ES2928793T3 - Un método de diagnóstico o pronóstico de un trastorno neurológico - Google Patents

Un método de diagnóstico o pronóstico de un trastorno neurológico Download PDF

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ES2928793T3 ES19722071T ES19722071T ES2928793T3 ES 2928793 T3 ES2928793 T3 ES 2928793T3 ES 19722071 T ES19722071 T ES 19722071T ES 19722071 T ES19722071 T ES 19722071T ES 2928793 T3 ES2928793 T3 ES 2928793T3
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Abstract

La presente invención se refiere a un método para diagnosticar o pronosticar un trastorno neurológico en un sujeto. El método comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de uno o más biomarcadores en una muestra biológica del sujeto; y diagnosticar o pronosticar el trastorno neurológico en el sujeto basándose en el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en la muestra biológica. (Traducción automática con Google Translate, sin valor legal)

Description

DESCRIPCIÓN
Un método de diagnóstico o pronóstico de un trastorno neurológico
Campo de la invención
La presente invención se refiere a un método para diagnosticar o pronosticar la esclerosis lateral amiotrófica en un sujeto. El método comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de DAG1 en una muestra biológica del sujeto; y diagnosticar o pronosticar la esclerosis lateral amiotrófica en el sujeto basándose en el nivel cuantitativo o cualitativo de DAG1 en la muestra biológica.
Antecedentes de la invención
La esclerosis lateral amiotrófica (ALS), también conocida como enfermedad de la neurona motora (MND), es un trastorno mortal de la neurona motora que provoca la degeneración progresiva y la muerte de las neuronas motoras superiores e inferiores, agregación de proteínas, atrofia muscular grave e insuficiencia respiratoria. La mediana de supervivencia es entre 2 y 5 años desde el inicio de los síntomas. La ALS se manifiesta como ALS familiar (FALS; -10 % de los casos) o ALS esporádica (SALS; -90 % de los casos). La tasa de incidencia de la ALS se ha estimado entre 0.3 y 2.6 casos por 100000 (2.16 por 100000 personas-año en Europa, 2.0 por 100 000 personas-año en Irlanda).
Los estudios en modelos animales y pacientes con ALS muestran que la degeneración de las neuronas motoras comienza en la unión neuromuscular y que los cambios en los músculos postsinápticos pueden desempeñar un papel activo. Los estudios han mostrado que el músculo esquelético tiene una actividad secretora funcional. El secretoma muscular contiene exosomas, vesículas que llevan a cabo el transporte intercelular de proteínas funcionales, ARNm y miARN. Los exosomas pueden actuar en una forma autocrina/paracrina en las células musculares u otros tipos de células y contribuyen al crecimiento y regeneración muscular, al metabolismo de todo el cuerpo y a otras funciones. Los agregados patológicos de proteínas mal plegadas, tales como las proteínas SOD1, TDP-43 o FUS en las neuronas afectadas y también en la glía cercana, pueden considerarse características de la ALS. Varios estudios recientes han mostrado que estas proteínas intracelulares pueden ser liberadas a través de la exocitosis mediada por vesículas y luego ser fagocitadas por las células vecinas, lo que permite una transmisión que se autoperpetua a las neuronas motoras adyacentes. Además, en la ALS familiar, se han identificado mutaciones de genes implicados en las rutas de autofagia y en la biogénesis multivesicular (tales como ALSIN, VAPB, CHMP2B y VCP). Juntos, estos datos sugieren fuertemente una alteración de las rutas del endosoma y del lisosoma en pacientes con ALS esporádica y familiar; estas rutas están ambas involucradas en la génesis de exosomas. El diagnóstico es lento, a menudo requiere que el paciente consulte a varios especialistas durante un período de meses: el tiempo medio desde el inicio de los síntomas hasta la confirmación del diagnóstico es de 13-18 meses. Por lo tanto, el problema/necesidad es diagnosticar la ALS más rápidamente.
Compendio de la invención
La invención se define en las reivindicaciones adjuntas.
Aquí se proporciona un método para diagnosticar o pronosticar un trastorno neurológico en un sujeto, comprendiendo el método las etapas de:
(a) determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de uno o más biomarcadores en una muestra biológica del sujeto; y
(b) diagnosticar o pronosticar el trastorno neurológico en el sujeto basándose en el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en la muestra biológica;
en donde el o cada biomarcador se selecciona de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; EEF1D; TPI1; SSBP1; PSMB8; PSAP; PSMB7; CAPZA1; PRDX1; PODN; MMP1; NUCB2; HMGB1; AHNAK; FNDC1; DENR; PENK; S100A11; RPL29; RPL27; RPL8; SRSF2; SF3B4; SBSN; LYAR; NUDC; CRLF1; TGFB1; CAT; CTSD; DLD; EPB41L2; PSMB9; RPS14; RPL7A; COLEC12; SMARCC2; TAGLN2; CCT4; ASPH; GPS1; CDK13; SH3GL2; HBA1; APEX1; PSMB5; TXN; AXL; RPS8; SET; RPS18; CFL1; DMKN; RPL22; RPL6; FKBP10; PAFAH1B1; S100A13; PSMA6; SERPINE1; CAPRIN1; SEPT7; VTN; ENPP2; NEO1; DKC1; CHI3L1; SKOR1; SSRP1; COL4A2; NME1; CFB; EIF2S3; DPYSL2; NUMA1; KTN1; CHID1; EFEMP1; YWHAZ; LDHB; SDCBP; TLN1; DES; APP; y DAG1.
Preferiblemente, el o cada biomarcador se selecciona de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; y CAPRIN1.
Preferiblemente además, el o cada biomarcador se selecciona de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; CAPRIN1; DES; APP; y DAG1. Preferiblemente además, el o cada biomarcador se selecciona de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; DES; APP; y DAG1.
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de dos o más biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Además, opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de tres, cuatro, cinco, ocho, diez, veinte, veinticinco, veintiocho, treinta, cuarenta, cincuenta, sesenta, setenta, ochenta, noventa, cien o más biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de todos los biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Opcional o adicionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de cada uno de los biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es un gen. Además, opcionalmente, el o cada biomarcador es un ácido nucleico. Además también opcionalmente, el o cada biomarcador es un ácido desoxirribonucleico.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es un producto de traducción de un gen.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es un producto de traducción de un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; EEF1D; TPI1; SSBP1; PSMB8; PSAP; PSMB7; CAPZA1; PRDX1; PODN; MMP1; NUCB2; HMGB1; AHNAK; FNDC1; DENR; PENK; S100A11; RPL29; RPL27; RPL8; SRSF2; SF3B4; SBSN; LYAR; NUDC; CRLF1; TGFB1; CAT; CTSD; DLD; EPB41L2; PSMB9; RPS14; RPL7A; COLEC12; SMARCC2; TAGLN2; CCT4; ASPH; GPS1; CDK13; SH3GL2; HBA1; APEX1; PSMB5; TXN; AXL; RPS8; SET; RPS18; CFL1; DMKN; RPL22; RPL6; FKBP10; PAFAH1B1; S100A13; PSMA6; SERPINE1; CAPRIN1; SEPT7; VTN; ENPP2; NEO1; DKC1; CHI3L1; SKOR1; SSRP1; COL4A2; NME1; CFB; EIF2S3; DPYSL2; NUMA1; KTN1; CHID1; EFEMP1; YWHAZ; LDHB; SDCBP; TLN1; DES; APP; y DAG1.
