ES2316932T3 - Pronostico de cancer colorectal. - Google Patents

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ES2316932T3 ES04251933T ES04251933T ES2316932T3 ES 2316932 T3 ES2316932 T3 ES 2316932T3 ES 04251933 T ES04251933 T ES 04251933T ES 04251933 T ES04251933 T ES 04251933T ES 2316932 T3 ES2316932 T3 ES 2316932T3
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Abstract

Un procedimiento de evaluación del estado de cáncer colorectal, que comprende la identificación de la modulación diferencial de cada gen (con relación a la expresión de los mismos genes en una población normal) en una combinación de genes constituidos por la Sec. ID. No. 2, Sec. ID. No. 3 y Sec. ID. No. 4.

Description

Pronóstico de cáncer colorectal.
Antecedentes
Esta invención se refiere a pronósticos para cáncer colorectal basados en los perfiles de expresión de genes de muestras biológicas.
El cáncer colorectal es una enfermedad heterogénea con orígenes complejos. Una vez que un paciente es tratado de cáncer colorectal, la probabilidad de una recurrencia está relacionada con el grado de penetración del tumor a través de la pared intestinal y la presencia o ausencia de implicación nodal. Estas características son la base del sistema de evaluación de fases actual definido por la clasificación de Duke. La enfermedad A de Duke está confinada a las capas de submucosa del colon o del recto. El tumor B de Duke invade a través de la musculares propia y podría penetrar la pared del colon o del recto. La enfermedad C de Duke incluye cualquier grado de invasión de la pared intestinal con metástasis del nódulo linfático regional.
La resección quirúrgica es altamente eficaz para cánceres colorectales en fase precoz, que da lugar a proporciones de cura del 95% en pacientes A de Duke y del 75% en pacientes B de Duke. La presencia de de nódulos linfáticos positivos en la enfermedad C de Duke predice un 60% de probabilidad de recurrencia dentro de los cinco años. El tratamiento de los pacientes C de Duke con un curso postquirúrgico de quimioterapia reduce la proporción de recurrencia al 40%-50%, y es actualmente el patrón de curación para pacientes C de Duke. Debida a la relativamente baja proporción de reincidencia, el beneficio de la quimioterapia postquirúrgica en B de Duke ha sido más difícil de detectar y continúa siendo controvertida. Sin embargo, la clasificación B de Duke es imperfecta ya que aproximadamente el 20-30% de estos pacientes se comportan de manera más parecida a Duke y recaen dentro de un intervalo de tiempo de los 5 años. Existe claramente una necesidad de identificar factores de pronóstico mejores que la implicación del nódulo para guiar la selección de B de Duke entre aquellos que probablemente recaen y aquellos que sobrevivirán.
El Documento WO 00/19206 describe un procedimiento para predecir alto riesgo de recurrencia de pacientes de cáncer colorectal de fase B de Duke usando niveles YKL-40 como un marcador para la recurrencia.
El Documento WO 01/94629 describe la combinación de secuencias 1 y 3 y su uso en la evaluación del estado del cáncer colorectal.
Sumario de la invención
La invención es un procedimiento de evaluación de la probabilidad de una recurrencia de cáncer colorectal en un paciente diagnosticado con o tratado para cáncer colorectal. El procedimiento implica el análisis de un perfil de expresión de gen.
En un aspecto de la invención, el perfil de expresión de gen incluye al menos tres genes.
En otro aspecto de la invención, el perfil de expresión de gen incluye al menos cuatro genes.
En otro aspecto aún de la invención, los kits incluyen reactivos para la realización del pronóstico de análisis de expresión del gen de recurrencia de cáncer colorectal.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 es una gráfica de la intensidad (eje y) de la medición del gen 1 de la proteína de unión de ácido graso del Homo sapiens en muestras de pacientes (eje x). Una mayor intensidad indica una mayor expresión del gen lo que muestra que estos genes están sub-regulados en pacientes en fase de recaída.
La Figura 2 es una gráfica de la intensidad (eje y) de la medición del gen transportador asociado del péptido intestinal humano en muestras de pacientes (eje x). Una mayor intensidad indica una mayor expresión del gen lo que muestra que estos genes están sub-regulados en pacientes en fase de recaída.
La Figura 3a es una gráfica de la intensidad (eje y) de la medición del gen antígeno de MHC clase II (HLA-DRB1) en muestras de pacientes (eje x). Una mayor intensidad indica una mayor expresión del gen lo que muestra que estos genes están sub-regulados en pacientes en fase de recaída.
La Figura 3b es una gráfica de la intensidad (eje y) de la medición del gen de proteína 5 del transcripto tipo inmunoglobulina en muestras de pacientes (eje x). Una mayor intensidad indica una mayor expresión del gen lo que muestra que estos genes están sub-regulados en pacientes en fase de recaída.
La Figura 4 es una gráfica de Kaplan-Meier patrón construida a partir de los datos de pacientes como un grupo de entrenamiento tal como se describe en los Ejemplos.
La Figura 5 es una gráfica de Kaplan-Meier patrón construida a partir de los datos de pacientes como un grupo de ensayo tal como se describe en los Ejemplos.
La Figura 6 es una gráfica de Kaplan-Meier patrón construida a partir de todos los datos de pacientes tal como se describe en los Ejemplos.
La Figura 7 es una curva ROC patrón.
Descripción detallada
La mera presencia o ausencia de secuencias de ácido nucleico particular en una muestra de tejido únicamente raramente se ha encontrado que tiene valor de diagnóstico o pronóstico. Por otra parte, la información sobre la expresión de diversas proteínas, péptidos o ARNm, está siendo considerada cada vez más como importante. La mera presencia de secuencias de ácido nucleico que tienen el potencial para expresar proteínas, péptidos o ARNm (denominadas dichas secuencias como "genes") dentro del genoma no es determinante por sí misma de si una proteína, péptido o ARNm está expresado en una célula dada. El que un gen dado sea capaz o no de expresar proteínas, péptidos o ARNm y en qué extensión se produzca esto, si es que lo hace, está determinada por una diversidad de factores complejos. Independientemente de las dificultades en conocer y evaluar estos factores, el ensayo de la expresión de genes puede proporcionar información útil sobre la incidencia de episodios importantes tales como tumorogénesis, metástasis, apoptosis, y otros fenómenos clínicamente relevantes. Las indicaciones relativas del grado al cual los genes son activos o inactivos pueden encontrarse en los perfiles de expresión de genes. Los perfiles de expresión de genes de esta invención se usan para proporcionar una prognosis y para tratar pacientes de cáncer colorectal.
