FR2514367A1 - Procede pour la detection de germes pathogenes dans des fluides par filtration sur des immunoadsorbants, et application a la determination de la potabilite d'une eau - Google Patents
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Abstract
L'INVENTION CONCERNE UN PROCEDE POUR LA DETECTION DE GERMES PATHOGENES DANS LES FLUIDES. CE PROCEDE CONSISTE: -A FILTRER LE FLUIDE A ANALYSER SUR UN IMMUNOADSORBANT SPECIFIQUE DU GERME RECHERCHE; -A CARACTERISER LES GERMES RETENUS SUR L'IMMUNOADSORBANT. APPLICATION: DETERMINATION DE LA POTABILITE DE L'EAU.
Description
La présente invention concerne un procédé pour la détection de germes pathogènes dans des fluides par filtration sur des immunoadsorbants. Elle concerne plus particulièrement la recherche de bacteries et de particules virales dans l'eau, notamment en vue d'en déterminer la potabilité.
La potabilité bactériologique d'une eau est fonction de la présence ou non de certains germes d'origine fécale. Pour l'organisation Mondiale de la Santé, une eau est considérée comme non dangereuse pour la santé Si elle ne contient pas de germes d'origine fécale. Il est bien évident qu'une eau sera d'autant moins dangereuse qu'elle ne contient pas de véritables germes pathogènes.
Jusqu'à présent, pour déclarer une eau potable, le bactériologiste ne recherche pas les germes pathogènes, mais met en évidence les germes de contamination fécale.
Selon la technique utilisée, il recherche les germes soit dans 1 ml, technique par dilution, soit dans 200 ml ou plus, par filtration sur membrane.
La chance de rencontrer des germes pathogènes dans 1 ml est quasiment nulle. Elle augmente avec la quantité de liquide, mais est limitée par le fait que de nombreux autres germes seront présents sur la membrane, ne permettant plus un isolement des germes pathogènes ou des germes de contamination fécale. A titre de références bibliographiques dans ce domaine on peut citer:
Pratique du Laboratoire, Masson et Cie, 399-422.
Pratique du Laboratoire, Masson et Cie, 399-422.
Report of the European Regional Study Group on the
developpment of international Standard of drinking
water quality and approved methods for the examina
tion of water OMS Genève, 1956.
developpment of international Standard of drinking
water quality and approved methods for the examina
tion of water OMS Genève, 1956.
On a maintenant mis au point une technique simple permettant de rechercher directement, dans les fluides, par exemple les liquides biologiques, les principaux germes responsables de maladies d'origine fécale, tels que notamment Salmonella, Escherichia coli K 88 et E. Coli K 99 entéropathogènes, Vibrio cholerae biotype el Tor, sérotype
Ogawa, souche Mz et germes similaires.
Ogawa, souche Mz et germes similaires.
Le procédé de détection de germes pathogènes dans les fluides, selon l'invention, consiste:
1) à filtrer le fluide à analyser sur un immunoadsorbant spécifique du germe recherché;
2) à caractériser les germes retenus sur 1'immunoadsorbant.
1) à filtrer le fluide à analyser sur un immunoadsorbant spécifique du germe recherché;
2) à caractériser les germes retenus sur 1'immunoadsorbant.
Dans la présente description, on désigne par "fluide" tout fluide susceptible de contenir des germes pathogènes, tel que par exemple l'eau ou les liquides biologiques provenant d'êtres vivants, par exemple l'urine.
La première étape dru procédé de l'invention consiste en une filtration, sur un immunoadsorbant, du fluide à analyser. L'immunoadsorbant mis en oeuvre doit être spécifique du germe recherché.
L'immunoadsorbant mis en oeuvre selon l'invention est un support insoluble susceptible de constituer un élément de filtration pour un fluide et sur lequel sont fixés, par liaison chimique, des anticorps spécifiques du germe pathogène dont on souhaite déterminer la présence dans un fluide.
Le procédé selon l'invention convient pour la détection de tout germe pathogène qui secrète des facteurs d'attachement spécifique de groupes antigéniques, lesquels provoquent, par immunisation d'un animai, tel que le lapin par exemple, des anticorps spécifiques.
