ES2347871T3 - Procedimiento y equipo de procesamiento de imágenes de fluorescencia de alta resolución por fibra óptica y particularmente de procesamiento de imágenes confocal. - Google Patents
Procedimiento y equipo de procesamiento de imágenes de fluorescencia de alta resolución por fibra óptica y particularmente de procesamiento de imágenes confocal. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2347871T3 ES2347871T3 ES03755595T ES03755595T ES2347871T3 ES 2347871 T3 ES2347871 T3 ES 2347871T3 ES 03755595 T ES03755595 T ES 03755595T ES 03755595 T ES03755595 T ES 03755595T ES 2347871 T3 ES2347871 T3 ES 2347871T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- image
- fiber
- optical
- excitation
- fluorescence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 239000013307 optical fiber Substances 0.000 title claims abstract description 25
- 238000012545 processing Methods 0.000 title description 19
- 238000002073 fluorescence micrograph Methods 0.000 title description 4
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims abstract description 75
- 230000005284 excitation Effects 0.000 claims abstract description 44
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 29
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 claims description 37
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 33
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 33
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 28
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 11
- 238000011282 treatment Methods 0.000 claims description 9
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 claims description 8
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 claims description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 4
- 230000003595 spectral effect Effects 0.000 claims description 4
- 230000004075 alteration Effects 0.000 claims description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 3
- 238000010408 sweeping Methods 0.000 claims description 3
- 230000000712 assembly Effects 0.000 claims description 2
- 238000000429 assembly Methods 0.000 claims description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 claims 2
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 claims 1
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 claims 1
- 238000000799 fluorescence microscopy Methods 0.000 claims 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 abstract description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract 1
- 238000004422 calculation algorithm Methods 0.000 description 5
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 4
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 3
- 238000001839 endoscopy Methods 0.000 description 3
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 3
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 3
- 230000008685 targeting Effects 0.000 description 3
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 3
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N Argon Chemical compound [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 2
- 238000012937 correction Methods 0.000 description 2
- 230000010354 integration Effects 0.000 description 2
- 230000003071 parasitic effect Effects 0.000 description 2
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004891 communication Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 230000008878 coupling Effects 0.000 description 1
- 238000010168 coupling process Methods 0.000 description 1
- 238000005859 coupling reaction Methods 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 239000013305 flexible fiber Substances 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 230000001360 synchronised effect Effects 0.000 description 1
- 230000009885 systemic effect Effects 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 230000009261 transgenic effect Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- H—ELECTRICITY
- H04—ELECTRIC COMMUNICATION TECHNIQUE
- H04N—PICTORIAL COMMUNICATION, e.g. TELEVISION
- H04N1/00—Scanning, transmission or reproduction of documents or the like, e.g. facsimile transmission; Details thereof
- H04N1/024—Details of scanning heads ; Means for illuminating the original
- H04N1/028—Details of scanning heads ; Means for illuminating the original for picture information pick-up
- H04N1/0281—Details of scanning heads ; Means for illuminating the original for picture information pick-up with means for collecting light from a line or an area of the original and for guiding it to only one or a relatively low number of picture element detectors
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
- A61B5/0059—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence
- A61B5/0062—Arrangements for scanning
- A61B5/0068—Confocal scanning
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
- A61B5/0059—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence
- A61B5/0071—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence by measuring fluorescence emission
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
- A61B5/0059—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence
- A61B5/0073—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence by tomography, i.e. reconstruction of 3D images from 2D projections
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
- A61B5/0059—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence
- A61B5/0082—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence adapted for particular medical purposes
- A61B5/0084—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence adapted for particular medical purposes for introduction into the body, e.g. by catheters
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/0004—Microscopes specially adapted for specific applications
- G02B21/002—Scanning microscopes
- G02B21/0024—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders
- G02B21/0028—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders specially adapted for specific applications, e.g. for endoscopes, ophthalmoscopes, attachments to conventional microscopes
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/0004—Microscopes specially adapted for specific applications
- G02B21/002—Scanning microscopes
- G02B21/0024—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders
- G02B21/0032—Optical details of illumination, e.g. light-sources, pinholes, beam splitters, slits, fibers
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/0004—Microscopes specially adapted for specific applications
- G02B21/002—Scanning microscopes
- G02B21/0024—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders
- G02B21/0036—Scanning details, e.g. scanning stages
- G02B21/0048—Scanning details, e.g. scanning stages scanning mirrors, e.g. rotating or galvanomirrors, MEMS mirrors
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/0004—Microscopes specially adapted for specific applications
- G02B21/002—Scanning microscopes
- G02B21/0024—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders
- G02B21/0052—Optical details of the image generation
- G02B21/0072—Optical details of the image generation details concerning resolution or correction, including general design of CSOM objectives
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/0004—Microscopes specially adapted for specific applications
- G02B21/002—Scanning microscopes
- G02B21/0024—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders
- G02B21/0052—Optical details of the image generation
- G02B21/0076—Optical details of the image generation arrangements using fluorescence or luminescence
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B21/00—Microscopes
- G02B21/0004—Microscopes specially adapted for specific applications
- G02B21/002—Scanning microscopes
- G02B21/0024—Confocal scanning microscopes (CSOMs) or confocal "macroscopes"; Accessories which are not restricted to use with CSOMs, e.g. sample holders
- G02B21/008—Details of detection or image processing, including general computer control
- G02B21/0084—Details of detection or image processing, including general computer control time-scale detection, e.g. strobed, ultra-fast, heterodyne detection
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B23/00—Telescopes, e.g. binoculars; Periscopes; Instruments for viewing the inside of hollow bodies; Viewfinders; Optical aiming or sighting devices
- G02B23/24—Instruments or systems for viewing the inside of hollow bodies, e.g. fibrescopes
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B23/00—Telescopes, e.g. binoculars; Periscopes; Instruments for viewing the inside of hollow bodies; Viewfinders; Optical aiming or sighting devices
- G02B23/24—Instruments or systems for viewing the inside of hollow bodies, e.g. fibrescopes
- G02B23/26—Instruments or systems for viewing the inside of hollow bodies, e.g. fibrescopes using light guides
-
- G—PHYSICS
- G02—OPTICS
- G02B—OPTICAL ELEMENTS, SYSTEMS OR APPARATUS
- G02B26/00—Optical devices or arrangements for the control of light using movable or deformable optical elements
- G02B26/08—Optical devices or arrangements for the control of light using movable or deformable optical elements for controlling the direction of light
- G02B26/10—Scanning systems
- G02B26/101—Scanning systems with both horizontal and vertical deflecting means, e.g. raster or XY scanners
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B5/00—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
- A61B5/0059—Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons using light, e.g. diagnosis by transillumination, diascopy, fluorescence
- A61B5/0062—Arrangements for scanning
Landscapes
- Physics & Mathematics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Surgery (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Radiology & Medical Imaging (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Astronomy & Astrophysics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Computer Vision & Pattern Recognition (AREA)
- Multimedia (AREA)
- Signal Processing (AREA)
- Ophthalmology & Optometry (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
- Microscoopes, Condenser (AREA)
- Instruments For Viewing The Inside Of Hollow Bodies (AREA)
- Endoscopes (AREA)
Abstract
Procedimiento para realizar una imagen confocal de fluorescencia in vivo in situ, el procedimiento utiliza una guía de imagen hecha de varios millares de fibras ópticas y consiste en barrer punto por punto un tejido en un plano subsuperficial, cada punto correspondiente a una señal de excitación emitida por una fuente continua, desviada e inyectada en una de las fibras ópticas de dicho haz luego enfocada a la salida de dicha fibra en dicho plano, cada punto emitiendo de vuelta una señal de fluorescencia recogida por dicha fibra óptica, luego detectada y digital izada para formar un elemento de imagen, el procedimiento comporta las siguientes etapas: - se desvía la señal de excitación a una velocidad que corresponde a la adquisición de un mínimo de 12 imágenes por segundo en el caso de un modo de visualización máxima de 640 x 640 píxeles, - se detecta la señal de fluorescencia a una frecuencia de detección superior o igual a una frecuencia mínima de preparación de muestreo de las fibras una por una que es sensiblemente igual a 1,5 MHz para dicho mínimo de 12 imágenes por segundo en el caso de un modo de visualización de 640 x 640 píxeles.
