ES2476416T3 - Composición de inmunoglobulina intravenosa - Google Patents

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ES2476416T3 ES06756239.7T ES06756239T ES2476416T3 ES 2476416 T3 ES2476416 T3 ES 2476416T3 ES 06756239 T ES06756239 T ES 06756239T ES 2476416 T3 ES2476416 T3 ES 2476416T3
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Abstract

Un procedimiento de preparación de una composición concentrada de inmunoglobulinas que tiene un título de anticuerpos igual o superior a 1:60.000.000, según se determina por ELISA, para tratar a sujetos vacunados contra, o infectados con, un microorganismo patógeno, que comprende: (a) seleccionar donaciones de sangre o de plasma obtenidas de una población de individuos previamente revacunados contra uno o más antígenos asociados al microorganismo patógeno; (b) determinar el nivel de anticuerpos específicos inmunorreactivos con dicho microorganismo patógeno mediante un inmunoensayo ELISA en dichas donaciones de sangre o de plasma de dichos individuos para identificar a individuos con título muy alto que tienen un título muy alto de dichos anticuerpos específicos; (c) combinar sangre o componentes de la sangre que comprenden inmunoglobulinas sólo de dichos individuos con título muy alto, y (d) purificar y/o concentrar el producto de la etapa (c), para obtener una composición concentrada de inmunoglobulinas, en el que dichos individuos con título muy alto son los que dan la mayor respuesta y que constituyen el 10-15% de dicha población revacunada de a), en el que dicho microorganismo patógeno es un virus de la vaccinia.

Description

Composici�n de inmunoglobulina intravenosa
Campo de la invención
La presente invención se refiere a una composición de inmunoglobulina intravenosa, a un procedimiento para su 5 preparación, a formas de productos que la contienen y a usos terapéuticos de la composición.
Antecedentes de la invención
La vacuna de la viruela contiene virus de la vaccinia vivo, un virus de la familia de Ortopoxvirus que est� estrechamente relacionado con el virus de la variola, el agente que causa la viruela. Los anticuerpos neutralizantes inducidos por la vacuna de la vaccinia presentan protección cruzada para otros ortopoxvirus. Aunque no se ha
10 demostrado nunca la eficacia de la vaccinia en pruebas controladas, los estudios epidemiológicos s� mostraron un mayor nivel de protección frente a la viruela, que persiste durante 5 años o menos tras la vacunación primaria, y una inmunidad substancial, aunque decreciente, que puede persistir durante más de 10 años. Los niveles de anticuerpos tras la revacunación pueden permanecer elevados durante más tiempo, confiriendo un mayor período de inmunidad que el que se produce únicamente tras la vacunación primaria.
15 Para la mayoría de las personas, la vacuna de la vaccinia es segura y efectiva. En una persona no inmune que no est� inmunocomprometida, la respuesta esperada a la vacunación primaria es el desarrollo de una p�pula en el sitio de vacunación 2-5 días después de la administración percut�nea de la vacuna de la vaccinia. La p�pula se vuelve vesicular y luego pustular y alcanza su tamaño máximo en 8-10 días. La pústula se seca y forma una costra, que se separa en 14-21 días después de la vacunación, dejando una cicatriz.
20 La mayoría de las personas experimentan reacciones normales, típicamente leves, a la vacuna, como hinchazón y sensibilidad de los nódulos linfáticos regionales, fiebre, erupciones eritematosas o de urticaria e inoculación accidental. La mayoría de éstos se resuelven sin ningún tratamiento.
Algunas personas pueden experimentar reacciones moderadas o severas, que pueden requerir atención m�dica. Estas complicaciones son raras, pero se producen al menos 10 veces con más frecuencia entre los vacunados por
25 primera vez que entre los revacunados y son más frecuentes entre niños menores de un año y sujetos inmunocomprometidos que entre niños de más edad y adultos. En el pasado, entre 14 y 52 sujetos por millón de personas vacunadas por primera vez experimentaban reacciones potencialmente mortales.
Las siguientes complicaciones de la vacunación con vaccinia requieren atención m�dica:
Eczema vacunal: Erupciones cut�neas serias causadas por infección extendida de la piel. Se produce en
30 pacientes con historia de eczema o dermatitis at�pica. Las lesiones comienzan a aparecer en sitios distantes a medida que el virus se propaga por el organismo. Normalmente, la enfermedad es leve y autolimitante, pero puede ser grave o fatal. Los casos más serios entre los receptores de la vacuna se producen entre los vacunados por primera vez y son independientes de la actividad del eczema subyacente. Vaccinia progresiva (o vaccinia necrosum): Infección progresiva de la piel con necrosis tisular progresiva. La
35 lesión puede progresar durante meses y se pueden desarrollar lesiones secundarias en cualquier otro lugar del cuerpo. La infección es más común en vacunados por primera vez, sujetos inmunocomprometidos y niños y es frecuentemente fatal. La aparición de esta complicación estaba influenciada por la cepa del virus vacunal y era mayor en Europa que en los EE.UU. Vaccinia generalizada: Se caracteriza por una erupción maculopapular eritematosa difusa indiscriminadamente
40 dispersa por el cuerpo. Las p�pulas se convierten en vesículas y se curan en un plazo de 15 días. Se piensa que la vaccinia generalizada se produce como resultado de diseminaci�n circulatoria del virus en individuos normales. La irregularidad de las lesiones y el sistema inmunitario sano de los pacientes afectados diferencian esta enfermedad de la erupción eritematosa y la vaccinia accidental.Encefalitis posvacunal: Inflamación del cerebro. ésta es una complicación rara y seria y aún se desconoce su
45 relación con el virus de la vaccinia. La encefalitis que se produce en niños menores de 2 años se caracteriza por un período de incubaci�n de 6-10 días y se asocia a cambios degenerativos en las células ganglionares, hemorragia perivascular e hiperemia generalizada del cerebro. Los síntomas son los mismos que los asociados a la encefalitis general, incluyendo presión intracraneal, mielitis, convulsiones y parálisis muscular. Una segunda forma de la enfermedad se produce en niños de más edad y adultos. ésta se caracteriza por un período de
50 incubaci�n de 11-15 días y se asocia a signos de una respuesta alérgica con desmielinizaci�n perivascular. La aparición de esta complicación estaba influenciada por la cepa del virus vacunal y era mayor en Europa que en los EE.UU.
Dos efectos adversos emergentes potencialmente fatales de la vacunación contra la viruela son la miopericarditis y los episodios cardíacos isqu�micos. Los pacientes que experimentan enfermedad cardíaca después de la
55 vacunación refieren falta de aire, palpitaciones y dolor de pecho. La muerte por infarto de miocardio es una marcada posibilidad.
En base a la experiencia pasada, se estima que entre 1 y 2 personas de cada millón de personas vacunadas pueden morir como resultado de reacciones mortales a la vacuna.
M�s aún, los sujetos con sistemas inmunitarios debilitados o ciertas afecciones cut�neas tienen más probabilidad de sufrir reacciones severas y son, por lo tanto, excluidos de la vacunación con vaccinia, a menos que hayan estado expuestos al virus de la viruela.
La inmunoglobulina intravenosa (IVIg) es un producto m�dico bien conocido, que consiste en una solución de inmunoglobulina inespec�fica obtenida combinando plasma de una pluralidad de individuos. La inmunoglobulina de la vaccinia (VIG) es una solución de inmunoglobulinas obtenidas de plasma recogido de sujetos que fueron vacunados con la vacuna de la viruela. La solución, por lo tanto, contiene un título relativamente alto de anticuerpos antivaccinia.
La preparación de VIG comúnmente utilizada era un producto intramuscular (im) (VIG-IM) y era producida por Baxter Healthcare Corporation en los 90. Como contenía una gran proporción de proteínas agregadas, se administraba únicamente por vía intramuscular y no se podía utilizar intravenosamente (iv). Dado que los donantes de plasma no son seleccionados en cuanto a niveles elevados de anticuerpos antivaccinia, la eficacia del tratamiento con VIG es limitada y se necesitan grandes volúmenes o múltiples inyecciones para alcanzar un nivel efectivo.
En general, se inyectaba una dosis inicial de 0,6 ml/kg de peso corporal (aproximadamente 100 mg/kg = !7 g/tratamiento para un adulto) intramuscularmente y se determinaba la administración posterior por el curso de la enfermedad. En la complicación grave de la vaccinia, tal como los casos de eczema vacunal y vaccinia progresiva, se usaban 1-10 ml/kg. Estas grandes dosis son divididas en unidades más pequeñas e inyectadas intramuscularmente en múltiples sitios separadas a lo largo del tiempo.
Despu�s de la reciente amenaza de ataque bioterrorista, se ha hecho un importante esfuerzo por producir VIG para administración intravenosa (VIG-IV). Se pueden adquirir preparaciones de VIG-IV (C-VIG; Cangene, AcambisBaxter; Dyn port). No se est� desarrollando actualmente ningún producto similar en la UE. El tratamiento con VIG-IV requiere cuidado m�dico y, por lo tanto, debe ser administrado dentro del marco de un centro m�dico.
La VIG ha estado indicada para implante accidental que conlleve lesiones extensas, eczema vacunal (EV), vaccinia generalizada (VG) y vaccinia progresiva (VP). No se recomienda la VIG para casos leves de implante accidental, vaccinia generalizada leve o limitada, eritema multiforme o encefalitis posvacunaci�n. La VIG puede también ser útil en el tratamiento de la vaccinia ocular que se produce como resultado de un implante accidental. Cuando hay presencia de vaccinia ocular con queratitis, la consideración de la VIG debería incluir el posible mayor riesgo de cicatrización de la córnea.