Le support de l'immunoadsorbant est en général un polymère insoluble, le plus souvent sous la forme d'un gel. A titre d'exemple de tels polymères on citera les polymères d'acrylamide, d'agarose, d'acrylamide-agarose
Le polymère connu sous a dénomination commerciale ULTROCEL
ACA 34 (Industrie Biologique Française), qui est un gel de polyacrylamide-agarose, est particulièrement approprié aux fins de l'invention. I1 s'agit d'un gel dont les caractéristiques sont les suivantes:
3% acrylamide, 4% agarose et 60 à 140 vm de
diamètre de particule.
Le polymère connu sous a dénomination commerciale ULTROCEL
ACA 34 (Industrie Biologique Française), qui est un gel de polyacrylamide-agarose, est particulièrement approprié aux fins de l'invention. I1 s'agit d'un gel dont les caractéristiques sont les suivantes:
3% acrylamide, 4% agarose et 60 à 140 vm de
diamètre de particule.
Le support insoluble couplé avec des anticorps spécifiques du germe recherché constitue l'immunoadsorbant mis en oeuvre selon l'invention. Le couplage des anticorps spécifiques sur le support soluble est effectué selon des techniques classiques de couplage, mettant en oeuvre des agents de couplage connus, tels que le glutaraldéhyde, la benzoquinone et autres agents similaires. Pour plus de détail sur les techniques de couplage pour la réalisation d'immunoadsorbants on pourra se référer à l'article ci-après: polyacrylamide beads for the preparation of effective immunoadsorbants - J. Immun. Meth., 1971, 11, 29-33.
On indiquera ci-après le procédé de couplage au glutaraldéhyde. Ce procédé consiste à activer le support insoluble avec le glutaraldéhyde et à mettre ensuite en contact le gel ainsi activé avec une solution des anticorps spécifiques à fixer.
Les anticorps spécifiques utilisés pour la fabrication des immunoadsorbants mis en oeuvre dans le procédé de l'invention sont obtenus par immunisation d'animaux, par exemple de lapin, avec un germe pathogène ou une fraction de celui-ci. L'isolement de l'anticorps spécifique à partir du sérum ainsi obtenu se fait par des méthodes classiques bien connues de l'homme de l'art.
Après filtration du fluide à tester sur l'immunoadsorbant contenant l'anticorps spécifique du germe recherché, on procède à la caractérisation, ce qui constitue la seconde étape du procédé de l'invention, des facteurs antigéniques retenus par 1'immunoadsorbant, lesquels sont spécifiques du germe recherché. Cette caractérisation est effectuée par des moyens classiques, par exemple, par dilution du gel et, en milieu liquide sélectif, culture sur gélose, caractérisation biochimique et sérologique du germe (agglutination).
Le procédé convient en particulier pour la mise
en évidence dans l'eau de bactéries, telles qu'Escherichia
coli pathogène, Salmonella et Vibrio Cholerae, et de parti
cules virales, par exemple celles du virus de la poliomyé
lite ou du virus de l1encéphalo-myocardite. I1 permet donc
de déterminer aisément la potabilité d'une eau.
en évidence dans l'eau de bactéries, telles qu'Escherichia
coli pathogène, Salmonella et Vibrio Cholerae, et de parti
cules virales, par exemple celles du virus de la poliomyé
lite ou du virus de l1encéphalo-myocardite. I1 permet donc
de déterminer aisément la potabilité d'une eau.
On peut également déterminer, grâce au procédé
de l'inventionr d'une façon très rapide, si un sujet vivant
est porteur de germes pathogènes en filtrant un liquide
biologique de celui-ci sur un immunoadsorbant spécifique
du germe susceptible d'être présent chez ce sujet.
de l'inventionr d'une façon très rapide, si un sujet vivant
est porteur de germes pathogènes en filtrant un liquide
biologique de celui-ci sur un immunoadsorbant spécifique
du germe susceptible d'être présent chez ce sujet.
Le procédé de l'invention présente les avanta
ges ci-après par rapport aux techniques classiques: il
permet une recherche directe sélective du germe entérique
pathogène et non plus des germes témoins de décontamination
fécale.
ges ci-après par rapport aux techniques classiques: il
permet une recherche directe sélective du germe entérique
pathogène et non plus des germes témoins de décontamination
fécale.