Description
Procedimiento y equipo de procesamiento de
imágenes de fluorescencia de alta resolución por fibra óptica y
particularmente de procesamiento de imágenes confocal.
La presente invención se refiere a un
procedimiento y un equipo de procesamiento de imágenes de
fluorescencia fibrada de alta resolución, particularmente confocal.
El campo de aplicación aludido es más particularmente el del
procesamiento de imágenes in vivo e in situ.
La fluorescencia observada puede provenir de un
compuesto exógeno (normalmente un marcador inyectado) o endógeno
(presente en la célula) de un tejido biológico.
Más particularmente, el procedimiento de
procesamiento de imágenes confocal según la invención es del tipo
que consiste en barrer punto por punto un tejido en un plano
subsuperficial, cada punto correspondiente a una señal de excitación
emitida por una fuente continua, desviada e inyectada por turnos en
una fibra óptica de un haz de fibras ópticas, luego enfocada a la
salida de dicha fibra en dicho plano, cada punto emitiendo a cambio
una señal de fluorescencia recogida por dicha fibra óptica, luego
detectada y digitalizada para formar un elemento de imagen.
El carácter confocal se obtiene utilizando el
mismo camino óptico, particularmente la misma fibra óptica que sirve
de filtración espacial, para transportar la señal de excitación y la
señal de fluorescencia emitida en reacción, y utilizando un sistema
óptico que permita conjugar el punto de focalización en el tejido
con dicha fibra óptica.
El equipo de procesamiento de imágenes confocal
correspondiente comprende el haz de fibras ópticas flexibles
(llamado corrientemente guía de imagen) con, a su extremo
proximal:
- -
- La fuente que emite continuamente a la longitud de onda de excitación de uno o varios fluoróforos dirigidos, normalmente una fuente láser;
- -
- Medios de barrido rápido en el tiempo del haz de excitación producido por la fuente en líneas y en columnas en un plano XY correspondiente a la sección de entrada de la guía de imagen;
- -
- Medios de inyección del haz de excitación en una de las fibras ópticas;
- -
- Medios de detección de la señal de fluorescencia; y
- -
- Medios de control, particularmente medios de barrido.
Medios que además están previstos para permitir
la realización y la visualización de una imagen a partir de las
señales detectadas sucesivamente sobre cada fibra.
En el extremo distal de la guía de imagen, se
encuentra una cabeza óptica, destinada a ser puesta en contacto con
él tejido observado, permitiendo enfocar el haz de excitación a una
profundidad determinada (algunas decenas de \mum) y entonces
realizar una imagen subsuperficial.
En la práctica, este tipo de equipo presenta
particularmente las ventajas siguientes:
- -
- Por el lado distal de la guía de imagen se encuentra únicamente una óptica de focalización, que es menos frágil y costosa que una cabeza óptica que integra medios de barrido, la sustitución de la cabeza óptica que puede ser contemplada independientemente de los medios de barrido; por otro lado la cabeza es miniaturizable, lo que presenta un interés en endoscopia y también, de manera general, para aumentar la precisión de posicionamiento;
- -
- Una guía de imagen hecha de fibras ópticas flexibles, sirve de brazo de acceso a la ubicación que hay que observar, lo que es importante para una aplicación in situ.
En el estado de la técnica, se describen los
siguientes procedimientos y los equipos de fluorescencia.
En un artículo aparecido en "Applied
Optics", Vol. 38, Núm. 34, Diciembre de 1999, páginas
7133-7144, se presenta un
micro-endoscopio confocal utilizando un haz de
fibras ópticas flexibles provisto en su extremo distal de una cabeza
óptica en miniatura de focalización; está previsto barrer el haz de
fibras ópticas en líneas, al comprender el equipo una hendidura de
detección así como un detector lineal CCD del tipo de transferencia
de cargas. Un equipo de este tipo permite obtener 4 imágenes/seg.,
lo que es demasiado lento para un procesamiento de imágenes in
situ dependiendo de los movimientos del sujeto y del operador.
Por otro lado, el hecho de barrer en líneas y no por puntos degrada
el carácter confocal y conduce a una imagen peor resuelta.
En un artículo aparecido en "Optics
Communications", 188 (2001), páginas 267-273, se
presenta el acoplamiento de un microscopio confocal de mesa con
barrido láser con un haz de fibras ópticas flexibles provisto en su
extremo distal de una cabeza óptica en miniatura. El fin buscado es
devolver el microscopio compatible con un endoscopio. La exploración
se realiza fibra a fibra pero el microscopio de mesa utilizado es de
concepción clásica, concebido para visualizar una muestra fija sin
preocuparse por el tiempo necesario a fin de obtener una imagen. Un
tiempo de exposición de 2 segundos se adelanta en este artículo,
demasiado largo para un procesamiento in situ, en tiempo
real.
En el artículo "Development of tiene
fiber-optic confocal microendoscope for clinical
endoscopy", publicado en Proceedings of SPIE, Vol. 4613, páginas
244-253, 01.05.02, se presenta un microscopio
confocal de fluorescencia con un haz de fibras ópticas que es
barrido en líneas. El microscopio comprende un detector CCD que
opera a una frecuencia de 3 MHz, y permite obtener 8 imágenes por
segundo, las imágenes comprenden 512 x 512 píxeles.
La presente invención tiene por objeto proponer
un procedimiento y un equipo de procesamiento de imágenes de
fluorescencia fibrada de alta resolución, particularmente confocal,
del tipo que utiliza una guía de imagen hecha de fibras ópticas
barridas una por una por un haz de excitación emitido continuamente,
dichos procedimiento y equipo permiten la visualización en tiempo
real de una ubicación in vivo in situ, es decir capaz de
proporcionar un número suficiente de imágenes punto por punto por
segundo sin ser dependiente de movimientos del sujeto y del práctico
facultativo para permitir particularmente un examen bastante
rápido.
La presente invención también tiene como objeto
proponer un procedimiento y un equipo que, de manera general,
optimizan la calidad de cada imagen con el fin particularmente de
obtener una excelente resolución lateral y axial. El procedimiento
según la invención está definido en la reivindicación 1.
La presente invención propone una solución para
realizar una imagen in vivo in situ en tiempo real. La
invención está basada en el respeto del muestreo de las fibras
(según el criterio de Shannon) que permite obtener y reconstruir una
imagen punto por punto que corresponde bien a cada fibra. Esto
permite no perder información preparando muestras del conjunto de
las fibras una por una respetando un número medio mínimo de imágenes
por segundo, a saber en la práctica 12 imágenes como mínimo por
segundo para un modo máximo de 640 x 640 píxeles. La elección de la
frecuencia de detección {banda pasante del detector) en función de
esta preparación de muestras mínima permite luego para cada fibra
detectar el número más grande y posible de fotones de
fluorescencia.
Así, según un modo de realización posible,
utilizando una guía de imagen de cerca de 30.000 fibras ópticas
flexibles, la frecuencia de preparación de muestras y la banda
pasante del sistema de detección (fotodiodo de avalancha o
equivalente) se fijan sensiblemente sobre 1,5 MHz, correspondiendo
aproximadamente a 12 píxeles por fibra, permitiendo entonces obtener
por lo menos las 12 imágenes/seg. en modo máximo de 640 x 640
píxeles.
