ES2527530T3 - Derivados 39-desmetoxi de rapamicina - Google Patents

Derivados 39-desmetoxi de rapamicina Download PDF

Info

Publication number
ES2527530T3
ES2527530T3 ES06710063.6T ES06710063T ES2527530T3 ES 2527530 T3 ES2527530 T3 ES 2527530T3 ES 06710063 T ES06710063 T ES 06710063T ES 2527530 T3 ES2527530 T3 ES 2527530T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
compound according
rapamycin
acid
compound
independently
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES06710063.6T
Other languages
English (en)
Inventor
Christoph H. Beckmann
Steven James Moss
Rose Mary Sheridan
Mingqiang Zhang
Barrie Wilkinson
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Buck Institute for Research on Aging
Original Assignee
Buck Institute for Research on Aging
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Buck Institute for Research on Aging filed Critical Buck Institute for Research on Aging
Application granted granted Critical
Publication of ES2527530T3 publication Critical patent/ES2527530T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D498/00Heterocyclic compounds containing in the condensed system at least one hetero ring having nitrogen and oxygen atoms as the only ring hetero atoms
    • C07D498/12Heterocyclic compounds containing in the condensed system at least one hetero ring having nitrogen and oxygen atoms as the only ring hetero atoms in which the condensed system contains three hetero rings
    • C07D498/18Bridged systems
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/435Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom
    • A61K31/4353Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom ortho- or peri-condensed with heterocyclic ring systems
    • A61K31/436Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom ortho- or peri-condensed with heterocyclic ring systems the heterocyclic ring system containing a six-membered ring having oxygen as a ring hetero atom, e.g. rapamycin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/10Antimycotics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • A61P35/04Antineoplastic agents specific for metastasis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/06Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Nitrogen And Oxygen Or Sulfur-Condensed Heterocyclic Ring Systems (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Un compuesto según la Formula (I) siguiente:**Fórmula** en la que: X representa un enlace o CH2; R1 representa un grupo ceto o (H,H); R2 representa OH u OMe; R3 representa H, OH u OMe; R4 y R5 representa cada uno independientemente H u OH; R6 representa -R7, -C(O)R7, -(CH2)2-O-[CR21R22-O]a-C(O)-R23; -CR21R22-O-C(O)-R23; -POR19R20, -PO(OR19)(OR20) o Y-R15; R7 representa -(CR8R9)m(CR10R11)pCR12R13R14; R8 y R9 representa cada uno independientemente alquilo C1-C4, alquenilo C2-C4o alquinilo C2-C4, pudiendo estar cualquiera de estos grupos opcionalmente substituido con -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, -COOH o -NH2; o R8 y R9 representan cada uno independientemente H, trifluorometilo o F; R10, R11, R12, R13 y R14 representa cada uno independientemente alquilo C1-C4, alquenilo C2-C4 o alquinilo C2- C4, pudiendo estar cualquiera de estos grupos opcionalmente substituido con -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, - COOH o -NH2; o R10, R11, R12, R13 y R14 pueden ser independientemente seleccionados entre H, -(CR8R9)qNH2, - (CR8R9)qOH, CF3, F, COOH; o R10 y R11 o R12 y R13 o R13 y R14 pueden ser tomados junto con el carbono al que están unidos para formar un C3-C6 cicloalquilo o un anillo de heteroalquilo de 3 a 6 miembros que contiene uno o más heteroátomos seleccionados entre N, O y S y que está opcionalmente substituido con hasta 5 grupos - (CR8R9)qOH, -(CR8R9)qNH2 o COOH; Y >= enlace, -C(O)-O-, -(CH2)2-O-C(O)-O-; R15 representa**Fórmula** los R16 son cada uno independientemente H u OH; R17 es independientemente seleccionado entre H, OH y NH2; R18 es independientemente seleccionado entre H, -CH3, -CH2OH y -COOH; con la condición, sin embargo, de que no más de 2 grupos seleccionados entre R16, R17 y R18 representen H o CH3; R19 y R20 representa cada uno independientemente H o C1-C4 alquilo, o R19 y R20 representan juntos >=CH2; R21 es independientemente seleccionado entre H, CH3; R22 es independientemente seleccionado entre H, -CH3, -CH>=CH2, -CH2Cl, -CHCl2, -CCl3, -CH(OH)Me,-CH2OH, -CH2CH3, -CH(CI)Me.

