ES2541414T3 - Compuestos útiles para inhibir Chk1 - Google Patents

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ES2541414T3 ES11788263.9T ES11788263T ES2541414T3 ES 2541414 T3 ES2541414 T3 ES 2541414T3 ES 11788263 T ES11788263 T ES 11788263T ES 2541414 T3 ES2541414 T3 ES 2541414T3
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Abstract

Un compuesto que es (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable.

Description

DESCRIPCIÓN
Compuestos útiles para inhibir Chk1.
Campo de la invención 5
La presente invención se refiere a un compuesto de aminopirazol, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, que inhibe Chk1 y es útil para el tratamiento de cánceres caracterizados por defectos en la replicación de ácido desoxirribonucleico (ADN), segregación cromosómica y/o división celular.
Chk1 es una proteína quinasa que se extiende aguas debajo de Atm y/o Atr en el mecanismo de transducción de 10 señal del punto de control de daño sobre ADN. En las células de mamíferos, Chk1 experimenta fosforilación en respuesta a agentes que provocan daño sobre ADN incluyendo la radiación ionizante (IR), luz ultravioleta (UV) e hidroxiurea. Esta fosforilación que activa Chk1 en las células de mamíferos depende de Atr. Chk1 juega un papel en el punto de control de daño sobre ADN que depende de Atr que conduce a una detención en la fase S y en G2M. Chk1 experimenta fosforilación e inactiva Cdc25A, la fosfatasa de especificidad dual que normalmente produce la 15 desfosforilación de ciclina E/Cdk2, deteniendo el avance a través de la fase-S. Chk1 también produce la fosforilación e inactivación de Cdc25, la fosfatasa de especificidad dual que produce la desfosforilación de ciclina B/Cdc2 (también denominada Cdk1), deteniendo el avance del ciclo celular en la frontera de G2 y la mitosis (Furnari et al., Science, 277: 1495-7, 1997). En ambos casos, la regulación de la actividad de Cdk induce una detención de ciclo celular que evita que las células entren en mitosis en presencia de daño de ADN o ADN no replicado. 20
Se han presentado diversos inhibidores de Chk1. Además, el documento WO 2005/121121 divulga diversos compuestos de aminopirazol considerados como moduladores del metabolismo de glucosa.
No obstante, todavía son necesarios inhibidores de Chk1 que sean potentes inhibidores de los puntos de control de ciclo celular que puedan actuar de forma eficaz como potenciadores de los agentes que provocan daño sobre ADN. La presente invención proporciona compuestos que son potentes inhibidores de Chk1, que pueden resultar 25 beneficiosos para el tratamiento del cáncer. Los compuestos anulan potentemente la detención de ciclo celular con mediación de Chk1 inducida por el tratamiento con agentes que provocan daño sobre ADN en cultivo tisular e in vivo. Adicionalmente, los compuestos de la presente invención proporcionan inhibición de Chk2, que puede resultar beneficiosa para el tratamiento del cáncer. Además, los compuestos de la presente invención inhiben la proliferación de células cancerígenas por medio de un mecanismo que depende de la inhibición de Chk1. Dichos nuevos 30 compuestos podrían abordar la necesidad de tratamientos de cáncer seguros y eficaces.
La presente invención proporciona un compuesto que es (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable. Las realizaciones preferidas son (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazel-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, sal de ácido (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amino metano sulfónico, sal de ácido (R)-35 [5-(2-metoxi-5-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amino acético, sal hemioxalato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina y sal hemioxalato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina.
Como realización particular, la presente invención proporciona el compuesto que es (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina. 40
La presente invención proporciona sales de ácido metano sulfónico, ácido acético, hemioxalato y hemisuccinato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina.
Otra realización es un hidrato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina.
La presente invención proporciona hidrato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-45 pirazin-2-il]-amina en forma cristalina.
La presente invención también proporciona hidrato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina en forma cristalina caracterizado por un patrón de difracción de rayos-X en forma de polvo que tiene picos en 2θ ± 0,2 a 5,17 en combinación con uno o más picos seleccionados entre el grupo que consiste en 15,73, 17,71 y 20,12. 50
La presente invención proporciona una composición farmacéutica que comprende (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable y un excipiente, diluyente o vehículo farmacéuticamente aceptable.
La presente invención proporciona una composición farmacéutica que comprende (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, junto con 55 un excipiente, diluyente o vehículo farmacéuticamente aceptable y opcionalmente otros ingredientes terapéuticos.
La presente invención proporciona compuestos para su uso en un método de tratamiento de cáncer, que comprende administrar a un paciente que lo requiere una cantidad eficaz de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable. Además, la presente invención proporciona compuestos para su uso en un método de tratamiento de cáncer, que comprende administrar a un paciente que lo requiere una cantidad eficaz de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-5 3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, y radiación ionizante. Además, la presente invención proporciona compuestos para su uso en un método de tratamiento de cáncer, que comprende administrar a un paciente que lo requiere una cantidad eficaz de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, y uno o más agentes de quimioterapia. 10
La presente invención proporciona el uso de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de cáncer. Además, la presente invención también proporciona el uso de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de cáncer, en el que dicho tratamiento comprende una terapia de 15 combinación con radiación ionizante. Además, la presente invención proporciona el uso de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de cáncer por medio de terapia de combinación en la que dicho tratamiento de terapia de combinación comprende la administración de dicho medicamento y la administración de uno o más agentes de quimioterapia al mismo paciente. 20
La presente invención proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para su uso en terapia. Además, la presente invención también proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, y radiación ionizante para su uso en terapia. Además, la presente invención proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o 25 una de sus sales farmacéuticamente aceptable, y uno o más agentes de quimioterapia para su uso en terapia.
La presente invención proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para su uso en el tratamiento de cáncer. Además, la presente invención también proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, y radiación ionizante para su uso en el 30 tratamiento de cáncer. Además, la presente invención proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, y uno o más agentes de quimioterapia para su uso en el tratamiento de cáncer.
La presente invención proporciona el uso de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para la fabricación de un medicamento para el 35 tratamiento de cáncer, en el que el medicamento se administra de forma simultánea, por separado, o de forma secuencial con radiación ionizante.
La presente invención proporciona el uso de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazo]-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de cáncer, en el que el medicamento también comprende uno o más agentes de quimioterapia o se 40 administra de forma simultánea, por separado, o de forma secuencial con uno o más agentes de quimioterapia.
La presente invención proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para su uso en combinación simultánea, por separado o secuencial con radiación ionizante en el tratamiento de cáncer.
La presente invención proporciona (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-45 il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, para su uso en combinación simultánea, por separado o secuencial con uno o más agentes de quimioterapia en el tratamiento de cáncer.
Además, la presente invención proporciona realizaciones preferidas de compuestos para su uso en los métodos y usos que se han descrito en la presente memoria, en los cuales uno o más agentes de quimioterapia están seleccionados entre el grupo que consiste en 5-fluorouracilo, hidroxiurea, gemcitabina, metotrexato, pemetrexed, 50 doxorubicina, etoposido, cisplatino y taxol. Adicionalmente, la presente invención proporciona realizaciones más preferidas de compuestos para su uso en los métodos y usos que se describen en la presente memoria, en la cual los agentes de quimioterapia están seleccionados entre el grupo que consiste en 5-fluorouracilo, hidroxiurea, gemcitabina, metotrexato, pemetrexed, doxorubicina, etoposido, cisplatino y taxol. De igual forma, la presente invención proporciona realizaciones de compuestos, incluso más preferidas, para su uso en los métodos y usos 55 descritos en la presente memoria, en la cual el agente de quimioterapia se escoge entre el grupo que consiste en 5-fluorouracilo, hidroxiurea, gemcitabina, metotrexato, pemetrexed, doxorubicina, etoposido, cisplatino y taxol. Las realizaciones preferidas de los métodos y usos descritos en la presente memoria son cánceres seleccionados entre el grupo que consiste en cáncer de vejiga, cáncer de colon, cáncer gástrico, cáncer de hígado, cáncer de pulmón,
cáncer de mama, melanoma, cáncer de ovarios, cáncer de páncreas, mesotelioma, cáncer de riñón y cáncer de útero.
Según se usa anteriormente, y durante toda la descripción de la invención, se entenderá que los siguientes términos, a menos que se indique lo contrario, tienen los siguientes significados.
“Sal farmacéuticamente aceptable” o “sales farmacéuticamente aceptables” se refiere a sales orgánicas o 5 inorgánicas relativamente no tóxicas de los compuestos de la presente invención.
Los compuestos de la presente invención son capaces de reacción, por ejemplo, con un número de ácidos orgánicos e inorgánicos para formar sales farmacéuticamente aceptables. Dichas sales farmacéuticamente aceptables y metodología común para la preparación de las mismas se conocen bien en la técnica. Véase, por ejemplo, P. Stahl, et al., Handbook of Pharmaceutical Salts: Properties, Selection, and Use (VCHA/Wiley-VCH, 2002); S.M. Berge, et 10 al., “PharmaceuticalSalts”, Journal of Pharmaceutical Sciences, Vol. 66, Nº 1, Enero 1977.