En la práctica, según un modo de realización
ventajoso, que permite un escaneo rápido apropiado de las fibras
para obtener una imagen en tiempo real, la desviación del haz se
ajusta determinando una frecuencia de resonancia rápida de un espejo
resonante "línea" y una frecuencia de resonancia lenta de un
espejo galvanométrico "trama".
Según la invención, la duración de detección de
un flujo procedente de una fibra está limitada en el tiempo y muy
corta para respetar la adquisición de una imagen en tiempo real.
Según la invención, se han previsto además medios de optimización
para recoger y detectar el máximo de flujo procedente de la muestra
durante esta duración de detección limitada, particularmente:
- -
- se utilizan medios ópticos de desviación, de inyección, si llega el caso, de focalización y de detección presentando un grado de acromaticidad que depende de la desviación en longitud de onda entre la longitud de onda de excitación y la longitud de onda máxima de fluorescencia, así como de la anchura espectral de la señal de fluorescencia emitida; esto permite optimizar ventajosamente el flujo de fluorescencia recogido sobre toda la banda espectral de fluorescencia emitida;
- -
- se escoge, si llega el caso, una abertura numérica de la óptica de focalización sobre el tejido comprendida sensiblemente entre 0,5 y 1, permitiendo obtener un buen compromiso entre la medida de campo y la cantidad recogida de fotones; y
- -
- Se escoge un detector que tenga una eficacia cuántica en las longitudes de ondas de fluorescencia que hay que detectar por lo menos del 50%.
Según la invención, procesamiento de imagen
realizado luego sobre el flujo detectado está también optimizado,
para obtener una imagen de muy buena calidad a partir de este flujo
limitado detectado de fotones. Esta optimización se realiza de la
manera siguiente.
Se realizan una serie de etapas previamente a la
adquisición de imágenes en tiempo real:
- -
- una etapa de detección del emplazamiento de cada fibra de un conjunto escogido de fibras destinadas a ser utilizadas (o el conjunto de la guía de imagen, o un subconjunto escogido); esta etapa se tiene que realizar por lo menos a cada cambio de guía de imagen;
- -
- una etapa de calibración del índice de inyección en cada fibra, es decir de definición de un índice de inyección propio de cada fibra; y
- -
- una etapa de detección de la imagen de fondo (sin muestra).
En funcionamiento, la optimización del
tratamiento de imagen comprende particularmente las etapas que
consisten, después de la numeración de la señal detectada:
- -
- en definir el flujo real recogido por cada fibra es decir que proviene sólo de la muestra, después corrección en función del índice de inyección propio de la fibra y de la sustracción de la imagen del fondo, para obtener una señal corregida;
- -
- luego en efectuar una reconstrucción de la imagen a partir de esta señal corregida, con el fin de transformar particularmente una imagen que presenta un mosaico de fibras en una imagen sin fibras aparentes.
Según la invención, estas dos últimas etapas
deben ser realizables en tiempo real. En cuanto a la corrección de
la señal, ésta puede hacerse en tiempo real gracias a un tratamiento
adaptado a la estructura de la señal observada y un algoritmo
optimizado. En cuanto a la reconstrucción de la imagen, puede
hacerse gracias a la elección de un número de operaciones por píxel
realizables en tiempo real permitiendo obtener el resultado deseado
en términos de calidad de imagen. Un filtrado gaussiano de paso bajo
representa un buen compromiso entre la complejidad del tratamiento,
la calidad del resultado y el tiempo de cálculo.
Para ganar tiempo y aumentar la complejidad del
tratamiento correspondiente a la reconstrucción de la imagen, se
puede aumentar también la capacidad de procesamiento del material,
por ejemplo utilizando una carta de procesamiento específico y/o
arquitectura paralela como un multiprocesador.
La invención presente también propone un equipo
tal como y como se define en la reivindicación 13.
La invención presente será mejor comprendida y
otras ventajas aparecerán a la vista de la descripción que va
seguida de un ejemplo de realización, descripción hecha en
referencia a los dibujos adjuntados sobre los cuales:
- La figura 1 representa esquemáticamente un
ejemplo de realización de equipo de procesamiento de imágenes
confocal de fluorescencia que comprende una cabeza de
focalización;
- La figura 2 es un esquema funcional del equipo
de la figura 1.
Según el ejemplo escogido y representado sobre
las figuras 1 y 2, el equipo contiene:
- -
- Una fuente de luz 1;
- -
- Medios de configuración 2 del haz de excitación;
- -
- Medios de separación 3 de longitudes de onda;
- -
- Medios de exploración 4;
- -
- Medios de inyección de haz 5;
- -
- Una guía de imagen 6 constituida por fibras ópticas flexibles;
- -
- Una cabeza óptica de focalización 7;
- -
- Medios de rechazo 8 del haz de excitación;
- -
- Medios de focalización 9 de la señal de fluorescencia;
- -
- Medios de filtración espacial 10 de la señal de fluorescencia;
- -
- Medios de detección 11 de la señal de fluorescencia; y
- -
- Medios de procesamiento electrónico e informático 12 de la señal detectada de fluorescencia y de visualización.
Estos diferentes elementos son detallados a
continuación.
La fuente de luz 1 es un láser que emite en una
longitud de onda de excitación que permite excitar una gran gama de
fluoróforos, por ejemplo 488 nm. Para optimizar la inyección en una
de las fibras de la guía de imagen 6, el haz de excitación es
circular para poder inyectar una fibra de sección también circular
y, para optimizar el índice de inyección, el láser es
preferentemente monomodo longitudinal para presentar el mejor frente
de onda posible para la inyección en una fibra óptica débilmente
multimodo. El láser emite de manera continua, y de manera estable
(el ruido más débil posible, < 1%). La potencia de salida
disponible es del orden de 20 mW. En calidad de ejemplos, se puede
utilizar un láser de pozos cuánticos (VCSEL), un láser sólido
bombeado por diodo, un diodo láser o incluso un láser de gas como el
Argón.
En la salida de la fuente 1, están colocados los
medios de configuración 2 del haz láser de excitación. Están
constituidos por un sistema óptico afocal de engrandecimiento
diferente de 1, compuesto por dos lentes L1 y L2 que permiten
modificar el diámetro del haz láser. El engrandecimiento se calcula
de modo que el diámetro del haz sea adaptado a los medios de
inyección 5 en una fibra.
El haz láser de excitación devuelto obtenido es
dirigido luego hacia los medios 3 previstos para separar las
longitudes de ondas de excitación y de fluorescencia. Se trata por
ejemplo de un filtro dicroico que tiene una eficacia de transmisión
del 98 al 99% de la longitud de onda de excitación y que refleja
pues sensiblemente las otras longitudes de onda. La señal de
fluorescencia, tomando de regreso el mismo camino óptico que la
señal de excitación (carácter confocal), será así enviada
prácticamente totalmente hacia la vía de detección
(8-11). Los medios de rechazo 8 colocados sobre la
vía de detección sirven para eliminar totalmente las 1 al 2%
reflexiones parásitas en la longitud de onda de excitación 488 nm
que pasan hacia la vía de detección (por ejemplo un filtro de
rechazo en 488 nm, un filtro pasa banda que permite por ejemplo sólo
una transmisión entre 500 y 600 nm, o un filtro
paso-alto que permite una transmisión por encima de
500 nm).
Los medios de barrido 4 repiten luego el haz de
excitación. Según el ejemplo escogido y representado sobre la figura
1, estos medios comprenden un espejo M1 que resuena en 4 KHz que
sirven para desviar el haz horizontalmente y entonces realizar las
líneas de la imagen, de un espejo M2 galvanométrico en 15 Hz que
sirve para desviar el haz verticalmente y entonces realizar la trama
de la imagen; y de dos sistemas afocales de engrandecimiento
unitario, AF1 situado entre ambos espejos y AF2 situado después del
espejo M2, estos sistemas afocales se utilizan para conjugar los
planos de rotación de ambos tipos de espejo M1 y M2 con plano de
inyección en una de las fibras. Según la invención, la velocidad de
barrido se determina para permitir una observación de los tejidos
in vivo in situ en tiempo real. Para eso, el barrido debe ser
bastante rápido para que haya por lo menos 12 imágenes/seg.
visualizadas en la pantalla para un modo de visualización de 640 x
640 píxeles que correspondan al modo más lento. Para los modos de
visualización que tengan menos píxeles, el número de imágenes
adquiridas por segundo será superior así siempre a 12 imágenes/seg.
