ES2316909T3 - Extracto de polvo de establo para proteccion contra alergias. - Google Patents

Extracto de polvo de establo para proteccion contra alergias. Download PDF

Info

Publication number
ES2316909T3
ES2316909T3 ES04022275T ES04022275T ES2316909T3 ES 2316909 T3 ES2316909 T3 ES 2316909T3 ES 04022275 T ES04022275 T ES 04022275T ES 04022275 T ES04022275 T ES 04022275T ES 2316909 T3 ES2316909 T3 ES 2316909T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
extract
powder
mice
aqueous
supernatant
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES04022275T
Other languages
English (en)
Inventor
Albrecht Bufe
Otto Holst
Erika Von Mutius
Charlotte Braun-Fahrlander
Dennis Nowak
Josef Riedler
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Protectimmun GmbH
Original Assignee
Protectimmun GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Protectimmun GmbH filed Critical Protectimmun GmbH
Application granted granted Critical
Publication of ES2316909T3 publication Critical patent/ES2316909T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/02Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution from inanimate materials
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/35Allergens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00Drugs for disorders of the respiratory system
    • A61P11/06Antiasthmatics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P27/00Drugs for disorders of the senses
    • A61P27/02Ophthalmic agents
    • A61P27/14Decongestants or antiallergics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/08Antiallergic agents

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Ophthalmology & Optometry (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Procedimiento para la preparación de un extracto de antialérgico a utilizar como medicamento, caracterizado porque el extracto se prepara en las etapas siguientes: a) recogida de polvo de establo seco, b) eventualmente homogeneización del polvo, c) suspensión del polvo, eventualmente homogeneizado, en agua o en una solución tampón acuosa que contenga sales mono o bivalentes, elegidas entre NaCl, Na2SO4, KCl, LiCl, MgCl2 y CaCl2, preferentemente una solución de NaCl al 0,9%, a temperatura ambiente o inferior, d) eventualmente disgregación de los componentes del polvo, e) sedimentación de los componentes sólidos de la suspensión y retirada del sobrenadante acuoso, constituyendo el sobrenadante tras la sedimentación el extracto, f) eventualmente diálisis del sobrenadante acuoso donde durante todo el proceso de preparación no se realiza ninguna aportación de calor.

