FR2515518A1

FR2515518A1 - Procede de production de preparations immunobiologiques applicables pour le diagnostic, la prevention et/ou le traitement d'infections par le candida guilliermondii, et preparations immunobiologiques en resultant

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Publication number: FR2515518A1
Application number: FR8120384A
Authority: FR
Original assignee: Individual
Current assignee: Individual
Priority date: 1981-11-03
Filing date: 1981-10-30
Publication date: 1983-05-06
Also published as: JPS58183627A; GB2108384A; NL188185C; CA1180291A; US4678748A; GB2108384B; BE890954A; AU7691081A; CH652032A5; NL8104979A; EP0082890B1; EP0082890A1; AU547928B2; FR2515518B1; NL188185B

Abstract

PRODUCTION DE PREPARATIONS IMMUNOBIOLOGIQUES. UNE SOUCHE DE CANDIDA GUILLIERMONDII EST CULTIVEE SUR UN MILIEU CONVENABLE, LES POPULATIONS OBTENUES SONT MAINTENUES DANS LES MEMES CONDITIONS PENDANT UNE PERIODE PROLONGEE, PUIS LES CELLULES DE CHAMPIGNONS SONT SEPAREES, LAVEES, BRISEES ET EXTRAITES, ET LE PRECIPITE RESULTANT EST MIS SOUS FORME DE PREPARATIONS IMMUNOBIOLOGIQUES. PREPARATIONS SERVANT AUX DIAGNOSTIC, A LA PROPHYLAXIE ETOU AU TRAITEMENT D'INFECTIONS DUES AU CANDIDA GUILLIERMONDII.

Description

La présente invention est relative à un procédé de production de nouvelles

préparations immunobiologiques

applicables dans le diagnostic, la prévention et/ou le trai-

tement d'infections dues au Candida Guilliermondii chez les mammifères Les nouvelles préparations produites conformément à la présente invention peuvent être utilisées avec profit en thérapeutiqueshumaine et vétérinaire; pour le diagnostic d'infections par le Candida Guilliérmondii, l'immunisation de sujets exposés à de telles infections, ainsi que pour le

traitement de la maladie.

Une candidiase enzootique provoquée par Candida Guilliermondii a été décelée d'abord chez des ruminants en 1959 (B HAUPTMAN et Coll: Med Vet 17, 22 L 1961/) Des études

ultérieures ont montré que chez le bétail, le Candida Guillier-

mondii s'attaque principalement aux voies urogénitales et est la cause de plusieurs troubles, tels que l'avortement des vaches, les troubles inflammatoires des organes urogénitaux (utérus, glandes séminales, épididyme, mamelles, reins, etc)

et de divers autres troubles du système de reproduction.

L'apparition d'infections par le Candida Guilliermondii, les aspects cliniques, pathologiques et histopathologiques de

l'infection, les résultats des études microbiologiques ef-

fectuées sur ces champignons et la classification taxonomique des souches fongiques isolées à partir des organismes des bestiaux infectés, sont décrits en détail dans les références suivantes: P SUTKA et Coll: Magyar Allatorvosok Lapja 33,

151; 155; 837 L 1978/; M DECUN et Coll: Revta Zootech Vet.

Med 23, 39 Z 19737.

D'après les données fournies par la littérature disponible, les infections par le Candida Guilliermondii

apparaissent surtout chez les ruminants; cependant, le cham-

pignon est également pathogène pour l'homme Des champignons de type Candida Guilliermondii ont également été détectés dans l'organisme humain dans les images cliniques les plus diverses, telles que des infections des voies urogénitales

(S.A HARDING et Coll: Clin Mic 2, 222 L 19757),des infec-

tions oculaires (SEGAL et Coll: Mycopath Mycol Appl 54, 32 1974/), l'endocardite (J R UTLEI et Coll: Circulation 48, 42 L 19737),ainsi que des candidiases générales (P J KOZINN et Coll: Sab 7, 98 Z 19697). En thérapeutique humaine, des candidiases systémiques, principalement celles qui sont provoquées par Candida albicans, sont principalement diagnostiquées par des

méthodes applicables pour la détection en laboratoire d'anti-

gènes humoraux, telles qu'agglutination, agglutination sur

latex, fluorescence indirecte, immunodiffusion, contre-immuno-

électrophorèse (C L TASCHDJIAN et Coll: Amer J Clin Pathol.