Como variante, los medios de exploración pueden comprender
particularmente un espejo rotativo, componentes integrados de tipo
MEMs (espejos de barrido X e Y), o un sistema acústico-óptico.
El haz de excitación desviado en la salida de
los medios de barrido es dirigido hacia los medios ópticos 5 con el
fin de ser inyectado en una de las fibras de la guía de imagen 6.
Estos medios 5 están constituidos aquí por dos conjuntos ópticos E1
y E2. El primer conjunto óptico E1 permite corregir en parte las
aberraciones ópticas en el borde de campo de los medios de
exploración 4, siendo la inyección así optimizada sobre el conjunto
del campo óptico (tanto en el centro como en e! borde). El segundo
conjunto óptico E2 está destinado a realizar la inyección
propiamente dicha. Su focal y su abertura numérica han sido
escogidas para optimizar e! índice de inyección en las fibras
ópticas de la guía 6. Según un modo de realización que permite
obtener el criterio de acromaticidad, el primer conjunto E1 está
constituido por un doblete de lentes acromáticas, y el segundo
conjunto E2 de dos dobletes de lentes acromáticas seguido por una
lente situada cerca de la guía de imagen. Como variante, esta óptica
de inyección podría estar constituida por cualquier otro tipo de
ópticas estándares, como por ejemplo dos tripletes, o por lentes de
gradiente de índice o bien de un objetivo de microscopio (no
obstante más costoso).
La guía de imagen 6 está constituida por un gran
número de fibras ópticas flexibles (algunas decenas de millares),
por ejemplo 30.000 fibras de 2 \mum de diámetro y espaciadas por
3,3 \mum. En la práctica, se puede utilizar o el conjunto de las
fibras de la guía de imagen, o un subconjunto escogido de estas
fibras, por ejemplo centrado.
En la salida de la fibra óptica, el haz láser de
excitación es enfocado por la cabeza óptica 7 en la muestra 13 en un
punto 14 situado a una profundidad determinada situada entre algunas
decenas de \mum y una centena de \mum, con relación a la
superficie 15 de la muestra en cuyo contacto está destinada a ser
colocada la cabeza óptica. Esta profundidad puede ser por ejemplo de
40 \mum. La cabeza óptica permite pues enfocar el flujo saliente
de la guía de imagen en la muestra, pero igualmente recoger el flujo
de fluorescencia que vuelve de la muestra. La cabeza óptica posee un
engrandecimiento de 2,4 y una abertura numérica sobre la muestra de
0,5. Estos dos parámetros son escogidos con el fin de que la señal
de vuelta se haga únicamente en la fibra óptica que haya transmitido
la señal de excitación y no en fibras adyacentes y conservar así la
filtración confocal con ayuda de una fibra. Con estos valores de
engrandecimiento y de abertura numérica, la resolución axial es del
orden de 10 \mum y la resolución lateral del orden de 1,4 \mum.
La abertura numérica se escoge también para optimizar el número de
fotones recuperados que debe ser el más grande posible. La cabeza
óptica puede estar constituida por ópticas clásicas (doblete,
triplete, asférica) y/o de lentes de gradiente de índice (GRIN) y/o
de lentes difractivas, presentando una calidad óptica y un
cromatismo adaptados a la confocalidad, es decir minimizando las
aberraciones ópticas, lo que llevaría sino particularmente a
degradaciones sobre la profundidad de campo y por consiguiente sobre
la resolución axial del equipo. En funcionamiento, la cabeza óptica
está destinada a ser puesta en contacto con la muestra 13. Esta
última es un tejido biológico o un cultivo celular. La expresión de
la fluorescencia se realiza o por un fluoróforo que se inyecta
(fluorescencia sistémica), o por un fluoróforo fabricado por la
misma célula por modificación de un gen (fluorescencia transgénica).
En estos dos casos, el fluoróforo remite fotones sobre una banda
espectral más o menos grande que puede ir de una decena de
nanómetros a más de una centena de nanómetros.
Sobre la vía de detección, la señal de
fluorescencia, en la salida del filtro de rechazo 8, es enfocada
luego por los medios 9, constituidos por ejemplo por una lente de
detección, en un orificio de filtración de los medios de filtración
espacial 10. El/La focal de la lente de detección se calcula para
que la señal de fluorescencia que provenga de una fibra sea de la
medida o ligeramente inferior a la del orificio de filtración. Este
último permite conservar la luz de fluorescencia que proviene sólo
de la fibra iluminada por el haz incidente. Permite rechazar la luz
que habría podido ser acoplada en las fibras adyacentes a la que
está iluminada. La medida del orificio se calcula para que la imagen
de una fibra quepa perfectamente en ella. En este caso, es de 20
\mum. Por otro lado, siempre en vías de optimizar la cantidad de
fotones que atraviesan el orificio de filtración, y pues el flujo
detectado, los medios de barrido 4, los medios de inyección 5, los
medios de focalización 7 de la cabeza óptica, y los medios de
detección 8, 9 y 10 son adaptados al fluoróforo detectado: estos
medios son escogidos por ser bastante acromáticos para recoger
fotones sobre la banda más ancha de emisión del fluoróforo.
Los medios de detección 11 tienen una
sensibilidad máxima en las longitudes de onda de fluorescencia
estudiadas. Se puede utilizar por ejemplo un fotodiodo de avalanchas
(APD) o bien un fotomultiplicador. Por otro lado, según la
invención, la banda pasante se escoge para optimizar el tiempo de
integración de la señal de fluorescencia. Es de 1,5 MHz, lo que
corresponde a la frecuencia mínima de muestreo de la guía de imagen
con un tiempo de integración optimizado sobre cada píxel.
Los medios de guía electrónicos e informáticos
12 de control, de análisis y de tratamiento numérico de la señal
detectada y de visualización comprenden las cartas siguientes:
- -
- Una carta de sincronización 20 que tiene como funciones:
- -
- controlar de una manera sincronizada el barrido, es decir el movimiento de los espejos línea M1 y trama M2;
- -
- conocer en cualquier momento la posición del spot láser así explorado; y
- -
- administrar todas las demás cartas a través de un microinspector mismo que puede ser dirigido;
- -
- Una carta detector 21 que comprende un circuito analógico que realiza particularmente una adaptación de impedancia, un convertidor analógico numérico luego un componente lógico programable (por ejemplo un circuito FPGA) que conforma la señal;
- -
- Una carta de adquisición numérica 22 que permite tratar un flujo de datos numéricos a frecuencia variable y fijarlo sobre una pantalla 23;
- -
- Una tarjeta gráfica 24.
Como variante, se puede utilizar una sola carta
que reagrupa los caracteres funcionales de estas diferentes
cartas.
El procesamiento de imagen se hace de la manera
siguiente.
Al colocar una guía de imagen en el equipo, una
primera operación se efectúa para reconocer el motivo de las fibras
en la guía de imagen, y conocer luego el emplazamiento real de cada
fibra destinada a ser utilizada.
Se realizan también las operaciones siguientes
previamente a la utilización del equipo:
- -
- La determinación del índice de inyección propio de cada fibra, con la ayuda de una muestra homogénea, este índice de inyección puede variar de una fibra a otra; y
- -
- La medida de la imagen de fondo, efectuada sin muestra.
Estas dos operaciones pueden ser realizadas
regularmente según la frecuencia de utilización del equipo. Los
resultados obtenidos van a ser utilizados para corregir en
funcionamiento la señal numérica en la salida de la carta
detector.