Description

Extracto de polvo de establo para protección contra alergias.
La presente invención se refiere a una composición que contiene toda la potencia protectora, toda la actividad protectora y todo el efecto protector contra alergias de un polvo de establo natural, y a un procedimiento para la preparación de esta composición.
Se denominan alergias las reacciones excesivas del cuerpo, en particular del sistema inmunitario, a sustancias extrañas no perjudiciales. Estas reacciones se desarrollan igual que la respuesta inmunitaria normal contra un agente patógeno. Se distingue entre varios tipos de respuesta inmunitaria alérgica. Las reacciones alérgicas de tipo I, entre las que se incluyen el asma bronquial, la dermatitis atópica, la urticaria, la fiebre del heno y las alergias alimentarias, son las más extendidas. Aunque estas enfermedades presentan diferentes síntomas corporales, se basan en mecanismos inmunológicos similares.
Numerosos estudios prueban que las afecciones alérgicas van en aumento. Hasta la fecha, las causas del origen y el desarrollo de las alergias no están claros. Determinados factores hereditarios desconocidos hasta la fecha y determinadas condiciones ambientales, tales como la exposición a alérgenos, la vida en la ciudad, el número de hermanos y algunas infecciones, contribuyen probablemente a su origen.
Las alergias de tipo I son mediadas por anticuerpos del grupo E, cuyo origen depende de los linfocitos T cooperadores del grupo II. En las alergias, estas células Th2 se presentan con una frecuencia mayor que las células Th1. Los niños nacen en primer lugar con una respuesta inmunitaria en la que predominan las células Th2, que durante el primer año de vida se desplaza hacia una respuesta en la que predominan las células Th1 (respuesta inmunitaria no alérgica), probablemente bajo la influencia de la carga microbiana. Se supone que las infecciones frecuentes están relacionadas con una menor respuesta de las células Th2 y por lo tanto con una menor cantidad de alergias. Así pues, una carga microbiana pequeña podría llevar a una mayor frecuencia en la aparición de alergias (hipótesis de la higiene). Una serie de estudios epidemiológicos en Europa ha demostrado que los niños que se crían en granjas presentan muchas menos afecciones alérgicas que los niños que crecen en condiciones de vida no tradicionales ("efecto campesino"). En la actualidad está claro que este efecto está relacionado con el contacto frecuente de los niños con los establos de las granjas, ya que la protección alérgica más intensa se halló en niños que frecuentaban estos lugares durante el primer año de vida. Este efecto protector proviene muy probablemente del contacto con el polvo de establo (por ejemplo por inhalación). Esto se encuentra relacionado con el hecho de que el polvo de establo contiene, entre otras cosas, sustancias de efecto inmunoestimulante procedentes de bacterias, virus, hongos, plantas y animales, que presumiblemente condicionan el "efecto campesino" relacionado con la hipótesis de la higiene. Sin embargo, hasta la fecha se desconoce qué sustancias del polvo de establo provocan al fin y al cabo el efecto protector.
Las posibilidades para la prevención y la terapia de afecciones alérgicas son limitadas. Los síntomas pueden mitigarse relativamente bien mediante numerosos medicamentos, pero los tratamientos inmunoterapéuticos como la desensibilización difieren en cuanto a sus resultados. Sobre todo en el asma bronquial de frecuente aparición, esta terapia resulta más bien ineficaz. La evitación de alérgenos como medida preventiva tampoco contribuye con seguridad a reducir la frecuencia de las alergias. En suma, no existen posibilidades de reducir el riesgo de formación de alergias.
El documento WO/0149319 revela la posibilidad de recoger el polvo de establo mediante un filtro de aire directamente en una solución acuosa, por ejemplo en una solución salina fisiológica, y utilizarlo luego directamente para la profilaxis de alergias en niños.
Los microorganismos contenidos en el polvo pueden también disgregarse o depurarse. En el caso de una disgregación, el detritus celular, los trozos de membrana, las organelas y las proteínas aislados(as) = antígenos de interés. Los fragmentos de disgregación pueden depurarse aun más, es decir que es posible eliminar los ácidos nucleicos y otros componentes no deseados mediante centrifugación, métodos cromatográficos, filtración en gel y/o salificación.
En cambio, según la invención se recoge polvo de establo seco y se utiliza el sobrenadante líquido de la extracción acuosa tras una sedimentación.
El documento 96/00579 describe un procedimiento para la preparación de una suspensión y un extracto de micobacterias en solución acuosa, en el que el extracto se calienta como mínimo durante 20 minutos a 121ºC. Esta suspensión, o este extracto, puede emplearse para la inmunomodulación inespecífica.
El objetivo de la presente invención era la puesta a disposición de un procedimiento para la preparación de un medio, y la puesta a disposición de un medio, para profilaxis y tratamiento de afecciones alérgicas.
Este objetivo se logra mediante un procedimiento según la reivindicación 1.
El extracto se prepara a partir de polvo de establo, preferentemente de granjas.
El polvo puede recogerse por medio de cualquier tipo de sistema de recogida, o sea mediante barrido, aspiración, limpieza y similares, sin que la invención se vea por ello limitada.
Tras la recogida, el polvo puede homogeneizarse. Para ello puede emplearse cualquier tipo de técnica que consiga una homogeneización uniforme del polvo y especialmente que elimine las adhesiones y aglutinaciones de polvo. Con este fin resultan adecuados procedimientos tales como frotación, rotura por golpeo o machacado, agitación o introducción en una mezcladora, aunque los procedimientos no se limitan a éstos. Una disgregación del polvo también puede ser parte integrante del procedimiento según la invención. Una disgregación de los componentes presentes en el polvo, tal como por ejemplo células, microorganismos, especialmente sus esporas y similares, puede realizarse por ejemplo mediante trituración, aplastamiento y procedimientos similares.
La extracción del polvo se efectúa según la invención preferentemente mediante agua o una solución acuosa, prefiriéndose especialmente una solución salina fisiológica o un tampón acuoso. Un tampón acuoso preferido contiene sales de sodio o sales mono o bivalentes similares, como por ejemplo Na_{2}SO_{4}, KCl, LiCl, MgCl_{2} y CaCl_{2}. Se prefiere muy especialmente la extracción del polvo con una solución salina fisiológica (NaCl al 0,9%).
Un aspecto importante del procedimiento según la invención es que durante todo el proceso de tratamiento para la preparación del extracto se realiza sin aportación alguna de calor externo. Esto significa que ni los disolventes empleados se calientan (en el momento del empleo), ni se realiza ninguna aportación de calor durante el proceso de preparación. El extracto se prepara más bien a temperatura ambiente o a temperaturas inferiores. Esto significa que todos los disolventes utilizados pueden tener la temperatura ambiente (dependiendo de la época del año y del lugar de preparación entre aprox. 10ºC y 40ºC) o estar refrigerados, pero no se utilizan en caliente ni el extracto se
calienta.
Tras la absorción del polvo en la solución acuosa o el agua, esta suspensión se deja reposar o bien se agita, de modo que las sustancias solubles en agua o susceptibles de eliminarse del polvo mediante agua puedan pasar a la fase acuosa. A continuación se eliminan, mediante una etapa de sedimentación, las partes de polvo que han permanecido en la solución como componentes sólidos. La etapa de sedimentación no es restrictiva para el procedimiento según la invención, puede aplicarse cualquier tipo de sedimentación conocido por el técnico en la materia. Incluso el dejar reposar la suspensión, de modo que la sedimentación de los componentes sólidos pueda realizarse por gravedad, puede considerarse dentro del sentido de la invención. Un tipo preferido de separación de los componentes sólidos es la centrifugación, después de la cual se retira el sobrenadante del sedimento. El sobrenadante, del que se han separado mediante una sedimentación los componentes sólidos como células, microorganismos o esporas procedentes del polvo, constituye el extracto según la invención.