La preparación de la muestra requiere la recogida de muestras de pacientes. Las muestras de pacientes usadas en el procedimiento de la invención son aquellas que son sospechosas de contener células enfermas, tales como células epiteliales extraídas de una muestra de colon o procedentes de bordes quirúrgicos. Una técnica útil para la obtención de muestras sospechosas es la Microsección mediante Captura por Laser (LCM). La tecnología LCM proporciona una vía para seleccionar las células a estudiar, minimizando la variabilidad causada por la heterogeneidad del tipo de célula. En consecuencia, pueden detectarse fácilmente cambios moderados o pequeños en la expresión del gen entre células normales y cancerosas. En un procedimiento preferido, las muestras comprenden células epiteliales circulantes extraídas a partir de sangre periférica. Estas pueden obtenerse de acuerdo con un cierto número de procedimientos, pero el procedimiento el más preferido es la técnica de separación magnética descrita en la Patente de EE.UU. 6.136.182 cedida a Immunivest Corp. Una vez que se ha obtenido la muestra conteniendo las células de interés, el ARN se extrae y amplifica y se obtiene un perfil de expresión del gen, preferiblemente mediante micro-disposición, para genes en las carpetas adecuadas.
Los procedimientos preferidos para el establecimiento de los perfiles de expresión de genes incluyen la determinación de la cantidad de ARN que se produce por un gen que puede codificar una proteína o péptido. Esto se lleva a cabo mediante PCR de transcriptasa inversa (RT-PCR), RT-PCR competitiva, RT-PCR en tiempo real, RT-PCR de visualización diferencial, análisis de transferencia de Northern y otros ensayos relacionados. Aunque es posible realizar estas técnicas usando reacciones de PCR individuales, es mejor amplificar ADN complementario (ADNc) o ARN complementario (ARNc) producido a partir de ARNm y analizarlo mediante microdisposición. Existen un cierto número de configuraciones y procedimientos de disposición diferentes para su producción conocidos por los expertos en la técnica y descritos en Patentes de EE.UU. tales como: 5.445.934; 5.532.128; 5.556.752; 5.242.974; 5.384.261; 5.405.783; 5.412.087; 5.424.186; 5.429.807; 5.436.327; 5.472.672; 5.527.681; 5.529.756; 5.545.531; 5.554.501; 5.561.071;
5.571.639; 5.593.839; 5.599.695; 5.624.711; 5.658.734; y 5.700.637.
La tecnología de microdisposición permite la medición del nivel de ARN en régimen uniforme de miles de genes simultáneamente, presentando, de esta forma, una herramienta poderosa para la identificación de efectos tales como la aparición, paro, o modulación de la proliferación incontrolada de células. Dos tecnologías de microdisposición son actualmente de amplio uso. La primera de ellas son disposiciones de ADNc y la segunda disposiciones de oligonucleótidos. Aunque existen diferencias en la construcción de estos chips, esencialmente todos los análisis de datos posteriores y rendimientos son los mismos. El producto de estos análisis son, típicamente, mediciones de la intensidad de la señal recibida a partir de una sonda marcada usada para detectar una secuencia de ADNc a partir de la muestra que se hibrida a una secuencia de ácido nucleico en un lugar conocido sobre la microdisposición. Típicamente, la intensidad de la señal es proporcional a la cantidad de ADNc y, de acuerdo con ello, al ARNm, expresado en las células de la muestra. Un gran número de dichas técnicas se encuentran disponibles y son útiles. Los procedimientos preferidos para la determinación de la expresión del gen pueden encontrarse en las Patentes de EE.UU. 6.271.002 de Linsley, y otros, 6.218.122 de Friend, y otros; 6.218.114 de Peck, y otros; y 6.004.755 de Wang, y otros.
El análisis de los niveles de expresión se lleva a cabo comparando dichas intensidades. La mejor forma de realizarlo es mediante la generación de una matriz de la relación de las intensidades de expresión de genes en una muestra de ensayo frente a las de una muestra de control. Por ejemplo, las intensidades de expresión de genes a partir de tejido enfermo pueden compararse con las intensidades de expresión generadas a partir de tejido normal del mismo tipo (por ejemplo, muestra de tejido de colon enfermo frente a muestra de tejido de colon normal). Una relación de estas intensidades de expresión indica el número de veces de cambios en la expresión del gen entre las muestras de ensayo y de control.
Los perfiles de expresión de genes pueden igualmente visualizarse por un cierto número de vías. El procedimiento el más común es disponer unas intensidades de fluorescencia brutas o matriz de relación dentro de un dendograma gráfico en el que las columnas indican las muestras de ensayo y las filas indican los genes. Los datos se disponen de manera que los genes que tienen perfiles de expresión similares estén próximos unos con otros. La relación de expresión para cada gen se visualiza como un color. Por ejemplo, una relación menor de uno (que indica una sub-regulación) puede aparecer en la porción azul del espectro, en tanto que una relación mayor de uno (que indica una sobre-regulación) puede aparecer como un color en la porción roja del espectro. Se encuentran disponibles programas de software para ordenador comercialmente disponibles para visualizar dichos datos incluyendo el "GENESPRINT" de Silicon Genetics, Inc. y el software "DISCOVERY" e "INFER" de Partek, Inc.
Los genes modulados usados en los procedimientos de la invención se encuentran descritos en los Ejemplos. Los genes que están expresados de manera diferencial están o bien sobre-regulados o bien sub-regulados en pacientes con una recaída de cáncer de colon con respecto a los con una recaída. La sobre-regulación y sub-regulación son términos relativos que significan que se encuentra una diferencia detectable (más allá de la contribución del ruido en el sistema usado para medirlo) en la cantidad de expresión de los genes con relación a una línea basal. En este caso, la línea basal es la expresión de gen medida de un paciente sin recaída. Los genes de interés en las células enfermas (procedentes de los pacientes que han recaído) están, de acuerdo con ello, o bien sobre-regulados o bien sub-regulados con relación el nivel de la línea basal usando el mismo procedimiento de medición. En este contexto, por enfermo se refiere a una alteración del estado de un cuerpo que interrumpe o altera, o tiene el potencial para alterar, el rendimiento propio de las funciones corporales tal como ocurre con la proliferación incontrolada de células. A alguien se le diagnostica con una enfermedad cuando algún aspecto del genotipo o fenotipo de dicha persona está de acuerdo con la presencia de la enfermedad. Sin embargo, el acto de llevar a cabo una diagnosis o prognosis incluye la determinación de resultados de enfermedad/estados tales como la determinación de la probabilidad de recaída y control de terapia. En el control de terapia, los juicios clínicos se hacen considerando el efecto de un curso dado de la terapia comparando la expresión de genes a lo largo del tiempo con el fin de determinar si los perfiles de expresión de los genes han cambiado o están cambiando a patrones más de acuerdo con el tejido normal.