Los compuestos de la presente invención se formulan preferentemente en forma de composiciones farmacéuticas que usan uno o más excipientes, diluyentes o vehículos farmacéuticamente aceptables y se administran por medio de una variedad de rutas. Preferentemente, dichas composiciones son para administración oral, subcutánea o intravenosa. Dichas composiciones farmacéuticas y procesos para la preparación de las mismas se conocen bien en 15 la técnica. Véase, por ejemplo, Remington: The Science and Practice of Pharmacy (A. Gennaro, et al., eds., 21ª edición, Mack Publishing Co., 2005).
Los términos “tratamiento”, “tratar” y similares, incluyen ralentizar o invertir el avance de un trastorno. Estos términos también incluyen aliviar, mejorar, atenuar, eliminar o reducir uno o más síntomas de un trastorno o afección, incluso si el trastorno o afección no se elimina realmente e incluso si el avance del trastorno o afección no se ralentiza o 20 invierte en sí mismo.
“Cantidad terapéuticamente eficaz” o “cantidad eficaz” significa la cantidad del compuesto, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, de la presente invención o composición farmacéutica que contiene un compuesto, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable, de la presente invención que aclara la respuesta médica o biológica o el efecto terapéutico deseado sobre un tejido, sistema, animal, mamífero o humano objeto de consideración por 25 parte del investigador científico, veterinario o médico.
La cantidad de compuesto de la presente invención que se administra realmente viene determinada por un médico en circunstancias relevantes, incluyendo la afección objeto de tratamiento, la ruta de administración escogida, el compuesto real de la presente invención que se administra, la edad, peso, y la respuesta del paciente individual, y la gravedad de los síntomas del paciente. Las dosificaciones diarias normalmente se encuentran dentro del intervalo 30 de aproximadamente 0,1 a aproximadamente 10 mg/kg de peso corporal. En algunos casos los niveles de dosificación por debajo del límite inferior del intervalo anteriormente mencionado pueden resultar más apropiados, mientras que en otros casos se pueden emplear dosis incluso más grandes.
Los compuestos de la presente invención se pueden preparar por medio de una variedad de procedimientos conocidos en la técnica, así como los descritos en las Preparaciones y Ejemplos siguientes. Las etapas específicas 35 sintéticas para cada unas de las rutas descritas se pueden combinar de diferentes formas para preparar los compuestos de la presente invención.
Los reactivos y los materiales de partida generalmente se encuentran disponibles para el experto en la técnica. Se pueden preparar otros por medio de técnicas convencionales de química orgánica y heterocíclica, técnicas que son análogas a las síntesis de compuestos conocidos estructuralmente similares y los procedimientos descritos en las 40 Preparaciones y Ejemplos a continuación, incluyendo los procedimientos nuevos. Las siguientes Preparaciones y Ejemplos se proporcionan para ilustrar la invención con detalle adicional y representar síntesis típicas de los compuestos. Los nombres de los compuestos de la presente invención se proporcionan generalmente por medio de ISIS Draw 2,5 SP2 con Autonom add-in.
Según se usa en la presente memoria, los siguientes términos tienen los significados indicados: "BCA" se refiere a 45 ácido bicinconínico; "BSA" se refiere a albúmina en suero bovino; "DMSO" se refiere a dimetilsulfóxido; "DPBS" se refiere a disolución salina tamponada con fosfato dibásico; "DTT" se refiere a ditiotreitol; "EtOAc" se refiere a acetato de etilo; "FBS" se refiere a suero bovino fetal; "HEPES" se refiere a ácido N-2-hidroxietilpiperazin-N´-2-etanosulfónico; "MEM" se refiere a un medio esencial mínimo: "MeOH" se refiere a metanol; "PBS" se refiere a disolución salina tamponada con fosfato; "PI" se refiere a yoduro de propidio; "ARNasa" se refiere a ribonucleasa A; 50 "RPMI" se refiere a Roswell Park Memorial Institute; "TBST" se refiere a disolución salina Tween-20 tamponada con tris; "THF" se refiere a tetrahidrofurano; "TR-FRET" se refiere a transferencia de energía fluorescente con resolución temporal; "Tris" se refiere a tri(hidroximetil)aminometano; "Triton-X" se refiere a 4-(1,1,3,3-tetrametilbutil)fenil-polietilen glicol t-octilfenoxipolietoxietanolpolietilen glicol terc-octilfenil éter; y "Tween-20" se refiere a polisorbato 20.
55
Preparación 1
(R)-3-(6-cloropirazin-2-il)oxipiperidin-1-carboxilato de terc-butilo
EP2 638 033B14510152025303540455055or more pharmaceutically acceptable carriers, diluents, or excipients and administered by a variety of routes. Preferably,such compositions are for oral, subcutaneous, or intravenous administration. Such pharmaceutical compositions andprocesses for preparing them are well known in the art. See, e.g., Remington: The Science and Practice of Pharmacy(A. Gennaro, et al., eds., 21st ed., Mack Publishing Co., 2005).[0026]The terms "treatment," "treat," "treating," and the like, are meant to include slowing or reversing the progressionof a disorder. These terms also include alleviating, ameliorating, attenuating, eliminating, or reducing one or moresymptoms of a disorder or condition, even if the disorder or condition is not actually eliminated and even if progressionof the disorder or condition is not itself slowed or reversed.[0027]"Therapeutically effective amount" or "effective amount" means the amount of the compound, or pharmaceu-tically acceptable salt thereof, of the present invention or pharmaceutical composition containing a compound, or phar-maceutically acceptable salt thereof, of the present invention that will elicit the biological or medical response of ordesired therapeutic effect on a tissue, system, animal, mammal, or human that is being sought by the researcher,veterinarian, medical doctor, or other clinician.[0028]The amount of compound of the present invention actually administered will be determined by a physicianunder the relevant circumstances, including the condition to be treated, the chosen route of administration, the actualcompound of the present invention administered, the age, weight, and response of the individual patient, and the severityof the patient’s symptoms. Dosages per day normally fall within the range of about 0.1 to about 10 mg/kg of body weight.In some instances dosage levels below the lower limit of the aforesaid range may be more than adequate, while in othercases still larger doses may be employed.[0029]The compounds of the present invention may be prepared by a variety of procedures known in the art, as wellas those described in the Preparations and Examples below. The specific synthetic steps for each of the routes describedmay be combined in different ways to prepare the compounds of the present invention.[0030]The reagents and starting materials are generally readily available to one of ordinary skill in the art. Othersmay be made by standard techniques of organic and heterocyclic chemistry, techniques which are analogous to thesyntheses of known structurally similar compounds and the procedures described in the Preparations and Exampleswhich follow, including any novel procedures. The following Preparations and Examples are provided to illustrate theinvention in further detail and represent typical syntheses of the compounds. The names of the compounds of the presentinvention are generally provided by ISIS Draw 2.5 SP2 with Autonom add-in.[0031]As used herein, the following terms have the meanings indicated: "BCA" refers to bicinchoninic acid; "BSA"refers to bovine serum albumin; "DMSO" refers to dimethylsulfoxide; "DPBS" refers to dibasic phosphate-buffered saline;"DTT" refers to dithiothreitol; "EtOAc" refers to ethyl acetate; "FBS" refers to fetal bovine serum; "HEPES" refers to N-2-hydroxyethylpiperazine-N’-2-ethanesulfonic acid; "MEM" refers to minimum essential medium; "MeOH" refers to meth-anol; "PBS" refers to phosphate-buffered saline; "PI" refers to propidium iodide; "RNAase" refers to ribonuclease A;"RPMI" refers to Roswell Park Memorial Institue; "TBST" refers to tris-buffered saline Tween-20; "THF" refers to tetrahy-drofuran; "TR-FRET" refers to time resolved fluorescent energy transfer; "Tris" refers to tris(hydroxymethyl) aminometh-ane; "Triton-X" refers to 4-(1,1,3,3-tetramethylbutyl)phenyl-polyethylene glycol t-octylphenoxypolyethoxyethanol poly-ethylene glycol tert-octylphenyl ether; and "Tween-20" refers to polysorbate 20.Preparation 1tert-Butyl (R)-3-(6-chloropyrazin-2-yl)oxypiperidine-1-carboxylate[0032][0033]Sodium hydride (225.6 g, 5.64 mol) is dispersed into THF (3 L) and the temperature is lowered to 0 - 5 °C. Asolution of (R)-3-hydroxy-1-boc piperidine (891.6 g, 4.43 mol) in THF (3 L) is added over 1 h while maintaining thetemperature between 0 - 5 °C. The reaction is stirred for 1 h. 2,6-Dichloropyrazine (600 g, 4.03 mol) as a solution in THF(3 L) is added dropwise over 1.5 h maintaining the same temperature. The reaction is stirred for 2 h at 25 - 30 °C, and
Se dispersa hidruro de sodio (225,6 g, 5,64 mol) en THF (3 l) y se rebaja la temperatura hasta 0-5 ºC. Se añade una disolución de (R)-3-hidroxi-1-boc piperidina (891,6 g, 4,43 mol) en THF (3 l) durante 1 hora al tiempo que se 5 mantiene la temperatura entre 0-5 ºC. Se agita la reacción durante 1 hora. Se añade gota a gota 2,6-dicloropirazina (600 g, 4,03 mol) en forma de disolución en THF (3 l) durante 1,5 h manteniendo la misma temperatura. Se agita la reacción durante 2 horas a 25-30 ºC, y posteriormente se vierte sobre hielo. Se diluye la mezcla con agua y se somete a extracción con acetato de etilo. Se secan los extractos sobre sulfato de sodio anhidro, se filtran y se concentran. Se tritura el aceite residual con 5 % de diclorometano en hexano para proporcionar el producto en forma 10 de sólido blanco. Se recoge el sólido por medio de filtración y se seca para proporcionar 1538 g de material. Se retritura el producto bruto con diclorometano de 5 % en hexanos para proporcionar un sólido blanco en rendimiento cuantitativo. ES/MS m/z 314,1 [M+H]+.
