JP2000224992A - 新規ホスホジエステラーゼ及びその遺伝子 - Google Patents
新規ホスホジエステラーゼ及びその遺伝子Info
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- JP2000224992A JP2000224992A JP11129343A JP12934399A JP2000224992A JP 2000224992 A JP2000224992 A JP 2000224992A JP 11129343 A JP11129343 A JP 11129343A JP 12934399 A JP12934399 A JP 12934399A JP 2000224992 A JP2000224992 A JP 2000224992A
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【課題】 新規なホスホジエステラーゼおよびその遺伝
子を提供する。 【解決手段】 10型ホスホジエステラーゼ(PDE1
0)及びその遺伝子。より詳細には、(A)配列番号
1、配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示さ
れるアミノ酸配列を有する蛋白質、及び(B)配列番号
1、配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示さ
れるアミノ酸配列において、1もしくは複数個のアミノ
酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を有す
る蛋白質であって、かつ、環状ヌクレオチドを加水分解
する活性を有する蛋白質、から選択されるホスホジエス
テラーゼ及びその遺伝子。また、これらを用いて、ホス
ホジエステラーゼ阻害薬の特徴付け、同定、選択を行う
方法。
子を提供する。 【解決手段】 10型ホスホジエステラーゼ(PDE1
0)及びその遺伝子。より詳細には、(A)配列番号
1、配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示さ
れるアミノ酸配列を有する蛋白質、及び(B)配列番号
1、配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示さ
れるアミノ酸配列において、1もしくは複数個のアミノ
酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を有す
る蛋白質であって、かつ、環状ヌクレオチドを加水分解
する活性を有する蛋白質、から選択されるホスホジエス
テラーゼ及びその遺伝子。また、これらを用いて、ホス
ホジエステラーゼ阻害薬の特徴付け、同定、選択を行う
方法。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、新規なホスホジエ
ステラーゼおよびその遺伝子に関する。
ステラーゼおよびその遺伝子に関する。
【0002】
【従来の技術】cAMP及びcGMPなどの環状ヌクレ
オチドは、細胞内情報伝達のセカンドメッセンジャーと
して、生体内の多くの機能調節に関与している(Kukove
tzら、Naunyn Schmiedeberg's Arch. Pharmacol.、第31
0巻、第129-138頁、1979年;Schramら、Science、第225
巻、第1350−1356頁、1984年;Ignarroら、Annu.Rev.Ph
armacol.Toxicol.、第25巻、第171−191頁、1985年;Ma
rtinら、J.Pharmacol.Exp.、第237巻、第539−547頁、1
986年)。
オチドは、細胞内情報伝達のセカンドメッセンジャーと
して、生体内の多くの機能調節に関与している(Kukove
tzら、Naunyn Schmiedeberg's Arch. Pharmacol.、第31
0巻、第129-138頁、1979年;Schramら、Science、第225
巻、第1350−1356頁、1984年;Ignarroら、Annu.Rev.Ph
armacol.Toxicol.、第25巻、第171−191頁、1985年;Ma
rtinら、J.Pharmacol.Exp.、第237巻、第539−547頁、1
986年)。
【0003】細胞外からのシグナルに応答して変動する
細胞内cAMP及びcGMPの濃度は、その合成に関与
するアデニルシクラーゼ及びグアニルシクラーゼと、環
状ヌクレオチド分解に関与するホスホジエステラーゼ
(PDE)のバランスによって調節されている。
細胞内cAMP及びcGMPの濃度は、その合成に関与
するアデニルシクラーゼ及びグアニルシクラーゼと、環
状ヌクレオチド分解に関与するホスホジエステラーゼ
(PDE)のバランスによって調節されている。
【0004】これまで、哺乳動物の組織から、環状ヌク
レオチドを分解する多くのホスホジエステラーゼが見出
されており、アミノ酸配列の相同性、生化学的性質、阻
害剤による特徴付けなどから、複数の型に分類されてい
る(Beavo、Physiol.Rev.、第75巻、第725−748頁、199
5年)。
レオチドを分解する多くのホスホジエステラーゼが見出
されており、アミノ酸配列の相同性、生化学的性質、阻
害剤による特徴付けなどから、複数の型に分類されてい
る(Beavo、Physiol.Rev.、第75巻、第725−748頁、199
5年)。
【0005】例えば、PDE1は、Ca2+/カルモジュ
リン依存性のPDEであり、cAMPとcGMPの両者
を加水分解する。PDE2はcGMPで活性化され、c
AMPとcGMPの両者を加水分解する。PDE3に分
類されるPDEは、cGMPで阻害される。PDE4
は、cAMPを特異的に基質とし、またロリプラム(Ro
lipram)感受性である。PDE5は、cGMPを特異的
に基質とする。PDE6は、フォトレセプターcGMP
−PDEである。PDE7は、cAMPを特異的に基質
とし、ロリプラム非感受性である。
リン依存性のPDEであり、cAMPとcGMPの両者
を加水分解する。PDE2はcGMPで活性化され、c
AMPとcGMPの両者を加水分解する。PDE3に分
類されるPDEは、cGMPで阻害される。PDE4
は、cAMPを特異的に基質とし、またロリプラム(Ro
lipram)感受性である。PDE5は、cGMPを特異的
に基質とする。PDE6は、フォトレセプターcGMP
−PDEである。PDE7は、cAMPを特異的に基質
とし、ロリプラム非感受性である。
【0006】さらに最近、2種類の新規な型のPDEの
存在が報告されている(Soderlingら、Proc.Natl.Acad.