L'invention va être maintenant décrite par les
exemples non limitatifs ci-après.
exemples non limitatifs ci-après.
EXEMPLE 1
Analyse d'eauxcontaminées par des germes de
Vibrio Cholerae,Salmonella et Escherichia coli
Les expériences ci-après ont été réalisées avec des eaux contaminées artificiellement par des germes pathogènes ou avec des eaux brutes. Les souches bactériennes utilisées pour la contamination artificielle de l'eau et l'obtention des immunoadsorbants sont indiquées ci-après:
A. Souches bactériennes
Les souches utilisées provenaient de la collection de 1'Unité du Choléra / Institut pasteur, Paris . 7
Elles étaient toutes fraîchement isolées du sang du coeur de souris, après injection intrapéritonéale de la souche virulente. L'isolement et le repiquage pour chacun des germes ont été effectués sur gélose ordinaire, à l'étuve à 370C pendant 12 heures.
Analyse d'eauxcontaminées par des germes de
Vibrio Cholerae,Salmonella et Escherichia coli
Les expériences ci-après ont été réalisées avec des eaux contaminées artificiellement par des germes pathogènes ou avec des eaux brutes. Les souches bactériennes utilisées pour la contamination artificielle de l'eau et l'obtention des immunoadsorbants sont indiquées ci-après:
A. Souches bactériennes
Les souches utilisées provenaient de la collection de 1'Unité du Choléra / Institut pasteur, Paris . 7
Elles étaient toutes fraîchement isolées du sang du coeur de souris, après injection intrapéritonéale de la souche virulente. L'isolement et le repiquage pour chacun des germes ont été effectués sur gélose ordinaire, à l'étuve à 370C pendant 12 heures.
Les souches ci-après ont été utilisées:
Vibrio cholerae el tor souches Marquez Ogawa
Vibrio cholerae el tor souches 9292 Inaba
Salmonella typhimurium souche C5
Escherichia coli K88 Oudjine
Escherichia coli K99 V5.
Vibrio cholerae el tor souches Marquez Ogawa
Vibrio cholerae el tor souches 9292 Inaba
Salmonella typhimurium souche C5
Escherichia coli K88 Oudjine
Escherichia coli K99 V5.
B. Préparation des anticorps spécifiques pour la fabrica
de 1 'immunoadsorbant
Les anticorps ont été obtenus à partir de sérums de lapins immunisés avec l'une des souches ci-dessus.
de 1 'immunoadsorbant
Les anticorps ont été obtenus à partir de sérums de lapins immunisés avec l'une des souches ci-dessus.
a. le sérum anti-vibrio cholerae a été obtenu par immunisation de lapin avec la fraction Ch 1+2 (........
provenant de la souche Marquez el tor Ogawa. L'anti-sérum obtenu avait un pouvoir vibriocide de 1/40180 et agglutinant de 1/5120. En diffusion en gélose, il n'apparaissait qu'une bande de précipité antigène-anticorps, les ultra-sonats complets de toutes les souches de V. cholérique agglutinables par le sérum polyvalent anticholérique el tor ou classique.
L'antisérum n'agglutinait pas les vibrions Nag et halophiles.
b. les antisérums anti-Salmonella typhimurium
C5, anti-Escherichia coli K88 et K99 ont été obtenus en injectant au lapin les fractions Tm 1+2 Ec 1+2 K88 Ec 1+2
K99. La spécificité de ces antisérums a été testée par agglutination immunofluorescence et diffusion en gélose.
C5, anti-Escherichia coli K88 et K99 ont été obtenus en injectant au lapin les fractions Tm 1+2 Ec 1+2 K88 Ec 1+2
K99. La spécificité de ces antisérums a été testée par agglutination immunofluorescence et diffusion en gélose.