Preferiblemente, el o cada biomarcador es un producto de traducción de un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; y CAPRIN1.
Preferiblemente además, el o cada biomarcador es un producto de traducción de un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; CAPRIN1; DES; APP; y DAG1.
Preferiblemente además, el o cada biomarcador es un producto de traducción de un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; DES; APP; y DAG1.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es un ácido ribonucleico.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es un ácido ribonucleico que tiene un Número de Acceso de miRBase seleccionado de MIMAT0000244; ENSG00000239126; MIMAT0016865; MIMAT0002813; MIMAT0004697; MIMAT0000245; MIMAT0000737; MIMAT0000088; MIMAT0000414; MIMAT0004955; MIMAT0000076; MIMAT0000067; MIMAT0018084; y MIMAT0004813.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es un ácido ribonucleico que tiene una secuencia de ácido nucleico seleccionada de una cualquiera o más de SEQ ID NOs 109 - 122.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es una proteína. Además, opcionalmente, el o cada biomarcador es un péptido. Además, opcionalmente todavía, el o cada biomarcador es un polipéptido.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es una proteína codificada por un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; EEF1D; TPI1; SSBP1; PSMB8; PSAP; PSMB7; CAPZA1; PRDX1; PODN; MMP1; NUCB2; HMGB1; AHNAK; FNDC1; DENR; PENK; S100A11; RPL29; RPL27; RPL8; SRSF2; SF3B4; SBSN; LYAR; NUDC; CRLF1; TGFB1; CAT; CTSD; DLD; EPB41L2; PSMB9; RPS14; RPL7A; COLEC12; SMARCC2; TAGLN2; CCT4; ASPH; GPS1; CDK13; SH3GL2; HBA1; APEX1; PSMB5; TXN; AXL; RPS8; SET; RPS18; CFL1; DMKN; RPL22; RPL6; FKBP10; PAFAH1B1; S100A13; PSMA6; SERPINE1; CAPRIN1; SEPT7; VTN; ENPP2; NEO1; DKC1; CHI3L1; SKOR1; SSRP1; COL4A2; NME1; CFB; EIF2S3; DPYSL2; NUMA1; KTN1; CHID1; EFEMP1; YWHAZ; LDHB; SDCBP; TLN1; DES; APP; y DAG1.
Preferiblemente, el o cada biomarcador es una proteína codificada por un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; y CAPRIN1.
Preferiblemente además, el o cada biomarcador es una proteína codificada por un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; CAPRIN1; DES; APP; y DAG1.
Preferiblemente además, el o cada biomarcador es una proteína codificada por un gen seleccionado de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; DES; APP; y DAG1.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es una proteína que tiene un número de acceso de UniProtKB/Swiss-Prot seleccionado de: P30101; Q76M96; P11142; P07093; Q15149; P11021; P19338; P09493; P24821; P17936; P20908; Q9Y240; P46821; Q13765; P25787; P46777; P60660; P07858; P10809; Q6NZI2; Q02818; P13667; P07237; O43707; P29692; P60174; Q04837; P28062; P07602; Q99436; P52907; Q06830; Q7Z5L7; P03956; P80303; P09429; Q09666; Q4ZHG4; O43583; P01210; P31949; P47914; P61353; P62917; Q01130; Q15427; Q6UWP8; Q9NX58; Q9Y266; O75462; P01137; P04040; P07339; P09622; O43491; P28065; P62263; P62424; Q5KU26; Q8TAQ2; P37802; P50991; Q12797; Q13098; Q14004; Q99962; P69905; P27695; P28074; P10599; P30530; P62241; Q01105; P62269; P23528; Q6E0U4; P35268; Q02878; Q96AY3; P43034; Q99584; P60900; P05121; Q14444; Q16181; P04004; Q13822; Q92859; O60832; P36222; P84550; Q08945; P08572; P15531; P00751; P41091; Q16555; Q14980; Q86UP2; Q9BWS9; Q12805; P63104; P07195; 000560; Q9Y490; P17661; P05067; y Q14118.
Preferiblemente, el o cada biomarcador es una proteína que tiene un número de acceso de UniProtKB/Swiss-Prot seleccionado de: P30101; Q76M96; P11142; P07093; Q15149; P11021; P19338; P09493; P24821; P17936; P20908; Q9Y240; P46821; Q13765; P25787; P46777; P60660; P07858; P10809; Q6NZI2; Q02818; P13667; P07237; O43707; and Q14444.
Preferiblemente además, el o cada biomarcador es una proteína que tiene un número de acceso de UniProtKB/Swiss-Prot seleccionado de: P30101; Q76M96; P11142; P07093; Q15149; P11021; P19338; P09493; P24821; P17936; P20908; Q9Y240; P46821; Q13765; P25787; P46777; P60660; P07858; P10809; Q6NZI2; Q02818; P13667; P07237; O43707; Q14444; P17661; P05067; y Q14118.
Más preferiblemente, el o cada biomarcador es una proteína que tiene un número de acceso de UniProtKB/Swiss-Prot seleccionado de: P30101; Q76M96; P11142; P07093; Q15149; P17661; P05067; and Q14118.
Opcionalmente, el o cada biomarcador es una proteína que tiene una secuencia de aminoácidos seleccionada de una cualquiera o más de SEQ ID NOs 1 - 108.
Opcionalmente, el trastorno neurológico es un trastorno neurodegenerativo.
Opcionalmente, el trastorno neurodegenerativo se selecciona de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal.
Opcionalmente, la etapa de diagnóstico o pronóstico (b) comprende comparar el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en la muestra biológica del sujeto con el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador respectivo en una muestra normal.
Opcionalmente, la muestra normal es una muestra biológica de un sujeto que no padece un trastorno neurológico, opcionalmente un trastorno neurodegenerativo, además opcionalmente un trastorno neurodegenerativo seleccionado de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal.
Opcionalmente, un nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en la muestra biológica del sujeto mayor que el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador respectivo en una muestra normal es indicativo del nivel cuantitativo o cualitativo del trastorno neurológico, opcionalmente el trastorno neurodegenerativo, además opcionalmente el trastorno neurodegenerativo seleccionado de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal. Opcionalmente, un nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en la muestra biológica del sujeto mayor que el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador respectivo en una muestra normal es indicativo de la presencia cuantitativa o cualitativa del trastorno neurológico, opcionalmente el trastorno neurodegenerativo, además opcionalmente el trastorno neurodegenerativo seleccionado de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal. Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de uno o más subconjuntos de uno o más biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de dos o más subconjuntos de uno o más biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de tres, cuatro, cinco, seis, siete, ocho, nueve, diez, once, doce, trece o catorce subconjuntos de uno o más biomarcadores en la muestra biológica del sujeto
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de uno o más de un subconjunto primero, segundo, tercero, cuarto, quinto, sexto, séptimo, octavo, noveno, décimo, undécimo, duodécimo, decimotercero o decimocuarto de uno o más biomarcadores en la muestra biológica del sujeto.