En una forma de realización preferida de la invención, el extracto puede someterse opcionalmente a una etapa de diálisis adicional. La diálisis puede realizarse contra el mismo tipo de disolventes que el ya empleado para la absorción del polvo. La diálisis se realiza preferentemente contra agua destilada. Un límite de exclusión preferido en la diálisis es un límite de aprox. 3.000 dalton. De este modo se eliminan del extracto moléculas más pequeñas.
Un extracto preparado según este procedimiento se distingue cualitativamente porque, empleándose la misma cantidad de polvo y la misma cantidad de disolventes, contiene una proporción de proteína ostensiblemente mayor que los extractos preparados según procedimientos de extracción usuales, y además la distribución de proteínas (el patrón de proteínas en un gel SDS) se diferencia de la de otros extractos. El extracto se distingue además porque contiene saponinas en una proporción considerable.
El extracto según la invención puede utilizarse para la profilaxis y el tratamiento de afecciones alérgicas, y en particular como medicamento o para la preparación de un medicamento para la profilaxis y el tratamiento de afecciones condicionadas por una alergia tales como asma bronquial, fiebre del heno, dermatitis atópica, alergias alimentarias, urticaria y todo tipo de alergias de contacto. La eficacia del extracto según la invención es ostensiblemente superior a la de los extractos preparados según procedimientos usuales, como se muestra en los ejemplos.
Figuras
La figura 1 muestra el perfil de la separación de la composición según la invención y de tres extractos de comparación mediante HPLC.
La figura 2 muestra la separación de la composición según la invención y de tres extractos de comparación mediante SDS-PAGE. El gel superior es Coomassie blue teñido, el inferior muestra una tinción plata de la misma separación.
La figura 3 muestra un resumen esquemático del modelo de asma y sensibilización en el ratón de laboratorio Balb/c. Con una separación de 14 días, los ratones recibieron 2 veces el alérgeno (ovalbúmina grado VII) por vía intraperitoneal y a continuación 2 veces en forma de aerosol. Paralelamente, los ratones inhalaron en una cámara cerrada la composición según la invención 20 minutos todos los días durante 14 días. El día 39 se midió la función respiratoria del pulmón con el pletismógrafo corporal para ratones, el día 41 siguen los demás análisis serológicos y citobiológicos.
La figura 4 muestra los resultados de los estudios de síntomas de asma en los ratones. AUC significa "area under the curve" y define la superficie bajo la curva Penh tras una estimulación de los ratones con 6, 12, 24 y 48 mg/ml de metacolina. Se comparan ratones que han inhalado PBS como control negativo (PBS), LPS en una dosis equivalente a la del polvo de establo como control negativo (LPS), la composición según la invención (NaCl_{\text{frío}}), un extracto de agua fría a modo de comparación (H_{2}O_{\text{fría}}), la fase de metanol del extracto Bligh&Dyer (CHCl_{3}/MeOH) y PBS sin sensibilización (non sens.).
La figura 5 muestra la modulación de las células eosinófilas en el lavado broncoalveolar (LBA). Se comparan ratones que han inhalado PBS como control negativo (PBS), LPS en una dosis equivalente a la del polvo de establo como control negativo (LPS), la composición según la invención (NaCl_{\text{frío}}), un extracto de agua fría a modo de comparación (H_{2}O_{\text{fría}}), la fase de metanol del extracto Bligh&Dyer (CHCl_{3}/MeOH) y PBS sin sensibilización (non sens.).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplos Ejemplo 1 Recogida de polvo de establos y graneros
La recogida de polvo de sedimentación se realiza preferentemente en establos para vacas y terneros y zonas de graneros de granjas en los Alpes llevadas de forma tradicional. Estas están definidas por su emplazamiento en los valles alpinos del norte de Suiza, Austria y Alemania y su particular arquitectura, es decir la proximidad en el espacio del área destinada al establo y el área destinada a la vivienda. Las muestras del polvo de sedimentación se toman de las molduras de las puertas de los graneros, de las molduras de las ventanas, de superficies elevadas para depositar objetos, de varillajes de pastores eléctricos, de entablados, de taburetes y de herramientas que haya en el lugar. La altura de las superficies de recogida debería estar entre 0,5 m y 1,5 m sobre el suelo. No debe recogerse polvo mojado, ni siquiera húmedo. Las superficies se rascan con la espátula de metal y se tamiza a través del tamiz doméstico (caperuza portafiltro ALK-Scherax [tamiz de separación previa] para aspiradores) al recipiente colector de polvo para polvo de establo.
Las muestras recogidas se guardan todas en recipientes colectores cerrados, secas, a temperatura ambiente (máximo 22ºC) y protegidas de la luz directa del sol.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 2 Extracción
El polvo de establo se homogeneiza con una espátula y a continuación en un mortero. A continuación se suspende el polvo así homogeneizado en una solución acuosa de NaCl al 0,9% (a 22ºC), se disgrega mediante perlas de vidrio a aprox. 4ºC y se agita cuidadosamente a 22ºC durante otras 6 horas. A continuación se centrifuga, se retira el sobrenadante, se dializa contra agua y se liofiliza. El rendimiento de extracto NaCl_{\text{frío}} (composición según la invención) es de un 9% en peso del polvo de establo empleado. Para la comparación se prepararon extractos de polvo de establo con H_{2}O_{\text{fría}} (16,8% en peso), H_{2}O_{caliente} (20,2% en peso) y CHCl_{3}/MeOH (9% en peso).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 3 Caracterización bioquímica
La composición según la invención se somete, en comparación con los tres extractos restantes, a un análisis de huella dactilar mediante HPLC y se caracteriza mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida (SDS-PAGE) en cuanto a la presencia de proteínas (tinción Coomassie, tinción plata) y lipoglicanos (tinción plata). Además se cuantifican el azúcar, la proteína (contenido total) y los ácidos grasos. Para ello se aplican métodos rutinarios normalizados.
Caracterización de los extractos mediante HPLC y SDS-PAGE
Los extractos se separan para la caracterización mediante HPLC por medio de una columna Zorbax Bioseries
GF-250 (tampón de Na-fosfato 0,2 M, pH 7,0, isocrático, separación de proteínas según el tamaño, detección a 280 nm). En comparación con los demás extractos de polvo, para la composición según la invención puede reconocerse a 280 nm un perfil de separación característico, que se muestra en la figura 1.
La separación de los extractos en la SDS-PAGE (figura 2) demuestra que la composición según la invención se diferencia tanto cualitativa como cuantitativamente de los demás extractos. Esto se refiere tanto a las proteínas (tinción Coomassie, imagen superior: MGW 30.000-100.000 Da) como a los lipoglicanos (tinción plata: sustancia(s)
que cubre(n) una gran superficie en el rango MGW 20.000 y por debajo). Además, la tinción plata muestra otras bandas distinguibles que no son teñidas, o son teñidas muy débilmente, por el Coomassie (MGW aprox. 26 kDa, aprox. 14 kDa, aprox. 12 kDa y 2 bandas por debajo). Podría tratarse de proteínas y/o glucoproteínas que se tiñan muy mal con Coomassie (proteínas muy ácidas) y/o sólo se presenten en cantidades pequeñas (la tinción plata es entre 10 y 40 veces más sensible que la tinción Coomassie). En particular, el extracto según la invención contiene una cantidad ostensiblemente mayor de proteínas de pesos moleculares grandes que los extractos de comparación, estando en particular presente en todos los extractos una proteína con aprox. 20 kDa.
El contenido en proteína de la composición según la invención es, con aprox. 140 \mug/mg, el doble mayor que las cantidades de proteína de los demás extractos, habiéndose partido de cantidades iniciales iguales de polvo de establo y los mismos volúmenes en el procedimiento.