Preferiblemente, los niveles de sobre- y sub-regulación se distinguen en base a los cambios de número de veces de las mediciones de intensidad de sondas de microdisposición hibridadas. Una diferencia de 2,0 veces es la preferida para la obtención de dichas distinciones o un valor de p menor de 0,05. Por tanto, antes de decir que un gen está expresado diferencialmente en células enfermas/en fase de recaída frente a células normales/en fase de no recaída, se ha encontrado que la célula enferma proporciona al menos 2 veces más, o 2 veces menos de intensidad que las células normales. Cuanto mayor sea la diferencia en número de veces, más preferido es el uso del gen como una herramienta de diagnóstico o de prognosis. Los genes seleccionados para los perfiles de expresión de genes de la presente invención tienen niveles de expresión que dan como resultado la generación de una señal que es distinguible de la de los genes normales o no modulados por una cantidad que excede el valor de fondo usando la instrumentación del laboratorio clínico.
Los valores estadísticos pueden usarse para distinguir con confianza los genes modulados de los no modulados y del ruido. Los ensayos estadísticos encuentran los genes los más significativamente diferentes entre diversos grupos de muestras. El ensayo t de Student es un ejemplo de un ensayo estadístico fuerte que puede usarse para encontrar diferencias significativas entre dos grupos. Cuanto menor sea el valor de p, más precisa es la evidencia de que el gen está mostrando una diferencia entre los diferentes grupos. No obstante, puesto que las microdisposiciones miden más de un gen al mismo tiempo, pueden preguntarse al mismo tiempo decenas de miles de ensayos estadísticos. Por ello, es improbable ver valores de p pequeños solo por casualidad y pueden hacerse ajustes por esto usando una corrección de Sidak así como un experimento de aleatoriedad/permutación. Un valor de p menor de 0,05 mediante el ensayo t es la evidencia de que el gen es significativamente diferente. La evidencia más precisa de un valor de p menor de 0,05 después de la corrección de Sidak es la multiplicación por un factor. Para un gran número de muestras en cada grupo, un valor de p menor de 0,05 después del ensayo de aleatoriedad/permutación es la evidencia la más precisa de una diferencia significativa.
Otro parámetro que puede usarse para seleccionar genes que genera una señal que es mayor que la del gen no modulado o el ruido, es el uso de una medición de la diferencia de señal absoluta. Preferiblemente, la señal generada por la expresión del gen modulado es al menos un 20% diferente de la del gen normal o no modulado (sobre una base absoluta). Incluso es más preferido que dichos genes produzcan patrones de expresión que sean al menos un 30% diferente de la de los genes normales o no modulados.
Los genes pueden agruparse de manera tal que la información obtenida sobre el conjunto de genes en el grupo proporcione una base de sonido para la obtención de un juicio relevante clínicamente tal como una diagnosis, prognosis, o elección de tratamiento. Estos conjuntos de genes constituyen las carpetas de la invención. En este caso, los dictámenes basados en las carpetas implican cáncer colorectal. Al igual que con la mayoría de los marcadores de diagnóstico, es frecuentemente deseable usar el número más pequeño de marcadores suficientes para obtener un dictamen médico correcto. Esto evita un retraso en el tratamiento pendiente de análisis posterior, así como un uso inapropiado de tiempo y de recursos.
Preferiblemente, las carpetas se establecen de manera tal que la combinación de genes en la carpeta muestre sensibilidad y especificidad mejorada con relación a genes individuales o combinaciones seleccionadas aleatoriamente de genes. En el contexto de la presente invención, la sensibilidad de la carpeta puede reflejarse en el número de veces de diferencias mostradas por una expresión del gen en el estado enfermo con relación al estado normal. La especificidad puede reflejarse en las mediciones estadísticas de la correlación del señalamiento de la expresión del gen con la afección de interés. Por ejemplo, puede usarse una desviación típica como una medición. Al considerar un grupo de genes para inclusión en una carpeta, una desviación típica pequeña en las mediciones de expresión se corresponde con una mayor especificidad. Igualmente, para este destino pueden usarse otras mediciones de variación tales como coeficientes de correlación.
Un procedimiento preferido para el establecimiento de carpetas de expresión de genes a mediante el uso de algoritmos de optimización tal como el algoritmo de varianza media usado en el establecer carpetas de stock. Este procedimiento está descrito en detalle en la solicitud de patente titulada "Selección de carpetas" por Tim Jatkoe, y otros, presentada el 21 de Marzo de 2003. Esencialmente, el procedimiento requiere el establecimiento de un conjunto de datos (stocks en la expresión de aplicaciones financieras como medida de intensidad en este caso) que optimicen el retorno (por ejemplo, de la señal que se ha generado) que uno recibe para su uso, al tiempo que se minimiza la variabilidad del retorno. Para llevar a cabo dichas operaciones se encuentran disponibles muchos programas de software comerciales. En esta memoria descriptiva, se prefiere la "Wagner Associates Mean-Variance Optimization Application", referida como "Wagner Software". Este software usa funciones procedentes de la "Wagner Associates Mean-Variance Optimization Library" para determinar una frontera eficaz y se prefiere las carpetas óptimas en el sentido de Markowitz.
El uso de este tipo de software requiere que los datos de las microdisposiciones sean transformados de manera tal que puedan tratarse como un dato en el modo de retorno de stock y que las mediciones de riesgo se usen cuando el software se use para sus fines de análisis financiero al que está destinado. Por ejemplo, cuando el Software Wagner se usa conjuntamente con las mediciones de intensidad de microdisposiciones, se usa el procedimiento de transformación de datos siguiente.
En primer lugar, los genes son pre-seleccionados mediante la identificación de aquellos genes cuya expresión muestra al menos algún nivel mínimo de diferenciación. El procedimiento de pre-selección preferido se lleva a cabo como sigue. Se selecciona una clase de línea basal. Típicamente, esta comprenderá genes procedentes de una población que no tenga la afección de interés. Por ejemplo, si uno estuviera interesado en la selección de una carpeta de genes que sean diagnóstico para la fase de recaída de cáncer de colon, pueden usarse muestras procedentes de pacientes sin recaídas para obtener la clase de línea basal. Una vez seleccionada la clase de línea basal, se calcula la media aritmética y la desviación típica para el indicador de la expresión de gen de cada gen para las muestras de clase de línea basal. Este indicador es, típicamente, la intensidad fluorescente de una lectura de microdisposición. Los datos estadísticos computados se usan, a continuación, para calcular un valor de línea basal de (Desviación típica + Media de X*) para cada gen. Esta es la lectura de la línea basal para el gen a partir del cual todas las otras muestras se compararán. X es una variable de restricción seleccionada por la persona que formula la carpeta. Los valores más altos de X son más restrictivos que los más bajos. Preferiblemente, X está dentro del intervalo de 0,5 hasta 3 siendo más preferido de 2 hasta 3 y siendo el más preferido de 3.