Opcionalmente, el primer subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: PDIA3; y CCDC80.
Opcionalmente, el segundo subconjunto comprende HSPA8.
Opcionalmente, el tercer subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: SERPINE2; y PLEC.
Opcionalmente, el cuarto subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: HSPA5; y NCL. Opcionalmente, el quinto subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: TPM1; y TNC. Opcionalmente, el sexto subconjunto comprende IGFBP3.
Opcionalmente, el séptimo subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; y PSMA2.
Opcionalmente, el octavo subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; y ACTN4.
Opcionalmente, el noveno subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: EEF1D; TPI1; SSBP1; PSMB8; PSAP; PSMB7; CAPZA1; PRDX1; PODN; MMP1; NUCB2; HMGB1; AHNAK; y FNDC1. Opcionalmente, el décimo subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: DENR; PENK; S100A11; RPL29; RPL27; RPL8; SRSF2; SF3B4; SBSN; LYAR; NUDC; CRLF1; TGFB1; CAT; CTSD; DLD; EPB41L2; PSMB9; RPS14; RPL7A; COLEC12; SMARCC2; TAGLN2; CCT4; ASPH; GPS1; CDK13; SH3GL2; HBA1; APEX1; PSMB5; TXN; AXL; RPS8; SET; RPS18; CFL1; DMKN; RPL22; RPL6; FKBP10; PAFAH1B1; S100A13; PSMA6; SERPINE1; CAPRIN1; SEPT7; VTN; ENPP2; NEO1; DKC1; CHI3L1; SKOR1; SSRP1; COL4A2; NME1; CFB; EIF2S3; DPYSL2; NUMA1; KTN1; CHID1; EFEMP1; YWHAZ; LDHB; SDCBP; y TLN1. Opcionalmente, el undécimo subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: DES; APP; y DAG1.
Opcionalmente, el duodécimo subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; y CAPRIN1.
Opcionalmente, el decimotercer subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; HSPA5; NCL; TPM1; TNC; IGFBP3; COL5A1; CLEC11A; MAP1B; NACA; PSMA2; RPL5; MYL6; CTSB; HSPD1; PTRF; NUCB1; PDIA4; P4HB; ACTN4; CAPRIN1; DES; APP; y DAG1.
Opcionalmente, el decimocuarto subconjunto comprende uno o más biomarcadores seleccionados de: PDIA3; CCDC80; HSPA8; SERPINE2; PLEC; DES; APP; y DAG1.
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de todos los biomarcadores en uno o más de los subconjuntos primero, segundo, tercero, cuarto, quinto, sexto, séptimo, octavo, noveno, décimo, undécimo, duodécimo, decimotercero o decimocuarto.
Opcionalmente, la etapa de determinación (a) comprende determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de cada uno de los biomarcadores en uno o más de los subconjuntos primero, segundo, tercero, cuarto, quinto, sexto, séptimo, octavo, noveno, décimo, undécimo, duodécimo, decimotercero o decimocuarto.
Opcionalmente, la etapa de diagnóstico o pronóstico (b) comprende comparar el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en el o en cada subconjunto en la muestra biológica del sujeto con el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador respectivo en una muestra normal.
Opcionalmente, la muestra normal es una muestra biológica de un sujeto que no padece un trastorno neurológico, opcionalmente un trastorno neurodegenerativo, además opcionalmente un trastorno neurodegenerativo seleccionado de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal.
Opcionalmente, un nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en el o en cada subconjunto en la muestra biológica del sujeto mayor que el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador respectivo en una muestra normal es indicativo del nivel cuantitativo o cualitativo del trastorno neurológico, opcionalmente el trastorno neurodegenerativo, además opcionalmente el trastorno neurodegenerativo seleccionado de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal.
Opcionalmente, un nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador en la muestra biológica del sujeto mayor que el nivel cuantitativo o cualitativo del o de cada biomarcador respectivo en una muestra normal es indicativo de la presencia cuantitativa o cualitativa del trastorno neurológico, opcionalmente el trastorno neurodegenerativo, además opcionalmente el trastorno neurodegenerativo seleccionado de esclerosis lateral amiotrófica (ALS; enfermedad de Lou Gehrig; enfermedad de la neurona motora; MND), paraplejia espástica hereditaria (HSP), esclerosis lateral primaria (PLS), atrofia muscular progresiva (PMA), parálisis bulbar progresiva (PBP), parálisis pseudobulbar, atrofia muscular espinal y bulbar (SBMA) y atrofia muscular espinal.
Opcional o adicionalmente, la etapa de determinación (a) comprende además la etapa adicional de determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de uno o más biomarcadores en una muestra biológica del sujeto; en donde el o cada biomarcador es un ácido ribonucleico que tiene un número de acceso de miRBase seleccionado de MIMAT0000244; ENSG00000239126; MIMAT0016865; MIMAT0002813; MIMAT0004697; MIMAT0000245; MIMAT0000737; MIMAT0000088; MIMAT0000414; MIMAT0004955; MIMAT0000076; MIMAT0000067; MIMAT0018084; y MIMAT0004813.
Opcionalmente, la muestra biológica se selecciona de sangre completa, suero, plasma, orina, líquido intersticial, líquido peritoneal, hisopo de cuello uterino, lágrimas, saliva, hisopo bucal, piel, tejido cerebral y líquido cefalorraquídeo.
Además opcionalmente, la muestra biológica se selecciona de sangre completa, suero y plasma.
Además también opcionalmente, la muestra biológica es sangre completa.
PDIA3 es sinónimo de Erp57.
Breve descripción de los dibujos
Los presentes métodos ahora se describirán con referencia a los siguientes ejemplos no limitantes y a los dibujos adjuntos, en los cuales:
La Figura 1 es una ilustración esquemática de la firma de la ALS en células madre musculares;
La Figura 2 (A) ilustra la inmunotinción para marcadores de exosomas de células madre musculares diferenciadas, (B) la secreción de exosomas por células musculares y (C) los cuerpos multivesiculares de las células musculares de la ALS contienen más exosomas que los controles;
La figura 3 ilustra imágenes representativas de miotubos sanos tratados con exosomas de ALS o de control, en donde los exosomas de ALS inducen estrés celular;
La figura 4 ilustra diagramas de caja que muestran valores de expresión de micromatrices de ARN no codificante (sin procesar: panel izquierdo; valor base corregido: panel central; valor base corregido y normalizado: panel derecho);
La figura 5 ilustra diagramas de caja que muestran valores de RLE para micromatrices de ARN no codificante (los valores promedio cercanos a 0 pasan el control de calidad);
La figura 6 ilustra diagramas de caja que muestran valores de NUSE para micromatrices de ARN no codificante (los valores promedio <1.05 pasan el control de calidad);
La Figura 7 ilustra el nivel de expresión de DAG1 en los exosomas circulantes del suero, utilizando anticuerpos anti-DAG. Los valores son media ± SD. Suero de 8 pacientes con ALS (1 mes después del diagnóstico), 11 sujetos sanos y 9 pacientes con Parkinson. Se realizó un ANOVA de 1 factor seguido de una prueba post-hoc de Tukey. **, significativamente diferente de los valores de sujetos sanos, P < 0.01;
La figura 8 ilustra el nivel de expresión de HSPA8 en exosomas circulantes del suero. Los valores son media ± SD. Suero de 5 pacientes con ALS (1 mes después del diagnóstico), 9 sujetos sanos y 7 pacientes con Parkinson. Se realizó un ANOVA de 1 factor seguido de una prueba post-hoc de Tukey. *.,**, significativamente diferente de los valores para ALS, P<0.05 y P<0.01;
La figura 9 ilustra los niveles de cada biomarcador en exosomas aislados del suero sanguíneo de pacientes con ALS, normalizados frente a la cantidad de exosomas en el suero sanguíneos totales (CD63) y representados frente a la tasa de progresión de la patología (delta ALSFRS-R).