C. Préparation des immunoadsorbants
Les anticorps ont été isolés des sérums par précipitation au sulfate d'ammonium (408). Les anticorps ont été ensuite couplés à des gels de polyacrylamideagarose ACA 34 activés au glutaraldéhyde. La méthode de couplage était la suivante: "1' Ultrogel ACA 34" (Industrie
Biologique Française) a été lavé avec de l'eau distillée par décantations successives, jusqu'à ce que le surnageant soit complètement clair. Le gel a été ensuite incubé une nuit dans un tampon phosphate 0,1 M pH 7,4 contenant 5% de glutaraldéfiyde (Merck, Darmstadt, RFA), puis lavé avec de l'eau distillée par décantation ou centrifugations successives jusqu'à ce qu'une odeur de glutaraldéhyde soit décelable et que la densité optique à 280 nm du surnageant soit 0.Le gel activé a été mis en contact avec une solution de 5 mg/ml d'anticorps dans du PBS (1 volume de gel pour 1 volume de la solution d'anticorps) et laissé sous agitation rotative pendant une nuit à température du laboratoire. Le lendemain, le gel a été lavé à 40C par centrifugations successives dans du PBS jusqu'à ce que la densité optique à 280 nm soit 0. I1 a ensuite été remis en suspension (volume à volume) dans une solution de lysine 0,1 M pH 7,4 et laissé sous agitation rotative pendant 24 heures à température du laboratoire ou 24 heures à 40C.
Les anticorps ont été isolés des sérums par précipitation au sulfate d'ammonium (408). Les anticorps ont été ensuite couplés à des gels de polyacrylamideagarose ACA 34 activés au glutaraldéhyde. La méthode de couplage était la suivante: "1' Ultrogel ACA 34" (Industrie
Biologique Française) a été lavé avec de l'eau distillée par décantations successives, jusqu'à ce que le surnageant soit complètement clair. Le gel a été ensuite incubé une nuit dans un tampon phosphate 0,1 M pH 7,4 contenant 5% de glutaraldéfiyde (Merck, Darmstadt, RFA), puis lavé avec de l'eau distillée par décantation ou centrifugations successives jusqu'à ce qu'une odeur de glutaraldéhyde soit décelable et que la densité optique à 280 nm du surnageant soit 0.Le gel activé a été mis en contact avec une solution de 5 mg/ml d'anticorps dans du PBS (1 volume de gel pour 1 volume de la solution d'anticorps) et laissé sous agitation rotative pendant une nuit à température du laboratoire. Le lendemain, le gel a été lavé à 40C par centrifugations successives dans du PBS jusqu'à ce que la densité optique à 280 nm soit 0. I1 a ensuite été remis en suspension (volume à volume) dans une solution de lysine 0,1 M pH 7,4 et laissé sous agitation rotative pendant 24 heures à température du laboratoire ou 24 heures à 40C.
Après lavage dans du tampon phosphate (PBS), le gel a été traité avec un tampon HC1 - glycine pH 2,8, pendant 15 mn à 40C, puis neutralisé avec une solution de K2M PO4 0,2 M et à nouveau lavé. A ce stade, l'immunoadsorbant a pu être conservé dans du PBS contenant 0,02% d'azide de sodium.
Les différents immunoadsorbants ont été introduits dans des colonnes en plastique de 0,8 x 3 cm. Ces colonnes ont été, avant l'expérience, stérilisées en passant sur les colonnes de l'eau physiologique contenant des radicaux libres (mélange acide ascorbique-sulfate de cuivre).
D. Analyse et résultats
Les expériences ont été réalisées en filtrant sur ces colonnes 500 ml d'eaux contaminées, soit des eaux brutes de l'Oise, soit de l'eau physiologique (tamponée à pH 7,2 par un tampon phosphate), artificiellement contaminée par les mêmes germes. La vitesse de filtration était d'environ 100 ml/heure. Après filtration, les colonnes ont été lavées par passage de 100 ml d'eau physiologique. Dans une première série d'expériences, on a filtre des eaux "non contaminées" par environ 103V. cholerae, Salmonella typhimurium, E. coli K 88 ou E. coli K99, respectivement sur colonne Ch 1+2 (gels couplés aux anticorps anti-Ch 1+2), colonne Tm 1+2, colonne Ec 1+2 K88 et colonne Ec 1+2 K99. Dans une deuxième série d'expériences, on a filtré sur chaque colonne de l'eau contenant un mélange des 4 germes (103 environ de chaque germe).
