ES2324401T3 - Composiciones y metodos para la deteccion de ehrlichia chaffeensis y de anticuerpos frente a ehrlichia canis. - Google Patents

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Barbara Ann Bartol
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Abstract

Un polipéptido aislado que consiste en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia.

Description

Composiciones y métodos para la detección de Ehrlichia chaffeensis y de anticuerpos frente a Ehrlichia canis.
Campo técnico de la invención
La invención proporciona composiciones y métodos para la detección y cuantificación de anticuerpos y fragmentos de anticuerpo frente a Ehrlichia canis y Ehrlichia chaffeensis.
Antecedentes de la invención
El género Ehrlichia son patógenos intracelulares estrictos que infectan linfocitos circulantes en huéspedes mamíferos. Ehrlichia canis y Ehrlichia chaffeensis son miembros del mismo grupo de subgénero que infectan a los cánidos y seres humanos y causan la ehrlichiosis monocítica canina (EMC) y la ehrlichiosis monocítica humana (EMH), respectivamente. La enfermedad canina se caracteriza por fiebre, linfadenopatía, pérdida de peso y pancitopenia. En seres humanos, la enfermedad de caracteriza por fiebre, dolor de cabeza, mialgia y leucopenia. La detección y el tratamiento precoces son importantes para tratar tanto la ehrlichiosis canina como la humana.
Se usan frecuentemente ensayos de inmunofluorescencia indirecta (IFA) y ensayos de inmunoabsorción ligados a enzimas (ELISA) como medios auxiliares en el diagnóstico de estas enfermedades. Estos ensayos miden o detectan de otro modo la unión de anticuerpos anti-Ehrlichia de suero, plasma o sangre de un paciente a células, lisados celulares infectados o proteínas purificadas de Ehrlichia. El documento WO 99/13720 da a conocer la proteína P30 de Ehrlichia canis y su uso para diagnosticar ehrlichiosis. Sin embargo, los ensayos conocidos actualmente para detectar anticuerpos anti-Ehrlichia o fragmentos de los mismos son de utilidad gravemente limitada debido a los problemas de sensibilidad y especificidad relacionados directamente con la naturaleza impura del antígeno de Ehrlichia usado en estas pruebas. Se necesitan reactivos sumamente purificados para construir ensayos más precisos.
Sumario de la invención
Es un objeto de la invención proporcionar reactivos y métodos para detectar anticuerpos anti-Ehrlichia canis y anticuerpos anti-Ehrlichia chaffeensis. Este y otros objetos de la invención se proporcionan mediante una o más de las realizaciones descritas a continuación.
Una realización de la invención proporciona una composición que comprende un polipéptido aislado seleccionado del grupo que consiste en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia.
Otra realización de la invención proporciona una composición de materia que comprende un polipéptido aislado seleccionado del grupo que consiste en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, y un portador.
Todavía otra realización de la invención proporciona un método para detectar la presencia de anticuerpos frente a Ehrlichia. El método comprende poner en contacto uno o más polipéptidos seleccionados del grupo que consiste en los polipéptidos mostrados en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, con una muestra de prueba que se sospecha que comprende anticuerpos frente a Ehrlichia, en condiciones que permiten que se formen complejos polipéptido/anticuerpo. Se detectan los complejos polipéptido/anticuerpo. La detección de complejos polipéptido/anticuerpo es una indicación de que están presentes anticuerpos frente a Ehrlichia en la muestra de prueba.
Aún otra realización de la invención proporciona un dispositivo que contiene uno o más polipéptidos seleccionados del grupo que consiste en los polipéptidos mostrados en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, e instrucciones para el uso del uno o más polipéptidos para la identificación de una infección por Ehrlichia en un mamífero.
Todavía otra realización de la invención proporciona un artículo de fabricación que comprende material de envasado y, contenidos dentro del material de envasado, uno o más polipéptidos seleccionados del grupo que consiste en los polipéptidos mostrados en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, y variante de los mismos. El material de envasado comprende una etiqueta que indica que pueden usarse el uno o más polipéptidos para la identificación de infección por Ehrlichia en un mamífero.
Incluso otra realización de la invención proporciona un método de diagnóstico de una infección por Ehrlichia en un mamífero. El método comprende obtener una muestra biológica de un mamífero que se sospecha que tiene una infección por Ehrlichia, y poner en contacto uno o más polipéptidos seleccionados del grupo que consiste en los polipéptidos mostrados en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, con la muestra biológica en condiciones que permiten que se formen complejos polipéptido/anticuerpo. Se detectan los complejos polipéptido/anticuerpo, siendo la detección de complejos polipéptido/anticuerpo una indicación de que el mamífero tiene una infección por Ehrlichia.
Otra realización de la invención proporciona un anticuerpo monoclonal que se une específicamente a al menos un epítopo de un polipéptido de Ehrlichia canis o Ehrlichia chaffeensis seleccionado del grupo que consiste en la SEQ ID NO:1.
Por tanto, la invención proporciona anticuerpos y polipéptidos sumamente purificados para su uso en ensayos precisos para la detección de anticuerpos y fragmentos de anticuerpo frente a Ehrlichia.