57,195 Zi 9727) Ces méthodes de diagnostic nécessitent un personnel bien entrainé, ayant une habileté supérieure à la moyenne Jusqu'à maintenant, on ne connaissait aucun antigène spécifique de Candida Guilliermondii, qui aurait permis un diagnostic de l'infection au moment même, au cours d'un test vétérinaire de dépistage de routine, ou même au chevet du malade La présente invention est relative à la préparation

d'antigènes utilisables dans ce but.

En tenant compte du fait que les ruminants, prin-

cipalement le bétail qui a une importance majeure dans l'indus-

trie alimentaire, souffrent de troubles sérieux des organes reproducteurs, des voies urogénitales et de la lactation par suite d'infection par le Candida Guilliermondii,ce qui implique de grandes pertes économiques et de sérieux problèmes pour la

santé publique, on constate un net besoin de disposer de pré-

parations vétérinaires permettant le diagnostic, la prophylaxie et le traitement de ces infections En ce qui concerne la nature pathogène du champignon vis-à-vis de l'homme, diverses formes de présentationsappropriées de ces préparations peuvent aussi être appliquées en thérapeutique humaine La présente invention

est relative à un procédé de production de telles préparations.

La majorité des antigènes de Candida est produite à partir de cellules obtenues après une culture de 48 à 72 heures de la souche Candida Jusqu'à maintenant, on prêtait

peu attention aux modifications apparaissant dans les substan-

ces produites par les cellules de Candida au cours d'une

culture prolongée L'organisme infecté renferme cependant égale-

ment des produits issus de cellules de Candida plus Agées Les Demandeurs ont constaté que de nouvelles substances se forment dans des cellules de Candida à la suite d'une culture prolongée,

qui peuvent etre utilisées comme agents de diagnostic instan-

tanés, pour provoquer une réaction précoce d'hypersensibilité et dans la technique de diagnostic par précipitation dans un tube et,de plus, pour le traitement immunobiologique de l'organisme infecté En utilisant ces substances, il est possible de diagnostiquer rapidement les infections dues au Candida Guilliermondii, même au chevet du malade ou à la ferme,

par une réaction d'hypersensibilité précoce ou par précipi-

tation en tube du sérum.

Des préparations immunobiologiques utiles pour le diagnostic, la prophylaxie et/ou le traitement d'infections dues au Candida Guilliermondii,sont préparées de la façon suivante, conformément à la présente invention: a) On cultive une souche de Candida Guilliermondii dans des conditions aérobies -à 24-42 'C, sur un milieu de culture contenant des sources assimilables de carbone et d'azote; on maintient la ou les populations résultantes dans des conditions identiques pendant une période prolongée, puis on sépare-les cellules fongiques du milieu de culture, on les lave, on les disloque mécaniquement, on les extrait et on traite l'extrait

par un solvant organique polaire, puis on convertit le préci-

pité obtenu en une préparation immunobiologique soit telle

quelle, soit après l'avoir soumise à une purification supplé-

mentaire, ou b)On cultive une souche de Candida Guilliermondii pendant 48 à 72 heures dans des conditions aérobies à 24-420 C, sur un milieu de culture contenant des sources de carbone et d'azote assimilables; on laisse éventuellement la culture résultante se propager encore de façon à produire deux ou trois nouvelles populations, puis l'on sépare les cellules

fongiques du milieu de culture, on les lave, on les brise mé-

caniquement, on les extrait et on ajoute, si on le désire, un solvant organique polaire à l'extrait, puis l'on convertit le précipité résultant en une préparation immunobiologique, éventuellement après une purification supplémentaire, ou bien c)On cultive une souche de Candida Guilliermondii pendant 48 à 72 heures dans des conditions aérobies à 24- 420 C, sur un milieu de culture contenant des sources assimilables de carbone et d'azote, puis on tue la culture, on sépare les cellules

tuées et on les met sous forme de préparation immunobiolo-

gique, telles quelles ou après une purification.

La culture des souches de Candida:Guilliermondii est réalisée de préférence entre 32 et 380 C. Pour laver les cellules séparées, on utilise de

préférence une solution physiologique saline.

Les cellules séparées peuvent être brisées à l'aide d'appareillages couramment utilisés dans ce but, par exemple un appareil de type presse en X, ou bien la rupture

des cellules peut etre réalisée par irradiation ultrasonique.

La masse résultante est extraite de préférence par une

solution physiologique saline.

L'extrait obtenu selon la variante a) ou b) du procédé est traité de préférence par un alcool en C 1 à C 4,

en particulier par l'éthanol.