En funcionamiento, según la invención 2 grupos
de tratamientos son efectuados sobre la señal numérica en salida de
la carta detector:
El primer grupo consiste en un primer tiempo en
corregir la señal numérica particularmente para tener en cuenta el
índice propio real de inyección de la fibra de la que proviene dicha
señal y para sustraerle la parte del flujo correspondiente a la
imagen de fondo. Esto permite tratar sólo una señal que corresponde
realmente a la muestra observada. Se utiliza para este grupo de
tratamiento un algoritmo de cálculo clásico que es optimizable para
respetar la restricción del tiempo real.
El segundo grupo consiste luego, a partir de la
señal corregida, en reconstruir la imagen numérica que será
visualizada por el práctico facultativo. El fin del tratamiento
efectuado es ofrecer a la visualización una imagen numérica
reconstituida que no sea simplemente un mosaico de elementos de
imagen correspondiente cada uno a una señal numérica corregida de
una fibra colocada una al lado de la otra, sino ofrecer una imagen
numérica reconstituida que haga desaparecer las fibras. Para esto se
utiliza un algoritmo destinado a efectuar un cierto número de
operaciones sobre cada píxel, el algoritmo se escoge para respetar
la restricción de tiempo real, es decir que debe representar un buen
compromiso entre la complejidad de las operaciones deseadas, la
calidad del resultado que se puede obtener y el tiempo de cálculo.
En calidad de ejemplo, se puede utilizar un algoritmo de filtrado
gaussiano de paso bajo.
El funcionamiento del equipo es el siguiente. La
fuente 1 produce un haz paralelo circular de excitación en una
longitud de onda de 488 nm, que luego es configurado en el sistema
afocal 2 con el fin de darle la medida adecuada para la mejor
inyección posible en el núcleo de una fibra. Este haz es enviado
luego hacia el sistema de separación dicroica 3 que refleja la
longitud de onda de excitación. El haz incidente es luego desviado
angularmente en el tiempo en ambas direcciones del espacio por el
sistema de barrido optomecánico de espejos 4, e inyectado gracias a
los medios ópticos de inyección 5 en una de las fibras de la guía de
imagen 6. Los medios electrónicos 12 sirven para controlar la
inyección en un instante determinado de una de las fibras ópticas de
la guía de imagen desviando angularmente el haz por medio de los
espejos, y este punto por punto para una línea determinada, y línea
tras línea, para constituir la imagen. En la salida de la guía, la
luz que emerge de la fibra inyectada es enfocada en la muestra
gracias a la cabeza óptica 7 en un punto situado en una profundidad
determinada situada sensiblemente entre algunas decenas de \mum y
una centena de \mum. Gracias al barrido, la muestra es iluminada
punto por punto. A cada instante, el spot que ilumina el tejido
emite entonces una señal de fluorescencia que tiene la
particularidad de ser desviada hacia longitudes más grandes de onda.
Esta señal de fluorescencia es captada por la cabeza óptica 7, luego
sigue el camino inverso del haz de excitación hasta el filtro
dicroico 3 que va a transmitir la señal de fluorescencia hacia la
vía de detección. Las reflexiones parásitas que se producen en la
longitud de onda de excitación van luego a ser rechazadas por el
filtro de rechazo 8. Finalmente, la señal de fluorescencia es
enfocada en el orificio de filtración 10 para seleccionar sólo la
luz que proviene de la fibra excitada y los fotones son detectados
por el fotodiodo de avalancha 11. La señal detectada es luego
digitalizada y corregida. Las señales detectadas, unas después de
las otras, son tratadas en tiempo real gracias al tratamiento de
imagen descrito más arriba para permitir la reconstrucción de una
imagen en tiempo real visible en la pantalla.
La guía de imagen 6 utilizada para este equipo
puede estar compuesta sensiblemente de 5.000 a 100.000 fibras
ópticas flexibles, según el diámetro exterior de la guía que se
desea, que siendo la misma función de la aplicación aludida
(endoscopia, medida de campo deseado, etc.). Puede tratarse por
ejemplo de guías de imágenes comercializadas por la sociedad
FUJIKURA. El diámetro de núcleo de las fibras está preferentemente
comprendido entre 1 y 4 \mum. Esto conduce a una divergencia de
haz en la salida de la fibra que presenta un ángulo de
aproximadamente 18º para una abertura numérica de 0,42 en el aire.
Un diámetro de núcleo de 1 \mum puede ser obtenido gracias a un
procedimiento de estiramiento del extremo del conjunto de la guía de
imagen. El extremo de la guía 6 es pulido y no contiene medios
ópticos. El pulimento tiene por objeto conferir el mismo estado de
superficie a la cara de la guía y entonces sobre las fibras desnudas
en contacto con el tejido para, por una parte que el fondo de la
imagen obtenido sea lo más homogéneo posible y, por otra parte, para
suprimir los eventuales problemas de adherencia de las fibras con
tejido que correría peligro de estropearlo. El pulimento puede ser
plano o redondeado para encajar con la forma del tejido. La abertura
numérica de cada fibra óptica es preferentemente escogida como más
la grande posible para recoger el máximo de fotones de
fluorescencia, es decir por ejemplo de 0,42. La distancia entre
núcleos confiere la resolución lateral de la imagen obtenida
(distancia entre dos puntos de la imagen). Cuanto más pequeña sea
esta distancia, mejor será la resolución, en cambio esto se hará en
detrimento de la medida del campo que hay que convertir en imágenes.
Conviene entonces encontrar un buen compromiso entre el número de
fibras de la guía y la distancia entre núcleos entre las fibras para
obtener una buena resolución lateral (entre 2 y 8 \mum) con una
medida de campo apropiada para observar los elementos de los
elementos tisulares deseados.
Dos ejemplos de guías que pueden convenir según
la invención se dan a continuación:
Claims (25)
1. Procedimiento para realizar una imagen
confocal de fluorescencia in vivo in situ, el procedimiento
utiliza una guía de imagen hecha de varios millares de fibras
ópticas y consiste en barrer punto por punto un tejido en un plano
subsuperficial, cada punto correspondiente a una señal de excitación
emitida por una fuente continua, desviada e inyectada en una de las
fibras ópticas de dicho haz luego enfocada a la salida de dicha
fibra en dicho plano, cada punto emitiendo de vuelta una señal de
fluorescencia recogida por dicha fibra óptica, luego detectada y
digital izada para formar un elemento de imagen, el procedimiento
comporta las siguientes etapas:
- -
- se desvía la señal de excitación a una velocidad que corresponde a la adquisición de un mínimo de 12 imágenes por segundo en el caso de un modo de visualización máxima de 640 x 640 píxeles,
- -
- se detecta la señal de fluorescencia a una frecuencia de detección superior o igual a una frecuencia mínima de preparación de muestreo de las fibras una por una que es sensiblemente igual a 1,5 MHz para dicho mínimo de 12 imágenes por segundo en el caso de un modo de visualización de 640 x 640 píxeles.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado por una abertura numérica de la óptica de
focalización comprendida sensiblemente entre 0,5 y 1.
3. Procedimiento según una de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por que se ajusta
una velocidad de desviación del haz de excitación determinando una
frecuencia de resonancia rápida de un espejo línea resonante y una
frecuencia de resonancia lenta de un espejo trama
galvanométrico.
4. Procedimiento según una de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por que se
utilizan medios ópticos de desviación, de inyección, de focalización
y de detección que presentan un grado de acromaticidad que permite
recoger fotones sobre toda la anchura de la banda de emisión del
fluoróforo excitado.
5. Procedimiento según una de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por una eficacia
cuántica de la detección en las longitudes de ondas de fluorescencia
que hay que detectar de al menos el 50%.
6. Procedimiento según una de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por una etapa
previa de detección del emplazamiento de las fibras de la guía de
imagen destinadas a ser utilizadas.