Description

Derivados 39-desmetoxi de rapamicina
Campo de la invención
La presente invención se refiere a nuevos derivados 39-desmetoxirrapamicina y a procedimientos para su producción.
También se describe en el presente documento el uso de estos derivados 39-desmetoxirrapamicina en el tratamiento del cáncer y/o de malignidades de las células B, en la inducción o el mantenimiento de la inmunosupresión, en el tratamiento del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de los trastornos autoinmunes, de las enfermedades inflamatorias, de la enfermedad vascular y de las enfermedades fibrióticas, en la estimulación de la regeneración neuronal o en el tratamiento de infecciones fúngicas.
Antecedentes de la invención
La rapamicina (sirolimus) (Figura 1) es un macrólido lipofílico producido por Streptomyces hygroscopicus NRRL 5491 (Sehgal y col., 1975; Vézina y col., 1975; U.S. 3.929.992; U.S. 3.993.749) con un resto 1,2,3-tricarbonilo unido a una lactona de ácido pipecólico (Paiva y col., 1991). Para los fines de esta invención, se describe la rapamicina mediante la convención de numeración de McAlpine y col. (1991) con preferencia con respecto a las convenciones de numeración de Findlay y col. (1980) o Chemical Abstracts (11th Cumulative Index, 1982-1986 p60719CS).
La rapamicina tiene un valor farmacológico significativo debido al amplio espectro de actividades exhibidas por el compuesto. La rapamicina muestra una moderada actividad antifúngica, principalmente frente a especies de Candida, pero también frente a hongos filamentosos (Baker y col., 1978; Sehgal y col., 1975; Vézina y col., 1975;
U.S. 3.929.992; U.S. 3.993.749). La rapamicina inhibe la proliferación celular dirigiéndose a las rutas de transducción de señal en una variedad de tipos celulares, por ejemplo inhibiendo las rutas de señalización que permiten la progresión de la fase G1 a la S del ciclo celular (Kuo y col., 1992). En los linfocitos T, la rapamicina inhibe la señalización desde el receptor IL-2 y la posterior autoproliferación de los linfocitos T, para dar lugar a inmunosupresión. Los efectos inhibitorios de la rapamicina no se limitan a los linfocitos T, ya que la rapamicina inhibe la proliferación de muchos tipos de células de mamíferos (Brunn y col., 1996). La rapamicina es, por lo tanto, un potente inmunosupresor con aplicaciones terapéuticas establecidas o predichas en la prevención del rechazo de aloinjerto de órganos y en el tratamiento de enfermedades autoinmunes (Kahan y col., 1991). La 40-O-(2hidroxi)etilrrapamicina (SDZ RAD, RAD 001, Certican, everolimus) es un análogo semisintético de la rapamicina que muestra efectos farmacológicos inmunosupresores y está también bajo investigación como agente anticanceroso (Sedrani, R. y col., 1998; Kirchner y col., 2000; U.S. 5.665.772, Boulay y col., 2004). Se obtuvo aprobación para este fármaco como inmunosupresor para Europa en 2003. El derivado éster de rapamicina CCI-779 (Wyeth-Ayerst) inhibe el crecimiento celular in vitro e inhibe el crecimiento tumoral in vivo (Yu y col., 2001). CCI-779 está actualmente en pruebas clínicas de Fase III como potencial agente anticanceroso. El valor de la rapamicina en el tratamiento de la psoriasis crónica en placas (Kirby y Griffiths, 2001), el uso potencial de efectos tales como la estimulación del crecimiento de las neuritas en células PC12 (Lyons y col., 1994), el bloqueo de las respuestas proliferativas a las citoquinas por las células vasculares y musculares lisas después de una lesión mecánica (Gregory y col., 1993) y su papel en la prevención de la fibrosis de aloinjertos (Waller y Nicholson, 2001) son áreas de intensa investigación (Kahan y Camardo, 2001). Recientes informes revelan que la rapamicina se asocia a una menor incidencia de cáncer en pacientes con aloinjertos de órganos que están bajo terapia inmunosupresora a largo plazo que en aquéllos que siguen otros regímenes inmunosupresores, y que esta reducida incidencia del cáncer se debe a inhibición de la angiogénesis (Guba y col., 2002). Se ha reportado que las actividades neurotróficas de los ligandos de inmunofilina son independientes de su actividad inmunosupresora (Steiner y col., 1997) y que se promueve la estimulación del crecimiento de los nervios por alteración del complejo de los receptores de esteroides maduros, como se señala en la solicitud de patente WO 01/03692. Se han descrito efectos colaterales, tales como hiperlipemia y trombocitopenia, así como potenciales efectos teratogénicos (Hentges y col., 2001; Kahan y Camardo, 2001).
El esqueleto de policétido de la rapamicina es sintetizado por condensación de cabeza a cola de un total de siete unidades de propionato y siete de acetato a una unidad iniciadora de ácido ciclohexanocarboxílico derivada de shikimato por las muy grandes proteínas multifuncionales que constituyen la policétido sintasa de Tipo I (rap PKS, Paiva y col., 1991). El aminoácido derivado de L-lisina, ácido pipecólico, se condensa mediante una unión amida sobre el último acetato del esqueleto de policétido (Paiva y col., 1993), seguido de lactonización para formar el macrociclo.
Las secuencias nucleotídicas para cada uno de los tres genes PKS de rapamicina, el gen codificante de NRPS y las secuencias de los genes tardíos flanqueantes, y los correspondientes polipéptidos, fueron identificados por Aparicio y col., 1996, y Schwecke y col., 1995, y se depositaron en el NCBI bajo el número de acceso X86780, y se han publicado recientemente correcciones para esta secuencia en WO 04/007709.
El primer producto libre de enzima del grupo biosintético de la rapamicina ha sido designado como prerrapamicina (WO 04/007709, Gregory y col., 2004). La producción de la rapamicina totalmente procesada requiere un
procesamiento adicional del núcleo del policétido/NRPS por las enzimas codificadas por los genes tardíos de la rapamicina, RapJ, RapN, RapO, RapM, RapQ y Rapl.
Se piensa que las acciones farmacológicas de la rapamicina caracterizadas hasta la fecha están mediadas por la interacción con receptores citosólicos denominados FKBP. El principal receptor intracelular de rapamicina en linfocitos T eucarióticos es FKBP12 (DiLella y Craig, 1991) y el complejo resultante interacciona específicamente con proteínas diana para inhibir la cascada de transducción de señal de la célula.
Se ha identificado la diana del complejo rapamicina-FKBP12 en levaduras como TOR (“target of rapamycin”, diana de la rapamicina) (Alarcón y col., 1999) y la proteína de mamíferos se conoce como FRAP ("FKBP-rapamycin associated protein”, proteína asociada a FKBP-rapamicina) o mTOR ("mammalian target of rapamycin”, diana en mamíferos de la rapamicina) (Brown y col., 1994).
Se ha descrito una conexión entre la señalización mTOR y la síntesis proteica localizada en neuronas; su efecto sobre el estado de fosforilación de las proteínas implicadas en el control de la traducción; la abundancia de componentes de la maquinaria de traducción a los niveles de transcripción y traducción; el control de la actividad permeasa de aminoácidos y la coordinación de la transcripción de muchas enzimas implicadas en rutas metabólicas (Raught y col., 2001). Las rutas de señalización sensibles a la rapamicina también parecen tener un importante papel en el desarrollo del cerebro embrionario, el aprendizaje y la formación de la memoria (Tang y col., 2002). La investigación sobre proteínas TOR en levaduras también reveló sus papeles en la modulación de rutas de señalización sensibles a nutrientes (Hardwick y col., 1999). De forma similar, se ha identificado a mTOR como una diana directa para la acción de la proteína kinasa B (akt) y como poseedora de un papel clave en la señalización de la insulina (Shepherd y col., 1998; Navé y col., 1999). También se ha implicado a la TOR de mamíferos en la polarización del citoesqueleto de actina y la regulación de la iniciación de la traducción (Alarcón y col., 1999). Las fosfatidilinositol 3-kinasas, tales como la mTOR, son funcionales en varios aspectos de la patogenia de tumores, tales como la progresión del ciclo celular, la adhesión, la supervivencia celular y la angiogénesis (Roymans y Slegers, 2001).
Estudios farmacocinéticos de la rapamicina y de análogos de la rapamicina han demostrado la necesidad de desarrollar nuevos compuestos de rapamicina que puedan ser más estables en solución y más resistentes al ataque metabólico, y/o que tengan una mejor permeabilidad a través de la membrana celular y un menor eflujo, y que, por lo tanto, puedan exhibir una mejor biodisponibilidad oral.
Se ha indicado un rango de análogos de rapamicina sintetizados usando los sitios químicamente disponibles de la molécula. La descripción de los siguientes compuestos fue adaptada al sistema de numeración de la molécula la rapamicina descrito en la Figura 1. Los sitios químicamente disponibles sobre la molécula para derivatización o substitución incluyen los grupos hidroxilo C40 y C28 (por ejemplo, U.S. 5.665.772, U.S. 5.362.718), los grupos metoxi C39 y C16 (por ejemplo, WO 96/41807, U.S. 5.728.710) y los grupos ceto C32, C26 y C9 (por ejemplo, U.S. 5.378.836, U.S. 5.138.051, U.S. 5.665.772). La hidrogenación en C17, C19 y/o C21, dirigida al trieno, dio lugar a retención de actividad antifúngica, pero a pérdida relativa de inmunosupresión (por ejemplo, U.S. 5.391.730, U.S. 5.023.262). Se han conseguido por derivatización mejoras significativas en la estabilidad de la molécula (por ejemplo, formación de oximas en C32, C40 y/o C28, U.S. 5.563.145, U.S. 5.446.048), resistencia al ataque metabólico (por ejemplo, U.S. 5.912.253), biodisponibilidad (por ejemplo, U.S. 5.221.670, U.S. 5.955.457, WO 98/04279) y producción de profármacos (por ejemplo, U.S. 6.015.815, U.S. 5.432.183).
Sin embargo, sigue necesitándose un mayor rango de derivados de rapamicina con mejor estabilidad metabólica, mejor permeabilidad a través de la membrana celular y/o menor velocidad de eflujo. Dichos derivados de rapamicina tendrían una gran utilidad en el tratamiento de un amplio rango de afecciones. La presente invención proporciona un rango de derivados 39-desmetoxirrapamicina con mejor estabilidad metabólica, mejor permeabilidad a través de la membrana celular y/o menor velocidad de eflujo y/o un perfil inhibitorio celular diferente a la rapamicina. Dichos compuestos son útiles en medicina, en particular para el tratamiento del cáncer y/o de las malignidades de las células B, la inducción o el mantenimiento de la inmunosupresión, el tratamiento del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de trastornos autoinmunes, de enfermedades inflamatorias, de la enfermedad vascular y de las enfermedades fibrióticas, la estimulación de la regeneración neuronal o el tratamiento de infecciones fúngicas.
Sumario de la invención
La presente invención proporciona derivados 39-desmetoxi de la rapamicina, procedimientos para la preparación de estos compuestos, inrtermediarios para los mismos y estos compuestos para uso en medicina.
Se desvelan en el presente documento derivados 39-desmetoxi de la rapamicina caracterizados por que la posición 40-hidroxi está derivatizada como un éster de ácido carboxílico, como un éter, como un éster fosfato, como un éster fosfinato, como un acetal o como un glicosilo.
Se pueden estudiar la estabilidad metabólica, la permeabilidad a través de la membrana celular, el eflujo y la biodisponibilidad de los compuestos de la invención como se indica a continuación.
Cuando se derivatiza la 39-desmetoxirrapamicina como un éster de ácido carboxílico, como un éter o como un acetal, el grupo derivatizador preferiblemente contiene no más de 12 átomos de carbono (especialmente 7 o menos, particularmente 5 o menos, átomos de carbono). Preferiblemente, contiene al menos un grupo funcional (especialmente al menos dos grupos funcionales) seleccionado entre -CF2PO(OH)2,-PO(OH)2, -COOH, -OH y -NH2, particularmente seleccionado entre -COOH y -OH, más particularmente -OH.
Cuando se derivatiza la 39-desmetoxirrapamicina como un acetal derivado de un grupo glicosilo, preferiblemente cada glicosilo se forma a partir de un azúcar o de un glicósido que preferiblemente contiene no más de 12 átomos de carbono (especialmente 7 o menos, particularmente 6 o menos, átomos de carbono). Como ejemplos, se incluyen mono-y disacáridos, particularmente monosacáridos que forman anillos de 5 y 6 miembros. Preferiblemente, contiene al menos un grupo funcional (especialmente al menos dos grupos funcionales) seleccionado entre -COOH, -OH y -NH2, particularmente seleccionado entre -NH2 y -OH, más particularmente -OH.
Cuando se derivatiza la 39-desmetoxirrapamicina como un éster fosfato, preferiblemente los grupos alquilo contienen no más de 4 átomos de carbono.
Cuando se derivatiza la 39-desmetoxirrapamicina como un éster fosfinato, preferiblemente los grupos alquilo contienen no más de 4 átomos de carbono; un ejemplo es el éster formado con ácido fosfínico.
A continuación se dan ejemplos específicos de restos derivatizadores.
En un primer aspecto, la presente invención proporciona derivados 39-desmetoxirrapamicina según la fórmula (I) siguiente, o una sal farmacéuticamente aceptable de los mismos:
en la que:
X representa un enlace o CH2; R1 representa un grupo ceto o (H,H); R2 representa OH u OMe; R3 representa H, OH u OMe; R4 y R5 representan cada uno independientemente H u OH; R6 representa -R7, -C(O)R7, -(CH2)2-O-[CR21R22-O]a-C(O)-R23; -CR21R22-O-C(O)-R23; -POR19R20, -PO(OR19)(OR20) o Y-R15; R7 representa -(CR8R9)m(CR10R11)pCR12R13R14; R8 y R9 representan cada uno independientemente C1-C4 alquilo, C2-C4 alquenilo o C2-C4 alquinilo, pudiendo estar cualquiera de estos grupos opcionalmente substituido con -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, -COOH o -NH2; o R8 y R9 representan cada uno independientemente H, trifluorometilo o F; R10, R11, R12, R13 y R14 representan cada uno independientemente C1-C4 alquilo, C2-C4 alquenilo o C2-C4 alquinilo, pudiendo estar cualquiera de estos grupos opcionalmente substituido con -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, -COOH o -NH2; o R10, R11, R12, R13 y R14 pueden ser independientemente seleccionados entre H, -(CR8R9)qNH2, -(CR8R9)qOH, CF3, F, COOH; o R10 y R11 o R12 y R13 o R13 y R14 pueden ser tomados junto con el carbono al que están unidos para formar un C3-C6 cicloalquilo o un anillo de heteroalquilo de 3 a 6 miembros que contiene uno o más heteroátomos seleccionados entre N, O y S y que está opcionalmente substituido con hasta 5 grupos -(CR8R9)qOH, -(CR8R9)qNH2 o COOH; Y = enlace, -C(O)-O-, -(CH2)2-O-C(O)-O-;
R15 representa
los R16 son cada uno independientemente H u OH;
R17 es independientemente seleccionado entre H, OH y NH2;
5 R18 es independientemente seleccionado entre H, -CH3, -CH2OH y -COOH; con la condición, sin embargo, de que no más de 2 grupos seleccionados entre R16, R17 y R18 representen H o CH3; R19 y R20 representan cada uno independientemente H o C1-C4 alquilo, o R19 y R20 representan juntos =CH2; R21 es independientemente seleccionado entre H, CH3;
10 R22 es independientemente seleccionado entre H, -CH3, -CH=CH2, -CH2Cl, -CHCl2, -CCl3, -CH(OH)Me,-CH2OH, -CH2CH3, -CH(CI)Me; R23 es independientemente R7, Y-R15 o un anillo de arilo o heteroarilo de 5 o 6 miembros opcionalmente substituido con entre uno y tres grupos seleccionados entre OH, F, Cl, Br, NO2 y NH2; a representa 0 o 1; m, p y q representan cada uno independientemente un número entero de 0-4;
15 con la condición, sin embargo, de que el resto R7 no contenga más de 12 átomos de carbono y sí contenga al menos un grupo funcional seleccionado entre -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -COOH, OH o NH2; o una sal farmacéuticamente aceptable de los mismos.
La estructura anterior muestra un tautómero representativo, y la invención cubre todos los tautómeros de los compuestos de fórmula (I), por ejemplo compuestos ceto, donde se ilustran compuestos enol, y viceversa.
20 A menos que se indiquen específicamente estereoisómeros particulares (por ejemplo, mediante un enlace en negrilla o en línea discontinua en un estereocentro relevante en una fórmula estructural, por representación de un doble enlace como con configuración E o Z en una fórmula estructural o usando nomenclatura de designación de la estereoquímica), todos los estereoisómeros quedan incluidos en el alcance de la invención como compuestos puros, así como mezclas de los mismos. A menos que se indique algo diferente, los enantiómeros individuales,
25 diastereómeros, isómeros geométricos y sus combinaciones y mezclas quedan todos amparados por la presente invención. Las formas cristalinas polimórficas y los solvatos e hidratos quedan también amparados dentro del alcance de la presente invención.
En otro aspecto, la presente invención proporciona derivados 39-desmetoxirrapamicina tales como compuestos de fórmula (I) o una sal farmacéuticamente aceptable de los mismos, para uso como producto farmacéutico.
30 Definiciones
Los artículos "un"y "una" son usados en el presente documento para referirse a uno o a más de uno (es decir, al menos uno) de los objetos gramaticales del artículo. A modo de ejemplo "un análogo" significa un análogo o más de un análogo.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "análogo(s)" se refiere a compuestos químicos que son
35 estructuralmente similares a otro, pero que difieren ligeramente en cuanto a composición (como en la substitución de un átomo por otro o en la presencia o ausencia de un grupo funcional particular).
En particular, el término "análogo de 39-desmetoxirrapamicina" se refiere a un compuesto de 39desmetoxirrapamicina producido mediante los procedimientos de WO 2004/007709 y/o como se muestra mediante la fórmula (II). También se hace referencia a estos compuestos como "compuestos parentales" y estos términos
40 son utilizados indistintamente en la presente solicitud. En la presente solicitud, el término "análogo de 39desmetoxirrapamicina" incluye referencia a la propia 39-desmetoxirrapamicina.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "derivado(s)" se refiere a compuestos químicos que han sido modificados con respecto a su compuesto parental por química orgánica semisintética.
En particular, el término "derivado de 39-desmetoxirrapamicina" se refiere a un derivado de 39
45 desmetoxirrapamicina según la fórmula (I) anterior, o a una sal del mismo farmacéuticamente aceptable, producido por alteración semisintética de un análogo de 39-desmetoxirrapamicina. También se hace referencia a estos compuestos como "compuestos de la invención"o "derivados 39-desmetoxi de rapamicina", y estos términos son utilizados indistintamente en la presente solicitud.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "trastorno(s) autoinmune(s)" incluye, sin limitación: lupus eritematoso sistémico (LES), artritis reumatoide, miastenia gravis y esclerosis múltiple.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "enfermedades inflamatorias" incluye, sin limitación: psoriasis, dermatitis, eczema, seborrea, enfermedad inflamatoria del intestino (incluyendo, aunque sin limitación, la colitis ulcerativa y la enfermedad de Crohn), inflamación pulmonar (incluyendo el asma, la enfermedad pulmonar obstructiva crónica, el enfisema, el síndrome del distrés respiratorio agudo y la bronquitis), artritis reumatoide y uveítis ocular.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "cáncer" se refiere a un crecimiento maligno de células en la piel o en los órganos corporales, por ejemplo, aunque sin limitación, en la mama, en la próstata, en el pulmón, en el riñón, en el páncreas, en el estómago o en el intestino. Un cáncer tiende a infiltrarse en el tejido adyacente y a diseminarse (metastatizar) hacia órganos distantes, por ejemplo hacia el hueso, el hígado, el pulmón o el cerebro. Tal como se utiliza en el presente documento, el término cáncer incluye tipos de células tumorales metastáticas, tales como, aunque sin limitación, melanoma, linfoma, leucemia, fibrosarcoma, rabdomiosarcoma y mastocitoma y tipos de carcinoma de tejidos, tales como, aunque sin limitación, cáncer colorrectal, cáncer de próstata, cáncer de pulmón de células pequeñas y cáncer de pulmón de células no pequeñas, cáncer de mama, cáncer pancreático, cáncer de vejiga, cáncer renal, cáncer gástrico, glioblastoma, cáncer hepático primario y cáncer de ovario.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "malignidades de las células B" incluye un grupo de trastornos que incluyen la leucemia linfocítica crónica (LLC), el mieloma múltiple y el linfoma no Hodgkin (LNH). Se trata de enfermedades neoplásicas de la sangre y de los órganos formadores de sangre. Causan disfunción de la médula ósea y del sistema inmunitario, lo que hace al hospedador altamente susceptible a la infección y a la hemorragia.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "enfermedad vascular" incluye, sin limitación: trastornos vasculares hiperproliferativos (por ejemplo, reestenosis y oclusión vascular), aterosclerosis vascular de injerto, enfermedad cardiovascular, enfermedad vascular cerebral y enfermedad vascular periférica (por ejemplo, enfermedad de las arterias coronarias, arteriosclerosis, aterosclerosis, arteriosclerosis no ateromatosa o lesión de la pared vascular).
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "regeneración neuronal" se refiere a la estimulación del crecimiento de las células neuronales e incluye el crecimiento de las neuritas y la recuperación funcional de las células neuronales. Como enfermedades y trastornos en los que la regeneración neuronal puede tener un beneficio terapéutico significativo, se incluyen, aunque sin limitación, la enfermedad de Alzheimer, la enfermedad de Parkinson, la corea de Huntington, la esclerosis lateral amiotrófica, la neuralgia del trigémino, la neuralgia glosofaríngea, la parálisis de Bell, la distrofia muscular, el accidente cerebrovascular, la atrofia muscular progresiva, la atrofia muscular heredada bulbar progresiva, la espondilosis cervical, el síndrome de Gullain-Barre, la demencia, las neuropatías periféricas y la lesión de nervios periféricos, ya estén causados por lesión física (por ejemplo, lesión
o traumatismo de la médula espinal, lesión o daño del nervio ciático o facial) o por un estado de enfermedad (por ejemplo, diabetes).
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "enfermedades fibrióticas" se refiere a enfermedades asociadas a la excesiva producción de la matriz extracelular, e incluye (sin limitación) sarcoidosis, queloides, glomerulonefritis, enfermedad renal en fase terminal, fibrosis hepática (incluyendo, aunque sin limitación, cirrosis, enfermedad hepática debida al alcohol y esteatohepatitis), nefropatía de injerto crónica, adherencias quirúrgicas, vasculopatía, fibrosis cardíaca, fibrosis pulmonar (incluyendo, aunque sin limitación, la fibrosis pulmonar idiopática y la alveolitis fibrosante criptogénica), degeneración macular, retinopatía retiniana y vítrea y fibrosis inducida por quimioterapia o radiación.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "enfermedad del injerto contra el huésped" se refiere a una complicación que se observa tras un trasplante alogénico de células madre/médula ósea. Se produce cuando las células que luchan contra la infección del donante reconocen el cuerpo del paciente como diferente o extraño. Estas células que luchan contra la infección atacan entonces los tejidos en el cuerpo del paciente del mismo modo que si estuvieran luchando contra una infección. La enfermedad del injerto contra el huésped está categorizada como aguda cuando se produce en los primeros 100 días después del trasplante y como crónica si se produce más de 100 días después del trasplante. Los tejidos típicamente implicados incluyen el hígado, el tracto gastrointestinal y la piel. La enfermedad del injerto contra el huésped crónica se produce en aproximadamente un 10-40 por ciento de los pacientes después de un trasplante de células madre/médula ósea.
Tal como se utiliza en el presente documento, el término "biodisponibilidad" se refiere al grado o a la velocidad a la que un fármaco u otra substancia se absorbe o se vuelve disponible en el sitio de actividad biológica tras su administración. Esta propiedad depende de una serie de factores, incluyendo la solubilidad del compuesto, la velocidad de absorción en el intestino, el grado de unión a proteínas y el metabolismo, etc. Se describen en el presente documento diversas pruebas de biodisponibilidad que le resultarían familiares a un experto en la técnica (véase también Trepanier y col., 1998, Gallant-Haidner y col., 2000).
El término "solubilidad en agua", tal como se utiliza en la presente solicitud, se refiere a la solubilidad en medios acuosos, por ejemplo, solución salina tamponada con fosfatos (PBS) a pH 7,4.