Les expériences ont été réalisées en filtrant sur ces colonnes 500 ml d'eaux contaminées, soit des eaux brutes de l'Oise, soit de l'eau physiologique (tamponée à pH 7,2 par un tampon phosphate), artificiellement contaminée par les mêmes germes. La vitesse de filtration était d'environ 100 ml/heure. Après filtration, les colonnes ont été lavées par passage de 100 ml d'eau physiologique. Dans une première série d'expériences, on a filtre des eaux "non contaminées" par environ 103V. cholerae, Salmonella typhimurium, E. coli K 88 ou E. coli K99, respectivement sur colonne Ch 1+2 (gels couplés aux anticorps anti-Ch 1+2), colonne Tm 1+2, colonne Ec 1+2 K88 et colonne Ec 1+2 K99. Dans une deuxième série d'expériences, on a filtré sur chaque colonne de l'eau contenant un mélange des 4 germes (103 environ de chaque germe).
Les germes. cholerae retenus sur les colonnes ont été caractérisés en diluant 1 ml de gel dans 9 ml d'eau peptonée hypersalée. Après agitation soigneuse au Vortex, ce mélange a été dilué en série et chaque dilution étalée sur botes de Petri. Pour caractériser les germes S.
typhimurium, E. coli K88 et K99, 1 ml de gel a été dilué dans 9 ml d'eau physiologique tamponnée, agité soigneusement au Vortex et dilué en série comme précédemment, avant étalement sur la gélose. Les résultats sont résumés dans le tableau I ci-après. Les différents germes n'ont eté retenus que sur leur propre gel. L'analyse quantitative a été difficile, compte tenu de la grande vitesse de division-des germes. Néanmoins, l'analyse et la caractérisation des germes contenus dans l'eau après filtration sur les colonnes a montré que la plupart des 103 germes étaient retenus et retrouvés après passage sur leur propre gel, c'est-à-dire le gel spécifique dudit germe.
TABLEAU I
<tb> <SEP> Germes <SEP> retrouvés <SEP> Colonnes
<tb> <SEP> Ch <SEP> 1+2 <SEP> Tm <SEP> 1+2 <SEP> Eu <SEP> 1+2 <SEP> Ec <SEP> 1+2
<tb> V. <SEP> cholerae <SEP> +
<tb> S. <SEP> typhimurium <SEP> - <SEP> <SEP> + <SEP> i <SEP> <SEP> - <SEP>
<tb> E. <SEP> coli <SEP> K88 <SEP> - <SEP> <SEP> + <SEP> * <SEP>
<tb> E. <SEP> coli <SEP> K99 <SEP> ~ <SEP> ~ <SEP> ~ <SEP> + <SEP>
<tb>
EXEMPLE 2
Analyse d'eaux contaminées par des particules virales du virus de la poliomyélite (type II) et du virus de l'encéphalomyocardite (EMC)
Cet exemple montre que le procédé de l'invention est applicable aux particules virales.
<tb> <SEP> Ch <SEP> 1+2 <SEP> Tm <SEP> 1+2 <SEP> Eu <SEP> 1+2 <SEP> Ec <SEP> 1+2
<tb> V. <SEP> cholerae <SEP> +
<tb> S. <SEP> typhimurium <SEP> - <SEP> <SEP> + <SEP> i <SEP> <SEP> - <SEP>
<tb> E. <SEP> coli <SEP> K88 <SEP> - <SEP> <SEP> + <SEP> * <SEP>
<tb> E. <SEP> coli <SEP> K99 <SEP> ~ <SEP> ~ <SEP> ~ <SEP> + <SEP>
<tb>
EXEMPLE 2
Analyse d'eaux contaminées par des particules virales du virus de la poliomyélite (type II) et du virus de l'encéphalomyocardite (EMC)
Cet exemple montre que le procédé de l'invention est applicable aux particules virales.
A. Préparation des immunoadsorbants
On a opéré sensiblement selon le mode opératoire défini à l'exemple 1 en utilisant des anticorps anti-Polio II isolés d'un lapin hyperimmunisé avec le virus Polio II.
On a opéré sensiblement selon le mode opératoire défini à l'exemple 1 en utilisant des anticorps anti-Polio II isolés d'un lapin hyperimmunisé avec le virus Polio II.
L'immunisation des lapins a été réalisée par injections intraveineuse et intrapéritonéale qui permettent d'obtenir un taux élevé d'anticorps.
