ES2301908T3 - Gen de resistencia al paraquat. - Google Patents

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Abstract

Un método para el cribado o detección de una planta transgénica, que comprende introducir un ácido nucleico que codifica una proteína del siguiente (a) ó (b) y un gen exógeno o un fragmento de ADN exógeno en una planta y cribado de una planta transgénica en base a la resistencia al paraquat como un indicador: (a) una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2 y (b) una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos que tiene una sustitución, cancelación o adición de 1 a 10 aminoácidos respecto a la secuencia de aminoácidos tal como se describe en (a) e imparte resistencia al paraquat.

Description

Gen de resistencia al paraquat.
Fundamento de la invención Campo de la invención
La presente invención se refiere a un método para el cribado o detección de una planta transgénica y también a un método para impartir a una planta resistencia al paraquat.
Tipo de fundamento
Las plantas se encuentran expuestas habitualmente a diversas tensiones ambientales que incluyen temperaturas altas y bajas, sequía, elevada intensidad luminosa, salinidad, gases contaminantes, microbios patógenos y similares. Por lo tanto, si se pueden desarrollar plantas útiles que puedan crecer suficientemente incluso en dichas condiciones ambientales, por ejemplo, cultivos, la producción de alimentos será posible incluso en regiones en las que los cultivos y cosechas no puedan crecer habitualmente debido a las tensiones ambientales, y aumentará la posibilidad de prepararse para una crisis alimenticia grave que es previsible en el futuro. Como consecuencia de ello, la producción de plantas que han adquirido resistencia a dichos tipos de tensiones ambientales está en camino a nivel global. Por ejemplo, se han fabricado plantas que poseían una resistencia al frío (Nature 356, 710-703, 1992; Plant Physiol., 105, 601-605, 1994), resistencia a la sequía (Plant Physiol., 107, 125-130, 1995; Nature, 379, 683-684, 1996; Nature Biotech., 17, 287-291, 1999), resistencia a la sal (Science, 259, 508-510, 1993; Biotechnology, 14, 177-180, 1996; Plant J., 12, 133-142, 1997), resistencia a los contaminantes del aire (Plant Cell Physiol., 34, 129-135, 1993; Biotechnology, 12, 165-168, 1994), resistencia a las enfermedades (Kagaku a Seibutsu (Chemistry and Organisms), 37, 295-305, 385-392, 1999) y similares mediante técnicas de recombinación genética. Además, ya se emplean algunas plantas a las que se las ha dotado de resistencia a los productos químicos para la agricultura mediante técnicas de recombinación genética (Nature, 317, 741-744, 1985; Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85, 391-395, 1988, EMBO J.,6, 2513-2518, 1987; EMBO J.,7, 1241-1248, 1988).
Estas tensiones ambientales están íntimamente relacionadas con la generación in vivo de especies de oxígeno activo (radical superóxido (O_{2}), peróxido de hidrógeno (H_{2}O_{2}), radical oxidrilo (OH^{-})). Las especies de oxígeno activo son generadas por la respiración, la fotosíntesis, las tensiones ambientales y similares, y crean daños fatales a las células por una oxidación excesiva de las proteínas, ácidos nucleicos, estructura de la membrana o similares. También se ha informado que una planta resistente al oxígeno activo fabricada por técnicas de recombinación genética mostraba una gran resistencia a las tensiones ambientales anteriormente mencionadas (Plant Physiol., 111, 1177-1181, 1996; FEBS Letters, 428, 47-51, 1998).
Para fabricar una planta resistente al oxígeno activo, se emplea principalmente un método en el cual un gen de la especie del oxígeno activo que barre enzimas (la superóxido dismutasa, ascorbato peroxidasa, catalasa y glutationreductasa y otras) se introduce en la planta.
El Paraquat es un potente herbicida no selectivo que puede matar todas las plantas ya que genera oxígenos activos de forma continuada en los fotosistemas. Por consiguiente, la resistencia al Paraquat se puede utilizar como un indicador de la resistencia a los oxígenos activos, y se ha llevado a cabo un análisis respecto al mecanismo de la resistencia del paraquat en plantas (Pestic. Biochem. Physiol., 26, 22-28, 1986: Theor. Appl. Genet. 75, 850-856, 1988; and Plant Physiol.,91, 1174-1178, 1989).
Mientras tanto, un gen supresor de la apoptosis (Publicaciones de Patentes JP (Kokai) No.10-309142; No.2000-23583; y No.2002-300822), un gen que codifica una proteína homóloga a la aldosa reductasa (Publicación de Patentes JP (Kohyo) No.2001-523466) y un gen que codifica una proteína unida al hierro (ferritina) (Publicación de Patentes JP (Kohyo) No.2001-519671) se han revelado como genes que pueden impartir resistencia al paraquat. Además, en las publicaciones de patentes JP (Kokai) no.2002-281979 y no.2001-95585, la peroxidasa derivada del callo resistente al paraquat se revela como un gen capaz de impartir resistencia al paraquat.
"Clon de Arabipdosis thaliana 122632 mRNA, secuencia completa". XP002309600 extraído o recuperado del número de acceso de EBI EM_PRO:AY084949; Nr. de acceso de la base datos AY084949 y "cromosoma 4 de ADN de Arabidopsis thaliana, fragmento contiguo nr. 73" XP002309601 recuperado del EBI nr. de acceso EM_PRO:
AL161577. El nr. de acceso de la base de datos AL161577 revela un gen que codifica la proteína que tiene la secuencia de aminoácido conforme a SEQ ID NO.2. Ambas secuencias de aminoácidos se derivan de la Arabipdosis thaliana.
La publicación de la patente coreana nr. 10-2001-0009592 muestra un gen resistente al paraquat así como su uso en un método de cribado de una planta transformada.