Se sugirió que la inmunoglobulina de la vaccinia también tiene valor en la profilaxis postexposici�n de la viruela cuando se da dentro de la primera semana tras la exposición y concurrentemente con vacunación. La vacunación sola est� recomendada para quienes no tienen contraindicaciones para la vacuna, a menos que haya transcurrido más de una semana desde la exposición. En este momento, se recomienda la administración de ambos productos, si se dispone de ellos.
La Patente EE.UU. N� 4.174.388 (McAleer y col.) desvela inmunoglobulina de la hepatitis B preparada a partir de individuos que exhiben un aumento en el anticuerpo para la superficie de la hepatitis B de al menos 2.000 unidades PHA/ml tras inmunizaci�n con ant�geno de la superficie de la hepatitis B.
La Patente EE.UU. N� 4.617.379 (Dobkin y col.) desvela la preparación de globulina de suero hiperinmune para citomegalovirus (CMV). Se prepara la globulina s�rica a partir de plasma fresco normal de donantes que no han sido vacunados con una vacuna para CMV y que han sido cribados en cuanto a títulos superiores a los normales de anticuerpo para CMV. Se reúne el plasma que contiene un título elevado de anticuerpo para CMV y se fracciona para obtener el producto.
La Patente EE.UU. N� 6,692,739 (Patti y col.) desvela un procedimiento y una composición para la inmunizaci�n pasiva de pacientes infectados con, o susceptibles de tener una infección por, bacterias Staphylococcus. Se prepara la composición a partir de un pool de plasma de donantes obtenido combinando muestras individuales de sangre o de componentes de la sangre que tienen títulos superiores a los normales de anticuerpos naturales para un ant�geno de las bacterias Staphylococcus. Se obtienen las muestras de sangre o de componentes de la sangre a partir de una población normal no vacunada. En una realización alternativa, se administran proteínas o p�ptidos seleccionados a un huésped para inducir la expresión de anticuerpos deseados, se recupera el pool de suero o plasma de título elevado aumentado del huésped y se administra este pool a un paciente que lo necesite, eventualmente tras purificación y concentración.
WO 03/049117 desvela una inmunoglobulina inyectable por vía intravenosa que tiene un elevado título de anticuerpo para Ortopoxvirus. Se prepara la inmunoglobulina vacunando a una pluralidad de donantes con una vacuna de Ortopoxvirus, aislando el plasma de cada uno de los donantes después de un período de tiempo suficiente para permitir la producción de anticuerpos contra la vacuna del Ortopoxvirus y preparando una inmunoglobulina inyectable por vía intravenosa a partir del plasma. También se desvela un procedimiento para tratar o prevenir una
infecci�n por Ortopoxvirus y un procedimiento de tratamiento o mejoramiento de los síntomas asociados a la reacción adversa a la vacunación con Ortopoxvirus.
Resumen de la invención
Se ha descubierto, sorprendentemente ahora, que un cierto porcentaje de una población vacunada tiene un título excepcionalmente alto de anticuerpos y que este elevado título se mantiene de manera estable a lo largo del tiempo después de sucesivas plasmaf�resis. Se ha aplicado este descubrimiento en la presente invención para obtener un nuevo procedimiento y producto.
As�, en un aspecto, la presente invención proporciona un procedimiento para preparar una composición concentrada de inmunoglobulinas que tiene un título de anticuerpo igual o superior a 1:60.000.000 determinado por ELISA, para tratar a sujetos vacunados contra, o infectados con, un microorganismo pat�geno, que comprende:
(a)
seleccionar donaciones de sangre o plasma obtenidas de una población de individuos previamente revacunados contra uno o más ant�genos asociados al microorganismo pat�geno;
(b)
determinar el nivel de anticuerpos específicos inmunorreactivos con dicho microorganismo pat�geno por medio de un inmunoensayo ELISA en dichas donaciones de sangre o plasma de dichos individuos, para identificar a individuos de título muy alto que tienen un título muy alto de dichos anticuerpos específicos;
(c)
combinar la sangre o los componentes de la sangre que comprenden inmunoglobulinas sólo procedentes de dichos individuos de título muy alto, y
(d)
purificar y/o concentrar el producto de la etapa (c), para obtener una composición concentrada de inmunoglobulinas,
en el que dichos individuos de título muy alto son los que dan una mayor respuesta y que constituyen un 10-15% de dicha población revacunada de a), en el que dicho microorganismo pat�geno es un virus de la vaccinia.
En una realización preferida de la invención, el procedimiento comprende además la etapa de alicuotar la composición concentrada de inmunoglobulinas en una forma de dosificación unitaria de poco volumen. En una realización más preferida, la forma de dosificación unitaria de poco volumen incluye un vial o una jeringa precargada. El uso de un volumen pequeño reduce significativamente el riesgo de efectos colaterales y hace que el producto sea más fácil de administrar.
En la presente memoria descriptiva, se utilizarán a veces términos que deberán entenderse según las siguientes definiciones:
Componente de la sangre -una fracción de sangre entera que comprende inmunoglobulinas. Un componente de la sangre preferido es el plasma. Anticuerpos específicos -anticuerpos que tienen una especificidad de unión para un ant�geno particular sobre otros ant�genos. Aunque puede existir reactividad cruzada, los anticuerpos específicos tienen una afinidad de unión significativamente mayor para el ant�geno especificado. Un ejemplo son anticuerpos que se unen a un ant�geno asociado al virus de la vaccinia. Título muy alto -alta concentración de anticuerpos específicos en una solución de inmunoglobulinas, tal como un componente de la sangre, generalmente al menos 5 veces, y preferiblemente 10 veces, superior a la concentración media del anticuerpo específico en una solución de inmunoglobulinas similar en la población general. Un título muy alto preferiblemente se relaciona con un título que es más de 5 veces, y particularmente de 10 veces, superior a la concentración media del anticuerpo específico en una solución de inmunoglobulinas similar obtenida de individuos que han estado previamente expuestos a un ant�geno que provoca la producción de dicho anticuerpo específico, tal como por vacunación. Un título muy alto puede ser determinado también midiendo la proporción del anticuerpo específico con respecto al contenido en inmunoglobulinas generales en la solución de inmunoglobulinas, siendo dicha proporción 5 veces y preferiblemente 10 veces superior a la proporción en una solución de inmunoglobulinas con un título medio del anticuerpo específico, y siendo típicamente 5 veces y deseablemente 10 veces superior a la proporción en una solución de inmunoglobulinas obtenida de individuos que han estado previamente expuestos a un ant�geno que provoca la producción de dicho anticuerpo específico. En el contexto de la invención, los individuos que han estado previamente expuestos a un ant�geno que provoca la producción de dichos anticuerpos específicos son típicamente individuos vacunados contra un microorganismo pat�geno, v.g., el virus de la vaccinia. Individuos con títulos muy altos -individuos cuya sangre contiene un título muy alto de anticuerpos específicos. Composición concentrada de inmunoglobulinas -una composición que comprende anticuerpos específicos en un título muy alto. OmriUnidades/ml -una medida arbitraria del título de anticuerpos, calculada usando el inmunoensayo ELISA que se describe a continuación. En el caso del virus de la vaccinia, 1.000 OmriUnidades representan una cantidad de los anticuerpos específicos en 1 ml de plasma reunido obtenido de una población de 50 individuos vacunados con un ant�geno que provoca la producción de los anticuerpos específicos en dichos individuos. Se demostr� que, en el caso del virus de la vaccinia, 20-40 OmriUnidades neutralizarán el virus de la vaccinia en un
ensayo de neutralización en aproximadamente un 50%. Más adelante, se describe un ejemplo de dicho ensayo de neutralización (PRNT50 = Ensayo de Neutralización por Reducción de Placa en un 50%). Forma de dosificación unitaria de poco volumen -una forma de dosificación que puede ser administrada a un paciente en una sola dispensación, normalmente por inyección. En esta forma, el paciente recibe un tratamiento individual completo en una breve administración. Un volumen preferido es inferior a aproximadamente 10 ml, más preferiblemente aproximadamente 5 ml o menos, más preferiblemente aproximadamente 2 ml. Aproximadamente un 10% de proteína -concentración de proteína de entre el 8 y el 12%, preferiblemente de aproximadamente el 10%. Un bajo contenido en agregados -menos de un 3% de agregados de proteína en una solución, lo que permite el uso de la solución para administración iv. Tratamiento de una infección -tratamiento terapéutico y/o profiláctico de la infección.
En otro aspecto de la invención, se proporciona una composición concentrada de inmunoglobulinas que comprende anticuerpos específicos inmunorreactivos con un microorganismo pat�geno, caracterizada por que el título de anticuerpos específicos de la composición es al menos 5 veces superior, y preferiblemente 10 veces superior, al título medio de anticuerpos específicos de una población de individuos previamente vacunados contra uno o más ant�genos asociados al microorganismo pat�geno.
Los productos de inmunoglobulinas actuales, tales como la Inmunoglobulina de la Vaccinia (VIG), est�n hechos usando plasma de donantes revacunados no seleccionados. Eso ha dado como resultado un bajo título de inmunoglobulina específica. Además, debido a su baja concentración, el producto de la técnica anterior ha de ser administrado por infusión intravenosa lenta. En casos de inyecciones intramusculares, el producto (de aproximadamente 40 ml de volumen) ha de ser administrado en diversas localizaciones y a lo largo de varias horas.