El análisis de la composición de azúcares demostró que en ninguno de los extractos podían hallarse ácidos urónicos ni heptosas y que todos los extractos contenían glucosamina y galactosamina. En lo que se refiere a los azúcares neutros, en la composición según la invención se hallan 34,6 nmoles/mg de ramnosa, 20,9 nmoles/mg de ribosa, 42,0 nmoles/mg de arabinosa, 25,6 nmoles/mg de xilosa, 70,9 nmoles/mg de manosa, 129,7 nmoles/mg de glucosa y 124,4 nmoles/mg de galactosa.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 1 Determinación de azúcares de extractos de polvo (nmoles/mg de extracto de polvo)
Anal. = método de análisis; NZ = azúcar neutro; US = ácidos urónicos; AZ = aminoazúcares; Rha = ramnosa; Rib = ribosa; Ara = arabinosa; Xyl = xilosa; Man = manosa; Glc = glucosa; Gal = galactosa; Hep = heptosa; GlcA = ácido glucurónico; GalA = ácido galacturónico; GlcN = glucosamina; GalN = galactosamina
1
\vskip1.000000\baselineskip
Como puede verse en esta tabla 1, H_{2}O_{caliente} tiene cantidades ostensiblemente mayores de arabinosa, xilosa, glucosa y galactosa y el extracto CHCl_{3}/MeOH cantidades mayores de ramnosa y glucosa. H_{2}O_{\text{fría}} no se diferencia mucho de la composición según la invención en su composición de azúcares neutros. Estos resultados indican que la temperatura en la extracción es conjuntamente y en gran parte responsable de las diferencias moleculares.
El análisis de los ácidos grasos da como resultado para la composición según la invención un contenido en C12:0 de 5,9 nmoles/mg, C14:0 de 30,7 nmoles/mg, 2-OH-C14:0 de 4,3 nmoles/mg, 3-OH-C14:0 de 3,2 nmoles/mg, C16:0 de 13,9 nmoles/mg, C18:0 de 5,6 nmoles/mg y C18:1 de 4,7 nmoles/mg. En total, esto supone 68,2 nmoles/mg de ácidos grasos.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 2 Determinación de ácidos grasos totales de extractos de polvo (nmoles AG/mg de extracto de polvo)
2
Como muestra esta tabla 2, la composición según la invención presenta un contenido ostensiblemente mayor de C14:0 y C16:0 que los demás extractos acuosos. Estos resultados demuestran que, además de la temperatura, también la adición de NaCl lleva a la extracción de diferentes moléculas del polvo de establo.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 4 Eficacia in vivo
La potencia protectora total de la composición según la invención se determina in vivo mediante estudios funcionales inmunológicos y citobiológicos en el modelo animal normalizado del ratón.
A continuación se describen en primer lugar los métodos para la sensibilización y la inducción de asma alérgica en ratones con ovalbúmina, el tratamiento con extractos de polvo de establo y el análisis de las reacciones alérgicas e inflamatorias.
Sensibilización e inducción de asma alérgica en ratones con ovalbúmina (OVA) - Para la sensibilización de ratones contra el alérgeno modelo ovalbúmina se utiliza hidróxido de aluminio (Pierce) como adyuvante. De este adyuvante se sabe que provoca respuestas inmunitarias caracterizadas por la producción de citocinas como IL-4, IL-5 e IL-13 y por la producción de anticuerpos del isotipo IgE e IgG1 (el isotipo correspondiente en los humanos es IgG4).
La sensibilización de ratones de siete semanas de edad de la cepa de ratones consanguíneos Balb/c se realiza mediante inyección intraperitoneal de una mezcla de 20 \mug de ovalbúmina (grado V de la firma Sigma) y 2,2 mg de hidróxido de aluminio en un volumen total de 200 \mul de tampón (PBS). En total, la inyección se realiza dos veces: el día 0 y el día 14.
Para provocar a continuación una reacción alérgica en el pulmón de los ratones, o sea para provocar el asma alérgica aguda, los ratones se tratan el día 28 y el día 38 respectivamente durante 20 minutos con aerosol de ovalbúmina. Para ello se colocan los ratones en una cámara de plexiglás de 11 litros de capacidad. A la cámara se conecta un inhalador de la firma Pari, que se carga previamente con una solución de ovalbúmina al 1% y se acciona con un Pari-Boy-Turbo Aerosol Generator. Tras la segunda administración de aerosol de OVA pueden diagnosticarse en los ratones durante algunos días síntomas del asma alérgica aguda. Entre los síntomas se incluyen:
1)
la reacción intensificada contra metacolina, la hiperreactividad bronquial
2)
la infiltración intensificada de granulocitos eosinófilos y linfocitos en la luz de las vías respiratorias
3)
la producción de anticuerpos específicos de la ovalbúmina de los isotipos IgE e IgG1
4)
la producción de interleucina-5 tras la reestimulación in vitro de linfocitos con ovalbúmina
A continuación se explican más detalladamente los métodos para la medición de los distintos parámetros.
Medición de la hiperreactividad bronquial - Un parámetro de diagnóstico decisivo, que se mide en los humanos, para diagnosticar con seguridad una afección asmática alérgica es la hiperreactividad bronquial. Se trata de una hipersensibilidad de la musculatura lisa de los bronquios a estímulos inespecíficos. Para el diagnóstico en los humanos se administran pequeñas concentraciones de histamina y a continuación se mide la resistencia de las vías respiratorias en un pletismógrafo. Las personas asmáticas muestran una mayor broncoconstricción dependiente de la concentración de histamina y por lo tanto una mayor resistencia de las vías respiratorias que las personas sanas.
La medición en los ratones se realiza de forma muy similar. Para la medición se colocan los ratones en un pletismógrafo de la firma Buxco, en las cámaras previstas con este fin. A través de las cámaras fluye una corriente de aire continua y un comprobador de presión de alta sensibilidad registra breves variaciones de la presión en la cámara. La inspiración de los ratones produce una presión negativa y la espiración una sobrepresión en la cámara. Estas variaciones de presión se registran de forma continua en función del tiempo y el software calcula a partir de los valores medidos para cada ciclo respiratorio el, así llamado, valor Penh. La fórmula mediante la cual se calcula el valor Penh se desprende de la figura 5. Este valor adimensional presenta una correlación con la resistencia de las vías respiratorias. En los ratones hiperreactivos, la resistencia de las vías respiratorias aumenta en función de la concentración de metacolina (en los ratones se utiliza para la provocación metacolina en lugar de histamina, ya que los bronquios de los ratones no reaccionan a la histamina), lo que se expresa con el aumento del valor Penh.
La medición de la hiperreactividad bronquial se realiza 24 horas después de la última exposición a aerosol de OVA. Para medir la hiperreactividad bronquial, los ratones, tras un tiempo de habituación de 10 minutos, se ponen en el pletismógrafo durante 7 minutos en contacto con aerosol de PBS, registrándose al mismo tiempo el valor Penh. A continuación se exponen durante en cada caso 7 minutos a concentraciones crecientes de metacolina: 6, 12, 25, 50 mg/ml. Durante cada exposición se mide el valor Penh de forma continua y se saca la media en períodos de 30 segundos. A continuación se traza el período en que se alcanza el valor Penh máximo para una determinada concentración de metacolina, en función de la concentración de metacolina. De ello resulta una curva dosis-efecto cuya área bajo la curva es tanto mayor cuanto más intensamente reaccionan los ratones a la metacolina. El área bajo la curva presenta por lo tanto una correlación con la hiperreactividad de los animales y se utiliza para la evaluación estadística.
Estudio de la composición celular del lavado broncoalveolar (BAL) - En probandos sanos o ratones no tratados se observaron sólo unos pocos granulocitos eosinófilos, o incluso ninguno, en el tejido pulmonar y en la luz de las vías respiratorias. Los leucocitos hallados en vías respiratorias sanas son principalmente macrófagos. En conexión con el asma alérgica se produce, por causas que aún no están totalmente claras, una infiltración masiva de las vías respiratorias por granulocitos eosinófilos y en menor medida también linfocitos.