Ejemplos
Materiales y Métodos
Participantes y aprobación ética
Se realizó una biopsia abierta en el músculo deltoides a 18 pacientes con ALS que acudieron al centro de Enfermedades de la Neurona Motora (Pitié Salpétriére, París). Veintiuna biopsias del músculo deltoides de sujetos sanos de edad y sexo correspondientes se obtuvieron del BTR (Banco de Tejidos para la Investigación, socio de la red europea EuroBioBank) de acuerdo con las recomendaciones europeas y la legislación francesa. El protocolo (NCT01984957) fue aprobado por el comité de ética local y todos los sujetos completaron el consentimiento informado de acuerdo con las pautas institucionales.
Extracción y cultivo de células madre musculares
Las biopsias musculares se disociaron mecánicamente y se colocaron en placas en medio de proliferación como se ha descrito anteriormente (Mamchaoui et al, Skeletal muscle, 2011, PMID: 22040608). Se usó el sistema de separación de perlas magnéticas CD56 (MACS, Miltenyl Biotech) para separar la población de células miogénicas de acuerdo con las instrucciones del fabricante. La miogenicidad de los cultivos celulares se comprobó antes y después de separar las células mediante inmunomarcaje utilizando anticuerpos antidesmina, y las células se diferenciaron durante 3 días en medio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM). Un mínimo de 80% de la población celular fue positiva para desmina.
Extracción de exosomas del medio de cultivo
Brevemente, 10 millones de células madre musculares (ALS y sujetos sanos, n=3 por grupo) se diferenciaron en DMEM durante 3 días. Después de 3 días, los medios condicionados se recolectaron, se centrifugaron a 300 x g durante 5 min a temperatura ambiente (TA) y luego a 4000 g durante 20 min a 4°C con el fin de eliminar cualquier célula muerta y los restos celulares. Los líquidos sobrenadantes se filtraron a través de un filtro de 0.22 |jm para eliminar las micropartículas. Las muestras se utilizaron para la extracción de proteínas y miARN y se almacenaron a -80°C.
Extracción de proteínas de exosomas
Se mezcló un volumen de medio de cultivo celular con 0.5 volúmenes de reactivo de aislamiento de exosomas total de medios de cultivo celular (lifeTechnologies®) y se incubó durante la noche a 4°C. A continuación, las muestras se centrifugaron a 10000 * g durante 1 hora a 4°C. Los sedimentos de exosomas se resuspendieron en 25 |jl de urea 8 M, bicarbonato de amonio 50 mM, pH 8.5, y se redujeron con ditiotreitol (DTT) durante 1 h a 4°C. La concentración de proteínas se cuantificó usando el kit de ensayo de proteínas Pierce BCA (ThermoFisher®). Las proteínas exosomales se mantuvieron a -80°C.
Perfil del proteoma determinado por espectrometría de masas
Aproximadamente 20 jg de proteínas de exosoma se digirieron con tripsina utilizando una columna SmartDigest (Thermo) durante 2 horas a 70°C y 1400 rpm de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Después, los péptidos se fraccionaron en 8 fracciones usando una columna de centrifugación de fase inversa de pH alto (Thermo) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Los péptidos fraccionados se secaron al vacío, se resuspendieron y se analizaron mediante espectrometría de masas dependiente de los datos en un Q Exactive HF (Thermo) con los siguientes parámetros: polaridad positiva, m/z 400-2000 MS Resolución 70 000, AGC 3e6, 100 ms TI, MS/MS Resolución 17500, AGC 5e5, 50 ms IT, ancho de aislamiento 3 m/z, y NCE 30, número de ciclos 15.
Búsqueda en bases de datos y cuantificación
Se exploraron los archivos de espectros de masas resultantes para la identificación de proteínas utilizando ProteomeDiscoverer (Thermo) frente a la base de datos humana Uniprot para péptidos semi-trípticos y se filtraron en función de una tasa de descubrimiento falso de< 1%.
Análisis del perfil del proteoma
Las proteínas se seleccionaron como candidatas si el intervalo de abundancia observado de las 3 repeticiones de ALS no se superponía con el intervalo de las 3 repeticiones de control sanos. Los candidatos se clasificaron en función de la diferencia en el valor medio de las 3 repeticiones de ALS con respecto a las repeticiones de los sanos.
Extracción de miARN de exosomas
Se mezcló un volumen de medio de cultivo celular con 0.5 volúmenes de reactivo de aislamiento de exosomas total de medios de cultivo celular (lifeTechnologies®) y se incubó durante la noche a 4°C. A continuación, las muestras se centrifugaron a 10 000 * g durante 1 h a 4°C. Los sedimentos de exosomas se volvieron a suspender con 1 ml de trizol. Después de añadir 0.2 ml de cloroformo, las muestras se incubaron durante 3 minutos a temperatura ambiente y luego se centrifugaron durante 15 minutos a 12000 * g a 4°C. A continuación, la fase superior acuosa se mezcló con 1/3 de volumen de etanol al 100% y se mezcló completamente. A continuación, las muestras se pusieron en un cartucho de filtro en un tubo de recogida de ARN total y un kit de aislamiento de proteínas de Invitrogen™ (LifeTechnologies™). La extracción de miARN se realizó siguiendo las instrucciones del fabricante. La calidad del ARN se determinó utilizando el bioanalizador Eukaryote Total RNA Nano 2.6 (Agilent) y 2100. La cantidad de ARN se determinó usando Nanodrop, cada uno de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
Perfil y análisis de miARN
Se añadió una cola de poli(A) al ARN total (150 ng) y se marcó con biotina utilizando un kit de marcaje de ARN FlashTag Biotin HSR y se hibridó con matrices Affymetrix GeneChip miRNA 4.0 durante 16 horas (48°C), siguiendo las instrucciones del fabricante (ThermoFisher Scientific, Waltham, MA). A continuación, se retiraron los cócteles de hibridación y las matrices se lavaron y tiñeron en una Fluidics Station 450 con el script de fluídica para matrices miRNA 4.0. Finalmente, las matrices se escanearon en un escáner Affymetrix GCS3000 7G y los datos de control de calidad iniciales se evaluaron usando el software Affymetrix Expression Console (ambos de ThermoFisher Scientific).