Las sales farmacéuticamente aceptables de los compuestos de la invención, tales como los compuestos de fórmula (I), incluyen sales convencionales formadas a partir de ácidos o bases inorgánicos u orgánicos farmacéuticamente aceptables, así como sales de adición de ácido de amonio cuaternario. Como ejemplos más específicos de sales de ácido adecuadas, se incluyen las de clorhídrico, bromhídrico, sulfúrico, fosfórico, nítrico, perclórico, fumárico, acético, propiónico, succínico, glicólico, fórmico, láctico, maleico, tartárico, cítrico, palmoico, malónico, hidroximaleico, fenilacético, glutámico, benzoico, salicílico, fumárico, toluensulfónico, metanosulfónico, naftaleno-2sulfónico, bencenosulfónico, hidroxinaftoico, yodhídrico, málico, esteroico, tánico y similares. Otros ácidos, tales como el oxálico, aun no siendo en sí mismos farmacéuticamente aceptables, pueden ser útiles en la preparación de sales útiles como intermediarios en la obtención de los compuestos de la invención y sus sales farmacéuticamente aceptables. Como ejemplos más específicos de sales básicas adecuadas, se incluyen las sales de sodio, litio, potasio, magnesio, aluminio, calcio, zinc, N,N’-dibenciletilendiamina, cloroprocaína, colina, dietanolamina, etilendiamina, N-metilglucamina y procaína. Las referencias que se hacen más adelante en el presente documento a un compuesto según la invención incluyen tanto los compuestos de fórmula (I) como sus sales farmacéuticamente aceptables.
Los grupos alquilo, alquenilo y alquinilo pueden ser de cadena lineal o ramificados.
Como ejemplos de grupos alquilo C1-C4, se incluyen metilo, etilo, n-propilo, i-propilo y n-butilo.
Como ejemplos de grupos alquenilo C2-C4, se incluyen etenilo y 2-propenilo.
Como ejemplos de grupos alquinilo C2-4, se incluye etinilo.
Grupos cicloalquilo C3-C6 se refiere a un anillo de cicloalquilo que incluye 3-6 átomos de carbono y que puede estar opcionalmente ramificado. Como ejemplos, se incluyen ciclopropilo, ciclobutilo, metilciclobutilo, ciclopentilo y ciclohexilo. Los anillos de heteroalquilo de 3 a 6 miembros que contienen uno o más heteroátomos seleccionados entre N, O y S incluyen anillos que contienen uno o dos heteroátomos, especialmente un heteroátomo. Como ejemplos, se incluyen furano, pirano, oxetano, oxirano, piperidina, pirrolidina, azetidina, aziridina, tiirano, tietano, tiofeno, tiopirano y morfolina.
Como ejemplos de substituyentes eventuales para los anillos de heteroalquilo de 3 a 6 miembros, se incluyen -OH, -CH2OH, NH2, CH2NH2 y COOH. Típicamente, los anillos de heteroalquilo de 3 a 6 miembros pueden estar sin substituir o substituidos por 1 o 2, por ejemplo 1, substituyentes.
Descripción de la invención
La presente invención proporciona derivados 39-desmetoxirrapamicina, como se ha indicado anteriormente, procedimientos para la preparación de estos compuestos, intermediarios de los mismos y estos compuestos para uso en medicina.
Preferiblemente, R7 contiene 7 o menos, especialmente 5 o menos, átomos de carbono.
R7 preferiblemente contiene al menos un grupo funcional seleccionado entre -PO(OH)2, -OH, -COOH y -NH2, more preferiblemente -OH, -COOH o -NH2, especialmente-COOH y OH, más especialmente OH. Preferiblemente, R7 contiene 2 o más substituyentes, por ejemplo, 2 grupos -OH.
Adecuadamente, X representa CH2;
Adecuadamente, a representa 0.
Adecuadamente, p representa 0 o 1.
Adecuadamente, m representa 0 o 1.
Adecuadamente, q representa 0, 1 o 2.
Adecuadamente, R11 representa H. Adecuadamente R12 representa H.
Adecuadamente, R13 representa H u OH.
Cuando p representa 1, adecuadamente R10 representa Me, OH o CH2OH.
Cuando p representa 1, adecuadamente R11 representa Me, H o CH2OH.
Cuando m y p representan ambos 0, adecuadamente R12 y R13 representan ambos H, y R14 representa -(CR8R9)q-OH, donde q = 0 o 1 y R8 y R9 representan ambos H.
Cuando p representa 1 y m representa 0, adecuadamente R10 y R11 representan ambos H, R12 representa H, R13 representa H, OH o NH2 y R14 representa -(CR8R9)q-OH, donde q = 0 o 1 y R8 y R9 representan ambos H.
Cuando R6 representa -POR15R16, adecuadamente R15 y R16 representan ambos CH3 o representan ambos CH2CH3.
Adecuadamente, R6 representa el residuo derivado de la formación de un éster con ácido hidroxilacético, ácido 35 hidroxi-2,2-dimetilpropiónico, ácido 2,3-dihidroxipropiónico, ácido 3-hidroxi-2-hidroximetilpropiónico o ácido 2,2bis(hidroximetil)propiónico.
En un conjunto de ejemplos de compuestos, R6 representa C(O)R7.
Preferiblemente, R7 es el resto formado por condensación del alcohol macrocíclico con un ácido seleccionado entre la lista consistente en ácido hidroxiacético, ácido 3-hidroxi-2,2,dimetilpropiónico, ácido 2,3-dihidroxipropiónico, ácido 10 3-hidroxi-2-hidroximetilpropiónico y ácido 2,2-bis(hidroximetil)propiónico, especialmente ácido 2,2bis(hidroximetil)propiónico.
Cuando R15 representa:
como ejemplos de este resto se incluye el resto formado por formación de un acetal con (i) glucosa (es decir, R18
15 representa CH2OH y cada R16 y R17 representa OH), por ejemplo, D-glucosa; (ii) glucosamina (es decir, R18 representa CH2OH, cada R16 representa OH y R17 representa NH2), por ejemplo, D-glucosamina; (iii) ácido glucurónico (es decir, R18 representa COOH y cada R16 y R17 representa OH), por ejemplo, ácido D-glucurónico, y
(iv) arabinosa (es decir, R18 representa H y cada R16 y R17 representa OH), por ejemplo, D-arabinosa.
Cuando R15 representa:
como ejemplos de este resto se incluye el resto formado por formación de un acetal con fructosa (es decir, cada R16 representa OH), por ejemplo, el residuo de D-fructosa.
Cuando R15 representa:
25 como ejemplos de este resto se incluye el resto formado por formación de un éster con ácido glucurónico (es decir, cada R16 representa OH), por ejemplo, el residuo de ácido D-glucurónico.
En general, los compuestos de la invención son preparados por derivatización semisintética de un análogo de 39desmetoxirrapamicina de fórmula (II).
Por lo tanto, un procedimiento para preparar un compuesto de fórmula (I) o una sal farmacéuticamente aceptable del 30 mismo comprende:
(a) hacer reaccionar un análogo de 39-desmetoxirrapamicina de fórmula (II):
en la que RA representa H o (CH2)2-OH
o un derivado protegido del mismo, con un compuesto de fórmula (III):
HO-R6 (III)
o un derivado activado de R6;
(b)
convertir un compuesto de fórmula (I) o una sal del mismo en otro compuesto de fórmula (I) u otra sal farmacéuticamente aceptable del mismo; o
(c)
desproteger un compuesto protegido de fórmula (I).
El término "derivado activado", tal como se ha usado anteriormente, se refiere a (por ejemplo, aunque sin limitación): en el caso de ésteres -ácidos carboxílicos, haluros de acilo, anhídridos mixtos, anhídridos simétricos o ésteres carboxílicos; en el caso de éteres -haluros de alquilo, mesilatos de alquilo, triflatos de alquilo, tosilatos de alquilo u otros derivados de alquilo adecuadamente activados; en el caso de fosfatos y fosfonatos -clorofosfatos, cianofosfatos de dialquilo, dialquilfosforamidatos o clorofosfitos de dialquilo; o en el caso de acetales derivados de grupos glicosilo -utilizando un donador de glicosilo, por ejemplo, haluros de glicosilo, tioglicósidos, 1-Oacilglicósidos, orto-ésteres, 1-O o 1-S carbonatos, tricloroimidatos, 4-pentenilglicósidos, ésteres fosfato de glicosilo, 1-O-sulfonilos o glicósidos 1-O-sililados.
En el procedimiento (a), se pueden preparar análogos de 39-desmetoxirrapamicina de fórmula (II) como se describe en WO 2004/007709 y como además se indica en los ejemplos del presente documento.
Además de los procedimientos específicos y de las referencias que se proporcionan en el presente documento, un experto en la técnica puede también consultar referencias de libros de texto estándar para procedimientos sintéticos, incluyendo, aunque sin limitación, el libro de texto de Vogel de química orgánica práctica (Furniss y col., 1989) y la química orgánica avanzada de March (Smith y March, 2001).
Adicionalmente, se pueden proteger los grupos hidroxilo presentes mediante una de las muchas estrategias de protección de hidroxi estándar disponibles para un experto en la técnica. Los grupos hidroxilo pueden ser protegidos formando éteres, incluyendo, aunque sin limitación, éteres alquílicos substituidos, éteres bencílicos substituidos y éteres silílicos. Preferiblemente, se forma un éter silílico, incluyendo, aunque sin limitación, éter trimetilsilílico, trietilsilílico, t-butildimetilsilílico y t-butildifenilsilílico, por reacción de una forma activada del silano (incluyendo, aunque sin limitación, cloruro de sililo o triflato de sililo) con 39-desmetoxirrapamicina en presencia de una base adecuada. Se podría eliminar entonces el grupo protector por hidrólisis ácida o por escisión asistida por fluoruro. Los 1,2-dioles pueden ser protegidos como acetónidos, en base a la condensación de un derivado de acetona. Éste puede ser eliminado por catálisis ácida.
Los análogos de 39-desmetoxirrapamicina de fórmula (II) pueden ser usados como plantillas para posterior semisíntesis (es decir, procedimiento (a)). El grupo hidroxilo pendiente en C-40 puede ser funcionalizado, por ejemplo, por acilación, alquilación, glicosilación o fosforilación a través de una serie de transformaciones sintéticas conocidas para un experto en la técnica.
En el procedimiento (a), cuando R6 representa un resto de fórmula -C(O)R7 o Y-R15 en la que R15 representa
e Y = enlace, la formación de un hidroxiéster, u O-acilación, puede estar mediada por reacción del grupo hidroxilo de los compuestos de fórmula (II) con un ácido carboxílico correspondiente, preferiblemente en forma activada, por ejemplo un compuesto de fórmula (IIIAi) o (IIIAii):
o con un compuesto de fórmula (IIIB):
en la que W es un grupo que activa un ácido carboxílico para el ataque nucleofílico. Los ácidos carboxílicos pueden
10 ser activados por formación de, por ejemplo, aunque sin limitación, haluros de acilo (por ejemplo, W = Cl), anhídridos mixtos (es decir, W = OC(O)R’), anhídridos simétricos (W = OC(O)R7) o ésteres carboxílicos (es decir, W = OR’).
Los compuestos de fórmula (IIIAi), (IIIAii) o (IIIB) pueden ser preparados a partir de sus ácidos carboxílicos comercialmente disponibles usando procedimientos estándar conocidos para un experto en la técnica, y, en un aspecto específico, se pueden preparar compuestos según la fórmula (IIIAi) en la que R7 es 15 -(CR8R9)m(CR10R11)pCR12R13R14 usando procedimientos como los descritos en US 5.362.718, US 5.665.772 o EP
0.663.916.
Preferiblemente, un análogo de 39-desmetoxirrapamicina reacciona en medio orgánico con un cloruro de ácido o un anhídrido mixto en presencia de una base. Como bases que pueden ser utilizadas, se incluyen, aunque sin limitación, piridina, 4,4-dimetilaminopiridina (DMAP), 2,6-lutideno, 2,6-di-terc-butilpiridina, trietilamina,
20 diisopropiletilamina, otras trialquilaminas, 1,8-diazabiciclo[5.4.0]undec-7-eno (DBU) o 1,5-diazabiciclo[4.3.0]non-5eno (DBN). En ejemplos específicos descritos en el presente documento, la 39-desmetoxirrapamicina reacciona con un anhídrido mixto en presencia de DMAP.
En el procedimiento (a), cuando R6 representa un resto de fórmula -C(O)R7 o Y-R15 en la que R15 representa
25 e Y = -C(O)O-o -(CH2)2-OC(O)O-. la formación de estos hidroxiésteres requiere la reacción del grupo hidroxilo de los compuestos de fórmula (II) o un compuesto que es 40-O-(hidroxietil)-fórmula II con un reactivo que formará un carbonato activado, tal como un compuesto de fórmula IV
(IV)
en la que T = enlace u -O(CH2)2-y R24 es un grupo alquilo o arilo, preferiblemente un grupo arilo, especialmente un grupo para-nitrofenilo.
El compuesto de fórmula IV puede entonces reaccionar con un compuesto de fórmula III, para generar compuestos con R6 unido al grupo 40-hidroxilo o al grupo 40-O-(hidroxietilo) por medio de un conector carbonato (WO 2004/101583).
De igual modo, se puede derivatizar un análogo de 39-desmetoxirrapamicina con diferentes hidroxiéteres en C-40, por reacción del análogo de 39-desmetoxirrapamicina con un derivado alquilo de elección adecuadamente activado, para formar un derivado 40-O-alquil-39-desmetoxirrapamicina. Grupos alquilo activados se refiere a un grupo alquilo que ha sido activado por uno de muchos procedimientos, incluyendo, aunque sin limitación, la formación de haluros de alquilo (RCl, RI, RBr), mesilatos de alquilo (ROS(O)2CH3), triflatos de alquilo (ROS(O)2CF3) y tosilatos de alquilo (ROS(O)2PhMe). El grupo alquilo activado reaccionaría entonces con un análogo de 39-desmetoxirrapamicina en medio orgánico en presencia de una base adecuada. Un experto en la técnica puede emplear procedimientos estándar para optimizar las condiciones de reacción para evitar la alquilación en otras posiciones reactivas.
De igual modo, se puede fosforilar un análogo de 39-desmetoxirrapamicina y, tras desprotección de los ésteres fosfato, se puede obtener un derivado 40-O-fosfo-39-desmetoxirrapamicina o un derivado 40-O-dialquilfosfo-39desmetoxirrapamicina, y sales de estos derivados preparadas por procedimientos conocidos para un experto en la técnica. Los ésteres fosfato pueden formarse directa o indirectamente por medio de un O-fosfito (es decir, (R’O)2POR) en el que el fosfito trivalente se oxida (preferiblemente por la acción de un perácido, tal como, aunque sin limitación, mCPBA) al fosfato pentavalente. Los procedimientos de fosforilación directa incluyen, aunque sin limitación, la reacción de un análogo de 39-demetoxirrapamicina con un clorofosfato protegido (por ejemplo, (BnO)2P(O)Cl, (AlquilO)2P(O)Cl), preferiblemente en presencia de DMAP en medio orgánico, o la reacción de un análogo de 39-desmetoxirrapamicina con oxicloruro de fósforo (POCl3) en presencia de una base, tal como trietilamina, seguida de hidrólisis ácida del O-diclorofosfato resultante (es decir, ROP(O)Cl2), o copulación con un cianofosfato de dialquilo (WO 01/81355). Se puede generar clorofosfato de dialquilo o diarilo in situ mediante la reacción de un fosfito de dialquilo o diarilo (es decir, (RO)2P(O)H) con tetracloruro de carbono en presencia de base. Los procedimientos de formación del O-fosfito (para oxidación al O-fosfato) incluyen, aunque sin limitación, la copulación de un análogo de 39-desmetoxirrapamicina con un dialquilfosforamidato de dialquilo (preferiblemente diisopropilfosforilamidato de dialquilo), en presencia de base (preferiblemente tetrazol), o la copulación usando un clorofosfito en presencia de base (Evans y col., 1992). La elección del grupo protector es importante; los ésteres etílico y metílico de fosfatos no son fácilmente hidrolizables en condiciones ácidas o básicas. Preferiblemente, los grupos protectores incluyen, aunque sin limitación, ésteres bencílicos (escindidos mediante hidrólisis promovida con yoduro de sodio/clorotrimetilsilano (WO 01/81355)) o ésteres 2-cianoetílicos (escindidos mediante escisión catalizada con base débil). De forma similar, se pueden generar derivados 40-O-dialquilfosfono-39desmetoxirrapamicina por reacción de un análogo de 39-desmetoxirrapamicina con un dialquilfosfonato o dialquilfosfito activado adecuado (como se ha descrito anteriormente).
En el procedimiento (a), cuando R15 representa un resto de fórmula
o
la formación de una unión glicosídica, u O-glicosilación, puede estar mediada por reacción del grupo hidroxilo con un donador de glicosilo correspondiente, preferiblemente en forma activada (véase Toshima y Tatsuta (1993)), por ejemplo un compuesto de fórmula (IIIC):
o un compuesto de fórmula (IIID):
Usando un ’donador de glicosilo’, incluyendo, aunque sin limitación, haluros de glicosilo (Z = F, Cl, Br), tioglicósidos (Z = SMe, Set, SPh, SPy, SCN), 1-O-acilglicósidos (Z = OC(O)R), orto-ésteres (Z = OC(Me)(R)(O-C2 de fórmula (IIIC/IIID)), 1-O o 1-S carbonatos (Z = OC(S)SMe, Z = OC(O)imidazol, Z = OC(S)imidazol, Z = SC(S)OEt), tricloroimidatos (Z = OC(=NH)CCl3), 4-pentenilglicósidos (Z = OCH2CH2CH2CH=CH2), ésteres fosfato (por ejemplo, Z = OP(O)(OPh)2), 1-O-sulfonilos (Z = tosilo) o glicósidos 1-O-sililados (Z = OTMS o OTBS), se puede glicosilar el análogo de 39-desmetoxirrapamicina en medio orgánico, preferentemente en presencia de un activador (tal como un ácido de Lewis o una sal de metal pesado, véase Toshima y Tatsuta, 1993)). El donador de glicosilo específico utilizado y las condiciones de reacción determinarán si se forma un alfa-o beta-glicósido. Como antes para la acilación, cualquier grupo hidroxilo presente en el compuesto parental puede ser protegido o enmascarado, de tal forma que la utilización de un equivalente de donador de glicosilo dará lugar a 40-O-acilación. El resto de los hidroxilos en el donador de glicosilo deberían ser protegidos como, por ejemplo, O-acetatos, O-benzoatos o 1,2acetónidos, por lo que será necesaria otra desprotección. Además, se pueden usar donadores de 2-desoxiglicosilo, tales como glicales (también se requiere una etapa reductora), para preparar glicósidos de 2’-desoxi-39desmetoxirrapamicina, y se pueden usar donadores de 2,6-didesoxiglicosilo, tales como 2,6-anhidro-2-tioazúcares, para preparar glicósidos de 2’,6’-didesoxi-39-desmetoxirrapamicina.
En el procedimiento (b), la formación de sales y el intercambio pueden ser llevados a cabo por procedimientos convencionales conocidos para un experto en la técnica. Se pueden realizar interconversiones de compuestos de fórmula (I) por procedimientos conocidos; por ejemplo, se pueden interconvertir grupos hidroxi y ceto por oxidación/reducción como se describe en algún otro lugar del presente documento. Se pueden preparar compuestos de fórmula (I) en la que R6 representa -PO(OH)2 por fosforilación de un correspondiente compuesto de fórmula (I) en la que R6 representa OH. Se facilitan las condiciones adecuadas en algún otro lugar del presente documento.
En los procedimientos (a) y (c), se pueden encontrar ejemplos de grupos protectores y los medios para su eliminación en T W Greene "Protective Groups in Organic Synthesis" (J Wiley and Sons, 1991). Como grupos protectores de hidroxilo adecuados, se incluyen alquilo (por ejemplo, metilo), acetal (por ejemplo, acetónido) y acilo (por ejemplo, acetilo o benzoílo), que pueden ser eliminados por hidrólisis, y arilalquilo (por ejemplo, bencilo), que puede ser eliminado por hidrólisis catalítica, o éter silílico, que puede ser eliminado por hidrólisis ácida o escisión asistida con iones fluoruro.
Además del procedimiento (a), los análogos de 39-desmetoxirrapamicina de fórmula (I) en la que R6 representa R7 pueden ser sintetizados por transesterificación catalizada por lipasa. Por ejemplo, aunque sin limitación, un análogo de 39-desmetoxirrapamicina de fórmula (II) puede reaccionar con un éster de vinilo de fórmula (V) en presencia de lipasa PS-C "Amano" II en las condiciones de reacción descritas por Gu y col. (2005) y como además se indica en los ejemplos en el presente documento. Esta metodología no se limita al uso de ésteres de vinilo y la transesterificación puede ser catalizada por otras lipasas o esterasas.
Otros compuestos de la invención pueden ser preparados por procedimientos conocidos per se o por procedimientos análogos a los anteriormente descritos.
Los nuevos derivados 39-desmetoxirrapamicina son útiles directamente y como plantillas para posterior semisíntesis
o bioconversión, para producir compuestos útiles como inmunosupresores, agentes antifúngicos, agentes anticancerosos, agentes antiinflamatorios, agentes neurorregenerativos o agentes para el tratamiento del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de trastornos autoinmunes, de la enfermedad vascular y/o de enfermedades fibrióticas. Los métodos para la derivatización semisintética de la rapamicina y sus análogos son bien conocidos en la técnica e incluyen (aunque sin limitación) las modificaciones descritas en, por ejemplo, U.S. 5.665.772, U.S. 5.362.718, WO 96/41807, U.S. 5.728.710, U.S. 5.378.836, U.S. 5.138.051, U.S. 5.665.772, U.S. 5.391.730, U.S. 5.023.262, U.S. 5.563.145, U.S. 5.446.048, U.S. 5.912.253, U.S. 5.221.670, U.S. 5.955.457, WO 98/04279, U.S. 6.015.815 y U.S. 5.432.183.
Las anteriores estructuras de intermediarios (por ejemplo, compuestos de fórmula (II) pueden ser sometidas a tautomerización, y, cuando se ilustra un tautómero representativo, se entenderá que se quiere hacer referencia a todos los tautómeros, por ejemplo compuestos ceto donde se ilustran compuestos enol y viceversa.
En otro aspecto, la presente invención proporciona el uso de los derivados 39-desmetoxirrapamicina de la invención en medicina. En otro aspecto, la presente invención proporciona el uso de derivados 39-desmetoxirrapamicina de la invención en la preparación de un medicamento para la inducción o el mantenimiento de la inmunosupresión, la estimulación de la regeneración neuronal o el tratamiento del cáncer, de las malignidades de las células B, de las infecciones fúngicas, del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de trastornos autoinmunes, de enfermedades inflamatorias, de la enfermedad vascular y de enfermedades fibrióticas, o de agentes para uso en la regulación de la cicatrización de heridas.
La resistencia a múltiples fármacos (RMF) es un problema significativo en el tratamiento del cáncer y de las malignidades de las células B. Es la razón principal que se oculta tras el desarrollo de la resistencia a fármacos en muchos cánceres (Persidis A, 1999). La RMF se asocia a un mayor nivel de transportadores del casete de unión al trifosfato de adenosina (transportadores ABC), en particular a un aumento en la expresión del gen MDR1 que codifica la P-glicoproteína (P-gp) o del gen MRP1 que codifica MRP1. El nivel de expresión del gen MDR1 varía ampliamente a través de diferentes líneas celulares derivadas de cáncer; en algunas líneas celulares, es indetectable, mientras que en otras puede mostrar una expresión hasta 10 o 100 veces mayor en relación a controles estándar.
Por lo tanto, otro aspecto de la invención proporciona el uso de un derivado 39-desmetoxirrapamicina de la invención en el tratamiento de cánceres o malignidades de células B RMF. En un aspecto específico, la presente invención proporciona el uso de derivados 39-desmetoxirrapamicina en el tratamiento de cánceres o malignidades de células B que expresan P-gp. En una realización aún más preferida, la presente invención proporciona el uso de un derivado 39-desmetoxirrapamicina de la invención en el tratamiento de cánceres o malignidades de células B que tienen una alta expresión de P-gp. En particular, los cánceres o malignidades de células B que tienen una alta expresión de P-gp pueden tener una expresión 2 veces, 5 veces, 10 veces, 20 veces, 25 veces, 50 veces o 100 veces mayor en relación a los niveles de control. Son controles adecuados las células que no expresan P-gp, que tienen un bajo nivel de expresión de P-gp o que tienen una baja función RMF; un experto en la técnica tiene conocimiento de, o puede identificar, tales líneas celulares; a modo de ejemplo (aunque sin limitación), como líneas celulares adecuadas se incluyen: MDA435/LCC6, SBC-3/CDDP, MCF7, NCl-H23, NCl-H522, A549/ATCC, EKVX, NCl-H226, NCI-H322M, NCI-H460, HOP-18, HOP-92, LXFL 529, DMS 114, DMS 273, HT29, HCC-2998, HCT-116, COLO 205, KM12, KM20L2, MDA-MB-231/ATCC, MDA-MB-435, MDA-N, BT-549, T-47D, OVCAR-3, OVCAR-4, OVCAR-5, OVCAR-8, IGROV1, SK-OV-3, K-562, MOLT-4, HL-60(TB), RPMI-8226, SR, SN12C, RXF-631, 786-0, TK-10, LOX IMVI, MALME-3M, SK-MEL-2, SK-MEL-5, SK-MEL-28, M14, UACC-62, UACC-257, PC-3, DU-145, SNB-19, SNB-75, SNB-78, U251, SF-268, SF-539, XF 498.
En un aspecto alternativo, la presente invención proporciona el uso de un derivado 39-desmetoxirrapamicina de la invención en la preparación de un medicamento para uso en el tratamiento cánceres o malignidades de las células B RMF. En un aspecto específico, la presente invención proporciona el uso de un derivado 39-desmetoxirrapamicina de la invención en la preparación de un medicamento para uso en el tratamiento de cánceres o malignidades de las células B que expresan P-gp. En una realización aún más preferida, la presente invención proporciona el uso de un
derivado 39-desmetoxirrapamicina en la preparación de un medicamento para uso en el tratamiento de cánceres o malignidades de las células B que tienen una alta expresión de P-gp. En particular, los cánceres o malignidades de las células B que tienen una alta expresión de P-gp pueden tener una expresión 2 veces, 5 veces, 10 veces, 20 veces, 25 veces, 50 veces o 100 veces mayor en relación a los niveles de control. Se han descrito anteriormente controles adecuados.
Se discuten además procedimientos para determinar el nivel de expresión de P-gp en una muestra en el presente documento.
Por lo tanto, también se desvela en el presente documento un procedimiento para el tratamiento de cánceres o malignidades de las células B que expresan P-gp que comprende administrar una cantidad terapéuticamente efectiva de un derivado 39-desmetoxirrapamicina de la invención. El nivel de expresión de la glicoproteína P (P-gp) en un tipo de cáncer particular puede ser determinado por un experto en la técnica usando técnicas entre las que se incluyen, aunque sin limitación, RT-PCR en tiempo real (Szakács y col., 2004; Stein y col., 2002; Langmann et al;2003, Álvarez y col., 1995, Boyd y col., 1995), inmunohistoquímica (Stein y col., 2002) o la utilización de micromatrices (Lee y col., 2003); estos procedimientos son facilitados como ejemplos únicamente y otros procedimientos adecuados se le ocurrirán a un experto en la técnica.