Para estudiar la composición del infiltrado de leucocitos en las vías respiratorias de ratones se da muerte a los mismos tres días después de la última exposición a aerosol de OVA. Se descubre la tráquea y se inserta en la misma una cánula venosa permanente 24G. A través de ésta se lava la luz de las vías respiratorias dos veces con 1 ml de tampón isotónico cada vez (lavado broncoalveolar). El número total de células extraídas del pulmón con este método se cuenta por microscopio mediante una cámara de recuento de Neubauer. Acto seguido se centrifugan los leucocitos del BAL sobre portaobjetos con una citocentrífuga de la firma Shandon. La tinción de las células se realiza a continuación con el kit de tinción rápida HAEME de la firma Labor + Technik Eberhard Lehmann como se describe en los anexos al producto. Una vez realizada la tinción se cuentan por microscopio 300 células sobre el portaobjetos, que se clasifican en las distintas subpoblaciones leucocitarias según los criterios de uso corriente. A continuación puede calcularse la composición porcentual del BAL.
Medición de anticuerpos específicos de OVA del isotipo IgE e IgG1 - La sensibilización contra un alérgeno puede medirse determinando los anticuerpos específicos del alérgeno de las clases IgG1 e IgE. La cuantificación de los anticuerpos específicos del alérgeno en el suero de ratones se realiza mediante un ELISA indirecto. Para ello se extrae sangre de la vena de la cola de los ratones dos días después de la última administración de aerosol de OVA. Tras la coagulación de la sangre se obtiene por centrifugación el suero, que se emplea en el ELISA:
Instrucciones resumidas para el ELISA ELISA IgE (espec. de OVA)
-
revestir placas con 5 \mug/ml de OVA en tampón de revestimiento, 100 \mul por pocillo (noche)
-
lavar 3 veces, con 250 \mul por pocillo cada vez
-
revestir de nuevo con BSA al 1% en tampón de lavado, 250 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar diluciones de suero en tampón de lavado 1/3 1/10 y 1/30, 100 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar anticuerpos anti-IgE biotinilados (Pharmingen, R35-72) diluidos 1/100 en tampón de lavado, 100 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar Extravidin-POD (Sigma) diluida 1/1.000 en tampón de lavado, 100 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar solución de sustrato TMB, 100 \mul por pocillo, 30 minutos
-
interrumpir la reacción con 50 \mul de ácido sulfúrico 1 M por pocillo, la placa puede medirse con una longitud de onda de 450 nm
ELISA IgG1 (espec. de OVA)
-
revestir placas con 5 \mug/ml de OVA en tampón de revestimiento, 100 \mul por pocillo (noche)
-
lavar 3 veces, con 250 \mul por pocillo cada vez
-
revestir de nuevo con MMP al 5% en tampón de lavado, 250 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar diluciones de suero en tampón de dilución 1/100 1/300 1/1.000 y 1/3.000, 100 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar anticuerpos anti-IgG1 conjugados con AKP (Pharmingen, X56) diluidos 1/1000 en tampón de dilución, 100 \mul por pocillo, 1 hora
-
lavar 3 veces
-
aplicar solución de sustrato pNPP, 100 \mul por pocillo, 30 minutos
-
interrumpir la reacción con 50 \mul de sosa cáustica 1 M por pocillo, la placa puede medirse con una longitud de onda de 405 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
En cada placa ELISA se lleva conjuntamente una serie de dilución de un suero estándar. En este suero estándar hay una concentración conocida de anticuerpos específicos de OVA del isotipo IgG1 e IgE. Comparando los valores de medición del suero de ratón que presenta una concentración desconocida de IgG1 e IgE específicos de OVA con la serie de medición del suero de ratón conocido, puede calcularse la concentración en la muestra desconocida.
Tratamiento de ratones con extractos de polvo de establo durante la sensibilización
Para el tratamiento de ratones con los distintos extractos de polvo de establo se colocan éstos en una cámara de plexiglás de 11 litros de capacidad. La cámara se conecta a un Pari-Boy Aerosol-Generator como se describió anteriormente, en el párrafo "Sensibilización e inducción de asma alérgica en ratones con ovalbúmina (OVA)", cargándose el inhalador previamente con una solución al 1% de extractos de polvo de establo. A continuación se tratan los ratones durante 20 minutos con el aerosol de extracto de polvo de establo. Los tratamientos se realizan en total 14 veces, en los momentos de las sensibilizaciones especificados en la figura 3.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 5 Resultados de los ensayos in vivo
Síntomas de asma - El ensayo más extenso para la comprobación del efecto biológico de la composición según la invención es el estudio de los síntomas de asma provocados por alergia en los ratones. La figura 4 muestra que la sensibilidad de las vías respiratorias en los ratones asmáticos puede reducirse mediante el tratamiento con el extracto según la invención al nivel de los ratones sin asma no tratados. Para excluir la posibilidad de que el efecto biológico de la composición según la invención esté condicionado por el LPS, se empleó como control LPS puro en una concentración igual a la medida en los extractos de polvo de establo. El LPS no es capaz de reducir los síntomas de asma de los ratones. Por consiguiente, es de suponer que son otras las sustancias del polvo responsables del efecto biológico observado. El CHCl_{3}/MeOH es el método de extracción clásico para, tras la separación de fases, extraer los lípidos en la fase de cloroformo y otras moléculas con propiedades lipofílicas más débiles en la fase de metanol. El extracto en metanol (denominado aquí CHCl_{3}/MeOH) no tiene ninguna influencia preventiva en los síntomas de asma de los ratones. El polvo de establo extraído en H_{2}O_{\text{fría}} produce una reducción parcial de los síntomas, que sin embargo no es tan eficaz como el efecto de la composición según la invención.
Inflamación en los bronquios - En los ratones con asma, las células eosinófilas de los bronquios reflejan el estado de una inflamación asmática. La figura 5 prueba que, mediante el tratamiento de los ratones con la composición según la invención, las células eosinófilas, que en los ratones enfermos se presentan en una cantidad muy elevada, y no encontradas en un caso normal, se reducen fuertemente en número y sólo se encuentran ya en cantidades de poca importancia. Igual que en el caso de los síntomas asmáticos, en los ratones tratados con tampón y LPS no se observa ninguna variación, el CHCl_{3}/MeOH tiene una pequeña influencia, el extracto de H_{2}O_{\text{fría}} no llega a alcanzar el efecto de la composición según la invención.
Sensibilización alérgica - Los síntomas de asma se provocan en los ratones mediante una sensibilización con un alérgeno. Por este motivo se investigó si la composición según la invención influye en los anticuerpos IgE contra el alérgeno creciente durante la sensibilización. La tabla documenta que los anticuerpos IgE dirigidos contra la ovalbúmina disminuyen estadísticamente de forma significativa en comparación con los ratones no tratados únicamente si se aplica la composición según la invención, mientras que en los demás controles no disminuyen o al menos su disminución no es significativa. El aumento de los anticuerpos IgG1 en la sensibilización con ovalbúmina no presenta ninguna correlación con los síntomas de asma, pero refleja una reacción de los linfocitos T de tipo cooperador-2 (Th2), cuyo aumento se observa en las alergias. En la tabla puede verse que tanto la composición según la invención como los otros dos extractos de polvo son capaces de reducir la respuesta Th2 del sistema inmunitario, pero no así el LPS. Por lo tanto, la respuesta Th2 del sistema inmunitario no es un marcador preciso del efecto biológico particular de la composición según la invención. Además, las sustancias activas que actúan en la composición según la invención parecen estar contenidas también parcialmente en los demás extractos, excepto en la solución de LPS.
TABLA 3 Influencia de los distintos extractos de polvo en el nivel de anticuerpos específicos contra la ovalbúmina en el suero (IgE e IgG1), medida con ELISA y representada como unidades relativas. Los ratones habían inhalado la composición según la invención durante 14 días, 20 minutos al día
3
\vskip1.000000\baselineskip
Referencias citadas en la descripción
La lista de referencias citada por el solicitante lo es solamente para utilidad del lector, no formando parte de los documentos de patente europeos. Aún cuando las referencias han sido cuidadosamente recopiladas, no pueden excluirse errores u omisiones y la OEP rechaza toda responsabilidad a este respecto.
Documentos de patente citado en la descripción
\bullet WO 0149319 A [0006]
\bullet WO 9600579 A [0009]