Preparación 2 Éster metílico de ácido 2-metoxi-6-metil-nicotínico 15
Se añade una disolución de sodio (2,58 g, 113,04 mmol) en metanol (80,0 ml) (se disuelve el metal de sodio en metanol bajo atmósfera de nitrógeno) a una disolución agitada de éster metílico de ácido 2-cloro-6-metil-nicotínico (10,4 g, 56,52 mmol) en MeOH bajo nitrógeno a temperatura ambiente. Se somete a reflujo la mezcla de reacción durante la noche. Se enfría la reacción hasta temperatura ambiente y se ajusta el pH hasta pH = 7 con ácido acético. 20 Se diluye la mezcla de reacción con acetato de etilo (100 ml) y agua (30 ml). Se separa la fase orgánica y se somete a extracción la fase acuosa con acetato de etilo (2 x 75 ml). Se secan los extractos orgánicos combinados sobre Na2SO4, se filtran y se concentran para proporcionar un producto bruto. Rendimiento: 7,25 g (71 %), RMN1H (400 MHz, CDCl3),  8,066-8,047 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,782-6,764 (d, J = 7,2 Hz, 1H), 4,029 (s, 3H), 3,879 (s, 3H), 2,483 (s, 3H); ES/MS m/z 182,2 [M+H]+. 25
Preparación 3
5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-ilamina
Se añade n-BuLi (1,2 M, 96,0 ml, 115,6 mmol) a una disolución de acetonitrilo (6,08 ml, 115,4 mmol) en THF (300 ml) a -78 ºC y se deja en agitación durante 30 minutos a -78 ºC. Se añade éster metílico de ácido 2-metoxi-6-metil-30 nicotínico (20 g, 105,1 mmol) en THF (200 ml) y se agita a -78 ºC durante otros 30 minutos. Se inactiva la mezcla de reacción a -78 ºC con agua (500 ml) y se lava con EtOAc (2 x 250 ml). Se separa la fase acuosa y se evapora. Esto se co-destila dos veces con tolueno para obtener 3-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-3-oxo-propionitrilo. Rendimiento =
21,4 g (bruto). ES/MS m/z 191,1 [M+H]+.
Se coloca una disolución de 3-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-3-oxo-propionitrilo (21 g, 110,4 mmol) en etanol (200 ml) en un tubo sellado. Se añaden hidrazina hidratada (32,1 ml, 662,4 mmol) y ácido acético (21,0 ml) y se calienta la reacción a 100 ºC durante 2 horas. Se evapora el disolvente y se diluye la mezcla de reacción con EtOAc (500 ml) y disolución de bicarbonato de sodio saturado (100 ml). Se separa la fase orgánica y se somete a extracción la fase 5 acuosa con EtOAc (2 x 250 ml). Se secan los extractos orgánicos combinados sobre Na2SO4, se filtran, y se concentran para proporcionar el producto bruto que se toma para la siguiente etapa sin purificación adicional alguna. Rendimiento = 16,5 g (73 %), RMN1H (400 MHz, DMSO-d6)  11,50 (sa, 1H), 7,90 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,86 (d, J =7,6 Hz, 1H), 5,88 (s, 1H), 4,64 (s, 2H), 3,91 (s, 3H), 2,38 (s, 3H).
Preparación 4 10 Éster terc-butílico de ácido 5-amino-3-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-pirazol-1-carboxílico
Se añade lentamente una disolución de 5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-ilamina (16,0 g, 78,3 mmol) en THF (200 ml) a una suspensión agitada de NaH (60 % en aceite mineral, 3,4 g, 85,0 mmol) en THF (200 ml) a 0 ºC. Tras 15 minutos a 0 ºC, se añade lentamente di-terc-butildicarbonato (19,8 ml, 86 mmol) a la mezcla de reacción y 15 se agita a 0 ºC durante 30 minutos. Se inactiva la mezcla de reacción con hielo-agua (aproximadamente 250 ml) y se somete a extracción el producto en acetato de etilo (2 x 500 ml). Se lavan las partes orgánicas combinadas con agua y disolución saturada de NaCl (200 ml), se secan sobre Na2SO4 anhidro, se filtran, y se concentran a vacío para permitir el material bruto. Se tritura este material con hexano dos veces para obtener 18,5 g (78 %) del compuesto del título. RMN 1H (400 MHz, DMSO-d6)  8,05 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,90 (d, J = 7,2 Hz, 1H), 6,28 (s, 2H), 5,85 (s, 1H), 20 3,90 (s, 3H), 2,40 (s, 3H), 1,56 (s, 9H).
Preparación 5
Éster terc-butílico de ácido (R)-3-{6-[2-terc-butoxicarbonil-5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-ilamino]-pirazin-2-iloxi}-piperidin-1-carboxílico
25
Se divide igualmente una mezcla de éster terc-butílico de ácido 5-amino-3-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-pirazol-1-carboxílico (50,0 g, 164,5 mmol), (R)-3-(6-cloropirazin-2-il)oxipiperidin-1-carboxilato de terc-butilo (56,6 g, 180,9 mmol), 4,5-bis-difenil-fosfanil-9,9-dimetil-9H-xanteno (14,2 g, 24,6 mmol) y Cs2CO3 (85,5 g, 263 mmol) en 1,4-dioxano (1,4 l), en dos matraces de fondo redondo y ambos se purgan con argón durante 2 h. Se añade Pd(OAc)2 (5,4 g, 24,6 mmol) (la mitad a cada recipiente) y se continua la purga durante 1 h. Posteriormente se calientan las 30 reacciones a 90-95 ºC durante 1 h. Se enfrían las mezclas de reacción hasta temperatura ambiente, se combinan y se diluyen con acetato de etilo (1 l). Posteriormente, se filtra la mezcla a través de tierras diatomeas, se lava con acetato de etilo y se concentra el filtrado. Se purifica el producto bruto sobre gel de sílice con hexano/EtOAc de 15 % como eluyente para proporcionar 55 g (57 % de rendimiento) de un polvo blanco. Se combinan 55 g del producto purificado con 15 g de material purificado y preparado de forma similar (obtenido a partir de 20 g de éster terc-35 butílico de ácido 5-amino-3-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-pirazol-1-carboxílico). Se disuelven 70 g de material combinado en una mezcla 4:1 de THF y metanol (1,4 l) y se trata con QuadraSil™ AP (140 g) durante 2 h. Se filtra la mezcla de reacción a través de tierras diatomeas y se lava con acetato de etilo (4 x 100 ml). Se agita de nuevo el filtrado con QuadraSil™ AP (140 g) durante 2 h y se filtra como se ha comentado anteriormente. Se evapora el
disolvente para proporcionar el compuesto del título en forma de sólido blanco. Rendimiento = 70 g (47 %), ES/MS m/z 582,5 [M+H]+.
Ejemplo 1
(R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina
5
Se añade una disolución de ácido trifluoroacético (12,4 ml, 167 mmol) en diclorometano (20 ml) a una disolución agitada de éster terc-butílico de (R)-3-{6-[2-terc-butoxicarbonil-5-(2-metoxi-6-metil-piridin-2-il)-2H-pirazol-3-ilamino]-pirazin-2-iloxi}-piperidin-1-carboxílico (13,0 g, 22,3 mmol) en diclorometano (150 ml) durante un período de 5 minutos a 0 ºC. Se deja calentar la reacción a temperatura ambiente y se agita durante 3 h. Se diluye la reacción con diclorometano (1000 ml), seguido de adición de disolución de bicarbonato de sodio saturada (250 ml) y 10 posteriormente se agita durante 4 h. Se separa la parte orgánica y se seca sobre sulfato de sodio anhidro, se filtra y se evapora. Se cristaliza el material resultante a partir de isopropanol para obtener el producto deseado. Rendimiento = 7,2 g (85 %). RMN 1H (400 MHz, DMSO-d6)  12,40 (s, 1H), 9,71 (s, 1H), 8,02 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 7,97 (s, H), 7,46 (s, 1H), 6,93 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,91 (s, 1H), 4,94-4,86 (m, 1H), 3,97 (s, 3H), 3,20-3,13 (m, 1H), 2,83-2,75 (m, 1H), 2,57 (dd, J = 12,0, 8,4 Hz, 1H), 2,53-2,45 (m oscurecido, 1H), 2,42 (s, 3H), 2,15-2,05 (m, 1H), 15 1,7.1-1,63 (m, 1H), 1,60-1,49 (m, 1H), 1,49-1,40 (m, 1H); ES/MS m/z 382,5 [M+H]+.