Un experto en la técnica podrá determinar por experimentación rutinaria la capacidad de estos compuestos para inhibir el crecimiento fúngico (por ejemplo, Baker, H., y col., 1978; NCCLS Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing for yeasts: Approved standard M27-A, 17(9). 1997). Adicionalmente, un experto en la técnica podrá determinar por experimentación rutinaria la capacidad de estos compuestos para inhibir el crecimiento de las células tumorales (véanse Dudkin, L. y col., 2001; Yu y col. 2001). En otro aspecto, los compuestos de la presente invención son útiles para inducir inmunosupresión; los ensayos para determinar la eficacia de un compuesto en estas áreas son bien conocidos para los expertos en la técnica, por ejemplo, aunque sin limitación: Actividad inmunosupresora -Warner, L.M. y col., 1992, Kahan y col. (1991) & Kahan & Camardo, 2001); Aloinjertos -Fishbein, T.M. y col., 2002, Kirchner y col. 2000; Autoinmune / Inflamatoria / Asma -Carlson, R.P. y col., 1993, Powell, N. y col., 2001; Diabetes I -Rabinovitch, A. y col., 2002; Psoriasis -Reitamo, S. y col., 2001; Artritis reumatoide -Foey, A. y col., 2002; Fibrosis -Zhu, J. y col., 1999, Jain, S. y col., 2001, Gregory y col. 1993.
Se puede demostrar la capacidad de los derivados 39-desmetoxirrapamicina de la invención para inducir inmunodepresión en pruebas estándar usadas para este fin. En otro aspecto, los derivados 39-desmetoxirrapamicina de la presente invención son útiles en la rotación a mecanismos antifibróticos, neurorregenerativos y antiangiogénicos; un experto en la técnica podrá determinar por experimentación rutinaria la capacidad de estos compuestos para prevenir la angiogénesis (por ejemplo, Guba, M. et al., 2002). Un experto en la técnica podrá determinar por experimentación rutinaria la utilidad de estos compuestos para tratar la enfermedad hiperproliferativa vascular, por ejemplo en stents de elución de fármacos (por ejemplo, Morice, M.C. y col., 2002). Adicionalmente, un experto en la técnica podrá determinar por experimentación rutinaria la capacidad neurorregenerativa de estos compuestos (por ejemplo, Myckatyn, T.M. y col., 2002, Steiner y col. 1997).
La presente invención también proporciona una composición farmacéutica que comprende un derivado 39desmetoxirrapamicina de la invención, junto con un soporte farmacéuticamente aceptable.
La rapamicina y compuestos relacionados que están o han estado en pruebas clínicas, tales como CCl-779 y RAD001, tienen pobres perfiles farmacológicos, pobre solubilidad en agua y pobre biodisponibilidad. La presente invención proporciona derivados 39-desmetoxirrapamicina que tienen propiedades mejoradas, tales como mejor estabilidad y/o mayor permeabilidad a través de la membrana celular. Un experto en la técnica podrá determinar fácilmente la solubilidad de un compuesto de la invención dado usando procedimientos estándar. Se muestra un procedimiento representativo en los ejemplos del presente documento.
Adicionalmente, un experto en la técnica podrá determinar la farmacocinética y la biodisponibilidad de un compuesto de la invención usando procedimientos in vivo e in vitro conocidos para un experto en la técnica, incluyendo, aunque sin limitación, los que se describen más adelante y en los ejemplos; los ensayos alternativos son bien conocidos para un experto en la técnica, incluyendo, aunque sin limitación, los descritos más adelante y en Gallant-Haidner y col., 2000, y Trepanier y col., 1998, y las referencias que allí se dan. Se determina la biodisponibilidad de un compuesto mediante una serie de factores (por ejemplo, solubilidad en agua, velocidad de absorción en el intestino, grado de unión a proteínas y metabolismo), cada uno de los cuales puede ser determinado por pruebas in vitro como se describe más adelante; un experto en la técnica apreciará que una mejora en uno o más de estos factores conducirá a una mejora en la biodisponibilidad de un compuesto. De manera alternativa, se puede medir la biodisponibilidad de un compuesto usando procedimientos in vivo como se describe con más detalle más adelante.
Ensayo de permeación Caco-2
Se pueden usar células Caco-2 confluentes (Li, A.P., 1992; Grass, G.M. y col., 1992, Volpe, D.A. y col., 2001) en un formato de transpocillos Corning Costar de 24 pocillos, por ejemplo, como el proporcionado por In Vitro Technologies Inc. (IVT Inc., Baltimore, Maryland, USA). La cámara apical contiene 0,15 ml de solución tampón equilibrada de Hank (HBBS), pH 7,4, 1% DMSO, 0,1 mM Amarillo Lucifer. La cámara basal contiene 0,6 ml de HBBS, pH 7,4, 1%
DMSO. Se incuban entonces los controles y los ensayos a 37°C en una incubadora humidificada y se agitan a 130 rpm durante 1 h. El Amarillo Lucifer permea por la vía paracelular (entre las uniones estrechas) únicamente; una elevada Permeabilidad Aparente (Papp) para el Amarillo Lucifer indica daño celular durante el ensayo, y todos esos pocillos son rechazados. Se usan propranolol (buena permeación pasiva sin efectos transportadores conocidos) y acebutalol (pobre permeación pasiva atenuada por eflujo activo por glicoproteína P) como compuestos de referencia. Los compuestos pueden ser estudiados en un formato uni-y bidireccional aplicando compuesto a la cámara apical o basal (a 0,01 mM). Los compuestos en las cámaras apical o basal son analizados por HPLC-MS. Los resultados son expresados como Permeabilidad Aparente, Papp (nm/s), y como la Razón de Flujo (A a B frente a B a A).
Volumen de aceptor: 0,6 ml (A>B) y 0,15 ml (B>A)Área de monocapa: 0,33 cm2 tiempo: 60 min
Un valor positivo para la Razón de Flujo indica eflujo activo desde la superficie apical de las células.
Ensayo de estabilidad de los microsomas hepáticos humanos (MHH)
Los homogenados de hígado proporcionan una medida de la vulnerabilidad inherente de un compuesto a las enzimas de la Fase I (oxidativa), incluyendo las CYP450 (por ejemplo, CYP2C8, CYP2D6, CYP1A, CYP3A4, CYP2E1), esterasas, amidasas y flavina monooxigenasas (FMO).
La vida media (T1/2) de los compuestos de ensayo puede ser determinada por exposición a los Microsomas Hepáticos Humanos, monitorizando su desaparición en el tiempo por LC-MS. Se incuban los compuestos a 0,001 mM durante 40 min a 37°C, 0,1 M Tris-HCl, pH 7,4, con la fracción subcelular microsomal humana del hígado a 0,25 mg/ml de proteína y niveles de saturación de NADPH como cofactor. A intervalos programados, se añade acetonitrilo a las muestras de ensayo para precipitar la proteína y detener el metabolismo. Se centrifugan las muestras y se analizan en cuanto al compuesto parental por HPLC-MS.
Ensayos de biodisponibilidad in vivo
También se pueden usar ensayos in vivo para medir la biodisponibilidad de un compuesto (véase, por ejemplo, Crowe y col., 1999). En general, se administra un compuesto a un animal de ensayo (por ejemplo, ratón o rata) tanto intraperitoneal (i.p.) o intravenosamente (i.v.) como oralmente (p.o.) y se toman muestras de sangre a intervalos regulares para examinar cómo varía la concentración plasmática del fármaco a lo largo del tiempo. Se puede usar el curso temporal de la concentración plasmática a lo largo del tiempo para calcular la biodisponibilidad absoluta del compuesto como porcentaje usando modelos estándar. A continuación se describe un ejemplo de un protocolo típico.
Se dosifica a los ratones con 3 mg/kg del compuesto de la invención o del compuesto parental i.v. o 10 mg/kg de un compuesto de la invención o del compuesto parental p.o. Se toman muestras de sangre a intervalos de 5 minutos, 15 minutos, 1 h, 4 h y 24 h y se determina la concentración del compuesto de la invención o del compuesto parental en la muestra por HPLC. Se puede usar entonces el curso temporal de las concentraciones plasmáticas para derivar parámetros clave, tales como el área bajo la curva de la concentración plasmática-tiempo (AUC -que es directamente proporcional a la cantidad total de fármaco inalterado que alcanza la circulación sistémica), el máximo (pico) de la concentración del fármaco en plasma, el tiempo en el que se produce la concentración máxima del fármaco en plasma (tiempo pico); como factores adicionales utilizados en la determinación precisa de la biodisponibilidad, se incluyen: la vida media terminal del compuesto, la eliminación total del organismo, el volumen de distribución en el estado estacionario y el % de F. Estos parámetros son luego analizados por procedimientos no compartimentales o compartimentales para obtener un porcentaje de biodisponibilidad calculado; para un ejemplo de este tipo de procedimiento, véanse Gallant-Haidner y col., 2000, y Trepanier y col., 1998, y las referencias que allí se citan.
Los derivados 39-desmetoxirrapamicina de la invención antes mencionados o una formulación de los mismos pueden ser administrados por cualquier procedimiento convencional; por ejemplo, aunque sin limitación, pueden ser administrados por vía parenteral, oral o tópica (incluida la bucal, sublingual o transdérmica), mediante un dispositivo médico (por ejemplo, un stent), por inhalación o por inyección (subcutánea o intramuscular). El tratamiento puede consistir en una sola dosis o en una pluralidad de dosis a lo largo de un período de tiempo.
Aunque es posible administrar un compuesto de la invención solo, es preferible presentarlo como una formulación farmacéutica junto con uno o más soportes aceptables. El/los soporte(s) debe(n) ser "aceptable(s)" en el sentido de ser compatibles con el compuesto de la invención y no perjudiciales para sus receptores. Se describen a continuación con más detalle ejemplos de soportes adecuados.
Los derivados 39-desmetoxirrapamicina de la invención pueden ser administrados solos o en combinación con otros agentes terapéuticos; la coadministración de dos (o más) agentes permite usar dosis significativamente inferiores de cada uno de ellos, reduciendo así los efectos colaterales observados.
En una realización, se coadministra un derivado 39-desmetoxirrapamicina con otro agente terapéutico para la inducción o el mantenimiento de la inmunosupresión o para el tratamiento del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de trastornos autoinmunes o de enfermedades inflamatorias; como agentes preferidos, se incluyen, aunque sin limitación, agentes inmunorreguladores, por ejemplo, azatioprina, corticosteroides, ciclofosfamida, ciclosporina A, FK506, micofenolato mofetilo, OKT-3 y ATG.
En una realización alternativa, se coadministra un derivado 39-desmetoxirrapamicina con otro agente terapéutico para el tratamiento del cáncer o de las malignidades de las células B; como agentes preferidos, se incluyen, aunque sin limitación, metotrexato, leukovorina, adriamicina, prednisona, bleomicina, ciclofosfamida, 5-fluorouracilo, paclitaxel, docetaxel, vincristina, vinblastina, vinorelbina, doxorrubicina, tamoxifeno, toremifeno, acetato de megestrol, anastrozol, goserelina, anticuerpo monoclonal anti-HER2 (por ejemplo, Herceptin™), capecitabina, clorhidrato de raloxifeno, inhibidores de EGFR (por ejemplo, Iressa ®, Tarceva ™, Erbitux™), inhibidores de VEGF (por ejemplo, Avastin™), inhibidores de proteasomas (por ejemplo, Velcade™), Glivec® o inhibidores de hsp90 (por ejemplo, 17-AAG). Adicionalmente, se puede administrar un derivado 39-desmetoxirrapamicina en combinación con otras terapias, incluyendo, aunque sin limitación, radioterapia o cirugía.
En una realización, se coadministra un derivado 39-desmetoxirrapamicina con otro agente terapéutico para el tratamiento de la enfermedad vascular; como agentes preferidos, se incluyen, aunque sin limitación, inhibidores de ACE, antagonistas de los receptores de angiotensina II, derivados de ácido fíbrico, inhibidores de la HMG-CoA reductasa, agentes bloqueantes beta-adrenérgicos, bloqueantes de los canales del calcio, antioxidantes, anticoagulantes e inhibidores de plaquetas (por ejemplo, Plavix™).
En una realización, se coadministra un derivado 39-desmetoxirrapamicina con otro agente terapéutico para la estimulación de la regeneración neuronal; como agentes preferidos, se incluyen, aunque sin limitación, factores neurotróficos, por ejemplo, factor de crecimiento de los nervios, factor de crecimiento derivado de la glía, factor de crecimiento derivado del cerebro, factor neurotrófico ciliar y neurotrofina-3.
En una realización, se coadministra un derivado 39-desmetoxirrapamicina con otro agente terapéutico para el tratamiento de las infecciones fúngicas; como agentes preferidos, se incluyen, aunque sin limitación, anfotericina B, flucitosina, equinocandinas (por ejemplo, caspofungina, anidulafungina o micafungina), griseofulvina, un agente antifúngico imidazol o triazol (por ejemplo, clotrimazol, miconazol, ketoconazol, econazol, butoconazol, oxiconazol, terconazol, itraconazol, fluconazol o voriconazol).
En coadministración, se incluye cualquier medio de administración de dos o más agentes terapéuticos al paciente como parte del mismo régimen de tratamiento, como será evidente para el experto. Aunque los dos o más agentes pueden ser administrados simultáneamente en una sola formulación, esto no es esencial. Los agentes pueden ser administrados en diferentes formulaciones y en diferentes tiempos.
Las formulaciones pueden presentarse convenientemente en forma de dosificación unitaria y pueden ser preparadas por cualquiera de los procedimientos bien conocidos en el campo de la farmacia. Dichos procedimientos incluyen la etapa de asociación del principio activo (compuesto de la invención) con el soporte, que constituye uno o más ingredientes accesorios. En general, las formulaciones son preparadas asociando uniforme e íntimamente el principio activo con soportes líquidos o soportes sólidos finamente divididos o ambos, y luego, si es necesario, dando forma al producto.
Los derivados 39-desmetoxirrapamicina de la invención serán normalmente administrados oralmente o por cualquier vía parenteral, en forma de una formulación farmacéutica que comprende el principio activo, opcionalmente en forma de una sal de adición de ácido o de base orgánicos o inorgánicos no tóxicos, en una forma de dosificación farmacéuticamente aceptable. Dependiendo del trastorno y del paciente que haya que tratar, así como de la vía de administración, las composiciones pueden ser administradas a dosis variables.
Por ejemplo, los compuestos de la invención pueden ser administrados oral, bucal o sublingualmente en forma de comprimidos, cápsulas, óvulos, elixires, soluciones o suspensiones, que pueden contener agentes saborizantes o colorantes, para aplicaciones de liberación inmediata, retardada o controlada.
Las soluciones o suspensiones de derivados 39-desmetoxirrapamicina adecuadas para administración oral pueden también contener excipientes, por ejemplo, N,N-dimetilacetamida, dispersantes, por ejemplo, polisorbato 80, surfactantes y solubilizadores, por ejemplo, polietilenglicol, Phosal 50 PG (que consiste en fosfatidilcolina, ácidos grasos de soja, etanol, mono/diglicéridos, propilenglicol y palmitato de ascorbilo).
Dichos comprimidoss pueden contener excipientes, tales como celulosa microcristalina, lactosa (por ejemplo, lactosa monohidrato o lactosa anhidra), citrato de sodio, carbonato de calcio, fosfato dibásico de calcio y glicina, desintegrantes, tales como almidón (preferiblemente almidón de maíz, patata o tapioca), glicolato de sodio y almidón, croscarmelosa sodio y ciertos silicatos complejos, y ligantes de granulación, tales como polivinilpirrolidona,
hidroxipropilmetilcelulosa (HPMC), hidroxipropilcelulosa (HPC), macrogol 8000, sacarosa, gelatina y acacia. Adicionalmente, se pueden incluir agentes lubricantes, tales como estearato de magnesio, ácido esteárico, behenato de glicerilo y talco.
También se pueden emplear composiciones sólidas de un tipo similar como cargas en cápsulas de gelatina. Como excipientes preferidos a este respecto, se incluyen lactosa, almidón, una celulosa, azúcar de leche o polietilenglicoles de alto peso molecular. Para suspensiones acuosas y/o elixires, se pueden combinar los compuestos de la invención con diversos agentes edulcorantes o saborizantes, materias colorantes o tintes, agentes emulsionantes y/o suspensores y diluyentes, tales como agua, etanol, propilenglicol y glicerina, y sus combinaciones.
Se puede preparar un comprimido por compresión o moldeo, opcionalmente con uno o más ingredientes accesorios. Se pueden preparar comprimidos comprimidos comprimiendo en una máquina adecuada el principio activo en una forma libremente fluible, tal como un polvo o gránulos, opcionalmente en mezcla con un ligante (por ejemplo, povidona, gelatina, hidroxipropilmetilcelulosa), lubricante, diluyente inerte, conservante, desintegrante (por ejemplo, glicolato de sodio y almidón, povidona entrecruzada, carboximetilcelulosa sodio entrecruzada), agente tensoactivo o dispersante. Se pueden preparar comprimidos moldeados moldeando en una máquina adecuada una mezcla del compuesto en polvo humedecido con un diluyente líquido inerte. Los comprimidos pueden estar opcionalmente recubiertos o perforados y pueden ser formulados para proporcionar una liberación lenta o controlada del principio activo de su interior usando, por ejemplo, hidroxipropilmetilcelulosa en proporciones variables para obtener el perfil de liberación deseado.
Las formulaciones según la presente invención adecuadas para administración oral pueden presentarse como unidades discretas, tales como cápsulas, sellos o comprimidos, conteniendo cada uno una cantidad predeterminada del principio activo; como un polvo o gránulos; como una solución o una suspensión en un líquido acuoso o un líquido no acuoso; o como una emulsión líquida de aceite en agua o una emulsión líquida de agua en aceite. El principio activo puede también presentarse como un bolo, un electuario o una pasta.
Como formulaciones adecuadas para administración tópica en la boca, se incluyen pastillas para chupar que comprenden el principio activo en una base saborizada, normalmente sacarosa y acacia o tragacanto; pastillas que comprenden el principio activo en una base inerte, tal como gelatina y glicerina, o sacarosa y acacia; y colutorios que comprenden el principio activo en un soporte líquido adecuado.
Habría que entender que, además de los ingredientes particularmente mencionados con anterioridad, las formulaciones de la presente invención pueden incluir otros agentes convencionales en la técnica considerando el tipo de formulación en cuestión; por ejemplo, los que son adecuados para administración oral pueden incluir agentes saborizantes.
Las composiciones farmacéuticas adaptadas para administración tópica pueden ser formuladas como ungüentos, cremas, suspensiones, lociones, polvos, soluciones, pastas, geles, apósitos impregnados, sprays, aerosoles o aceites, dispositivos transdérmicos, polvos espolvoreables y similares. Estas composiciones pueden ser preparadas por procedimientos convencionales que contienen el principio activo. Así, pueden comprender también soportes y aditivos convencionales compatibles, tales como conservantes, solventes para ayudar a la penetración del fármaco, emolientes en cremas o ungüentos y etanol o alcohol oleílico para lociones. Dichos soportes pueden estar presentes en de aproximadamente un 1% a aproximadamente un 98% de la composición. Más normalmente, formarán hasta aproximadamente un 80% de la composición. Sólo como ilustración, se prepara una crema o ungüento mezclando cantidades suficientes de material hidrofílico y agua, con un contenido de aproximadamente un 5-10% en peso del compuesto, en cantidades suficientes para producir una crema o ungüento que tiene la consistencia deseada.
Las composiciones farmacéuticas adaptadas para administración transdérmica pueden presentarse como parches discretos destinados a permanecer en íntimo contacto con la epidermis del receptor durante un período de tiempo prolongado. Por ejemplo, el principio activo puede ser administrado desde el parche por iontoforesis.
Para aplicaciones a tejidos externos, por ejemplo la boca y la piel, las composiciones son preferiblemente aplicadas como un ungüento o una crema tópica. Cuando se formula en un ungüento, el principio activo puede ser empleado con una base de ungüento parafínica o miscible en agua.
De manera alternativa, el principio activo puede ser formulado en una crema con una base de aceite en agua o una base de agua en aceite.
Para administración parenteral, se preparan formas de dosificación unitaria fluidas utilizando el principio activo y un vehículo estéril, por ejemplo, aunque sin limitación, agua, alcoholes, polioles, glicerina y aceites vegetales, siendo preferida el agua. El principio activo, dependiendo del vehículo y de la concentración utilizados, puede ser suspendido o disuelto en el vehículo. Al preparar soluciones, el principio activo puede ser disuelto en agua para inyección y esterilizado por filtración antes de introducirlo en un vial o ampolla adecuados y de sellar estos últimos.
Ventajosamente, se pueden disolver en el vehículo agentes tales como anestésicos locales, conservantes y agentes tamponantes. Para aumentar la estabilidad, se puede congelar la composición después de introducirla en el vial y de
eliminar el agua a vacío. Se sella entonces el polvo liofilizado seco en el vial y se puede suministrar un vial acompañante de agua para inyección para reconstituir el líquido antes de su uso.
Se preparan suspensiones parenterales substancialmente del mismo modo que las soluciones, excepto por suspender el principio activo en el vehículo en lugar de disolverlo y por no poder ir la esterilización acompañada de filtración. Se puede esterilizar el principio activo por exposición a óxido de etileno antes de suspenderlo en el vehículo estéril. Ventajosamente, se incluye un surfactante o agente humectante en la composición para facilitar la distribución uniforme del principio activo.
Los compuestos de la invención pueden ser también administrados usando dispositivos médicos conocidos en la técnica. Por ejemplo, en una realización, se puede administrar una composición farmacéutica de la invención con un dispositivo de inyección hipodérmico sin aguja, tal como los dispositivos desvelados en U.S. 5.399.163, U.S. 5.383.851, U.S. 5.312.335, U.S. 5.064.413, U.S. 4.941.880, U.S. 4.790.824 o U.S. 4.596.556. Como ejemplos de implantes y módulos bien conocidos útiles en la presente invención, se incluyen: US 4.487.603, que desvela una bomba de microinfusión implantable para dispensar medicación a una velocidad controlada; US 4.486.194, que desvela un dispositivo terapéutico para administrar medicamentos a través de la piel; US 4.447.233, que desvela una bomba de infusión de medicación para suministrar medicación a una velocidad de infusión precisa; US 4.447.224, que desvela un aparato de infusión implantable de flujo variable para el suministro continuo de fármacos; US 4.439.196, que desvela un sistema de suministro osmótico de fármacos que tiene compartimentos multicámara; y US 4.475.196, que desvela un sistema de suministro osmótico de fármacos. En una realización específica, el derivado 39-desmetoxirrapamicina puede ser administrado usando un stent de elución de fármaco, por ejemplo correspondiente a los descritos en WO 01/87263 y publicaciones relacionadas o los descritos por Perin (Perin, EC, 2005). Muchos otros de tales implantes, sistemas de suministro y módulos son conocidos para los expertos en la técnica.
La dosificación que se ha de administrar de un derivado 39-desmetoxirrapamicina de la invención variará según el compuesto particular, la enfermedad implicada, el sujeto, la naturaleza y gravedad de la enfermedad, la condición física del sujeto y la vía de administración seleccionada. La dosificación apropiada puede ser fácilmente determinada por un experto en la técnica.
Las composiciones pueden contener desde un 0,1% en peso, preferiblemente un 5-60%, más preferiblemente un 1030% en peso, de un compuesto de la invención, dependiendo del procedimiento de administración.
Un experto en la técnica reconocerá que la cantidad óptima y el espaciamiento de las dosificaciones individuales de un compuesto de la invención vendrán determinados por la naturaleza y el alcance de la afección que se esté tratando, la forma, vía y sitio de administración y la edad y condición del sujeto particular en tratamiento, y que un médico determinará en último lugar las dosificaciones apropiadas que se hayan de usar. Esta dosificación puede ser repetida tan a menudo como sea apropiado. Si se desarrollan efectos colaterales, se pueden alterar o reducir la cantidad y/o la frecuencia de la dosificación, según la práctica clínica normal.
Breve descripción de los dibujos
Figura 1: muestra la estructura de la rapamicina. Figura 2: muestra la ruta de fragmentación para la 39-desmetoxirrapamicina. Figura 3: muestra la ruta de fragmentación para la 39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina. Figura 4: muestra la ruta de fragmentación para la 39-desmetoxi-40-O-[3-hidroxi-2-(hidroximetil)-2
metilpropanoato de 2-hidroxietilo]rapamicina. Figura 5: muestra la ruta de fragmentación para la 27-O-desmetil-39-desmetoxi-40-O-[2,2
bis(hidroximetil)propionil]rapamicina. Figura 6: muestra la actividad inhibitoria de mTOR de la 39-desmetoxi-40-O-[2,2
bis(hidroximetil)propionil]rapamicina (A -triángulos rellenos) y de la 39-desmetoxi-40-O-(2