Se har� a veces referencia a la composición concentrada de inmunoglobulinas producida según la invención, en relación a una realización preferida en la que el microorganismo pat�geno es el virus de la vaccinia, como VIG-TA (inmunoglobulina de la vaccinia de título alto), mientras que se har� a veces referencia al producto de inmunoglobulina de la técnica anterior, también en relación a esta realización preferida, como VIG (inmunoglobulina de la vaccinia). El procedimiento de la invención permite la selección de muestras de plasma de título muy alto, lo que da como resultado un producto de gran potencia y poco volumen. La sangre o los componentes de la sangre de título muy alto pueden ser repetidamente obtenidos de cada uno de los individuos con títulos altos.
En una realización preferida, el título de anticuerpos específicos de la composición concentrada de inmunoglobulinas de la invención es al menos 5 times superior, más preferiblemente aproximadamente 10 veces superior, al título medio de anticuerpos específicos de una población de individuos previamente vacunados contra uno o más ant�genos asociados al microorganismo pat�geno. La composición concentrada de inmunoglobulinas preferiblemente contiene al menos aproximadamente 40.000 OmriUnidades de los anticuerpos específicos. En otra realización preferida, la composición concentrada de inmunoglobulinas contiene al menos aproximadamente un 10% de proteína. La gran potencia de la composición concentrada de inmunoglobulinas le permite ser administrada en un volumen muy pequeño (iv o im) y, por lo tanto, puede ser usada en condiciones de campo por cualquier personal de urgencias entrenado.
Como se ha mencionado anteriormente, el procedimiento de la técnica anterior para el tratamiento o la profilaxis de la infección por microorganismos pat�genos se basa en una preparación de VIG producida a partir de plasma no seleccionado de voluntarios revacunados. La realización VIG-TA de la composición de IVIg producida según la invención tiene varias ventajas sobre la VIG actualmente en uso:
Se espera que la VIG-TA sea aproximadamente diez veces más potente que la VIG regular.
La VIG-TA desarrollada según la invención puede ser administrada en un pequeño volumen por vía iv o im debido a su elevado título y a su bajo contenido en agregados. A diferencia de la preparación de VIG actual, que es administrada por un doctor en medicina entrenado por vía iv lenta durante la hospitalización, el nuevo producto puede ser usado en condiciones de campo por cualquier personal de urgencias entrenado.
La nueva VIG-TA puede ser formulada en jeringas precargadas o viales pequeños y fáciles de usar.
La VIG-TA puede ser usada tanto para el tratamiento de los efectos adversos de la vacunación con vaccinia como a modo de tratamiento profiláctico o terapéutico para la viruela en poblaciones susceptibles.
Despu�s de reunir el plasma de individuos seleccionados, se puede purificar y/o concentrar el pool usando técnicas bien conocidas para el tratamiento de soluciones de inmunoglobulinas. Se desvelan ejemplos de dichas técnicas en la Patente EE.UU. N� 6.468.733 y en la Patente Israelí N� 121.900. El procedimiento desvelado en la anterior patente EE.UU. reduce el nivel de agregados de proteína en la solución concentrada de inmunoglobulina y permite al producto final alcanzar un nivel del 10% de proteína con un bajo nivel de agregados para administración iv.
Por ejemplo, un procedimiento para la purificación de inmunoglobulinas a partir de una solución fuente, tal como la Fracción II de Cohn, puede comprender: (a) pretratar una resina de intercambio cati�nico con una solución ácida que tiene un pH de 4,0-4,5; (b) poner en contacto la solución fuente con la resina de intercambio cati�nico, y (c) eluir las inmunoglobulinas unidas a la resina de intercambio cati�nico. Antes del contacto con la resina de intercambio cati�nico, se puede tratar la solución fuente con un solvente orgánico y un detergente.
Aunque se ilustra la invención con respecto al virus de la vaccinia, la invención puede ser llevada a la práctica con respecto a otros microorganismos pat�genos, y especialmente otros virus. Como ejemplos de tales microorganismos, se incluyen el virus del Nilo occidental, el bacilo del ántrax, el virus de la rabia, el virus CMV, el virus RSV, el virus de la hepatitis B, el virus de la influenza y microorganismos que segregan botulina y otras toxinas.
5 Se espera poder utilizar una composición de inmunoglobulina según la invención no sólo para tratar los efectos adversos de la vacunación, sino también como tratamiento terapéutico o profiláctico en caso de un brote infeccioso.
Por ejemplo, en el caso de la viruela, debido a los riesgos implicados en la vacunación contra la viruela, una proporción significativa de la población quedaría excluida de cualquier programa de vacunación en masa, incluyendo todos los niños menores de dos años de edad, las mujeres gestantes y lactantes, las personas con sistemas
10 inmunitarios debilitados, como los pacientes con inmunodeficiencia primaria o secundaria, y más.
En todos los casos anteriores, la necesidad de inmunizaci�n pasiva sería crítica durante un brote de viruela. El tratamiento con una composición de inmunoglobulinas según la invención podría, por lo tanto, estar indicado para la inmunizaci�n profiláctica pasiva en esta población. Alternativamente, se podría administrar una composición de inmunoglobulinas concomitantemente con la vacunación para minimizar el riesgo de complicaciones en estas
15 subpoblaciones.
Breve descripción de los dibujos
Con objeto de entender la invención y de ver cómo ésta puede ser llevada a cabo en la práctica, se describir� ahora una realización ejemplar, únicamente a modo de ejemplo no limitativo, en relación a los dibujos adjuntos, en los que:
La Fig. 1 es un gráfico que muestra la distribución de los títulos antivaccinia de donantes de plasma recién
20 revacunados (30 días). Las Fig. 2 y 3 muestras fluctuaciones en el nivel de los títulos de anticuerpos para vaccinia en dos individuos con títulos altos a lo largo de un período de varios meses.
Descripci�n detallada de realizaciones ejemplares
A. Preparación de una composición de inmunoglobulinas
25 Se detalla a continuación una realización de la preparación de una composición de inmunoglobulinas según la invención.
1) Establecimiento de herramientas de cribado
a. Desarrollo de un procedimiento ELISA
Se ha desarrollado un ensayo ELISA competitivo lineal para determinar el título de anticuerpos para vaccinia. Este 30 ensayo tiene dos fines:
1.
Cribado de las donaciones de plasma con título alto.
2.
Uso eventual como herramienta de valoración posvacunaci�n.
El ELISA es relativamente rápido y en él est�n implicados relativamente pocos reactivos. Como todos los ELISA de bancos de sangre, el ELISA puede ser realizado sobre una sola dilución con sólo una réplica.
35 Principio de la prueba
Se une ant�geno inactivado de vaccinia a la superficie de pocillos de microtitulaci�n. Se pipetean en los pocillos muestras sospechosas de contener la inmunoglobulina G específica (anticuerpos para vaccinia), tales como suero, plasma, inmunoglobulinas purificadas y concentradas, patrones de calibración o controles, y se incuban a 37�C. Los anticuerpos para vaccinia, si est�n presentes, se unen al ant�geno inmovilizado. Se elimina el material no unido en
40 una etapa de lavado. En una segunda etapa, se añade a los pocillos un conjugado de IgG de cabra antihumana y fosfatasa alcalina y se incuba la placa de ELISA a 37�C. Después de la incubaci�n, se elimina el conjugado no unido por lavado. Se mide entonces la actividad enzim�tica de la fosfatasa alcalina por su reacción con el substrato fosfato de p-nitrofenilo. Se hace la medición en un lector de ELISA a 405 nm. Existe una relación directa entre la densidad óptica observada y el título de anticuerpos para vaccinia.
45 Manejo de los especímenes
Se debe realizar la recogida de sangre según las prácticas actuales. El suero o el plasma deben ser separados lo antes posible para evitar cualquier hemolisis. Se pueden guardar los especímenes durante 7 días a 2-8�C antes de su uso. Para un almacenamiento más prolongado, se congelan los especímenes a -20�C o a una temperatura más fría.
50 Evitar congelar y descongelar repetidamente. Los especímenes con material particulado observable, o después de haberse descongelado las muestras, deben ser centrifugados antes de realizar las pruebas.
Preparaci�n de la solución de lavado
Un día antes de iniciar el procedimiento ELISA, se prepara una solución de trabajo añadiendo la totalidad de los
5 contenidos de una botella de concentrado de lavado de 50 ml (R1) a 450 ml de agua destilada y mezclando durante la noche a temperatura ambiente hasta una completa disolución. Se puede guardar la solución de lavado preparada a 2-8�C durante hasta 1 mes. Se preparan 500 ml para una placa de 12 pistas.
Procedimiento de ensayo Dilución de la muestra y de los patrones
10 Utilizando tubos de ensayo adecuados y una placa de microtitulaci�n, se diluyen las muestras y los controles patrón como sigue:
a. Muestras de ensayo: Primeramente, se hace una dilución inicial de 1:100 (10 ∀l de muestra en 990 ∀l de diluyente de muestras R2). A continuación, volver a diluir las muestras a 1:300 (150 ∀l de la dilución 1:100 en 300 ∀l de diluyente de muestras R2) y 1:1200 (100 ∀l de la dilución 1:300 en 300 ∀l de diluyente de muestras R2).