Ejemplo 2
Sal de ácido (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amino metano sulfónico
20
Se añade ácido metano sulfónico (0,247 g, 2,57 mmol) a una disolución agitada de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il]-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina (0,982 g, 2,57 mmol) en diclorometano (25 ml) a 0 ºC. Se deja calentar la reacción hasta temperatura ambiente y se agita durante 45 minutos. Se evapora el disolvente, y se lava la sal resultante con éter (10 ml) y pentano (10 ml) secuencialmente para obtener el producto deseado. Rendimiento = 1,139 g (92,6 %). RMN 1H (400 MHz, DMSO-d6),  12,5 (sa, 1H), 9,81 (s, 1H), 8,73 (sa, 1H), 8,54 (sa, 25 1H), 8,07 (s, 1H), 7,96 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 7,56 (s, 1H), 6,95 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,81 (s, 1H), 5,31-5,24 (m, 1H), 3,97 (s, 3H), 3,48-3,39 (m, 1H), 3,39-3,30 (m, 1H), 3,18-3,10 (m, 1H), 3,10-3,01 (m, 1H), 2,43 (s, 3H), 2,32 (s, 3H), 2,03-1,85 (m, 3H), 1,73-1,65 (m, 1H); ES/MS m/z 382,4 [M+H]+.
30
35
Ejemplo 3
Sal de ácido (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amino acético
Se añade ácido acético (0,015 ml, 0,26 mmol) disuelto en diclorometano (1 ml) a 0 ºC a una disolución de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina (0,100 g, 0,26 mmol) en 5 diclorometano (10 ml). Se agita la mezcla de reacción durante 60 minutos a temperatura ambiente y posteriormente se evapora el disolvente para obtener un residuo. Se tritura el residuo con éter dietílico (20 ml) seguido de n-pentano (20 ml). Se seca el material con alto vacío durante 4 h para obtener el producto deseado. Rendimiento = 0,060 g (51,8 %), RMN 1H (400 MHz, DMSO-d6)  12,40 (sa, 1H), 9,70 (s, 1H), 8,02 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 7,98 (s, 1H), 7,46 (s, 1H), 6,94 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,90 (s, 1H), 4,97-4,38 (m, 1H), 3,98 (s, 3H), 3,20-3,13 (m, 1H), 2,83-2,74 (m, 1H), 10 2,66-2,56 (m, 1H), 2,42 (s, 3H), 2,14-2,03 (m, 1H), 1,89 (s, 3H), 1,74-1,62 (m, 1H), 1,61-1,51 (m, 1H), 1,50-1,40 (m, 1H), 1,30-1,20 (m, 1H), ES/MS m/z 382,5 [M+H]+.
Ejemplo 4
Sal hemioxalato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina
15
Se añade ácido oxálico (0,012 mg, 0,13 mmol) disuelto en MeOH (0,1 ml) a 0 ºC a una disolución de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina (0,100 g, 0,26 mmol) en diclorometano (10 ml). Se agita la mezcla de reacción durante 60 minutos a temperatura ambiente y posteriormente se evapora el disolvente para obtener un residuo. Se tritura el residuo con éter dietílico (20 ml) seguido de n-pentano 20 (20 ml). Se seca el material con alto vacío durante 4 h para obtener el compuesto del título. Rendimiento = 0,095 g (77 %). RMN 1H (400 MHz, DMSO-d6)  9,77 (s, 1H), 8,07 (s, 1H), 7,95 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 7,55 (s, 1H), 6,95 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,79 (s, 1H), 5,33-5,24 (m, 1H), 3,97 (s, 3H), 3,45-3,30 (m, 2H), 3,18-3,09 (m, 1H), 3,08-2,98 (m, 1H), 2,42 (s, 3H), 2,05-1,85 (m, 2H), 1,74-1,63 (m, 1H), 1,18-1,10 (m, 1H); ES/MS m/z 382,4 [M+H]+.
25
Ejemplo 5
Sal hemisuccinato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina
30
Se añade ácido succínico (0,015 g, 0,13 mmol) disuelto en etanol (1 ml, disuelto a 50 ºC) a temperatura ambiente a una disolución de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina (0,1 g, 0,26 mmol) en diclorometano (10 ml). Se agita la mezcla de reacción durante 2 h a temperatura ambiente. Se evapora el disolvente y se tritura el residuo con éter dietílico (20 ml) seguido de n-pentano (20 ml). Se seca el material con alto vacío durante 8 h para obtener el compuesto del título. Rendimiento = 0,102 g (78 %). RMN 1H (400 5 MHz, DMSO-d6) 12,4 (sa, 1H), 9,72 (s, 1H), 8,05-7,96 (m, 2H), 7,48 (s, 1H), 6,93 (d, J = 7,6 Hz, 1H), 6,86 (s, 1H), 5,06-4,974 (m, 1H), 3,97 (s, 3H), 2,90-2,81 (m, 1H), 2,74-2,62 (m, 1H), 2,42 (s, 3H), 2,30 (s, 2H), 2,09-2,01 (m, 1H), 1,80-1,60 (m, 2H), 1,57-1,46 (m, 1H), 1,14-1,10 (m, 1H), 1,10-1,00 (m, 1H); ES/MS m/z 382,4 [M+H]+.
Ejemplo 6 10
(R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina hidratada
Se suspende (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina (52,1 mg; ES/MS m/z 382,2 [M+H]+) en una mezcla de agua etanol 5:95 (10 ml) y se suspende a temperatura ambiente 15 durante 48 horas. Se recupera un sólido cristalino blanco por medio de filtración a vacío.
Se obtienen patrones de difracción de rayos-X en forma de polvo (XRD) de sólidos cristalinos en un difractómetro de rayos-X en forma de polvo Bruker D4 Endeavor, equipado con una fuente de CuKa ( = 1,54060 A) y un detector Vantec, que operaba a 35 kV y 50 mA. Se evalúa la muestra entre 4 y 40º en 2, con un tamaño de etapa de 0,009º 20 en 2. Se introduce el polvo de cuarzo en un recipiente de muestra de cuarzo y se obtiene una superficie suave usando un portaobjetos de vidrio. En el presente caso, una variabilidad en la posición de los picos de  0,2º en 2 tiene en cuenta las variaciones sin impedir la identificación inequívoca de la forma cristalina indicada. Se puede realizar la confirmación de la forma cristalina en base a cualquier combinación única de picos que se distinguen (en unidades de º 2), normalmente los picos más prominentes. Se ajustaron los patrones de difracción de las formas 25 cristalinas, se recogieron a temperatura y humedad relativa ambientales, en base a picos convencionales NIST 675 a 8,85 y 26,77 grados 2-theta.
De este modo, la forma cristalina de muestra del compuesto se caracteriza por medio de un patrón de XRD usando radiación CuKa ya que tiene picos de difracción (valores 2-theta) como se describe en la Tabla 1 siguiente. 30 Específicamente, el patrón contiene un pico a 5,17 en combinación con uno o más picos seleccionados entre el grupo que consiste en 15,73, 17,71 y 20,12 con una tolerancia para los ángulos de difracción de 0,2 grados.
Tabla 1. Picos de difracción de rayos-x en forma de polvo del Ejemplo 6
Pico
Angulo (2-Thetaº) Intensidad (%)
1
5,17 100,0
2
8,44 6,3
3
9,58 6,3
4
10,44 6,4
5
13,21 4,4
6
15,73 47,9
7
16,17 6,4
8
17,71 28,1
9
18,00 9,2
10
20,12 15,1
11
23,31 4,9
12
24,52 4,3
13
32,95 4,2
35
Ensayo Bioquímico Chk1
Se puede determinar el efecto de los compuestos sobre la actividad bioquímica Chk1 usando un ensayo de unión de filtro de péptido y sustrato/CHK1. En este ensayo, se usa un péptido sintético basado en residuos 206-225 de Cdc25 40 de secuencia de amino ácidos, como sustrato fosfo-aceptor para la proteína quinasa Chk1 recombinante. Usando ATP-33 como sustrato fosfo-donante, Chk1 transfiere el grupo fosfato33- radioactivo al péptido sintético. Se mide la reacción por medio de captura del sustrato de péptido sobre una placa filtrante de intercambio catiónico y conteo por centelleo de las partículas beta emitidas.