Se había creído que si se podía aislar un gen de resistencia al paraquat que pudiera impartir fuerte resistencia al paraquat, sería útil en el desarrollo de plantas con elevada resistencia a los oxígenos activos generados en varias clases de condiciones ambientales de estrés (temperaturas altas y bajas, sequía, elevada intensidad luminosa, salinidad, gases contaminantes, microbios patógenos y similares). Sin embargo, recientemente se ha revelado que los oxígenos activos cumplen un papel importante como una molécula reguladora del crecimiento y de la respuesta al estrés de una planta. Por lo tanto, para evitar características que influyen mucho como el rendimiento del cultivo, es importante aumentar la resistencia de una planta a las tensiones como el paraquat sin afectar a su crecimiento y a los mecanismos del control fisiológico de una planta que depende de los oxígenos activos.
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Resumen de la invención
Un objetivo de la presente invención consiste en explicar los métodos definidos en las reivindicaciones 1 y 2.
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Breve descripción de los dibujos
La Fig. 1 es una fotografía de la electroforesis del cADN derivado de un gen transformante AtMVR.
La Fig. 2 es un diagrama esquemático que muestra la posición de un gen transformante AtMVR y un no transformante en las Figs. 2B y 2C. La Fig 2B es una fotografía que muestra el crecimiento de un gen transformante AtMVR y un no transformante en un medio de cultivo 1/2MS sin paraquat. La Fig. 2C es una fotografía que muestra el crecimiento de un gen transformante AtMVR y un no transformante en un medio de cultivo 1/2MS con paraquat.
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Descripción detallada de las configuraciones preferidas
La presente invención se describirá con detalle a continuación.
El gen usado en los métodos conforme a la presente invención es un gen que codifica la proteína de la (a) ó (b) siguientes:
(a)
una proteína que consiste en la secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2 y
(b)
una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos que tiene una sustitución, anulación o adición de 1 a 10 aminoácidos con respecto a la secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2 y que imparte resistencia al paraquat.
El gen que codifica la proteína descrita en el anterior (a) es un gen (después, conocido como "gen de AtMVR")que codifica una proteína que imparte resistencia al paraquat que consiste en una secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2.
Los actuales inventores realizaban una búsqueda de bases de datos que tuvieran la secuencia completa de nucleótidos de la Arabipdosis thaliana (por ejemplo, GenBank, EMBL, DDBJ, tair: La fuente de información de la Arabipdosis) basada en la secuencia de nucleótidos del gen AtMVR y descubrieron que existen 13 genes homólogos al gen AtMVR (AtMVR 3-1 a AtMVR 3-13) presente en el genoma de Arabidopsis thaliana. La secuencia de nucleótidos de cada uno de estos genes homólogos del AtMVR y la supuesta secuencia de aminoácidos codificada por el gen homólogo relevante AtMVR son representadas por los números de la SEQ ID indicados en la tabla 1 siguiente. La tabla 1 enumera además los resultados del análisis de homología entre el gen de AtMVR y cada gen homólogo de AtMVR. El análisis de homología se realizaba usando BLAST P a nivel de aminoácidos. Los aminoácidos pueden clasificarse en base a las propiedades químicas de sus cadenas laterales. En la matriz de sustitución de aminoácidos BLOSUM62 (Proc. Natl. Acad. Sci., 89, 10915-10919, 1992), los aminoácidos se clasifican en: un aminoácido con un grupo mercapto (C); los aminoácidos hidrofílicos que tienen peso molecular bajo (S, T, P, A, G); los aminoácidos acídicos (N, D, E, Q); los aminoácidos básicos (H, R, K); los aminoácidos hidrofóbicos que tienen pesos moleculares bajos (M, I, L, V); y los aminoácidos aromáticos (F, Y, W). En la tabla 1, el término "Identidades" se refiere a la correspondencia del 100% en términos de aminoácidos y el término "Positivos" se refiere al valor numérico cuando los aminoácidos que tienen una puntuación positiva en la matriz de sustitución de aminoácidos BLOSUM 62 se añaden a los que tienen una correspondencia del 100% (ver Bioinformatics (en japonés), Eds. Okazaki Y.&Bono H.(publicado por Medical Science Internacional).
TABLA 1
1
Tal como se muestra en la tabla 1, la homología de AtMVR con los 13 genes homólogos de AtMVR oscilaba entre el 22 y el 57% para las identidades y entre el 41 y el 70% para los positivos. Se considera que estos genes homólogos AtMVR imparten resistencia al paraquat del mismo modo que el gen de AtMVR.
Adicionalmente, el gen de AtMVR tiene homología a una proteína asociada a la senescencia, DSA 5 (número de acceso al GenBank AF082030) (Plant Molecular Biology 40, 237-248, 1999). El resultado del análisis de homología usando BLAST X indicaba que la proteína codificada por el gen AtMVR tiene una identidad del 89% a nivel de aminoácido respecto a la proteína codificada por DSA 5. Se informa que el DSA 5 es un gen que se expresa con el envejecimiento del pétalo de la liliácea (cultivo híbrido de Hemerocallis)(Plant Molecular Biology 40, 237-248, 1999). Sin embargo, puesto que la proteína codificada por el DSA 5 no tiene homología con ninguna proteína conocida, se desconoce que funciones tiene la proteína. De acuerdo con ello, el gen de AtMVR es un gen nuevo que imparte resistencia al paraquat.
Tal como se utiliza aquí, el término "resistencia al paraquat" se refiere a tener resistencia al paraquat. Más específicamente, el término "planta resistente al paraquat" hace referencia a una planta que requiere una mayor cantidad de paraquat que una planta no resistente, con el fin de obtener un efecto determinado del paraquat. El paraquat es un herbicida potente y no selectivo que mata todas las plantas generando de forma continuada oxígenos activos en el sistema fotoquímico. Es posible confirmar si el gen de AtMRV es un gen resistente al paraquat que imparte resistencia al paraquat examinando si un gen transformante al que se ha introducido un gen puede crecer en presencia de paraquat.
El gen que codifica la proteína descrita en el apartado (b) anterior es un gen que codifica una proteína formada por una secuencia de aminoácidos que tiene una sustitución, anulación o adición de 1 a 10 (ó 1 a 5) respecto a la secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2 y que imparte resistencia al paraquat.