A continuación, se calculan las relaciones entre cada muestra experimental (aquellas que muestran la afección de interés) frente a las lecturas de línea basal. A continuación, las relaciones se transforman en valores logarítmicos de base 10 para facilidad de manipulación de los datos por el software. Esto permite a los genes sub-regulados mostrar los valores negativos necesarios para su optimización de acuerdo con el algoritmo de varianza media de Markman usando el Wagner Software.
Los datos pre-procesados que comprenden estas relaciones transformadas se usan como datos en lugar de los valores de retorno del activo que normalmente se usan en el Wagner Software cuando este se usa para fines de análisis financiero.
Una vez formulada una frontera eficaz, se selecciona una carpeta optimizada para un nivel de dato dado (retorno) o varianza que corresponde a un punto sobre la frontera. Estos datos o varianzas son los valores típicos predeterminados establecidos por la persona que formula la carpeta. Dicho de otra forma, la búsqueda de la carpeta óptima determina un nivel de datos aceptable (indicativo de sensibilidad) o un nivel dado de varianza (indicativo de especificidad) y selecciona los genes que están situados a lo largo de la frontera eficaz que corresponde a dicho nivel de datos o varianza. El Wagner Software puede seleccionar dichos genes cuando se selecciona un nivel de datos o varianza. Igualmente, puede asignar un peso a cada gen en la carpeta como lo haría para un stock en una carpeta de stock.
La determinación de en qué momento una muestra tiene la afección para la cual la carpeta es un diagnóstico, puede realizarse comparando la expresión de los genes de la carpeta para la muestra del paciente con valores calculados de genes expresados de manera diferencial usados para establecer la carpeta. Preferiblemente, en primer lugar se genera un valor de carpeta sumando los múltiples valores de intensidad de cada gen en la carpeta por el peso asignado a dicho gen en el procedimiento de selección de la carpeta. A continuación, se calcula un valor límite mediante (Desviación típica + media de Y* del valor de carpeta para los grupos de línea basal), en donde Y es un valor restrictivo que tiene el mismo significado que para X anteriormente descrito. Una muestra que tiene un valor de carpeta mayor que el valor de carpeta de la clase de línea basal se clasifica, en ese caso, como que posee la afección. Si se desea, este procedimiento puede llevarse a cabo de manera iterativa de acuerdo con procedimientos estadísticos bien conocidos para mejorar los niveles de confidencia.
Opcionalmente, se puede reiterar este procedimiento hasta que se obtenga la mejor exactitud de predicción.
El procedimiento de selección de carpeta y caracterización de un desconocido se resume de la forma siguiente:
1. Elección de la clase de línea basal.
2. Cálculo de la desviación típica y media de cada gen para muestras de la clase de línea basal.
3. Cálculo de (Desviación típica + Media de X*) para cada gen. Esta es la lectura de la línea basal a partir de la cual se compararán todas las otras muestras. X es una variable de restricción siendo los valores de X más altos más restrictivos que los menores.
4. Cálculo de la relación entre cada muestra Experimental frente a la lectura de la línea basal calculada en la etapa 3.
5. Transformación de las relaciones de manera tal que las relaciones menores de 1 son negativas (por ejemplo, usando log de base 10). (Los genes sub-regulados tienen ahora correctamente valores negativos necesarios para optimización de MV).
6. Estas relaciones transformadas se usan como datos en lugar de los retornos de activos que normalmente se usan en la aplicación del software.
7. El software representará gráficamente la frontera eficaz y el retorno de una carpeta optimizada en cualquier punto a lo largo de la frontera eficaz.
8. Elección de un retorno o varianza deseado sobre la frontera eficaz.
9. Cálculo del valor de carpeta para cada muestra sumando los múltiplos de cada valor de intensidad del gen por el peso generado por el altgoritmo de selección de la carpeta.
10. Cálculo de un valor límite mediante la adición del valor de carpeta medio para grupos al múltiplo de Y y la desviación típica de los valores de carpeta de la línea basal. Los valores mayores de este valor límite deben clasificarse como la Clase Experimental.
11. Opcionalmente, se puede reiterar este procedimiento hasta obtener la mejor exactitud de predicción.
Como alternativa, pueden primeramente preseleccionarse los genes mediante la identificación de aquellos genes cuya expresión muestre algún nivel mínimo de diferenciación. La pre-selección en este procedimiento alternativo está basado, preferiblemente, en un umbral dado por
1
en donde \mu_{t} es la media del subconjunto conocido por poseer la enfermedad o afección, \mu_{n} es la media del subconjunto de muestras normales, y \sigma_{t} + \sigma_{n} representan las desviaciones típicas combinadas. Puede usarse igualmente una señal de corte de ruido mediante la pre-selección de los datos de acuerdo con una relación tal como
2
Esto asegura que los genes que están pre-seleccionados en base a su modulación diferencial están diferenciados en una vía significativa clínicamente. Es decir, por encima del nivel de ruido de la instrumentación apropiada para la tarea de medición de los parámetros de diagnóstico. Para cada marcador pre-seleccionado de acuerdo con estos criterios, se establece una matriz en la cual las columnas representan muestras, las filas representan marcadores y cada elemento es una medición de intensidad normalizada para la expresión de dicho marcador de acuerdo con la
relación:
3
en donde I es la medición de intensidad.
Igualmente, es posible establecer condiciones límites adicionales para definir las carpetas óptimas. Por ejemplo, el tamaño de la carpeta puede limitarse a un intervalo o número de marcadores fijado. Esto puede realizarse o bien mediante la obtención de criterios de pre-selección más estrictos (por ejemplo,
4
en lugar de
5
o bien mediante el uso de características de programación tales como el tamaño de la carpeta de restricción. Se podría, por ejemplo, establecer la condición límite de que la frontera eficaz esté seleccionada entre únicamente los 10 genes más óptimos. Igualmente, se podría usar todos los genes pre-seleccionados para la determinación de la frontera eficaz y, a continuación, limitar el número de genes seleccionados (por ejemplo, no más de 10).