Sci.USA、第95巻、第8991−8996頁、1998年;Fisher
ら、Biochem.Biophys.Res.Commun.、第246巻、第570−5
77頁、1998年;Soderlingら、J.Biol.Chem.、第273巻、
第15553−15558頁、1998年;Fisherら、J.Biol.Chem.、
第273巻、第15559−15564頁、1998年;Hayashiら、Bioc
hem.Biophys.Res.Commun.、第250巻、第751−756頁、19
98年)。一つはPDE8と称され、cAMPを特異的に
基質とする。もう一つはPDE9と称され、cGMPを
特異的に基質とする。これら2つのPDEはIBMX
(3−イソブチル−1−メチルキサンチン)に対して非感
受性であることが報告されている。
存在が報告されている(Soderlingら、Proc.Natl.Acad.
Sci.USA、第95巻、第8991−8996頁、1998年;Fisher
ら、Biochem.Biophys.Res.Commun.、第246巻、第570−5
77頁、1998年;Soderlingら、J.Biol.Chem.、第273巻、
第15553−15558頁、1998年;Fisherら、J.Biol.Chem.、
第273巻、第15559−15564頁、1998年;Hayashiら、Bioc
hem.Biophys.Res.Commun.、第250巻、第751−756頁、19
98年)。一つはPDE8と称され、cAMPを特異的に
基質とする。もう一つはPDE9と称され、cGMPを
特異的に基質とする。これら2つのPDEはIBMX
(3−イソブチル−1−メチルキサンチン)に対して非感
受性であることが報告されている。
【0007】また、PDEは医薬の開発研究においても
重要な標的分子であり、阻害剤研究が精力的に進められ
ている。既知医薬の中にPDE阻害作用が見出されたも
のがあり、また、特異的なPDE阻害剤が有用な治療薬
となり得ることが見出されている。
重要な標的分子であり、阻害剤研究が精力的に進められ
ている。既知医薬の中にPDE阻害作用が見出されたも
のがあり、また、特異的なPDE阻害剤が有用な治療薬
となり得ることが見出されている。
【0008】例えば、強心剤であるミルリノン(Milrin
one)、ザプリナスト(Zaprinast)は各々PDE3及びP
DE5の阻害剤である(Harrisonら、Mol.Pharmacol.、
第29巻、第506−514頁、1986年;Gillespieら、Mol.Pha
rmacol.、第36巻、第773−781頁、1989年)。また、抗
鬱剤であるロリプラムは、PDE4阻害剤である(Schn
eiderら、Eur.J.Pharmacol.、第127巻、第105−115頁、
1986年)。PDE4阻害剤は、抗炎症剤あるいは喘息治
療薬としても開発されている。また、PDE5の選択的
阻害剤は勃起不全治療薬として開発されている。
one)、ザプリナスト(Zaprinast)は各々PDE3及びP
DE5の阻害剤である(Harrisonら、Mol.Pharmacol.、
第29巻、第506−514頁、1986年;Gillespieら、Mol.Pha
rmacol.、第36巻、第773−781頁、1989年)。また、抗
鬱剤であるロリプラムは、PDE4阻害剤である(Schn
eiderら、Eur.J.Pharmacol.、第127巻、第105−115頁、
1986年)。PDE4阻害剤は、抗炎症剤あるいは喘息治
療薬としても開発されている。また、PDE5の選択的
阻害剤は勃起不全治療薬として開発されている。
【0009】この他、IBMXは、多くの型のPDEに
作用する非選択的阻害剤として知られている。ビンポセ
チン(Vinpocetin)はPDE1阻害剤、EHNA(エリトロ
−9−(2−ヒドロキシ−3−ノニル)アデニン)はP
DE2阻害剤、ジピリダモール(Dipyridamole)はPD
E5とPDE6の阻害剤、SCH51866はPDE1とPDE
5の阻害剤、E4021はPDE5の阻害剤として知られて
いる。
作用する非選択的阻害剤として知られている。ビンポセ
チン(Vinpocetin)はPDE1阻害剤、EHNA(エリトロ
−9−(2−ヒドロキシ−3−ノニル)アデニン)はP
DE2阻害剤、ジピリダモール(Dipyridamole)はPD
E5とPDE6の阻害剤、SCH51866はPDE1とPDE
5の阻害剤、E4021はPDE5の阻害剤として知られて
いる。
【0010】治療効果が高く、副作用の少ない優れた医
薬を開発するためには、標的とするある型のPDEに対
して選択性の高い阻害剤を選択することが望まれてい
る。
薬を開発するためには、標的とするある型のPDEに対
して選択性の高い阻害剤を選択することが望まれてい
る。
【0011】さらに、従来のものとは異なる分子種であ
る新しい型のPDEを見出すことは、細胞内情報伝達の
複合的なメカニズムの研究のためにも、また、新たな治
療薬の標的分子となる可能性からも望まれていた。
る新しい型のPDEを見出すことは、細胞内情報伝達の
複合的なメカニズムの研究のためにも、また、新たな治
療薬の標的分子となる可能性からも望まれていた。
【0012】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、新規
な型のホスホジエステラーゼ(10型ホスホジエステラ
ーゼ(PDE10))およびその遺伝子を提供すること
にある。また、ホスホジエステラーゼ阻害薬の特徴付
け、同定、選択を行う新しい方法を提供することにあ
る。また、上記以外の目的については以下の記載より明