Una vez se ha determinado la secuencia de nucleótidos del gen conforme a la presente invención, es posible entonces obtener el gen conforme a la presente invención por síntesis química, o por la reacción en cadena de la polimerasa (a continuación, conocida como "RCP"), que emplea como plantilla un clon que ha sido clonado, o bien realizando la hibridación que emplea un fragmento de ADN que tiene la secuencia de nucleótidos como una prueba. Además, es posible sintetizar un mutante del gen de acuerdo con la presente invención que tenga funciones equivalentes a las anteriores a la mutación por una técnica como la mutagénesis dirigida al lugar.
Los ejemplos del método para introducir una mutación en el gen conforme a la presente invención incluyen un método conocido como el método Kunkel o el método duplex a intervalos o un método de acuerdo con dichos métodos. Por ejemplo, se puede realizar la introducción de una mutación usando un equipo para introducir una mutación (por ejemplo, Mutant-K (fabricado por TAKARA, Inc.) o Mutant-G (fabricado por TAKARA, Inc.) utilizando la mutagénesis dirigida o usando el equipo de la Mutagénesis in vitro con la PCR, fabricado por TAKARA, Inc.
Una proteína que imparte resistencia al paraquat conforme a la presente invención es la proteína codificada por el gen conforme a la presente invención. Por ejemplo, el gen conforme a la presente invenciones integrará en un vector derivado del Escherichia coli o similares, y el E. coli es transformado luego con el vector recombinante obtenido. A continuación, la proteína conforme a la presente invención se podrá obtener extrayendo la proteína sintetizada en la E. coli.
Además, un vector recombinante conforme a la presente invención es un vector recombinante que comprende el gen conforme a la presente invención. El vector recombinante conforme a la presente invención se puede obtener insertando el gen conforme a la presente invención en un vector apropiado. Un vector usado para insertar el gen conforme a la presente invención no se encuentra especialmente limitado siempre que sea capaz de replicarse en un huésped, y ejemplos de ello incluyen un plásmido, un vector lanzadera, y un plásmido auxiliar. Además, cuando el vector propiamente no es capaz de replicarse, se puede usar un fragmento de ADN capaz de replicarse mediante un método como la inserción en el cromosoma de un huésped.
Ejemplos de ADN plasmídico incluyen un plásmido derivado de la E. coli (pB1221 y similares, por ejemplo, un sistema pET como el pET30b, el sistema pBR como el pBR322 y el pBR325, el sistema pUC como el pUC118, pUC119, pUC18 y pUC 19, pBluescript, y pB1221), un derivado plasmídico del Bacillus subtilis (por ejemplo, pUB 110 y pTP5), un plásmido derivado del Agrobacterium tumefaciens (por ejemplo, el sistema pBI derivado del pBIN19, pBI101 ó pBI121), un plásmido derivado de levadura (por ejemplo, el sistema YEp como el YEp13 o el sistema YCp como el YCp5O) o similares. Ejemplos de ADN fágicos incluyen el bacteriófago \lambda (Charon 4A, Charon 21A, EMBL3, EMBL4, \lambdagt10, \lambdagt11, \lambdaZAP y similares). Además, también se puede utilizar un vector de un virus animal como el retrovirus o el virus de la variolovacuna, un vector del virus de una planta como el virus del mosaico de la coliflor, o un vector de un virus de un insecto como un báculovirus.
Para insertar el gen conforme a la presente invención en un vector, se puede usar un método en el cual el cADN del gen conforme a la presente invención se parte inicialmente usando un enzima de restricción apropiado y luego se inserta en un lugar o punto del enzima de restricción o un lugar de multiclonaje de un vector de ADN apropiado y se liga al vector. Además, se puede usar un método en el cual una región homóloga se disponga respectivamente en una parte de un vector y el cADN del gen conforme a la presente invención, y el vector y el cADN se conecten por un método in vitro usando la RCP o algo similar o bien un método in vivo que use levadura o algo similar.
Un vector recombinante conforme a la presente invención puede incluir también un gen exógeno o un fragmento de ADN exógeno además del gen conforme a la presente invención. Un método para insertar un gen exógeno o un fragmento de ADN exógeno en un vector es el mismo que el método para insertar un fragmento de ADN conforme a la presente invención en un vector. Cualquier gen o fragmento de ADN puede ser utilizado como un gen exógeno o un fragmento de ADN exógeno. Por consiguiente, el gen conforme a la presente invención se puede utilizar como un gen marcador selectivo para indicar la resistencia al paraquat, por ejemplo, como con un gen de resistencia antibiótica para la canamicina o higromicina o similares.
Un transformante según la presente invención es un transformante que tiene el vector recombinante conforme a la presente invención. El transformante conforme a la presente invención se pueden obtener introduciendo el vector recombinante conforme a la presente invención en un huésped. Un huésped no está limitado mientras sea capaz de expresar el gen conforme a la presente invención, sin embargo se prefiere una planta. Cuando el huésped es una planta, es posible obtener una planta transgénica del modo anteriormente descrito.
Una "planta" que se transforma en la presente invención puede ser tanto: una planta entera, un órgano de una planta (por ejemplo, hoja, pétalo, tallo, raíz o semilla), tejido de planta (por ejemplo, epidermis, floema, parénquima o xilema) o bien una célula de cultivo de planta. Los ejemplos de plantas que se pueden usar en la transformación incluyen pero no se limitan a una planta perteneciente a la familia Poaceae, Brassicaceae, Solanaceae o leguminosas (ver a continuación).
Poaceae: Oryza sativa, Zea mays Brassicaceae: Arabidopsis thaliana Solanaceae: Nicotiana tabacum Leguminosae: Glycine max
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El vector recombinante conforme a la presente invención se puede introducir en una planta mediante un método de transformación convencional como, por ejemplo, el método de electroporación, método Agrobacterium, método de lanzamiento de partículas o método PEG.