45
Se llevan a cabo las reacciones de quinasa (volúmenes de reacción de 40 l) en placas de poliestireno con parte inferior con forma de V de 96 pocillos. Se inician las reacciones con la adición de enzima Chk2. Las condiciones finales de reacción son sal de sodio HEPES 67 mM, pH 7,4, 0,007 % (v/v) de TRITON™ X-100, DTT 2,7 mM, sustrato de péptido 12 M, sal de disodio de ATP 60 M, ATP-P33- 0,75 Ci, enzima Chk1 activa 0,075 nM , DMSO de 4 % (v/v) y dilución seriada del compuesto (dilución seriada 1:3, partiendo de 20 M, 10 puntos). 50
Tras la adición de la enzima Chk1, se incuban las reacciones a temperatura ambiente durante 90 minutos, y posteriormente se terminan con la adición de 140 l de ácido fosfórico. Se transfiere la mezcla de reacción a los correspondientes pocillos de una placa filtrante opaca con papel de intercambio catiónico de fosfocelulosa para el asentamiento durante 30 minutos. Se lava la placa filtrante en un colector de vacío con cinco lavados de 200 l de ácido fosfórico de 0,5 % (v/v). Se seca durante la noche la placa filtrante antes de la adición de 40 l de 5 Microscint™-20 a cada pocillo de la placa. Tras el asentamiento durante 4 h a temperatura ambiente, se mide la radioactividad en la placa usando un contador de centelleo de microplaca MicroBetaTrilux (Perkin Elmer).
Para la determinación IC50, se calcula el porcentaje de inhibición para cada concentración usando la proporción de cuenta de centelleo para los controles operados en cada placa. Posteriormente, se ajustan los datos de 10 concentración de compuesto de diez puntos a una ecuación logística de cuatro parámetros usando Activity Base 4,0. Se calculan los valores absolutos de IC50 a partir de la curva resultante. Se someten a ensayo los compuestos de la invención en este ensayo operando sustancialmente como se ha indicado con anterioridad. Por ejemplo, se somete a ensayo el compuesto de Ejemplo 1 y se encontró que tenía un IC50< 0,001 M (n = 6). Además, se somete a ensayo el Compuesto 2 y se encontró que tenía un IC50< 0,001 M (n = 3). Estos resultados indican que los 15 compuestos dentro del alcance de la presente invención son potentes inhibidores de Chk1.
Ensayo bioquímico Chk2
Se puede determinar el efecto de los compuestos sobre la actividad bioquímica Chk2 usando un ensayo de unión de 20 filtro de péptido y sustrato/CHK2. En este ensayo, se usa un péptido sintético basado en residuos 206-225 de Cdc25C de secuencia de amino ácidos, como sustrato fosfo-aceptor para la proteína quinasa Chk2 recombinante. Usando ATP-33 como sustrato fosfo-donante, Chk2 transfiere el grupo fosfato33- radioactivo al péptido sintético. Se mide la reacción por medio de captura del sustrato de péptido sobre una placa filtrante de intercambio catiónico y conteo por centelleo de las partículas beta emitidas. 25
Se llevan a cabo las reacciones de quinasa (volúmenes de reacción de 40 l) en placas de poliestireno con parte inferior con forma de V de 96 pocillos. Se inician las reacciones con la adición de enzima Chk2. Las condiciones finales de reacción son sal de sodio HEPES 67 mM, pH 7,4, 0,007 % (v/v) de TRITON™ X-100, DTT 2,7 mM, sustrato de péptido 12 M, sal de disodio de ATP 60 M, ATP-P33- 0,75 Ci, enzima Chk2 activa 1,4nM , DMSO de 30 4 % (v/v) y dilución seriada del compuesto (dilución seriada 1:3, partiendo de 20 M, 10 puntos).
Tras la adición de la enzima Chk2, se incuban las reacciones a temperatura ambiente durante 90 minutos, y posteriormente se terminan con la adición de 140 l de ácido fosfórico. Se transfiere la mezcla de reacción a los correspondientes pocillos de una placa filtrante opaca con papel de intercambio catiónico de fosfocelulosa para el 35 asentamiento durante 30 minutos. Se lava la placa filtrante en un colector de vacío con cinco lavados de 200 l de ácido fosfórico de 0,5 % (v/v). Se seca durante la noche la placa filtrante antes de la adición de 40 l de Microscint™-20 a cada pocillo de la placa. Tras el asentamiento durante 4 h a temperatura ambiente, se mide la radioactividad en la placa usando un contador de centelleo de microplaca MicroBetaTrilux (Perkin Elmer).
40
Para la determinación IC50, se calcula el porcentaje de inhibición para cada concentración usando la proporción de TR-FRET para los controles operados en cada placa. Posteriormente, se ajustan los datos de concentración de compuesto de diez puntos a una ecuación logística de cuatro parámetros usando Activity Base 4,0. Se calculan los valores absolutos de IC50 a partir de la curva resultante. Se someten a ensayo los compuestos de la invención en este ensayo operando sustancialmente como se ha indicado con anterioridad. Por ejemplo, se somete a ensayo el 45 compuesto de Ejemplo 1 y se encontró que tenía un IC50< 0,011 M (SE = 0,002, n = 6). Además, se somete a ensayo el Compuesto 2 y se encontró que tenía un IC50< 0,012 M (SE = 0,008, n = 3). Estos resultados indican que los compuestos dentro del alcance de la presente invención son potentes inhibidores de Chk2.
Ensayo Basado en Células de Autofosforilación Chk1 50
Un inhibidor de Chk1 evita la actividad de quinasa de la proteína procedente de sustratos de fosforilación en células en las cuales se ha activado la respuesta frente a daño sobre ADN. Un sustrato fácilmente detectable para Chk1 es un sitio de autofosforilación sobre la propia Chk1, serina 296. Se puede usar el siguiente ensayo de inmunotransferencia para medir la cantidad de fosforilación de serina 296 sobre Chk1 y directamente el nivel de 55 actividad de la proteína quinasa Chk1. Se someten a cultivo las células HeLa en Disolución de Sal Equilibrada Earle/ MEM w con L-glutamina complementada con suero bovino fetal inactivado con calor de 10 % (v/v), 1 x amino ácidos no esenciales MEM, 1 x piruvato de sodio y 1 x 105 células en placa de 600 l de medio de cultivo MEM por pocillo de una placa de cultivo celular de 14 pocillos. Se incuban las células durante 24 h a 37 ºC, 5 % de CO2 y 95-100 % de humedad. Se añaden diez y seis l de una reserva 4 M de doxorubicina en medio de cultivo a cada pocillo 60 apropiado para obtener una concentración final de doxorubicina de 100 nM. Se vuelven a introducir las placas en la incubadora durante 24 horas adicionales antes de la adición del compuesto inhibidor de Chk1. Se solubilizan los compuestos a 10 mM en DMSO 100 %, posteriormente se diluyen hasta 2 mM en DMSO de 40 % (v/v) y posteriormente se diluye hasta 100 M con medio de cultivo más DMSO de 4 % (v/v). Posteriormente, se preparan diluciones seriadas de los compuestos (1:3) en un intervalo de 100 M a 0,005 M. Se añaden sesenta y seis l de 65
reserva de compuesto a los pocillos apropiados de la placa para producir un concentración final de DMSO de 0,4 % (v/v) y un intervalo de concentración final de compuesto entre 1 M y 0,0005 M. Se vuelven a introducir las placas en la incubadora durante 2 h adicionales y posteriormente se retiran para la lisis celular y el procesado. A continuación, se retira el medio de la placa, se lava cada pocillo con 0,5 ml de Disolución Salina Tamponada con Fosfato de Dulbecco enfriada en hielo (DPBS), se retira todo el líquido, y se coloca la placa en hielo durante el resto 5 del procedimiento. Se añaden 75 l de tampón de lisis enfriado en hielo a cada pocillo, que consistía en un cóctel de inhibidor de fosfatasa que contenía Tampón de Extracción Celular (Sigma, cat# P0044 + P5725) y comprimidos de cóctel de inhibidor de proteasa (Roche Diagnostics, cat# 11836153001). Trascurridos 10 minutos, se rasca cada pocillo y se transfiere el lisato a un tubo de microcentrífuga de polipropileno de 1,5 ml en hielo. Se somete cada lisato a tratamiento por ultrasonidos durante 45 segundos con un dispositivo de ultrasonidos de balanceo de placas 10 (Misonix) al tiempo que se suspende en un baño de agua/hielo. Se transfieren cincuenta l de cada muestra a un tubo de micro-centrífuga de polipropileno de 0,5 ml que contenía 25 l de 4 x Tampón de Muestra de Laemmli, se calentó a 95 ºC durante 5 minutos y se almacenó congelada a -80 ºC. Se usa el lisato restante para la determinación de la concentración de proteína (estuche de ensayo de proteína BCA, Thermo Scientific). Se aplican cinco g de cada lisato celular en el tampón de muestra a un gel de 96 pocillos E-page y se somete a electroforesis. Se someten 15 a electrotransferencia proteínas a partir del gel hasta PVDF de membrana Immobilon-P (0,45 m) de acuerdo con los procedimientos bien conocidos en la técnica (Towbin et al., PNAS (1979) 76(9), 4305-4). Se lava brevemente la membrana con Tris 10 mM/HCl pH 8,0, NaCl 150 mM y Tween 20 de 0,05 % (v/v) (TBST) y se sumerge durante una hora a 25 ºC en TBST/leche instantánea Carnation reconstituida de 5 % (v/v). Se lava la membrana cuatro veces con TBST durante 5 minutos, posteriormente se sumerge a 4 ºC durante 24 h en TBST/albúmina de suero bovino de 20 5 % (peso/volumen) con una dilución apropiada de anti-fosfo-Chk1 de conejo (serina 296). Se lava la membrana 4 x con TBST durante 5 minutos a 25 ºC y posteriormente se sumerge a 25 ºC durante 2 h en TBST/leche de 5 % que contenía una dilución apropiada de IgG de anti-conejo de mono conjugado con peroxidasa de rábano rusticano (GE Healthcare, cat# NA9340) para detectar la proteína Chk1 autofosforilada. Se lava la membrana de nuevo 4 x con TBST durante 5 minutos a 25 ºC. Se detectan los conjugados de antígeno-anticuerpo-indicador inmovilizados sobre 25 la membrana con un reactivo de detección de SuperSignal Western Femto HRP usando un sistema de formación de imágenes FUJI LAS-4000. Se calculan las intensidades de banda fosfo-Chk1 (ser296) usando un soporte lógico "Total Lab" (Nonlinear Dynamics). Se calcula el porcentaje de inhibición de autofosforilación de Chk1 inducida por doxorubicina usando la fórmula siguiente: % de inhibición = (muestra - fosfo-Chk1- intensidad de banda- control negativo sin doxorubicina- intensidad de banda de fosfo-Chk1)/(control positivo de doxorubicina - intensidad de 30 banda de fosfo-Chk1 - control negativo sin doxorubicina- intensidad de banca de fosfo-Chk1) x 100. Se someten a ensayo los compuestos de la invención en este ensayo operado sustancialmente como se ha mostrado con anterioridad. Se somete a ensayo el compuesto del Ejemplo 1 en este ensayo y se encontró que tenía un EC50< 0,001 M (n = 1). Se somete a ensayo el compuesto del Ejemplo 3 en este ensayo y se encontró que tenía un EC50< 0,001 M (n = 1). Estos resultados indican que los compuestos dentro del alcance de la invención son potentes 35 inhibidores de Chk1.