らかである。
な型のホスホジエステラーゼ(10型ホスホジエステラ
ーゼ(PDE10))およびその遺伝子を提供すること
にある。また、ホスホジエステラーゼ阻害薬の特徴付
け、同定、選択を行う新しい方法を提供することにあ
る。また、上記以外の目的については以下の記載より明
らかである。
【0013】
【課題を解決するための手段】発明者らは、従来のもの
とは異なる分子種である新しい型のホスホジエステラー
ゼ(PDE10とも称する)をコードする全長cDNA
をヒト及びラットから単離した。また、ヒトのホスホジ
エステラーゼ(PDE10)を遺伝子組換え技術により
COS細胞中で発現させ、単離することに成功した。さ
らに酵素としての特徴づけを行い、本発明を完成するに
到った。
とは異なる分子種である新しい型のホスホジエステラー
ゼ(PDE10とも称する)をコードする全長cDNA
をヒト及びラットから単離した。また、ヒトのホスホジ
エステラーゼ(PDE10)を遺伝子組換え技術により
COS細胞中で発現させ、単離することに成功した。さ
らに酵素としての特徴づけを行い、本発明を完成するに
到った。
【0014】すなわち、本発明は、10型ホスホジエス
テラーゼ(PDE10)及びその遺伝子である。より詳
細には、以下の(A)又は(B)から選択されるホスホ
ジエステラーゼである。
テラーゼ(PDE10)及びその遺伝子である。より詳
細には、以下の(A)又は(B)から選択されるホスホ
ジエステラーゼである。
【0015】(A)配列番号1、配列番号2、配列番号
15又は配列番号16で示されるアミノ酸配列を有する
蛋白質、及び(B)配列番号1、配列番号2、配列番号
15又は配列番号16で示されるアミノ酸配列におい
て、1もしくは複数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは
付加されたアミノ酸配列を有する蛋白質であって、か
つ、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有する蛋白
質。
15又は配列番号16で示されるアミノ酸配列を有する
蛋白質、及び(B)配列番号1、配列番号2、配列番号
15又は配列番号16で示されるアミノ酸配列におい
て、1もしくは複数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは
付加されたアミノ酸配列を有する蛋白質であって、か
つ、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有する蛋白
質。
【0016】また本発明は、以下の(a)又は(b)か
ら選択される遺伝子又は核酸である。
ら選択される遺伝子又は核酸である。
【0017】(a)配列番号1、配列番号2、配列番号
15又は配列番号16で示される塩基配列を有するDN
Aからなる遺伝子又は核酸、及び、(b)配列番号1、
配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示される
塩基配列を有するDNAとストリンジェントな条件下で
ハイブリダイズするDNAからなる遺伝子又は核酸であ
って、かつ、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有
する蛋白質をコードする遺伝子又は核酸。
15又は配列番号16で示される塩基配列を有するDN
Aからなる遺伝子又は核酸、及び、(b)配列番号1、
配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示される
塩基配列を有するDNAとストリンジェントな条件下で
ハイブリダイズするDNAからなる遺伝子又は核酸であ
って、かつ、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有
する蛋白質をコードする遺伝子又は核酸。
【0018】さらに本発明は、これらを含有する組換え
ベクターならびに宿主細胞である。さらに、これらを用
いて、ホスホジエステラーゼ阻害薬の特徴付け、同定、
選択を行う方法である。
ベクターならびに宿主細胞である。さらに、これらを用
いて、ホスホジエステラーゼ阻害薬の特徴付け、同定、
選択を行う方法である。
【0019】後記配列表の配列番号1及び2は、発明者
らが単離した新規ヒトPDE遺伝子(ヒトPDE10遺
伝子)の翻訳領域全長を含むcDNAの塩基配列(上
段)及びそれにコードされた新規ヒトPDE(ヒトPD
E10)のアミノ酸配列(下段)を表す。
らが単離した新規ヒトPDE遺伝子(ヒトPDE10遺
伝子)の翻訳領域全長を含むcDNAの塩基配列(上
段)及びそれにコードされた新規ヒトPDE(ヒトPD
E10)のアミノ酸配列(下段)を表す。
【0020】配列番号1及び2は新規ヒトPDE遺伝子
(ヒトPDE10遺伝子)の2種類のバリアントに由来
する配列である。
(ヒトPDE10遺伝子)の2種類のバリアントに由来
する配列である。
【0021】前記配列番号1及び配列番号2に示される
塩基配列またはアミノ酸配列について、既知DNAデー
タベース(GenBankおよびEMBL)およびプロ
テインデータベース(NBRFおよびSWISS−PR
OT)に対してホモロジー検索を行った結果、EST
(Genbank/EMBL ID No:W04835及びAI300062)を除き、
同一分子種に由来すると考えられるものは見出されたな
かった。
塩基配列またはアミノ酸配列について、既知DNAデー
タベース(GenBankおよびEMBL)およびプロ
テインデータベース(NBRFおよびSWISS−PR
OT)に対してホモロジー検索を行った結果、EST
