ES2310134A1 - Composicion fitosanitaria que comprende un hongo entomopatogeno perteneciente a la especie b. bassiana y triturados o fragmentados de datiles, metodo de elaboracion y uso de la misma. - Google Patents
Composicion fitosanitaria que comprende un hongo entomopatogeno perteneciente a la especie b. bassiana y triturados o fragmentados de datiles, metodo de elaboracion y uso de la misma. Download PDFInfo
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Abstract
Composición fitosanitaria que comprende un hongo entomopatógeno perteneciente a la especie B bassiana y triturados o fragmentados de dátiles, método de elaboración y uso de la misma. La presente invención se refiere a una composición fitosanitaria a base de subproductos agrícolas de palmáceas y de hongos entomopatógenos (agentes de control biológico) con el objetivo de reducir las poblaciones de insectos que atacan a las palmeras.
Description
Composición fitosanitaria que comprende un hongo
entomopatógeno perteneciente a la especie B. bassiana y
triturados o fragmentados de dátiles, método de elaboración y uso
de la misma.
La presente invención se refiere a una
composición fitosanitaria a base de subproductos agrícolas de
palmáceas y de hongos entomopatógenos (agentes de control
biológico) con el objetivo de reducir las poblaciones de insectos
que atacan a las palmeras.
El continuo crecimiento de la población humana
requiere la búsqueda de nuevos caminos para incrementar la
producción de alimentos. Una forma de conseguir este objetivo es la
reducción de las pérdidas en cultivos agrícolas provocadas por
organismos que producen enfermedades y plagas. Uno de los métodos
más utilizados para contrarrestar los males causados en los
cultivos por los insectos es el uso de agroquímicos. Estos
productos tienen un rol muy importante en la reducción de los daños
económicos en los vegetales. Sin embargo, la elevada toxicidad de
algunos de ellos, su residualidad y mal manejo han llevado a un
replanteamiento de las tácticas de control biológico de plagas, que
ha dado lugar al desarrollo de bioinsecticidas que incluyen tanto
bacterias, como virus y hongos entomopatógenos, como sustancias
tóxicas naturales producidas por microorganismos con un menor
impacto medio ambiental.
Los hongos entomopatógenos ofrecen posibilidades
muy interesantes para el control biológico porque, además de los
daños directos que son capaces de causar a sus huéspedes, pueden
formar epizootias que se extienden entre sus poblaciones. Este
interés por los hongos entomopatógenos se despertó desde el
conocimiento de su patogenicidad hace unos 100 años, siendo
inicialmente utilizados en la lucha contra plagas de insectos aunque
sin resultados satisfactorios, lo que supuso el desarrollo y uso
masivo de los insecticidas químicos. Los abusos en el uso de los
plaguicidas y los peligros que ello comporta, han despertado el
interés en el uso de los hongos para el control de plagas de
insectos.
Entre los géneros que están siendo estudiados
para su uso en el desarrollo práctico como micoinsecticidas, se
deben destacar Beauveria, Metarhizium, Lecanicillium (=
Verticillium) (Moore y Prior, (1993) Biocontrol News and
Information 14, 31-40), Cordyceps
y Paecilomyces. Dentro del género Beauveria, la
especie Beauveria bassiana tiene un amplio rango de
huéspedes (Knudsen et al. (1990) Journal of Economic
Entomology 83, 2225-2228) y produce micotoxinas
detectables en medio de cultivo, que al ser inoculadas en larvas de
gusanos de seda causan hinchazón y rigidez.
Para la obtención de masa de hongos para su uso
como bioinsecticidas, es necesario su crecimiento eficiente hongos
medios de cultivo determinados que varían en función del la especie
de que se trate. En la práctica, los sustratos sólidos más
corrientes usados para la producción de hongos entomopatógenos como
M. anisopliae son productos primarios de la agricultura,
aunque además de productos primarios, se están desarrollando como
de medios de cultivo algunos subproductos de la agricultura ya que
suponen costes de producción mínimos.
Así, Mycotech Corporation (USA) desarrolló un
cultivo en medio sólido sobre un sustrato de partículas de almidón
donde se desarrollan hongos entomopatógenos. Se han desarrollado
otros medios basados en productos agrícolas diversos como mezclas
de salvado húmedo, harina de maíz y agua y otros medios compuestos
por cubierta de semilla de algodón en polvo, salvado húmedo, harina
de maíz y agua. Se ha investigado la aplicación de subproductos
naturales como la corteza de coníferas, el agua de coco
(subproducto agrícola) o el mesocarpo de almendra
(Lopez-Llorca, L. V. y Carbonell, T. (1998).
Canadian Journal of Microbiology 44, 86-90) para la
producción de hongos antagonistas.