hidroxi)etilrrapamicina (B -triángulos rellenos) en comparación con la rapamicina (cuadrados rellenos).
Ejemplos
Métodos y materiales generales
Materiales
Todos los reactivos fueron obtenidos de fuentes comerciales y se usaron sin mayor purificación, a menos que se indique lo contrario.
Cultivo
Se mantuvo S. hygroscopicus MG2-1,0 [IJMNOQLhis] (WO 04/007709; Gregory y col., 2004) en placas de agar de medio 1 (véase más adelante) a 28°C. Se prepararon stocks de esporas tras crecimiento en medio 1, se conservaron en glicerol al 20% p/v: lactosa al 10% p/v en agua destilada y se guardaron a -80°C. Se prepararon cultivos vegetativos inoculando 0,1 ml de stock congelado en 50 ml de medio 2 (véase más adelante) en un matraz
de 250 ml. Se incubó el cultivo durante 36 a 48 horas a 28°C, 300 rpm.
Procedimiento de producción
Se inocularon los cultivos vegetativos a un 2,5 -5% v/v en medio 3. Se realizó el cultivo durante 6-7 días, 26°C, 300 rpm.
Procedimiento de alimentación
Se realizó la alimentación/adición del ácido carboxílico seleccionado 24 -48 horas después de la inoculación y se alimentó a 1-2 mM a menos que se indique lo contrario.
Medio 1
Componente
Fuente Catálogo # Por l
Polvo de maíz macerado
Sigma C-8160 2,5 g
Extracto de levadura
Difco 0127-17 3 g
Carbonato de calcio
Sigma C5929 3 g
Sulfato de hierro
Sigma F8633 0,3 g
BACTO agar
Difco 2140-10 20 g
Almidón de trigo
Sigma S2760 10 g
Agua hasta
1 l
Se esterilizó entonces el medio por autoclavado a 121°C, 20 min.
Medio 2: Medio de semillas RapV7
Componente Por l
Toasted Nutrisoy (ADM Ingredients Ltd) 5 g
Avedex W80 dextrin (Deymer Ingredients Ltd) 35 g
Sólidos de maíz macerados (Sigma) 4 g
Glucosa 10 g
(NH4)2SO4 2 g Ácido láctico (80%) 1,6 ml
CaCO3(Caltec) 7 g
Ajustar pH a 7,5 con NaOH 1 M
Se esterilizó entonces el medio por autoclavado a 121°C, 20 min. Tras la esterilización, se añaden 0,16 ml de glucosa al 40% a cada 7 ml de medio.
Medio 3: medio MD6 (medio de fermentación)
Componente
Por l
Toasted Nutrisoy (ADM Ingredients Ltd)
30 g
Almidón de maíz (Sigma)
30 g
Avedex W80 dextrin (Deymer Ingredients Ltd)
19 g
Levadura (Allinson)
3 g
Sólidos de maíz macerados (Sigma)
1 g
KH2PO4
2,5 g
K2HPO4
2,5 g
(NH4)2SO4
10 g
NaCl
5 g
CaCO3 (Caltec)
10 g
MnCl2,4H2O
10 mg
MgSO4,7H2O
2,5 mg
FeSO4,7H2O
120 mg
ZnSO4,7H2O
50 mg
MES (ácido 2-morfolinoetanosulfúrico monohidrato)
21,2 g
19
Corregir pH a 6,0 con NaOH 1M
Antes de la esterilización, se añadieron 0,4 ml de -amilasa de Sigma (BAN 250) a 1 l de medio. Se esterilizó el medio durante 20 min a 121°C. Tras la esterilización, se añadieron 0,35 ml de fructosa al 40% estéril y 0,10 ml de L-lisina (140 mg/ml en agua, esterilizada por filtración) a cada 7 ml.
Medio 4: Medio de semillas Rap V7a
Componente Por l
Toasted Nutrisoy (ADM Ingredients Ltd) 5 g
Avedex W80 dextrin (Deymer Ingredients Ltd) 35 g
Sólidos de maíz macerados (Sigma) 4 g
(NH4)2SO4 2 g Ácido láctico (80%) 1,6 ml
CaCO3(Caltec) 7 g
Ajustar pH a 7,5 con NaOH 1 M
Se esterilizó entonces el medio por autoclavado a 121°C, 20 min. Medio 5: medio MD6/5-1 (medio de fermentación)
Componente
Por l
Toasted Nutrisoy (ADM Ingredients Ltd)
15 g
Avedex W80 dextrin (Deymer Ingredients Ltd)
50 g
Levadura (Allinson)
3 g
Sólidos de maíz macerados (Sigma)
1 g
KH2PO4
2,5 g
K2HPO4
2,5 g
(NH4)2SO4
10 g
NaCl
13 g
CaCO3 (Caltec)
10 g
MnCl2,4H2O
3,5 mg
MgSO4,7H2O
15 mg
FeSO4,7H2O
150 mg
ZnSO4,7H2O
60 mg
SAG 471
0,1 ml
10 Se esterilizó el medio durante 30 min a 121°C. Tras la esterilización, se añadieron 15 g de fructosa por l. Después de 48 h, se añadieron 0,5 g/l de L-lisina.
Métodos analíticos
Procedimiento A
15 Volumen de inyección: 0,005-0,1 ml (según se requiera dependiendo de la sensibilidad). Se realizó una HPLC en cartuchos SB C8 Agilent "Spherisorb" "Rápida Resolución", 3 micras, 30 mm x 2,1 mm, con una fase móvil de:
Fase móvil A: Ácido fórmico al 0,01% en agua pura Fase móvil B: Ácido fórmico al 0,01% en acetonitrilo Caudal: 1 ml/minuto
20 Se usó un gradiente lineal, de un 5% de B a 0 min a un 95% de B a 2,5 min manteniendo a un 95% de B hasta 4 min y volviendo a un 5% de B hasta el siguiente ciclo. La detección fue por absorbancia UV a 254 nm y/o por ionización por electropulverización de espectrometría de masas (positiva o negativa) utilizando un instrumento Micromasss Quattro-Micro.
Procedimiento B
25 Volumen de inyección: 0,02 ml. Se realizó una HPLC en una columna BDS C18 Hypersil de 3 micras
(ThermoHypersil-Keystone Ltd), 150 x 4,6 mm, mantenida a 50°C, con una fase móvil de:
Fase móvil A: Acetonitrilo (100 ml), ácido trifluoroacético (1 ml), acetato de amonio 1 M (10 ml) llevada a 1 l con agua desionizada.
Fase móvil B: Agua desionizada (100 ml), ácido trifluoroacético (1 ml), acetato de amonio 1 M (10 ml) llevada a 1 l con acetonitrilo.
Caudal: 1 ml/minuto
Se usó un gradiente lineal de un 55% de B -95% de B a lo largo de 10 minutos, seguido de 2 minutos a un 95% de B, 0,5 minutos a un 55% de B y otros 2,5 minutos a un 55% de B. Se realizó la detección del compuesto por absorbancia UV a 280 nm.
Procedimiento C
El sistema de HPLC comprendía una Agilent HP1100 y se llevó a cabo en una columna BDS C18 Hypersil de 3 micras (Thermo-Hypersil-Keystone Ltd), 150 x 4,6 mm, mantenida a 40°C, con una fase móvil de:
Fase móvil A: agua desionizada Fase móvil B: acetonitrilo
Caudal: 1 ml/minuto
Se acopló el sistema a un espectrómetro de masas de electropulverización Bruker Daltonics Esquire3000. Se usó un cambio positivo negativo en un rango de barrido de 500 a 1.000 Dalton. Se usó un gradiente lineal de un 55% de B 95% de B a lo largo de 10 minutos, seguido de 2 minutos a un 95% de B, 0,5 minutos a un 55% de B y otros 2,5 minutos a un 55% de B.
Procedimientos sintéticos
Todas las reacciones fueron llevadas a cabo en condiciones anhidras, a menos que se indique lo contrario, usando solventes desecados comercialmente disponibles. Las reacciones fueron monitorizadas por LC-UV-MS, en un HPLC Agilent 1100 acoplado a un espectrómetro de masas Bruker Daltonics Esquire3000+ equipado con una fuente de electropulverización. Se consiguió la separación en una columna Phenomenex Hyperclone, BDS C18 3u (150 x 4,6 mm) a 1 ml/min, con un gradiente lineal de agua:acetonitrilo v:v 30:70 a 100% de acetonitrilo a lo largo de 10 min, seguido de un período isocrático de 5 min a un 100% de acetonitrilo.
Se registraron los espectros de RMN en CDCl3 y las desviaciones químicas Hy C están referidas al solvente (7,26 ppm y 77,0 ppm respectivamente). Dado que la 39-desmetoxirrapamicina y sus derivados existen como una mezcla de confórmeros, todas las asignaciones corresponden únicamente al confórmero principal.
Bioensayo in vitro para la actividad anticancerosa
Se realizó la evaluación in vitro de los compuestos en cuanto a su actividad anticancerosa en un panel de 12 líneas de células tumorales humanas en un ensayo de proliferación en monocapa en la Oncotest Testing Facility, Institute for Experimental Oncology, Oncotest GmbH, Freiburg. En la Tabla 1 se resumen las características de las 12 líneas celulares seleccionadas.
Tabla 1 Líneas celulares de ensayo
# Línea celular Características
Mama, estándar NCI Mama -PTEN positiva, resistente a 17-AAG Mama -PTEN negativa, resistente a 17-AAG Pulmón, estándar NCI SNC, estándar NCI Ovárica -mutada en p85. Amplificada por AKT Renal, alta expresión de RMF Gástrica Melanoma Útero Próstata -PTEN negativa Próstata -PTEN positiva 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 MCF-7 MDA-MB-231 MDA-MB-468 NCI-H460 SF-268 OVCAR-3 A498 GXF 251 L MEXF 394NL UXF 1138L LNCAP DU145
Se establecieron las líneas celulares Oncotest a partir de xenoinjertos tumorales humanos como describen Roth y col. 1999. El origen de los xenoinjertos donantes fue descrito por Fiebig y col. 1999. Se obtuvieron otras líneas celulares del NCI (H460, SF-268, OVCAR-3, DU145, MDA-MB-231, MDA-MB-468) o se compraron a DSMZ, Braunschweig, Alemania (LNCAP).
Todas las líneas celulares, a menos que se indique lo contrario, son cultivadas a 37°C en una atmósfera humidificada (95% de aire, 5% de CO2) en un medio ’listo para mezclar’ que contiene medio RPMI 1640, un 10% de suero fetal de ternera y 0,1 mg/ml de gentamicina (PAA, Cölbe, Alemania).
Ensayo en monocapa -breve descripción del protocolo 1:
Se usó un ensayo con yoduro de propidio modificado para valorar los efectos del/de los compuesto(s) de ensayo sobre el crecimiento de doce líneas celulares tumorales humanas (Dengler y col., (1995)).
Para explicarlo brevemente, se recogieron las células de cultivos en fase exponencial por tripsinización, se contaron y se plaquearon en placas de microtitulación de fondo plano de 96 pocillos a una densidad de células dependiente de la línea celular (5 -10.000 células viables/pocillo). Después de 24 h de recuperación para permitir que las células reasumieran el crecimiento exponencial, se añade 0,01 ml de medio de cultivo (6 pocillos de control por placa) o medio de cultivo que contiene macbecina a los pocillos. Se plaquea cada concentración por triplicado. Se aplican los compuestos en dos concentraciones (0,001 M y 0,01 M). Después de 4 días de exposición continua, se substituye el medio de cultivo celular con o sin compuesto de ensayo por 0,2 ml de una solución acuosa de yoduro de propìdio (PI) (7 mg/l). Para medir la proporción de células vivas, se permeabilizan las células congelando las placas. Después de descongelar las placas, se mide la fluorescencia usando el lector de microplacas Cytofluor 4000 (excitación 530 nm, emisión 620 nm), que da una relación directa con el número total de células viables.
La inhibición del crecimiento es expresada como tratado/control x 100 (% T/C). Para los compuestos activos, se estimaron los valores de la CI50 y la CI70 representando la concentración del compuesto frente a la viabilidad celular.
Ejemplo 1. Fermentación y aislamiento de la 39-desmetoxirrapamicina
Se produjo 39-desmetoxirrapamicina haciendo crecer cultivos de S. hygroscopicus MG2-10 [IJMNOQLhis] y alimentando con ácido ciclohexanocarboxílico (CHCA) como se describe a continuación.
Cultivo líquido
Se cultivó un cultivo vegetativo de S. hygroscopicus MG2-10 [IJMNOQLhis] como se describe en Materiales y Métodos. Se inocularon los cultivos de producción con cultivo vegetativo a razón de 0,5 ml en 7 ml de medio 3 en tubos de 50 ml. Se llevó a cabo el cultivo durante 7 días, 26°C, 300 rpm. Se extrajeron muestras de 1 ml en acetonitrilo 1:1 con agitación durante 30 min, se centrifugaron durante 10 min a 13.000 rpm y se analizaron y cuantificaron según el Procedimiento de análisis B (véase Materiales y Métodos). Se determinó la confirmación del producto por espectrometría de masas usando el Procedimiento de análisis C (véase Materiales y Métodos). Se propuso que el análogo de rapamicina observado era la 39-desmetoxirrapamicina deseada en base a los datos analíticos discutidos más adelante en la caracterización.
Fermentación
Se cultivó un cultivo vegetativo primario en Medio 4 de S. hygroscopicus MG2-10 [IJMNOQLhis] esencialmente como se describe en Materiales y Métodos. Se inoculó un cultivo vegetativo secundario en Medio 4 a un 10% v/v, 28°C, 250 rpm, durante 24 h. Se inocularon los cultivos vegetativos a un 5% v/v en medio 5 (véase Materiales y Métodos) en un fermentador de 20 l. Se realizó el cultivo durante 6 días a 26°C, 0,5 vvm. Se mantuvo  30% de oxígeno disuelto alterando la velocidad de la punta de la hélice, velocidad mínima de la punta de 1,18 ms-1 , velocidad máxima de la punta de 2,75 ms-1. Se realizó la alimentación de ácido ciclohexanocarboxílico a las 24 y a las 48 horas después de la inoculación, para obtener una concentración final de 2 mM.
Extracción y purificación
Se agitó el caldo de fermentación (30 l) con igual volumen de metanol durante 2 horas y se centrifugó después para obtener una pella de células (10 min, 3.500 rpm). Se agitó el sobrenadante con resina Diaion® HP20 (43 g/l) durante 1 hora y se filtró después. Se lavó la resina a modo de lotes con acetona para purificar el análogo de rapamicina y se eliminó el solvente a vacío. Se diluyó luego el concentrado acuoso a 2 l con agua y se extrajo con acetato de etilo (3  2 l). Se eliminó el solvente a vacío, para obtener un aceite marrón (20,5 g).
Se disolvió el extracto en acetona, se secó sobre sílice, se aplicó a una columna de sílice (6  6,5 cm de diámetro) y se eluyó con un gradiente por etapas de acetona/hexano (20% -40%). Se juntaron las fracciones que contenían el análogo de rapamicina y se eliminó el solvente a vacío. Se cromatografió luego el residuo (2,6 g) (en tres lotes) sobre Sephadex LH20, eluyendo con 10:10:1 cloroformo/heptano/etanol. Se purificó el análogo de rapamicina semipurificado (1,7 g) por HPLC preparatoria de fase invertida (C18) usando un HPLC Gilson, eluyendo una columna Phenomenex 21,2  250 mm Luna 5 m C18 BDS con 21 ml/min de acetonitrilo al 65%/agua. Se
combinaron las fracciones más puras (identificadas por HPLC analítica, Procedimiento B) y se eliminó el solvente a vacío, para obtener 39-desmetoxirrapamicina (563 mg).
Caracterización
El espectro de 1H RMN de la 39-desmetoxirapamicina era equivalente al de un patrón (P. Lowden, Ph.D. Dissertation, University of Cambridge, 1997). 13C-RMN (125 MHz), C (ppm): 215,75, 208,27, 169,19, 166,71, 140,13, 135,94, 133,61, 130,10, 129,62, 126,80, 126,33, 98,42, 84,77, 84,37, 75,85, 70,91, 67,10, 59,44, 55,82, 51,21, 46,50, 44,17, 41,39, 40,70, 40,16, 38,74, 38,37, 35,44, 35,26, 35,08, 33,78, 33,64, 33,04, 32,37, 31,22, 30,41, 27,24, 27,02, 25,27, 21,48, 20,58, 16,24, 15,95, 15,78, 13,74, 13,00, 10,12.
El análisis de LCMS y LCMSn de extractos de cultivo mostró que la razón m/z para el nuevo análogo de rapamicina es 30 unidades de masa atómica menor que el de la rapamicina, lo cual es consistente con la ausencia de un grupo metoxi. Iones observados: [M-H]-882,3, [MINH]+ 901,4, [M+Na]+ 906,2, [M+K]+ 922,2. La fragmentación del aducto de sodio dio los iones predichos para la 39-desmetoxirrapamicina siguiendo una ruta de fragmentación previamente identificada (Figura 2) (J. A. Reather, Ph.D. Dissertation, University of Cambridge, 2000). Estos datos de fragmentación de espectrometría de masas estrechan la región del nuevo análogo de rapamicina en la que se ha producido la pérdida de un metoxi al fragmento C28-C42 que contiene el resto ciclohexilo. Estos datos de fragmentación de espectrometría de masas son totalmente consistentes con la 39-desmetoxirrapamicina.
Ejemplo 2: 39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
Se sintetizó 39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina a partir de 39-desmetoxirrapamicina según el siguiente procedimiento.
2.1 Síntesis de 39-desmetoxi-28-O-trimetilsililrapamicina
Se disolvieron 39-desmetoxirapamicina (170 mg, 0,17 mmol) e imidazol (51 mg, 0,75 mmol) en 5 ml de acetato de etilo a 0°C. Se añadió a esta solución fría clorotrimetilsilano (77 mg, 0,09 ml, 0,71 mmol) gota a gota a lo largo de un período de 10 min. Se continuó agitando durante 60 min más para completar la formación del éter 28,39-bis-Otrimetilsilílico. Después de ese período, se añadieron 0,4 ml de ácido sulfúrico acuoso 0,5 N y se agitó la mezcla durante 2,5 h a 0°C. Se añadieron 20 ml de acetato de etilo y se lavó la capa orgánica con solución salina acuosa saturada, una solución saturada de hidrógeno carbonato de sodio y agua. La desecación sobre sulfato de sodio y la concentración a presión reducida dieron el éter 28-O-trimetilsilílico como un sólido incoloro, que fue usado sin mayor purificación para la reacción siguiente.1H-RMN (400 MHz, CDCl3),  (ppm): 4,07 (d, 1H, J=6,5 Hz, C(28)-H), 0,00 (s, 9H, 28-O-TMS). MS (ESI) m/z 978 [M+Na]+
2.2. Síntesis de anhídrido 2,4,6-triclorobenzoico 2’,2’,5’-trimetil-1’,3’-dioxano-5’-carboxílico
Se añadieron 2,2-dimetoxipropano (13,5 g, 130 mmol) y ácido p-toluensulfónico monohidrato (100 mg, 0,53 mmol, 0,4% mol) a una solución de ácido 2,2-bis(hidroximetil)propiónico (13,5 g, 100 mmol) en acetona (100 ml). Se agitó la mezcla de reacción a temperatura ambiente durante 2 h. Después de ese período, se añadió hidrógeno carbonato de sodio húmedo y se agitó la mezcla durante 5 minutos más. Se decantó el sobrenadante y se concentró a presión reducida. Se trató el sólido resultante con éter dietílico (3 x 50 ml) y se concentraron los extractos orgánicos combinados a presión reducida, para obtener un sólido blanco, 16,2 g (93%). 1H-RMN (400 MHz, CDCl3),  (ppm): 4,19 (d, 1H, J=12,0Hz) 3,68 (d, 1H, J=12,0Hz) 1,45 (s, 1H) 1,41 (s, 1H) 1,20 (s, 1H).
Se convirtió entonces este material en un anhídrido mixto activado mediante el procedimiento de US 5.362.718. Así, se disolvió el acetónido (1,04 g, 5,98 mmol) en THF (20 ml), se enfrió hasta 0°C y se trató mediante adición gota a gota de trietilamina (0,83 ml, 5,98 mmol) y cloruro de 2,4,6-triclorobenzoílo (0,93 ml, 5,98 mmol). Se agitó luego la reacción a temperatura ambiente durante 5 horas. Se filtró el precipitado resultante y se lavó con THF (10 ml). Se redujo el filtrado combinado a vacío a un sólido amorfo blanco, que fue usado (como se indica a continuación) sin mayor purificación.
2.3. Síntesis de 39-desmetoxirrapamicina 28-O-trimetilsilil éter, 40-éster con ácido 2,2,5-trimetil[1,3-dioxano]-5carboxílico
Se disolvió 28-O-trimetilsilil-39-desmetoxirrapamicina bruta (200 mg, a partir de 0,17 mmol de 39desmetoxirrapamicina) del ejemplo 2,1 en 2 ml de diclorometano. Se enfrió la solución hasta 0°C y se añadió DMAP (102 mg, 0,84 mmol). Se añadió luego una solución de anhídrido 2,4,6-triclorobenzoico 2’,2’,5’-trimetil-1’,3’-dioxano5’ carboxílico (159 mg, 0,42 mmol) en 1 ml de diclorometano a lo largo de un período de 10 min. Se agitó la mezcla de reacción a 0°C durante 5 h y se monitorizó la conversión por LC/MS. Se diluyó la mezcla de reacción con 7 ml de diclorometano y se apagó por adición de 5 ml de agua. Se separó la capa orgánica y se lavó sucesivamente con ácido sulfúrico 0,5 N, solución de hidrógeno carbonato de sodio y agua. La desecación sobre sulfato de sodio y la concentración a presión reducida dieron el compuesto del título como una espuma incolora, que fue usada inmediatamente sin mayor purificación. MS (ESI) m/z 1111 [M-H]-.
2.4. 39-Desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
Se disolvió el éter 39-desmetoxirrapamicin-28-O-trimetilsilílico bruto, 40-éster con ácido 2,2,5-trimetil[1,3-dioxano]-5carboxílico del ejemplo 2,3 en 2 ml de acetona y se añadieron 0,5 ml de ácido sulfúrico 0,5 N. Se agitó la mezcla de reacción durante 5 h a temperatura ambiente y se neutralizó después por adición de 5 ml de solución saturada de hidrógeno carbonato de sodio y 5 ml de agua. Se extrajo la mezcla acuosa con acetato de etilo y se secaron los extractos orgánicos combinados sobre sulfato de sodio. La concentración a presión reducida dio un sólido incoloro, que fue purificado por cromatografía de exclusión por tamaños en Sephadex LH20 usando cloroformo/heptano/etanol (v:v:v 10:10:1) como eluyentes.1H-RMN (500 MHz, CDCl3),  (ppm): 4,72 (m, 1 H, C(40)-H), 3,87 (m, 2H), 3,69 (m, 2H), 1,03 (s, 3H); 13C-RMN (125 MHz, CDCl3),  (ppm): 175,52, 74,04 (C(40)), 68,73 (2C), 48,90, 17,09. MS (ESI) m/z 1023 [M+Na]+.
Ejemplo 3: 39-Desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrapamicina
3.1. Triflato de 2-(terc-butildimetilsilil)oxietilo
Se enfrió una solución de 2-(tect-butildimetilsilil)etilenglicol (125 mg, 0,71 mmol) y 2,6-lutideno (0,08 ml, 0,69 mmol) en 6 ml de diclorometano hasta -78°C. Se añadió anhídrido trifluorometanosulfónico (0,11 ml, 0,65 mmol) a lo largo de un período de 5 min y se continuó agitando durante 15 min más a -78°C para completar la formación del triflato. Se usó el triflato in situ para la reacción que se describe en 3,2 a continuación.
3.2. 40-O-[2-(terc-Butildimetilsilil)]etil-39-desmetoxirrapamicina
Se trataron 39-desmetoxirrapamicina (300 mg, 0,34 mmol) y 2,6-di-terc-butilpiridina (1,5 ml, 6,68 mmol) con triflato de 2-(terc-butildimetilsilil)oxietilo (0,65 mmol en 6 ml de diclorometano) a temperatura ambiente. Se concentró esta solución a un tercio de su volumen original con una suave corriente de nitrógeno y se agitó la suspensión resultante durante 72 h más a temperatura ambiente. Después de ese período, se añadieron solución saturada de hidrógeno carbonato de sodio (5 ml) y agua (5 ml) y se agitó la mezcla durante 30 min. Se separó la capa orgánica y se extrajo la fase acuosa con acetato de etilo (2 x 5 ml). Se secaron los extractos orgánicos combinados sobre sulfato de sodio y se concentraron a presión reducida, para obtener un aceite incoloro. La purificación por cromatografía en columna de sílice usando un gradiente de hexano a hexano/acetona (v:v 1:1) dio el producto como un sólido incoloro. 1H-RMN (500 MHz, CDCl3),  (ppm): 4,16 (d, 1H, J = 6,5 Hz, C(28)-H), 3,73 (t, 2H, J = 5,7 Hz), 3,52 (t, 2H, J = 5,7 Hz), 0,89 (s, 9H), 0,06 (s, 6H); 13C-RMN (125 MHz, CDCl3),  (ppm): 76,61 (C-40), 69,31 (CH2), 63,03 (CH2), 25,92 (3C), 18,36, -5,23 (2C). MS (ESI) m/z 1065 [M+Na]+.
3.3. 39-Desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrapamicina
Se trató una solución de 40-0-[2-(terc-butildimetilsilil)]etil-39-desmetoxirrapamicina (160 mg, 0,15 mmol) en 2 ml de acetona con 0,3 ml de ácido sulfúrico 0,5 N a temperatura ambiente. Se dejó que la solución reposara a temperatura ambiente durante 3 h y se apagó después por adición de 5 ml de solución saturada de hidrógeno carbonato de sodio y 10 ml de agua. Se extrajo la mezcla acuosa con acetato de etilo (3 x 10 ml) y se secaron los extractos orgánicos combinados sobre sulfato de sodio. La concentración a presión reducida dio un sólido incoloro, que fue purificado por HPLC (agua/acetonitrilo v:v 20/80).1H-RMN (500 MHz, CDCl3),  (ppm): 4,16 (d, 1H, J = 6 Hz), 3,70 (m, 2H), 3,57 (m, 2H), 3,20 (m, 1H, C(40)-H); 13C-RMN (125 MHz, CDCl3),  (ppm): 78,65 (C-40), 77,20 (C-28), 68,93 (CH2O), 62,10 (CH2O). MS (ESI) m/z 951 [M+Na]+
Ejemplo 4 39-Desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina a través de esterificación catalizada por lipasa de 39-desmetoxirrapamicina
Se calentó una mezcla de 39-desmetoxirrapamicina (720 mg, 0,82 mmol), 2,2,5-trimetil[1,3-dioxano]-5-carboxilato de vinilo (244 mg, 1,22 mmol), lipasa PS-C "Amano" II (720 mg) y tamices moleculares de 0,5 nm (250 mg) en terc-butil metil éter anhidro (3,5 ml) hasta 43°C bajo una atmósfera de argón. Después de 48 h, la monitorización por LC/MS mostró una conversión completa del material de partida. Se añadió THF (10 ml) y se filtró la mezcla a través de una almohadilla de Celite. Se lavó la enzima con THF (2 x 10 ml) y se concentraron los extractos orgánicos combinados a presión reducida. Se disolvió el residuo en THF (50 ml) y se añadió H2SO4 (15 ml, 0,5 N). Se dejó que la solución reposara a temperatura ambiente durante 5 h y se apagó luego la reacción por adición de NaHCO3 (50 ml, 5%) y solución salina saturada (50 ml). Se extrajo la mezcla acuosa con EtOAc (3 x 100 ml) y se secaron los extractos orgánicos combinados sobre MgSO4. La eliminación de los solventes dio el producto como un semisólido. La purificación por cromatografía instantánea (hexano/acetona 1:1) dio el producto como un sólido incoloro. Los datos de RMN son idénticos a los del ejemplo 2,4. MS (ESI) m/z 1022 [M+Na]+. La fragmentación del aducto de sodio dio iones a m/z 850, 728, 693, 614, 560, 545, 441 y 431 según el patrón de fragmentación mostrado en la Figura 3.
Ejemplo 5: 39-Desmetoxi-40-O-[2-hidroxietil 3-hidroxi-2-(hidroximetil)-2-metilpropanoato]rapamicina
Se calentó una mezcla de 39-desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrrapamicina (40 mg, 0,04 mmol), 2,2,5-trimetil[1,3dioxano]-5-carboxilato de vinilo (25 mg, 0,13 mmol), lipasa PS-C "Amano" II (40 mg) y tamices moleculares de 0,5 nm (40 mg) en terc-butil metil éter anhidro (2 ml) hasta 43°C bajo una atmósfera de argón. Después de 72 h, la monitorización por LC/MS mostró una conversión completa del material de partida. Se añadió THF (10 ml) y se filtró la mezcla a través de una almohadilla de Celite. Se lavó la enzima con THF (2 x 10 ml) y se concentraron los extractos orgánicos combinados a presión reducida. Se disolvió el residuo en acetona (7,5 ml) y se añadió H2SO4 (2,5 ml, 0,5 N). Se dejó que la solución reposara a temperatura ambiente durante 2 h y se apagó luego la reacción por adición de NaHCO3 sat. (10 ml) y agua (10 ml). Se extrajo la mezcla acuosa con EtOAc (3 x 10 ml) y se secaron los extractos orgánicos combinados sobre MgSO4. La eliminación de los solventes dio el producto como un sólido amarillento. La purificación por HPLC preparatoria en una columna Phenomenex 21,2  50 mm Luna 5 m C18 BDS usando un gradiente de 70:30 MeCN/agua a 100% MeCN a lo largo de 15 min dio el producto como un sólido incoloro. MS (ESI) m/z 1067 [M+Na]+. La fragmentación del aducto de sodio dio iones a m/z 894, 772, 738, 614, 604, 589, 475 y 441 según el parón de fragmentación mostrado en la Figura 4.
Ejemplo 6: 27-O-Desmetil-39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
6.1 27-O-Desmetil-39-desmetoxirrapamicina, 40-éster con ácido 2,2,5-trimetil[1,3-dioxano]-5-carboxílico