(Genbank/EMBL ID No:W04835及びAI300062)を除き、
同一分子種に由来すると考えられるものは見出されたな
かった。
【0022】後記配列表の配列番号15及び16は、発
明者らが単離した新規ラットPDE遺伝子(ラットPD
E10遺伝子)の翻訳領域全長を含むcDNAの塩基配
列(上段)及びそれにコードされた新規ラットPDE
(ラットPDE10)のアミノ酸配列(下段)を表す。
明者らが単離した新規ラットPDE遺伝子(ラットPD
E10遺伝子)の翻訳領域全長を含むcDNAの塩基配
列(上段)及びそれにコードされた新規ラットPDE
(ラットPDE10)のアミノ酸配列(下段)を表す。
【0023】配列番号15及び16は新規ラットPDE
遺伝子(ラットPDE10遺伝子)の2種類のバリアン
トに由来する配列である。
遺伝子(ラットPDE10遺伝子)の2種類のバリアン
トに由来する配列である。
【0024】前記配列番号15及び配列番号16に示さ
れる塩基配列またはアミノ酸配列について、既知DNA
データベース(GenBankおよびEMBL)および
プロテインデータベース(NBRFおよびSWISS−
PROT)に対してホモロジー検索を行った結果、ES
T(Genbank/EMBL ID No:H32734)を除き、同一分子種
に由来すると考えられるものは見出されなかった。
れる塩基配列またはアミノ酸配列について、既知DNA
データベース(GenBankおよびEMBL)および
プロテインデータベース(NBRFおよびSWISS−
PROT)に対してホモロジー検索を行った結果、ES
T(Genbank/EMBL ID No:H32734)を除き、同一分子種
に由来すると考えられるものは見出されなかった。
【0025】ヒトとラットのPDE10各々のアミノ酸
配列を比較した場合、約96%もの高い相同性が認めら
れる。
配列を比較した場合、約96%もの高い相同性が認めら
れる。
【0026】
【発明の実施の形態】本発明の蛋白質としては、配列番
号1、2、15又は16で示されるアミノ酸配列を有す
るものが挙げられる。また、配列番号1、2、15又は
16で示されるアミノ酸配列において、1もしくは複数
個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸
配列を有するものが挙げられる。アミノ酸の欠失、置換
もしくは付加は、環状ヌクレオチドを加水分解する活性
が失われない程度であればよく、通常1〜約160個、
好ましくは1〜約80個、より好ましくは1〜約40個
である。このような蛋白質は、配列番号1、2、15又
は16で示されたアミノ酸配列と通常約80%以上、好
ましくは約90%以上、より好ましくは約95%以上の
アミノ酸レベルのホモロジーを有する。このような蛋白
質には、自然界で発見される変異型蛋白質のほか、人為
的に改変した変異蛋白質、異種生物由来の蛋白質等が含
まれる。
号1、2、15又は16で示されるアミノ酸配列を有す
るものが挙げられる。また、配列番号1、2、15又は
16で示されるアミノ酸配列において、1もしくは複数
個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸
配列を有するものが挙げられる。アミノ酸の欠失、置換
もしくは付加は、環状ヌクレオチドを加水分解する活性
が失われない程度であればよく、通常1〜約160個、
好ましくは1〜約80個、より好ましくは1〜約40個
である。このような蛋白質は、配列番号1、2、15又
は16で示されたアミノ酸配列と通常約80%以上、好
ましくは約90%以上、より好ましくは約95%以上の
アミノ酸レベルのホモロジーを有する。このような蛋白
質には、自然界で発見される変異型蛋白質のほか、人為
的に改変した変異蛋白質、異種生物由来の蛋白質等が含
まれる。
【0027】本発明の遺伝子又は核酸としては、配列番
号1、2、15又は16で示される塩基配列を有するD
NAを含むものが挙げられる。また、配列番号1、2、
15又は16で示される塩基配列を有するDNAとスト
リンジェントな条件下でハイブリダイズし得るDNAを
含むものが挙げられる。このようなハイブリダイズし得
るDNAは、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有
する蛋白質をコードするものであればよい。このような
DNAは、配列番号1、2、15又は16で示される塩
基配列と、通常約70%以上、好ましくは約80%以
上、より好ましくは約90%以上のホモロジーを有す
る。このような遺伝子又は核酸としては、自然界で発見
される変異型遺伝子、人為的に改変した変異型遺伝子、
異種生物由来の相同遺伝子等が含まれる。
号1、2、15又は16で示される塩基配列を有するD
NAを含むものが挙げられる。また、配列番号1、2、
15又は16で示される塩基配列を有するDNAとスト
リンジェントな条件下でハイブリダイズし得るDNAを
含むものが挙げられる。このようなハイブリダイズし得
るDNAは、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有
する蛋白質をコードするものであればよい。このような
DNAは、配列番号1、2、15又は16で示される塩
基配列と、通常約70%以上、好ましくは約80%以
上、より好ましくは約90%以上のホモロジーを有す
る。このような遺伝子又は核酸としては、自然界で発見
される変異型遺伝子、人為的に改変した変異型遺伝子、
異種生物由来の相同遺伝子等が含まれる。
【0028】本発明において、ストリンジェントな条件
下でのハイブリダイゼーションは、通常のストリンジェ