Generalmente, la producción de especies como
M. anisopliae, B. bassiana, L. lecanii y otros
deuteromicetos, se basa en la fermentación de granos de arroz
pelados y esterilizados (sin pulir). Sobre este sustrato es común
obtener rendimientos que van del 10 al 12% en masa fúngica, lo que
equivale aproximadamente a 10^{9} conidios/g de arroz (Alves,
1986. Editora Manole, Sao Paulo, Brasil, pp.
311-323). Estos sustratos suelen aplicarse
directamente en el suelo para controlar plagas de insectos
subterráneos. Otros sustratos alternativos, como granos de maíz y
soja o patata, se han ensayado con unos rendimientos inferiores a
los obtenidos con el arroz (Mendoça et al. (1991) Biological
Control of Locusts and Grasshoppers, Lomer, C. J. i Prior, C.
(eds.), Wallingford, U.K., pp. 239-244).
El patrón de crecimiento mostrado por los hongos
filamentosos en sustratos sólidos, en el que buena parte del
micelio se desarrolla en los espacios libres entre las partículas,
hace que una reducida disponibilidad de ellos (rápidamente
colonizables), pueda llegar a ser un factor limitante, incluso bajo
condiciones de óptimo intercambio gaseoso. Resulta, entonces, claro
el efecto que tiene el tamaño de la partícula sobre los
rendimientos finales. Cuando las circunstancias lo hacen necesario
es posible recurrir a diferentes clases de
pre-tratamiento del sustrato para incrementar su
accesibilidad y/o disponibilidad.
Los autores de la presente invención han
desarrollado una composición fitosanitaria a base de subproductos
agrícolas de palmáceas y de hongos entomopatógenos (agentes de
control biológico) con el fin de reducir las poblaciones de
insectos que atacan a las palmeras, preferentemente la palmera
datilera (en adelante, "la composición o producto
formulado"). Para el desarrollo de esta composición se
ensayaron diferentes géneros de hongos (Beauveria,
Lecanicillium, etc.) con la composición y se llevaron a cabo
multitud de ensayos con diferentes cepas pertenecientes a dichos
géneros.
De este modo, se obtuvo una composición con una
alta virulencia contra insectos plaga de palmera, en concreto
contra el picudo rojo (Rhynchophorus ferrugineus), siendo
eficaz tanto contra larvas como contra adultos de esta especie, y
generando una mortalidad del 100% en periodos de exposición
cortos.
De este modo, la composición constituye una
forma eficaz de bioinsecticida que además, debido sus
características de conservación, almacenamiento y modo de
producción, permite su escalado a nivel industrial y presenta una
serie de ventajas, las cuales se comentan a continuación:
- \sqbullet
- permite reducir el número de insectos plaga en las palmeras y afines, sin causar daño a la propia planta ni a otros organismos que pueden ser beneficiosos para las plantas,
- \sqbullet
- permite aumentar el tiempo de supervivencia del hongo en el medio gracias a los nutrientes que les aporta el sustrato sobre el que crecen (mayor viabilidad),
- \sqbullet
- los hongos que forman parte de esta composición pueden resistir más tiempo las condiciones adversas del medio,
- \sqbullet
- la utilización de los hongos junto con el sustrato en el que crecen facilita su aplicación en el campo para que actúen contra sus respectivos insectos diana,
- \sqbullet
- permite el reciclado de subproductos agrícolas (sustratos sobre los que se crece el hongo y que forman parte de la composición de la presente invención).
Así, la presente invención se refiere a una
composición fitosanitaria que comprende un hongo entomopatógeno
perteneciente a la especie B. bassiana y subproductos de
palmera. En una realización preferida, el hongo entomopatógeno
perteneciente a B. bassiana, es seleccionado de cualquiera
de las cepas con número de depósito CBS121096 (cepa 193) y
CBS121097 (cepa 203), depositadas en la colección Holandesa,
"Centraalburean voor Schimmercultures (CBS)".
En otra realización aun más preferida de este
aspecto de la invención el subproducto de palmera, preferentemente
dátiles o smillas, y más preferentemente triturados, procede de
Phoenix dactylifera. En otra realización preferida de este
aspecto de la invención la composición puede comprender además
hojas de palmáceas, preferentemente de la especie Chamaerops
humilis. Las hojas de las palmáceas como Chamaerops
humilis son subproductos agrícolas más pobres que las semillas
de P. dactylifera debido a que las capas de cera presentes
en las hojas, impiden que el hongo se nutra de ellas. Estos
subproductos proporcionan superficie al hongo para crecer, a
diferencia de las semillas de P. dactylifera que aportan
además nutrientes, resultado así su combinación ventajosa.
Esta composición fitosanitaria, que en una
realización todavía más preferida comprende polvo procedente de la
trituración de las semillas, permite proteger a las plantas de los
ataques producidos por insectos plaga, tales como el picudo rojo
(Rhynchophorus ferrugineus).
Un segundo aspecto de la invención se refiere al
método para la obtención de la composición fitosanitaria que
comprende:
- a.
- fragmentar o triturar los subproductos de palmera, preferentemente dátiles o semillas, y más preferentemente procedentes de la especie P. dactylifera.
- b.
- crecer el hongo entomopatógeno en el producto del paso a), preferentemente de la especie B. bassiana, y más preferentemente pertenecientes a cualquiera de las cepas 203 y 193.