El procedimiento de selección de una carpeta puede incluir igualmente la aplicación de reglas heurísticas. Preferiblemente, dichas reglas se formulan en base a la biología y a un conocimiento de la tecnología usada para producir resultados clínicos. Más preferiblemente, se aplican al rendimiento del procedimiento de optimización. Por ejemplo, el procedimiento de varianza media de selección de la carpeta puede aplicarse a los datos de microdisposiciones para un cierto número de genes expresados diferencialmente en sujetos con cáncer colorectal. El rendimiento del procedimiento sería un conjunto optimizado de genes que podrían incluir algunos genes que están expresados en la sangre periférica así como en tejido enfermo. Si las muestras usadas en el procedimiento de ensayo se han obtenido de sangre periférica y ciertos genes expresados diferencialmente en casos de cáncer de mama pudieran igualmente expresarse diferencialmente en sangre periférica, en ese caso, podría aplicarse una regla heurística en la cual una carpeta se seleccione a partir de la frontera eficaz excluyendo las que están expresadas diferencialmente en la sangre periférica. Por supuesto, la regla puede aplicarse antes de la formación de la frontera eficaz, por ejemplo, aplicando la regla durante la pre-selección de datos.
Pueden aplicarse otras reglas heurísticas que no están necesariamente relacionadas con la biología en cuestión. Por ejemplo, se puede aplicar la regla de que únicamente un porcentaje dado de la carpeta pueda estar representado por un gen o genes particulares. El software comercialmente disponible como el Wagner Software se adapta fácilmente a estos tipos de heurísticas. Esto puede ser útil, por ejemplo, cuando factores distintos de la exactitud y precisión (por ejemplo, cuotas de concesión previstas) tienen impacto sobre la apetencia de incluir uno o más genes.
Un procedimiento de la invención implica la comparación de perfiles de expresión de genes para diversos genes (o carpetas) para atribuir prognosis. Los perfiles de expresión de genes de cada uno de los genes que comprenden la carpeta se fijan en un medio tal como un medio de lectura por ordenador. Este puede adoptar un cierto número de formas. Por ejemplo, puede establecerse una tabla dentro de la cual se introduce el intervalo de señales (por ejemplo, mediciones de intensidad) indicativas de la enfermedad como dato. A continuación, pueden compararse los datos del paciente real con los valores en la tabla con el fin de determinar si las muestras del paciente son normales o enfermas. En una realización más sofisticada, se registran digitalmente o gráficamente los patrones de las señales de expresión (por ejemplo, intensidad fluorescente). Los patrones de expresión de genes procedentes de las carpetas de genes usados conjuntamente con las muestras del paciente se comparan, a continuación, con los patrones de expresión de genes. El software de comparación de patrones puede usarse, a continuación, para determinar si las muestras del paciente tienen un patrón indicativo de recurrencia de la enfermedad. Por supuesto, estas comparaciones pueden usarse igualmente para determinar si el paciente no es probable que experimente recurrencia de la enfermedad. Los perfiles de expresión de las muestras se comparan, a continuación, con la carpeta de una célula de control. Si los patrones de expresión de la muestra están de acuerdo con el patrón de expresión para la recurrencia de un cáncer colorectal, en ese caso (en la ausencia de consideraciones médicas contrarias) el paciente es tratado como uno que sería tratado como un paciente con recaída. Si los patrones de expresión de la muestra están de acuerdo con el patrón de expresión procedente de la célula normal/control, en ese caso, el paciente se diagnostica como negativo para cáncer colorectal.
Se encuentran disponibles numerosos procedimientos bien conocidos de reconocimiento de patrones. Las referencias siguientes proporcionan algunos ejemplos:
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Votación ponderada
Golub, TR., Slonim, DK., Tamaya, P., Huard, C., Gaasenbeek, M., Mesirov, JP., Coller, H., Loh, L., Downing, JR., Caligiuri, MA., Bloomfield, CD., Lander, ES. "Molecular classification of cáncer: class discovery and class prediction by gene expression monitoring", Science, vol. 286, págs. 531-537, (1999).
Máquinas de vector de soporte
Su, Al., Welsh, JB., Sapinoso, LM., Kern, SG., Dimitrov, P., Lapp, H., Schultz, PG., Powell, SM., Moskaluk, CA., Frierson, HF. Jr., Hampton, GM. "Molecular classification of human carcinomas by use of gene expression signatures", Cancer Research, vol. 61, págs. 7388-93, (2001).
Ramaswamy, S., Tamayo, P., Rifkin, R., Mukherjee, S., Yeang, CH., Angelo, M., Ladd, C., Reich, M., Latulippe, E., Mesirov, JP., Poggio, T., Gerald, W., Loda, M., Lander, ES., Gould, TR. "Multiclass cancer diagnosis using tumor gene expression signatures", Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, vol. 98, págs. 15149-15154, (2001).
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Vecinos más próximos a K
Ramaswamy, S., Tamayo, P., Rifkin, R., Mukherjee, S., Yeang, CH., Angelo, M., Ladd, C., Reich, M., Latulippe, E., Mesirov, JP., Poggio, T., Gerald, W., Loda, M., Lander, ES., Gould, TR. "Multiclass cancer diagnosis using tumor gene expression signatures", Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, vol. 98, págs. 15149-15154, (2001).
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Coeficientes de correlación
Van't Veer LJ, Dai H, van der Vijver MH, He YD, Hart AA, Mao M, Peterse HL, van der Kooy K, Marton MJ, Witteveen AT, Schreiber GJ, Kerkhoven RM, Roberts C, Linsley PS, Bernards R, Friend SH. "Gene expression profiling predicts clinical outcome of breast cancer", Nature, vol. 415, (No. 6871), págs. 530-6, (31 Enero 2002).
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Los perfiles de expresión de genes de esta invención pueden usarse también conjuntamente con otros procedimientos de diagnóstico no genéticos útiles en la diagnosis, prognosis o control de tratamiento del cáncer. Por ejemplo, en algunas circunstancias es beneficioso combinar la potencia de diagnóstico de la expresión del gen basado en procedimientos descritos anteriormente con datos procedentes de marcadores convencionales tales como marcadores de proteína del suero (por ejemplo, antígeno carcinoembriónico). Existe una diversidad de dichos marcadores incluyendo analitos tales como CEA. En un procedimiento de este tipo, se extrae periódicamente sangre de un paciente tratado y, a continuación, se somete a un ensayo inmunoenzimático para uno de los marcadores de suero descritos anteriormente. Cuando la concentración del marcador sugiere el retorno de tumores o el fallo de la terapia, se extrae una fuente de muestra adecuada para el análisis de expresión del gen. En el caso de que exista una masa sospechosa, se extrae un aspirado con una fina aguja y, a continuación, se analizan los perfiles de expresión de los genes de las células extraídas de la masa tal como se ha descrito anteriormente. Como alternativa, pueden extraerse muestras de tejido procedentes de áreas adyacentes al tejido a partir del cual se ha eliminado previamente un tumor. Esta vía puede ser particularmente útil cuando otros ensayos producen resultados ambiguos.