Se calentó una mezcla de 27-O-desmetil-39-desmetoxirrapamicina (30 mg, 0,034 mmol), 2,2,5-trimetil[1,3-dioxano]5-carboxilato de vinilo (34 mg, 0,17 mmol), lipasa PS-C "Amano" II (30 mg) y tamices moleculares de 0,5 nm (30 mg) en tect-butil metil éter anhidro (2 ml) hasta 43°C bajo una atmósfera de argón durante 72 h. Se añadió THF (10 ml) y se filtró la mezcla a través de una almohadilla de Celite. Se lavó la enzima con THF (2 x 10 ml) y se concentraron los extractos orgánicos combinados a presión reducida, para obtener un semisólido amarillento. La purificación por cromatografía instantánea usando hexano:acetona (v:v 2:1) dio el producto como un sólido amarillo claro.
MS (ESI) m/z 1049 [M+Na]+.
6.2 27-O-Desmetil-39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
Se disolvió el material de 6,1 en acetona (6 ml) y se añadió H2SO4 (2 ml, 0,5 N). Se dejó que la solución reposara a temperatura ambiente durante 2 h y se apagó luego la reacción por adición de NaHCO3 sat. (10 ml) y agua (10 ml). Se extrajo la mezcla acuosa con EtOAc (3 x 10 ml) y se secaron los extractos orgánicos combinados sobre MgSO4. La eliminación de los solventes dio el producto como un sólido amarillento. La purificación por HPLC preparatoria en una columna Phenomenex 21,2  50 mm Luna 5 m C18 BDS usando un gradiente de 70:30 MeCN/agua a 100% MeCN a lo largo de 15 min dio el producto como un sólido incoloro. MS (ESI) m/z 1009 [M+Na]+. La fragmentación del aducto de sodio dio iones a m/z 836, 679, 600, 560, 531, 431, 427 según el patrón de fragmentación mostrado en la Figura 5. 1H RMN (500 MHz, CDCl3)  ppm 4,73 (m, 1 H, C(40)-H), 4,32 (d, J=4,5 Hz, 1 H, C(27)-H), 4,19 (d, J=4,5 Hz, 1 H, C(28)-H), 3,89 (m, 2 H), 3,70 (m, 2 H) 1,03 (s, 3 H).
Ejemplo 7. Evaluación in vitro de la actividad anticancerosa de 39-desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrrapamicina y 39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
Se realizó la evaluación in vitro de la 39-desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrrapamicina y de la 39-desmetoxi-40-O-[2,2bis(hidroximetil)propionil]rapamicina en cuanto a actividad anticancerosa en un panel de 12 líneas celulares tumorales humanas, en un ensayo de proliferación en monocapa como se describe en el Protocolo 1 en los procedimientos generales anteriores usando un ensayo con yoduro de propidio modificado.
En la siguiente Tabla 3 se muestran los resultados; cada resultado representa la media de experimentos por duplicado. La Tabla 4 muestra la CI50 y la CI70 medias para los compuestos en las líneas celulares estudiadas, mostrando la rapamicina como referencia.
Tabla 4
Rapamicina
39-desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etil rapamicina 39-desmetoxi-40-O-[2,2bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
CI50 media (microM)
3,5 2,2* 2,0
CI70 media (microM)
9,1 5,513* 4,5
* -la media se basaba en las 9 líneas celulares para las que había datos disponibles.
Ejemplo 8: Ensayos de unión in vitro
FKBP12
5 FKBP12 se despliega reversiblemente en el desnaturalizante químico clorhidrato de guandinio (GdnHCl) y se puede monitorizar el desplegamiento por el cambio en la fluorescencia intrínseca de la proteína (Main y col., 1998). Los ligandos que se unen específicamente a FKBP12 y estabilizan su estado nativo cambian la curva de desnaturalización, de tal forma que la proteína se despliega a mayores concentraciones de desnaturalizante químico (Main y col., 1999). A partir de la diferencia en estabilidad, se puede determinar la constante de unión a ligando
10 usando la ecuación 1,
en la que Gapp es la diferencia aparente en la energía libre del desplegamiento entre formas libres y unidas a ligando,
es la energía libre del desplegamiento en agua de la proteína libre, [L] es la concentración de
ligando y Kd es la constante de disociación para el complejo proteína-ligando (Meiering y col., 1992). La energía libre 15 del desplegamiento puede ser relacionada con el punto medio de la transición del desplegamiento usando la siguiente ecuación:
en la que mD-N es una constante para una proteína dada y un desnaturalizante dado y que es proporcional al cambio en el grado de exposición de los residuos en el desplegamiento (Tanford 1968 y Tanford 1970), y [D]50% es la 20 concentración de desnaturalizante correspondiente al punto medio del desplegamiento. Definimos
diferencia en la estabilidad de FKBP12 con rapamicina y ligando desconocido (a la misma concentración de ligando), como:
en la que < mD-N > es el valor medio de m de la transición del desplegamiento y [D]50% la diferencia en los puntos
25 medios para la transición del desplegamiento rapamicina-FKBP12 y la transición del desplegamiento complejo ligando desconocido-FKBP12. En condiciones en las que [L] > Kd, entonces, GD-N, puede ser relacionado con las Kd relativas de los dos compuestos mediante la ecuación 4:
en la que
es la constante de disociación para la rapamicina y
es la constante de disociación para el ligando
30 desconocido X. Por lo tanto,
El ajuste de cada curva de desnaturalización genera valores para mD-N y [D]50%, que pueden ser usados para calcular un valor medio de m, < mD-N >, y [D]50%, y por ello
Se usa el valor en la literatura de
de 0,2 nM. En algunos casos, debido a la baja solubilidad del compuesto de ensayo, se usaron menores concentraciones del
compuesto de ensayo que en el experimento de control de la rapamicina. En estos casos se tomaron en cuenta las diferencias entre la concentración del compuesto de ensayo y la concentración del control de rapamicina usando la siguiente ecuación 6:
Tabla 5 -Resultados del ensayo de unión in vitro de FKBP-12
Ligando [L] M
FKBP12 Kd (nM)
Rapamicina
10 0,2
39-Desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrapamicina
1,6 3,7
39-Desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina
6,67 1,1
mTOR
Se estableció la inhibición de mTOR indirectamente por medición del nivel de fosforilación de los marcadores substitutos de la ruta mTOR y p70S6 kinasa y S6 (Brunn y col., 1997; Mothe-Satney y col., 2000; Tee y Proud, 2002; Huang y Houghton, 2002).
Se cotransfectaron células HEK293 con mTOR marcado con FLAG y Raptor marcado con myc, se cultivaron durante 24 h y se privaron luego de suero durante la noche. Las células fueron estimuladas con 100 nM de insulina y luego recogidas y lisadas por 3 ciclos de congelación/descongelación. Se juntaron los lisados y se inmunoprecipitaron cantidades iguales con anticuerpo FLAG para el complejo mTOR/Raptor. Se procesaron los inmunoprecipitados: las muestras tratadas con compuesto (de 0,00001 a 0,003 mM) fueron preincubadas durante 30 min a 30°C con FKBP12/rapamicina, FKBP12/derivado 39-desmetoxirrapamicina o vehículo (DMSO), y las muestras no tratadas fueron incubadas en tampón kinasa. Se sometieron entonces los inmunoprecipitados a un ensayo de kinasa in vitro en presencia de 3 mM ATP, 10 mM Mn2+ y GST-4E-BP1 como substrato. Se detuvieron las reacciones con tampón de muestra 4x y luego se sometieron a 15% SDS-PAGE, se transfirieron en húmedo a una membrana de PVDF y se sondearon luego en cuanto a fosfo-4E-BP1 (T37/46). Se cuantificaron las bandas del Western blot por análisis de imagen usando Image J (http://rsb.info.nih.gov/ij/). La Figura 6A muestra las curvas de dosis-respuesta para la rapamicina (cuadrados rellenos) y la 39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina (triángulos rellenos). La Figura 6B muestra las curvas de dosis-respuesta para la rapamicina (cuadrados rellenos) y la 39desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrrapamicina (triángulos rellenos).
De manera alternativa, se sembraron células HEK293 en placas de 6 pocillos y se preincubaron durante 24 h y se les privó después de suero durante la noche. Se pretrataron las células con vehículo o compuesto durante 30 min a 30°C, se las estimuló después con 100 nM de insulina durante 30 min a 30°C y se lisaron por medio de 3 ciclos de congelación/descongelación y se estudiaron en cuanto a la concentración de proteína. Se cargaron cantidades iguales de proteína y se separaron en geles de SDS-PAGE. Se transfirió la proteína en húmedo a una membrana de PVDF y luego se la sondeó en cuanto a fosfo-S6 (S235/36) o fosfo-p70 S6K (T389). Se cuantificaron las bandas del Western blot por análisis de imagen usando Image J (http://rsb.info.nih.gov/ij/).
Referencias
Alarcón, C.M., Heitman, J., and Cardenas, M.E. (1999) Protein kinase activity and identification of a toxic effector domain of the target of rapamycin TOR proteins in yeast. Molecular Biology of the Cell 10: 2531-2546. Álvarez, M., Paull, K., Monks, A., Hose, C., Lee, J.S., Weinstein, J., Grever, M., Bates, S., Fojo, T., 1995. Generation of a drug resistance profile by quantitation of mdr-1/P-glycoprotein in the cell lines of the National Cancer Institute Anticancer Drug Screen. Journal of Clinical Investigation, 95, 2205-2214. Aparicio, J.F., Molnár, I., Schwecke, T., König, A., Haydock, S.F., Khaw, L.E., Staunton, J., and Leadlay, P.F. (1996) Organization of the biosynthetic gene cluster for rapamycin in Streptomyces hygroscopicus: analysis of the enzymatic domains in the modular polyketide synthase. Gene 169: 9-16. Baker, H., Sidorowicz, A., Sehgal, S.N., and Vézina, C. (1978) Rapamycin (AY-22,989), a new antifungal antibiotic.
III. In vitro and in vivo evaluation. Journal of Antibiotics 31: 539-545. Boulay, A., Zumstein-Mecker, S., Stephan, C., Beuvink, I., Zilbermann, F., Haller, R., Tobler, S., Heusser, C., O’Reilly, T., Stolz, B., Marti, A., Thomas, G., Lane, H.A.,. 2004, Antitumor efficacy of intermittent treatment schedules with the rapamycin derivative RAD001 correlates with prolonged inactivation of ribosomal protein S6 kinase 1 in peripheral blood mononuclear cells. Cancer Res. 64(1), 252-61. Boyd, M.R. and Paull, K.D., 1995. Some Practical Considerations and Applications of the National Cancer Institute In Vitro Anticancer Drug Discovery Screen. Drug Development Research 34, 91-109,
Brown, E.J., Albers, M.W., Shin, T.B., Ichikawa, K., Keith, C.T., Lane, W.S., and Schreiber, S.L. (1994) A mammalian protein targeted by G1-arresting rapamycin-receptor complex. Nature 369: 756-758. Brunn, G.J., Fadden, P., Haystead, T.A., Lawrence, J.C. Jr.1997 The mammalian target of rapamycin phosphorylates sites having a (Ser/Thr)-Pro motif and is activated by antibodies to a region near its COOH terminus. J Biol. Chem. 272(51), 32547-32550. Brunn, G.J., Williams, J., Sabers, C., Wiederrecht, G., Lawrence, J.C., and Abraham, R.T. (1996) Direct inhibition of the signaling functions of the mammalian target of rapamycin by the phosphoinositide 3-kinase inhibitors, wortmannin and LY294002. EMBO Journal 15: 5256-5267. Carlson, R.P., Hartman, D.A., Tomchek, L.A., Walter, T.L., Lugay, J.R., Calhoun, W., Sehgal, S.N., Chang, J.Y. (1993). Rapamycin, a potential disease-modifying antiarthritic drug. J. Pharmacol. Exp. Ther. 266(2):1125-38. Crowe A, Bruelisauer A, Duerr L, Guntz P, Lemaire M. (1999) Absorption and intestinal metabolism of SDZ-RAD and rapamycin in rats. Drug Metab Dispos, 27(5), 627-32 Dengler W.A., Schulte J., Berger D.P., Mertelsmann R. and Fiebig HH. (1995) Development of a propidium iodide fluorescence assay for proliferation and cytotoxicity assay. Anti-Cancer Drugs, 6:522-532. DiLella, A.G., and Craig, R.J. (1991) Exon organization of the human FKBP-12 gene: correlation with structural and functional protein domains. Biochemistry 30: 8512-8517. Dudkin, L., Dilling, M.B., Cheshire, P.J., Harwood, F.C., Hollingshead, M., Arbuck, S.G., Travis, R., Sausville, E.A., Houghton, P.J. (2001). Biochemical correlates of mTOR inhibition by the rapamycin ester CCI-779 and tumor growth inhibition. Clin. Cancer Res. 7(6):1758-64 Evans D.A., Gage J.R. and Leighton J.L. (1992) Assymetric synthesis of calyculin A. 3. Assemblage of the calyculin skeleton and the introduction of a new phosphate monoester synthesis. J. Org. Chem., 57:1964-1966 Fiebig H.H., Dengler W.A. and Roth T. (1999) Human tumor xenografts: Predictivity, characterization, and discovery of new anticancer agents. In: Fiebig HH, Burger AM (eds). Relevance of Tumor Models for Anticancer Drug Development. Contrib. Oncol., 54: 29 -50. Findlay J.A, and Radics, L. (1980) Canadian Journal of Chemistry 58:579. Fishbein, T.M., Florman, S., Gondolesi, G., Schiano, T., LeLeiko, N., Tschernia, A., Kaufman, S. (2002). Intestinal transplantation before and after the introduction of sirolimus. Transplantation. 73(10): 1538-42. Foey, A., Green, P., Foxwell, B., Feldmann, M., Brennan, F. (2002). Cytokine-stimulated T cells induce macrophage IL-10 production dependent on phosphatidylinositol 3-kinase and p70S6K: implications for rheumatoid arthritis. Arthritis Res. 4(1):64-70. Epub 2001 Oct 10. Furniss B.S., Hannaford A.J., Smith P.W.G. and Tatchell A.R. (1989) Vogel’s textbook of practical organic chemistry, 5th Ed, Pearson, Prentice Hall, Harlow, UK. Gallant-Haidner HL, Trepanier DJ, Freitag DG, Yatscoff RW. 2000, "Pharmacokinetics and metabolism of sirolimus". Ther Drug Monit. 22(1), 31-5. Grass, G.M., Rubas, W., Jezyk, N., (1992) Evaluation of CACO-2 monolayers as a predictor of drug permeability in colonic tissues. FASEB Journal, 6, A1002. Gregory, C.R., Huie, P., Billingham, M.E. and Morris, R.E. (1993). Rapamycin inhibits arterial intimal thickening caused by both alloimmune and mechanical injury. Its effect on cellular, growth factor and cytokine response in injured vessels. Transplantation 55(6):1409-1418. Gregory MA, Gaisser S, Lill RE, Hong H, Sheridan RM, Wilkinson B, Petkovic H, Weston AJ, Carletti I, Lee HL, Staunton J, Leadlay PF. (2004) "Isolation and characterization of pre-rapamycin, the first macrocyclic intermediate in the biosynthesis of the immunosuppressant rapamycin by S. hygroscopicus". Angew Chem Int Ed Engl. 43(19), 2551-3 Gu, J, Ruppen ME, Cai P. (2005), "Lipase-Catalyzed Regioselective Esterification of Rapamycin: Synthesis of Temsirolimus (CCI-779). Org. Lett. 7(18): 3945-3948. Guba, M., von Breitenbuch, P., Steinbauer, M., Koehl, G., Flegel, S., Hornung, M., Bruns, C.J., Zuelke, C., Farkas, S., Anthuber, M., Jauch, K.W., and Geissler, E.K. (2002) Rapamycin inhibits primary and metastatic tumor growth by antiangiogenesis: involvement of vascular endothelial growth factor. Nature Medicine 8: 128-135. Hardwick, J.S., Kuruvilla, F.G., Tong, J.K., Shamji, A.F., and Schreiber, S.L. (1999) Rapamycin-modulated transcription defines the subset of nutrient-sensitive signaling pathways directly controlled by the Tor proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 96: 14866-14870. Hentges, K.E., Sirry, B., Gingeras, A.C., Sarbassov, D., Sonenberg, N., Sabatini, D., and Peterson, A.S. (2001) FRAP/mTOR is required for proliferation and patterning during embryonic development in the mouse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 98: 13796-13801. Huang, S. and Houghton, P.J., 2002. Mechanisms of resistance to rapamycins. Drug Resist. Update, 4(6), 378
391. Jain, S., Bicknell, G.R., Whiting, P.H., Nicholson, M.L. (2001). Rapamycin reduces expression of fibrosisassociated genes in an experimental model of renal ischaemia reperfusion injury. Transplant Proc. 33(1-2):556-8. Kahan, B.D., and Camardo, J.S. (2001) Rapamycin: Clinical results and future opportunities. Transplantation 72:1181-1193. Kahan, B.D., Chang, J.Y., and Sehgal, S.N. (1991) Preclinical evaluation of a new potent immunosuppressive agent, rapamycin. Transplantation 52: 185-191.
Kirby, B., and Griffiths,C.E.M. (2001) Psoriasis: the future. British Journal of Dermatology 144:37-43. Kirchner, G.I., Winkler, M., Mueller L., Vidal, C., Jacobsen, W., Franzke, A., Wagner, S., Blick, S., Manns M.P., and Sewing K.-F.(2000) Pharmacokinetics of SDZ RAD and cyclosporin including their metabolites in seven kidney graft patients after the first dose of SDZ RAD. British Journal of Clinical Pharmacology 50:449-454. Kuo, C.J., Chung, J.K., Fiorentino, D.F., Flanagan, W.M., Blenis, J., and Crabtree, G.R. (1992) Rapamycin selectively inhibits interleukin-2 activation of p70 S6 kinase. Nature 358: 70-73. Langmann T, Mauerer R, Zahn A, Moehle C, Probst M, Stremmel W, Schmitz G. (2003) "Real-time reverse transcription-PCR expression profiling of the complete human ATP-binding cassette transporter superfamily in various tissues". Clin Chem. 49(2), 230-8.Lee, J-S, Paull, K., Álvarez, M., Hose, C., Monks, A., Grever, M., Fojo, A.T., Bates, S.E., 1994. Rhodamine efflux patterns predict P-glycoprotein substrates in the National Cancer Institute drug screen. Molecular Pharmacology 46,627-638. Li, A.P. (1992) Screening for human ADME/Tox drug properties in drug discovery. Drug Discovery Today, 6, 357
366. Lowden, P. A. S., (1997) Ph.D. Dissertation, University of Cambridge. "Studies on the biosynthesis of rapamycin". Lyons, W.E., George, E.B., Dawson, T.M., Steiner, J.P., and Snyder, S.H. (1994) Immunosuppressant FK506 promotes neurite outgrowth in cultures of PC12 cells and sensory ganglia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 91:3191-3195. Main, E. R. G., Fulton, K. F. & Jackson, S. E. (1998). The Context-Dependent Nature of Destabilising Mutations on The Stability of FKBP12. Biochemistry 37, 6145-6153. Main, E. R. G., Fulton, K. F. & Jackson, S. E. (1999a). Folding of FKBP12: Pathway of Folding and Characterisation of the Transition State. J. Mol. Biol. 291, 429-444. McAlpine, J. B,.Swanson S. J., Jackson, M., Whittern, D.N. (1991). Revised RMN assignments for rapamycin. Journal of Antibiotics 44: 688-690. Meiering, E. M., Serrano, L. & Fersht, A. R. (1992). Effect of Active Site Residues in Barnase on Activity and Stability.
J. Mol. Biol. 225, 585-589. Morice, M.C., Serruys, P.W., Sousa, J.E., Fajadet, J., Ban Hayashi, E., Perin, M., Colombo, A., Schuler, G., Barragan, P., Guagliumi, G., Molnar, F., Falotico, R. (2002). RAVEL Study Group. Randomized Study with the Sirolimus-Coated Bx Velocity Balloon-Expandable Stent in the Treatment of Patients with de Novo Native Coronary Artery Lesions. A randomized comparison of a sirolimus-eluting stent with a standard stent for coronary revascularization.
N. Eng.I J. Med. 346(23):1773-80. Mothe-Satney, I., Brunn, G.J., McMahon, L.P., Capaldo, C.T., Abraham, R.T., Lawrence, J.C. Jr-. 2000 Mammalian target of rapamycin-dependent phosphorylation of PHAS-I in four (S/T)P sites detected by phosphospecific antibodies. J Biol Chem. 275(43), 33836-33843. Myckatyn, T.M., Ellis, R.A., Grand, A.G., Sen, S.K., Lowe, J.B. 3rd, Hunter, D.A., Mackinnon, S.E. (2002). The effects of rapamycin in murine peripheral nerve isografts and allografts. Plast. Reconstr. Surg. 109(7):2405-17. Navé, B.T., Ouwens, D.M., Withers, D.J., Alessi, D.R., and Sheperd, P.R. (1999) Mammalian target of rapamycin is a direct target for protein kinase B: identification of a convergence point for opposing effects of insulin and aminoacid deficiency on protein translation. Biochemical Journal 344:427-431. NCCLS Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing for Yeasts: Approved Standard M27-A, vol. 17 No. 9. (1997). Paiva, N.L., Demain, A.L., and Roberts, M.F. (1991) Incorporation of acetate, propionate, and methionine into rapamycin By Streptomyces hygroscopicus. Journal of Natural Products 54: 167-177. Paiva, N.L., Demain, A.L., and Roberts, M.F. (1993) The immediate precursor of the nitrogen-containing ring of rapamycin is free pipecolic acid. Enzyme and Microbial Technology 15: 581-585. Perin, E C, (2005), "Choosing a Drug-Eluting Stent: A Comparison Between CYPHER and TAXUS", Reviews in Cardiovascular Medicine, 6 (suppl 1), ppS13-S21. Persidis A. (1999), "Cancer multidrug resistance" Nat Biotechnol. 17: 94-5 Powell, N., Till, S., Bungre, J., Corrigan, C. (2001). The immunomodulatory drugs cyclosporin A, mycophenolate mofetil, and sirolimus (rapamycin) inhibit allergen-induced proliferation and IL-5 production by PBMCs from atopic asthmatic patients.J. Allergy Clin. Immunol. 108(6):915-7 Rabinovitch, A., Suarez-Pinzon, W.L., Shapiro, A.M., Rajotte, R.V., Power, R. (2002). Combination therapy with sirolimus and interleukin-2 prevents spontaneous and recurrent autoimmune diabetes in NOD mice.Diabetes. 51(3):638-45. Raught, B., Gingras, A.C., and Sonenberg, N. (2001) The target of rapamycin (TOR) proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 98: 7037-7044. Reather, J. A., (2000), Ph.D. Dissertation, University of Cambridge. "Late steps in the biosynthesis of macrocyclic lactones". Reitamo, S., Spuls, P., Sassolas, B., Lahfa, M., Claudy, A., Griffiths, C.E.; Sirolimus European Psoriasis Study Group. (2001). Efficacy of sirolimus (rapamycin) administered concomitantly with a subtherapeutic dose of cyclosporin in the treatment of severe psoriasis: a randomized controlled trial. Br. J. Dermatol. 145(3):438-45. Roth T., Burger A.M., Dengler W., Willmann H. and Fiebig H.H. (1999) Human tumor cell lines demonstrating the characteristics of patient tumors as useful models for anticancer drug screening. In: Fiebig HH, Burger AM (eds).
Relevance of Tumor Models for Anticancer Drug Development. Contrib. Oncol., 54: 145 -156. Roymans, D., and Slegers, H. (2001) Phosphaditidylinositol 3-kinases in tumor progression. European Journal of Biochemistry 268:487-498. Schwecke, T., Aparicio, J.F., Molnár, I., König, A., Khaw, L.E., Haydock, S.F., Oliynyk, M., Caffrey, P., Cortés, J., Lester, J.B., Böhm, G.A., Staunton, J., and Leadlay, P.F. (1995) The biosynthetic gene cluster for the polyketide immunosuppressant rapamycin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 92: 7839-7843. Sedrani, R., Cottens, S., Kallen, J., and Schuler, W. (1998) Chemical modifications of rapamycin: the discovery of SDZ RAD. Transplantation Proceedings 30: 2192-2194. Sehgal, S.N., Baker, H., and Vézina, C. (1975) Rapamycin (AY-22,989), a new antifungal antibiotic II. Fermentation, isolation and characterization. The Journal of Antibiotics 28: 727-733. Shepherd, P.R , Withers, D.J., and Siddle K. (1998) Phosphoinositide 3-kinase: the key switch mechanism in insulin signalling. Biochemical Journal 333: 471-490. Smith M.B. and March J. (2001) March’s advanced organic chemistry, 5th Ed, John Wiley and Sons Inc., UK Steiner, J.P., Hamilton, G.S., Ross, D. T., Valentine, H.L., Guo, H., Connolly, M.A., Liang, S., Ramsey, C., Li, J.- H.J., Huang, W., Howorth, P., Soni, R., Fuller, M., Sauer, H., Nowotnik, A.C., and Suzdak, P.D. (1997) Neutrophic immunophilin ligands stimulate structural and functional recovery in neurodegenerative animal models. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 94:2019-2024. Stein U, Jurchott K, Schlafke M, Hohenberger P. (2002) "Expression of multidrug resistance genes MVP, MDR1, and MRP1 determined sequentially before, during, and after hyperthermic isolated limb perfusion of soft tissue sarcoma and melanoma patients". J Clin Oncol. 20(15):3282-92. Szakacs G, Annereau JP, Lababidi S, Shankavaram U, Arciello A, Bussey KJ, Reinhold W, Guo Y, Kruh GD, Reimers M, Weinstein JN, Gottesman MM. 2004, "Predicting drug sensitivity and resistance: profiling ABC transporter genes in cancer cells". Cancer Cell. 6(2):129-37. Tanford, C. (1968). Protein Denaturation. Adv. Prot. Chem. 23, 121-282. Tanford, C. (1970). Protein Denaturation. Part C. Theoretical models for the mechanism of denaturation. Advances in Protein Chemistry 24, 1-95 Tang, S.J., Reis, G., Kang, H., Gingras, A.-C., Sonenberg, N., and Schuman, E.M. (2002) A rapamycin-sensitive signaling pathway contributes to long-term synaptic plasticity in the hippocampus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 1:467-472. Tee, A.R. and Proud, C.G. 2002 Caspase cleavage of initiation factor 4E-binding protein 1 yields a dominant inhibitor of Cap-dependent translation and reveals a novel regulatory motif. Mol. Cell. Biol. 22, 1674-1683 Toshima K. and Tatsuta K. (1993) Recent progress in O-glycosylation methods and its application to natural product synthesis. Chem. Rev., 93:1503-1531. Trepanier DJ, Gallant H, Legatt DF, Yatscoff RW. (1998), "Rapamycin: distribution, pharmacokinetics and therapeutic range investigations: an update". Clin Biochem. 31(5):345-51. Vézina, C., Kudelski, A., and Sehgal, S.N. (1975) Rapamycin (AY-22,989), a new antifungal antibiotic. I. Taxonomy of the producing streptomycete and isolation of the active principle. The Journal of Antibiotics 28: 721
726. Volpe, D.A., Faustino, P.J., Yu, L.X., (2001) Towards standardisation of an in vitro method of drug absorption. Pharmacopeial Forum, 27, 2916-2922. Waller, J.R., and Nicholson, M.L. (2001) Molecular mechanisms of renal allograft fibrosis. British Journal of Surgery 88:1429-1441. Warner, L.M., Adams, L.M., Chang, J.Y., Sehgal, S.N. (1992). A modification of the in vivo mixed lymphocyte reaction and rapamycin’s effect in this model.Clin. Immunol. Immunopathol. 64(3):242-7. Yu, K., Toral-Barza, L., Discafani, C., Zhang, W.G., Skotnicki, J., Frost, P., Gibbons, J.J. (2001) mTOR, a novel target in breast cancer: the effect of CCI-779, an mTOR inhibitor, in preclinical models of breast cancer. Endocrine-Related Cancer 8:249-258. Zhu, J., Wu J., Frizell, E., Liu, S.L., Bashey, R., Rubin, R., Norton, P., Zern, M.A. (1999). Rapamycin inhibits hepatic stellate cell proliferation in vitro and limits fibrogenesis in an in vivo model of liver fibrosis. Gastroenterology. 117(5):1198-204.