En una realización preferida de este aspecto de
la invención, el método comprende además un paso de esterilización
de los subproductos de palmera, que puede realizarse antes o
después de la fragmentación o trituración.
Un tercer aspecto de la invención se refiere a
una cepa seleccionada de cualquiera de las cepas 203 y 193.
Un cuarto aspecto de la invención se refiere al
uso de la composición fitosanitaria de la invención el control
biológico de plagas de insectos, preferentemente de picudo
rojo.
A lo largo de la descripción y las
reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no
pretenden excluir otras características técnicas, aditivos,
componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos,
ventajas y características de la invención se desprenderán en parte
de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Los
siguientes ejemplos y dibujos se proporcionan a modo de
ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente
invención.
Beauveria bassiana: es una especie
perteneciente a la subdivisión Deuteromycetes. Las colonias de este
hongo pueden tener un color blanquecino hasta amarillento,
dependiendo del medio donde se siembre. La célula codiógena tiene
forma globosa con cuello en zig-zag. Los conidios
son hialinos y globosos.
Figura 1: Tiempo letal medio (LT_{50}) de
larvas de C. dimidiatus después de haber estado en contacto
con: el producto formulado con B. bassiana (F+Bb), el
formulado sin B. bassiana (F-Bb).
Figura 2: Cadáver de C. dimidiatus
parasitado por B. bassiana después de haber estado en
contacto con el formulado.
Figura 3. LT_{50} de larvas de 30 días de
Rhynchophorus ferrugineus en contacto con colonias de las
cepas 203, 193 y 119 de B. bassiana en placas de medio de
cultivo comercial agar extracto de maíz. Se observa que las cepas
203 y 193 resultan ser altamente patógenas para el picudo, a
diferencia de la cepa 119 que por contra si había resultado
altamente patogénica para larvas de otros insectos como el
lepidóptero Galleria mellonella y el coleóptero parásito de
raíces de palmeras C. dimidiatus.
Figura 4. Bioensayos (LT_{50}) realizados en
larvas de entre 7 y 10 días de Rhynchophorus ferrugineus con
los 2 formulados de Beauveria bassiana (cepas 203, 193). En
los 10 días que duró el ensayo, no se pudo calcular la LT_{50} de
los controles.
Figura 5. Bioensayos (LT_{50}) realizados en
larvas de 30 días de Rhynchophorus ferrugineus con los 2
formulados de Beauveria bassiana (cepas 203, 193). En los 10
días que duró el ensayo, no se pudo calcular la LT_{50} de los
controles.
Figura 6. Bioensayos (LT_{50}) realizados en
adultos de Rhynchophorus ferrugineus con los 2 aislados de
Beauveria bassiana (cepas 203, 193) en placas de medio de
cultivo comercial agar extracto de maíz. En los 20 días que duró el
ensayo no se pudo calcular la LT_{50} de los controles.
Figura 7. Bioensayos (LT_{50}) realizados en
adultos de Rhynchophorus ferrugineus con los 2 formulados de
Beauveria bassiana (cepas 203, 193). En los 20 días que duró
el ensayo no se pudo calcular la LT_{50} de los formulados
control.
Figura 8. Efecto de la temperatura de
almacenamiento en la viabilidad (A) (% germinación) y patogenicidad
(B) (LT_{50}) de B. bassiana tras 20, 60 y 180 días de
almacenamiento del producto formulado.
Figura 9. Efecto de la humedad de almacenamiento
en la viabilidad (A) (% germinación) y patogenicidad (B)
(LT_{50}) de B. bassiana tras 20, 60 y 180 días de
almacenamiento del producto formulado.
Figura 10. Viabilidad del producto formulado con
B. Bassiana aplicado en suelo. A) Presencia de B.
bassiana (Bb) y otros hongos (Otros) en productos formulados
(F) tras 3 mes de enterramiento en suelos con (S) y sin esterilizar
(NS). B) Análisis de la patogenicidad de B. bassiana (Bb) en
productos formulados (F), tras 3 mes de enterramiento en suelos con
(S) y sin esterilizar (NS), mediante la medición de la presencia de
cadáveres de G. mellonella.
La presente invención tiene por objeto
desarrollar un método que permita reducir el número de insectos
plaga en las palmeras y afines sin causar daño a la propia planta
ni a otros organismos que pueden ser beneficiosos para las plantas,
además de aumentar la supervivencia de los hongos entomopatógenos
que van a actuar como agentes de control biológico.
Así, la presente invención se basa en el empleo
de la combinación de hongos, como agentes de control biológico, y
subproductos de la agricultura, en concreto semillas de la palmera
datilera, preferentemente secas (sin uso agrícola), con el fin de
que los hongos crecidos sobre este sustrato puedan resistir más
tiempo las condiciones adversas del medio, además de facilitar su
aplicación en el campo.