Claims (7)

1. Procedimiento para la preparación de un extracto de antialérgico a utilizar como medicamento, caracterizado porque el extracto se prepara en las etapas siguientes:
a)
recogida de polvo de establo seco,
b)
eventualmente homogeneización del polvo,
c)
suspensión del polvo, eventualmente homogeneizado, en agua o en una solución tampón acuosa que contenga sales mono o bivalentes, elegidas entre NaCl, Na_{2}SO_{4}, KCl, LiCl, MgCl_{2} y CaCl_{2}, preferentemente una solución de NaCl al 0,9%, a temperatura ambiente o inferior,
d)
eventualmente disgregación de los componentes del polvo,
e)
sedimentación de los componentes sólidos de la suspensión y retirada del sobrenadante acuoso, constituyendo el sobrenadante tras la sedimentación el extracto,
f)
eventualmente diálisis del sobrenadante acuoso
donde durante todo el proceso de preparación no se realiza ninguna aportación de calor.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque el extracto se prepara a partir de polvo de establo de granjas.
3. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 ó 2, caracterizado porque el extracto se prepara en las etapas siguientes:
a)
recogida de polvo de establo seco,
b)
homogeneización del polvo,
c)
suspensión del polvo homogeneizado en una solución acuosa de NaCl al 0,9%, a temperatura ambiente o inferior,
d)
eventualmente disgregación de los componentes del polvo,
e)
sedimentación de los componentes sólidos de la suspensión,
f)
retirada del sobrenadante y diálisis del sobrenadante acuoso.
4. Extracto, preparado de acuerdo con un procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 3.
5. Extracto según la reivindicación 4, caracterizado porque contiene saponina y/o lipoglicanos.
6. Medicamento en forma de extracto según la reivindicación 4 ó 5.
7. Extracto según una de las reivindicaciones 4 a 6 como medicamento para la profilaxis o el tratamiento de afecciones alérgicas, en particular de asma bronquial, fiebre del heno, dermatitis atópica, alergias alimenticias, urticaria o alergias de contacto.
ES04022275T 2004-09-18 2004-09-18 Extracto de polvo de establo para proteccion contra alergias. Expired - Lifetime ES2316909T3 (es)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP04022275A EP1637147B1 (de) 2004-09-18 2004-09-18 Stallstaub-Extrakt zum Schutz vor Allergien

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2316909T3 true ES2316909T3 (es) 2009-04-16

Family

ID=34926603

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES04022275T Expired - Lifetime ES2316909T3 (es) 2004-09-18 2004-09-18 Extracto de polvo de establo para proteccion contra alergias.