Le précipité obtenu selon la variante a) ou b) du procédé peut etre purifié, si on le désire, par des méthodes bien connues dans le domaine de la purification des protéines, telles que la chromatographie, l'ultrafiltration, la dialyse, l'électrophorêse, des méthodes impliquant des adjuvants de filtration et/ou des détergents, etc Les préparations immunobiologiques produites

conformément aux méthodes a), b) et c) de la présente inven-

tion sont dénommées ci-après préparations Cgl, Cg 2 et Cg 3

respectivement.

La préparation Cgl est un extrait de cellules

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contenant des protéines, isolé à partir de cellules de Candida Guilliermondii soumises à une culture prolongée Les constituants les plus importants de cet extrait cellulaire sont les toxines de Candida Guilliermondii La préparation Cgl peut servir principalement au diagnostic d'infections dues

au Candida Guilliermondii, en provoquant une réaction d'hyper-

sensibilité précoce à la suite d'une introduction intradermi-

que; elle peut aussi servir à détecter les anticorps cir-

culants par la méthode de précipitation en tube capillaire ou en tube Durham De plus, lorsqu'elle est introduite dans l'organisme vivant, la préparation Cgl induit la production d'anticorps capables de mettre fin à une infection déjà

établie, due au Candida Guilliermondii.

La préparation Cg 2, séparée à partir de cellules de Candida Guilliermondii soumises à une culture de courte durée, renferme beaucoup plus de protéines que la préparation

Cgl, tandis que sa teneur en toxines est faible Cette pré-

paration peut être appliquée principalement pour l'immunisation

d'organismes vivants exposés au risque d'infection La pré-

paration Cg 2 peut aussi servir d'agent de diagnostic pour provoquer une réaction d'hypersensibilité tardive à la suite d'une introduction intradermique; de plus, elle peut être appliquée à titre d'antigène, pour le diagnostic de l'infection dans les méthodes d'agglutination sur latex, d'immunodiffusion

et de contre-immunoélectrophorèse.

La préparation Cg 3 consiste en cellules entières

tuées de Candida Guilliermondii et peut être appliquée princi-

palement pour le diagnostic de l'étape précoce des infections dues au Candida Guilliermondii dans des tests de laboratoire (tels que les tests d'agglutination, de fluorescence indirecte,

etc) et, de plus, pour produire des antigène colorés appli-

cables dans les tests ABR (d'avortement épizootique): (F.

HUTYRA et Coll: "Spezielle Pathologie und Therapie der

Haustiereu, VEB Gustav FISCHER Editeur, Iéna, 1959).

Des souches de Candida Guilliérmondii séparées d'organismes infectés peuvent être appliquées avec grand profit comme microorganismes pour la production des trois types précités de préparations immunobiologiques Cependant, des

souches standards internationales connues de Candida Guillier-

mondii, telles qu'une souche déposée au Centralbureau voor Schimmelcultures (Delft, Hollande) sous le n CBS-566, de même que les souches de Candida Guilliermondii déposées dans la collection américaine (American Type Culture Collection), peuvent aussi être utilisées dans le procédé conforme à la

présente invention.

Il est préférable de mettre en oeuvre une pré-

culture, obtenue par culture d'une souche de Candida Guillier-

mondii pendant 48 à 72 heures, dans des conditions aérobies à 24-42 C, sur un milieu de culture contenant des sources assimilables de carbone et d'azote, comme substance de départ,

pour produire les préparations immunobiologiques Les substan-

ces suivantes peuvent constituer des sources de carbone à la fois dans les étapes de préculture et de culture ultérieure:

glucose, saccharose, maltose, cellobiose, melibiose, mélé-

cytose, inuline, arbutine, galactose, sorbose, tréhalose, ribose, xylose, L-arabinose, D-arabinose, glycérol, ribitol, D-mannitol, D-dulcitol, Lméthyl-D-glycoside, salicine, acide tartrique ou citrique et leurs dérivés Le milieu de culture utilisé dans les étapes de préculture et de culture ultérieure

peuvent renfermer, comme source d'azote assimilable, par exem-

ple, des sérums, des compositions de protéose-peptone (cer-

tifiées par Difco, Difco Laboratories, Détroit, Michigan, Etats-Unis d'Amérique), et d'autres protéoses, des substances contenant de la peptone et/ou des amino-acides, etc Les préparations Cgl et Cg 2 sont de préférence produites de la façon suivante:à la fin de la période de culture, on vérifie le bouillon pour déterminer la présence de bactéries et l'on sépare ensuite les cellules fongiques

du bouillon de fermentation dépourvu de bactéries, de pré-

férence par centrifugation Les cellules séparées sont lavées à l'eau ou avec une solution saline aqueuse, de préférence une

solution physiologique saline,puis soumises à une rupture mécaniaue.