7. Procedimiento según una de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por una etapa
previa de determinación del índice real de inyección propio de cada
fibra.
8. Procedimiento según una de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por una etapa
previa de determinación del flujo recogido correspondiente a la
imagen de fondo.
9. Procedimiento según las reivindicaciones 7 y
8, caracterizado por una etapa de corrección de la señal
digital izada procedente de una fibra por sustracción del flujo
correspondiente a la imagen de fondo y adaptación al índice real de
inyección propio de dicha fibra.
10. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado por una etapa de reconstrucción de la imagen a
partir de la señal corregida.
11. Procedimiento según la reivindicación 10,
caracterizado por que la etapa de reconstrucción de imagen
comprende un filtrado gaussiano de paso bajo.
12. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, caracterizado por que la señal
de excitación está adaptada a un fluoróforo de tipo endógeno del
tejido celular,
13. Equipo de procesamiento de imágenes de
fluorescencia confocal fibrada in vivo in situ para la puesta
en aplicación del procedimiento según una de las reivindicaciones
precedentes, que comprende:
- -
- una guía de imagen (6) que comprende varios millares de fibras ópticas;
- -
- una fuente (1) que emite continuamente en la longitud de onda de excitación por lo menos de un fluoróforo dirigido,
- -
- medios de barrido (4) y de inyección (5) fibra por fibra en el tiempo del haz de excitación producido por la fuente (1) en líneas y en columnas en un plano XY correspondiente a la sección de entrada de la guía de imagen (6);
- -
- medios de separación (3) de la longitud de onda de excitación y de las longitudes de onda de fluorescencia;
- -
- medios de detección (11) de la señal de fluorescencia; y
- -
- medios de tratamiento (12) de la señal detectada permitiendo la realización de una imagen;
en el extremo distal está colocada una cabeza
óptica (7), destinada a ser puesta en contacto con el tejido
observado (13), que permite enfocar el haz de excitación, los medios
de exploración están adaptados a desplazar el haz de excitación a
una velocidad que corresponde a la obtención de un mínimo de 12
imágenes por segundo en el caso de un modo de visualización máxima
de 640 x 640 píxeles; y
los medios de detección presentan una banda
pasante cuya frecuencia es superior o igual a una frecuencia mínima
de preparación de muestreo de las fibras una por una que es igual a
1,5 MHz para dicho mínimo de 12 imágenes por segundo en el caso de
un modo de visualización de 640 x 640 píxeles.
\vskip1.000000\baselineskip
14. Equipo según la reivindicación 13,
caracterizado por que el haz de excitación producido por la
fuente (1) es monomodo longitudinal que presenta una calidad de
frente de onda óptima para la inyección en una fibra óptica
débilmente multimodo.
15. Equipo según la reivindicación 13 ó 14,
caracterizado por que la sección de una fibra es circular, el
haz de excitación producido por la fuente es circular para optimizar
la inyección en una fibra.
16. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 15, caracterizado por medios de configuración (2) del haz
utilizados en la salida de la fuente (1) para configurar el haz de
excitación con el fin de adaptarlo a los medios de inyección (5) en
la guía de imagen (6).
17. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 16, caracterizado por que los medios para separar las
longitudes de onda de excitación y de fluorescencia comprenden un
filtro dicroico (3) que tiene un máximo de eficacia en la longitud
de onda de excitación.
18. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 17, caracterizado por medios de rechazo (8) colocados
previamente a los medios de detección (11) y adaptados para eliminar
la longitud de onda de excitación.
19. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 18, caracterizado por que los medios de exploración (4)
comprenden un espejo línea resonante (M1), un espejo galvanométrico
trama (M2), un primer sistema óptico afocal (AF1) de
engrandecimiento unitario que permite conjugar ambos espejos y un
segundo sistema afocal (AF2) de engrandecimiento unitario que
permite conjugar los planos de rotación de ambos espejos con el
plano de inyección en una de las fibras.
20. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 19, caracterizado por que los medios ópticos de la cabeza
óptica (7), los medios de barrido (4), los medios de inyección (5) y
los medios de detección presentan un grado de acromatización que
permite recoger fotones sobre toda la anchura de la banda espectral
de la señal de fluorescencia.
21. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 20, caracterizado por que los medios de inyección (5)
comprenden dos conjuntos ópticos (E1, E2), el primer conjunto (E1)
está adaptado para corregir las aberraciones ópticas en reborde de
campo de los medios de barrido (4) y el segundo conjunto (E2) está
adaptado para realizar la inyección propiamente dicha en una de las
fibras de la guía de imagen (6).
22. Equipo según la reivindicación 21,
caracterizado por que el primer conjunto óptico (E1)
comprende un doblete y el segundo conjunto óptico (E2) comprende dos
dobletes seguido de una lente.
23. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 22, caracterizado por un orificio de filtración (10)
colocado antes de los medios de detección (11) cuyo diámetro se
escoge para que la imagen de una fibra se inscriba en él.
24. Equipo según la reivindicación 23,
caracterizado por medios de focalización (9) de la señal de
fluorescencia sobre el orificio de filtración (10).
25. Equipo según una de las reivindicaciones 13
a 24, caracterizado por que la fuente está adaptada para
excitar un fluoróforo endógeno presente en el tejido celular.
Applications Claiming Priority (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR0209099 | 2002-07-18 | ||
| FR0209099A FR2842407B1 (fr) | 2002-07-18 | 2002-07-18 | "procede et appareillage d'imagerie de fluorescence confocale fibree" |
| FR0302972A FR2852394B1 (fr) | 2003-03-11 | 2003-03-11 | Procede et appareillage d'imagerie de fluorescence fibree haute resolution |
| FR0302972 | 2003-03-11 | ||
| PCT/FR2003/002196 WO2004008952A1 (fr) | 2002-07-18 | 2003-07-11 | Procede et appareillage d'imagerie de fluorescence haute resolution par fibre optique et notamment d’imagerie confocale |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2347871T3 true ES2347871T3 (es) | 2010-11-24 |
Family
ID=30772000
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES03755595T Expired - Lifetime ES2347871T3 (es) | 2002-07-18 | 2003-07-11 | Procedimiento y equipo de procesamiento de imágenes de fluorescencia de alta resolución por fibra óptica y particularmente de procesamiento de imágenes confocal. |