Análisis del perfil del miRNoma
Se llevó a cabo un control de calidad adicional de los datos sin procesar utilizando los paquetes de R/Bioconductor oligo y pd.mirna.4.0. Estos paquetes se usaron para evaluar la distribución de los valores de expresión de cada muestra, los valores de expresión logarítmicos relativos (RLE) y los errores estándar normalizados sin escalar (NUSE), todos los cuales fueron coherentes con una buena calidad. A continuación, las matrices de expresión se normalizaron mediante la normalización de cuantiles y la detección por encima del valor base utilizando Affymetrix Expression Console v 1.4.1.46. Los miRNA expresados diferencialmente (ALS frente a sanos) se identificaron luego como aquellos que tenían un cambio absoluto > 2 y valor p para ANOVA de una vía, de datos no emparejados < 0.05.
Muestras de suero de pacientes
Las muestras de sangre se recogieron usando tubos Vacutainer de sílice, luego se invirtieron suavemente 8­ 10 veces. Después de 2 h de incubación en hielo para permitir la coagulación, las muestras se centrifugaron a 1 500 g durante 15 min. Se transfirieron partes alícuotas de 100 pl de suero a crioviales y se almacenaron a -80°C. Se incluyeron ocho pacientes con ALS, 11 sujetos sanos y 9 pacientes con Parkinson de la misma edad y género (NCT01302600 y NCT02305147).
Extracción de exosomas del suero
Los exosomas precipitaron añadiendo 6 pl de reactivo de aislamiento de exosomas total, agitando con vórtice e incubando durante 30 min en hielo. A continuación, las muestras se centrifugaron durante 10 min a 10000 g a TA. Los sedimentos se resuspendieron en 13.5 pl de Urea 4 M/RIPA y se mantuvieron en hielo. Paralelamente, se añadieron 6.3 pl de reactivo de aislamiento de exosomas total a los líquidos sobrenadantes restantes, se agitaron con vórtice y se incubaron durante 30 min en hielo. A continuación, esta segunda mezcla se centrifugó durante 10 min a 10000 g a TA. Los segundos sedimentos de exosoma se resuspendieron en 13.5 pl de urea 4 M/RIPA. Los dos extractos de proteínas de exosomas luego se mezclaron entre sí y se usaron para el análisis de transferencia de puntos. Los extractos de proteínas de exosomas se almacenaron a -80°C.
Preparación de muestras para la transferencia de puntos
A 5 pl de extracto de proteínas de exosomas se añadió 1xNuPAGE (Invitrogen™). Estas muestras no reducidas se usaron para el análisis de CD63. A los 22 pl restantes del extracto de proteínas de exosomas se añadió 1xNuPAGE (Invitrogen™) complementado con 1x reactivo reductor (Invitrogen™). A continuación, todas las muestras se calentaron a 70°C durante 10 min.
Análisis de transferencia de puntos
Se cargó 1 pl de muestra reducida o no reducida en el PVDF de 0.2 pm preactivado con metanol (Immobilon®, Sigma-Aldrich®). Después de secar durante 5 min a TA, las membranas se reactivaron rápidamente en metanol y se tiñeron con Ponceau S (Sigma-Aldrich®) para controlar la carga. Luego, las membranas se bloquearon durante la noche a 4°C en TBS-Tween al 0.01% (TBS-T) complementado con leche al 5%. Los anticuerpos primarios para CD63 (TS63, Invitrogen™), para beta-distroglicano (MANDAG2, 7D11, DSHB) y para Hs Pa 8 (Millipore®) se acoplaron de manera extemporánea con biotina utilizando el kit de marcaje de IgG1 de ratón Zenon™ BiotinXX siguiendo las instrucciones del fabricante. Brevemente, a 1 pg de anticuerpo se añadieron primero 5 pl de complejo, luego 5 pl de tampón de bloqueo. Los anticuerpos anti-CD63, anti-betadistroglicano y anti-HSPA8 se diluyeron a 1/1000, 1/133 y 1/500 respectivamente en TBS-T-leche al 5%.
Los anticuerpos primarios para Serpin E2 (TS63, Invitrogen™), ERP57 (PDIA3, Merck-Millipore®), Desmina (Y66, Invitrogen™), proteína precursora de amiloide (abcam), CCDC80 (Invitrogen™) y Plectina (invitrogen™) se acoplaron de manera extemporánea con biotina utilizando el kit de marcaje de IgG de conejo Zenon™ BiotinXX siguiendo las instrucciones del fabricante. Brevemente, a 1 pg de anticuerpo se añadieron primero 5 pl de complejo, luego 5 pl de tampón de bloqueo. Los anticuerpos anti-Serpin E2 anti-ERP57, anti-Desmina, antiproteína precursora de amiloide, anti-CCDC80 y anti-Plectina se diluyeron a 1/1000 en TBS-T-leche al 5%.
Las membranas se incubaron con anticuerpos acoplados a biotina primarios diluidos durante 45 minutos a TA. A continuación, las membranas se enjuagaron 3 veces en TBS-T durante 5 min. A continuación, las membranas se incubaron durante 45 min a TA con estreptavidina-HRP (Invitrogen™) diluida a 1/250 en TBS-T-leche al 5%. A continuación, las membranas se enjuagaron 3 veces en TBS-T durante 5 min. Las membranas se revelaron utilizando el sustrato quimioluminiscente SuperSignal™ West Pico PLUS (Thermo Scientific™). Las imágenes se adquirieron cada 15 s durante 15 min utilizando el generador de imágenes UVP/ChemiDoc-It®2. Luego se analizaron las imágenes utilizando el software FIJI.
Análisis estadístico
Los valores son la media±SD. Se realizó un ANOVA de 1 factor seguido de una prueba posthoc de Tukey para evaluar las diferencias en los niveles de biomarcadores entre sujetos con ALS, sanos y con Parkinson. La correlación entre los niveles de biomarcadores y la progresión de ALSFRS se probó mediante un análisis de correlación de Pearson. El valor discriminante para las diferencias significativas se estableció en P < 0.05.
Ejemplo 1 - Identificación de la firma de ALS en células madre musculares
Las células madre musculares se extrajeron de biopsias musculares de pacientes y sujetos sanos (todos varones, de 30-67 años, n=5/6 por grupo), se purificaron (>80% de células miogénicas) y se diferenciaron durante 3 días en miotubos, en donde las muestras se analizaron utilizando la matriz GeneChip Human Exon 1.0ST (Affymetrix, Inc., Cleveland, OH); y (A) ilustra un gráfico de PCA que muestra una separación clara de los pacientes con ALS en el 2° componente (eje y), ALS: azul, SBMA: rosa, SMA-III/IV: rojo, Control: verde; (B) ilustra, de los 30 genes que tienen las firmas de expresión más fuertemente específicas de la ALS, muchos se han observado en localizaciones subcelulares exosomalmente relevantes, según el análisis realizado por la herramienta CellWhere.
