agitando en torbellino durante 120 segundos. Se dejó que las fases
se separaran por decantación y se midió la A_{600} de la fase
acuosa. La hidrofobicidad de la superficie celular (%H) se calculó
mediante la fórmula H% = [(A_{0} - A)/A_{0}] x 100, en donde
A_{0} y A son las absorbancias antes y después de la extracción
con xileno, respectivamente.
Subsiguientemente, las bacterias o
bifidobacterias del ácido láctico se seleccionaron por su capacidad
de eliminar las endotoxinas de una solución que imita la cantidad
de endoxina encontrada en el intestino humano. Los niveles de
endotoxina se examinaron con el microensayo para la detección del
grupo
2-ceto-3-desoxioctonato
en el lipopolisacárido de bacterias gram negativas (Karkhanis Y D,
et al., Analytical Chemistry ("Química
Analítica") (1978) 85:595-601).
Se seleccionaron las bacterias que eliminan más
del 30% del contenido de endotoxinas de estas soluciones. Las
bacterias no hidrofóbicas ensayadas en este ensayo fueron incapaces
de modificar el contenido inicial de endotoxina.
Se estudió la interacción entre los LPS de la
Escherichia coli y las bacterias del ácido láctico que
presentan diferentes propiedades de la superficie habiendo
seleccionado las bacterias con más del 80%H y algunos controles
"negativos" no-hidrofóbicos, se midió la
interacción con endotoxinas marcadas fluorescentes mediante
citometría de flujo.
La cepa Lactobacillus acidophilus NCC
2463 (CNCM I-2623) fue de la colección Nestec
(Lausanne, Suiza). Las cepas Bifidobacterium bifidum NCC 189
(anteriormente CIDCA 536, I-2333) y
Bifidobacterium bifidum NCC 200 (anteriormente CIDCA 538,
(CNCM I-2334)), fueron de la colección del Centro de
Investigación y Desarrollo en Criotecnología de Alimentos (La
Plata, Argentina). Suspensiones congeladas (-80ºC) conservadas con
10% (vol./vol.) de glicerina, se reactivaron una vez en caldo MRS
antes de los experimentos. Todos los cultivos se efectuaron a 37ºC
en condiciones anaeróbicas (BBL GasPak Plus).
Lipopolisacáridos y lipopolisacáridos marcados
con FITC fueron del serotipo de Escherichia coli 0111:B4
(Skelly, R.R et al., 1979 Infect. Immun. 23:
287-293) y fueron adquiridos en Sigma. Se prepararon
soluciones madre que contenían 1000 \mul/ml en agua destilada y
se diluyeron apropiadamente.
Se lavaron cultivos bacterianos tres veces con
PBS y se estandarizaron suspensiones a 10^{7} CFU/ml. Se
mezclaron 400 \mul con diferentes cantidades de
FITC-LPS ó LPS para obtener concentraciones en el
margen de 0 a 50 \mug/ml en la mezcla de reacción. Se efectuaron
incubaciones a 4ºC ó 37ºC durante 30 minutos y a continuación las
células se lavaron dos veces con PBS y se fijaron con
paraformaldehido 1% (vol./vol.) durante 30 minutos a 4ºC. Se
efectuó un análisis citométrico de flujo empleando una luz
azul-verde de excitación (FACScan^{TM}).
Se efectuó la determinación de la hidrofobicidad
de la superficie empleando el método MATH anteriormente descrito
(Pérez, P.F et al., 1998, Appl. Environ. Microbiol.
64: 21-26). En resumen, se extrajeron 2 ml de
suspensión bactriana (aproximadamente 10^{8} CFU/ml, PBS) con 0,4
ml de xileno agitando en torbellino durante 120 segundos. Se dejó
que las fases se separaran por decantación y se midió la A_{600}
de la fase acuosa. La hidrofobicidad de la superficie celular (%H)
se cáculó mediante la fórmula H% = [(A_{0} - A) / A_{0}] x 100
en donde A_{0} y A son las absorbancias antes y después de la
extracción con xileno respectivamente.