On peut procéder, par exemple, de la façon suivante: on sèche le précipité de cellules, on le broie dans un broyeur stérile; on prélève périodiquement un échantillon de substance broyée et on suit le degré de rupture par examen au microscope Les cellules brisées sont ensuite extraites par une solution physiologique saline Selon une autre méthode, les cellules de Candida Guilliermondii séparées sont mélangées avec de l'eau ou une solution saline aqueuse, de préférence une solution physiologique saline et la suspension résultante est soumise à une irradiation ultrasonique On prélève un échantillon de la suspension à intervalles réguliers et on suit le degré de rupture, par examen au microscope Dans ce

cas, la rupture mécanique a lieu en même temps que l'extrac-

tion des cellules brisées Ensuite, les solides (c'est-à-

dire la substance cellulaire brisée) sont séparés par centri-

fugation, le liquide surnageant est filtré et un solvant organique polaire, de préférence de l'éthanol, est ajouté au filtrat Si on le désire, le précipité résultant peut être purifié selon l'une quelconque des méthodes connues

utilisées pour purifier les protéines (par exemple, chroma-

tographie, ultra-filtration, dialyse, électrophorèse, etc).

Si la préparation immunobiologique doit etre utilisée pour le diagnostic, il n'est pas absolument nécessaire de purifier le précipité Ainsi qu'il est indiqué plus haut, l'extrait de cellules brisées obtenu selon la méthode b) peut également être utilisé directement pour des diagnostics Ainsi, le terme de "préparation immunobiologique ", lorsqu'il est utilisé à propos de la préparation Cg 2, englobe également de tels extraits Autrement, le précipité résultant est transformé en préparations immunobiologiques selon des méthodes bien

connues dans l'Art, à l'aide de diluants classiques (par exem-

ple, une solution physiologique saline, etc) et selon des techniques classiques (par exemple, dissolution, congélation,

lyophilisation, etc:).

La préparation Cg 3 est produite conformément à la présente-invention, de préférence de la façon suivante à la fin de l'étape de fermentation, les cellules de Candida Guilliermondii sont tuées par un agent cytotoxique, tel que le formaldéhyde On peut procéder, par exemple, de la façon suivante: on ajoute une solution aqueuse de formaldéhyde à la culture en une quantité suffisante pour ajuster la teneur en formaldéhyde du bouillon à 0,5 %, puis le bouillon est incubé pendant 6 heures à 370 C Les cellules tuées peuvent etre purifiées par lavage, de préférence par une solution

physiologique saline Les cellules tuées sont ensuite conver-

ties en préparations immunobiologiques utilisables pour des

diagnostics en laboratoire selon des méthodes connues en elles-

mêmes (par exemple mise en suspension dans un milieu aqueux,

congélation, etc) -

Des préparations Cgl, Cg 2 et Cg 3 présentées par exemple, sous forme de poudres réparties en ampoules, peuvent être utilisées dans le diagnostic d'infections dues au Candida Guilliermondii chez des organismes vivants, de la façon

suivante: -

Des préparations Cgl et Cg 2 peuvent être utilisées à la fois dans des conditions in vivo et in vitro, tandis que la préparation Cg 3 ne peut servir que dans des examens in vitro. Lorsque l'on cherche à déterminer une infection par Candida Guilliermondii dans des conditions in vivo chez des organismes vivants, on administre la préparation Cgl ou

Cg 2 au sujet soumis au test sous forme d'injection intra-

dermique Lorsque la préparation Cgl est utilisée, la présence ou l'absence d'infection est déterminée en fonction dela

réaction d'hypersensibilité précoce provoquée par la prépa-

ration, évaluée 1 à 12 heures après l'injection Il apparait sur le site de l'injection, chez les sujets infectés, une intumescence bien séparée dont la taille augmente, et qui n'est plus observable 24 heures après le test Lorsque la préparation Cg 2 est utilisée, la présence op l'absence d'une infection par le Candida Guilliermondii est déterminée en fonction d'une réaction d'hypersensibilité tardive de type tuberculine, qui peut être évaluée 36 à 48 heures après le test. Les préparations Cgl, Cg 2 et Cg 3 peuvent être utilisées pour des tests de diagnostic réalisés dans des conditions in vitro, de la façon suivante:

La base de la détection est toujours une réac-

tion immunologique formant un précipité, dans laquelle du sérum négatif, du sérum riche en précipitine et du sérum riche -en agglutinine constituent les réactifs La préparation de sérums riches en agglutinine ou en précipitine est également

incluse dans le cadre de l'invention.