Descripción detallada de la invención Polipéptidos de la invención
La invención proporciona reactivos sumamente purificados para la detección de anticuerpos y fragmentos de anticuerpo frente a E. canis y E. chaffeensis. En particular, la invención proporciona polipéptidos que tienen una identidad de al menos el 85%, más preferiblemente una identidad de al menos el 90% y todavía más preferiblemente una identidad de al menos el 96%, 97%, 98% o 99% con una secuencia de polipéptidos mostrada en las SEQ ID NO:1-7. Véase la tabla 1. Los polipéptidos que no comprenden una identidad del 100% con una secuencia de polipéptidos mostrada en las SEQ ID NO:1-7 se consideran "variantes", y se consideran polipéptidos de la invención.
Se identificaron los péptidos de E. canis usando la tecnología de presentación en fago determinando la secuencia de aminoácidos unida mediante un anticuerpo monoclonal de ratón (IIIH7) producido frente al antígeno nativo de E. canis. Se usó el anticuerpo monoclonal IIIH7 para purificar por afinidad péptidos de expresión en virus en una biblioteca de presentación en fago PDH 10. Las secuencias o mimétopos unidos por IIIH7 mostraron una fuerte homología de secuencia con proteínas de la membrana externa de E. canis y E. chaffeensis. Las proteínas de la membrana externa de ambas especies están codificadas por una familia de genes polimórficos, lo que da como resultado múltiples reproducciones de las proteínas.
1
Identidad significa similitud en la secuencia de aminoácidos y tiene un significado reconocido en la técnica. Las secuencias con identidad comparten aminoácidos idénticos o similares, en las que los aminoácidos similares son preferiblemente aminoácidos conservados. Los aminoácidos conservados son aminoácidos que tienen cadenas laterales y propiedades (por ejemplo, hidrófilas, hidrófobas, aromáticas) similares a los aminoácidos codificados por la secuencia de referencia. Por tanto, una secuencia candidata que comparte una identidad de la secuencia de aminoácidos del 85% con una secuencia de referencia (es decir, la SEQ ID NO:1) requiere que, tras la alineación de la secuencia candidata con la secuencia de referencia, el 85% de los aminoácidos en la secuencia candidata sean idénticos a los aminoácidos correspondientes en la secuencia de referencia, y/o constituyan cambios conservativos de aminoácidos.
Las secuencias se alinean para cálculos de identidad usando un algoritmo matemático, tal como el algoritmo de Karlin y Altschul (1990) Proc. Natl Acad. Sci. USA 87:2264-2268, modificado como en Karlin y Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5873-5877. Está incorporado un algoritmo de este tipo en los programas XBLAST de Altschul et al. (1990) J. Mol. Biol. 215:403-410. Pueden realizarse búsquedas tipo BLAST de proteínas con el programa XBLAST, puntuación = 50, longitud de palabra = 3 para obtener secuencias de aminoácidos con identidad con los polipéptidos de la invención. Para obtener alineaciones con huecos para fines de comparación, puede utilizarse Gapped BLAST tal como se describe en Altschul et al. (1997) Nucleic Acids Res. 25:3389-3402. Cuando se utilizan los programas BLAST y Gapped BLAST, pueden usarse los parámetros por defecto de los respectivos programas (por ejemplo, XBLAST). Cuando se realiza el cálculo de identidad se ignoran los huecos internos y las inserciones de aminoácidos en la secuencia candidata alineada.
La invención contempla variantes en las que se sustituyen, se delecionan o se añaden en cualquier combinación aminoácidos de los polipéptidos de la invención. Están incluidas en la invención variantes que se producen de manera natural y variantes que no se producen de manera natural y pueden producirse mediante técnicas de mutagénesis o mediante síntesis directa.
Con el uso de métodos conocidos de tecnología de ADN recombinante y de modificación mediante ingeniería de proteínas pueden generarse variantes para mejorar o modificar las características de los polipéptidos de la presente invención. Tales variantes incluyen deleciones, inserciones, inversiones, repeticiones y sustituciones seleccionadas según las reglas generales conocidas en la técnica de modo que tienen poco efecto sobre la actividad. Por ejemplo, se proporcionan las directrices referentes a cómo realizar sustituciones de aminoácidos fenotípicamente silenciosas en Bowie et al., Science, 247:1306-1310 (1990), indicando los autores que existen dos estrategias principales para estudiar la tolerancia al cambio de una secuencia de aminoácidos.
La primera estrategia aprovecha la tolerancia de sustituciones de aminoácidos mediante selección natural durante el proceso de evolución. Comparando secuencias de aminoácidos en diferentes especies, pueden identificarse las posiciones de aminoácidos que se han conservado entre las especies. Es probable que estos aminoácidos conservados sean importantes para la función de las proteínas. Al contrario, las posiciones de aminoácidos en las que se han tolerado las sustituciones mediante selección natural indican posiciones que no son críticas para la función de las proteínas. Por tanto, pueden modificarse las posiciones que toleran la sustitución de aminoácidos mientras que todavía se mantiene la actividad de unión específica del polipéptido a anticuerpos o fragmentos de anticuerpo anti-
Ehrlichia.
La segunda estrategia usa la modificación mediante ingeniería genética para introducir cambios de aminoácidos en posiciones específicas de un gen clonado para identificar regiones críticas para la función de las proteínas. Por ejemplo, pueden usarse la mutagénesis dirigida al sitio o la mutagénesis de exploración de alanina (la introducción de mutaciones de una sola alanina en cada residuo en la molécula) (Cunningham et al., Science, 244:1081-1085 (1989)). Entonces, pueden someterse a prueba las moléculas mutantes resultantes para determinar la unión específica a anticuerpos o fragmentos de anticuerpo anti-Ehrlichia.