Los artículos incluyen representaciones de los perfiles de expresión de genes útiles para el tratamiento, diagnóstico, pronóstico, y otras formas de evaluación de enfermedades. Estas representaciones de perfiles se reducen a un medio que puede ser leído automáticamente por una máquina tal como medios de lectura por ordenador (magnético, óptico, y similares). Los artículos pueden incluir igualmente instrucciones para la evaluación de los perfiles de expresión de genes en dichos medios. Por ejemplo, los artículos pueden comprender un CD ROM conteniendo las instrucciones de un ordenador para la comparación de los perfiles de expresión de genes de las carpetas de genes descritos anteriormente. Igualmente, los artículos pueden tener perfiles de expresión de genes registrados digitalmente en ellos, de manera tal que pueden compararse con datos de expresión de genes procedentes de muestras de pacientes. Como alternativa, los perfiles pueden registrarse en diferente formato de representación. Uno de dichos formatos es el registro gráfico. Los algoritmos de agrupación tales como los incorporados en el software "DISCOVER" e "INFER" de Partek, Inc. mencionados anteriormente pueden ayudar mejor en la visualización de dichos datos.
Diferentes tipos de artículos de fabricación son medios o ensayos formateados usados para revelar los perfiles de expresión de genes. Estos pueden comprender, por ejemplo, microdisposiciones en las cuales los complementos de secuencias o sondas están fijados a una matriz a la cual se combinan las secuencias indicativas de los genes de interés creando un determinante leíble de su presencia. Como alternativa, los artículos pueden montarse dentro de kits de reactivos para llevar a cabo la hibridación, amplificación, y generación de señal indicativa del nivel de expresión de los genes de interés para la detección de cáncer colorectal.
Los kits hechos de acuerdo con la invención incluyen ensayos formateados para la determinación de los perfiles de expresión de genes. Estos pueden incluir todos o algunos de los materiales necesarios para realizar los ensayos tales como reactivos e instrucciones.
La invención se ilustra con más detalle mediante los ejemplos siguientes no limitativos.
Ejemplos
Los genes analizados de acuerdo con esta invención están relacionados típicamente con secuencias de ácido nucleico de longitud total que codifican la producción de una proteína o péptido. Un experto en la técnica reconocerá que la identificación de las secuencias de longitud total no es necesaria desde un punto de vista analítico. Es decir, las porciones de las secuencias o ESTs pueden seleccionarse de acuerdo con principios bien conocidos para las cuales pueden designarse sondas con el fin de evaluar la expresión del gen para el gen correspondiente.
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Ejemplo 1 Manipulación de muestras y LCM
Se recogieron muestras de tejidos congelados recientes procedentes de pacientes que habían sido tratados quirúrgicamente por tumores colorectales. Las muestras que se usaron procedían de 63 pacientes evaluados como B de Duke de acuerdo con diagnósticos clínicos y patología convencional. El resultado clínico de los pacientes era conocido. Treinta y seis de los pacientes se habían mantenido libres de la enfermedad durante más de 3 años, mientras que 27 pacientes había recaído en el tumor dentro de los 3 años.
Los tejidos se fraccionaron congelados en nitrógeno líquido dentro de los 20-30 minutos después de recogerlos y, a continuación, se almacenaron a -80ºC. Para su captura mediante láser, las muestras se cortaron (6 \mum), y una sección se montó sobre un portaobjetos de vidrio, y sobre la película (P.A.L.M.), que se había fijado sobre un portaobjetos de vidrio (Micro Slides Colorfrost, VWR Scientific, Media, PA). La sección montada sobre un portaobjetos de vidrio se fijó a continuación en acetona fría, y se tiñó con hematoxilina de Mayer (Sigma, St. Louis, MO). Un patólogo analizó las muestras para su diagnosis y grado. La fase clínica se estimó a partir de la patología quirúrgica y de los informes clínicos adjuntos para verificar la clasificación de Duke. La sección montada sobre la película se fijó a continuación durante cinco minutos en etanol al 100%, se tiñó en un contador durante 1 minuto en eosina/etanol al 100% (100 \mug de eosina en 100 ml de etanol deshidratado), se sacudió rápidamente una vez en etanol al 100% para eliminar el tinte libre, y se secó al aire durante 10 minutos.
Antes de su uso en LCM, la membrana (LPC-MEMBRANE PEN FOIL 1,35 \mum No 8100, P.A.L.M. GmbH Mikrolaser Technologie, Bernried, Alemania) y los portaobjetos se pretrataron para eliminar RNasas, y para potenciar la unión de la muestra de tejido sobre la película. En resumen, los portaobjetos se lavaron en DEP H_{2}O, y la película se lavó en RNase AWAY (Molecular Bioproducts, Inc., San Diego, CA) y se aclararon en DEP H_{2}O. Después de la unión de la película sobre los portaobjetos de vidrio, estos se hornearon a +120ºC durante 8 horas, se trataron con TI-SAD (Diagnostic Products Corporation, Los Angeles, CA, 1:50 en DEP H_{2}O, filtrado a través de lana de algodón), y se incubaron durante 30 minutos. Inmediatamente antes de su uso, se esparció sobre la película una parte alícuota de 10 \mul de solución inhibidora de RNasa (Rnasin Inhibitor 2500U=33U/\mul N211A, Promega GMbH, Mannheim, Alemania, 0,5 \mul en 400 \mul de solución de congelación, conteniendo 0,15 mol de NaCl 0,15 mol, Tris 10 mmol, pH8,0, ditiotreitol 0,25 mmol), en donde hubo de montarse la muestra de tejido.
Las secciones de tejido montadas sobre la película se usaron para LCM. Aproximadamente se capturaron 2000 células epiteliales/muestra usando la tecnología PALM Robot-Mirobeam (P.A.L.M. Mikrolaser Technologie, Carl Zeiss, Inc., Thornwood, NY), acoplada en un microscopio Zeiss Axiovert 135 (Carl Zeiss Jena GmbH, Jena, Alemania). Se incluyeron los estromas circundantes en la mucosa normal, y los componentes estrómicos que intervienen ocasionalmente en las muestras de cáncer. Las células capturadas se introdujeron en tubos en etanol al 100% y se conservaron a -80ºC.
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Ejemplo 2 Extracción y amplificación de ARN
Se usó la Zymo-Spin Column (Zymo Research, Orange, CA 92867) para extraer el ARN total procedente de las muestras capturadas con LCM. Aproximadamente 2 ng de ARN total se resuspendieron en 10 ul de agua y se realizaron 2 rondas de la amplificación basada en ARN polimerasa T7, proporcionando aproximadamente 50 ug de ARN amplificado.