El material sobre el que crecerán los hongos
agentes de control biológico es cualquier subproducto de palmáceas
(semillas, hojas, etc.), preferentemente de Phoenix
dactylifera. Y el agente de control biológico es B.
bassiana, preferentemente cualquiera de las cepas 193 y 203.
Los resultados de los ensayos realizados han
demostrado que el producto formulado es altamente patogénico para
las plagas de picudo rojo (R. ferrugineus) y coleóptero
nitidúlido (C. dimidiatus), reduciéndose en varios días el
tiempo letal medio (LT_{50}) de estas especies en comparación con
el propio hongo inoculado sin sustrato vegetal. Esta mortalidad en
el picudo rojo (sobre todo en las larvas) es muy superior a la
obtenida en trabajos anteriores realizados por
Martín-Molina et. al. (2001) utilizando B.
bassiana. Dichos autores inoculaban sin sustrato una cepa
comercial de este hongo (Naturalis-L de Troy
Biosciences Inc., descrita para moscas blancas y pulgones, no para
coleópteros) no aislada de picudos infectados de manera natural por
B. bassiana, como es el caso que nos ocupa, por lo que
obtenían porcentajes de mortalidad en larvas inferiores al 25%.
En un estudio muy reciente de Gindin et
al. (Gidin et al. (2006) Phytoparasitica
34(4), 370-379.), utilizando los
entomopatógenos B. bassiana y Metarhizium anisopliae
aislados de huéspedes distintos a R. ferrugineus, obtienen
mortalidades menores a las de esta patente para larvas de picudo
rojo de entre 7-12 días, inoculándolas con una
suspensión de 20 millones de conidios por mililitro de estos
hongos:
- -
- LT_{50} (B. bassiana aislado Gindin et al.) = 5,8-6,5 días
- -
- LT_{50} (M. anisopliae aislado Gindin et al.) = 3,5-5 días
- -
- LT_{50} (B. bassiana de la presente invención aislado de R. ferrugineus sobre semillas de P. dactylifera) = 1,75-2,5 días
En este citado estudio los autores hacen uso de
un producto formulado, basado en granos de arroz, como producto
primario de la agricultura, para espolvorearlo sobre las hembras de
picudo rojo y comprobar su fertilidad, no la patogenicidad directa
del mismo. Por contra, el método de la presente invención, que
además aprovecha un residuo abundante del cultivo de la palmera, ha
demostrado ser patogénico por contacto y/o ingestión para las
larvas (jóvenes y de 30 días) e incluso para adultos de R.
ferrugineus.
A su vez, en campo se ha demostrado que el
producto formulado de la presente invención (la composición de la
invención) con las semillas de palmera sobrevive durante 2 meses
aplicado cerca del meristemo apical de las palmeras encaperuchadas.
Además, se ha comprobado que no solamente el producto es eficaz en
fresco, sino que se demuestra que resiste diferentes condiciones de
almacenamiento (varias temperaturas y humedades) durante al menos 2
meses, y también enterrado en diferentes muestras de suelo sin
perder viabilidad ni patogenicidad en los diferentes casos.
A continuación se muestran una serie de ensayos
realizados por los inventores, que tienen por objeto poner de
manifiesto efectividad de la invención y en ningún caso
limitarla.
Para la elaboración del producto formulado, se
emplearon semillas de palmera datilera secas y sin orificios, que
indicasen el ataque de alguna plaga secundaria que hubiera
deteriorado la semilla. Primeramente, las semillas de P.
dactylifera se fragmentan, puesto que B. bassiana crece
mejor entre los huecos que aparecen por el interior de las mismas,
para lo que se utilizó una trituradora que funcionaba en seco con
dos ruedas dentadas metálicas que fragmentan las semillas en trozos
de pequeño tamaño (8x8 mm). Una vez obtenidos los fragmentos de
semilla, seleccionando su tamaño por tamizado, se procedió a su
esterilización.
Los fragmentos de semillas de palmera datilera
se dispusieron en vasos de precipitados de 100 ml, conteniendo cada
uno de ellos 10 gramos de semillas fragmentadas de P.
datylifera, que se sumergieron en agua destilada durante 30
minutos para su saturación. Posteriormente, se esterilizaron en
autoclave de vapor durante 90 min a 130°C, eliminando el agua de
saturación del sustrato. El material vegetal esterilizado se colocó
en placas Petri estériles y se dejó reposar durante
2-3 horas para eliminar cualquier compuesto volátil
que pudiese inhibir el crecimiento del hongo entomopatógeno.
Las placas con 10 g de sustrato vegetal se
inocularon con 100 conidios (por vaso) extraídos en agua destilada
estéril, de una colonia joven (de 9 días aproximadamente), del
hongo entomopatógeno en medio de cultivo artificial CMA (agar
extracto de maíz).
Posteriormente, las placas se incubaron entre 20
y 30°C, preferentemente a 25°C en oscuridad durante dos semanas
para que el hongo creciese sobre el sustrato. Posteriormente se
llevó a cabo el secado al aire hasta peso constante de los
fragmentos de semillas de P. dactylifera inoculados. Para
ello, se dispusieron placas de Petri abiertas con sustrato fresco en
una campana extractora durante 24 h. Una vez secos los sustratos se
almacenaron en las mismas placas de Petri donde se produjeron,
quedando así el producto formulado en condiciones para su
utilización.