15 b. Se debe diluir el calibrador patrón (R3) a 1:700, 1:1000, 1:1500, 1:3000 y 1:6000 en diluyente de muestras R2. Usar una dilución inicial de 1:100 (10 ∀l de calibrador en 990 ∀l de diluyente R2) y seguir diluyendo luego para alcanzar las diluciones anteriores (50 ∀l en 300 ∀l, 50 ∀l en 450 ∀l, 50 ∀l en 700 ∀l, 50 ∀l en 1.450 ∀l y 50 ∀l en
2.950 ∀l de diluyente de muestras R2, respectivamente).
c. Se debe diluir el control negativo patrón (R4) a 1:300: 10 ∀l en 2,99 ml de diluyente de muestras R2. 20 d. Se debe diluir el control positivo (R9) a 1:500: 10 ∀l de R9 en 4,99 ml de diluyente de muestras R2.
Procedimiento del ensayo ELISA
1. Se pipetean 100 ∀l de muestras prediluidas, calibrador patrón (Calibrador), control negativo (ContNeg) y control positivo (ContPos) en sus respectivos micropocillos de las pistas de ensayo según el esquema que se da a continuación. Los calibradores patrón han de ser añadidos por duplicado. Se añaden 100 ∀l de diluyente de
25 muestras (R2) a 2 pocillos para su uso como Blancos.
1 234
A
Calibrador 1:700
Calibrador 1:700
Muestra 1 1:300
Muestra 1 1:1200
B
Calibrador 1:1000
Calibrador 1:1000
Muestra 2 1:300
Muestra 2 1:1200
C
Calibrador 1:1500
Calibrador 1:1500
Muestra 3 1:300
Muestra 3 1:1200
D
Calibrador 1:3000
Calibrador 1:3000
Muestra 4 1:300
Muestra 4 1:1200
E
Calibrador 1:6000
Calibrador 1:6000
Muestra 5 1:300
Muestra 5 1:1200
F
ContNeg 1:300
ContNeg 1:300
Muestra 6 1:300
Muestra 6 1:1200
G
Blanco
Blanco
Muestra 7 1:300
Muestra 7 1:1200
H
ContPos 1:500
ContPos 1:500
Muestra 8 1:300
Muestra 8 1:1200
2.
Se cubren las pistas con la cubierta de plástico y se incuban a 37�C durante 1 hora.
3.
Durante la incubaci�n, se prepara la solución de conjugado diluyendo el conjugado concentrado (R6) a 1:14 en el
diluyente de conjugado (R5). Se diluye el conjugado según el número de pistas en uso: Para una pista: 70 ∀l en 930 30 ∀l de diluyente; para dos pistas: 140 ∀l en 1.860 ∀l de diluyente; para tres pistas: 215 ∀l en 2.800 ∀l de diluyente.
4. Al final de la incubaci�n, se retira la película adhesiva y, utilizando un lavador de placas automatizado, se vacían todos los pocillos por aspiración y se lavan seis veces (200 ∀l/pocillo) con solución de lavado diluida. Al completar los lavados, hay que asegurarse de que se ha eliminado toda la solución de lavado.
5. Se dispensan en cada pocillo 100 ∀l de la solución de conjugado. Se cubren las pistas (véase la etapa 2) y se 35 incuban a 37�C durante 1 hora.
6.
Al finalizar la incubaci�n, se aspira el contenido de los pocillos y se lavan como se describe en la etapa 4.
7.
Se dispensan rápidamente en cada pocillo 100 ∀l de solución de substrato. Se cubren las pistas con papel de aluminio y se incuban durante 45 minutos a temperatura ambiente.
8.
Se detiene la reacción añadiendo 50 ∀l de solución de parada (R8) a cada pocillo.
40 9. Se limpia cuidadosamente el fondo de la placa. Se lee la absorbancia (DO) de los pocillos a 405 nm usando un lector de microplacas ELISA en los 15 minutos siguientes a la detención de la reacción. Nota: Agitar bien las pistas antes de realizar la lectura.
C�lculo e interpretación de los resultados
1. Se calcula el valor de la DO media para todas las réplicas y se resta la lectura de la DO media del Blanco de todos los resultados. Para que la prueba sea válida, las siguientes condiciones deben ser ciertas: (a) la lectura media del control negativo debe ser inferior a la lectura de la dilución 1:700 del calibrador patrón; (b) la lectura
5 media del control negativo debe ser inferior a la lectura de la dilución 1:500 del control positivo.
2. Se representan los valores de DO netos a 405 nm obtenidos para las diluciones del calibrador patrón (en el eje de las Y) frente a las concentraciones de estas diluciones en OmriU/ml (en el eje de las X), donde: la dilución
1:700 corresponde a 2,1 OmriU/ml; la dilución 1:1000 corresponde a 1,5 OmriU/ml; la dilución 1:1500
corresponde a 1,0 OmriU/ml; la dilución 1:3000 corresponde a 0,5 OmriU/ml, y la dilución 1:6000 corresponde a 10 0,25 OmriU/ml. El rango lineal debe ser 0,3 -1,5 OmriU/ml.
3.
Se determina el título de anticuerpos para vaccinia de las muestras de ensayo por interpolación a partir de la curva de calibración y multiplicando ese valor por el factor de dilución de la muestra.
4.
Se determina el título del control positivo (R9) según lo anterior. La totalidad del procedimiento de ensayo es válido sólo si el título de R9 es de entre 400 y 600 OmriU/ml.
15 Interpretación de los resultados
Se puede clasificar a un sujeto inmunizado con vaccinia en una de las cuatro categorías siguientes:
Respondedor muy bajo: < 90 OmriU/ml Respondedor bajo: 90 -440 OmriU/ml Respondedor medio: 450 -1.800 OmriU/ml
20 Respondedor alto (hiperinmune): > 1.800 OmriU/ml
Por consiguiente, y alternativamente, los resultados pueden ser interpretados empleando la tabla siguiente:
Para dilución de la muestra
Para el título de la muestra determinado a partir de la curva de calibración de (en OmriU/ml):
1:300
<0,3 0,3-1,5 >1,5 >1,5
1:1200
<0,3 <0,3 0,3-1,5 >1,5
La respuesta puede ser clasificada como:
Muy baja <90 OmriU/ml Baja 90-440 OmriU/ml Media 450-1.800 OmriU/ml Alta >1.800 OmriU/ml
Nota: a. En la mayoría de los casos, sólo una de las dos diluciones dar� como resultado un valor dentro del rango lineal (0,3-1,5 OmriU/ml). Sin embargo, en caso de que ambas diluciones den lugar a un valor dentro del rango lineal, la muestra deber� ser considerada como un respondedor bajo. b. La clasificación de las categorías de respuesta a la vacuna es tentativa y se basa en el programa de vacunación israelí. Sin embargo, una población puede reaccionar de manera diferente en otros programas de vacunación y/o con una preparación de vacuna diferente. Por lo tanto, el esquema final de interpretación ser� determinado después del estudio cl�nico.
Referencias:
1. Centers for Disease Control and Prevention. Vaccina (smallpox) vaccine: recommendations of the Advisory 25 Committee on Immunization Practices (ACIP), 2001. MMWR Recomm. Rep. 22 jun. 2001; 50 (RR-10): 1-25.
2.
Frey S.E., Newman F.K., Yan L., Belshe R.B. (2003) Response to Smallpox Vaccine in persons immunized in the distant past. JAMA 289(24): 3295-3299.
3.
Henderson D.A. (1999) Smallpox: clinical and epidemiologic features. Emerg. Infect. Dis. 5: 537-539.
4.
Henderson D.A. y col. (1999) Smallpox as a Biological Weapon. JAMA 281(22): 2121-2137.
30 5. WHO (2001) Smallpox. Weekly Epidemiological Record 76(44): 337-344.
6. WHO Recommendations for Production and Control of Smallpox Vaccine (2004). WHO Expert Committee on Biological Standardization 53rd Meeting, 17-21 de febrero de 2003. Final Report.
ELISA permite hacer una cuantificación continua lineal de antivaccinia generando una relación directa entre la densidad óptica observada a 405 nm y la concentración de anticuerpos para vaccinia en plasma y suero. Se usa 1 35 ml de pool de plasma derivado de 50 donantes vacunados como patrón positivo y se le asigna un valor de 1.000 unidades arbitrarias (=1.000 OmriUnidades), como se describe más adelante en el Ejemplo 1.
2) Se realizó la validación de un kit de ensayo de anticuerpos antivaccinia como sigue:
1. Pruebas internas de estabilidad acelerada, precisión, sensibilidad, especificidad y recuperación con
espec�menes negativos, positivos, patrón y de bancos de sangre. Se realizaron con al menos tres lotes de 40 producción del producto (kit de diagnóstico).
2.
Se contrataron bancos de sangre adecuados para realizar pruebas de validación de campo. Se suministraron kits de lotes de producción a esos establecimientos y se proporcion� entrenamiento interno de la operación de los kits de ensayo. Se pidió el banco de sangre que estudiara grupos de especímenes patrón y preestudiados
(tanto negativos como positivos) con objeto de validar la apropiada operación de los kits de ensayo.
3.
Tras cumplir satisfactoriamente con el punto (2) anterior, se pidió a cada banco de sangre que estudiara 150 especímenes de donantes seleccionados aleatoriamente. Se estudiaron esos especímenes paralelamente a un kit de ensayo de referencia. Si los resultados de ensayo del kit de ensayo de la compa��a de diagnóstico y del
5 ensayo de referencia eran concordantes, se aprob� el kit para el ensayo de rutina de unidades de sangre de donantes.