ントな条件では、6×SSCまたはこれと同等の塩濃度
のハイブリダイゼーション溶液中、50〜70℃の温度
条件下、約16時間ハイブリダイゼーションを行い、6
×SSCまたはこれと同等の塩濃度の溶液等で必要に応
じて予備洗浄を行った後、1×SSCまたはこれと同等
の塩濃度の溶液中で洗浄を行うことにより実施できる。
また、より高いストリンジェンシーを有する条件(ハイ
ストリンジェントな条件)では、前記において、洗浄を
0.1×SSCまたはこれと同等の塩濃度の溶液中で行
うことにより実施できる。
下でのハイブリダイゼーションは、通常のストリンジェ
ントな条件では、6×SSCまたはこれと同等の塩濃度
のハイブリダイゼーション溶液中、50〜70℃の温度
条件下、約16時間ハイブリダイゼーションを行い、6
×SSCまたはこれと同等の塩濃度の溶液等で必要に応
じて予備洗浄を行った後、1×SSCまたはこれと同等
の塩濃度の溶液中で洗浄を行うことにより実施できる。
また、より高いストリンジェンシーを有する条件(ハイ
ストリンジェントな条件)では、前記において、洗浄を
0.1×SSCまたはこれと同等の塩濃度の溶液中で行
うことにより実施できる。
【0029】本発明の遺伝子又は核酸は、哺乳動物の組
織や細胞を遺伝子源としてスクリーニングを行うことに
より単離取得できる。哺乳動物としては、イヌ、ウシ、
ウマ、ヤギ、ヒツジ、サル、ブタ、ウサギ、ラットおよ
びマウスなどの非ヒト動物のほか、ヒトが挙げられる。
織や細胞を遺伝子源としてスクリーニングを行うことに
より単離取得できる。哺乳動物としては、イヌ、ウシ、
ウマ、ヤギ、ヒツジ、サル、ブタ、ウサギ、ラットおよ
びマウスなどの非ヒト動物のほか、ヒトが挙げられる。
【0030】本発明の遺伝子又は核酸は、本明細書中に
開示された配列情報(後記配列表の配列番号1、2、1
5及び16)を利用して取得することができる。例え
ば、開示された塩基配列の情報をもとにプライマーやプ
ローブを設計し、これらを用いるPCR(polymerase c
hain reaction)法、コロニーハイブリダイゼーション
法、プラークハイブリダイゼーション法を適宜組み合わ
せて、DNAライブラリーから選択・取得できる。
開示された配列情報(後記配列表の配列番号1、2、1
5及び16)を利用して取得することができる。例え
ば、開示された塩基配列の情報をもとにプライマーやプ
ローブを設計し、これらを用いるPCR(polymerase c
hain reaction)法、コロニーハイブリダイゼーション
法、プラークハイブリダイゼーション法を適宜組み合わ
せて、DNAライブラリーから選択・取得できる。
【0031】例えば、哺乳動物の細胞や組織から調製し
たmRNAからcDNAを合成し、これを鋳型として、
PCR法によりcDNA断片を得る。得られたcDNA
をプローブとして用い、コロニーハイブリダイゼーショ
ン法又はプラークハイブリダイゼーション法によりcD
NAライブラリーをスクリーニングして、全長cDNA
を取得できる。また、ゲノミックDNAライブラリーを
スクリーニングすることにより、ゲノム遺伝子を単離す
ることができる。また、他の哺乳動物のDNAライブラ
リーをスクリーニングすることにより、異種生物由来の
相同遺伝子を単離することができる。このような哺乳動
物としては、例えばイヌ、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、
サル、ブタ、ウサギおよびラットなどの非ヒト動物のほ
か、ヒトが挙げられる。
たmRNAからcDNAを合成し、これを鋳型として、
PCR法によりcDNA断片を得る。得られたcDNA
をプローブとして用い、コロニーハイブリダイゼーショ
ン法又はプラークハイブリダイゼーション法によりcD
NAライブラリーをスクリーニングして、全長cDNA
を取得できる。また、ゲノミックDNAライブラリーを
スクリーニングすることにより、ゲノム遺伝子を単離す
ることができる。また、他の哺乳動物のDNAライブラ
リーをスクリーニングすることにより、異種生物由来の
相同遺伝子を単離することができる。このような哺乳動
物としては、例えばイヌ、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、
サル、ブタ、ウサギおよびラットなどの非ヒト動物のほ
か、ヒトが挙げられる。
【0032】cDNAライブラリーおよびゲノミックD
NAライブラリー等のDNAライブラリーは、例えば、
「Molecular Cloning」(Sambrook,
J.,Fritsch, E.F.およびManiatis, T.著、Cold Spring
Harbor Laboratory Pressより1989年に発刊)に記
載の方法により調製することができる。あるいは、市販
のライブラリーがある場合はこれを用いてもよい。
NAライブラリー等のDNAライブラリーは、例えば、
「Molecular Cloning」(Sambrook,
J.,Fritsch, E.F.およびManiatis, T.著、Cold Spring
Harbor Laboratory Pressより1989年に発刊)に記
載の方法により調製することができる。あるいは、市販
のライブラリーがある場合はこれを用いてもよい。
【0033】得られたcDNAの塩基配列を決定するこ
とにより、遺伝子産物の蛋白質をコードする翻訳領域を
決定でき、この蛋白質のアミノ酸配列を得ることができ
る。
とにより、遺伝子産物の蛋白質をコードする翻訳領域を
決定でき、この蛋白質のアミノ酸配列を得ることができ
る。
【0034】本発明のPDEは、通常の遺伝子組換え技
術により過剰発現(overexpression)させ生産すること