Según Bowie et al., estas dos estrategias han revelado que las proteínas son sorprendentemente tolerantes a las sustituciones de aminoácidos. Los autores indican además que es probable que los cambios de aminoácidos sean permisivos en ciertas posiciones de aminoácidos en la proteína. Por ejemplo, los residuos de aminoácido más ocultos o interiores (dentro de la estructura terciaria de la proteína) requieren cadenas laterales no polares, mientras que generalmente se conservan pocas características de las cadenas laterales de superficie o exteriores. Además, las sustituciones de aminoácidos conservativas toleradas implican el reemplazo de los aminoácidos alifáticos o hidrófobos Ala, Val, Leu e Ile; el reemplazo de los residuos hidroxilados Ser y Thr; el reemplazo de los residuos ácidos Asp y Glu; el reemplazo de los residuos de amida Asn y Gln; el reemplazo de los residuos básicos Lys, Arg e His; el reemplazo de los residuos aromáticos Phe, Tyr y Trp; y el reemplazo de los aminoácidos de pequeño tamaño Ala, Ser, Thr, Met y Gly.
Además de la sustitución conservativa de aminoácidos, las variantes de la presente invención incluyen: (i) sustituciones por uno o más de los residuos de aminoácido no conservados, en las que los residuos de aminoácido sustituidos pueden estar codificados o no por el código genético; (ii) sustitución por uno o más de los residuos de aminoácido que tienen un grupo sustituyente; (iii) fusión del polipéptido maduro con otro compuesto, tal como un compuesto para aumentar la estabilidad y/o solubilidad del polipéptido (por ejemplo, polietilenglicol); (iv) fusión del polipéptido con aminoácidos adicionales, tal como un péptido con región de fusión a Fc de IgG, una secuencia líder o secretora, o una secuencia que facilita la purificación. Se consideran que tales polipéptidos variantes se encuentran dentro del alcance de los expertos en la técnica a partir de las enseñanzas en el presente documento.
Los polipéptidos de la invención se unen específicamente a un anticuerpo anti-Ehrlichia. En este contexto "se une específicamente" significa que el polipéptido reconoce y se une a un anticuerpo anti-Ehrlichia, pero no reconoce ni se une sustancialmente a otras moléculas en una muestra de prueba.
Los polipéptidos de la invención comprenden al menos un epítopo que es reconocido por un anticuerpo anti-Ehrlichia. Un epítopo es un determinante antigénico de un polipéptido. Un epítopo puede ser un epítopo lineal, secuencial o un epítopo conformacional. Pueden identificarse epítopos dentro de un polipéptido de la invención mediante varios métodos. Véanse, por ejemplo, la patente estadounidense número 4.554.101; Jameson & Wolf, CABIOS 4:181-186 (1988). Por ejemplo, puede aislarse y seleccionarse un polipéptido de la invención. Puede prepararse una serie de péptidos cortos, que juntos abarcan toda la secuencia del polipéptido, mediante escisión proteolítica. Partiendo de, por ejemplo, fragmentos de polipéptido de 20 unidades, puede someterse a prueba cada fragmento para determinar la presencia de epítopos reconocidos en, por ejemplo, un ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA). En un ensayo ELISA, se une un polipéptido, tal como un fragmento de polipéptido de 20 unidades, a un soporte sólido, tal como los pocillos de una placa de plástico de múltiples pocillos. Se marca una población de anticuerpos, se añade al soporte sólido y se deja que se una al antígeno no marcado, en condiciones en las que se bloquea la adsorción no específica, y se eliminan por lavado cualquier anticuerpo no unido y otras proteínas. La unión de anticuerpos se detecta, por ejemplo, mediante una reacción que convierte un reactivo indicador incoloro en un producto de reacción coloreado. Entonces, pueden someterse a prueba los fragmentos solapantes y progresivamente más pequeños a partir de un polipéptido de 20 unidades identificado para mapear el epítopo de interés.
Preferiblemente, se sintetiza un polipéptido de la invención usando sintetizadores de péptidos convencionales, que se conocen bien en la técnica. También puede producirse un polipéptido de la invención de manera recombinante. Puede introducirse un polinucleótido que codifica para un polipéptido de Ehrlichia en un vector de expresión que puede expresarse en un sistema de expresión adecuado usando técnicas bien conocidas en la técnica. Está disponible una variedad de sistemas de expresión de bacterias, levaduras, plantas, mamíferos e insectos en la técnica y puede usarse cualquiera de tales sistemas de expresión. Opcionalmente, puede traducirse un polinucleótido que codifica para un polipéptido de Ehrlichia en un sistema de traducción sin células.
Si se desea, puede producirse un polipéptido de Ehrlichia como una proteína de fusión, que también puede contener otras secuencias de aminoácidos, tales como espaciadores de aminoácidos o secuencias señal, así como ligandos útiles en la purificación de proteínas, tales como glutatión-S-transferasa, cola de histidina y proteína estafilocócica A. Puede estar presente más de un polipéptido de Ehrlichia en una proteína de fusión. Si se desea, pueden incluirse diversas combinaciones de polipéptidos de Ehrlichia procedentes de diferentes aislados o cepas de Ehrlichia en una proteína de fusión.