Country Status (13)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US7447539B2 (es) |
| EP (2) | EP1986031A3 (es) |
| JP (1) | JP2005532883A (es) |
| KR (1) | KR20050021492A (es) |
| CN (1) | CN100407985C (es) |
| AT (1) | ATE468069T1 (es) |
| AU (1) | AU2003273437B2 (es) |
| CA (1) | CA2491748C (es) |
| DE (1) | DE60332630D1 (es) |
| ES (1) | ES2347871T3 (es) |
| FR (1) | FR2842407B1 (es) |
| IL (1) | IL166151A0 (es) |
| WO (1) | WO2004008952A1 (es) |
Families Citing this family (56)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005089637A2 (en) | 2004-03-11 | 2005-09-29 | The General Hospital Corporation | Method and system for tomographic imaging using fluorescent proteins |
| EP1797818A3 (en) * | 2004-03-11 | 2008-02-13 | The General Hospital Corporation | Method and system for tomographic imaging using fluorescent proteins |
| FR2868279B1 (fr) * | 2004-04-02 | 2006-06-09 | Mauna Kea Technologies Soc Par | Procede et systeme de mesure de vitesse du flux sanguin |
| FR2871358B1 (fr) * | 2004-06-14 | 2007-02-09 | Mauna Kea Technologies Soc Par | Procede et systeme d'imagerie microscopique de fluorescence fibree multimarquage |
| EP1806999A1 (en) * | 2004-09-24 | 2007-07-18 | ART Advanced Research Technologies Inc. | Method for fluorescence tomographic imaging |
| FR2877103B1 (fr) * | 2004-10-22 | 2012-02-10 | Mauna Kea Technologies | Systeme et procede d'imagerie microscopique multiphotonique fibre d'un echantillon |
| US8346346B1 (en) | 2005-01-24 | 2013-01-01 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Optical analysis system and approach therefor |
| US8788021B1 (en) | 2005-01-24 | 2014-07-22 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior Univerity | Live being optical analysis system and approach |
| US7307774B1 (en) | 2005-01-24 | 2007-12-11 | The Board Of Trustees Of The Leland Standford Junior University | Micro-optical analysis system and approach therefor |
| US20070173718A1 (en) * | 2005-08-15 | 2007-07-26 | The Board Of Regents Of The University Of Texas System | Needle Biopsy Imaging System |
| US7414729B2 (en) * | 2005-10-13 | 2008-08-19 | President And Fellows Of Harvard College | System and method for coherent anti-Stokes Raman scattering endoscopy |
| FR2899088B1 (fr) * | 2006-03-31 | 2008-06-27 | Mauna Kea Technologies Soc Par | "microscopie de fluorescence fibree a base de bleu de methylene." |
| GB2443203B (en) * | 2006-06-26 | 2010-04-07 | Osspray Ltd | Apparatus for detecting infected tissue |
| FR2904927B1 (fr) * | 2006-08-17 | 2018-05-18 | Mauna Kea Technologies | Utilisation d'un systeme d'imagerie par fluorescence confocale fibre in vivo in situ, systeme et procede d'imagerie par fluorescence confocale fibres in vivo in situ |
| US8099156B1 (en) | 2006-09-15 | 2012-01-17 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Cochlear optical analysis system and approach therefor |
| JP4892316B2 (ja) | 2006-11-06 | 2012-03-07 | 株式会社フジクラ | マルチコアファイバ |
| JP5165443B2 (ja) | 2007-06-14 | 2013-03-21 | 株式会社フジクラ | 石英系マルチコア光ファイバ |
| US8068899B2 (en) | 2007-07-03 | 2011-11-29 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Method and system of using intrinsic-based photosensing with high-speed line scanning for characterization of biological thick tissue including muscle |
| FR2922308B1 (fr) * | 2007-10-11 | 2012-03-16 | Mauna Kea Technologies | Dispositif d'imagerie modulaire, module pour ce dispositif et procede mis en oeuvre par ce dispositif |
| CA2721271C (en) | 2008-04-09 | 2017-12-12 | Julian Itzcovitz | A medical system comprising a percutaneous probe |
| WO2009136613A1 (ja) * | 2008-05-08 | 2009-11-12 | 株式会社 日立ハイテクノロジーズ | 自動分析装置 |
| CA2732962A1 (en) | 2008-08-04 | 2010-02-11 | University Of Utah Research Foundation | Dye application for confocal imaging of cellular microstructure |
| JP5762983B2 (ja) * | 2009-03-12 | 2015-08-12 | マウナ ケア テクノロジーズ | ファイバプローブ用コネクタおよび該コネクタに適応されたファイバプローブ |
| CN102036602B (zh) * | 2010-03-02 | 2012-09-05 | 清华大学 | 一种可空间编码的并行激发系统及方法 |
| KR101207695B1 (ko) | 2010-08-11 | 2012-12-03 | 서울대학교산학협력단 | 형광 및 라만 신호 표적에 대한 형광 및 라만 신호 동시검출방법 및 이를 이용한 표적 동시검출용 의학영상장치 |
| US9833145B2 (en) | 2010-08-11 | 2017-12-05 | Snu R&Db Foundation | Method for simultaneously detecting fluorescence and raman signals for multiple fluorescence and raman signal targets, and medical imaging device for simultaneously detecting multiple targets using the method |
| CN103327880B (zh) * | 2011-01-31 | 2015-08-26 | 奥林巴斯株式会社 | 荧光观察装置 |
| EP2785250A4 (en) | 2011-11-28 | 2015-07-29 | Univ Leland Stanford Junior | SYSTEM AND METHOD FOR SARCOME REPRESENTATION THROUGH LENS-BASED MICROSCOPY |
| JP6349300B2 (ja) | 2012-04-13 | 2018-06-27 | マウナ ケア テクノロジーズ | 小型走査システム |
| JP5959652B2 (ja) * | 2012-09-11 | 2016-08-02 | オリンパス株式会社 | 散乱光計測装置 |
| JP6086741B2 (ja) * | 2013-01-29 | 2017-03-01 | オリンパス株式会社 | 走査型観察装置とその作動方法 |
| CN103169446B (zh) * | 2013-04-15 | 2016-08-10 | 叶衍铭 | 适用于内窥镜的早期癌症可疑病灶检查装置 |
| EP3132738A4 (en) * | 2014-04-17 | 2018-01-10 | Olympus Corporation | Light source device |
| US10016136B2 (en) | 2014-06-20 | 2018-07-10 | Optomak, Inc. | Image relaying cannula with detachable self-aligning connector |
| EP3206557B1 (en) * | 2014-10-17 | 2020-06-03 | C Urchin Technologies LLC | Lensless endoscope and other imaging devices |
| US11154186B2 (en) * | 2015-07-31 | 2021-10-26 | University Of Utah Research Foundation | Devices, systems, and methods for imaging and treating a selected tissue |
| CN105534470B (zh) * | 2015-12-22 | 2018-01-30 | 精微视达医疗科技(武汉)有限公司 | 一种共焦显微内窥镜系统及其调节方法 |
| EP3413840A1 (en) | 2016-02-09 | 2018-12-19 | AMO Groningen B.V. | Progressive power intraocular lens, and methods of use and manufacture |
| CN115919266A (zh) | 2016-03-08 | 2023-04-07 | 恩斯派克特拉健康公司 | 皮肤疾病的非侵入式检测 |
| WO2017174998A1 (en) | 2016-04-06 | 2017-10-12 | The University Court Of The University Of Edinburgh | Endoscopic imaging apparatus and method |
| CN109313326B (zh) * | 2016-05-19 | 2021-09-17 | 株式会社尼康 | 显微镜 |
| GB201611819D0 (en) | 2016-07-07 | 2016-08-17 | Univ Court Of The Univ Of Edinburgh The | Imaging method and apparatus |
| CN110494076B (zh) | 2017-02-01 | 2023-07-21 | 犹他大学研究基金会 | 用于标测心脏组织的装置和方法 |
| EP3614915A4 (en) | 2017-04-28 | 2021-01-20 | Enspectra Health, Inc. | SARCOMAS IMAGING AND MEASUREMENT SYSTEMS AND METHODS |
| GB201707239D0 (en) | 2017-05-05 | 2017-06-21 | Univ Edinburgh | Optical system and method |
| CN111095074B (zh) * | 2017-07-24 | 2023-06-09 | 密歇根大学董事会 | 3轴侧视共聚焦荧光显微内镜 |
| CN108490597A (zh) * | 2018-06-05 | 2018-09-04 | 张红明 | 一种基于光纤耦合器的共聚焦显微系统 |
| CN108937824A (zh) * | 2018-08-02 | 2018-12-07 | 深圳大学 | 一种内窥成像装置和荧光寿命分布图像的获取方法 |
| CN113473900B (zh) | 2018-11-13 | 2024-09-24 | 恩斯派克特拉健康公司 | 用于生成深度剖面的方法和系统 |