ができる。また、他の蛋白質やペプチドとの融合蛋白
(fusion protein)の形で発現させ生産することもでき
る。
術により過剰発現(overexpression)させ生産すること
ができる。また、他の蛋白質やペプチドとの融合蛋白
(fusion protein)の形で発現させ生産することもでき
る。
【0035】例えば、PDEをコードするDNAを、適
当なプロモーターの下流に連結される形でベクターに挿
入し、発現ベクターを構築する。ついで得られた発現ベ
クターを宿主細胞に導入する。
当なプロモーターの下流に連結される形でベクターに挿
入し、発現ベクターを構築する。ついで得られた発現ベ
クターを宿主細胞に導入する。
【0036】発現系(宿主−ベクター系)としては、例
えば、細菌、酵母、昆虫細胞及び哺乳動物細胞の発現系
などが挙げられる。このうち、機能がよく保存された蛋
白質を得るためには、昆虫細胞(Spodoptera frugiperd
a SF9、SF21等)および哺乳動物細胞(サルCOS−7
細胞、チャイニーズハムスターCHO細胞、ヒトHeL
a細胞等)を宿主として用いることが好ましい。
えば、細菌、酵母、昆虫細胞及び哺乳動物細胞の発現系
などが挙げられる。このうち、機能がよく保存された蛋
白質を得るためには、昆虫細胞(Spodoptera frugiperd
a SF9、SF21等)および哺乳動物細胞(サルCOS−7
細胞、チャイニーズハムスターCHO細胞、ヒトHeL
a細胞等)を宿主として用いることが好ましい。
【0037】ベクターとしては、哺乳動物細胞系の場
合、レトロウイルス系ベクター、パピローマウイルスベ
クター、ワクシニアウイルスベクター、SV40系ベク
ター等、昆虫細胞系の場合、バキュロウイルスベクター
等を用いることができる。
合、レトロウイルス系ベクター、パピローマウイルスベ
クター、ワクシニアウイルスベクター、SV40系ベク
ター等、昆虫細胞系の場合、バキュロウイルスベクター
等を用いることができる。
【0038】プロモーターとしては、哺乳動物細胞系の
場合、SV40プロモーター、LTRプロモーター、エ
ロンゲーション1αプロモーター等、昆虫細胞系の場
合、ポリヘドリンプロモーター等を用いることができ
る。
場合、SV40プロモーター、LTRプロモーター、エ
ロンゲーション1αプロモーター等、昆虫細胞系の場
合、ポリヘドリンプロモーター等を用いることができ
る。
【0039】PDEをコードするDNAとしては、自然
界に存在するmRNAに対応するcDNA(例えば、配
列番号1、2、15及び16に示される塩基配列を有す
るもの)を用いることができるが、これに限定されな
い。目的とする蛋白質のアミノ酸配列に対応するDNA
を設計して用いることもできる。この場合、ひとつのア
ミノ酸をコードするコドンは各々1〜6種類知られてお
り、用いるコドンの選択は任意でよいが、例えば発現に
利用する宿主のコドン使用頻度を考慮して、より発現効
率の高い配列を設計することができる。設計した塩基配
列を持つDNAは、DNAの化学合成、前記cDNAの
断片化と結合、塩基配列の一部改変等によって取得でき
る。人為的な塩基配列の一部改変、変異導入は、所望の
改変をコードする合成オリゴヌクレオチドからなるプラ
イマーを利用して部位特異的変異導入法(site specifi
c mutagenesis)(Proceedings of National Academy o
f Sciences、第81巻、第5662〜5666頁、1984年) 等に
よって実施できる。
界に存在するmRNAに対応するcDNA(例えば、配
列番号1、2、15及び16に示される塩基配列を有す
るもの)を用いることができるが、これに限定されな
い。目的とする蛋白質のアミノ酸配列に対応するDNA
を設計して用いることもできる。この場合、ひとつのア
ミノ酸をコードするコドンは各々1〜6種類知られてお
り、用いるコドンの選択は任意でよいが、例えば発現に
利用する宿主のコドン使用頻度を考慮して、より発現効
率の高い配列を設計することができる。設計した塩基配
列を持つDNAは、DNAの化学合成、前記cDNAの
断片化と結合、塩基配列の一部改変等によって取得でき
る。人為的な塩基配列の一部改変、変異導入は、所望の
改変をコードする合成オリゴヌクレオチドからなるプラ
イマーを利用して部位特異的変異導入法(site specifi
c mutagenesis)(Proceedings of National Academy o
f Sciences、第81巻、第5662〜5666頁、1984年) 等に
よって実施できる。
【0040】本発明のPDEは、発現ベクターを導入し
た細胞の培養物などから、公知の精製方法(無機塩類に
よる塩析、有機溶媒による分画沈殿、イオン交換樹脂カ
ラムクロマトグラフィー、アフィニティーカラムクロマ
トグラフィー、ゲルろ過法など)を適宜組合せることに
よって、分離精製できる。
た細胞の培養物などから、公知の精製方法(無機塩類に
よる塩析、有機溶媒による分画沈殿、イオン交換樹脂カ
ラムクロマトグラフィー、アフィニティーカラムクロマ
トグラフィー、ゲルろ過法など)を適宜組合せることに
よって、分離精製できる。
【0041】本発明の遺伝子又は核酸とストリンジェン
トな条件下でハイブリダイズする核酸(オリゴヌクレオ
チドもしくポリヌクレオチド)は、本発明の遺伝子を検
出するためのプローブとして使用できる。また、遺伝子
の発現を変調させるために、例えばアンチセンスオリゴ
ヌクレオチドや、リボザイム、デコイとして使用するこ
ともできる。このような核酸としては、例えば、配列番
号1、2、15又は16で示される塩基配列の中の通