Por ejemplo, cuando se utiliza el método de electroporación, el vector recombinante conforme a la presente invención se introducen en un huésped realizando el tratamiento que usa un aparato de electroporación equipado con un controlador del pulso en unas condiciones de voltaje de 500 a 1600 V, a 25 hasta 1000 pF, durante 20 a 30 mseg.
Cuando se utiliza el método del lanzamiento de partículas, toda la planta, un órgano de la planta o un tejido de la misma se pueden usar sin ningún tratamiento. Se puede preparar una sección y luego usarla o bien un protoplasto. La muestra preparada se puede tratar usando un dispositivo para la transferencia de genes (por ejemplo, PDS-1000/He fabricado por Bio-Rad Inc.). Aunque las condiciones de tratamiento pueden variar dependiendo de la planta o muestra utilizada, el tratamiento se realiza normalmente a una presión de aproximadamente 450 a 2000 psi y a una distancia de aproximadamente 3 a 12 cm.
Un método que usa el plásmido Ti o el plásmido Ri de Agrobacterium tiene la ventaja de una característica por la cual cuando una bacteria perteneciente al género Agrobacterium infecta una planta, una parte del ADN plasmídico que posee la bacteria es transferida al genoma de la planta. Por consiguiente, este método se puede utilizar para introducir el gen conforme a la presente invención en un huésped de planta. Entre las bacterias que pertenecen al género Agrobacterium, cuando el Agrobacterium tumefaciens infecta una planta, provoca la formación de un tumor que se conoce como "agalla de la corona". Además, cuando el Agrobacterium rhizogenes infecta una planta, incita la generación de una raíz capilar. Estas son causadas por una región que se conoce como "región del T-ADN (ADN transferida)" de un plásmido Ti ó plásmido Ri que es transferido a una planta en el momento de la infección para ser integrado en el genoma de la planta. De acuerdo con ello, el ADN que va a ser integrado en un genoma de planta se inserta por primera vez en la región del T-ADN de un plásmido Ti o plásmido Ri, y luego el ADN puede ser integrado en el genoma de la planta infectando el huésped de la planta con una bacteria del género Agrobacterium.
Ejemplos del método para transformar una bacteria del género Agrobacterium en un huésped de planta incluyen el método de electroporación anteriormente descrito, el método de lanzamiento y el método PEG, así como un método in planta. Ejemplos del método in planta incluyen un método de inoculación directa del Agrobacterium y un método de infiltración.
El tejido tumoral o brote, la raíz capilar o algo similar que se obtiene como resultado de la transformación se puede utilizar sin tratamiento alguno para el cultivo celular, el cultivo tisular o el cultivo de los órganos. Alternativamente, se puede regenerar en un cuerpo de planta por la administración de una hormona de planta (auxina, citoquinina, giberelina, ácido abscísico, etileno, brasinolida o similares) de una concentración apropiada usando un método de cultivo del tejido de la planta convencional.
El gen conforme a la presente invención se puede introducir también en una planta utilizando un virus de planta como un vector. Ejemplos de virus de plantas que se pueden usar incluyen el virus del mosaico de la coliflor. En primer lugar, se inserta el genoma vírico en un vector derivado de la E. coli o similar para producir un recombinante, y luego se introduce el gen conforme a la presente invención en el genoma vírico. El genoma vírico modificado de esta forma se separa posteriormente del recombinante usando un enzima de restricción, y el gen conforme a la presente invención se puede introducir luego en una planta huésped por inoculación del genoma vírico en la planta huésped.
Además de la introducción en una planta huésped tal como se ha descrito antes, el vector recombinante según la presente invención también se puede introducir en bacterias que pertenecen al género Escherichia como la E. coli, el género Bacillus como el Bacillus subtilis, o el género Pseudomonas como la Pseudomonas putida, así como levaduras como las Saccharomyces cerevisiae y Schizosaccharomyces pombe, células animales como la célula COS o la célula CHO, y células de insectos como la Sf9. Cuando se utiliza una bacteria como la E. coli o una levadura o algo similar como un huésped, es preferible que el vector recombinante conforme a la presente invención sea capaz de una replicación autónoma en la bacteria y ello comprende un promotor, una secuencia unida al ribosoma, una secuencia de terminación de la transcripción y el gen conforme a la presente invención. Puede implicar también un gen que regule el promotor.
El método para introducir el vector recombinante conforme a la presente invención en una bacteria no se encuentra limitado mientras que sea un método que pueda introducir ADN en una bacteria, y por ejemplo, puede mencionarse un método que utilice calcio o el método de electroporación.
El método para introducir el vector recombinante conforme a la presente invención en la levadura no se encuentra limitada mientras sea un método que pueda introducir ADN en la levadura, y por ejemplo se pueden mencionar el método de electroporación, el método de esferoplastos y el método del acetato de litio.
Cuando se utiliza una célula animal como huésped, se puede usar una célula de mono COS-7, Vero, célula de ovario de hámster chino, células L de ratón o similares. El método para introducir el vector recombinante conforme a la presente invención en una célula de animal no está especialmente limitado mientras se trate de un método que pueda introducir ADN en una célula animal, y por ejemplo, se pueda mencionar el método de electroporación, el método de fosfato de calcio y el método de lipofección.
Cuando se utiliza una célula de insecto como un huésped, se puede usar una célula de Sf9 o algo similar. El método para introducir el vector recombinante conforme a la presente invención en una célula de insecto no se encuentra limitado mientras pueda introducir ADN en una célula de insecto, y por ejemplo, se puedan mencionar el método del fosfato de calcio, el método de lipofección y el método de electroporación.