Claims (50)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Un compuesto según la Formula (I) siguiente:
    en la que:
    X representa un enlace o CH2; R1 representa un grupo ceto o (H,H); R2 representa OH u OMe; R3 representa H, OH u OMe; R4 y R5 representa cada uno independientemente H u OH; R6 representa -R7, -C(O)R7, -(CH2)2-O-[CR21R22-O]a-C(O)-R23; -CR21R22-O-C(O)-R23; -POR19R20, -PO(OR19)(OR20) o Y-R15; R7 representa -(CR8R9)m(CR10R11)pCR12R13R14; R8 y R9 representa cada uno independientemente alquilo C1-C4, alquenilo C2-C4o alquinilo C2-C4, pudiendo estar cualquiera de estos grupos opcionalmente substituido con -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, -COOH o -NH2; o R8 y R9 representan cada uno independientemente H, trifluorometilo o F; R10, R11, R12, R13 y R14 representa cada uno independientemente alquilo C1-C4, alquenilo C2-C4 o alquinilo C2- C4, pudiendo estar cualquiera de estos grupos opcionalmente substituido con -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, - COOH o -NH2; o R10, R11, R12, R13 y R14 pueden ser independientemente seleccionados entre H, -(CR8R9)qNH2, (CR8R9)qOH, CF3, F, COOH; o R10 y R11 o R12 y R13 o R13 y R14 pueden ser tomados junto con el carbono al que están unidos para formar un C3-C6 cicloalquilo o un anillo de heteroalquilo de 3 a 6 miembros que contiene uno
    o más heteroátomos seleccionados entre N, O y S y que está opcionalmente substituido con hasta 5 grupos (CR8R9)qOH, -(CR8R9)qNH2 o COOH; Y = enlace, -C(O)-O-, -(CH2)2-O-C(O)-O-;
    los R16 son cada uno independientemente H u OH; R17 es independientemente seleccionado entre H, OH y NH2; R18 es independientemente seleccionado entre H, -CH3, -CH2OH y -COOH; con la condición, sin embargo, de que no más de 2 grupos seleccionados entre R16, R17 y R18 representen H o CH3; R19 y R20 representa cada uno independientemente H o C1-C4 alquilo, o R19 y R20 representan juntos =CH2; R21 es independientemente seleccionado entre H, CH3; R22 es independientemente seleccionado entre H, -CH3, -CH=CH2, -CH2Cl, -CHCl2, -CCl3, -CH(OH)Me,-CH2OH, -CH2CH3, -CH(CI)Me;
    R23 es independientemente R7, Y-R15 o un anillo de arilo o heteroarilo de 5 o 6 miembros opcionalmente substituido con entre uno y tres grupos seleccionados entre OH, F, Cl, Br, NO2 y NH2; a representa 0 o 1; m, p y q representa cada uno independientemente un número entero de 0-4;
    con la condición, sin embargo, de que el resto R7 no contenga más de 12 átomos de carbono y sí contiene al menos un grupo funcional seleccionado entre -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -COOH, OH o NH2;
    o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo.
  2. 2.
    Un compuesto según la reivindicación 1 en el que R6 representa -R7.
  3. 3.
    Un compuesto según la reivindicación 1 en el que R6 representa -C(O)R7.
  4. 4.
    Un compuesto según la reivindicación 1 en el que R6 representa -(CH2)2-O-[CR21R22-O]a-C(O)-R23.
  5. 5.
    Un compuesto según la reivindicación 4 en el que R23 representa R7.
  6. 6.
    Un compuesto según la reivindicación 4 en el que R23 representa Y-R15.
  7. 7.
    Un compuesto según la reivindicación 1-5 en el que R7 contiene 7 o menos átomos de carbono.
  8. 8.
    Un compuesto según la reivindicación 7, en el que R7 contiene 5 o menos átomos de carbono.
  9. 9.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, 7 u 8 en el que R7 contiene dos grupos seleccionados entre -PO(OH)2, -CF2PO(OH)2, -OH, -COOH y -NH2.
  10. 10.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 9 en el que R7 contiene al menos un grupo funcional seleccionado entre -COOH, OH y NH2.
  11. 11.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 10 en el que p representa 0 o 1.
  12. 12.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 11 en el que m representa 0 o 1.
  13. 13.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 12 en el que q representa 0, 1 o 2.
  14. 14.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 13 en el que R11 representa H.
  15. 15.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 14, en el que R12 representa H.
  16. 16.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 15, en el que R13 representa H o OH.
  17. 17.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 16 en el que p representa 1, y R10 representa Me, OH o CH2OH.
  18. 18.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 16 en el que p representa 1 y R11 representa Me, H o CH2OH.
  19. 19.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 10 en el que m y p representan ambos 0, R12 y R13 representan ambos H y R14 representa -(CR8R9)q-OH en el que q = 0o 1y R8y R9representan ambos H.
  20. 20.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 10 en el que p representa 1 y m representa 0, R10 y R11 representan ambos H, R12 representa H, R13 representa H, OH o NH2 y R14 representa (CR8R9)q-OHen el que q = 0o 1yR8y R9representan ambos H.
  21. 21.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 10 en el que R6 representa el residuo derivado de la formación de un éster con ácido hidroxiacético, ácido 3-hidroxi-2,2-dimetilpropiónico, ácido 2,3dihidroxipropiónico, ácido 3-hidroxi-2-hidroximetilpropiónico o ácido 2,2-bis(hidroximetil)propiónico.
  22. 22.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o 7 a 10 en el que R6 representa el residuo derivado de la formación de un éter con ácido hidroxiacético, ácido 3-hidroxi-2,2-dimetilpropiónico, ácido 2,3dihidroxipropiónico, ácido 3-hidroxi-2-hidroximetilpropiónico o ácido 2,2-bis(hidroximetil)propiónico.
  23. 23.
    Un compuesto según la reivindicación 1 que es 39-desmetoxi-40-O-[2,2-bis(hidroximetil)propionil]rapamicina o una sal farmacéuticamente aceptable del misma.
  24. 24.
    Un compuesto según la reivindicación 1 que es 39-desmetoxi-40-O-(2-hidroxi)etilrrapamicina o una sal farmacéuticamente aceptable del misma.
  25. 25.
    Un compuesto según la reivindicación 1 que es 39-desmetoxi-40-O-[2-hidroxietil-3-hidroxi-2-(hidroximetil)-2metilpropanoato]rapamicina o una sal farmacéuticamente aceptable del misma.
  26. 26.
    Un compuesto según la reivindicación 1 que es 27-O-desmetil-39-desmetoxi-40-O-[2,2bis(hidroximetil)propionil]rapamicina o una sal farmacéuticamente aceptable del misma.
  27. 27.
    Un compuesto según la reivindicación 1 en el que R6 representa -POR19R20.
  28. 28.
    Un compuesto según la reivindicación 1 en el que R6 representa -PO(OR19)(OR20).
  29. 29.
    Un compuesto según la reivindicación 27 o 28 en el que R19 y R20 representan ambos CH3 o representan ambos CH2CH3.
  30. 30.
    Un compuesto según la reivindicación 1 en el que R6 representa Y-R15.
  31. 31.
    Un compuesto según la reivindicación 30 en el que el grupo R15 representa
    10 32. Un compuesto según la reivindicación 31 en el que R15 es un resto formado por formación de un acetal con glucosa, glucosamina, ácido glucurónico o arabinosa.
  32. 33. Un compuesto según la reivindicación 31, en el que R15 es un resto formado por formación de un acetal con Dglucosa.
  33. 34. Un compuesto según la reivindicación 31, en el que R15 es un resto formado por formación de un acetal con D15 glucosamina.
  34. 35.
    Un compuesto según la reivindicación 31, en el que R15 es un resto formado por formación de un acetal con ácido D-glucurónico.
  35. 36.
    Un compuesto según la reivindicación 30 en el que R15 representa:
    20 37. Un compuesto según la reivindicación 36, en el que R15 es un resto formado por formación de un acetal con fructosa.
  36. 38. Un compuesto según la reivindicación 30 en el que R15 representa:
  37. 39. Un compuesto según la reivindicación 38, en el que R15 es un resto formado por formación de un éster con ácido 25 glucurónico.
  38. 40.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 30 a 39 en el que Y representa un enlace.
  39. 41.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 30 a 39 en el que Y representa -(CH2)2-O-C(O)-O-.
  40. 42.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 30 a 39 en el que Y representa -C(O)-O-.
  41. 43.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 para su uso como producto farmacéutico.
  42. 44.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 para su uso en el tratamiento del cáncer y/o de las malignidades de las células B, en la inducción o el mantenimiento de la inmunosupresión, en el tratamiento del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de trastornos autoinmunes, de enfermedades inflamatorias, de la enfermedad vascular y de enfermedades fibrióticas, en la estimulación de la regeneración neuronal o en el tratamiento de infecciones fúngicas.
  43. 45.
    Un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 para su uso como un producto farmacéutico en el tratamiento del cáncer o de las malignidades de las células B.
  44. 46.
    Una composición farmacéutica que comprende un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 junto con uno o más diluyentes o vehículos farmacéuticamente aceptables.
  45. 47.
    Uso de un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 para la preparación de una composición farmacéutica para el tratamiento del cáncer o de las malignidades de las células B.
  46. 48.
    Uso de un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 en la preparación de un medicamento para el tratamiento del cáncer y/o de las malignidades de las células B, en la inducción o el mantenimiento de la inmunosupresión, en el tratamiento del rechazo de trasplantes, de la enfermedad del injerto contra el huésped, de trastornos autoinmunes, de enfermedades inflamatorias, de la enfermedad vascular y de enfermedades fibrióticas, en la estimulación de la regeneración neuronal o en el tratamiento de infecciones fúngicas.
  47. 49.
    El uso según la reivindicación 48 en el que el medicamento es para el tratamiento del cáncer o de las malignidades de las células B.
  48. 50.
    Un procedimiento de preparación de un compuesto de fórmula (I) según una cualquiera de las reivindicaciones a 42 que comprende:
    (a) hacer reaccionar un compuesto de fórmula (II):
    en la que RA representa H o (CH2)2-OH
    o un derivado protegido del mismo, con un compuesto de fórmula (III):
    HO-R6 (III)
    o un derivado activado del mismo en la que el grupo R6 es como se ha definido anteriormente para los compuestos de fórmula (II) o un derivado protegido del mismo, o
    (b)
    convertir un compuesto de fórmula (I) o una sal del mismo en otro compuesto de fórmula (I) u otra sal farmacéuticamente aceptable del mismo; o
    (c)
    desproteger un compuesto protegido de fórmula (I).
  49. 51. Una composición o kit de partes que comprende (i) un compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 42 y (ii) uno o más de otros agentes terapéuticamente efectivos.
  50. 52. La composición o kit de partes de la reivindicación 51 en el que el uno o más de otros agentes terapéuticamente efectivos son seleccionados entre el grupo de metotrexato, leukovorina, adriamicina, prednisona, bleomicina, 5 ciclofosfamida, 5-fluorouracilo, paclitaxel, docetaxel, vincristina, vinblastina, vinorelbina, doxorrubicina, tamoxifeno, toremifeno, acetato de megestrol, anastrozol, goserelina, anticuerpo monoclonal anti-HER2 (por ejemplo, Herceptin™), capecitabina, clorhidrato de raloxifeno, inhibidores de EGFR, inhibidores de VEGF, inhibidores de proteasomas, inhibidores de hsp90, azatioprina, corticosteroides, ciclofosfamida, ciclosporina A, FK506, micofenolato mofetilo, OKT-3, ATG, anfotericina B, flucitosina, equinocandinas, griseofulvina, un imidazol y un
    10 agente antifúngico triazólico.
ES06710063.6T 2005-03-11 2006-03-10 Derivados 39-desmetoxi de rapamicina Expired - Lifetime ES2527530T3 (es)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB0504994 2005-03-11
GBGB0504994.5A GB0504994D0 (en) 2005-03-11 2005-03-11 Novel compounds
PCT/GB2006/000853 WO2006095185A1 (en) 2005-03-11 2006-03-10 39-desmethoxy derivatives of rapamycin