Una vez secados los subproductos agrícolas con
el hongo inoculado, se procedió al estudio de la producción y
viabilidad de hongos entomopatógenos.
Dos semanas después de la inoculación de los
subproductos con el hongo se recogieron los conidios o esporas de
cada placa Petri, dejando agitar trozos de los sustratos inoculados
en 50 ml de agua destilada estéril durante 25 minutos a 200 r.p.m.
Tras la agitación se filtró la suspensión de conidios por muselina
estéril y posteriormente por lana de vidrio estéril para separar de
la suspensión de conidios del sustrato. El cálculo de la producción
se estimó mediante el número de conidios por gramo de sustrato,
para lo cual se determinó el número de conidios/ml de las
suspensiones de esporas en una cámara de Neubauer.
Para conocer la cantidad exacta de conidios que
se produjeron a partir del inóculo inicial, se midió el volumen de
suspensión recogido de cada una de las placas con una probeta
estéril, para finalmente estimar el número de conidios por gramo de
sustrato.
Por otro lado, la viabilidad de los conidios
producidos se estimó por germinación en placas Petri con CMA. Se
realizaron diluciones de la suspensión original de conidios para
ajustar el inóculo y se sembraron 100 conidios por placa con CMA.
Tres días después de la inoculación se contaron las colonias que
aparecieron en cada placa.
En la tabla siguiente (Tabla 1), aparecen datos
de producción y viabilidad de inóculo de B. bassiana
producido en placas con CMA (medio de cultivo comercial) y sobre
fragmentos de semillas de P. dactylifera (producto
formulado).
Como se aprecia existe un aumento de la
producción (\chi^{2} = 8.436, P< 0.05) de B. bassiana
cuando se formula sobre semillas de palmera datilera respecto al
medio de cultivo comercial CMA.
La patogenicidad de los hongos entomopatógenos
crecidos sobre las semillas de palmera se estimó mediante dos
ensayos realizados sobre larvas del lepidóptero Galleria
mellonella de estadio L5.
En el primero de los ensayos se agitó una
muestra de un 1 g de producto formulado a 200 r.p.m. durante 25
min. con 50 ml de agua destilada estéril. A partir de esta muestra
cada larva de Galleria mellonella fue inoculada con
4x10^{4} conidios en 20 \mul de agua destilada estéril aplicados
con una micropipeta.
En un segundo ensayo de patogenicidad se añadió
1 g del producto formulado a placas Petri estériles, sobre las que
se dispusieron 10 larvas de G. mellonella. Posteriormente,
las placas se incubaron a 25°C, anotándose cada dos días el número
de larvas muertas, hasta que se alcanzó la mortalidad de al menos
la mitad de las larvas de cada placa (LT_{50}). Este ensayo se
realizó por triplicado (3 placas).
Como control de ambos experimentos, se estimó la
patogenicidad sobre G. mellonella de las semillas de P.
dactylifera no inoculadas (se les añadió agua destilada estéril
en lugar de conidios de B. bassiana), que se colocaron en
placas Petri. Alternativamente, las larvas se inocularon con agua
obtenida de la agitación (200 r.p.m. durante 25 min) de 1 g de
semillas de P. dactylifera en 50 ml de agua destilada
estéril.
En los ensayos, se comprobó que las larvas de
G. mellonella tienen una mortalidad natural (LT_{50}) de
unos 20 días, es decir, que a los 20 días muere el 50% de la
población sin tratar. Al poner en contacto las larvas con
fragmentos de semillas de dátil sin hongo, la LT_{50} no presenta
diferencias significativas con el control de larvas sin tratar
(Tabla 2). Las larvas inoculadas directamente con el hongo
entomopatógeno muestran una LT_{50} de unos 7 días, que es
significativamente menor que la LT_{50} de larvas sin tratadas
con agua de semillas sin inocular. Sin embargo, las larvas que han
estado en contacto con el producto formulado con el hongo, muestran
una LT_{50} aún menor, es decir, en muy poco tiempo muere la
mitad de la población de larvas por placa (entre 1 y 2 días).
Además, al estudiar los cadáveres de estas larvas, se comprobó cómo
el 100% presentan el hongo en su cuerpo, lo que demuestra que éste
ha sido la razón de su muerte. Por tanto, los ensayos demuestran
que el producto formulado es altamente patogénico para este
insecto.
\vskip1.000000\baselineskip
Para mostrar la patogenicidad del producto
formulado con semillas de palmera sobre un insecto plaga real de
palmera, éste se puso en contacto con larvas del coleóptero
radicícola Carpophilus dimidiatus, que ataca a las raíces de
palmeras jóvenes. También se realizaron experimentos similares
sobre el picudo rojo de las palmeras (Rhynchophorus
ferrugineus).