Ejemplo 2 - Las células madre musculares de ALS se acumulan y secretan más exosomas que los controles
Haciendo referencia a la Figura 2(A), se muestra la inmunotinción para marcadores de exosomas de células madre musculares diferenciadas. Panel izquierdo: Imágenes representativas de células madre musculares cultivadas de pacientes con ALS y SMA-III/IV, y de controles sanos o sujetos denervados marcados para marcadores exosómicos (TSG101, CD63). Panel derecho: cuantificación de la señal de fluorescencia de CD63 normalizada por mionúcleo. (n=8, 4, 2, 5 cultivos celulares de diferentes sujetos con ALS, SMA-III/IV, polineuritis y control). ***, P < 0.001.
La Figura 2(B) ilustra que los exosomas son secretados en exceso por las células musculares de ALS. Panel izquierdo: imagen representativa de los sedimentos de exosomas del medio de cultivo. Los exosomas se extrajeron del medio de cultivo de 800000 células de ALS y sujetos de control. El experimento se ha repetido 8 veces en diferentes cultivos de células musculares de pacientes con ALS y sujetos de control. Panel derecho: microscopía electrónica que confirma la presencia de exosomas (vesículas en forma de copa) en los sedimentos. Los exosomas eran más numerosos en los sedimentos de ALS. Cabe destacar que la inmunotinción realizada en estas vesículas confirmó que son exosomas, ya que son positivas para CD63 y CD82.
La figura 2(C) muestra que los cuerpos multivesiculares de las células musculares de la ALS contienen más exosomas que los controles. Panel izquierdo: imágenes representativas de microscopía electrónica que muestran una acumulación de exosomas en cuerpos multivesiculares (MVB, resaltados en verde y naranja) de células musculares de ALS en comparación con los controles. Barra de escala = 1 pm. Panel derecho: cuantificación del número de vesículas similares a exosomas en los MVB. La prueba de Kolmogorov-Smirnov de dos muestras confirmó la impresión visual de que los MVB de las células musculares de ALS contienen un mayor número de vesículas similares a exosomas en comparación con el control (P < 0.05).
Ejemplo 3 - Los exosomas de las células musculares de ALS son tóxicos para miotubos y neuronas motoras sanas
Con referencia a la Figura 3(A), se muestra que los exosomas de ALS inducen la atrofia de las células musculares. Panel izquierdo: imágenes representativas de miotubos sanos tratados con exosomas de ALS o de control. Los miotubos se tiñen con cadena pesada de miosina (verde). Panel derecho: cuantificación del tamaño del dominio mionuclear (área de tinción de cadena pesada de miosina dividida por el número de núcleos). Los miotubos tratados con exosomas de ALS tienen un dominio mionuclear más pequeño (* P < 0.05; n=6/grupo).
La figura 3(B) ilustra los exosomas de ALS que inducen estrés celular. Cuantificación del número de ampollas por miotubos sanos a lo largo del tiempo tratados con ALS o exosomas de control (n=6/grupo). ANOVA de 2 factores con interacción, tiempo y tratamiento P < 0.001.
La Figura 3(C) ilustra que los exosomas de ALS inducen la muerte celular. Panel izquierdo: inmunotinción representativa de la inmunotinción H2-Ax de miotubos sanos tratados con exosomas de ALS o de control. Panel central: cuantificación de la señal H2-Ax por núcleo. Panel derecho: cuantificación de la pérdida de núcleos de neuronas motoras en cultivo.
Ejemplo 4 - Identificación de contenidos exosomales específicos como biomarcadores de ALS
Los contenidos exosomales incluyen varios tipos de biomoléculas, de las cuales aquellas potencialmente involucradas en funciones de señalización incluyen proteínas y sus péptidos, y ARN no codificantes. Se obtuvieron células madre musculares (mioblastos primarios) de los músculos deltoides de pacientes con ALS y controles sanos y se cultivaron para formar miotubos diferenciados. Los exosomas se purificaron del medio de cultivo de 10 millones de células musculares después de 3 días de cultivo, usando un reactivo de aislamiento de exosomas total (Invitrogen™ Life technologies™). Para identificar el contenido de los exosomas, se llevaron a cabo perfiles de ARN proteómico y no codificante de exosomas purificados.
Biomarcadores de proteínas
Los datos protómicos de espectrometría de masas identificaron péptidos de 105 proteínas (Tabla 1) que tenían niveles que aumentaban constantemente en los exosomas musculares de ALS (n=3) en comparación con exosomas musculares de control sanos (n=3).
Dado que las muestras proteómicas se normalizaron respecto a la concentración de proteínas, también se observó que las proteínas con niveles constantemente altos tanto en exosomas de músculos de ALS como sanos también pueden ser buenos biomarcadores, ya que estas aún pueden estar elevadas en la sangre de ALS por volumen debido a la observación de que los exosomas musculares son secretados en mayor abundancia de los miotubos de ALS que de los controles sanos. De esta manera, se identificaron otros 3 candidatos que tenían niveles constantemente altos en exosomas tanto de músculos de ALS como sanos, y tenían otras características de mecanismo de interés. En concreto, estos fueron DES, APP y DAG1. APP es el componente principal de las placas amiloides en la enfermedad de Alzheimer. DES se observa en niveles altos en todos los tipos de tejidos musculares, pero está completamente ausente en otros tejidos. DAG1 es un componente principal del complejo distroglicano, que está implicado en varias distrofias musculares.
Tabla 1. Lista de 108 proteínas de las cuales por espectrometría de masas se identificó que los péptidos eran constantemente elevados en exosomas de células musculares de ALS en comparación con controles sanos, o que tenían constantemente niveles altos en exosomas tanto de músculo de ALS como sano, y tenían otras características del mecanismos de interés para la patología. La primera columna da las ID de proteína estándar usadas por Uniprot (http://www.uniprot.org/) y los nombres de los genes correspondientes en la columna 2. Las columnas 3-5 y 6-8 muestran los niveles de péptidos en las muestras de ALS y de controles sanos, respectivamente. La columna 9 indica la diferencia en las cantidades medianas de los péptidos de proteínas en la ALS en comparación con el control y la columna 10 clasifica las proteínas basado en los valores de la columna 9.