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Ejemplo 3 Hibridación y cuantificación de microdisposición de ADNc
Se usó un conjunto de microdisposiciones de ADNc constituidas aproximadamente por 23.000 clones de ADNc humanos para ensayar la muestras para uso del chip U133a humano obtenido y comercialmente disponible de Affymetrix, Inc. El total obtenido y preparado tal como se ha descrito anteriormente, se aplicó a los chips y se analizó mediante un Agilent BioAnalizer de acuerdo con el protocolo del fabricante. Todas las 63 muestras pasaron los patrones de control de calidad y los datos se usaron para la selección del marcador.
Los datos de intensidad del chip se analizaron usando el software MAS Version 5.0 comercialmente disponible de Affymetrix, Inc. ("MAS 5,0"). Se usó un análisis no supervisado para identificar dos genes que distinguieran pacientes que hubieran recaído de los que no lo hubieran hecho, tal como sigue. Los datos de intensidad del chip obtenidos tal como se ha descrito fueron los datos de entrada para el software de agrupamiento no supervisado comercialmente disponible como software PARTEK versión 5.1. Este algortimo de agrupamiento no supervisado identificó un grupo de 20 pacientes con una alta frecuencia de recaída (13 con recaída y 7 supervivientes). A partir de los 23.000 genes originales, el análisis del ensayo t seleccionó 276 genes que se expresaron diferencialmente de manera significativa en estos pacientes. A partir de este grupo, se seleccionaron dos genes que mejor distinguieron los pacientes con recaída de los que no recayeron: el transportador asociado a péptido intestinal humano (Sec. ID. No. 3) y la proteína 1 de unión de ácido graso de Homo sapiens (Sec. ID. No. 1). Estos dos genes están sub-regulados (de hecho, estaban cerrados o no expresados) en los pacientes con recaída procedentes de este grupo de pacientes. Esto se muestra en la Figura 1 y la Figura 2, en las cuales se representa gráficamente la intensidad de señal (eje y) frente al número de muestra de paciente (eje x).
A continuación, se llevó a cabo el análisis supervisado para discriminar con más detalle los pacientes que recayeron de los que no recayeron en los 43 pacientes restantes. A continuación, este grupo de datos de pacientes se dividió en los grupos siguientes: 27 pacientes se asignaron como el conjunto de entrenamiento y 16 pacientes se asignaron como el conjunto de ensayo. Esto aseguró que no se usaron los mismos datos para ambos marcadores de identificación y, de esta forma, validaron su utilidad.
Sobre el conjunto de entrenamiento se llevó a cabo un ensayo t de varianza desigual. A partir de una lista de 28 genes que tienen valores p corregidos significativos, se eligió el MHC II-DR-B. Estos genes estaban sub-regulados en las personas que recayeron. El MHC II-DR-B (Sec. ID. No. 2) tenía igualmente el valor p más pequeño (Figura 3a).
En una ronda adicional de análisis supervisado, se implementó un procedimiento de selección de variables para el análisis discriminante lineal usando el software Partek Version 5.0 anteriormente descrito, para separar las personas que recayeron de los supervivientes en el conjunto de entrenamiento. El procedimiento de búsqueda fue la selección adelantada. La variable seleccionada con el error posterior más bajo fue la proteína 5 del transcripto de tipo inmunoglobulina (Sec. ID. No. 4) (Figura 3b). A continuación, se usó un modelo de riesgo proporcional de Cox (usando el software "S Plus" de Insightful, Inc.) para la selección de genes con el fin de confirmar la selección de genes anteriormente identificada para el tiempo de supervivencia. En cada ciclo de un total de 27 ciclos, cada uno de los 27 pacientes en el conjunto de entrenamiento se mantuvo firme, los 26 pacientes restantes se usaron en el modelo de regresión de Cox invariable con el fin de evaluar la fuerza de la asociación de la expresión de genes con el tiempo de supervivencia del paciente. La fuerza de dicha asociación se evaluó mediante el estimado del parámetro normalizado estimado correspondiente y el valor P retornado a partir del modelo de regresión de Cox. El valor de P de 0,01 se usó como el umbral para seleccionar los genes mejores de cada ciclo de la selección de genes por inclusión-exclusión. Los genes mejores seleccionados de cada ciclo se compararon, a continuación, con el fin de seleccionar aquellos genes que se mostraron al menos 26 veces en el total de 27ciclos de selección de genes por inclusión-exclusión. Se seleccionaron un total de 70 genes y tanto el MHC II-DR-B como la proteína 5 del transcripto de tipo inmunoglobulina estaban entre ellos (mostrando, nuevamente, sub-regulación).
Construcción de un pronosticador de genes múltiples: Dos genes, el MHC II-DR-B y la proteína 5 del transcripto de tipo inmunoglobulina, se usaron para producir un pronosticador usando el análisis discriminante lineal. La puntuación de la votación se definió como la probabilidad posterior de recaída. Si la puntuación del paciente fue mayor de 0,5, el paciente se clasificó como que sufrió una recaída. Si la puntuación del paciente fue menor de 0,5, el paciente se clasificó como un superviviente. El pronosticador se ensayó sobre el conjunto de entrenamiento (Tabla 1). La curva de Kaplan-Meier se construyó sobre los que sufrieron una recaída y los supervivientes pronosticados (Figura 4).
Validación cruzada y evaluación del pronosticador: El rendimiento del pronosticador debería determinarse sobre un conjunto de datos independientes dado que el mejor procedimiento de clasificación funciona bien sobre los ejemplos que se usaron en su formulación. Los 16 pacientes del conjunto de ensayo se usaron para evaluar la exactitud del pronóstico. El corte para la clasificación se determinó usando la curva ROC (Figura 5). Con el corte seleccionado, se determinaron los números del pronóstico correcto para los pacientes con recaída y supervivientes en el ensayo, los cuales se resumen en la Tabla 2. La curva de Kaplan-Meier se construyó sobre las personas que recayeron y las supervivientes pronosticadas (Figura 6). Pronóstico general: El perfil de expresión de genes de 63 pacientes de cáncer de color B de Duke condujo a la identificación de 4 genes que tienen expresión diferencial (sub-regulación o desvío) en estos pacientes. Estos genes son la Sec. ID No. 1, Sec. ID No. 2, Sec. ID. No. 3 y Sec. ID No. 4. Treinta y seis de los pacientes se mantuvieron libres de enfermedad durante más que años, en tanto que 27 pacientes tuvieron recaída de tumor dentro de los 3 años. Usando la carpeta de marcadores de 3 genes de la Sec. ID. No. 2, Sec. ID. No. 3, y Sec. ID. No. 4, 22 de los 27 pacientes con recaída y 27 de los 36 pacientes libres de enfermedad se identificaron correctamente. Este resultado representa una sensibilidad del 82% y una especificidad del 75%. El valor de pronóstico positivo es del 71% y el valor de pronóstico negativo es del 84% (Tabla 3). La curva de Kaplan-Meier se construyó sobre las personas que recayeron y las supervivientes pronosticadas (Figura 6).