Las hidrofobicidades de la superficie de las
cepas estudiadas se muestran en la tabla 1. Los valores fueron 93 y
96% para las cepas Lactobacillus acidophilus NCC 2463 (CNCM
I-2623) y Bifidobacterium bifidum NCC 189
(CNCM I-2333) respectivamente, mientras que la cepa
Bifidobacterium infantis NCC 200 (CNCM
I-2334) no fue hidrofóbica y mostró valores
alrededor del 3%. Cepa % de hidrofobicidad NCC 2463 (CNCM
I-2623) 93 \pm 3 NCC 189 (CNCM
I-2333) 96 \pm 3 NCC 200 (CNCM
I-2334) 3 \pm 2
\vskip1.000000\baselineskip
La incubación de la cepa NCC 189 con 50
\mug/ml de LPS marcado con FITC desplaza claramente la población
bacteriana a la zona de fuorescencia. Los casos situados en el lado
derecho de la gráfica (marcador M1) representan el 90% de la
población estudiada (figura 1B). Para las suspensiones incubadas sin
FITC-LPS, solamente el 2% de los casos están
situados en una diferente capacidad de unión.
La tabla 2 (más adelante) muestra que la unión
FITC-LPS depende de la dosis. Se encontraron el 5 y
el 15% de células FITC (+) para las cepas NCC200. Por otro lado, la
NCC 189 muestra aproximadamente el 95% de células FITC (+). La
saturación tiene lugar alrededor de 10 \mug/ml de
FITC-LPS. La adición de albúmina, un fijador
lípido, reduce claramente el ratio FITC (+) en todas las cepas
estudiadas (figura 2). Sin embargo, la cepa CIDCA 536 muestra
aproximadamente el 30% de células FITC (+) en presencia del 0,4% de
albúmina y 50 \mug/ml de FITC-LPS (figura 2C).
Además, para esta cepa, se encontraron el 10% de células FITC (+)
con concentraciones de albúmina tan altas como el 3%. Cationes
divalentes (0,9 mM de Ca^{2+} y 0,5 mM de Mg^{2+}) no
modificaron la unión (datos no indicados)
\vskip1.000000\baselineskip
Se analizaron por lo menos 30000 casos.
La unión de FITC-LPS para la
cepa NCC 189 de Bifidobacterium bifidum (anteriormente CIDCA
536, CNCM I-2333) fue fuertemente dependiente de la
fase de crecimiento (figura 3). Las bacterias recogidas en la fase
estacionaria muestran un alto ratio de células FITC (+). Estos
valores cayeron espectacularmente durante la fase de adaptación y
se recuperaron progresivamente durante el crecimiento. No se
encontraron diferencias entre la unión a 4ºC y 37ºC.
En resumen, las cepas altamente hidrofóbicas
mostraron células FITC (+) que alcanzaban aproximadamente el 95%
para la cepa NCC 189. La cepa no hidrofóbica NCC 200 no alcanzó
nunca valores mayores del 5%. Estos resultados muestran que la
unión de los LPS va correlativa con la hidrofobicidad de la
superficie.
Estos resultados indican claramente que las
bacterias hidrofóbicas se unen a la endotoxina marcada con FITC y
por ello se convierten en fluorescentes. A una concentración de 10
\mug/ml de endotoxina, más del 90% de cultivos de células
hidrofóbicas se convierten en fluorescentes según se detecta
mediante citometría de flujo, en cambio, menos del 10% de células
bacterianas no hidrofóbicas se convierten en positivas en
concentraciones similares de endotoxinas.
Cuando los cultivos hidrofóbicos se introdujeron
en medios que contenían endotoxinas con una concentración que
oscilaba entre 30 y 90 \mug/ml, los cultivos bacterianos a una
concentración de 10^{7} a 10^{8} bacterias por ml, eliminaron
por lo menos el 20% de la presente endotoxina. Estos datos fueron
confirmados empleando endotoxinas marcadas radiactivamente.
Se estudió la supresión de la reacción pro
inflamatoria en células inmunocompetentes humanas inducida por
endotoxinas mediante la presencia en el sistema de cultivo de cepas
hidrofóbicas en comparación con bacterias no hidrofóbicas.
El Bifidobacterium bifidum NCC 189 (CNCM
I-2333) hidrofóbico, y el Bifidobacterium
infantis no hidrofóbico NCC 200 (CNCM I-2334),
se incubaron en una solución que contenía una cantidad definida de
endotoxinas determinadas por el método KDO (ver ejemplo 1)(figura
4).
La presencia de endotoxinas después de la
incubación con suspensión de bacterias disminuyó claramente mediante
la cepa hidrofóbica, mientras que no se observó ningún cambio en la
cepa no hidrofóbica.