3) Equivalencia con el procedimiento de neutralización s�rica
La regla de oro para medir la actividad biológica (inactivaci�n v�rica) de anticuerpos antiv�ricos es el ensayo de neutralización v�rica. Se define la neutralización de un virus como la pérdida de infectividad por reacción del virus
10 con un anticuerpo específico. Se produce la pérdida de infectividad por interferencia del anticuerpo unido con cualquiera de las etapas que conducen a la liberación del genoma v�rico en las células huésped.
En este ensayo, se deja que una dosis predeterminada constante de virus (400-600 UFP/ml) reaccione con diversas diluciones de la muestra neutralizante (plasma o inmunoglobulina intravenosa) y se inocula luego en cultivo celular.
El Título de Neutralización por Reducción de Placa del 50% (PRNT50) es una prueba específica y sensible que
15 cuantifica la dilución de la muestra que da una reducción del 50% en las placas en relación al pocillo del control del virus. Se basa en el hecho de que el virus de la vaccinia produce efectos citop�ticos (ECP), que pueden observarse como placas en cultivo de células BS-C-1. Este ECP es neutralizado por la presencia de anticuerpos específicos.
En este ensayo, se mezcla una carga v�rica dada con una serie de dilución de muestras de plasma o de suero durante un tiempo dado, después del cual se plaquea entonces la serie de dilución sobre la línea celular de cultivo
20 de tejidos del huésped del virus. Después de 48-72 horas, se cuenta el número de placas v�ricas. Se calcula la media geométrica del número de placas a partir de la serie de dilución, al igual que el recuento v�rico del plasma control sin los anticuerpos específicos. Los recuentos v�ricos sin el control dan lugar a un número que se denomina Inhibición por Neutralización 50 -la dilución de plasma o suero que da una reducción del 50% en el título v�rico.
El ensayo es muy engorroso, lleva al menos 4 días de trabajo y no se adapta a una gran producción de muestras.
25 Requiere un laboratorio virol�gico totalmente equipado con capacidades de cultivo continuo de virus y de células en un ambiente de control altamente clasificado. Por lo tanto, el equipamiento, el ambiente y los conocimientos técnicos est�n muy por encima de lo que se puede encontrar en los bancos de sangre convencionales.
Instrumentos y materiales
1. Instrumentos
30 1.1 Pipetas de 1, 2, 5, 10 y 20 ml, estériles, para cultivo de células
1.2 Placas de cultivo de tejidos de 6 pocillos
1.3 Matraces de 75 cm2
1.4 Incubadora con camisa de agua a 37�C y con un 5% de CO2
1.5 Sistema de filtro, acetato de celulosa de 0,22 ∀m
35 1.6 Bomba
1.7 Campana de flujo laminar
1.8 Filtro de 0,8/0,2 ∀m, 32 mm de diámetro, Supor (Gelman, producto # 4658)
1.9 Microscopio
1.10 Baño de agua a 37�C
40 1.11 Tubos de plástico
1.12 V�rtex
1.13 Campana química
1.14 Incubadora a 37�C
1.15 Filtro plegable
45 1.16 Almohadilla de gasa
2. Reactivos
2.1 Medio de crecimiento: MEM-de Earle, sin L-glutamina (Medio Esencial Mínimo de Eagle, Biological Industries Beit Haemek, cat. # 01-025-1)
2.2 Suero de ternera fetal (FCS) (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 04-121-1)
50 2.3 L-Glutamina en solución salina, 20 milimoles (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 03-020-1)
2.4 Solución de penicilina (10.000 U/ml)-estreptomicina (10 mg/ml)-anfotericina B (25 ∀g/ml) (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 03-033-1)
2.5 Solución de bicarbonato de sodio al 7,5% (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 03-040-1)
2.6 Solución de amino�cidos no esenciales (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 01-340-1)
55 2.7 Solución de piruvato de sodio 100 mM (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 03-042-1)
2.8 Solución de tripsina EDTA (0,25% de tripsina) (Biological Industries Beit Haemek, cat. # 03-050-1)
2.9 Sulf�xido de dimetilo (DMSO) (Sigma, cat. # D2650)
2.10 Goma de tragacanto (Sigma, cat. # G-1128)
2.11 Etanol (Riedel de Haen, cat. # 32221)
2.12 Fucsina básica, Pararosanilina (Sigma, cat. # P1528)
2.13 Fenol (Sigma, cat. # P-4557)
2.14 Medio de crecimiento: MEM (de Earle) 2X, sin L-glutamina (Medio Esencial Mínimo de Eagle, Biological Industries Beit Haemek, cat. # 01-025-9)
3. Células y virus
C�lulas BS-C-1: (ATCC -CCL-26) Línea celular continua de epitelio de ri��n de Cercopithecus aethiops (mono verde africano), ATCC Lote # 1182351. Se mantienen las células según el SOP # 08030105.
Vaccinia (cepa IHD): (ATCC VR-156): Vaccinia pertenece a la familia de los poxvirus, género ortopoxvirus. Viriones envueltos, ligeramente pleom�rficos, ovoides o en forma de ladrillo, de 140-260 nm de diámetro y de 220-450 nm de longitud. Compuesto por una cubierta externa que contiene estructuras lip�dicas y proteicas tubulares o globulares que encierran uno o dos cuerpos laterales y un núcleo, que contiene el genoma. Los viriones contienen una molécula de ADN lineal de doble hélice.
4. Preparación de las soluciones
4.1 Medio de dilución -MEME, 2% de FCS
El medio est� constituido por MEM con la adición de 2 mM de L-glutamina, 1 mM de piruvato de sodio, 0,1 mM de amino�cidos no esenciales, 1,5 g/l de bicarbonato de sodio, un 1% de solución de penicilina-estreptomicinaanfotericina B y un 2% de FCS. Se trabaja en condiciones estériles. Se añaden a 230 ml de MEM 2,5 ml de Lglutamina, 2,5 ml de piruvato de sodio, 2,5 ml de amino�cidos no esenciales, 5 ml de bicarbonato de sodio, 2,5 ml de solución de penicilina-estreptomicina-anfotericina B y 5 ml de FCS, respectivamente. Se filtra a través de un sistema de filtro de 250 ml de acetato de celulosa de 0,2. El medio es estable durante un mes a 2-8�C si no se contamina. Antes de la adición del medio a las células, se lleva el medio a 37�C usando un baño de agua.
4.2 Medio de recubrimiento -MEME 2X, 4% de FCS
El medio est� constituido por MEM 2X con la adición de 4 mM de L-glutamina, un 1% de solución de penicilinaestreptomicina-anfotericina B y un 4% de FCS. Se trabaja en condiciones estériles. Se añaden a 230 ml de MEM 2X 5 ml de L-glutamina, 2,5 ml de solución de penicilina-estreptomicina-anfotericina B y 10 ml de FCS, respectivamente. Se filtra a través de un sistema de filtro de 250 ml de acetato de celulosa de 0,2 m. El medio es estable durante un mes a 2-8�C si no se contamina. Antes de la adición del medio a las células, se añade un 2,4% de bicarbonato de sodio y se lleva el medio a 37�C usando un baño de agua.
4.3 Medio de recubrimiento -tragacanto
4.3.1 Limpieza del tragacanto
Se transfieren a un vaso de precipitados con 60 ml de EtOH 20 g de tragacanto. Se agita el tragacanto hasta alcanzar una suspensión homogénea (15 min.). Se espera hasta que se produce decantación y se desecha el sobrenadante.
Se repite la agitaci�n 3 veces. Se seca la torta de tragacanto usando un filtro plegado y poniéndola luego en una incubadora a 37�C durante 3 h. Se pasa a través de una almohadilla de gasa. Se guarda a TA.
4.3.2 Elaboración del medio de tragacanto
Se disuelven 8 g de tragacanto limpio en 1.000 ml de agua purificada durante 2 h a 70�C. Se lleva el volumen final a
1.000 ml con agua purificada y se autoclava luego a 120�C durante 30 min. Se debe alicuotar la solución de tragacanto en viales de 50 ml en condiciones estériles. Se guarda durante un tiempo de hasta dos años a 2-8�C.
4.4 Solución de tinción -fucsina
Se prepara fenol al 5% añadiendo 50 ml de fenol a 950 ml de agua purificada. Se prepara una solución al 3% de fucsina disolviendo 3 g de fucsina en 100 ml de EtOH. Se mezclan bien las soluciones de 100 ml de fucsina y 1 l de fenol. Se guardan a TA durante hasta 2 años. Se protegen de la luz con papel de aluminio.
5. Método
La duración de un ensayo de neutralización es de 5 días, y est� constituido por las siguientes etapas:
D�a 1: Siembra de células BS-C-1, que fueron cultivadas como se describe en el SOP # 08030105, sobre una placa de 6 pocillos (sección 5.1). Día 2: Ensayo de neutralización del virus (sección 5.2).
D�a 5: Tinción de las células y determinación de PRNT50 (sección 5.3).
5.1 Siembra de células BS-C-1 (día 1)
Se siembran células BS-C-1 (pases 4-40) sobre una placa de 6 pocillos a una concentración de 4x105 células/pocillo (según el SOP #08030105). Las células deben alcanzar la confluencia al día siguiente para el ensayo de 5 neutralización del virus (día 2).
5.2 Ensayo de neutralización del virus (día 2)
5.2.1 Preparaciones de las muestras
5.2.1.1 Se prepara un pool de virus de la vaccinia en medio de crecimiento, MEME con un 2% de FCS, a una concentración final de entre 800 y 1.200 ufp/ml.