常、連続する14塩基以上の部分配列もしくはその相補
的な配列を有するヌクレオチドを用いることができる。
トな条件下でハイブリダイズする核酸(オリゴヌクレオ
チドもしくポリヌクレオチド)は、本発明の遺伝子を検
出するためのプローブとして使用できる。また、遺伝子
の発現を変調させるために、例えばアンチセンスオリゴ
ヌクレオチドや、リボザイム、デコイとして使用するこ
ともできる。このような核酸としては、例えば、配列番
号1、2、15又は16で示される塩基配列の中の通
常、連続する14塩基以上の部分配列もしくはその相補
的な配列を有するヌクレオチドを用いることができる。
【0042】本発明のPDE又はこれと免疫学的同等性
を有する蛋白質もしくはペプチド(蛋白質の断片または
部分配列を有する合成ペプチド等)を抗原として用い
て、本発明のPDEを認識する抗体を取得することがで
きる。免役学的同等性を有するとは、例えば本発明のP
DEに対する抗体と交差反応を生じるということを意味
する。
を有する蛋白質もしくはペプチド(蛋白質の断片または
部分配列を有する合成ペプチド等)を抗原として用い
て、本発明のPDEを認識する抗体を取得することがで
きる。免役学的同等性を有するとは、例えば本発明のP
DEに対する抗体と交差反応を生じるということを意味
する。
【0043】ポリクローナル抗体は、宿主動物(例え
ば、ラットやウサギ等)に抗原を接種し、免疫血清を回
収する通常の方法により製造することができる。モノク
ローナル抗体は、通常のハイブリドーマ法などの技術に
より製造できる。また、モノクローナル抗体の遺伝子を
改変してヒト化モノクローナル抗体等を作製できる。
ば、ラットやウサギ等)に抗原を接種し、免疫血清を回
収する通常の方法により製造することができる。モノク
ローナル抗体は、通常のハイブリドーマ法などの技術に
より製造できる。また、モノクローナル抗体の遺伝子を
改変してヒト化モノクローナル抗体等を作製できる。
【0044】上記で得られた抗体を用いて、通常の免疫
化学的方法(enzyme immuno assay法など)により、本
発明のPDEの細胞中又は組織中などにおける発現を検
出することができる。あるいは、抗体を用いるアフィニ
ティクロマトグラフィーにより本発明のPDEの精製を
実施することができる。
化学的方法(enzyme immuno assay法など)により、本
発明のPDEの細胞中又は組織中などにおける発現を検
出することができる。あるいは、抗体を用いるアフィニ
ティクロマトグラフィーにより本発明のPDEの精製を
実施することができる。
【0045】本発明のPDEが、環状ヌクレオチド(c
AMP又はcGMP)を加水分解する活性を有すること
は、一般的に知られた通常のPDE活性測定の方法(Th
ompsonら、Adv.Cyclic Nucleotide Res.、第10巻、第69
−92頁、1979年;Yanakaら、Eur.J.Biochem.、第255
巻、第391−399頁、1998年)により確認することができ
る。
AMP又はcGMP)を加水分解する活性を有すること
は、一般的に知られた通常のPDE活性測定の方法(Th
ompsonら、Adv.Cyclic Nucleotide Res.、第10巻、第69
−92頁、1979年;Yanakaら、Eur.J.Biochem.、第255
巻、第391−399頁、1998年)により確認することができ
る。
【0046】酵素反応の基質としては、cAMP及びc
GMPなどの環状ヌクレオチド及びその誘導体を用いる
ことができる。本発明のPDEは、cAMP及びcGM
Pのいずれをも基質としこれらを加水分解する。
GMPなどの環状ヌクレオチド及びその誘導体を用いる
ことができる。本発明のPDEは、cAMP及びcGM
Pのいずれをも基質としこれらを加水分解する。
【0047】本発明のPDEは、ホスホジエステラーゼ
阻害剤の特徴付け、同定又は選択のために使用すること
ができる。
阻害剤の特徴付け、同定又は選択のために使用すること
ができる。
【0048】例えば、本発明のPDE、酵素の基質及び
被験物質(好ましくは低分子化合物など)を含む系内で
酵素反応を行い、酵素活性(環状ヌクレオチドを加水分
解する活性)に対する被験物質の阻害作用を検定する。
被験物質(好ましくは低分子化合物など)を含む系内で
酵素反応を行い、酵素活性(環状ヌクレオチドを加水分
解する活性)に対する被験物質の阻害作用を検定する。
【0049】あるいは、本発明のPDE及び被験物質
(好ましくは低分子化合物など)を含む系内で結合反応
を行い、被験物質が本発明のPDEに対して結合能を有
するか否かを検定する。結合能力を有する被験物質(リ
ガンド)は、阻害剤となる可能性が高い。
(好ましくは低分子化合物など)を含む系内で結合反応
を行い、被験物質が本発明のPDEに対して結合能を有
するか否かを検定する。結合能力を有する被験物質(リ
ガンド)は、阻害剤となる可能性が高い。
【0050】さらに、被験物質(好ましくは低分子化合
物など)について、本発明のPDEに対する阻害作用
(又は結合能)を調べ、他の型のPDEに対する阻害作
用(又は結合能)と比較することにより阻害作用(又は
結合能)の選択性を判定できる。これにより、特定の型
のPDEに対して相対的に高い作用を有する阻害剤(選
択的な阻害剤)を選択することができる。また、阻害剤
を同定し、特徴付けることができる。
物など)について、本発明のPDEに対する阻害作用
(又は結合能)を調べ、他の型のPDEに対する阻害作
用(又は結合能)と比較することにより阻害作用(又は
結合能)の選択性を判定できる。これにより、特定の型