Puede sintetizarse un polipéptido de la invención de manera que comprende varios polipéptidos de Ehrlichia repetidos. Esto es un polipéptido multimérico. Estos polipéptidos repetidos pueden comprender un polipéptido específico, por ejemplo el polipéptido mostrado en la SEQ ID NO:1, repetido 2 o más veces. Alternativamente, los polipéptidos repetidos pueden comprender una o más copias de un polipéptido de Ehrlichia específico junto con una o más copias de otro polipéptido de Ehrlichia diferente. Puede combinarse o sintetizarse un polipéptido de la invención con uno o más polipéptidos, fragmentos de polipéptidos o polipéptidos de longitud completa. Preferiblemente el uno o más polipéptidos son otros polipéptidos de la invención u otras proteínas de Ehrlichia.
Los polipéptidos de la invención también pueden comprender fragmentos de los polipéptidos mostrados en la SEQ ID NO:1, o variantes de los mismos. Por ejemplo, los fragmentos de polipéptidos pueden comprender cualquier número de aminoácidos entre 6 y 20 aminoácidos.
Un polipéptido de la invención se combina preferiblemente con un portador. Un portador es un vehículo para un polipéptido de la invención. Los portadores incluyen, por ejemplo, excipientes, diluyentes, adyuvantes y estabilizadores. Ejemplos de tales estabilizadores son proteínas tales como albúminas séricas y gelatina; sacáridos tales como glucosa, sacarosa, lactosa, maltosa, trehalosa, sorbitol, maltitol, manitol y lactitol; y tampones que están compuestos principalmente por fosfato o succinato.
Se producen diversos aislados y cepas de Ehrlichia canis y Ehrlichia chaffeensis y pueden usarse en la presente invención polipéptidos de cualquiera de estos aislados y cepas. Se conocen en la técnica secuencias de aminoácidos y ácido nucleico de polipéptidos y genes de Ehrlichia. Por ejemplo, se dan a conocer varias secuencias de la familia de genes OMP de E. chaffeensis y varias secuencias de la familia de genes P30 de E. canis en el documento WO 99/13720.
Métodos de detección
Los métodos de la invención detectan anticuerpos o fragmentos de anticuerpo frente a Ehrlichia canis o Ehrlichia chaffeensis en una muestra de prueba, tal como una muestra biológica, una muestra ambiental o una muestra de laboratorio. Una muestra biológica puede incluir, por ejemplo, sueros, sangre, células, plasma o tejido de un mamífero tal como un cánido o un ser humano. La muestra de prueba puede estar sin tratar, puede precipitarse, fraccionarse, separarse, diluirse, concentrarse o purificarse antes de combinarla con un polipéptido de la invención.
Los métodos comprenden poner en contacto un polipéptido de la invención con una muestra de prueba en condiciones que permiten que se forme un complejo polipéptido/anticuerpo. Se detecta la formación de un complejo entre el polipéptido y los anticuerpos anti-Ehrlichia en la muestra. En una realización de la invención, se detecta el complejo polipéptido/anticuerpo cuando un reactivo indicador, tal como una enzima que se une al anticuerpo, cataliza una reacción detectable. Opcionalmente, puede aplicarse un reactivo indicador que comprende un compuesto de generación de señales al complejo polipéptido/anticuerpo en condiciones que permiten la formación de un complejo polipéptido/anticuerpo/indicador. Se detecta el complejo polipéptido/anticuerpo/indicador. Opcionalmente, puede marcarse el polipéptido o anticuerpo con un reactivo indicador antes de la formación de un complejo polipéptido/anticuerpo. El método puede comprender opcionalmente un control positivo o negativo.
Los ensayos de la invención incluyen, pero sin limitarse a los basados en la competencia, ensayos de tipo sándwich o reacción directa. Los ensayos pueden usar sustratos o fases sólidos o pueden realizarse mediante inmunoprecipitación o cualquier otro método que no utiliza fases sólidas. Cuando se usa un sustrato o una fase sólidos, se une directa o indirectamente un polipéptido de la invención a un sustrato o un soporte sólido tal como un pocillo de microtitulación, una perla magnética, una perla no magnética, una columna, una matriz, una membrana, un fieltro fibroso compuesto por fibras naturales o sintéticas (por ejemplo, materiales a base de celulosa o vidrio o polímeros termoplásticos, tales como polietileno, polipropileno o poliéster), una estructura sinterizada compuesta por materiales particulados (por ejemplo, vidrio o diversos polímeros termoplásticos) o una película de membrana colada compuesta por nitrocelulosa, nailon, polisulfona o similares (generalmente de naturaleza sintética). Un sustrato preferido son partículas finas sinterizadas de polietileno, conocido comúnmente como polietileno poroso, por ejemplo, polietileno poroso de 10-15 micras de Chromex Corporation. Todos estos materiales de sustrato pueden usarse en formas adecuadas, tales como películas, láminas o placas, o pueden recubrirse sobre o unirse a o laminarse en portadores inertes apropiados, tales como películas de plástico, papel, vidrio o tejidos. Los métodos adecuados para inmovilizar péptidos sobre fases sólidas incluyen interacciones iónicas, hidrófobas, covalentes y similares.
Pueden usarse los polipéptidos de la invención para detectar anticuerpos o fragmentos de anticuerpo anti-Ehrlichia en ensayos que incluyen, pero no se limitan a ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA), inmunotransferencia de tipo Western, IFA, radioinmunoanálisis (RIA), hemaglutinación (HA) e inmunoensayo de polarización de fluorescencia (FPIA). Un ensayo preferido de la invención es el ensayo de unión cromatográfico de flujo reversible, por ejemplo un ensayo SNAP®. Véase la patente estadounidense número 5.726.010.