Le titre de l'antisérum en séro-neutralisation était de 1/12 800 contre 103 DL 50 de virus. On a ainsi obtenu un immunoadsorbant anti-Polio II.
De même on a préparé un immunoadsorbant anti-S4C en utilisant sensiblement le même mode opératoire que cidessus et des anticorps anti-EMC isolés d'une ascite de souris immunisée contre le virus EMC par injection intrapéritonéale chez la souris.
Le titre de l'ascite était de 1/25 600 contre 103 DL 50 de virus.
B. Analyse
De 20 à 100 ml d'eau physiologique contenant des particules virales ont été filtrés sur les colonnes d'immunoadsorbants anti-Polio II et anti-EMC.
De 20 à 100 ml d'eau physiologique contenant des particules virales ont été filtrés sur les colonnes d'immunoadsorbants anti-Polio II et anti-EMC.
La spécificité des colonnes a été testée en passant sur les colonnes anti-Polio II de l'eau contenant un mélange Polio I et Polio II et sur les colonnes anti-EMC un mélange EMC et Poxvirus.
Comme les virus Polio II et EMC résistent bien à une exposition courte à pH acides, la récupération des particules virales accrochées sur les colonnes a été réalisée par élution avec un tampon HC1 pH 2,2.
Les résultats sont résumes dans le tableau II. TABLEAU II
Poliovirus <SEP> II <SEP> $Poliovirus <SEP> I
<tb> Colonnes <SEP> Virus <SEP> Titre <SEP> % <SEP> Titre <SEP> %
<tb> Anti- <SEP> ajouté <SEP> 5,9.10+6 <SEP> 100 <SEP> 5,5.106 <SEP> 100
<tb> Polio <SEP> II <SEP> Après <SEP> filtration <SEP> 103 <SEP> < <SEP> 1 <SEP> 5,4.106 <SEP> # <SEP> 100
<tb> Elution <SEP> de <SEP> la <SEP> 5,5.106 <SEP> 92 <SEP> < <SEP> 10 <SEP> < <SEP> 10
<tb> colonne
<tb> EMC <SEP> Pox <SEP> virus
<tb> nombre <SEP> de <SEP> particules <SEP> virales <SEP> % <SEP> nombre <SEP> de <SEP> particules <SEP> virales <SEP> %
<tb> Ajouté <SEP> 1,2.106 <SEP> 100 <SEP> 106 <SEP> 100
<tb> Anti- <SEP> Après <SEP> filtration <SEP> < <SEP> 10 <SEP> # <SEP> 0 <SEP> $1 <SEP> ,11 <SEP> .106 <SEP> # <SEP> 100
<tb> EMC <SEP> Elution <SEP> de <SEP> la <SEP> 1,11.106 <SEP> 93 <SEP> 0 <SEP> 0
<tb> colonne
<tb>
<tb> Colonnes <SEP> Virus <SEP> Titre <SEP> % <SEP> Titre <SEP> %
<tb> Anti- <SEP> ajouté <SEP> 5,9.10+6 <SEP> 100 <SEP> 5,5.106 <SEP> 100
<tb> Polio <SEP> II <SEP> Après <SEP> filtration <SEP> 103 <SEP> < <SEP> 1 <SEP> 5,4.106 <SEP> # <SEP> 100
<tb> Elution <SEP> de <SEP> la <SEP> 5,5.106 <SEP> 92 <SEP> < <SEP> 10 <SEP> < <SEP> 10
<tb> colonne
<tb> EMC <SEP> Pox <SEP> virus
<tb> nombre <SEP> de <SEP> particules <SEP> virales <SEP> % <SEP> nombre <SEP> de <SEP> particules <SEP> virales <SEP> %
<tb> Ajouté <SEP> 1,2.106 <SEP> 100 <SEP> 106 <SEP> 100
<tb> Anti- <SEP> Après <SEP> filtration <SEP> < <SEP> 10 <SEP> # <SEP> 0 <SEP> $1 <SEP> ,11 <SEP> .106 <SEP> # <SEP> 100
<tb> EMC <SEP> Elution <SEP> de <SEP> la <SEP> 1,11.106 <SEP> 93 <SEP> 0 <SEP> 0
<tb> colonne
<tb>
Claims (10)
1. Procédé pour la détection de germes pathogènes dans les fluides1 caractérisé en ce qu'il consiste:
1) à filtrer le fluide à analyser sur un immunoadsorbant spécifique du germe recherché;
2) à caractériser les germes retenus sur 1'immunoadsorbant.