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20080112983A1 (es)
EP (1) EP1637147B1 (es)
AT (1) ATE416776T1 (es)
DE (1) DE502004008649D1 (es)
ES (1) ES2316909T3 (es)
WO (1) WO2006029685A1 (es)

Families Citing this family (47)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1964570B1 (de) 2007-03-02 2012-11-21 Protectimmun GmbH Pharmazeutische Zusammensetzung zum Schutz vor Allergien und entzündlichen Erkrankungen
DE202007003266U1 (de) 2007-03-02 2008-07-17 Bufe, Albrecht, Prof. Dr. Med. Pharmazeutische Zusammensetzung zum Schutz vor Allergien und entzündlichen Erkrankungen
US20120128597A1 (en) 2008-08-16 2012-05-24 Forschungszentrum Borstel Composition for prevention and treatment of allergic and/or inflammatory diseases
DE102009034779A1 (de) 2009-07-25 2011-02-03 Emc Microcollections Gmbh Synthetische Analoga bakterieller Lipopeptide und ihre Anwendung zur Therapie und Prophylaxe allergischer Erkrankungen
US9457077B2 (en) 2009-11-18 2016-10-04 Katherine Rose Kovarik Method and system for targeting the microbiome to promote health and treat allergic and inflammatory diseases
US9408880B2 (en) 2013-12-20 2016-08-09 Katherine Rose Kovarik Method and system for prevention and treatment of allergic and inflammatory diseases
US9585920B2 (en) 2011-02-04 2017-03-07 Katherine Rose Kovarik Method and system for treating cancer cachexia
EP2361632B1 (en) 2010-02-19 2014-03-19 Protectimmun GmbH Specific environmental bacteria for the protection from and/or the treatment of allergic, chronic inflammatory and/or autoimmune diseases
US11523934B2 (en) 2011-02-04 2022-12-13 Seed Health, Inc. Method and system to facilitate the growth of desired bacteria in a human's mouth
US10010568B2 (en) 2011-02-04 2018-07-03 Katherine Rose Kovarik Method and system for reducing the likelihood of a spirochetes infection in a human being
US10583033B2 (en) 2011-02-04 2020-03-10 Katherine Rose Kovarik Method and system for reducing the likelihood of a porphyromonas gingivalis infection in a human being
US11273187B2 (en) 2015-11-30 2022-03-15 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of developing depression in an individual
US12257272B2 (en) 2015-12-24 2025-03-25 Seed Health, Inc. Method and system for reducing the likelihood of developing depression in an individual
US11191665B2 (en) 2011-02-04 2021-12-07 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of a porphyromonas gingivalis infection in a human being
US12533312B2 (en) 2011-02-04 2026-01-27 Seed Health, Inc. Method and system for preventing sore throat in humans
US11419903B2 (en) 2015-11-30 2022-08-23 Seed Health, Inc. Method and system for reducing the likelihood of osteoporosis
US9987224B2 (en) 2011-02-04 2018-06-05 Joseph E. Kovarik Method and system for preventing migraine headaches, cluster headaches and dizziness
US11951140B2 (en) 2011-02-04 2024-04-09 Seed Health, Inc. Modulation of an individual's gut microbiome to address osteoporosis and bone disease
US11951139B2 (en) 2015-11-30 2024-04-09 Seed Health, Inc. Method and system for reducing the likelihood of osteoporosis
US10842834B2 (en) 2016-01-06 2020-11-24 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of developing liver cancer in an individual diagnosed with non-alcoholic fatty liver disease
US10085938B2 (en) 2011-02-04 2018-10-02 Joseph E. Kovarik Method and system for preventing sore throat in humans
US12279989B2 (en) 2011-02-04 2025-04-22 Seed Health, Inc. Method and system for increasing beneficial bacteria and decreasing pathogenic bacteria in the oral cavity
US10314865B2 (en) 2011-02-04 2019-06-11 Katherine Rose Kovarik Method and system for treating cancer and other age-related diseases by extending the healthspan of a human
US10835560B2 (en) 2013-12-20 2020-11-17 Joseph E. Kovarik Reducing the likelihood of skin cancer in an individual human being
US10111913B2 (en) 2011-02-04 2018-10-30 Joseph E. Kovarik Method of reducing the likelihood of skin cancer in an individual human being
US10548761B2 (en) 2011-02-04 2020-02-04 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of colorectal cancer in a human being
US9730967B2 (en) 2011-02-04 2017-08-15 Katherine Rose Kovarik Method and system for treating cancer cachexia
US11357722B2 (en) 2011-02-04 2022-06-14 Seed Health, Inc. Method and system for preventing sore throat in humans
US10512661B2 (en) 2011-02-04 2019-12-24 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of developing liver cancer in an individual diagnosed with non-alcoholic fatty liver disease
US11998479B2 (en) 2011-02-04 2024-06-04 Seed Health, Inc. Method and system for addressing adverse effects on the oral microbiome and restoring gingival health caused by sodium lauryl sulphate exposure
US10086018B2 (en) 2011-02-04 2018-10-02 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of colorectal cancer in a human being
US10245288B2 (en) 2011-02-04 2019-04-02 Joseph E. Kovarik Method and system for reducing the likelihood of developing NASH in an individual diagnosed with non-alcoholic fatty liver disease
US10687975B2 (en) 2011-02-04 2020-06-23 Joseph E. Kovarik Method and system to facilitate the growth of desired bacteria in a human's mouth
US11844720B2 (en) 2011-02-04 2023-12-19 Seed Health, Inc. Method and system to reduce the likelihood of dental caries and halitosis
US11839632B2 (en) 2013-12-20 2023-12-12 Seed Health, Inc. Topical application of CRISPR-modified bacteria to treat acne vulgaris
US12329783B2 (en) 2013-12-20 2025-06-17 Seed Health, Inc. Method and system to improve the health of a person's skin microbiome
US12246043B2 (en) 2013-12-20 2025-03-11 Seed Health, Inc. Topical application to treat acne vulgaris
US12005085B2 (en) 2013-12-20 2024-06-11 Seed Health, Inc. Probiotic method and composition for maintaining a healthy vaginal microbiome
US11998574B2 (en) 2013-12-20 2024-06-04 Seed Health, Inc. Method and system for modulating an individual's skin microbiome
US12318377B2 (en) 2013-12-20 2025-06-03 Seed Health, Inc. Method and system for reducing the likelihood of a porphyromonas gingivalis infection in a human being
US11826388B2 (en) 2013-12-20 2023-11-28 Seed Health, Inc. Topical application of Lactobacillus crispatus to ameliorate barrier damage and inflammation
US11969445B2 (en) 2013-12-20 2024-04-30 Seed Health, Inc. Probiotic composition and method for controlling excess weight, obesity, NAFLD and NASH
US11980643B2 (en) 2013-12-20 2024-05-14 Seed Health, Inc. Method and system to modify an individual's gut-brain axis to provide neurocognitive protection
US11833177B2 (en) 2013-12-20 2023-12-05 Seed Health, Inc. Probiotic to enhance an individual's skin microbiome
WO2021158990A1 (en) * 2020-02-07 2021-08-12 Arizona Board Of Regents On Behalf Of The University Of Arizona Therapeutic fractions and proteins from asthma-protective farm dust
US20220047630A1 (en) * 2018-12-14 2022-02-17 Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) Barn dust extract for the prevention and treatment of diseases
EP4162970A1 (de) * 2021-10-06 2023-04-12 Hipp & Co Staub-applikatorvorrichtung