En un tipo de formato de ensayo, pueden recubrirse uno o más polipéptidos sobre un sustrato o una fase sólidos. Se incuba una muestra de prueba que se sospecha que contiene anticuerpos anti-Ehrlichia con un reactivo indicador que comprende un compuesto de generación de señales conjugado con un anticuerpo específico para Ehrlichia durante un tiempo y en condiciones suficientes para formar complejos antígeno/anticuerpo de o bien anticuerpos de la muestra de prueba frente a los polipéptidos de la fase sólida o bien el compuesto reactivo indicador conjugado con un anticuerpo específico para Ehrlichia frente a los polipéptidos de la fase sólida. Puede medirse cuantitativamente la reducción de la unión del reactivo indicador conjugado con un anticuerpo anti-Ehrlichia frente a la fase sólida. Una reducción medible de la señal en comparación con la señal generada a partir de una muestra de prueba confirmada como negativa para Ehrlichia indica la presencia de anticuerpo anti-Ehrlichia en la muestra de prueba. Este tipo de ensayo puede cuantificar la cantidad de anticuerpos anti-Ehrlichia en una muestra de prueba.
En otro tipo de formato de ensayo, se recubren uno o más polipéptidos de la invención sobre un soporte o sustrato. Se conjuga un polipéptido de la invención con un reactivo indicador y se añade a una muestra de prueba. Esta mezcla se aplica al soporte o sustrato. Si están presentes anticuerpos frente a Ehrlichia en la muestra de prueba se unirán al polipéptido conjugado con un reactivo indicador y al polipéptido inmovilizado sobre el soporte. Entonces, puede detectarse el complejo polipéptido/anticuerpo/indicador. Este tipo de ensayo puede cuantificar la cantidad de anticuerpos anti-Ehrlichia en una muestra de prueba.
Puede detectarse la formación de un complejo polipéptido/anticuerpo o un complejo polipéptido/anticuerpo/indica-
dor mediante métodos radiométricos, colorimétricos, fluorométricos, de separación por tamaños o de precipitación. Opcionalmente, la detección del complejo polipéptido/anticuerpo es mediante la adición de un anticuerpo secundario que está acoplado a un reactivo indicador que comprende un compuesto de generación de señales. pueden detectarse reactivos indicadores que comprenden compuestos de generación de señales (etiquetas) asociados a un complejo polipéptido/anticuerpo e incluyen agentes cromogénicos, catalizadores tales como enzimas, compuestos fluorescentes tales como fluoresceína y rodamina, compuestos quimioluminiscentes tales como dioxetanos, acridinios, fenantridinios, rutenio y luminol, elementos radiactivos, marcadores visuales directos, así como cofactores, inhibidores, partículas magnéticas y similares. Los ejemplos de enzimas incluyen fosfatasa alcalina, peroxidasa de rábano, beta-galactosidasa y similares. La selección de un marcador particular no es crítica, pero podrá producir una señal o bien por sí mismo o conjuntamente con una o más sustancias adicionales.
La formación del complejo es indicativa de la presencia de anticuerpos anti-E. canis o anti-E. chaffeensis en una muestra de prueba. Por tanto, pueden usarse los métodos de la invención para diagnosticar una infección por E. canis o E. chaffeensis en un paciente. Cada polipéptido de la invención puede detectar E. canis o E. chaffeensis o ambos debido a la reactividad cruzada de los polipéptidos y anticuerpos.
Los métodos de la invención también pueden indicar la cantidad de anticuerpos anti-Ehrlichia en una muestra de prueba. Con muchos reactivos indicadores, tales como enzimas, la cantidad de anticuerpo presente es proporcional a la señal generada. Dependiendo del tipo de muestra de prueba, puede diluirse con un reactivo tampón adecuado, puede concentrarse o ponerse en contacto con una fase sólida sin ninguna manipulación. Por ejemplo, normalmente es preferible someter a prueba muestras de suero o plasma que se han diluido previamente o muestras de concentrado tal como orina, con el fin de determinar la presencia y/o la cantidad del anticuerpo presente.
La invención comprende además kits de ensayo para detectar anticuerpos anti-Ehrlichia en una muestra. Un kit comprende uno o más polipéptidos de la invención y medios para determinar la unión del polipéptido a los anticuerpos frente a Ehrlichia en la muestra. Un kit puede comprender un dispositivo que contiene uno o más polipéptidos de la invención e instrucciones para el uso del uno o más polipéptidos para la identificación de una infección por Ehrlichia en un mamífero. El kit también puede comprender material de envasado que comprende una etiqueta que indica que pueden usarse el uno o más polipéptidos del kit para la identificación de una infección por Ehrlichia. Pueden incluirse otros componentes tales como tampones, controles y similares, conocidos para los expertos en la técnica, en tales kits de prueba. Los polipéptidos, ensayos y kits de la invención son útiles, por ejemplo, en el diagnóstico de casos individuales de infección por Ehrlichia en un paciente, así como en estudios epidemiológicos de brotes de Ehrlichia.
Los polipéptidos y ensayos de la invención pueden combinarse con otros polipéptidos o ensayos para detectar la presencia de Ehrlichia junto con otros microorganismos. Por ejemplo, los polipéptidos y ensayos de la invención pueden combinarse con reactivos que detectan Dirofilaria immitis y/o Borrelia burgdorferi.