2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ledit fluide est un liquide biologique ou de l'eau.
3. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que l'immunoadsorbant est constitué d'un support soluble sur lequel sont fixés des anticorps spécifiques du germe recherché.
4. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que le support insoluble est un gel de polyacrylamideagarose.
5. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que les anticorps spécifiques du germe recherché sont fixés sur le support insoluble par couplage chimique.
6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que le couplage est réalisé à l'aide de glutaraldéhyde, de benzoquinone, ou autre agent de couplage similaire.
7. Procédé pour déterminer la potabilité d'une eau, caractérisé en ce qu'il consiste:
1) à filtrer l'eau à analyser sur un immunoadsorbant spécigique du germe recherché;
2) à caractériser les germes retenus sur l'immunoadsorbant.
8. Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que les germes pathogènes sont des bactéries ou des particules virales.
9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que les bactéries sont choisies parmi Vibrio Cholerae,
Escherichia coli, Salmonella.
10. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que les particules virales sont des particules du virus de la poliomyélite ou du virus de l'enc8phalo-myocardite.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8118985A FR2514367A1 (fr) | 1981-10-08 | 1981-10-08 | Procede pour la detection de germes pathogenes dans des fluides par filtration sur des immunoadsorbants, et application a la determination de la potabilite d'une eau |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8118985A FR2514367A1 (fr) | 1981-10-08 | 1981-10-08 | Procede pour la detection de germes pathogenes dans des fluides par filtration sur des immunoadsorbants, et application a la determination de la potabilite d'une eau |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| FR2514367A1 true FR2514367A1 (fr) | 1983-04-15 |
| FR2514367B1 FR2514367B1 (fr) | 1984-07-20 |
Family
ID=9262861
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| FR8118985A Granted FR2514367A1 (fr) | 1981-10-08 | 1981-10-08 | Procede pour la detection de germes pathogenes dans des fluides par filtration sur des immunoadsorbants, et application a la determination de la potabilite d'une eau |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| FR (1) | FR2514367A1 (fr) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1986002160A1 (fr) * | 1984-09-26 | 1986-04-10 | Jan Peter Andersson | Procede et dispositif de piegeage et d'analyse de particules |
| WO1987007726A1 (fr) * | 1986-06-10 | 1987-12-17 | Jan Peter Andersson | Detection de particules organiques, notamment de virus, avec technique d'enrichissement |
| WO1988000345A1 (fr) * | 1985-03-25 | 1988-01-14 | Fassl Ab | Procede et appareil d'analyse qualitative et/ou quantitative d'antigenes, d'anticorps, de micro-organismes, ou d'autres cellules |
| EP0330688A4 (en) * | 1987-07-28 | 1991-05-15 | Biotechnology Australia Pty. Ltd. | Detection methods |
| US6004766A (en) * | 1987-07-28 | 1999-12-21 | Biotechnology Australia Pty Limited | Method for detecting low levels of microorganisms |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR1604982A (en) * | 1968-03-29 | 1972-06-26 | Active protein product - with polymeric carrier | |
| FR2382461A1 (fr) * | 1977-03-01 | 1978-09-29 | Abbott Lab | Antigene du virus de rubeole, purifie, son procede de fabrication et son application a la detection des anticorps du virus de rubeole |
| FR2403386A1 (fr) * | 1977-09-19 | 1979-04-13 | Hoffmann La Roche | Procede de preparation d'un reactif immunologique comprenant un polymere de latex |
-
1981
- 1981-10-08 FR FR8118985A patent/FR2514367A1/fr active Granted
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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| FR1604982A (en) * | 1968-03-29 | 1972-06-26 | Active protein product - with polymeric carrier | |
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| Title |
|---|
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| CA1979 * |
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| US6004766A (en) * | 1987-07-28 | 1999-12-21 | Biotechnology Australia Pty Limited | Method for detecting low levels of microorganisms |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| FR2514367B1 (fr) | 1984-07-20 |
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