Figure imgf000012_0001
043707 ACTN4 0 3 62 0 0 0 3 16 P29692 EEF1D 3 1 3 1 1 1 2 25 P60174 TPI1 3 2 6 1 1 1 2 25 Q04837 SSBP1 2 1 2 1 0 0 2 25 P28062 PSMB8 2 2 1 1 0 0 2 25 P07602 PSAP 2 0 2 0 0 0 2 25 Q 99436 P S M B 7 2 1 3 1 0 0 2 25 P52907 C AP 2A1 2 0 3 0 0 0 2 25
Q 06830 PRDX1 2 0 3 0 0 0 2 25
Q 7Z5L7 PO D N 2 1 4 0 1 0 2 25 P03956 MMP1 2 4 0 0 0 0 2 25 P80303 N U C B 2 3 3 7 1 0 2 2 25 P09429 HMGB1 7 2 0 0 0 0 2 25
Q 09666 A H N A K 2 0 8 0 0 0 2 25
Q 4ZH G 4 FNDC1 2 3 9 1 0 2 2 25
043583 D EN R 1 1 0 0 0 0 1 39 P01210 PEN K 1 1 0 0 0 0 1 39 P31949 S100A11 1 1 0 0 0 0 1 39 P47914 R P L29 1 1 0 0 0 0 1 39 P61353 R P L27 1 1 0 0 0 0 1 39 P62917 RPL8 1 1 0 0 0 0 1 39
Q 01130 S R S F2 1 1 0 0 0 0 1 39
Q 15427 S F 3B 4 1 1 0 0 0 0 1 39
Q 6U W P 8 S B SN 1 1 0 0 0 0 1 39
Q 9N X 58 LYAR 1 1 0 0 0 0 1 39
Q 9Y266 N U D C 1 1 0 0 0 0 1 39
075462 CRLF1 1 0 1 0 0 0 1 39 P01137 TGFB1 1 0 1 0 0 0 1 39 P04040 C A T 1 0 1 0 0 0 1 39 P07339 C T S D 1 0 1 0 0 0 1 39
P 09622 DLD 1 0 1 0 0 0 1 39
043491 E P B 41L2 1 0 1 0 0 0 1 39 P28065 P S M B 9 1 0 1 0 0 0 1 39 P62263 RPS14 1 0 1 0 0 0 1 39 P62424 R P L7A 1 0 1 0 0 0 1 39
Q 5K U 26 C 0 L E C 12 1 0 1 0 0 0 1 39
Q 8TA Q 2 S M A R C C 2 1 0 1 0 0 0 1 39 P37802 T A G LN 2 0 1 1 0 0 0 1 39 P50991 C C T4 0 1 1 0 0 0 1 39
Q 12797 A S P H 0 1 1 0 0 0 1 39
Q 13098 GPS1 0 1 1 0 0 0 1 39
Q 14004 C D K 13 0 1 1 0 0 0 1 39
Q 99962 S H 3G L2 0 1 1 0 0 0 1 39 P69905 HBA1 1 1 2 0 0 1 1 39 P27695 APEX1 1 2 1 1 0 0 1 39 P28074 P S M B 5 1 2 0 0 0 0 1 39 P10599 TXN 1 0 2 0 0 0 1 39 P30530 AXL 1 0 2 0 0 0 1 39
P62241 RPS8 1 0 2 0 0 0 1 39
Q01105 SET 1 0 2 0 0 0 1 39
P62269 RPS18 2 1 1 0 0 1 1 39
P23528 CFL1 2 1 2 1 0 1 1 39
Q6E0U4 DMKN 2 1 0 0 0 0 1 39
P35268 RPL22 2 0 1 0 0 0 1 39
Q02878 RPL6 2 0 1 0 0 0 1 39
Q96AY3 FKBP10 2 0 1 0 0 0 1 39
P43034 PAFAH1B1 0 1 2 0 0 0 1 39
Q99584 S100A13 0 1 2 0 0 0 1 39
P60900 PSMA6 0 2 1 0 0 0 1 39
P05121 SERPINE1 1 1 3 0 0 0 1 39
Q14444 CAPRIN1 1 1 3 0 0 0 1 39
Q16181 SEPT7 1 3 1 1 0 0 1 39
P04004 VTN 1 0 3 0 0 0 1 39
Q13822 ENPP2 1 0 3 0 0 0 1 39
Q92859 NE01 1 0 3 0 0 0 1 39
060832 DKC1 3 1 0 0 0 0 1 39
P36222 CHI3L1 3 1 0 0 0 0 1 39
P84550 SKOR1 3 1 0 0 0 0 1 39
Q08945 SSRP1 3 1 0 0 0 0 1 39
P08572 COL4A2 1 1 4 0 0 0 1 39
P15531 NME1 2 2 4 1 0 1 1 39
P00751 CFB 1 0 4 0 0 0 1 39
P41091 EIF2S3 0 1 4 0 0 0 1 39
Q16555 DPYSL2 1 1 5 0 0 0 1 39
Q14980 NUMA1 1 0 5 0 0 0 1 39
Q86UP2 KTN1 0 1 5 0 0 0 1 39
Q9BWS9 CHID1 1 0 7 0 0 0 1 39
Q12805 EFEMP1 1 0 8 0 0 0 1 39
P63104 YWHAZ 1 1 9 0 0 0 1 39
P07195 LDHB 0 1 10 0 0 0 1 39
000560 SDCBP 2 1 12 1 1 0 1 39
Q9Y490 TLN1 0 1 18 0 0 0 1 39
P17661 DES 35 4 34 37 40 4 Solapamiento 40
P05067 APP 13 5 11 7 6 3 Solapamiento 40
Q14118 DAG1 6 2 1 6 4 2 Solapamiento 40
Tabla 2. Lista de 25 proteínas de las cuales por espectrometría de masas se identificó que los péptidos eran constantemente elevados en exosomas de células musculares de ALS en comparación con controles sanos, o que tenían constantemente niveles altos en exosomas tanto de músculo de ALS como sano, y tenían otras características del mecanismos de interés para la patología. La primera columna da las ID de proteína estándar usadas por Uniprot (http://www.uniprot.org/) y los nombres de los genes correspondientes en la columna 2. Las columnas 3-5 y 6-8 muestran los niveles de péptidos en las muestras de ALS y de controles sanos, respectivamente. La columna 9 indica la diferencia en las cantidades medianas de los péptidos de proteínas en la ALS en comparación con el control.
Figure imgf000015_0001
Q 76M 96 C C D C 80 19 3 57 2 2 0 17
P 11142 H SPA8 8 11 21 0 0 0 11
P07093 S E R P IN E 2 11 5 16 1 3 0 10
Q 15149 P LEC 25 24 52 15 23 3 10
P11021 H SPA5 11 9 27 2 4 1 9
P19338 N CL 9 2 9 1 0 0 9
P09493 TPM1 8 0 11 0 0 0 8
P24821 TNC 9 2 35 1 1 0 8
P17936 IG FB P 3 9 3 8 3 1 2 6
P20908 COL5A1 34 11 12 9 4 8 4
Q 9Y 240 C LE C 11A 8 5 7 3 4 1 4
P46821 M A P 1B 4 0 6 0 0 0 4
Q 13765 N A C A 6 1 4 0 1 0 4
P25787 P SM A2 4 2 7 1 0 0 4
P46777 R PL5 4 3 4 1 1 1 3
P60660 M Y L6 3 3 2 1 0 0 3
P07858 CTSB 4 0 3 0 0 0 3
P10809 HSPD1 5 0 3 0 0 0 3
Q 6N Z I2 P TR F 3 0 9 0 0 0 3
Q 02818 NUCB1 4 1 12 0 1 1 3
P13667 PDIA4 3 3 16 1 0 0 3
P07237 P4HB 3 2 29 0 0 0 3
043707 A C T N 4 0 3 62 0 0 0 3
Q 14444 CAPRIN1 1 1 3 0 0 0 1
P17661 DES 35 4 34 37 40 4 Solapamiento
P05067 APP 13 5 11 7 6 3 Solapamiento
Q14118 DAG1 6 2 1 6 4 2 Solapamiento
Biomarcadores de ARN no codificante
El perfil de las especies de ARN no codificantes se llevó a cabo mediante micromatrices (usando Affymetrix GeneChip® miRNA 4.0 Array) en exosomas de ALS (n=5) en comparación con controles sanos (n=5). Después del control de calidad y la normalización (véase las Fig. 4-6), el ANOVA de una vía de datos no emparejados identificó 14 ARN no codificantes que estaban significativamente desregulados en la ALS frente a controles sanos (Tabla 3: 12 regulados por aumento en ALS, 2 regulados por disminución en ALS). De estos, 13 son microARN (indicados por sus ID de miRBase hsa-*** y números de acceso de MIMAT***), y 1 es el ARN nucleolar pequeño snoU13 (ENSG00000239126).