A continuación, se describen los genes que comprenden los perfiles de esta invención.
Proteína 1 de unión de ácido graso de Homo sapiens (FABP1)
En primer lugar, se identificó el gen de la proteína de unión de ácido graso de hígado humano (L-FABP) en una biblioteca de ADNc de hígado por Smith, LC. y otros, en J. Biol. Chem., vol. 260, (no. 5), págs. 2629-2632, (1985). La L-FABP contiene 127 restos de aminoácidos. Las proteínas de unión de ácido graso son una familia de proteínas citoplásmicas, altamente conservadas, pequeñas que unen ácidos grasos de cadena larga y otros ligandos hidrófobos. Se estima que los papeles desarrollados por las FABPs incluyen la fijación, transporte y metabolismo de ácidos grasos. Igualmente, pueden ser responsables en la modulación del desarrollo y proliferación de células. La L-FABP comparte homología significativa con la I-FABP que está específicamente expresada en el tejido de colon.
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ARNm del transportador asociado al péptido intestinal humano HPT-1
Este gen fue identificado por un grupo de científicos de Eli Lilly and Company. El trabajo se publicó en Science, vol. 264, (no. 3137), págs. 430-3, (15 Abril 1994). Este gen codifica una proteína de membrana de aproximadamente 92 kilodalton, y la secuencia de aminoácidos indica que esta proteína asociada al transporte comparte diversos elementos estructurales conservados con la super-familia cadherina de proteínas de adhesión de célula-célula, dependientes del calcio.
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ARNm de antígeno de MHC clase II de Homo sapiens (HLA-DRB1)
Este gen se encontró por primera vez a partir de un intento español en 1997, y publicado en Tissue Antigens, vol. 49, (no. 6), págs. 658-61, (Junio 1997). Tal como indica su nombre, pertenece a la superfamilia de antígenos de MHC clase II. Este gen codifica un producto de proteína de 267 aminoácidos.
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ARNm de la proteína 5 del transcripto tipo inmunoglobulina del clon 6 del Homo sapiens
Este gen codifica un producto de proteína que es un inhibidor del receptor MHC clase I de la superfamilia de la inmunoglobulina, expresado no solamente por los subconjuntos de células NK y T, sino también por células B, monocitos, macrófagos, y células dendríticas. Esta molécula contiene 194 aminoácidos. La secuencia se publicó en J. Exp. Med., vol. 186, (no. 11), págs. 1809-18, (1 Diciembre 1997). Este receptor une moléculas de MHC clase I y suministra una señal negativa que inhibe la muerte por células NK y T, así como la movilización de Ca^{2+} en células B e inicia células mielomonocíticas a través del receptor de antígeno de célula B y antígenos de leucocitos de histocompatibilidad humana (HLA)-DR, respectivamente.
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Hidroximetilbilano sintasa de Homo sapiens (también denominada Porfobilinógeno desaminasa - PBGD)
Este gen se usó como el gen de control. Es uno de los genes menos variables entre tumor sólido y tejidos normales. La secuencia se publicó por primera vez en Nucleic Acids Res., vol. 14, (no. 15), págs. 5955-5968, (1986).
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TABLA 1 Exactitud del pronóstico del conjunto de entrenamiento usando el pronosticador de gen 2
6
TABLA 2 Exactitud del pronóstico basado en el conjunto de ensayo usando el pronosticador de gen 2
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TABLA 3 Exactitud del pronóstico basado en todos los pacientes usando el pronosticador de gen 3 (Sec. ID 2, Sec. ID 3, y Sec. ID 4)
8
<110> Wang, Yixin
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<120> Pronósticos de cáncer colorectal
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<130> CD550005
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<140> tbd
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<141> 2003-03-31
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<160> 5
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\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn version 3.1
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<210> 1
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<211> 489
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<212> ADN
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<213> humano
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<400> 1
9
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<210> 2
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<211> 853
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<212> ADN
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<213> humano
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<400> 2
10
11
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<210> 3
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<211> 3345
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<212> ADN
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<213> humano
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<400> 3
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12
13
14
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<210> 4
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<211> 1924
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<212> ADN
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<213> humano
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<400> 4
15
16
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<210> 5
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<211> 1536
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<212> ADN
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<213> humano
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<400> 5
17
18

Claims (15)

1. Un procedimiento de evaluación del estado de cáncer colorectal, que comprende la identificación de la modulación diferencial de cada gen (con relación a la expresión de los mismos genes en una población normal) en una combinación de genes constituidos por la Sec. ID. No. 2, Sec. ID. No. 3 y Sec. ID. No. 4.
2. El procedimiento de la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en el que la combinación de genes incluye además la Sec. ID. No. 1.
3. El procedimiento de la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en el que existe al menos una diferencia de 2 veces en la expresión de los genes modulados.
4. El procedimiento de la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en el que el valor p que indica la modulación diferencial es menor de 0,05.
5. El procedimiento de la reivindicación 1 o la reivindicación 2, que comprende además un diagnóstico colorectal que está basado genéticamente.
6. Un kit que comprende secuencias de ácidos nucleicos aislados, sus complementos, o porciones de los mismos de una combinación de genes constituidos por la Sec. ID. No. 2, Sec. ID. No. 3, y Sec. ID. No. 4.
7. El kit de la reivindicación 6, en el que la combinación de genes incluye además la Sec. ID. No. 1.
8. El kit de la reivindicación 6 o la reivindicación 7, en el que dichas secuencias de ácidos nucleicos, sus complementos, o porciones de los mismos están en una matriz adecuada para la identificación de la expresión diferencial de los genes contenidos en ella.
9. El kit de la reivindicación 8, en el que dicha matriz se usa en una microdisposición.
10. El kit de la reivindicación 9, en el que dicha microdisposición es una microdisposición de ADNc.
11. El kit de la reivindicación 9, en el que dicha microdisposición es una microdisposición de oligonucleótido.
12. El kit de la reivindicación 6 o la reivindicación 7, que comprende reactivos para la realización de un análisis de una microdisposición.
13. El kit de la reivindicación 6 o la reivindicación 7, que comprende además un medio mediante el cual se ensayan dichas secuencias de ácidos nucleicos, sus complementos, o porciones de los mismos.
14. Un procedimiento de evaluación de la respuesta al tratamiento del cáncer colorectal, que comprende la identificación de la modulación diferencial de cada gen (con relación a la expresión de los mismos genes en una población normal) en una combinación de genes constituidos por la Sec. ID. No. 2, Sec. ID. No. 3 y Sec. ID. No. 4.
15. El procedimiento de la reivindicación 14, en el que la combinación de genes incluye además la Sec. ID. No. 1.
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