Le "sérum négatif" est le sérum obtenu à partir de bestiaux ou d'animaux de laboratoire qui ont une réaction négative lorsqu'ils sont testés avec une préparation Cgl, Cg 2

ou Cg 3.

Pour préparer un sérum riche en agglutinine, on immunise des lapins avec une préparation Cg 2 ou Cg 3 selon une procédure standard, puis on saigne les animaux et on sépare

le sérum du sang d'une manière connue en elle-même.

Pour préparer un sérum riche en précipitine, on immunise des lapins avec une préparation Cgl selon un processus standard, puis on saigne les animaux et on sépare le sérum du sang selon une méthode connue en ellemême Du sérum riche en précipitine peut également être obtenu à partir

du sang de bestiaux infectés dans des conditions naturelles.

Le sérum de ces animaux est examiné avec de l'allergène Cgl, par exemple, selon la méthode du tube capillaire ou du tube

Durham, puis les animaux présentant un sérum riche en préci-

pitine sont saignés et le sérum est séparé du sang selon une

méthode connue en elle-même.

Les examens de laboratoire suivants peuvent être réalisés avec des préparations Cgl, Cg 2 et Cg 3, en utilisant les réactifs indiqués cidessous: 1) Test de précipitation en tube capillaire ou en tube Durham, réalisé avec la préparation Cgi: A l'aide d'une pipette, on introduit du sérum négatif dans un tube Durham de telle sorte qu'il n'y ait pas de souffle d'air sur la surface du sérum Le tube est rempli à moitié de son volume environ Du sérum riche en précipitine est introduit de la même manière dans un autre tube Durham et le sérum à tester est versé dans deux tubes Durham La pré- paration Cgl est utilisée dans ce test sous forme de solution formée avec une solution physiologique saline La solution de la préparation immunobiologique est déposée en une couche avec précaution, sur trois des échantillons de sérum (sérum négatif, sérum riche en précipitine et l'un des échantillons de sérum à examiner), tandis que l'échantillon de sérum restant à tester est traité par une solution physiologique saline Les tubes sont maintenus à la température ambiante pendant une heure, puis à + 5 C pendant 24 heures Les limites des deux phases sont examinees à l'oeil nu après 10 -à 15 minutes,

1 heure et 25 heures de repos et les observations sont notées.

Si le sérum testé renferme des anticorps pour l'antigène de Candida Guilliermondii (préparation Cgl), il apparaît un anneau

de précipitation à la limite des deux phases.

2) La préparation Cg 2 peut etre utilisée comme antigène dans des tests d'immunodiffusion, d'agglutination sur latex et de contreimmunoélectrophorèse Ces tests sont effectués selon des méthodes bien connues dans l'Art (voir par exemple: PALMER et Coll: "Serodiagnosis of mycotic diseases",

Charles C Thomas, Illinois, U S A, 1977).

3) La préparation Cg 3 peut être utilisée comme antigène

dans des méthodes d'agglutination et de fluorescence indi-

recte (cf par exemple: D F PALMER et Coll: "Serodiagnosis of mycotic diseases", Charles C Thomas, Illinois, U S A, 1977), ainsi que pour la préparation d'antigènes colorés utilisables dans des tests ABR (cf par exemple F HUTYRA et Coll: Spezielle Pathologie und Therapie der Haustiere,

VEB Gustav Fischer Editeur, Iéna, 1959).

La préparation Cg 2 peut également être utilisée pour l'immunisation préventive d'êtres humains et d'animaux

exposés à un risque d'infection par le Candida Guilliermondii.

il Dans ce cas, la préparation Cg 2 est présentée sous forme de vaccin Ces vaccins peuvent contenir, outre l'agent actif et le diluant, également un support (tel qu'un gel d'hydroxyde d'aluminium) qui assure une libération progressive lente de l'agent actif Le vaccin peut etre introduit dans l'organisme

à traiter sous forme d'injection intradermique, intramuscu-

laire, ou sous-cutanée Conformément à une méthode préférée d'immunisation, les sujets sont vaccinés une autre fois, deux semaines après la première fois, de telle sorte qu'une quantité plus importante d'antigène est administrée à l'organisme avec cette seconde vaccination qu'avec la première La dose requise pour l'immunisation dépend de nombreux facteurs, tels que l'age et les conditions générales de santé du malade, l'age

et la race de l'animal, des traitements précédents d'immuni-

sation, du degré du risque, etc La préparation Cgl peut aussi etre utilisée dans le traitement d'&tres humains et d'animaux souffrant d'infection par le#Candida Guilliermondii Dans de tels cas,

le sujet à traiter est d'abord désensibilisé avec la prepa-

ration et la préparation Cgl est administrée alors sous forme

d'injection intradermique, intramusculaire ou sous-cutanée.