10 5.2.1.2 Se preparan diluciones seriadas de la muestra en medio de crecimiento, MEME con un 2% de FCS, en un rango de 1/40-1/40960. Se deben inactivar las muestras de plasma y de suero a 56�C durante 30 min.
5.2.1.3 Se mezcla cada dilución de IVIG con igual volumen del pool de vaccinia, para obtener as� una dilución final de 1/80-1/81920 para IVIg y una concentración final de 400-600 ufp/ml para el pool de virus de la vaccinia (v.g., 500 ∀l de IVIg diluida a 1/40 con 500 ∀l de 800-1.200 ufp/ml de virus de la vaccinia dan una dilución final de
15 IVIg de 1/80 y 400-600 ufp/ml de vaccinia).
5.2.2 Preparaciones de los controles
Control de virus: Pool de virus de la vaccinia diluido con medio de cultivo a 1:1. Controles negativos (no hay reducción de placas): Control de medio: Medio de crecimiento, MEME con un 2% de FCS.
20 IVIg (para el ensayo de IVIg): Se mezcla OmriGam al 5%, lote # F18132 (fabricado a partir de un plasma de origen americano) a una dilución de 1/40 con igual volumen del pool de virus de la vaccinia, para obtener as� una dilución final de 1/80 para OmriGam al 5% y una concentración final de 400-600 ufp/ml para el pool del virus de la vaccinia. Plasma (para el ensayo de plasma): Se mezcla un lote de plasma negativo a una dilución de 1/40 con igual
25 volumen del pool de virus de la vaccinia, para obtener as� una dilución final de 1/80 para el plasma y una concentración final de 400-600 ufp/ml para el pool de virus de la vaccinia. Suero (para el ensayo de suero): Se mezcla un suero negativo a una dilución de 1/40 con igual volumen del pool de virus de la vaccinia, para obtener as� una dilución final de 1/80 para el suero y una concentración final de 400-600 ufp/ml para el pool de virus de la vaccinia.
30 Control positivo (reducción de placas):
Se mezcla una muestra positiva a una dilución de 1/40 con igual volumen del pool de virus de la vaccinia, para obtener as� una dilución final de 1/80 para la muestra positiva y una concentración final de 400-600 ufp/ml para el pool de virus de la vaccinia.
Rodar todas las mezclas de IVIg y los controles durante 90 min. a 37�C.
35 5.2.3 Inoculación del virus (día 2)
5.2.3.1 Después de 90 min. de incubaci�n, se observan las monocapas de células BS-C-1 (que fueron preparadas el día 1), que deben ser sanas y confluentes.
5.2.3.2 Desechar el medio de cada pocillo.
5.2.3.3 Añadir cuidadosamente 0,2 ml de mezclas de muestras y controles a los pocillos y mecer suavemente 40 la placa para conseguir una distribución uniforme de los in�culos.
5.2.3.4 Dejar que el virus de la vaccinia no neutralizado se adsorba durante 60 min. a 37�C en la incubadora de CO2.
5.2.3.5 Combinar el medio de crecimiento (MEM x2 con un 4% de FCS) y la solución de tragacanto (1:1) y añadir un 2,4% de bicarbonato de sodio.
45 5.2.3.6 Añadir 3 ml del medio de tragacanto a cada pocillo.
5.2.3.7 Incubar la placa en una incubadora a 37�C durante 72 h.
5.3 Tinción celular y determinación de PRNT50 (día 5)
5.3.1 Se examina la placa con un microscopio para la observación de células lisadas.
5.3.2 El procedimiento de tinción ya no tiene que ser estéril. Debe ser llevado a cabo en una campana 50 química.
5.3.3 Se vacían los pocillos mediante golpeteo suave.
5.3.4 Se añaden 500 ∀l de EtOH a cada pocillo. Se espera 2 minutos. Extraer la solución de los pocillos mediante golpeteo suave.
5.3.5 Se añaden 500 ∀l de solución de tinción de fucsina (Sección 4.4) a cada pocillo. Esperar 2 minutos. 55 Extraer la solución de los pocillos mediante golpeteo suave.
5.3.6 Contar el número de placas.
6. Criterios de aceptación del ensayo
-El control de virus debe dar como resultado 80-120 UFP/pocillo. -El control negativo debe dar como resultado una monocapa uniforme e intacta. -Los controles negativos de plasma, suero e IVIg deben dar #80% de las placas del control de virus.
5 -El control positivo debe dar ∃50% de placas en comparación con el control negativo de plasma, suero o IVIg.
7. Evaluación de los resultados
El PRNT50 (expresado en ∀g/ml) para cada muestra es la concentración de IgG a la que se produce un 50% de neutralización del virus de la vaccinia según se determina por la relación no lineal (curva dosis-respuesta) entre el log de la concentración de IgG (concentración inicial de IgG dividida por la dilución) y el porcentaje de neutralización
10 de placas en relación a la muestra control (tomada como el 100%).
8. Referencias
Virology Methods Manual, Brian W J Mahy y Hillar O Kangro.
4) Estudio piloto
Se realizó un estudio piloto con las Fuerzas de Defensa Israelíes (IDF), que sirvió como modelo para la vacunación y
15 el cribado de donantes de plasma. Tras un análisis completo de los datos, se gener� una potencia estadística a partir de la cual se formularon finalmente los criterios de excepción y de exclusión de la donación de plasma, aparte del banco de sangre general. Se realizó la vacunación de los sujetos de las IDF según las directrices CDC (http:// www.bt.cdc.gov/agent/smallpox/response-plan/index.asp#guideb). Se utilizaron criterios adicionales que pudieran surgir del análisis completo del estudio piloto en el protocolo de vacunación. Se realizó el cribado de plasma usando
20 las mismas normas que en el estudio piloto, con unos cuantos cambios derivados del análisis estadístico completo de los datos.
Se us� el corte final para la donación hiperinmune de título alto (TA) después de la valoración completa de la variabilidad del título y la estimación del porcentaje de la población que contribuiría al plasma hiperinmune TA. Se ve un ejemplo de variabilidad de donantes en la Fig. 1. Se mantuvo a esta población hiperinmune TA entre el 10-15%
25 de todos los sujetos que mostraron o bien seroconversi�n, o bien signos cl�nicos de que la inmunizaci�n había sido efectiva. Se realizó la recogida de plasma según las directrices de la FDA y la operación estándar de los bancos de sangre locales. Se sacó provecho repetidamente de los sujetos seleccionados, por ejemplo, utilizando una técnica de plasmaf�resis o de donación de plasma (véase, por ejemplo, la Patente EE.UU. 6.692.739).
Los sujetos sin ningún signo cl�nico fueron excluidos de la donación de plasma. Estos sujetos fueron revacunados. 30 Los signos cl�nicos son los siguientes:
Una vacunación primaria normal aparece como una p�pula después de 3-4 días y progresa rápidamente a una vesícula con eritema circundante hacia el 5�-6� día. El centro de la vesícula se deprime y progresa a una pústula bien formada hacia el 8�-9� día. Hacia el duodécimo día, o poco después, la pústula se seca y forma una costra marrón, que progresa desde el centro de la pústula hacia la periferia. Después de 2,5 a 3 semanas, la costra se
35 desprende y queda una cicatriz bien formada.
Tabla 2: Tiempos normales de reacción a la vacunación de la vaccinia
D�a
Descripción
0
Vacunación
3-4
P�pula
5-6
Vesícula con eritema circundante % vesícula con centro deprimido
8-9
Pústula bien formada
12+
La pústula se seca % costra
17-21
La costra se desprende y revela una cicatriz
Raramente, en algunos individuos previamente no vacunados, técnicas de vacunación aparentemente apropiadas pueden no dar lugar a ninguna reacción. Se debe suponer que el individuo no es inmune y se deberán hacer
40 intentos repetidos para conseguir una captación primaria. Se deberán hacer al menos tres intentos, cambiando los sitios de la piel después de un segundo intento sin éxito.
S�ntomas sist�micos: Se esperan y normalmente aparecen síntomas sist�micos aproximadamente una semana después de la vacunación. éstos incluyen:
• Dolor en el sitio de vacunación
Intenso eritema alrededor del sitio de vacunación
Malestar
Linfadenopat�a (local)
Mialgia, dolor de cabeza, escalofríos, náusea, fatiga
Fiebre
La aparición de estas reacciones normales varía considerable de un estudio a otro. La tabla siguiente enumera los síntomas cubiertos por los estudios y proporciona una indicación del rango:
Tabla 3: Aparición de reacciones a la vacuna de la vaccinia
Reacci�n
Aparición
Linfadenopat�a
25,0-50,0%
Mialgia, dolor de cabeza, escalofríos, náusea, fatiga
0,3-37,0%
Fiebre >37,7�C
2,0-16,0%
La donación de plasma debe tener lugar cuando la costra de la vacuna se separa de la piel, o 21 días después de la vacunación, lo que se produzca más tarde. Todas las muestras de plasma fueron cualificadas según las directrices de la FDA para la seguridad del plasma. Todas las donaciones cualificadas fueron cribadas en cuanto a un título alto de vaccinia. Sólo se reunirán donaciones de plasma con títulos mínimos predeterminados de vaccinia para la fraccionaci�n de VIG hiperinmune de TA.
La recepción de la donación de plasma y la emisión para su fraccionaci�n fueron realizadas según criterios de aceptación preestablecidos. Estos criterios incluyen sólo la utilización de unidades de plasma con títulos de anticuerpos para vaccinia por encima de 1.800 OmriUnidades/ml.
Producci�n de lotes de VIG hiperinmune de TA
a.