Anticuerpos monoclonales
Los polipéptidos de la invención también pueden usarse para desarrollar anticuerpos monoclonales y/o policlonales que se unen específicamente a un epítopo inmunológico de E. canis o E. chaffeensis presente en los polipéptidos de la invención.
Pueden emplearse los anticuerpos o fragmentos de los mismos en sistemas de ensayo tales como un ensayo de unión cromatográfico de flujo reversible, ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas, ensayo de inmunotransferencia de tipo Western o ensayo de inmunofluorescencia indirecta, para determinar la presencia, si la hay, de polipéptidos de Ehrlichia en una muestra de prueba. Además, estos anticuerpos, en particular anticuerpos monoclonales, pueden unirse a matrices similares a Sepharose activada con CNBr y usarse para la purificación por afinidad de proteínas específicas de Ehrlichia a partir de, por ejemplo, cultivos celulares o suero sanguíneo, tal como para purificar proteínas y antígenos de Ehrlichia nativos y recombinantes. Los anticuerpos monoclonales de la invención también pueden usarse para la generación de anticuerpos quiméricos para uso terapéutico u otras aplicaciones similares.
Un experto en la técnica puede producir anticuerpos monoclonales dirigidos frente a epítopos de Ehrlichia. La metodología general para producir tales anticuerpos se conoce bien y se ha descrito, por ejemplo, en Kohler y Milstein, Nature 256:494 (1975) y revisado en J. G. R. Hurrel, ed., Monoclonal Hybridoma Antibodies: Techniques and Applications, CRC Press Inc., Boca Raton, Fla. (1982), así como lo enseñado por L. T. Mimms et al., Virology 176:604-619 (1990). Pueden crearse líneas celulares que producen anticuerpos inmortales mediante fusión celular y también mediante otras técnicas tales como transformación directa de linfocitos B con ADN oncogénico, o transfección con el virus Epstein-Barr.
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Ejemplos
Ejemplo 1
Detección de anticuerpos frente a E. canis en suero canino
Se comparó el rendimiento de un ensayo SNAP® de péptidos sintéticos con el rendimiento de un ensayo SNAP® de E. canis disponible comercialmente que usa antígenos de E. canis parcialmente purificados. Se obtuvieron los antígenos nativos parcialmente purificados de microorganismos E. canis, se hicieron crecer en el cultivo tisular y se purificaron parcialmente mediante centrifugación diferencial y cromatografía en columna. Los péptidos sintéticos usados en el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos eran formas monoméricas del péptido P30-1 de E. canis o del P-30 de E. canis, SEQ ID NO:1 y SEQ ID NO:2, respectivamente.
Se obtuvo una población de 70 muestras caninas que se sospechaba que eran positivas para E. canis de Arizona, Texas y Arkansas y se sometieron a prueba usando el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos y el ensayo SNAP® de antígenos nativos. También se sometieron a prueba las muestras usando un IFA indirecto. En resumen, se realizó el ensayo IFA usando células infectadas por E. canis recubiertas sobre portaobjetos para IFA y anticuerpo anti-IgG canina de conejo marcado con isotiocianato de fluoresceína (FITC). Se recogió E. canis de los cultivos celulares, se diluyó en tampón y se recubrió sobre portaobjetos para IFA. Se realizaron diluciones de las muestras de prueba con tampón, se incubaron con los portaobjetos para IFA recubiertos y entonces se lavaron y se incubaron con conjugado de anticuerpo anti-canino marcado con FITC. Se lavaron los portaobjetos y se visualizaron mediante microscopía con luz ultravioleta. Los resultados se registran como un título de actividad de fluorescencia. Esto representa el último reactivo de dilución de muestra sobre el portaobjetos para IFA. Las muestras con títulos de IFA superiores a o iguales a 1:100 son positivas.
En el caso de resultados discrepantes, se usó una inmunotransferencia de tipo Western para E. canis como ensayo de confirmación. En resumen, se recogió antígeno de E. canis de cultivo tisular, se resolvió mediante electroforesis en gel de poliacrilamida-SDS (SDS-PAGE) y entonces se transfirió a una membrana de nitrocelulosa. Tras la transferencia, se bloqueó la membrana con proteína heteróloga durante la noche a 4°C. Se incubaron muestras de prueba diluidas de muestras de suero caninas positivas y negativas para Ac frente a E. canis con inmunotransferencias durante 2 horas a temperatura ambiente. Entonces se lavaron las inmunotransferencias, se incubaron con reactivos comerciales de conjugado de anticuerpo anti-IgG canina:peroxidasa durante 1 hora y se lavaron. Se desarrollaron señales mediante la incubación de tiras con un reactivo indicador de peroxidasa comercial. Se requería una reacción con la banda inmunodominante con un peso molecular de 30.000 Dalton para la confirmación de un resultado positivo mediante inmunotransferencia de tipo Western. Véase, por ejemplo, Suksawat et al. J. Vet. Internal Med. 14:50-55 (2000).