Des préparations utilisées dans ce but peuvent aussi renfermer un support tel qu'un gel d'hydroxyde d'aluminium,qui assure

une libération progressive lente de l'agent actif Le trai-

tement est répété toutes les deux semaines de telle sorte que la quantité d'antigène administrée à l'organisme soit augmentée de façon continue d'un traitement à l'autre La dose nécessaire au traitement dépend de plusieurs facteurs tels

que l'age du patient, l'importance et la gravité de la mala-

die, la race de l'animal, la méthode et la fréquence des traitements, etc Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de

la description qui va suivre.

L'invention sera mieux comorise à l'aide du

complément de description qui va suivre, qui se réfère à des

exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invetion. Il doit Atre bien entendu toutefois que ces exemples de mise en oeuvre sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne consti-

tuent en aucune manière une limitation.

EXEMPLE 1

Production de la réDar ation immunobiologigue C g 250 ml d'un milieu de culture liquide standard à base de dextrose/peptone 4 evure (voir D F PALMER et Coll: "Serodiagnosis of mycotic diseases", p 49 Z Charles C Thomas, Illinois, U S A 19777), sont introduits dans un flacon de 500 ml Le milieu de culture est inoculé avec une culture permanente de Candida Guilliermondii, puis incubé pendant

48 heures à 37 C, tandis qu'il est secoué à raison de 130 tpm.

La culture résultante sert d'inoculum dans l'étape suivante.

litres du milieu de culture ci-dessus sont versés dans un fermenteur de laboratoire de 20 litres et le milieu est inoculé avec la culture cidessus La culture est

effectuée à 37 C, tandis que le système est aéré et agité.

Après 72 heures de culture, la propagation du champignon diminue peu à peu et s'arrête enfin On poursuit la culture pendant 15 jours supplémentaires dans les memes conditions (culture prolongée) Ensuite, on prélève un échantillon de la culture pour réaliser une coloration de Gram Si l'échantillon se teinte, indiquant la présence de contaminationsbactériennes, la culture ne peut pas être utilisée pour la production de

préparation immunobiologique La culture, dépourvue de conta-

minations bactériennes, est traitée de la façon suivante: le contenu du fermenteur est introduit dans une centrifugeuse et les cellules sont séparées du liquide par centrifugation

pendant 10 minutes, à 1000 tpm La substance cellulaire ré-

sultante est lavée à trois reprises avec une solution phy-

siologique saline, centrifugée à nouveau pendant 10 minutes

à 1000 tpm, puis mise en suspension dans une solution physiolo-

gique saline, les cellules en suspension sont brisées dans un appareil du type à presse X, sous une pression d'environ 10 000 kg/cm 2 Les solides sont séparés

par centrifugation ( 30 minutes, 3000 tpm), le liquide surna-

geant est filtré à travers un élément-filtre Seitz et 4 parties par volume d'éthanol sont ajoutées au filtrat Le précipité séparé est filtré, dissous dans une solution physiologique saline et la solution est lyophilisée à -20 'C En fonction des conditions de fermentation et de rupture, on recueille environ 500 mg d'une substance pulvérulente Ce produit est introduit dans des ampoules et utilisé comme allergène dans des tests intradermiques reposant sur des réactions d'hypersensibilité précoce.

EXEMPLE 2

Production de la préEa ration immunobiologigue Cg 2 250 ml d'un milieu de culture liquide standard comprenant du dextrose/peptone/levure, sont introduits dans un flacon de 500 ml Le milieu de culture est inoculé avec une culture permanente de Candida Guilliermondii, puis incubé pendant 48 heures à 370 C, tandis qu'il est secoué à raison de tpm La culture résultante sert d'inoculum dans l'étape

suivante.

litres du milieu de culture ci-dessus sont introduits dans un fermenteur de laboratoire de 20 litres

et le milieu est inoculé avec la culture préparée ci-dessus.