| WO2020112521A1 (en) | 2018-11-29 | 2020-06-04 | Leica Microsystems Inc. | Compact diffraction limited near infrared (nir) spectrometers and related detectors |
| KR102135593B1 (ko) | 2018-11-29 | 2020-07-20 | 재단법인대구경북과학기술원 | 다중모드 현미경 |
| EP3911262A1 (en) * | 2019-01-18 | 2021-11-24 | Institut Hospitalo-Universitaire De Strasbourg | System and method for medical navigation |
| CN109807471B (zh) * | 2019-02-01 | 2024-03-26 | 佛山科学技术学院 | 一种激光打标装置及方法 |
| JP2023507412A (ja) | 2019-12-17 | 2023-02-22 | ユニバーシティ オブ ユタ リサーチ ファウンデーション | カテーテル挿入式光散乱分光法を用いた心臓組織性状診断 |
| CN111736332B (zh) * | 2020-07-02 | 2025-02-21 | 中国科学技术大学 | 一种光纤扫描成像装置及方法 |
| US12557989B2 (en) | 2021-03-12 | 2026-02-24 | Stryker European Operations Limited | Neurosurgical methods and systems for detecting and removing tumorous tissue |
Family Cites Families (16)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB1265087A (es) * | 1968-08-27 | 1972-03-01 | ||
| US20020045811A1 (en) * | 1985-03-22 | 2002-04-18 | Carter Kittrell | Laser ablation process and apparatus |
| NL8702071A (nl) * | 1987-09-03 | 1989-04-03 | Philips Nv | Inrichting voor het puntsgewijs aftasten van een voorwerp. |
| US5532873A (en) * | 1993-09-08 | 1996-07-02 | Dixon; Arthur E. | Scanning beam laser microscope with wide range of magnification |
| DE69530072T2 (de) * | 1994-12-08 | 2004-03-04 | Molecular Dynamics, Sunnyvale | System zur fluoreszenzabbildung unter verwendung eines objektivs mit makroabtastung |
| US5813987A (en) * | 1995-08-01 | 1998-09-29 | Medispectra, Inc. | Spectral volume microprobe for analysis of materials |
| JPH0961132A (ja) * | 1995-08-28 | 1997-03-07 | Olympus Optical Co Ltd | 3次元形状計測装置 |
| DE19612536A1 (de) * | 1996-03-29 | 1997-10-02 | Freitag Lutz Dr | Anordnung und Verfahren zur Diagnose von malignem Gewebe durch Fluoreszenzbetrachtung |
| US6388788B1 (en) * | 1998-03-16 | 2002-05-14 | Praelux, Inc. | Method and apparatus for screening chemical compounds |
| WO1999047041A1 (en) * | 1998-03-19 | 1999-09-23 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Fiber-optic confocal imaging apparatus and methods of use |
| FR2783330B1 (fr) * | 1998-09-15 | 2002-06-14 | Assist Publ Hopitaux De Paris | Dispositif d'observation de l'interieur d'un corps produisant une qualite d'observation perfectionnee |
| US6179611B1 (en) * | 1999-01-22 | 2001-01-30 | The Regents Of The University Of California | Dental optical coherence domain reflectometry explorer |
| DE60137599D1 (de) * | 2000-03-10 | 2009-03-19 | Textron Systems Corp | Optische sonden und verfahren zur spektralanalyse |
| US6748259B1 (en) * | 2000-06-15 | 2004-06-08 | Spectros Corporation | Optical imaging of induced signals in vivo under ambient light conditions |
| US7209287B2 (en) * | 2000-09-18 | 2007-04-24 | Vincent Lauer | Confocal optical scanning device |
| ATE454845T1 (de) * | 2000-10-30 | 2010-01-15 | Gen Hospital Corp | Optische systeme zur gewebeanalyse |
-
2002
- 2002-07-18 FR FR0209099A patent/FR2842407B1/fr not_active Expired - Lifetime
-
2003
- 2003-07-11 AT AT03755595T patent/ATE468069T1/de not_active IP Right Cessation
- 2003-07-11 WO PCT/FR2003/002196 patent/WO2004008952A1/fr not_active Ceased
- 2003-07-11 US US10/521,607 patent/US7447539B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2003-07-11 EP EP08159710A patent/EP1986031A3/fr not_active Withdrawn
- 2003-07-11 CN CNB038218151A patent/CN100407985C/zh not_active Expired - Lifetime
- 2003-07-11 DE DE60332630T patent/DE60332630D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2003-07-11 KR KR10-2005-7000838A patent/KR20050021492A/ko not_active Withdrawn
- 2003-07-11 CA CA2491748A patent/CA2491748C/fr not_active Expired - Lifetime
- 2003-07-11 EP EP03755595A patent/EP1523270B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 2003-07-11 AU AU2003273437A patent/AU2003273437B2/en not_active Expired
- 2003-07-11 ES ES03755595T patent/ES2347871T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2003-07-11 JP JP2004522234A patent/JP2005532883A/ja active Pending
-
2005
- 2005-01-05 IL IL16615105A patent/IL166151A0/xx unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CA2491748C (fr) | 2012-10-23 |
| CN1681432A (zh) | 2005-10-12 |
| EP1523270A1 (fr) | 2005-04-20 |
| JP2005532883A (ja) | 2005-11-04 |
| FR2842407A1 (fr) | 2004-01-23 |
| DE60332630D1 (de) | 2010-07-01 |
| AU2003273437A1 (en) | 2004-02-09 |
| EP1986031A2 (fr) | 2008-10-29 |
| US7447539B2 (en) | 2008-11-04 |
| CN100407985C (zh) | 2008-08-06 |
| EP1523270B1 (fr) | 2010-05-19 |
| WO2004008952A9 (fr) | 2012-06-28 |
| KR20050021492A (ko) | 2005-03-07 |
| EP1986031A3 (fr) | 2009-05-20 |
| IL166151A0 (en) | 2006-01-15 |
| FR2842407B1 (fr) | 2005-05-06 |
| AU2003273437B2 (en) | 2008-02-28 |
| WO2004008952A1 (fr) | 2004-01-29 |
| US20050242298A1 (en) | 2005-11-03 |
| ATE468069T1 (de) | 2010-06-15 |
| CA2491748A1 (fr) | 2004-01-29 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2347871T3 (es) | Procedimiento y equipo de procesamiento de imágenes de fluorescencia de alta resolución por fibra óptica y particularmente de procesamiento de imágenes confocal. | |
| ES2247427T3 (es) | Aparato de formacion de imagenes confocal en particular para endoscopio. | |
| US11317787B2 (en) | Catheter-based three-dimensional imaging using swept, confocally aligned planar excitation | |
| ES2396426T3 (es) | Sistema y procedimiento de diagnóstico por imagen microscópica multifotónica fibrada de una muestra | |
| CN101002081B (zh) | 多标记的光纤型荧光显微成像方法和系统 | |
| ES2647468T3 (es) | Equipo de espectroscopia de autofluorescencia subsuperficial | |
| ES2896280T3 (es) | Dispositivo y procedimiento de determinación de una información de polarización y generador de imágenes polarimétricas | |
| US20130324858A1 (en) | Multi-path, multi-magnification, non-confocal fluorescence emission endoscopy apparatus and methods | |
| US20040143190A1 (en) | Mapping neural and muscular electrical activity | |
| KR20170016773A (ko) | 공초점 현미경 및 이를 이용한 영상 처리 방법 | |
| JP2015006437A (ja) | メチレンブルーに基づいた、ファイバーによる蛍光顕微鏡法 | |
| Piyawattanametha et al. | 3-D near-infrared fluorescence imaging using an MEMS-based miniature dual-axis confocal microscope | |
| WO2018092109A1 (en) | Spatial super-resolution apparatus for fluorescence analysis of eye fundus | |
| ES2633649T3 (es) | Dispositivo y procedimiento de endoscopia para una observación simultánea de varias zonas de interés | |
| KR101261271B1 (ko) | 광학 장치 | |
| Kim et al. | High-speed handheld multiphoton multifoci microscopy | |
| Liang | Fiber-optic two-photon endomicroscopy: technology and applications | |
| Girkin | Optical sectioning microscopy and biological imaging | |
| Martín Civiac | Confocal microendoscopy | |
| Deniset et al. | Time-resolved multiphoton multifocal fluorescence microscopy applied to biomedical imaging |