El ensayo SNAP® de péptidos sintéticos y el ensayo SNAP® de antígenos nativos comprendían un sistema de ensayo similar al descrito en la patente estadounidense número 5.726.010. En resumen, se aplica una muestra de prueba a un dispositivo de ensayo de unión cromatográfico de flujo inverso y se deja fluir por el mismo y saturar una matriz de flujo. Esto facilita la formación de complejos secuencial. Es decir, un anticuerpo frente a Ehrlichia en la muestra de prueba se une en primer lugar a un reactivo de unión específica marcado no inmovilizado. En el caso del ensayo SNAP® de péptidos sintéticos, el reactivo de unión específica marcado no inmovilizado es un polipéptido de la invención conjugado con peroxidasa de rábano. Para el ensayo SNAP® de antígenos nativos, el reactivo comprende antígenos nativos parcialmente purificados. Este complejo se une a un reactivo de captura de analitos inmovilizados. Para el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos, el reactivo de captura de analitos inmovilizados es uno o más polipéptidos de la invención conjugados con albúmina sérica bovina. Para el ensayo SNAP® de antígenos nativos, el reactivo de captura son antígenos nativos parcialmente purificados. Se pone en contacto un depósito absorbente con la matriz de flujo saturada, invirtiendo de ese modo el flujo de fluido. Se suministra a la matriz de flujo una disolución de lavado y detector. Los reactivos líquidos eliminan la muestra no unida y el reactivo de unión específica marcado no unido y facilitan la detección de complejos de analitos en la ubicación del reactivo de captura de analitos inmovilizados. El sustrato usado en estos experimentos era 3,3',5,5'-tetrametilbencidina (TMB).
Resultados
En la tabla 2 se muestran los resultados de los ensayos. Los resultados se dividen en cinco grupos.
El grupo 1 comprende cuarenta y siete muestras que eran positivas según el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos, el ensayo SNAP® de antígenos nativos y el IFA. Estas son muestras positivas para anticuerpos y no se realizó ninguna prueba adicional en estas muestras.
El grupo 2 comprende diez muestras (números 15, 17, 18, 20, 22, 23, 24, 41, 42 y 46) que eran positivas según el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos, negativas según el ensayo SNAP® de antígenos nativos, positivas en el IFA, y se confirmaron mediante análisis de inmunotransferencia de tipo Western. Estas son muestras verdaderas positivas que eran positivas en el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos y falsas negativas en el ensayo SNAP® de antígenos nativos.
El grupo 3 comprende cinco muestras (números 1, 2, 3, 4 y 5) que eran positivas según IFA y se confirmaron negativas mediante análisis de inmunotransferencia de tipo Western. Estas son muestras verdaderas negativas que eran falsas positivas en el IFA. Las 5 muestras se identificaron correctamente como negativas mediante el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos. El ensayo SNAP® de antígenos nativos identificó correctamente tres de las muestras (números 1, 2 y 5) como negativas, pero dio resultados falsos positivos para dos muestras (números 3 y 4).
El grupo 4 comprende siete muestras (6, 7, 8, 9, 10, 11 y 12) que eran negativas mediante IFA y se confirmaron positivas mediante análisis de inmunotransferencia de tipo Western. Estas son muestras positivas que eran falsas negativas en el IFA. Las siete muestras eran verdaderas positivas en el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos. El ensayo SNAP® de antígenos nativos identificó correctamente sólo dos de las siete muestras (números 7 y 11) como positivas e identificó incorrectamente cinco de las muestras (números 6, 8, 9, 10 y 12) dando como resultado resultados falsos negativos para estas cinco muestras.
El grupo 5 comprende una muestra (número 21) que era positiva mediante IFA y se confirmó como positiva mediante análisis de inmunotransferencia de tipo Western. El ensayo SNAP® de péptidos sintéticos y el ensayo SNAP® de antígenos nativos dieron resultados negativos. Esta es una muestra positiva que era falsa negativa tanto en el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos como el ensayo SNAP® de antígenos nativos.
Por tanto, se sometieron a prueba 70 muestras y 65 de estas muestras eran muestras verdaderas positivas. El ensayo SNAP® de péptidos sintéticos identificó correctamente 64 de las muestras positivas para obtener una sensibilidad del 98,5% (64/65). El ensayo SNAP® de antígenos nativos identificó correctamente 49 de las muestras para obtener una sensibilidad del 75,3% (49/65). De las cinco muestras verdaderas negativas, el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos identificó correctamente 5 de las muestras negativas para una especificidad del 100% (5/5). El ensayo SNAP® de antígenos nativos identificó correctamente 3 de las muestras negativas para una especificidad del 60% (3/5). Por tanto, el ensayo SNAP® de péptidos sintéticos es más sensible y específico que el ensayo SNAP® de antígenos nativos.
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(Tabla pasa a página siguiente)
TABLA 2
2
3
<110> Lawton, Robert
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O'Connor, Thomas
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Bartol, Barbara
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MacHenry, Paul
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<120> Composiciones y métodos para la detección de Ehrlichia chaffeensis y de anticuerpos frente a Ehrlichia Canis
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<130> 00-1278
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<140> Documento 09/765.739
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<141> 18-01-2001
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<160> 7
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<170> PatentIn versión 3.0
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<210> 1
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<211> 20
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia canis
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<400> 1
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100
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<210> 2
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<211> 20
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia canis
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<400> 2
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<210> 3
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<211> 20
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia chaffeensis
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<400> 3
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<210> 4
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<211> 18
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia chaffeensis
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<400> 4
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103
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<210> 5
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<211> 19
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia chaffeensis
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<400> 5
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104
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<210> 6
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<211> 18
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia chaffeensis
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<400> 6
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<210> 7
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<211> 19
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<212> PRT
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<213> Ehrlichia chaffeensis
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<400> 7
\hskip1cm
106

Claims (27)

1. Un polipéptido aislado que consiste en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia.
2. Polipéptido aislado según la reivindicación 1, que comprende además un portador.
3. Un método para detectar la presencia de anticuerpos frente a Ehrlichia que comprende:
(a)
poner en contacto polipéptidos que consisten en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, con una muestra de prueba que se sospecha que comprende anticuerpos frente a Ehrlichia, en condiciones que permiten que se formen complejos polipéptido/anticuerpo;
(b)
detectar los complejos polipéptido/anticuerpo; siendo la detección de complejos polipéptido/anticuerpo una indicación de que están presentes anticuerpos frente a Ehrlichia en la muestra de prueba.