Es posible conformar si el gen conforme a la presente invención se ha integrado en un huésped mediante el uso del método de RCP, el método de hibridación meridional, el método de hibridación septentrional o similar. Por ejemplo, la RCP se puede realizar después de preparar el ADN del transformante y designando un cebador de ADN específico. A continuación, el producto de amplificación se somete a la electroforesis en gel de agarosa, a la electroforesis en gel de poliacrilamida o a la electroforesis capilar o algo similar, y el producto de la misma se colorea con bromuro de etidio, solución de verde SYBR o algo similar. Luego, si se ha producido o no transformación se puede confirmar mediante la detección del producto de amplificación como una banda única. También es posible detectar el producto de amplificación después de realizar la RCP usando un cebador que previamente se habrá marcado con un colorante fluorescente o algo similar. Además, se puede emplear un método en el cual el producto de amplificación se una a una fase sólida de una microplaca o algo similar para permitir la confirmación del producto de amplificación por la reacción enzimática o de fluorescencia.
Un cuerpo de una planta conforme a la presente invención es aquel que tiene un vector recombinante que comprende el gen conforme a la presente invención y que tiene resistencia al paraquat. Tal como se utiliza aquí, el término "cuerpo de la planta" se refiere a una planta entera transformada con un vector recombinante que comprende el gen conforme a la presente invención. El cuerpo de la planta conforme a la presente invención se puede obtener introduciendo el anterior vector recombinante en una célula de planta o algo similar y regenerando un cuerpo de planta transgénico de la célula de la planta transgénica obtenida. Como método de regeneración se puede emplear un método en el cual las células transformadas en forma de callo son transferidas a un medio de cultivo en el cual el tipo y la concentración de hormonas se han modificado y se han podido cultivar, y un embrión adventicio se ha podido crear para obtener un cuerpo de planta completo. Ejemplos del medio de cultivo que se utilizará incluyen un medio LS y un medio MS. La introducción de un vector recombinante en una célula de planta o similar se puede efectuar mediante un método similar al método anteriormente descrito.
En el cuerpo de la planta conforme a la presente invención, una proteína que imparte resistencia al paraquat que es codificada por el gen conforme a la presente invención se sobreexpresa por todo el cuerpo de la planta. Así el cuerpo de la planta conforme a la presente invención puede tener resistencia al paraquat.
Un método de cribado para las plantas transgénicas conforme a la presente invención es un método en el cual el vector recombinante conforme a la presente invención se introduce en las plantas y la resistencia al paraquat se utiliza como indicador para el cribado en plantas transgénicas. La transformación se puede verificar empleando el gen conforme a la presente invención como un marcador selectivo para indicar la resistencia al paraquat. Ejemplos del método de cribado incluyen un método en el cual las plantas transformadas por el vector recombinante conforme a la presente invención crecen en un medio que contiene paraquat y el cribado se realiza en base a las variaciones en la vida y en la muerte así como en el crecimiento de las plantas. La concentración de paraquat usada para el cribado puede variar dependiendo de las especies y del tamaño de las plantas. Sin embargo, si se utiliza, por ejemplo, Arabipdosis thaliana como huésped, el paraquat puede estar presente en un medio en una concentración de preferiblemente 0,1 a 3,0 \muM, más preferiblemente 1,0 a 3,0 \muM, y más preferiblemente de 3,0 \muM. Una planta no transgénica, es decir, una planta tipo salvaje, desarrolla clorosis y muere en un medio que contiene paraquat. En contraste con ello, una planta transformada con el vector recombinante conforme a la presente invención se mantiene verde incluso en un medio que contiene paraquat. Por consiguiente, es posible verificar una diferencia clara en el crecimiento en un medio que contiene paraquat entre una planta no transgénica y una planta transformada con el vector recombinante conforme a la presente invención.
Cuando se emplea resistencia a antibióticos, resistencia a herbicidas como un indicador, se pueden observar falsos positivos a nivel de cribado por la existencia de una diferencia en la sensibilidad en la planta. En contraste con ello, el paraquat es un herbicida no selectivo y potente que puede matar todas las plantas. Consecuentemente, en el método de cribado de plantas transgénicas conforme a la presente invención, no se observa una positividad falsa en la etapa de cribado. Además según el método de cribado de plantas transgénicas conforme a la presente invención, la resistencia se puede confirmar efectivamente en una etapa prematura del crecimiento.
Ejemplos
La presente invención se explicará con detalle a continuación en lo que se refiere a los siguientes ejemplos. Sin embargo, estos ejemplos no pretenden limitar el objetivo técnico de la invención.
Ejemplo 1 Aislamiento del gen de resistencia al paraquat
En este ejemplo, se utilizaban las líneas de T-ADN de Weigel aquiridas en Nottingham Arabipdosis Stock Center (http://nasc.nott.ac.uk) como líneas de referencia de activación de la Arabipdosis thaliana.
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(1) Detección de individuos capaces de crecer en un medio que contiene paraquat usando líneas marcadas de activación de Arabipdosis thaliana (líneas de T-ADN Weigel)
Semillas de líneas de T-ADN de Weigel se inoculaban de forma estéril en un medio de cultivo de 1/2 MS agar (1%)(2,3 g/l de mezcla salina de Murashige and Shook Plant (fabricada por Wako Pure Chemical Industries Ltd), 1,5 mg de clorhidrato de tiamina, 2,5 mg de ácido nicotínico, 0,25 mg de clorhidrato de piridoxina, 1,5% de sacarosa, 1% de agar) que contienen 3 pM de paraquat (viológeno de metilo, fabricado por Sigma Chemical Co.,) y se cultivaban a 22ºC bajo la irradiación luminosa de 60 \muE/m^{2}/s (ciclo de un fotoperiodo de 16 h/periodo de oscuridad de 8 h). Aproximadamente 10 días después del cultivo, se detectaban e identificaban los individuos que crecían en el medio que contenía paraquat.
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(2) Estimación de puntos de inserción de T-ADN de las líneas marcadas de activación detectadas por el método TAIL-PCR
Semillas de las líneas de T-ADN de Weigel de las cuales los individuos originados se plantaban en un crisol que contenía vermiculita (fabricada por Asahi Kagaku Kogyo Co., Ltd) y se dejaban crecer durante aproximadamente un mes a 23ºC bajo una intensidad luminosa de 100 \muE/m^{2}/s en unas condiciones de 16 h de fotoperiodo/8 h de oscuridad.