Ensayo de Acumen Basado en Células HeLade de Anulación de Punto de Control G2M Inducido por Doxorubicina
40
Un inhibidor de Chk1 inhabilita el punto de control de daño sobre ADN G2M en células tumorales p53-menos tratadas con el inhibidor topoisomerasa II, doxorubicina. Una medición de la anulación del punto de control G2M es la fosforilación de histona H3 sobre la serina 10 que ocurre una vez que las células atraviesan el punto de control G2M y entran en mitosis. Se puede usar el siguiente ensayo de alto contenido en formación de imágenes para medir la fosforilación de histona H3 en las células. Se someten a cultivo las células HeLa en Medio MEM complementado 45 con FBS de 10 % (v/v) y se colocan sobre placas a 2000 células por pocillo en placas negras con fondo transparente revestidas con poli D-lisina, 100 l de volumen por pocillo. A continuación, se incuban en una incubadora de cultivo celular durante 18-24 h (37 ºC, 5 % de CO2, y 95 % de humedad relativa). Tras la incubación inicial, se añaden 20 l de Media MEM más FBS de 10 % que contenía doxorubicina de 625 nM a los pocillos apropiados de las placas, dando como resultado una concentración final de 125 nM. Se vuelven a meter las placas en la incubadora durante 50 24 h, suficiente para detener las células en el punto de control G2M. Al día siguiente se tratan las células con los compuestos. Se solubilizan los compuestos a 10 mM en DMSO de 100 % y posteriormente se diluyen hasta una 10 x de reserva partiendo a 50 M en MEM más DMSO de 4 % (v/v). Posteriormente, se preparan diluciones seriadas de los compuestos (1:2) en un intervalo de 50 M a 0,39 M. Se añaden trece l de la reserva de compuesto a los pocillos apropiados en la placa para producir un concentración final de DMSO de 0,4 % y un intervalo de 55 concentración final del compuesto entre 5 M y 0,039 M. Se vuelven a introducir las placas en la incubadora durante 7 h adicionales y posteriormente se retiran para la fijación. Se retira con precaución el líquido de cada pocillo y se añaden 100 l de fijador PREFER™. Se mantienen las placas a temperatura ambiente durante 20 minutos, se retira el fijador y posteriormente se permeabilizan las células por medio de la adición de 100 l/pocillo de Triton X 100 de 0,1 % (v/v) en DPBs durante 10 minutos. Se retira la disolución y se lava la placa dos veces con 100 l de 60 DPBS por pocillo seguido de la adición de 100 l de DPBS que contenía 50 g/ml de ribonucleasa A (ARNasa, de páncreas bovino) durante una hora a temperatura ambiente. Se retira la disolución ARNasa y las células teñidas por la presencia de histona H3 fosforilada sobre serina (pHH3) por medio de la adición a cada pocillo de 50 l de disolución de ARNasa que contiene una dilución de 1:500 de anti-pHH3 de conejo (ser10) más BSA de 1 % (peso/volumen). Se sellaron las placas y se mantuvieron a 4 ºC durante la noche. Se retira el anticuerpo primario por 65
medio de lavado de cada placa dos veces con 100 l de DPBS por pocillo y se sustituyó por 50 l de un dilución de 1:750IgG de anti-conejo de cabra Alexa Fluor 488 (H+L) (2 mg/ml) en DPBS más BSA 1 % (peso/volumen). Se mantienen las placas durante una hora a temperatura ambiente cubiertas con papel de aluminio para protegerlas frente a la luz. Se lavan de nuevo las placas dos veces con 100 l por pocillo de DPBS y se sustituyó por 100 l de yoduro de propidio 15 nM (dilución de 1:100 con PBS a partir de la disolución original). Se sellan las placas con un 5 sellado negro para protegerlas frente a la luz. Se incuban las placas durante 30 minutos hasta obtener núcleo teñido. Se evalúan las placas con citómetros de microplaca de fluorescencia de detección láser ACUMEN EXPLORER™ 2N y 4N. Se identifican las células pHH3 positivo por medio de la intensidad media a 519 nm de Alexa 488. Se usa la intensidad total a 655-705 nm procedente de yoduro de propidio/ADN para identificar las células individuales y las sub-poblaciones en ciclo celular (células 2N, células 4N). Se determina la lectura final de cada población por medio 10 de normalización con respecto a % de células totales que produce un rendimiento final de ensayo de % pHH3, % 2N, % 4N. A continuación, se determina la actividad de 100 % tratando las células con la concentración máxima de un compuesto de control de inhibidor a 100 nM para determinar la actividad final en % de cada compuesto. La actividad de 0 % está basada en la ausencia de tratamiento con compuesto. Se determina EC50 relativo por medio del uso de ACTIVITY BASE™, ajuste por hoja de cálculo, ajuste de curva usando un ajuste logístico de cuatro 15 parámetros, ecuación 205, para determinar el % de pHH3 relativo al control máximo a 100 %. Se someten a ensayo los compuestos de la invención en este ensayo operado sustancialmente como se ha mostrado con anterioridad. Se somete a ensayo el compuesto del Ejemplo 1 y se encontró que tenía un EC50 de 0,029 M (n = 1). Se sometieron a ensayo los compuestos del Ejemplo 2 y Ejemplo 3 y se encontró que tenían unos resultados de EC50 de 0,033 M (n = 1) y 0,019 M (n= 1), respectivamente. Estos resultados indican que los compuestos dentro del alcance de la 20 presente invención inhabilitan el punto de control de daño sobre ADN G2M.
Ensayo ECtfs (Sensibilización de Dos Veces)
Un inhibidor de Chk1 puede potenciar la actividad anti-proliferadora de gemcitabina (u otras sustancias citotóxicas) a 25 través de la anulación del punto de control de la fase intra-S, dando como resultado una daño sobre ADN mayor y sostenido. Se puede analizar la capacidad de proliferación continuada de las células tumorales tras el daño sobre ADN, determinando la capacidad de las células para replicar su ADN. Este ensayo evalúa la capacidad de las células para replicar su ADN una vez que éstas han tenido la oportunidad de reparar el daño sobre el ADN. En este ensayo, se tratan las células con una serie de dilución de gemcitabina, y trascurridas 22 h con el compuesto del 30 Ejemplo 3. Tras 44 h adicionales, se evalúa el número relativo de células por medio de un ensayo de reducción de colorante MTS (3-(4,5-dimetiltiaxol-2-il)-5-(3-carboximetoxifenil)-2-(4-sulfofenil)-2H-tetrazolio). El parámetro ECtfs es una medida de la concentración de un inhibidor de Chk1 necesaria para reducir a la mitad la concentración de GI90 de gemcitabina, medida en este ensayo en ausencia de inhibición de Chk1. Se cultivan células HT-29 (obtenidas a partir de ATCC) en RPMI 1640 más FBS inactivado con calor de 10 % (v/v). Se colocan las células en placas a 2,5 x 35 103 por pocillo, en un volumen de 100 l en placas de cultivo tisular de 96 pocillos y se incuba durante 24 h. Se preparan diluciones de gemcitabina a 6x concentraciones en medio de McCoy 5A (modificado) (1x) y se añaden a los pocillos a 20 l por pocillo. Se prepararon diluciones de gemcitabina siendo la concentración final más elevada de gemcitabina de 1,0 M y se realizaron diluciones por medio de etapas tres veces hasta 0,5 nM.