\vskip1.000000\baselineskip
Se extrajeron las larvas de C. dimidiatus
que se encontraban en el interior de las raíces de P.
dactylifera, donde habían hecho galerías y se colocaron (5
larvas por placa, con 3 réplicas) en placas de Petri con el producto
formulado. Se añadió a cada placa un tratamiento distinto:
- 1)
- Dos gramos del formulado de B. bassiana (3 réplicas)
- 2)
- Dos gramos del formulado pero sin hongo (3 réplicas)
- 3)
- Las 5 larvas solas en la placa (3 réplicas)
\vskip1.000000\baselineskip
Posteriormente, se anotó el día en que morían
las larvas (para calcular el tiempo letal medio -LT_{50}-, que es
el tiempo en que tarda a morir el 50% de la población de insectos)
(Fig. 1), se esterilizaron los cadáveres en superficie para
depositarlos en cámaras húmedas y se comprobó si la muerte de C.
dimidiatus había sido debida al hongo entomopatógeno. Después
los cadáveres se depositaron en CMA con rosa de bengala y
antibióticos para ver si aparecía la colonia del entomopatógeno
hongo en los tratamientos con B. bassiana.
Las larvas de C. dimidiatus en contacto
con el producto formulado con B. bassiana, murieron hacia al
tercer día de dejarlas en la placa (LT_{50} = 2,37 \pm 0,41
días). Después de examinar los cadáveres, el 100% mostraba el hongo
en el interior (Fig. 2).
Las larvas en contacto con las semillas control,
es decir, sin B. bassiana, murieron después de
13-14 días (LT_{50} = 8,66 \pm 0,60 días).
Ninguna larva presentó el hongo una vez incubadas en cámara
húmeda.
Los controles (larvas sin alimento y en una
placa de Petri), murieron después de 11-12 días
(LT_{50} = 11,17 \pm 0 días). B. bassiana no se aisló de
ninguno de los cadáveres de estas larvas.
Estadísticamente se observaron diferencias
significativas entre los 2 tratamientos y el control (H[9,2]
= 7,20, p<0.05), por tanto, el producto formulado con B.
bassiana tiene realmente un tiempo letal medio menor que el
control, lo que supone que es efectivo frente a estas larvas que
atacan a las palmeras jóvenes.
En un primer estadio de este análisis se llevó a
cabo un estudio de la patogenicidad de un elevado número cepas de
B. bassiana como potenciales agentes patógenos de
Rhynchophorus ferrugineus, para lo que se utilizaron como
diana larvas de 30 días de este coleóptero barrenador y medio CMA
(medio de laboratorio que permite el óptimo crecimiento del
hongo).
A partir de estos experimentos, se desecharon
cepas de baja patogenicidad para el picudo rojo (ejemplo: cepa 119
o CBS 121098, depositada en Holanda, "Centraalburean voor
Schimmercultures") y se seleccionaron las cepas 193 y 203, que
habían resultado ser las más patogénicas (Fig. 3), para su
formulación en material vegetal. La elevada patogenicidad de estas
cepas formuladas se pudo comprobar (Fig. 4) mediante los resultados
de LT_{50} ofrecidos por los bioensayos de patogenicidad
realizados sobre larvas jóvenes (7-10 días) de R.
ferrugineus.
Por otro lado, los mismo ensayos de
patogenicidad con estas cepas formuladas, fueron realizados con
larvas de 30 días, donde el tiempo letal medio fue de unos 3 días
(Fig. 5) con el formulado. Mientras en los controles (larvas en
contacto con las semillas sin inocular con el hongo entomopatógeno)
las larvas permanecieron vivas durante al menos 10 días.
Seguidamente, se realizó un estudio comparativo
de la patogenicidad de las cepas 203 y 193 crecidas sobre
subproductos de palmera (Fig. 7) y un medio de cultivo de
laboratorio óptimo para B. bassiana como CMA (Fig. 6), con
el objeto de demostrar que la patogenicidad se mantenía
independientemente del sustrato empleado. Para llevar a cabo estos
ensayos se dispusieron adultos de picudo rojo en placas de Petri (de
9 cm de diámetro), que contenían el producto formulado con la cepa
ha ensayar, 203 ó 193. Se utilizaron 18 adultos (2 por placa de
Petri) repartidos en 3 réplicas, y 18 adultos para el control o
testigo. En cada placa de Petri se añadieron 2,75 g del producto
formulado con B. bassiana (los controles son los fragmentos
de semilla pero sin hongo inoculado). Los adultos se introducían en
las placas durante 30 minutos en los cuales contactaban con el
producto formulado. Pasado este tiempo se trasladaba cada individuo
por separado a una cámara húmeda (placa con papel de filtro estéril
humedecido con 700 \mul de agua destilada estéril) durante 12
horas. Después de las cuales se pasaban los individuos a placas
nuevas con papel de filtro estéril humedecido con 600 \mul de
agua destilada estéril. Como las placas no se sellaban, cada 2 días
se añadían 300 \mul de agua destilada estéril para evitar la
desecación de los insectos. Se comprobó que no había diferencias
estadísticas en las LT_{50} de los ensayos con los 2 aislados y
sus formulados (Tabla 3).