Las bacterias lavadas se resuspendieron en DMEM
alto de glucosa (AMIMED) y se preincubaron con LPS de Escherichia
coli O111:B4 (Sigma) a una concentración final de 2,5
\mug/ml. Después de la centrifugación, se emplearon 200 \mul de
sobrenadante o de sedimento bacteriano resuspendido, para estimular
células epiteliales HT-29.
Después de 20 horas de cultivo a 37ºC, se
examinó el sobrenadante del cultivo de células HT-29
para detectar la presencia de IL-8, empleando un
ensayo ELISA.
Los resultados están presentados en la figura 5.
La actividad pro inflamatoria de los LPS se reduce
significativamente cuando una solución de LPS se preincuba con
bacterias hidrofóbicas. Después de la centrifugación, el
sobrenadante añadido al cultivo de células epiteliales (en
presencia de leche humana puesto que la estimulación por LPS es
dependiente de la presencia de sCD14), se reduce significativamente
con respecto al sobrenadante que no ha sido preincubado con las
bacterias no hidrofóbicas.
Para obtener una fórmula infantil, preparamos la
siguiente mezcla que contenía por 100 ml de fórmula: 0,5 a 5%, de
preferencia 2% de péptidos, 0,2 a 10%, de preferencia 4% de grasa, 1
a 25% de preferencia 8% de hidratos de carbono "no levan"
(incluyendo lactosa 65%, maltodextrina 20%, almidón 15%) y por lo
menos 10^{6} cfu/ml de las cepas siguientes: Lactobacillus
acidophilus NCC 2463 (CNCM I-2623),
Bifidobacterium bifidum NCC189 (CNCM
I-2333), Bifidobacterium bifidum CNCM
I-2335, Bifidobacterium adolescentis CNCM
I-2168, en combinación con trazas de vitaminas y
oligoelementos para satisfacer las necesidades diarias, y 0,01 a
2%, de preferencia 0,3% de minerales, y 50 a 90%, de preferencia,
75% de agua.
Una o más cepas de Bifidobacterium
bifidum (CNCM I-2333), Lactobacillus
acidophillus NCC 2463 (CNCM I-2623),
Bifidobacterium bifidum NCC235 (CNCM I-2335)
o Bifidobacterium adolescentis NCC251 (CNCM
I-2168), de acuerdo con la presente invención pueden
emplearse para la fabricación de productos de leche fermentados
similares al yogur.
Para hacer esto, se prepara 1 litro de un
producto de leche que contiene 2,8% de grasas, suplementado con 2%
de polvo de leche desnatada y 6% de sacarosa, se pasteuriza a 96ºC
durante 30 minutos y su temperatura se disminuye a continuación a
42ºC. Precultivos de una cepa no espesante de Streptococcus
thermophilus y de una cepa de Lactobacillus
bulgaricus no viscosa, se reactivan en un medio de cultivo
MSK estéril que contiene un 10% de polvo de leche reconstituida, y
0,1% de extracto de levadura comercial.
Un precultivo de uno o más de la cepa se
reactiva también en un medio que contenía 10% de polvo de leche
reconstituido y 0,1% de extracto de levadura comercial con 1% de
sacarosa. El producto de leche pasteurizada se inocula a
continuación con 1% de cada uno de estos precultivos reactivados y
este producto de leche se deja a continuación fermentar a 32ºC
hasta que el pH de la reacción llega a un valor 4,5. De esta forma,
se obtienen unos productos de leche fermentada similares al yogur,
y se almacenan a 4ºC.
Se prepara una mezcla alimenticia de
aproximadamente 58% en peso de maíz, aproximadamente 5,5% en peso de
gluten de maíz, aproximadamente 22% en peso de harina de pollo,
2,5% de achicoria seca, leche fermentada mediante cepas de
Lactobacillus acidophilus NCC 2463 (CNCM-I
2623)) de manera que la correspondiente cantidad disponible para el
perro es aproximadamente de 10^{9} - 10^{10} cfu/día, y sales,
vitaminas y minerales completando el resto.
La mezcla alimenticia se carga en un
preacondicionador y se humedece. El alimento humedecido se carga a
continuación en una extrusionadora-cocedor y se
gelatiniza. La matriz gelatinizada que abandona la extrusionadora es
forzada a pasar a través de una tobera y se extrusiona. El
extrusionado se corta en trozos adecuados para alimentar perros, se
seca aproximadamente a 110º durante aproximadamente 20 minutos, y se
enfría en forma de pequeñas bolas.