40
Se prepara el inhibidor de Chk1 por medio de diluciones en DMSO hasta una concentración final de 400x, y posteriormente se diluye 666 veces en medio de McCoy para generar 6x reservas. Las diluciones de inhibidor de Chk1 transcurrieron en etapas de 2,5 veces partiendo de 25 nM hasta 0,3 nM. Veinticuatro horas después de la adición de gemcitabina, se añade inhibidor de Chk1 en un volumen de 24 l a pocillos que contenían 1,20 l de medio más gemcitabina. Cada dilución de gemcitabina recibe una dilución individual de inhibidor de Chk1. Los 45 pocillos de control recibieron DMSO, gemcitabina, o inhibidor de Chk1 solo. Cuarenta y cuatro horas después de la adición de inhibidor de Chk1, se añaden 30 l de reactivo de ensayo CellTiter 96AQueous, a cada pocillo y se mantiene a temperatura ambiente durante 1 hora y 45 minutos. Se lee la absorbancia en un espectrofotómetro SpectraMax 250 (Molecular Devices) a 490 nm. Se analizan los datos del espectrofotómetro SpectraMax con GraphPad Prism 4,0. En primer lugar, se resta una absorbancia media de control sin células de la totalidad de los 50 otros valores de la matriz de datos procedente de cada placa. A continuación, se calcula el promedio de los punto de datos por duplicado. Se normalizan los datos para cada concentración de inhibidor de Chk1, estableciéndose el número celular de 0 % como A490 = 0 corregido, y el número celular de 100 % como el valor medio de gemcitabina de 0 nM. Posteriormente, se transforman estos resultados. Se convierten las concentraciones de gemcitabina en concentraciones logarítmicas, y se convierten los valores de número de células normalizados en porcentaje de 55 inhibición (inhibición en porcentaje = 100 - valor normalizado). Se representan gráficamente los datos transformados, y se opera una regresión no lineal para estimar un valor de IC50 para gemcitabina a cada concentración de inhibidor de Chk1. Se calcula la regresión no lineal permitiendo la variación de la pendiente, y sin restricciones para la parte superior o la parte inferior de las curvas de dosis-respuesta. Se calcula el valor ECtfs como se muestra a continuación: se determinan los valores GI50 para gemcitabina para cada concentración de inhibidor de Chk1, se 60 representan gráficamente, y se determina la concentración de inhibidor de Chk1 necesaria para hacer disminuir GI50 solo con gemcitabina dos veces, por medio de interpolación.
Se someten a ensayo los compuestos dentro del ámbito de la invención en este ensayo operado sustancialmente como se muestra con anterioridad. Por ejemplo, se somete a ensayo el compuesto del Ejemplo 3 y se encontró que 65
tenía un valor de ECtfs de 1,0 nM (SE = 0,1, n = 3). Además, 25 nM del compuesto disminuye el valor de EC50 de gemcitabina 7 veces desde 22 nM hasta 3 nM en células con carcinoma de colon HT-29. Solo, 25 nM del compuesto del Ejemplo 3 tienen un escaso efecto sobre la proliferación de células HT-29. Estos resultados indican que los compuestos dentro del alcance de la presente invención potencian eficazmente la actividad anti-proliferadora de gemcitabina a concentraciones bajas. 5
Valores de IC50 de gemcitabina obtenidos con el tratamiento de diversas concentraciones del Ejemplo 3.
[Ejemplo 3], nM
IC50 (nM)
0
22
0,256
23
0,64
19
1,60
14
4,0
10
10
4
25
3
Ensayo de Inhibición Diana in vivo Chk1 10
Se someten a cultivo las células Calu-6 en medio de crecimiento (MEM con Sal Equilibrada Earle
Disolución con L-glutamina complementada con FBS inactivado con calor de 10 % (volumen/volumen), 1 x MEM amino ácidos no esenciales, 1 x piruvato de sodio) y ampliada. Se recolectaron células y se lavaron dos veces con 15 disolución salina tamponada con fosfato y se mezclan 1 x 106 células en medio de crecimiento (sin suero) con igual volumen de matriz BD Matrigel™, posteriormente se inyectan por vía sub-cutánea en la parte lumbar de ratones atímicos pre-irradiados (4,5 Gy) (atímicos). En el día 15 después del implante (tamaño de tumor = 150-200 mm3), se administra gemcitabina formulada de nuevo en disolución salina, diariamente, a animales por medio de ruta intraperitoneal, a una dosis de 150 mg/kg. Seis horas más tarde, se administra por vía oral el compuesto Chk1 20 formulado en Tween-80 de 0,2 %/metilcelulosa de 0,5 %, con pH ajustado a 6,8 por medio de la adición de NaOH. Se sacrificaron los animales 2 h después de la dosis de inhibidor de Chk1, se recolectaron los tumores y se procesaron inmediatamente en tampón de Extracción Celular enfriado en hielo que contenía un cóctel de inhibidor de fosfatasa (Sigma, cat# P0044 + P5725) y comprimidos de cóctel de inhibidor de proteasa (Roche Diagnostics, cat# 11836153001). Se procesan los tumores en 1,5-2,0 ml de tampón de lisis en un tubo cónico de polipropileno de 25 15 ml enfriado en hielo usando un dispositivo de homogeneización tisular motorizado ajustado al alza durante 15 segundos. Con la muestra todavía mantenida en hielo, se extrae el lisato cuatro veces a través de una jeringa de 1 ml con una aguja de número 25. Se transfieren 0,35 ml de lisato de tumor a un tubo de micro-centrífuga de polipropileno de 1,5 ml que contenía 0,15 ml de 4x tampón de muestra de Laemmli. A continuación, se mezcla la muestra y se calienta durante 5 minutos a 95 ºC y se somete a tratamiento de ultrasonidos durante 1 minuto usando 30 alta potencia en un dispositivo de ultrasonidos de balanceo de placas Misonix 3000. Posteriormente, se almacenan las muestras en hielo, o se almacenan a -80 ºC para la evaluación de inhibición diana por medio de inmunotransferencia Western. Se aplican cinco g de cada lisato de tumor en el tampón de muestra a geles de 96 pocillos E-Page y se somete a electroforesis. Se transfieren las proteínas a una membrana de Protan BA83 de nitrocelulosa (Whatman, Cat# 10402405) de acuerdo con los procedimientos bien conocidos en la técnica (Towbin et 35 al., PNAS (1979) 76(9), 4350-4). A continuación, se procesa la membrana para medir la proteína Chk1 autofosforilada sobre serina 296. Se lava la membrana brevemente con agua, posteriormente con Tris 10 mM/HCl pH 8,0, NaCl 150 mM y Tween 20 de 0,05 % (v/v) (TBST) y se sumerge durante una hora a 25 ºC en TBST/ leche instantánea Carnation reconstituida de 5 % (v/v). A continuación, se lava la membrana cuatro veces con TBST durante 5 minutos. Se sumerge la membrana a 4 ºC durante 16 h en TBST/BSA de 5 % (peso/volumen) en una 40 dilución apropiada de anti-fosfo-Chk1 fosfo-Chk1 de conejo (serina 296). Posteriormente, se lava la membrana cuatro veces con TBST durante 5 minutos a 25 ºC y posteriormente se sumerge a 25 ºC durante 2 h en TBST/leche de 5 % que contenía una dilución apropiada de IgG de anti-conejo de mono conjugada con peroxidasa de rábano rusticano para detectar fosfo-Chk1 (ser 296). Se lava la membrana de nuevo cuatro veces con TBST durante 5 minutos a 25 ºC. Se detectan los conjugados de antígeno-anticuerpo-indicador inmovilizados sobre la membrana con 45 el reactivo de detección SuperSingal Western Femto-HRP.
Se detectan y capturan señales usando un sistema de formación imágenes FUJI LAS-4000. Se calculan intensidades de banda fosfo-Chk1 (ser 296) usando un soporte lógico "Total Lab" (Nonlinear Dynamics). Se calcula el porcentaje de inhibición de autofosforilación de Chk1 inducida por gemcitabina por medio del uso de la fórmula 50 siguiente: % de inhibición = (muestra - intensidad de banda de fosfo-Chk1- control positivo medio de gemcitabina (Max) - intensidad de banda de fosfo-Chk1) / (control negativo medio (Min) - intensidad de banda fosfor-Chk1 - control positivo medio de gemcitabina (Max) - intensidad de banda fosfo-Chk1) x 100.