En esta tabla se presentan los valores de
LT_{50} de los ensayos en el laboratorio con adultos de R.
ferrugineus con el aislado 193, 203 y sus formulados. Para la
realización de la estadística se asumió una significación del 95%.
Se obtuvo un resultado que indicaba que no había diferencias entre
los diferentes tratamientos.
Además, aunque se comprobó que el tiempo letal
medio para los adultos (entre 8 y 10 días) fue superior que para
las larvas (menos de 3 días), éste resultó significativamente menor
que el de controles (producto formulado sin el hongo -Fcontrol-)
para insectos en dicho estadio de desarrollo.
Para el uso y aplicación del producto formulado
es conveniente realizar una modificación en su elaboración para
mejorar su aplicación en campo, que consiste en la adición del
polvo resultante de la trituración de las semillas. Esto permite que
las esporas de los hongos entomopatógenos adheridas a las
partículas de polvo puedan ser transportadas más fácilmente por el
viento a todas las partes de la palmera donde se aplique el producto
formulado. Una vez producido el producto formulado con el hongo
correspondiente, se pueden aplicar aproximadamente unos 100 g del
mismo en el cogollo de palmeras infestadas por los insectos
plaga.
Una vez aplicado el producto formulado, la
palmera puede encaperucharse para favorecer la humedad y por tanto
la acción del hongo (a la vez que esto se realiza para la obtención
de palma blanca) durante un periodo de unos 2 meses, tras el cual
se extraen los fragmentos de semilla y se estudia si el hongo ha
sobrevivido a este periodo, si ha perdido o no patogenicidad, a la
vez que se revisa si la población de insectos plaga se ha visto
mermada por la presencia del producto.
A continuación se describe cómo se obtiene el
producto formulado modificado y cómo se aplica como ejemplo en
palmeras infestadas por insectos.
Tal y como se ha comentado anteriormente, una
manera de elaborar el formulado y que mejora la dispersión de las
esporas del hongo en el campo se obtuvo empleando el polvo que
resultaba de triturar las semillas secas. Para ello se pesaron 100
g de semillas de palmera, fragmentadas en trozos de entre 1x1 mm y
10x10 mm, preferentemente de 5x5 mm en la trituradora de plásticos,
y 25 g de polvo que provenía de la fragmentación de las semillas.
Se dejaron toda la noche los 100 g de fragmentos de semillas en
agua destilada para que se saturaran. Los 25 g de polvo de semilla
se dejaron sobre papel de aluminio para esterilizarlos en el
autoclave de vapor. Se esterilizaron durante 90 min, a 121°C, tanto
los matraces con los fragmentos como los sobres con el polvo.
Se dejó enfriar todo el material esterilizado
durante 24 horas por si había quedado alguna espora no inactivada
y, pasado este tiempo, se volvió a esterilizar todo en idénticas
condiciones y a enfriarlo de nuevo. Una vez frío, se añadió el
polvo esterilizado a cada matraz con los 100 g de fragmentos y
ambos se mezclaron. Cuando ya estaba preparado el sustrato
(fragmentos de semilla+polvo de semilla), se extrajeron los
conidios de B. bassiana de colonias en CMA de 10 días. Se
inoculó cada matraz con 10^{7} conidios/5 ml para cada hongo. Se
dejó incubar durante 10 días, agitando los matraces cada 2 días
para repartir el inóculo fúngico de forma homogénea sobre todos los
fragmentos. El formulado fresco resultaba listo para ser aplicado
en las palmeras. Alternativamente se podía realizar un paso previo
a la aplicación en campo, que consistía en secar el formulado hasta
alcanzar una humedad del 39% (Humedad= 39,47 \pm 1,70%).
Para comprobar la viabilidad del producto
formulado en condiciones de almacenamiento se realizaron análisis
después de mantenerlo almacenado hasta 180 días a diferentes
temperaturas y humedades. Estos estudios demostraron que las
semillas de palmera datilera formuladas con B. bassiana eran
capaces de mantener al hongo vivo al menos durante 2 meses a -20,
4, 25 y 40°C, con una humedad inferior al 45% y sin perder ni
viabilidad ni patogenicidad respecto a los controles sin almacenar
(Figs. 8 y 9).
Los resultados de patogenicidad mostraron que a
los 20 días de almacenamiento a las temperaturas de -20, 4 y 25°C,
el producto formulado con B. bassiana presentó una
patogenicidad significativamente mayor (\chi^{2}=9.90, P<0.05)
que la correspondiente al control sin almacenar. Los mismos
resultados se obtuvieron a 60 días de almacenamiento
(\chi^{2}=9.57, P<0.05).