4. Método según la reivindicación 3, que comprende además poner en contacto los complejos de la etapa (a) con un reactivo indicador que comprende un compuesto de generación de señales que genera una señal medible antes de la realización de la etapa (b).
5. Método según la reivindicación 3, en el que se detecta la presencia de anticuerpos frente a Ehrlichia canis.
6. Método según la reivindicación 3, en el que se detecta la presencia de anticuerpos frente a Ehrlichia chaffeensis.
7. Método según la reivindicación 3, en el que los anticuerpos son fragmentos de anticuerpo.
8. Método según la reivindicación 3, en el que se determina la cantidad de anticuerpo en una muestra de prueba.
9. Método según la reivindicación 3, en el que los polipéptidos están unidos a un sustrato.
10. Método según la reivindicación 3, en el que los polipéptidos se proporcionan en forma multimérica.
11. Método según la reivindicación 3, en el que la muestra de prueba es una muestra biológica obtenida de un mamífero.
12. Método según la reivindicación 11, en el que el mamífero se selecciona del grupo que consiste en seres humanos y cánidos.
13. Método según la reivindicación 3, en el que el método comprende un ensayo seleccionado del grupo de ensayos que consisten en un ensayo de unión cromatográfico de flujo reversible, un ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas, un ensayo de inmunotransferencia de tipo Western y un ensayo de inmunofluorescencia indirecta.
14. Un dispositivo que contiene polipéptidos que consisten en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia.
15. Dispositivo según la reivindicación 14, que comprende además instrucciones para el uso del uno o más polipéptidos para la identificación de una infección por Ehrlichia en un mamífero.
16. Dispositivo según la reivindicación 15, en el que la identificación de una infección por Ehrlichia se realiza usando un método para detectar la presencia de anticuerpos frente a Ehrlichia que comprende:
(a)
poner en contacto polipéptidos que consisten en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, con una muestra de prueba que se sospecha que comprende anticuerpos frente a Ehrlichia, en condiciones que permiten que se formen complejos polipéptido/anticuerpo;
(b)
detectar los complejos polipéptido/anticuerpo;
siendo la detección de complejos polipéptido/anticuerpo una indicación de que está presente una infección por Ehrlichia.
17. Dispositivo según la reivindicación 15, en el que la infección por Ehrlichia está causada por Ehrlichia canis o Ehrlichia chaffeensis.
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18. Un artículo de fabricación que comprende material de envasado y, contenidos dentro del material de envasado, polipéptidos que consisten en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia.
19. Artículo de fabricación según la reivindicación 18, en el que el material de envasado comprende una etiqueta que indica que pueden usarse el uno o más polipéptidos para la identificación de infección por Ehrlichia en un mamífero.
20. Artículo de fabricación según la reivindicación 19, en el que la identificación de una infección por Ehrlichia se realiza usando un método para detectar la presencia de anticuerpos frente a Ehrlichia que comprende:
(a)
poner en contacto polipéptidos que consisten en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, con una muestra de prueba que se sospecha que comprende anticuerpos frente a Ehrlichia, en condiciones que permiten que se formen complejos polipéptido/anticuerpo;
(b)
detectar los complejos polipéptido/anticuerpo;
siendo la detección de complejos polipéptido/anticuerpo una indicación de que está presente una infección por Ehrlichia.
21. Artículo de fabricación según la reivindicación 19, en el que la infección por Ehrlichia está causada por Ehrlichia canis o Ehrlichia chaffeensis.
22. Método de diagnóstico de una infección por Ehrlichia en un mamífero que comprende:
(a)
poner en contacto polipéptidos que consisten en la SEQ ID NO:1 y variantes de sustitución de aminoácidos de la SEQ ID NO:1 que se unen específicamente a un anticuerpo anti-P30-1 de Ehrlichia, con una muestra biológica de un mamífero que se sospecha que tiene una infección por Ehrlichia, bajo condiciones que permiten que se formen complejos polipéptido/anticuerpo;
(b)
detectar los complejos polipéptido/anticuerpo;
siendo la detección de complejos polipéptido/anticuerpo una indicación de que el mamífero tiene una infección por Ehrlichia.
23. Método según la reivindicación 22, que comprende además poner en contacto los complejos de la etapa (a) con un reactivo indicador que comprende un compuesto de generación de señales que genera una señal medible antes de la realización de la etapa (b).
24. Método según la reivindicación 22, en el que la infección por Ehrlichia está causada por Ehrlichia canis.
25. Método según la reivindicación 22, en el que la infección por Ehrlichia está causada por Ehrlichia chaffeensis.
26. Método según la reivindicación 22, en el que el mamífero es un ser humano o un cánido.
27. Anticuerpo monoclonal que se une específicamente a al menos un epítopo de un polipéptido de Ehrlichia canis o Ehrlichia chaffeensis, consistiendo dicho polipéptido en la SEQ ID NO:1.
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