La culture est effectuée à 370 C pendant 72 heures sous aéra-

tion et agitation Ensuite, on ajoute une solution aqueuse de formaldéhyde à 30-40 % dans la culture, en une quantité

convenable pour obtenir une concentration finale de formaldéhy-

de de 0,5 % et l'incubation est poursuivie à 370 C pendant 6

heures Un échantillon est prélevé de la culture et la viabi-

lité du champignon est vérifiée par inoculation de celui-ci

sur une botte Sabouraud de dextrose-agar et incubation de celle-

ci à 37 WC pendant 48 heures Un autre échantillon est

prélevé de la culture pour la coloration Gram Si l'échantil-

lon se teinte, indiquant la présence de contaminations bac-

tériennes, la culture ne peut pas être utilisée pour la production de préparations immunobiologiques La culture, dépourvue de contaminations bactériennes est traitée de la façon suivante: le contenu du fermenteur est versé dans une centrifugeuse et les solides sont séparés du bouillon par centrifugation pendant 10 minutes, à 1000 tpm Les solides sontséparés, lavés trois fois avec une solution aqueuse de chlorure de sodium à 0,85 % et les cellules sont à nouveau centrifugées pendant 10 minutes à 1000 tpm Les solides sont alors mis en suspension dans une solution aqueuse de chlorure de sodium à 0,85 % et les cellules sont brisées dans un appareillage du type presse en X sous une pression d'environ 000 kg/cm 2 L'homogénéisat de cellules résultant est

centrifugé pendant 30 minutes, à 3000 tpm; le liquide surna-

geant est séparé, filtré à travers un filtre Seitz et 4 par-

ties en volume d'éthanol sont ajoutées au filtrat Le précipité séparé est filtré, dissous dans une solution physiologique saline et la solution est lyophilisée à -20 'C En fonction des conditions de fermentation et de rupture des cellules, on

recueille environ 1500 mg de substance pulvérulente Ce pro-

duit est réparti dans des ampoules et utilisé comme allergène dans des tests intradermiques reposant sur des réactions d'hypersensibilité tardive, ainsi que comme-antigène dans des tests d'agglutination sur latex, d'immunodiffusion et de contre-immunoélectrophorèse.

EXEMPLE 3

Production de la Eréparation immunobiolo ique Cg 3

Une gélose nutritive inclinée de dextrose-

agar Sabouraud est inoculée avec une culture permanente de Candida Guilliermondii, puis incubée pendant 48 heures à 370 C Le champignon qui s'est développé sur la culture inclinée, est mis en suspension dans un bouillon de dextrose/ peptone/levure et la suspension résultante sert d'inoculum

dans l'étape suivante.

250 ml d'un milieu de culture liquide à base de dextrose/peptone/levure sont introduits dans une fiole

conique de 500 ml et l'inoculum ci-dessus est ajouté au mi-

lieu Le mélange résultant est incubé à 370 C pendant 48 heures, tandis qu'il est secoué à raison de 130 tpm Une solution aqueuse de formaldéhyde à 30-40 % est ensuite ajoutée à la

culture en une quantité convenable pour obtenir une concentra-

tion finale en formaldéhyde de 0,5 % La fiole est à nouveau montée sur le secoueur et secouée à raison de 130 tpm pendant 6 heures, à 370 C Un échantillon est prélevé de la culture résultante et la viabilité du champignon est vérifiée en inoculant celui-ci sur des-bottes Sabouraud de dextrose-agar

qui sont incubées à 370 C pendant 48 heures Un autre échan-

tillon est prélevé de la culture pour la coloration Gram.

Si l'échantillon est teinté, ce qui correspond à la présence de contaminations bactériennes, la culture ne peut pas être

utilisée pour la production de préparations immunobiologiques.

La culture, dépourvue de contaminations bactériennes, est traitée de la façon suivante: la culture est centrifugée pendant 10 minutes à la vitesse de 1000 tpm; la phase solide, constituée par des cellules entières, est séparée, lavée à trois reprises avec une solution physiologique saline stérile, puis

à nouveau centrifugée à 1000 tpm pendant 10 minutes On re-

cueille une masse de cellules humides, pesant environ 2,5 g.

Une partie en volume de la masse de cellules humides résultante est mise en suspension dans 3 parties en volume d'une solution physiologique saline; une solution de Merthiolate du commerce (éthylmercuricthiosalicylate de sodium) est ajoutée à la suspension en une quantité convenable pour atteindre une concentration finale de 1:1000 et la suspension

de cellules est stockée à + 40 C Cette préparation immuno-

biologique peut être utilisée dans des diagnostics en labo-

ratoire, pour les tests d'agglutination en tube et de fluo-

rescence indirecte et de plus, pour la production d'antigènes

colorés utilisables dans les tests ABR.