Para comprobar la viabilidad del producto
formulado y comprobar el efecto de los factores bióticos sobre el
formulado al ser sometido a condiciones más adversas, que aquéllas
derivadas de su almacenamiento (Ejemplo 2.1.1), éste fue enterrado
durante 3 meses en placas Petri bajo suelo artificial (Art.) o
suelo natural (Nat.), esterilizado (S) y sin esterilizar (NS),
procedente de diferentes muestras recogidas de zonas de la provincia
de Alicante.
Tras los 3 meses se incubaron los fragmentos de
semilla en medio de cultivo (CMA) para después anotar si B.
bassiana era viable y qué otros hongos podían aparecer sobre el
sustrato. Por otro lado, para determinar su patogenicidad se
pusieron en contacto larvas de G. mellonella con el producto
formulado (con o sin B. bassiana) desenterrado y se anotó el
tiempo letal medio.
Cuando se sembraron las semillas desenterradas
en CMA se observó que presentaban B. bassiana viable en
todos los casos, y además con pocos hongos contaminantes, sobre
todo cuando el formulado provenía de suelos esterilizados. La
viabilidad de B. bassiana resultó ser del 100% tras los 3
meses de enterramiento, tanto en suelos esterilizados como no
esterilizados, aunque a veces, en los no esterilizados aparecían
algunas colonias de otros hongos contaminantes como Fusarium,
Rhizopus, Alternaria...(Otros) pero que no llegaban a desplazar
nunca a B. bassiana (Fig. 10A).
La patogenicidad sobre larvas de G.
mellonella resultó ser similar a la del producto sin enterrar,
y el 100% de las larvas utilizadas ensayadas con formulados
enterrados en suelo (esterilizado o no) presentó parasitismo por el
hongo (Fig. 10B).
Claims (9)
1. Composición fitosanitaria que comprende un
hongo entomopatógeno perteneciente a la especie B. bassiana
y triturados o fragmentados de dátiles o semillas de palmera,
preferentemente de la especie Phoenix dactylifera.
2. Composición fitosanitaria según la
reivindicación anterior, donde el hongo entomopatógeno es
seleccionado de cualquiera de las cepas con número de depósito
CBS121096 (cepa 193) y CBS121097 (cepa 203).
3. Composición fitosanitaria según cualquiera de
las reivindicaciones anteriores que comprende además polvo de
semillas.
4. Método para la elaboración de la composición
según la reivindicación 1 que comprende:
- a.
- Fragmentar o triturar dátiles o semillas de palmera, preferentemente de la especie Phoenix dactylifera.
- b.
- Inocular el producto del paso a) con un hongo entomopatógeno de la especie B. bassiana.
5. Método según la reivindicación anterior
donde, previamente a la inoculación del hongo a los fragmentos de
las semillas o los dátiles de palmera, se adiciona polvo procedente
de la trituración de dichas semillas.
6. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 4 a 5 donde el hongo entomopatógeno es
seleccionado de cualquiera de las cepas con número de depósito
CBS121096 (cepa 193) y CBS121097 (cepa 203).
7. Hongo entomopatógeno seleccionado de
cualquiera de las cepas con número de depósito CBS121096 (cepa 193)
y CBS121097 (cepa 203).
8. Uso de la composición fitosanitaria según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 para el control biológico
de plagas.
9. Uso según la reivindicación 8 donde la plaga
es Rhynchophorus ferrugineus.
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ES200701550A ES2310134B1 (es) | 2007-06-05 | 2007-06-05 | Composicion fitosanitaria que comprende un hongo entomopatogeno perteneciente a la especie b. bassiana y triturados o fragmentados de datiles, metodo de elaboracion y uso de la misma. |
| ES08718458.6T ES2525230T3 (es) | 2007-06-05 | 2008-01-24 | Composición fitosanitaria que comprende un hongo entomopatógeno perteneciente a la especie b. bassiana y triturados o fragmentados de dátiles, método de elaboración y uso de la misma |
| PCT/ES2008/070010 WO2008148920A1 (es) | 2007-06-05 | 2008-01-24 | Composición fitosanitaria que comprende un hongo entomopatógeno perteneciente a la especie b. bassiana y triturados o fragmentados de dátiles, método de elaboración y uso de la misma. |
| PT87184586T PT2170084E (pt) | 2007-06-05 | 2008-01-24 | Composição fitossanitária compreendendo um fungo entomopatogénico que pertence à espécie b. bassiana e triturados ou fragmentos de sementes de tâmaras, método da sua preparação e sua utilização |
| EP08718458.6A EP2170084B1 (en) | 2007-06-05 | 2008-01-24 | Phytosanitary composition comprising an entomopathogenic fungus belonging to the species b. bassiana and triturates or fragments of date seeds, method of preparation and use of same |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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| ES200701550A ES2310134B1 (es) | 2007-06-05 | 2007-06-05 | Composicion fitosanitaria que comprende un hongo entomopatogeno perteneciente a la especie b. bassiana y triturados o fragmentados de datiles, metodo de elaboracion y uso de la misma. |
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- 2007-06-05 ES ES200701550A patent/ES2310134B1/es active Active
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2008
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| EP2170084A4 (en) | 2013-06-19 |
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