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4234569A (en) * 1978-10-04 1980-11-18 The Johns Hopkins University Production of aldehyde-treated allergen-containing substances
WO1994006821A1 (en) * 1992-09-21 1994-03-31 Laboratorios Leti S.A. A process for the purification of aqueous extracts containing allergenically active proteins, extracts obtainable according to this process as well as their use
DE4422859C2 (de) * 1994-06-30 2000-10-05 Laves Arzneimittel Gmbh Wäßrige Zellextrakte aus Mykobacterien
DE19963840A1 (de) * 1999-12-30 2001-09-13 Erika Von Mutius Zusammensetzung zum Vorbeugen und Behandeln von allergischen Erkrankungen

Also Published As

Publication number Publication date
EP1637147A1 (de) 2006-03-22
US20080112983A1 (en) 2008-05-15
EP1637147B1 (de) 2008-12-10
DE502004008649D1 (de) 2009-01-22
WO2006029685A1 (de) 2006-03-23
ATE416776T1 (de) 2008-12-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2316909T3 (es) Extracto de polvo de establo para proteccion contra alergias.
KR101862507B1 (ko) 유산균 유래 세포밖 소포체를 유효성분으로 포함하는 염증질환의 예방 또는 치료용 조성물
Zhang et al. Mammalian toll-like receptors: from endogenous ligands to tissue regeneration
Aher et al. Pharmacological study of Tinospora cordifolia as an immunomodulator
Bai et al. Lonicera japonica polysaccharides attenuate ovalbumin-induced allergic rhinitis by regulation of Th17 cells in BALB/c mice
El-Aidy et al. Evaluation of propolis, honey, and royal jelly in amelioration of peripheral blood leukocytes and lung inflammation in mouse conalbumin-induced asthma model
Santana et al. Is the inflammasome relevant for epithelial cell function?
Šutovská et al. Echinacea complex–chemical view and anti-asthmatic profile
Yan et al. Anti-inflammatory effect of a novel food Cordyceps guangdongensis on experimental rats with chronic bronchitis induced by tobacco smoking
Li et al. The selenylation modification of Epimedium polysaccharide and Isatis root polysaccharide and the immune-enhancing activity comparison of their modifiers
CN109328066A (zh) 包含六角英提取物的用于预防或治疗呼吸道疾病的药物组合物
US20090162403A1 (en) Process for producing an allergen extract
Clausen et al. Development of sensitisation or tolerance following repeated OVA inhalation in BALB/cJ mice. Dose-dependency and modulation by the Al (OH) 3 adjuvant
CN114796398B (zh) 一种铁皮石斛花提取物在制备改善溃疡性结肠炎药物中的应用
Zhao et al. Anti-allergic potential of fisetin in a murine model of OVA-induced allergic rhinitis via inhibition of GATA-3 and Th2 cytokines
TWI619507B (zh) 治療或預防過敏性疾病的有效成分
CN101670032B (zh) 一种从甘薯中获得的物质及其用途
Hussain et al. Preparation and diagnosis of Xerogel nanocomposites And Studying Their Effect on TNF-α Level before and after Loading Dexamethason in Male White Rats Induced Rheumatoid Arthritis.
Buday et al. House dust mite allergy models—reliability for research of airway defensive mechanisms
EP1834648B1 (en) Process for producing an allergen extract
Patil et al. Effect of Enhydra fluctuans Lour. Leaf extract on phagocytosis by human neutrophils
JP4604240B2 (ja) 光阻害免疫能力回復剤及びその製造方法
CN113679833A (zh) 一种大籽蒿花粉致敏的动物模型的构建方法
Nanumala et al. Evaluations of diuretic activity of methanolic extract of Physalis angulata L. leaves
EP2010197A2 (en) A pharmaceutical composition useful as an immunomodulating agent and a process for the preparation thereof