Se someten a ensayo los compuestos dentro del alcance de la invención en el presente ensayo operado 55 sustancialmente como se ha mostrado con anterioridad. Por ejemplo, se somete a ensayo el compuesto del Ejemplo 3 y se encontró que tenía una Dosis 50 Eficaz Moduladora de Diana (TMED50) para la autofosforilación de Chk1 de
1,3 mg/kg (n = 1). Este resultado indica que los compuestos dentro del alcance de la presente invención inhiben de manera potente la activación de la proteína quinasa Chk1 in vivo.
Modelos de Xenoinjerto de Tumor en Humanos
5
Se puede determinar la capacidad de los inhibidores de Chk1 para potenciar la muerte tumoral por medio de agentes que producen daño sobre el ADN in vivo usando modelos de eficacia de xenoinjerto tumoral de colon HT-20 y de pulmón Calu-6. Se someten a cultivo células de cáncer de pulmón Calu-6 en medio de crecimiento (MEM con Disolución de Sal Equilibrada de Earle con L-glutamina complementada con FBS inactivado térmicamente de 10 % (volumen/volumen), 1 x MEM amino ácidos no esenciales, 1 x piruvato de sodio) y se someten a cultivo células de 10 cáncer de colon HT-29 (ATCC) en medio de crecimiento, (medio McCoy 5A complementado con FBS de 10 %) y se expandieron.
Se recolectan las células y se lavan dos veces con disolución salina tamponada con fosfato y se mezclan 5 x 106 células (HT-29) ó 1 x 106 células (Calu-6) en medio de crecimiento (sin suero) con un volumen igual de matriz BD 15 Matrigel™, posteriormente se inyectan por vía subcutánea en la parte lumbar de ratones atímicos (CD-1 nu/nu).
Administración Subcutánea de Inhibidor de Chk1
Aproximadamente en el día 16 después del implante (150-200 mm3), se formula gemcitabina nueva en disolución 20 salina diariamente y se administra a animales mediante ruta intraperitoneal a una dosis de 60 mg/kg. Veinticuatro horas después, se administró a los animales el compuesto del Ejemplo 3, en Tween-80 de 0,2 %/metilcelulosa de 0,5 %, por vía subcutánea BIS. Después de dos días de descanso, se repite la dosis durante tres ciclos adicionales (Q4Dx4 con desfase del compuesto del Ejemplo 3 + 24 horas). Se calcula la inhibición del crecimiento tumoral (TGI) como la reducción en porcentaje en el tamaño medio del tumor de un grupo tratado con el compuesto a partir del 25 tamaño medio del tumor del grupo de control tratado con el vehículo. Se someten a ensayo los compuestos dentro del alcance de la invención en este ensayo operado sustancialmente como se ha mostrado con anterioridad. Por ejemplo, se encontró que el compuesto del Ejemplo 3 dosificado en combinación con gemcitabina demuestra una excelente actividad anti-tumoral dependiente de la dosis en los modelos de xenoinjerto tumoral tanto HT-29 como Calu-6, con un aumento de hasta seis veces de la inhibición del crecimiento tumoral con respecto a gemcitabina 30 sola. Este resultado indica que los compuestos dentro del alcance de la presente invención administrados por vía subcutánea aumentan significativamente la actividad anti-tumoral de gemcitabina en modelos de xenoinjerto en humanos.
HT29 subcutánea 35
Tratamiento
% de TGI en el día 38 p vs gem
Vehículo
0 ns
Gemcitabina 60 mpk
11 -
Ejemplo 3 40 mpk
26 ns
Gem/Ej 3 5 mpk
47 0,0226
Gem/Ej 3 10 mpk
55 0,0024
Gem/Ej 3 20 mpk
58 0,0008
Gem/Ej 3 40 mpk
72 < 0,0001
ns = estadísticamente no significativo
Calu 6 subcutánea
Tratamiento
% de TGI en el día 47 p vs gem
Vehículo
0 ns
Gemcitabina 60 mpk
-41 -
Ejemplo 3 40 mpk
-19 ns
Gem/Ej 3 5 mpk
40 0,0049
Gem/Ej 3 10 mpk
32 0,0156
Gem/Ej 3 20 mpk
68 < 0,0001
Gem/Ej 3 40 mpk
81 < 0,0001
ns = estadísticamente no significativo
40
Administración Oral de Inhibidor de Chk1
Aproximadamente en el día 16 después del implante (150-200 mm3), se formula gemcitabina nueva en disolución salina diariamente y se administra a animales por ruta intraperitoneal a una dosis de 40 mg/kg. Veinticuatro horas después, se administró a los animales el compuesto Chk1, en Tween-80 de 0,2 %/metilcelulosa de 0,5 %, por vía 45 oral BID. Después de tres días de descanso, se repite la dosificación durante tres ciclos adicionales (Q5Dx4 con desfase del compuesto del Ejemplo 3 + 24 horas). Se calcula la inhibición del crecimiento tumoral (TGI) como se ha
descrito en el párrafo anterior. Se someten a ensayo los compuestos dentro del alcance de la invención en este ensayo operado sustancialmente como se ha mostrado con anterioridad. Por ejemplo, se dosifica el compuesto del Ejemplo 3 en combinación con gemcitabina y se encontró que mostraba una excelente actividad anti-tumoral dependiente de la dosis en modelos de xenoinjerto tumoral tanto HT-29 como Calu-6, con un aumento de hasta 2,9 veces de la inhibición del crecimiento tumoral con respecto a gemcitabina sola. Este resultado indica que los 5 compuestos dentro del alcance de la presente invención administrados por vía oral aumentan significativamente la actividad anti-tumoral de gemcitabina en modelos de xenoinjerto tumoral en humanos.
Calu6 oral
Tratamiento
% de TGI en el día 37 p vs gem
Vehículo
0 0,0171
Gem 40 mpk
32 -
Ejemplo 3 30 mpk
37 ns
Gem/Ej 3 15 mpk
48 0,0652
Gem/Ej 3 30 mpk
75 < 0,0001
ns = estadísticamente no significativo
10
HT29 oral
Tratamiento
% de TGI en el día 50 p vs gem
Vehículo
0 ns
Gem 40 mpk
25 -
Ejemplo 3 30 mpk
39 ns
Gem/Ej 3 15 mpk
68 < 0,0001
Gem/Ej 3 30 mpk
73 < 0,0001
ns = estadísticamente no significativo
15
20
25

Claims (13)

  1. REIVINDICACIONES
    1.- Un compuesto que es (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina, o una de sus sales farmacéuticamente aceptable. 5
  2. 2.- El compuesto de acuerdo con la Reivindicación 1 que es (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina.
  3. 3.- El compuesto de acuerdo con la Reivindicación 1 que es sal de ácido (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-10 pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amino metano sulfónico.
  4. 4.- El compuesto de acuerdo con la Reivindicación 1 que es sal de ácido (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amino acético.
    15
  5. 5.- El compuesto de acuerdo con la Reivindicación 1 que es sal hemioxalato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina.
  6. 6.- El compuesto de acuerdo con la Reivindicación 1 que es sal hemisuccinato de (R)-[5-(2-metoxi-6-metil-piridin-3-il)-2H-pirazol-3-il]-[6-(piperidin-3-iloxi)-pirazin-2-il]-amina. 20
  7. 7.- Una composición farmacéutica que comprende el compuesto o una sal de acuerdo con una cualquiera de las Reivindicaciones 1-6, y un excipiente, diluyente o vehículo farmacéuticamente aceptable.
  8. 8.- El compuesto o sal de acuerdo con una cualquiera de las Reivindicaciones 1-6 para su uso en terapia. 25
  9. 9.- El compuesto o sal de acuerdo con una cualquiera de las Reivindicaciones 1-6 para su uso en el tratamiento de cáncer.
  10. 10.- El compuesto o sal de acuerdo con una cualquiera de las Reivindicaciones 1-6 para su uso en combinación 30 simultánea, separada o secuencial con radiación ionizante en el tratamiento de cáncer.
  11. 11.- El compuesto o sal de acuerdo con una cualquiera de las Reivindicaciones 1-6 para su uso en combinación simultánea, separada o secuencial con uno o más agentes de quimioterapia en el tratamiento de cáncer.
    35
  12. 12.- El compuesto o sal para su uso de acuerdo con la Reivindicación 11, en el que uno o más agentes de quimioterapia están seleccionados entre el grupo que consiste en 5-fluorouracilo, hidroxiurea, gemcitabina, metotrexato, pemetrexed, doxorubicina, etoposido, cisplatino y taxol.
  13. 13. El compuesto o sal para su uso de acuerdo con una cualquiera de las Reivindicaciones 9-12, en el que el cáncer 40 está seleccionado entre el grupo que consiste en cáncer de vejiga, cáncer de colon, cáncer gástrico, cáncer de hígado, cáncer de pulmón, cáncer de mama, melanoma, cáncer de ovarios, cáncer de páncreas, mesotelioma, cáncer de riñón y cáncer de útero.
    45
    50
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