El genoma de ADN se preparaba a partir de las hojas de individuos cultivados usando el equipo DNeasy Plant Mini (fabricado por Qiagen), y se diseñaban tres tipos de cebadores específicos (TLI:SEQ ID NO:31; TL2:SEQ ID NO:32; TL3:SEQ IDE NO:33) para una secuencia izquierda de T-ADN (borde izquierdo de T-ADN:SEQ ID NO:30) de un vector marcado de activación (pSK1015:GenBank acceso nr. AF187951) usado con las líneas de T-ADN de Weigel. El TAIL-PCR (Shokubutsu nr. PCRJikken Purotokoru (Protocolos de Experimentos con la RCP para plantas), (Eds. Shimamoto K.&Sasaki T.), New Edition, 2000, pp 83-89, Shujunsha CO., Ltd., Tokyo; Genomics, 25, 674-681, 1995; Plant J.,8, 457-463, 1995)se preparaba luego usando los cebadores específicos y un cebador aleatorio 1 (SEQ ID NO:34) y la mezcla de reacción de la RCP y las condiciones de reacción descritas a continuación para amplificar el ADN del genoma próximo al T-ADN. En la SEQ ID NO: 34, n representa a, g, c o t (lugar: 1 y 11), s representa g ó c(lugar:7) y w representa a ó t (lugar: 8 y 13).
La composición de la mezcla de reacción y las condiciones de la RCP para la primera vuelta RCP se enumeran en las tablas 2 y 3.
TABLA 2
2
TABLA 3
3
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La composición de la mezcla de reacción y las condiciones de la RCP para la segunda vuelta se enumeran en las tablas 4 y 5.
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TABLA 4
5
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TABLA 5
6
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La composición de la mezcla de reacción y las condiciones de la RCP para la tercera vuelta se enumeran en las tablas 6 y 7.
TABLA 6
7
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TABLA 7
9
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Seguidamente, tras someter los productos de reacción de la segunda vuelta de RCP y de la tercera vuelta de RCP a electroforesis en gel de agarosa, se verificaba la presencia o ausencia de amplificación y la especificidad de los productos de reacción.
Además, usando el cebador específico TL3 (SEQ ID NO:33), el producto de amplificación de la tercera vuelta de la RCP se secuenciaba directamente usando el equipo de ABI PRISM Dye Terminador Cycle Sequencing (Applied Biosystems) y la secuencia de nucleótidos se determinaba luego usando el analizador genético ABI PRISM 310 (Applied Biosystems). Como resultado, se obtenía información de la secuencia 278-bp (SEQ ID NO: 35). En la SEQ ID NO: 35, n representa a, g, c ó t (lugar: 13, 35, 73, 108, 156, 190, 198 y 201). Se realizaba una búsqueda de la secuencia obtenida con las bases de datos que tienen la secuencia de nucleótidos completa de Arabipdosis thaliana, y se averiguaba que el punto de inserción se localiza en 77240 bp del clon BAC F17123.
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(3) Aislamiento del cADN del gen de resistencia al paraquat
Se plantaban semillas de Arabipdosis thaliana (Arabipdosis thaliana ecotipo Columbia (Col-0)) en un crisol que contiene vermiculita (Asahi Kagaku Kogyo Co.,Ltd) y se dejaba que crecieran durante aproximadamente un mes a 23ºC bajo una intensidad de luz de 100 \muE/m^{2}/s en unas condiciones de un fotoperiodo de 16 horas y un periodo de oscuridad de 8 horas.
Tras el crecimiento, las hojas de los individuos se congelaban usando nitrógeno líquido. Posteriormente, todo el ARN se extraía usando el equipo RNeasy Plant Mini (fabricado por QIAGEN). Luego, el cADN se sintetizaba a partir de ARN total extraído usando el equipo Prestar First Srand RT-PCR (fabricado por STRATAGEN).
En base a la secuencia de un supuesto gen de marco de lectura abierto presente en un 10 kb adyacente de un gen estructural que tiene la secuencia de nucleótidos (SEQ ID NO:35) obtenida en el (2) anterior, se diseñaban un cebador 141 dF(SEQ ID NOR:36) y un cebador 141 dR(SEQ ID NO:37) para el supuesto gen estructural, y la RCP se realizaba luego usando estos cebadores y la siguiente mezcla de reacción (tabla 8) que contiene Takara EX-Taq (fabricado por TAKARA BIO Inc.) empleando el cADN anteriormente sintetizado como un patrón.
TABLA 8
10
Treinta ciclos de 94ºC(30 seg)/55ºC(30 seg)/72ºC(60 seg) se empleaban como condiciones de la reacción.
El producto de amplificación se clonaba en el vector pGEM-T Easy (fabricado por Promega) y la secuencia de nucleótidos se determinaba luego usando el analizador genético ABI PRISM 310 (Applied Biosystems). Como resultado de ello, se obtenía un fragmento de cADN de 857 bp (SEQ ID NO:1). Este fragmento de cADN se designaba gen AtMVR, y el vector pGEM-T Easy que contiene AtMVR se conocía como pAtMVR. La secuencia de aminoácidos codificada por el gen AtMVR se muestra en SEQ ID NO: 2.
Ejemplo 2 Búsqueda del gen homólogo al AtMVR con respecto al gen AtMVR
La búsqueda se realizaba con las bases de datos que tienen la secuencia de nucleótidos íntegra de Arabipdosis thaliana en base a la secuencia de nucleótidos del gen AtMVR y se observaba que además de la secuencia de nucleótidos del gen AtMVR existen 13 genes homólogos de AtMVR en el genoma de Arabipdosis thaliana.