Resuspensi�n de 10-12 kg de pasta II (equivalentes a 2,5-3,0 kg de inmunoglobulina).
b.
Fabricación de detergente solvente al 10% a granel tratado y de filtros de 20 nanómetros para inmunoglobulina.
c.
Carga del producto en jeringas precargables de 2 ml.
La VIG hiperinmune de TA puede ser caracterizada según la monografía USP para inmunoglobulina intramuscular. También habría que realizar estudios de estabilidad de los envases finales de VIG hiperinmune de TA.
Lo que viene a continuación es una caracterización de producto de un ejemplo de una composición de inmunoglobulinas (VIG-TA) según la invención.
Composici�n
VIG-TA es una solución estéril que contiene un 10% de proteína (100 mg en 1 ml de solución de los que al menos un 95% es Inmunoglobulina G Normal Humana), un 10% de maltosa y agua para inyección.
Descripci�n del procedimiento de fabricación
Se obtiene la VIG-TA por fraccionaci�n de Cohn con etanol frío del plasma.
Seguridad
Se somete la VIG-TA a una tecnología de eliminación/inactivaci�n v�rica, compuesta por 3 etapas de inactivaci�n v�rica: La fraccionaci�n de Cohn con etanol frío ha sido validada como etapa primaria de inactivaci�n del virus. La VIG-TA sufre una segunda etapa de inactivaci�n del virus mediante el procedimiento de detergente solvente usando TnBP/Tritón X-100 y una tercera etapa de inactivaci�n mediante nanofiltraci�n a pH 4, lo que hace que VIG-TA sea una inmunoglobulina muy segura.
Forma farmacéutica
VIG-TA es un líquido transparente o ligeramente opalescente, casi inodoro, de incoloro a amarillo claro, para administración intravenosa o intramuscular.
Tipo de vial
Se realiza la carga estéril del producto en viales siliconizados de vidrio de 10 ml con un volumen de llenado de 4-5 ml o en una jeringa precargada de 4-5 ml.
Condiciones de almacenamiento
Los viales/jeringas deben ser almacenados a una temperatura de entre 2 y 8�C protegidos de la luz.
2. Información específica
PAR�METROS
LÍMITES
Caracteres
Solución transparente o ligeramente opalescente e incolora o de color amarillo claro.
Ouchterlony
Da una reacción positiva con antisueros de proteínas humanas y una reacción negativa con antisueros de proteínas animales.
IgG por electroforesis en acetato de celulosa
# 95%
Contenido en IgG
85 mg/ml-110 mg/ml
T�tulo de anticuerpos para vaccinia Antihepatitis A
40.000 OU/ml > 100 UI/ml
Anti-HBsAg
> 0,5 UI/g de IgG
Prote�na total
8,3%-1,1% (p/v)
Distribuci�n del tamaño molecular (HPLC)
Mon�mero y d�mero # 90,00% Pol�meros y agregados ∃ 3,00%
Actividad anticomplementaria
∃ 1 CH50/mg de IgG*
Actividad prekalicre�na*
∃ 35 UI/ml*
Hemaglutininas anti-A y anti-B
Las diluciones 1:64 no muestran aglutinación*
Fosfato de tri-n-butilo (GC)
∃ 5,0 ∀g/ml (ppm)*
Trit�n X-100 (HPLC)
∃ 5,0 ∀g/ml (ppm)*
Contenido en IgA
∃ 0,36 mg/ml
Contenido en IgM
∃ 0,24 mg/ml (∃ 10 mg/dl)
pH
5,1-6,0
Osmolalidad
# 240 mOsmol/kg de H2O
Sodio (fotómetro de llama)
< 20 mmol/l
Maltosa
90-110 g/l
Pir�genos (10 ml/kg de conejo)
No pirog�nico
Esterilidad (Steritest)
Estéril
Ag HBs
Negativo
Ab VIH
Negativo
Ab VHC
Negativo
ARN del VHC (PCR) en pool de plasma
Negativo

5 B. Recogida, análisis e interpretación de datos
La recogida de datos es un procedimiento directo y puede seguir los Procedimientos Operativos Estándar (SOP) de los bancos de datos locales ya adoptados en cada centro.
Se formularon los cuestionarios de los sujetos para la vacunación y la evaluación del programa de cribado. Se anotaron y supervisaron la recogida de sangre, el almacenamiento y las instrucciones de envío según los SOP. Se
10 formatearon todos los anexos a los protocolos de cribado de vacunación y recogida de plasma en una copia electrónica, as� como en papel, para permitir el análisis y la vigilancia por el equipo de Control de Calidad. Se introdujeron los datos en un sistema de base de datos basado en PC (v.g., Paradox) para permitir las consultas en línea y la producción de informes actualizados.
Se realizó todo el análisis estadístico usando un programa estadístico para el PC (v.g., SAS). Se llevaron a cabo
15 pruebas paramétricas estándar para comparar las respuestas sintom�ticas y de anticuerpos. El análisis primario incluía datos de seguridad, serol�gicos y cl�nicos. Los parámetros para la respuesta a la vacuna incluían datos de reacciones cut�neas clónicas, reacciones normales, efectos adversos, efectos adversos severos y títulos antivaccinia. Aquellos sujetos que tenían títulos por encima del umbral seleccionados como idóneos para la recogida y asignados para la hiperinmunidad fueron incluidos en el análisis preliminar, pero también fueron analizados por separado en un suban�lisis para ver si guardaban correlación con alguno de los parámetros recogidos en el cuestionario de vacunación.
C. Seguridad
Las tecnologías de eliminación/inactivaci�n v�rica son bien conocidas. Por ejemplo, se desvela una de tales
5 tecnologías en la Patente EE.UU. N� 6.468.733. El producto VIG-TA puede incluir etapas de eliminación v�rica según estas tecnologías, tales como nanofiltraci�n y tratamiento con detergentes solventes, que exhiben grandes márgenes de inactivaci�n v�rica de todos los virus conocidos, incluyendo los Parvovirus. El detergente solvente era eliminado a través de una resina de eliminación de detergentes solventes específica que tiene la capacidad de unir substancias hidrof�bicas y de cribado molecular de grandes moléculas. El flujo de salida de la columna da una
10 solución de inmunoglobulina que tiene un contenido muy bajo en d�mero y pol�mero, lo que permite un alto rendimiento por nanofiltraci�n. Esto da lugar a una preparación líquida de inmunoglobulina que est� desprovista de virus activos, pero que presenta un rendimiento muy elevado. Más aún, el anterior procedimiento puede ser llevado a cabo a un bajo pH, lo que permite además la inactivaci�n de virus que son sensibles a un pH bajo.
Se puede realizar el almacenamiento del producto líquido a temperatura ambiente durante al menos dos años en
15 jeringas precargadas listas para su uso. Para tiempos de almacenamiento más largos, el producto puede ser estable durante hasta 3 años a 2-8�C.
D. Resultados
Se realizaron tres estudios relacionados con muestras de donación de plasma israelíes y estadounidenses:
El plasma para la fraccionaci�n y la fabricación de inmunoglobulina para vaccinia hiperinmune es normalmente
20 recogido de donantes voluntariamente revacunados. Para comenzar esta investigación, se estudiaron la variabilidad de la inmunoglobulina antivaccinia en las donaciones de plasma y el porcentaje de unidades de plasma adecuadas para preparar el pool.
La recogida de donaciones de plasma adecuadas de sujetos revacunados se basa en la manifestación clónica de la vacuna. Por otro lado, la recogida de plasma hiperinmune se basa primariamente en los títulos plasm�ticos. Se
25 valor� la correlación entre estos dos procedimientos.
La fabricación de hiperinmunoglobulinas conlleva los riesgos inherentes de alcanzar bajos rendimientos, que podrían reducir drásticamente la viabilidad económica de cierta tecnología de fabricación. El altamente sensible ensayo ELISA puede detectar títulos residuales de IgG antivaccinia en pooles de plasma regulares. También puede detectar esta inmunoglobulina G en lotes de inmunoglobulinas intravenosas. Se calcul� el rendimiento teórico del
30 procedimiento de producción de VIG. Los resultados indican que el procedimiento de la invención es adecuado para la producción de VIG de título alto.
Ejemplo 1: Cribado de títulos antivaccinia en unidades de plasma donadas por sujetos revacunados
Antecedentes: Se recogieron donaciones de plasma para la producción de inmunoglobulina intravenosa rica en vaccinia de donantes revacunados durante el programa de urgencias israelí, en el que se vacun� a personal militar y
35 de los servicios sanitarios seleccionado contra la viruela. Dado que la selección de los donantes se basaba exclusivamente en los signos de manifestación clónica y no en los títulos de inmunoglobulinas por seroconversi�n, se necesitaba una valoración para evaluar los títulos en los pooles de fabricación de plasma.
M�todos: Se seleccionaron 37 donaciones de plasma aleatoriamente de los 24.000 sujetos que fueron inoculados intrad�rmicamente 30 días antes con 20 ∀l del virus de la vaccinia Elstree (título medio, 107 ufp por mililitro). Se 40 monitorizaron las unidades de plasma en cuanto a los títulos de inmunoglobulina antivaccinia usando un ensayo ELISA. Se mezclaron 3 ml de cada una de las donaciones de plasma con las otras muestras y el pool sirvió como patrón positivo. Se asignaron entonces al patrón positivo de pool de plasma 1.000 unidades arbitrarias (1.000 OmriUnidades/ml). 20-40 OmriUnidades neutralizarán el virus de la vaccinia en un 50% en un ensayo de neutralización del tipo antes descrito (el ensayo PRNT50). Se puede obtener el patrón positivo de pool de plasma
45 para vaccinia bajo pedido a OMRIX Biopharmaceuticals, Ltd., Tel Aviv, Israel.