Tabla 3. Lista de 14 ARN no codificantes que se identificó que estaban significativamente desregulados en exosomas de células musculares de ALS en comparación con controles sanos. Se indica el cambio y los valores p para ANOVA en las columnas de más a la derecha.
Figure imgf000016_0001
2 0 5 3 3 7 3 5 E N S G 0 0 0 0 0 2 3 9 1 2 6 E N S G 0 0 0 0 0 2 3 9 1 2 6 1 1 . 8 9 3 . 0 6 - 2 . 2 4 0 . 0 0 5 7 0 2
2 0 5 1 7 6 9 3 h s a - m ¡ R - 4 3 1 3 M I M A T 0 0 1 6 8 6 5 3 . 4 5 2 . 0 9 2 . 5 7 0 . 0 0 6 7 3 9
2 0 5 0 3 7 9 8 h s a - m ¡ R - 4 9 3 - 5 p M I M A T 0 0 0 2 8 1 3 4 . 9 9 2 . 2 8 6 . 5 0 . 0 1 3 5 0 2
2 0 5 0 1 2 8 6 h s a - m i R - 1 5 1 a - 5 p M I M A T 0 0 0 4 6 9 7 1 0 . 9 6 9 . 9 2 . 0 8 0 . 0 1 6 7 3
2 0 5 0 0 4 2 4 h s a - m ¡ R - 3 0 d - 5 p M I M A T 0 0 0 0 2 4 5 8 . 6 4 7 . 1 3 2 . 8 5 0 . 0 2 3 0 6 7
2 0 5 0 1 2 5 0 h s a - m ¡ R - 3 8 2 - 5 p M I M A T 0 0 0 0 7 3 7 1 0 . 0 9 8 . 9 2 . 2 8 0 . 0 2 3 9 0 2
2 0 5 0 0 1 6 3 h s a - m ¡ R - 3 0 a - 3 p M I M A T 0 0 0 0 0 8 8 7 . 9 3 6 . 7 9 2 . 2 0 . 0 2 8 0 5 3
2 0 5 0 0 7 1 3 h s a - l e t - 7 g - 5 p M I M A T 0 0 0 0 4 1 4 8 . 9 1 7 . 4 5 2 . 7 4 0 . 0 2 8 4 4 2
2 0 5 0 5 7 9 9 h s a - m ¡ R - 3 7 4 b - 5 p M I M A T 0 0 0 4 9 5 5 2 . 8 7 1 . 7 2 . 2 5 0 . 0 3 0 7 4 8
20500141 hsa-m¡R-21-5p MIMAT0000076 9.31 7.892.68 0.033918
20500123 hsa-let-7f-5p MIMAT0000067 6.99 4.944.13 0.040776
20517915 hsa-miR-3663-5p MIMAT0018084 2 3.06-2.080.044248
20504419 hsa-m¡R-411-3p MIMAT0004813 3.68 2.1 2.97 0.046014
Ejemplo 6 - Comparación de diferentes biomarcadores frente a diferentes grupos de enfermedades
Se recogieron muestras de sangre de 8 pacientes con ALS, 11 sujetos sanos y 9 pacientes con Parkinson. Las características de los pacientes seleccionados se presentan en la Tabla 4. Los exosomas se extrajeron del suero y se usaron para el análisis de transferencia de puntos. Los niveles de DAG1 en exosomas aislados del suero sanguíneo de pacientes con enfermedad de ALS, enfermedad de Parkinson (control de enfermedad) o de sujetos sanos se presentan en la Figura 7, y los niveles de HSPA8 en exosomas aislados del suero sanguíneo de pacientes con enfermedad de ALS, enfermedad de Parkinson (control de enfermedad) o de sujetos sanos se presentan en la Figura 8. Los niveles de cada biomarcador en exosomas aislados del suero sanguíneo de pacientes con ALS, normalizados frente a la cantidad de exosomas del suero sanguíneos totales (CD63) se representaron gráficamente frente a la tasa de progresión de la patología (delta ALSFRS-R) y se presentan en la Figura 9.
Tabla 4. Lista de características de los pacientes
Figure imgf000017_0001


Claims (8)

REIVINDICACIONES
1. Un método para diagnosticar o pronosticar la esclerosis lateral amiotrófica en un sujeto, comprendiendo el método las etapas de:
(a) determinar el nivel cuantitativo o cualitativo de uno o más biomarcadores en una muestra biológica del sujeto; y
(b) diagnosticar o pronosticar la esclerosis lateral amiotrófica en el sujeto basándose en el nivel cuantitativo o cualitativo del biomarcador en la muestra biológica; en donde el biomarcador es DAG1.
2. Un método según la reivindicación 1, en donde el biomarcador es un gen.
3. Un método según la reivindicación 1, en donde el biomarcador es una proteína codificada por el gen DAG1.
4. Un método según la reivindicación 3, en donde el biomarcador es una proteína que tiene un número de acceso de UniProtKB/Swiss-Prot Q14118.
5. Un método según una cualquiera de las reivindicaciones 1-4, en donde la etapa de diagnóstico o pronóstico (b) comprende comparar el nivel cuantitativo o cualitativo del biomarcador en la muestra biológica del sujeto con el nivel cuantitativo o cualitativo del respectivo biomarcador en una muestra normal.
6. Un método según la reivindicación 5, en donde un nivel cuantitativo o cualitativo del biomarcador en la muestra biológica del sujeto mayor que el nivel cuantitativo o cualitativo del respectivo biomarcador en una muestra normal es indicativo de la presencia cuantitativa o cualitativa de esclerosis lateral amiotrófica.
7. Un método según una cualquiera de las reivindicaciones 1-6, en donde la muestra biológica se selecciona de sangre entera, suero, plasma, orina, líquido intersticial, líquido peritoneal, hisopo de cuello uterino, lágrimas, saliva, hisopo bucal, piel, tejido cerebral y líquido cefalorraquídeo.
8. Un método según una cualquiera de las reivindicaciones 1-7, en donde la muestra biológica es sangre completa.
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