Los respectivos genes homólogos de AtMVR se conocían como AtMVR3-1 a AtMVR-13. La secuencia de nucleótidos de cada uno de los genes homólogos AtMVR y la supuesta secuencia aminoácido codificada por el gen homólogo relevante AtMVR se muestran en las SEQ ID enumeradas en la tabla 9 siguiente. La tabla 9 también menciona los resultados del análisis de homología entre el gen AtMVR y cada uno de los genes homólogos AtMVR. El análisis de homología se realizaba utilizando BLAST P a nivel aminoácido. El término "Identidades" se refiere a una correspondencia del 100% en los términos de los aminoácidos. Los aminoácidos se pueden clasificar en base a las propiedades químicas de sus cadenas laterales. En la matriz de sustitución del aminoácido BLOSUM62, los aminoácidos se clasifican en: un aminoácido con un grupo mercapto ©; aminoácidos hidrofílicos que tienen pesos moleculares bajos (S,T,P,A,G); aminoácidos acídicos (N,D,E,Q); aminoácidos básicos (H,R,K);aminoácidos hidrofóbicos que tienen pesos moleculares bajos (M,I,L,V); y aminoácidos aromáticos (F,Y,W). En la tabla 9, el término "identidades" se refiere a la correspondencia del 100% en términos de aminoácidos y el término "Positivos" se refiere al valor numérico cuando los aminoácidos que tienen una puntuación positiva en la matriz de sustitución del aminoácido BLOSUM 62 se añaden a los que tienen una correspondencia del 100%.
TABLA 9
12
13
Tal como se muestra en la tabla 9, la homología entre AtMVR y los 13 genes homólogos de AtMVR oscilaba entre el 22 y el 57% para las identidades y entre el 41 y el 70% para los positivos.
Ejemplo 3 Construcción de un vector de expresión de AtMVR para la planta y producción de una planta transgénica de AtMVR
Las técnicas de transformación aquí aplicadas coincidían con un sistema de vectores descrito por Pellegrineschu y cols.(Biochemical Society Transitions 23, 247-250, 1995) basado en el sistema de transporte de genes de Agrobacterium mencionado por Hinchee y cols.(Plant Cell y Tissue Culture, pp.231-270, Eds. I.K. Vasil, T.A Thorpe, Kluwer Academic Publisher, 1994).
(1) Construcción de un vector de expresión AtMVR para plantas
La secuencia del gen AtMVR se dividía a partir del pAtMVR usando SacI/SacII y se subclonaba en pBlue/Script (STRATAGENE). Posteriormente, un fragmento que contiene la secuencia del gen AtMVR se escindía con XbaI/SacI y se introducía en el lugar XbaI/SacI que está presente corriente abajo del promotor CaMV 35S de pBI121 (fabricado por Clontech). El vector resultante se usaba a continuación como un vector de expresión de AtMVR para plantas.
(2) Producción de la planta transgénica AtMVR
El vector de expresión AtMVR para plantas fabricadas en el apartado (1) se introducía en la cepa LBA4404 de Agrobacterium tumefaciens por el método de electroporación (Plant Molecular Biology Manual, Segunda Edición, B.G. Stanton, A.S. Robbert, Kluwer Academia Publishers, 1994). Posteriormente, el Agrobacterium tumefaciens que tiene el vector de expresión AtMVR para la planta introducida en el mismo se introducía en una Arabipdosis thaliana ecotipo Col-0 tipo natural o de referencia, mediante un método de infiltración descrito por Clough y cols. (The Plant Journal 16:735-743, 1998).
Los transformantes se detectaban en un medio que con- tiene canamicina, y se fabricaba una planta de generación T3 (línea homocigótica que tiene 1 gen AtMVR introducido) por autopolinización.
Seguidamente, se analizaba la cantidad de gen AtMVR expresada introducida. Las semillas de transformante producidas tal como se han descrito y una no transformante se plantaban, respectivamente, en crisoles que contenían vermiculita (Asahi Kagaku Kogyo Co., Ltd) y se dejaba que crecieran durante aproximadamente un mes bajo una intensidad luminosa de 100 \muE/m^{2}/s a 23ºC con un fotoperiodo de 16 horas/un periodo de oscuridad de 8 horas.
Tras el crecimiento, se extraía el ARN total del transformante y de la Arabipdosis thaliana ecotipo Col-0 no transformante tipo natural o de referencia usando el equipo RNeasy Plant Mini (QIAGEN). Luego, 1 \mug de ARN se sometía a una transcripción invertida usando el equipo ProSTAR First Strand RT-PCR (STRATAGEN). La RCP se llevaba a cabo luego usando la mezcla de reacción siguiente (tabla 10) que contiene Takara EXTaq (TAKARA BIO) empleando 1/50 volúmenes del cADN sintetizado como un patrón y usando cebadores para el gen AtMVR (cebador 14ldl (SEQ ID NO: 38) y cebador 141d2 (SEQ ID NO: 39)).
TABLA 10
14
Treinta ciclos de 94º0(30 seg)/55ºC (30 seg)/72ºC(60 seg) se empleaban como condiciones de la reacción.
Los productos de amplificación se sometían a electroforesis en gel de agarosa. La figura 1 muestra los resultados de la electroforesis. Como se puede ver en la figura 1, en comparación con el no transformante, el transformante producido sobreexpresaba el gen AtMVR.
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Ejemplo 4 Evaluación de la resistencia al paraquat del gen transformante AtMVR
Las semillas derivadas del gen transformante AtMVR fabricado y del no transformante (Arabipdosis thaliana ecotipo Col-0 tipo de referencia o natural) se inoculaban de forma estéril en un medio de 1/2 MS agar (1%) (2,3 g/l de Murashige y Skoog Plant Salt Mixture (Wako Pure Chemical Industries Ltd.), 1,5 mg/l de clorhidrato de tiamina, 2,5 mg/l de ácido nicotínico, 0,25 mg/l de clorhidrato de piridoxina, 1,5% de sacarosa) que contienen 3 \muM de paraquat (viológeno de metilo (Sigma Chemical CO.)), y se cultivaban durante ocho días a 22ºC bajo una irradiación luminosa de 60 \mumol/m^{2}/s (ciclo de fotoperiodo de 16 horas/periodo de oscuridad de 8 horas). Tras el cultivo, se evaluaba el crecimiento de los individuos germinados. Los resultados se muestran en la figura 2, donde la figura 2B es una fotografía que muestra el crecimiento de un gen transformante de AtMVR y un no transformante en un medio de cultivo 1/2 MS sin paraquat, y la figura 2C es una fotografía que muestra el crecimiento de un gen transformante AtMVR y un no transformante en un medio de cultivo 1/2MS con paraquat. La figura 2A es un diagrama esquemático que muestra la posición del gen transformante AtMVR y la del no transformante en las figuras 2B y 2C.