Resultados: Los resultados est�n resumidos en la Fig. 1. Se vio que la variabilidad en las unidades de plasma donadas oscilaba entre 26 unidades y 6.530 OmriUnidades. La media calculada era de 971,8 OmriUnidades y la desviación estándar era de 1.349, mientras que la mediana era sólo de 542 OmriUnidades. El resultado de la media calculada coincide con la media de las unidades de plasma experimentalmente mezcladas, lo que indica que la
50 mezcla de diferentes unidades de plasma no difiere de la calculada. Esto indica que el ELISA no sufre las reacciones inhibitorias que con frecuencia se producen cuando se mezclan donaciones de plasma.
Conclusi�n: Sólo aproximadamente un 10% de la población tenía títulos significativamente superiores a la media de la donación de plasma recogida de sujetos revacunados. Es evidente que, si sólo se recogen donaciones de plasma con títulos superiores a 1.800 OmriUnidades/ml (donaciones de plasma de título muy alto), el título del pool de 55 plasma hiperinmune sería al menos 5 veces superior al del pool de inmunoglobulina para vaccinia rica regular. Es,
por lo tanto, obvio que es necesario el cribado de la donación de plasma de toda la población revacunada para identificar a individuos con título muy alto que tienen un título muy alto de los anticuerpos específicos.
Se en contr� que los individuos con título muy alto mantienen de manera estable un título muy alto de anticuerpos específicos. Las Figs. 2 y 3 muestran los títulos de dos individuos con título alto de aproximadamente 3.000 OmriUnidades/ml. Se mantuvo este título incluso 3 meses después de la revacunación y después de casi 20 donaciones de plasma.
Ejemplo 2: Correlación entre respuestas clónicas y seroconversi�n de la vacunación contra la viruela deadultos revacunados
Antecedentes: La producción de inmunoglobulina para la vaccinia (VIG) se basa en la recogida de plasma de sujetos adultos recientemente vacunados. Informes recientes indicaban que la respuesta clónica de sujetos na�f era superior al 95%, mientras que informes de los primeros años de la década de los 60 mostraban que la respuesta clónica en niños revacunados es mucho más baja. Se dise�� un experimento cl�nico para evaluar el porcentaje de respuesta y para valorar la correlación entre la respuesta clónica de los sujetos revacunados y el aumento en los títulos antivaccinia.
M�todo: En este estudio prospectivo, simple ciego y aleatorizado, se inocularon intrad�rmicamente a 157 adultos que habían sido previamente inmunizados 20 ∀l del virus de la vaccinia Elstree (título medio, 107 ufp por mililitro) usando una aguja hipodérmica, y se cubrió el sitio con un apósito semipermeable. Los sujetos fueron monitorizados en cuanto a la formación de vesículas los días 3-4 y los días 7-9 (una respuesta clónica del éxito en la vacunación) y en cuanto a sucesos adversos durante 30 días tras la inmunizaci�n. Se recogieron muestras de suero el día 0 (antes de la vacunación), el día 14 y el día 30 (donación de plasma). Se estudiaron los títulos s�ricos usando el ELISA cuantitativo lineal.
Resultados: Los índices de éxito diferían sólo ligeramente entre los respondedores cl�nicos y los que presentaron seroconversi�n. Los respondedores cl�nicos eran un 62,87% -muy similar a los sujetos que demostraron seroconversi�n (62,42%). Los títulos s�ricos en todos los sujetos que respondieron se redujeron en una media del 30% entre los días 14 y 30 después de la revacunación. Además de la formación de pústulas, aparecieron sucesos adversos comunes, consistentes con la presencia de una enfermedad v�rica aguda, incluyendo la formación de lesiones satélite, linfadenopat�a regional, fiebre, dolor de cabeza, náusea, dolores musculares, fatiga y escalofríos, sólo en un pequeño porcentaje de los sujetos.
La correlación entre los sujetos que presentaron seroconversi�n (resultados del día 14 frente al día 0) y la aparición clónica de pústulas los días 7-9 era del 87,74% -muy próximo al porcentaje de correlación encontrado entre los sujetos que presentaron seroconversi�n que tenían pústulas los días 3-4 y/o los días 7-9 (88,44).
Los títulos s�ricos el día 0 eran muy variables y se volvieron incluso más variables a medida que los títulos aumentaron después de 14 días. Esta variabilidad aparecía también a los 30 días de la vacunación. Sólo un 10-15 por ciento de los sujetos tenían títulos altos que serían adecuados para producción de inmunoglobulina para vaccinia hiperinmune.
Conclusiones: Cuando se administraron 20 ∀l de la cepa vacunal Elstree a un título de 107 UFP a sujetos adultos revacunados, 62,87 respondieron cl�nicamente, de forma similar a los índices de seroconversi�n de 62,42. Existe una correlación muy alta entre los dos procedimientos (aproximadamente un 88%). Los títulos antivaccinia alcanzan un pico a los 14 días de la vacunación y declinan en aproximadamente un 30% a los 30 días. Se vio que los títulos de los sujetos revacunados eran altamente variables a los 30 días de la vacunación y sólo un 10-15% de los sujetos revacunados tenían títulos por encima de 1.000 unidades arbitrarias, que cumplen con la producción de globulinas para vacunas hiperinmunes. Estos datos sugieren que sería imperativo hacer una prueba de cribado para el sujeto hiperinmune.
Resumen
Los estudios preliminares indican que los títulos de inmunoglobulina G de voluntarios revacunados son muy variables, por lo que los productos de VIG que se producen a partir de dicho pool de plasma dan como resultado títulos relativamente bajos. Los estudios indican que es factible utilizar el procedimiento de cribado rápido ELISA, en donde se pueden seleccionar las muestras de plasma antivaccinia de título alto. La producción de un pool de unidades de plasma con título alto que dan cuenta de un 10-15% de la población de donantes para la producción de una inmunoglobulina intravenosa al 10% y la concentración del pool darían lugar a la producción de VIG-TA.

Claims (9)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Un procedimiento de preparación de una composición concentrada de inmunoglobulinas que tiene un título de anticuerpos igual o superior a 1:60.000.000, según se determina por ELISA, para tratar a sujetos vacunados contra,
    o infectados con, un microorganismo pat�geno, que comprende:
    5 (a) seleccionar donaciones de sangre o de plasma obtenidas de una población de individuos previamente revacunados contra uno o más ant�genos asociados al microorganismo pat�geno;
    (b) determinar el nivel de anticuerpos específicos inmunorreactivos con dicho microorganismo pat�geno mediante un inmunoensayo ELISA en dichas donaciones de sangre o de plasma de dichos individuos para identificar a individuos con título muy alto que tienen un título muy alto de dichos anticuerpos específicos;
    10 (c) combinar sangre o componentes de la sangre que comprenden inmunoglobulinas sólo de dichos individuos con título muy alto, y
    (d) purificar y/o concentrar el producto de la etapa (c), para obtener una composición concentrada de inmunoglobulinas,
    en el que dichos individuos con título muy alto son los que dan la mayor respuesta y que constituyen el 10-15% de 15 dicha población revacunada de a), en el que dicho microorganismo pat�geno es un virus de la vaccinia.
  2. 2. El procedimiento según la reivindicación 1, que además comprende la etapa de alicuotar la composición concentrada de inmunoglobulinas en una forma de dosificación unitaria de poco volumen que contiene menos de 10 ml.
  3. 3. El procedimiento según la reivindicación 2, en el que dicha forma de dosificación unitaria de poco volumen 20 comprende un vial o una jeringa precargada.
  4. 4.
    El procedimiento de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que la composición concentrada de inmunoglobulinas contiene de un 8 a un 12%, o un 10%, de proteína.
  5. 5.
    Una composición de inmunoglobulina preparada según el procedimiento de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en la que el título de anticuerpos específicos de la composición es al menos 10 veces superior al título de
    25 anticuerpos específicos de un pool de donaciones de sangre o de plasma no seleccionadas obtenidas de la población de individuos previamente revacunados contra uno o más ant�genos asociados al microorganismo pat�geno de la etapa a), y en en la que el título de anticuerpos de la composición es igual o superior a 1:60.000.000, determinado por ELISA.
  6. 6. La composición de inmunoglobulinas según la reivindicación 5, que tiene menos de un 3% de contenido en 30 agregados proteicos.
  7. 7.
    La composición de inmunoglobulinas según la reivindicación 5 o la reivindicación 6, en la que dichos anticuerpos específicos son anticuerpos antivaccinia.
  8. 8.
    La composición de inmunoglobulinas según cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7, que comprende de un 8 a un 12%, o un 10%, de proteína.
    35 9. Un vial o una jeringa precargada que contiene menos de 10 ml de la composición según cualquiera de las reivindicaciones 5 a 8.
  9. 10. Una composición según cualquiera de las reivindicaciones 5 a 8 para su uso en el tratamiento o el mejoramiento de los síntomas asociados a una reacción adversa a la vacunación contra un microorganismo pat�geno, en la que dicho microorganismo pat�geno es un virus de la vaccinia.
    40 11. Una composición según cualquiera de las reivindicaciones 5 a 8, que comprende anticuerpos específicos antivaccinia para su uso en el tratamiento o la prevención de la infección de la viruela.
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