Este alimento seco para perros es capaz de
mejorar la salud de los animales domésticos, y particularmente
evita los trastornos relacionados con las endotoxinas en animales
domésticos.
Claims (11)
1. El empleo de por lo menos una cepa de
bacterias del ácido láctico y/o Bifidobacterias seleccionadas del
grupo formado por Lactobacillus johnsonii, Lactobacillus
reuterii, Lactobacillus paracasei, Lactobacillus animalis,
Lactobacillus ruminis, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus
rahmnosus, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus delbrueckii subs.
lactis, Bifidobacterium spp., Bifidobacterium bifidum,
Bifidobacterium longum, Bifidobacterium pseudolongum,
Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium adolescentis, que
tienen unas propiedades de superficie caracterizadas por un
tanto por ciento de hidrofobicidad (%H) de por lo menos 80, para la
preparación de una composición destinada a la prevención o
tratamiento de trastornos mediados y/o asociados con
endotoxinas.
2. El empleo de acuerdo con la reivindicación
1, en donde las bacterias o Bifidobacterias del ácido láctico
tienen un tanto por ciento de hidrofobicidad (%H) de 85 a 100%.
3. El empleo de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 1 y 2, en donde la cepa se selecciona del
grupo formado por Lactobacillus acidophilus NCC 2463
(CNCM-I 2623), Bifidobacterium bifidum NCC
189 (CNCM-I-2333),
Bifidobacterium bifidum NCC 235
(CNCM-I-2335), Bifidobacterium
adolescentis NCC 251
(CNCM-I-2168), y Bifidobacterium
lactis ATCC27536).
4. El empleo de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 1 y 3, en donde las bacterias del ácido
láctico se emplean de forma que la cantidad disponible para el
individuo es aproximadamente de 10^{3} - 10^{14} cfu por
día.
5. Una cepa aislada de bacterias o
bifidobacterias del ácido láctico, que son el Lactobacillus
acidophilus NCC 2463 (CNCM-I 2623),
Bifidobacterium bifidum NCC 189
(CNCM-I-2333), Bifidobacterium
bifidum NCC 235 (CNCM-I-2335),
ó Bifidobacterium adolescentis NCC 251
(CNCM-I-2168).
6. Una composición alimenticia para humanos o
animales domésticos, que contienen por lo menos una cepa de
bacterias y/o Bifidobacterias del ácido láctico, seleccionadas del
grupo formado por Lactobacillus johnsonii, Lactobacillus
reuterii, Lactobacillus paracasei, Lactobacillus animalis,
Lactobacillus ruminis, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus
rahmnosus, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus delbrueckii subs.
lactis, Bifidobacterium spp., Bifidobacterium bifidum,
Bifidobacterium longum, Bifidobacterium pseudolongum,
Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium adolescentis, que
tienen unas propiedades de superficie caracterizadas por un
tanto por ciento de hidrofobicidad (%H) de por lo menos 80,
asociado con un soporte comestible o una matriz farmacéutica.
7. Una composición, de acuerdo con la
reivindicación 7, en donde las bacterias o Bifidobacterias del ácido
láctico tienen un tanto por ciento de hidrofobicidad (%H) de 85 a
100%.
8. Una composición, de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 6 y 7, en donde la cepa se emplea
en su forma viable o forma inactivada.
9. Una composición de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 6 a 8, en donde la cepa de bacterias o
Bifidobacterias del ácido láctico se selecciona del grupo formado
por el Lactobacillus acidophilus NCC 2463
(CNCM-I 2623), Bifidobacterium bifidum NCC
189 (CNCM-I-2333),
Bifidobacterium bifidum NCC 235
(CNCM-I-2335), Bifidobacterium
adolescentis NCC 251
(CNCM-I-2168), Bifidobacterium
lactis (ATCC27536).
10. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 6 a 9, en donde la cantidad de
cepas de bacterias o Bifidobacterias del ácido láctico disponibles
para el individuo corresponde a 10^{3} - 10^{14} cfu por
día.
11. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 6 a 10, la cual reduce, previene
o trata los trastornos mediados y/o asociados a las endotoxinas.
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