Les préparations immunobiologiques produites

conformément à la présente invention permettent de diagnosti-

quer les infections dues au Candida Guilliermondii et rendent possibles un dépistage préventif régulier et une immunisation des bestiaux exposés à ces maladies Cela implique d'importants avantages, en particulier dans l'élevage du bétail, puisque les pertes dues aux infections par le Candida Guilliermondii peuvent être considérablement réduites En tenant compte du fait que les hommes risquent d'être infectés par le Candida Guilliermondii, les dépistages diagnostiques sont très impor-

tants pour la santé publique De plus, certaines des prépa-

rations immunobiologiques préparées conformément à la pré-

sente invention peuvent être efficacement utilisées dans le traitement d'infections par le Candida Guilliermondii, qui ne pouvaient pas être traitées auparavant par des méthodes immunobiologiques. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses-modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite; elle en embrasse, au contraire, toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière,-sans s'écarter du cadre, ni de

la portée, de la présente invention.

Claims

REVENDICATIONS

1 Procédé de production de préparations immuno-

biologiques pour le diagnostic, la prophylaxie et /ou le

traitement d'infections par le Candida Guilliermondii, carac-

térisé en ce qu'une souche de Candida Guilliermondii est cultivée dans des conditions aérobies à 24-420 C sur un milieu

de culture contenant des sources de carbone et d'azote assi-

milables, la ou les populations résultantes sont maintenues dans des conditions identiques pendant une période prolongée, puis les cellules de champignonssont séparées de la culture, lavées, brisées mécaniquement, extraites,et l'extrait est lavé par un solvant organique polaire, puis le précipité résultant est converti en une préparation immunobiologique utilisable

soit telle quelle, soit après une purification supplémentaire.

2 Procédé de production de préparations immuno-

biologiques pour le diagnostic, la prophylaxie et/ou le trai-

tement d'infections dues au Candida Guilliermondii, caracté-

risé en ce qu'une souche de Candida Guilliermondii est cultivée pendant 48 à 72 heures dans des conditions aérobies à 24-420 C sur un milieu de culture contenant des sources de carbone et d'azote assimilables; la culture résultante est éventuellement propagée encore pour fournir deux ou trois nouvelles populations, puis les cellules de champignons sont séparées de la culture, lavées, brisées mécaniquement, extraites,et un solvant organique polaire est alors éventuellement ajouté à l'extrait, puis le précipité résultant est converti en une préparation immunobiologique utilisable soit telle quelle, soit après une

purification supplémentaire.

3.Procédé de production de préparations immuno-

biologiques pour le diagnostic, la prophylaxie et/ou le trai-

tement d'infections par le Candida Guilliermondii, caractérisé en ce qu'une souche de Candida Guilliermondii est cultivée pendant 48 à 72 heures dans des conditions aérobies à 24-420 C, sur un milieu de culture contenant des sources de carbone et d'azote assimilables, puis la culture est tuée et les cellules

tuées sont séparées et converties en une préparation immuno-

biologique utilisable soit telle quelle, soit après purifica-

tion.

4 Procédé selon l'une quelconque des Revendi-

cations i à 3, caractérisé en ce que la souche de Candida Guilliermondii est cultivée entre 32 et 380 C. Procédé selon l'une quelconque des Revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'un alcool en Cl à C 4

est utilisé comme solvant organique polaire.

6 Procédé selon la Revendication 5, caracté-

risé en ce que l'éthanol est utilisé comme solvant organique polaire.

7 Procédé selon l'une quelconque des Reven-

dications 1 à 6, caractérisé en ce que la préparation immuno-

biologique est présentée sous une forme utilisable en thé-

rapeutique humaine ou vétérinaire.

8 Procédé selon les Revendications 1 ou 2,

caractérisé en ce que la préparation immunobiologique est présentée sous forme d'allergène, d'antigène soluble ou de vaccin.

9 Procédé selon la Revendication 3, carac-

térisé en ce que la préparation immunobiologique est présen-

tée sous forme d'antigène corpusculaire.

Procédé de préparation d'un sérum riche en précipitine, utilisable comme réactif dans le diagnostic en laboratoire des infections dues au Candida Guilliermondii, caractérisé en ce que des lapins sont immunisés par une* préparation immunobiologique obtenue par le procédé selon la Revendication 1, puis les lapins sont saignés et le sérum

est séparé du sang.

11 Procédé de préparation d'un sérum riche en agglutinine, utilisable comme réactif dans le diagnostic en laboratoire d'infections dues au Candida Guilliermondii, caractérisé en ce que des lapins sont immunisés avec une préparation immunobiologique préparée par le procédé selon

les Revendications 2 ou 3, les animaux sont saignés et le

sérum estséparé du sang.

12 Préparations immunobiologiques applicables

pour le diagnostic, la prévention et/ou le traitement d'infec-

tions par Candida Guilliermondii, caractérisées en ce qu'elles sont obtenues en mettant en oeuvre le procédé selon l'une

quelconque des Revendications 1 à 11.