Como se puede ver en la figura 2B, los resultados indicaban que en el medio de cultivo sin paraquat, el gen transformante AtMVR exhibía el mismo crecimiento que el no transformante. Entretanto, como se puede ver en la figura 2C, en un medio que contiene paraquat el no transformante desarrollaba clorosis y moría, es decir, el crecimiento se veía inhibido de forma notable, mientras que en contraste con ello, la plántula del gen transformante AtMVR era capaz de crecer. Por consiguiente, se confirmaba que en un medio sin paraquat, el gen transformante AtMVR exhibía el mismo crecimiento que un no transformante, independientemente de la expresión del gen AtMVR, y también que en un medio con paraquat, el gen transformante AtMVR tenía claramente mayor resistencia al paraquat que el no transformante.
Texto libre para el listado de secuencias
SEQ ID NOS: 31 a 39 son cebadores
En la SEQ ID NO: 34, n representa a, g, c ó t (lugar: 1 y 11), s representa g ó c (lugar: 7), y w representa a ó t (lugar: 8 y 13).
En la SEQ ID NO:35, n representa a, g, c, ó t (lugar: 13, 35, 73, 108, 156, 190, 198 y 201).
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Aplicabilidad industrial
De acuerdo con la presente invención se aportan los métodos definidos en las reivindicaciones 1 y 2, respectivamente. Un gen de resistencia al paraquat en los métodos conforme a la presente invención es capaz de impartir resistencia que es específica al paraquat sin influir en la regulación del crecimiento que es sometida al control por la generación de oxígenos activos en diversos entornos.
<110> TOYOTA MOTOR CORPORATION
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OKAYAMA PREFECTURE
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<120> A PARAQUAT RESISTANCE GENE AND A VASCULAR TISSUE-AND TRICHOME-SPECIFIC PROMOTER
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<130> PH-2160
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<140>
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<141>
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<150> JP 2003-322051
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<151> 2003-09-12
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<160> 41
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<170> PatentIn Ver. 2. 1
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<210> 1
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<211> 855
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 1
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15
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<210> 2
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<211> 272
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 2
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17
19
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<210> 4
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<211> 822
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 4
20
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<210> 5
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<211> 272
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 5
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21
23
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<210> 6
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<211> 792
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 6
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24
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<210> 7
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<211> 263
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 7
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25
26
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<210> 8
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<211> 984
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 8
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28
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<210> 9
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<211> 327
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 9
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29
30
31
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<210> 10
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<211> 858
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 10
32
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<210> 11
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<211> 285
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 11
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33
34
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<210> 12
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<211> 849
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 12
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36
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<210> 13
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<211> 282
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 13
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37
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<210>14
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<211> 810
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<212> DNA
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 14
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39
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<210> 15
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<211> 269
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<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 15
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40
42
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<210> 16
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<211> 813
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
43
44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 270
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
45
46
47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 816
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 271
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
49
50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 705
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 234
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
52
53
54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 795
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 264
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
56
57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 654
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\newpage
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<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
58
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 217
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
59
61
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 837
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
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62
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 278
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
63
64
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 816
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Arabidopsis thaliana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
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65
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 271
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Arabidopsis thaliana
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<400> 29
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66
68
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
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<212> DNA
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<213>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gcggcagcgg cggcaggata tatt
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgctttcgcc tataaatacg acgg
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
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<400> 32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgctgcggac atctacattt ttg
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> base modificada
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tcccggacat gaagccattt ac
\hfill
22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
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<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> base modificada
\vskip0.400000\baselineskip
<222> 1 y 11
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n representa g ó c
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> base modificada
\vskip0.400000\baselineskip
<222> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<223> s representa g ó c
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> base modificada
\vskip0.400000\baselineskip
<222> 8 y 13
\vskip0.400000\baselineskip
<223> w representa a ó t
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ngtcgaswga nawgaa
\hfill
16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 278
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> base modificada
\vskip0.400000\baselineskip
<222> 13, 35, 73, 108, 156, 190, 198 y 201
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n representa a, g, c ó t
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
69
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cttcttcaat catcaccatg
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tagcttgaac cggcgcaaat
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtacgtttta gtaacagtct
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial : cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gattagcagt gactaactcc
\hfill
20

Claims (2)

1. Un método para el cribado o detección de una planta transgénica, que comprende introducir un ácido nucleico que codifica una proteína del siguiente (a) ó (b) y un gen exógeno o un fragmento de ADN exógeno en una planta y cribado de una planta transgénica en base a la resistencia al paraquat como un indicador:
(a)
una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2 y
(b)
una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos que tiene una sustitución, cancelación o adición de 1 a 10 aminoácidos respecto a la secuencia de aminoácidos tal como se describe en (a) e imparte resistencia al paraquat.
2. Un método para impartir resistencia al paraquat a una planta, que comprende introducir un vector recombinante que consta de un ácido nucleico que codifica una proteína de (a) o (b) siguientes en una planta e imparte resistencia al paraquat a la planta:
(a)
una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos representada por SEQ ID NO:2 y
(b)
una proteína que consiste en una secuencia de aminoácidos que tiene una sustitución, cancelación o adición de 1 a 10 aminoácidos respecto a la secuencia de aminoácidos tal como se describe en (a) e imparte resistencia al paraquat.
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