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2527530T3 true ES2527530T3 (es) 2015-01-26

Family

ID=34508873

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES06710063.6T Expired - Lifetime ES2527530T3 (es) 2005-03-11 2006-03-10 Derivados 39-desmetoxi de rapamicina

Country Status (24)

Country Link
US (2) US7648996B2 (es)
EP (1) EP1856129B8 (es)
JP (1) JP5422788B2 (es)
KR (1) KR20070113282A (es)
CN (2) CN101175760B (es)
AU (1) AU2006221786B2 (es)
BR (1) BRPI0607441A2 (es)
CA (1) CA2600640C (es)
CR (1) CR9434A (es)
DK (1) DK1856129T3 (es)
ES (1) ES2527530T3 (es)
GB (1) GB0504994D0 (es)
HR (1) HRP20150012T1 (es)
IL (1) IL185688A0 (es)
MX (1) MX2007011131A (es)
NI (1) NI200700230A (es)
NO (1) NO20074594L (es)
NZ (1) NZ561607A (es)
PL (1) PL1856129T3 (es)
PT (1) PT1856129E (es)
RS (1) RS53778B1 (es)
RU (1) RU2391346C2 (es)
WO (1) WO2006095185A1 (es)
ZA (1) ZA200708601B (es)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11819476B2 (en) 2019-12-05 2023-11-21 Janssen Pharmaceutica Nv Rapamycin analogs and uses thereof
US11944605B2 (en) 2018-06-15 2024-04-02 Janssen Pharmaceutica Nv Rapamycin analogs and uses thereof

Families Citing this family (39)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2862538B1 (fr) * 2003-11-21 2006-03-03 Galderma Res & Dev Utilisation de l'idrocilamide pour la preparation d'une composition pharmaceutique pour le traitement de la rosacee
ES2364495T3 (es) 2005-02-03 2011-09-05 The General Hospital Corporation Método para tratar cáncer resistente a gefitinib.
EP1896018A2 (en) * 2005-03-11 2008-03-12 Biotica Technology Limited Medical uses of 39-desmethoxyrapamycin and analogues thereof
CN101836980A (zh) * 2005-03-11 2010-09-22 比奥蒂卡科技有限公司 39-去甲氧基雷帕霉素及其类似物的医药用途
AU2016259316B2 (en) * 2005-11-04 2018-09-06 Wyeth Llc Antineoplastic combinations with mTOR inhibitor, herceptin, and/or HKI-272
AU2013204788B2 (en) * 2005-11-04 2016-12-08 Wyeth Llc Antineoplastic combinations with mtor inhibitor, herceptin, and/or hki-272
JP2009514870A (ja) 2005-11-04 2009-04-09 ワイス mTORインヒビター、ハーセプチン、および/またはHKI−272の抗悪性腫瘍性組み合わせ
CA2629714A1 (en) 2005-11-14 2007-05-24 Ariad Gene Therapeutics, Inc. Administration of an mtor inhibitor to treat patients with cancer
GB0609963D0 (en) 2006-05-19 2006-06-28 Biotica Tech Ltd Novel compounds
JP2010523566A (ja) * 2007-04-05 2010-07-15 ワイス エルエルシー ワートマニン−ラパマイシンコンジュゲートおよびその使用
TW200845960A (en) * 2007-04-05 2008-12-01 Wyeth Corp Wortmannin-rapalog conjugate and uses thereof
US20080287675A1 (en) * 2007-05-18 2008-11-20 Abbott Laboratories Cascade system
US8022216B2 (en) 2007-10-17 2011-09-20 Wyeth Llc Maleate salts of (E)-N-{4-[3-chloro-4-(2-pyridinylmethoxy)anilino]-3-cyano-7-ethoxy-6-quinolinyl}-4-(dimethylamino)-2-butenamide and crystalline forms thereof
ES2692769T3 (es) 2008-06-17 2018-12-05 Wyeth Llc Combinaciones antineoplásicas que contienen HKI-272 y vinorelbina
CN105147713A (zh) 2008-08-04 2015-12-16 惠氏有限责任公司 4-苯胺基-3-氰基喹啉和卡培他滨的抗肿瘤组合
EP2365802B1 (en) 2008-11-11 2017-08-02 The Board of Regents,The University of Texas System Microcapsules of rapamycin and use for treating cancer
SG174382A1 (en) 2009-04-06 2011-11-28 Wyeth Llc Treatment regimen utilizing neratinib for breast cancer
WO2011051960A2 (en) * 2009-09-25 2011-05-05 Cadila Healthcare Limited Process for the preparation of rapamycin derivatives
CA2777128A1 (en) 2009-10-30 2011-05-05 Ariad Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for treating cancer
US20170079962A1 (en) 2009-11-11 2017-03-23 Rapamycin Holdings, Llc Oral Rapamycin Preparation and Use for Stomatitus
US9283211B1 (en) 2009-11-11 2016-03-15 Rapamycin Holdings, Llc Oral rapamycin preparation and use for stomatitis
EP2589383A1 (en) * 2011-11-06 2013-05-08 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Berlin FKBP subtype-specific rapamycin analogue for use in treatment of diseases
GB201122305D0 (en) 2011-12-23 2012-02-01 Biotica Tech Ltd Novel compound
US20150290176A1 (en) 2012-10-12 2015-10-15 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Use of mtor inhibitors to treat vascular cognitive impairment
EP2968281B1 (en) 2013-03-13 2020-08-05 The Board of Regents of The University of Texas System Mtor inhibitors for prevention of intestinal polyp growth
US10682415B2 (en) 2013-07-22 2020-06-16 Wisconsin Alumni Research Foundation Thermogel formulation for combination drug delivery
CN105764501A (zh) 2013-07-26 2016-07-13 现代化制药公司 改善比生群治疗效益的组合物
US9700544B2 (en) 2013-12-31 2017-07-11 Neal K Vail Oral rapamycin nanoparticle preparations
AU2014373683B2 (en) 2013-12-31 2020-05-07 Rapamycin Holdings, Llc Oral rapamycin nanoparticle preparations and use
WO2016040806A1 (en) 2014-09-11 2016-03-17 The Regents Of The University Of California mTORC1 INHIBITORS
CN106153755B (zh) * 2015-04-24 2020-02-14 山东新时代药业有限公司 2-(叔丁基二甲基硅烷基氧基)乙醇的分析检测方法
US20180258100A1 (en) * 2015-08-28 2018-09-13 Matthew Alan Gregory RAPAMYCIN ANALOGS SHOWING IMPROVED mTORC1 SPECIFICITY
JP2020507632A (ja) * 2017-02-10 2020-03-12 マウント タム セラピューティクス, インコーポレイテッドMount Tam Therapeutics, Inc. ラパマイシン類似体
EP3848065B1 (en) 2017-05-15 2023-07-26 C. R. Bard, Inc. Medical device with drug-eluting coating and intermediate layer
AR112834A1 (es) * 2017-09-26 2019-12-18 Novartis Ag Derivados de rapamicina
EP3880266B1 (en) 2018-11-14 2025-05-07 Lutonix, Inc. Medical device with drug-eluting coating on modified device surface
WO2020163594A1 (en) 2019-02-07 2020-08-13 The Regents Of The University Of California Immunophilin binding agents and uses thereof
WO2020209828A1 (en) 2019-04-08 2020-10-15 Bard Peripheral Vascular, Inc. Medical device with drug-eluting coating on modified device surface
CN110343639B (zh) * 2019-07-23 2021-04-27 中国医药集团总公司四川抗菌素工业研究所 一株产15(s)-o-乙基雷帕霉素的链霉菌

Family Cites Families (49)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ZA737247B (en) 1972-09-29 1975-04-30 Ayerst Mckenna & Harrison Rapamycin and process of preparation
US3993749A (en) 1974-04-12 1976-11-23 Ayerst Mckenna And Harrison Ltd. Rapamycin and process of preparation
US5206018A (en) * 1978-11-03 1993-04-27 Ayerst, Mckenna & Harrison, Inc. Use of rapamycin in treatment of tumors
US4447233A (en) 1981-04-10 1984-05-08 Parker-Hannifin Corporation Medication infusion pump
US4439196A (en) 1982-03-18 1984-03-27 Merck & Co., Inc. Osmotic drug delivery system
US4447224A (en) 1982-09-20 1984-05-08 Infusaid Corporation Variable flow implantable infusion apparatus
US4487603A (en) 1982-11-26 1984-12-11 Cordis Corporation Implantable microinfusion pump system
US4486194A (en) 1983-06-08 1984-12-04 James Ferrara Therapeutic device for administering medicaments through the skin
US4596556A (en) 1985-03-25 1986-06-24 Bioject, Inc. Hypodermic injection apparatus
US4941880A (en) 1987-06-19 1990-07-17 Bioject, Inc. Pre-filled ampule and non-invasive hypodermic injection device assembly
US4790824A (en) 1987-06-19 1988-12-13 Bioject, Inc. Non-invasive hypodermic injection device
US5064413A (en) 1989-11-09 1991-11-12 Bioject, Inc. Needleless hypodermic injection device
US5312335A (en) 1989-11-09 1994-05-17 Bioject Inc. Needleless hypodermic injection device
US5023262A (en) 1990-08-14 1991-06-11 American Home Products Corporation Hydrogenated rapamycin derivatives
US5221670A (en) 1990-09-19 1993-06-22 American Home Products Corporation Rapamycin esters
US5138051A (en) 1991-08-07 1992-08-11 American Home Products Corporation Rapamycin analogs as immunosuppressants and antifungals
WO1992021341A1 (en) 1991-05-31 1992-12-10 Pfizer Inc. Use of rapamycin prodrugs as immunosuppressant agents
US5708002A (en) * 1991-09-05 1998-01-13 Abbott Laboratories Macrocyclic immunomodulators
JP3140228B2 (ja) 1992-02-17 2001-03-05 ファイザー製薬株式会社 新規な大環状ラクトンおよびその生産菌
ZA935112B (en) 1992-07-17 1994-02-08 Smithkline Beecham Corp Rapamycin derivatives
US5383851A (en) 1992-07-24 1995-01-24 Bioject Inc. Needleless hypodermic injection device
GB9221220D0 (en) * 1992-10-09 1992-11-25 Sandoz Ag Organic componds
GB9315914D0 (en) * 1993-07-31 1993-09-15 Smithkline Beecham Plc Novel compound
US5373014A (en) 1993-10-08 1994-12-13 American Home Products Corporation Rapamycin oximes
US5378836A (en) 1993-10-08 1995-01-03 American Home Products Corporation Rapamycin oximes and hydrazones
US5391730A (en) 1993-10-08 1995-02-21 American Home Products Corporation Phosphorylcarbamates of rapamycin and oxime derivatives thereof
US5385910A (en) * 1993-11-22 1995-01-31 American Home Products Corporation Gem-distributed esters of rapamycin
US5912253A (en) 1993-12-17 1999-06-15 Novartis Ag Rapamycin derivatives
US5995457A (en) * 1993-12-22 1999-11-30 Jamail; Randall H. Method of masking data on digital video disks (DVD)
US5389639A (en) * 1993-12-29 1995-02-14 American Home Products Company Amino alkanoic esters of rapamycin
US5362718A (en) * 1994-04-18 1994-11-08 American Home Products Corporation Rapamycin hydroxyesters
US5563145A (en) 1994-12-07 1996-10-08 American Home Products Corporation Rapamycin 42-oximes and hydroxylamines
EP0833828B1 (en) 1995-06-09 2002-11-20 Novartis AG Rapamycin derivatives
US5780462A (en) 1995-12-27 1998-07-14 American Home Products Corporation Water soluble rapamycin esters
US6258823B1 (en) 1996-07-12 2001-07-10 Ariad Pharmaceuticals, Inc. Materials and method for treating or preventing pathogenic fungal infection
EP1208847B8 (en) 1996-07-30 2007-02-14 Novartis AG Pharmaceutical compositions for the treatment of transplant rejection, as well as autoimmune or inflammatory conditions
US6273913B1 (en) * 1997-04-18 2001-08-14 Cordis Corporation Modified stent useful for delivery of drugs along stent strut
US6015815A (en) 1997-09-26 2000-01-18 Abbott Laboratories Tetrazole-containing rapamycin analogs with shortened half-lives
US6485514B1 (en) * 1997-12-12 2002-11-26 Supergen, Inc. Local delivery of therapeutic agents
AU777997B2 (en) 1999-07-09 2004-11-11 Oregon Health And Science University Compositions and methods for promoting nerve regeneration
US7078552B2 (en) 2000-04-27 2006-07-18 Arizona Board Of Regents Combretastatin A-1 phosphate and combretastatin B-1 phosphate prodrugs
US6776796B2 (en) 2000-05-12 2004-08-17 Cordis Corportation Antiinflammatory drug and delivery device
PL409579A1 (pl) * 2001-02-19 2015-03-02 Novartis Ag Leczenie raka
JP4547911B2 (ja) * 2002-02-01 2010-09-22 アリアド・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッド リン含有化合物およびその用途
CA2492153C (en) * 2002-07-16 2012-05-08 Biotica Technology Limited Production of polyketide fkbp-ligand analogues
US7160867B2 (en) 2003-05-16 2007-01-09 Isotechnika, Inc. Rapamycin carbohydrate derivatives
GB0417852D0 (en) 2004-08-11 2004-09-15 Biotica Tech Ltd Production of polyketides and other natural products
EP1896018A2 (en) 2005-03-11 2008-03-12 Biotica Technology Limited Medical uses of 39-desmethoxyrapamycin and analogues thereof
GB0504995D0 (en) * 2005-03-11 2005-04-20 Biotica Tech Ltd Use of a compound

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11944605B2 (en) 2018-06-15 2024-04-02 Janssen Pharmaceutica Nv Rapamycin analogs and uses thereof
US11819476B2 (en) 2019-12-05 2023-11-21 Janssen Pharmaceutica Nv Rapamycin analogs and uses thereof

Also Published As

Publication number Publication date
CR9434A (es) 2008-02-22
PT1856129E (pt) 2015-01-16
ZA200708601B (en) 2009-02-25
US7648996B2 (en) 2010-01-19
CA2600640C (en) 2015-10-27
GB0504994D0 (en) 2005-04-20
RU2391346C2 (ru) 2010-06-10
JP5422788B2 (ja) 2014-02-19
EP1856129B8 (en) 2015-06-03
NI200700230A (es) 2008-05-13
RU2007137668A (ru) 2009-04-20
BRPI0607441A2 (pt) 2010-04-06
US20080188511A1 (en) 2008-08-07
CN104211715A (zh) 2014-12-17
CA2600640A1 (en) 2006-09-14
EP1856129A1 (en) 2007-11-21
PL1856129T3 (pl) 2015-08-31
DK1856129T3 (en) 2015-01-05
JP2008532991A (ja) 2008-08-21
RS53778B1 (sr) 2015-06-30
HRP20150012T1 (xx) 2015-03-27
KR20070113282A (ko) 2007-11-28
AU2006221786A1 (en) 2006-09-14
US8008318B2 (en) 2011-08-30
US20100081682A1 (en) 2010-04-01
EP1856129B1 (en) 2014-10-15
NZ561607A (en) 2011-01-28
CN101175760A (zh) 2008-05-07
IL185688A0 (en) 2008-01-06
WO2006095185A1 (en) 2006-09-14
AU2006221786B2 (en) 2012-02-16
CN101175760B (zh) 2014-08-13
NO20074594L (no) 2007-10-15
MX2007011131A (es) 2007-11-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2527530T3 (es) Derivados 39-desmetoxi de rapamicina
US7655673B2 (en) 39-desmethoxyrapamycin, compositions and methods of use thereof
US20090209572A1 (en) 36-Des(3-Methoxy-4-Hydroxycyclohexyl) 36-(3-Hydroxycycloheptyl) Derivatives of Rapamycin for the Treatment of Cancer and Other Disorders
US7897608B2 (en) 39-desmethoxy-39-methyl derivatives of rapamycin
ES2338858T3 (es) Vacuolar-tipo (h+)-atpasa-compuestos inhibidores, composiciones y usos de los mismos.
CA2599547A1 (en) Medical uses of 39-desmethoxyrapamycin and analogues thereof