のPDEに対して相対的に高い作用を有する阻害剤(選
択的な阻害剤)を選択することができる。また、阻害剤
を同定し、特徴付けることができる。
【0051】以下、実施例をもって本発明をさらに詳し
く説明するが、これらの実施例は本発明を制限するもの
ではない。
く説明するが、これらの実施例は本発明を制限するもの
ではない。
【0052】なお、下記実施例において、各操作は特に
明示がない限り、「モレキュラークローニング(Molecu
lar Cloning)」(Sambrook, J., Fritsch, E.F.及びMa
niatis, T. 著、Cold Spring Harbor Laboratory Press
より1989年に発刊)に記載の方法により行うか、また
は、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示
書に従って使用した。
明示がない限り、「モレキュラークローニング(Molecu
lar Cloning)」(Sambrook, J., Fritsch, E.F.及びMa
niatis, T. 著、Cold Spring Harbor Laboratory Press
より1989年に発刊)に記載の方法により行うか、また
は、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示
書に従って使用した。
【0053】
【実施例】実施例1 ヒト新規PDE(PDE10)の
cDNAの単離(1) ヒトPDE5A(Genbank/EMBL データベース Accessio
n No.D89094;Yanakaら、Eur.J.Biochem.、第255巻、
第391〜399頁、1998年)のC−末端触媒領域(第500
〜875番目のアミノ酸残基に相当する領域)のアミノ
酸配列をクエリー配列として、BLAST(Basic
Local Alignment Search T
ool)法により、EST(Expressed se
quence tags)データベースを検索した。こ
れにより、いくつかのESTがヒトPDE5AのC−末
端触媒領域と相同性を有するものとして見出され、さら
にこれらの中から、既知PDEの配列とは異なる新規配
列を有する一つのEST(ID No:W04835)を見出した。
cDNAの単離(1) ヒトPDE5A(Genbank/EMBL データベース Accessio
n No.D89094;Yanakaら、Eur.J.Biochem.、第255巻、
第391〜399頁、1998年)のC−末端触媒領域(第500
〜875番目のアミノ酸残基に相当する領域)のアミノ
酸配列をクエリー配列として、BLAST(Basic
Local Alignment Search T
ool)法により、EST(Expressed se
quence tags)データベースを検索した。こ
れにより、いくつかのESTがヒトPDE5AのC−末
端触媒領域と相同性を有するものとして見出され、さら
にこれらの中から、既知PDEの配列とは異なる新規配
列を有する一つのEST(ID No:W04835)を見出した。
【0054】このEST(ID No.W04835)に相当するD
NA断片(約400bp)を、PCR(polymerase chai
n reaction)法にて取得した。
NA断片(約400bp)を、PCR(polymerase chai
n reaction)法にて取得した。
【0055】PCRの反応は、1サイクルが94℃1分
間、55℃2分間、および72℃2分間の条件で、合計
60サイクル行った。
間、55℃2分間、および72℃2分間の条件で、合計
60サイクル行った。
【0056】最初の30サイクルは、プライマーとし
て、後記配列表の配列番号3及び配列番号4に示した配
列を有するオリゴヌクレオチドを、各々センスプライマ
ー及びアンチセンスプライマーとして用いた。また、鋳
型としては、ヒト胎児肺由来cDNAライブラリー(ベ
クター:λgt11ファージ)(Clontech社
製)を用いた。
て、後記配列表の配列番号3及び配列番号4に示した配
列を有するオリゴヌクレオチドを、各々センスプライマ
ー及びアンチセンスプライマーとして用いた。また、鋳
型としては、ヒト胎児肺由来cDNAライブラリー(ベ
クター:λgt11ファージ)(Clontech社
製)を用いた。
【0057】続く30サイクルは、前記PCRの産物の
1/10量を鋳型として行った。プライマーは、後記配
列表の配列番号5及び配列番号6に示した配列を有する
オリゴヌクレオチドを、各々センスプライマー及びアン
チセンスプライマーとして用いた。
1/10量を鋳型として行った。プライマーは、後記配
列表の配列番号5及び配列番号6に示した配列を有する
オリゴヌクレオチドを、各々センスプライマー及びアン
チセンスプライマーとして用いた。
【0058】得られたPCR産物を制限酵素で処理した
後、ベクタープラスミドpGEM−Teasy(Pro
mega社製)に連結し、その塩基配列を決定した。塩
基配列は、自動DNAシーケンサー(LI−COR40
00L;LI−COR社製およびABI PRISM3
10;PEアプライドバイオシステムズ社製)を用い、
ダイデオキシ法により決定した(以下、同)。これによ
り、得られたDNA断片が、前記EST(ID No.W0483
5)とほぼ同様の配列を有していることを確認した。
後、ベクタープラスミドpGEM−Teasy(Pro
mega社製)に連結し、その塩基配列を決定した。塩
基配列は、自動DNAシーケンサー(LI−COR40
00L;LI−COR社製およびABI PRISM3
10;PEアプライドバイオシステムズ社製)を用い、
ダイデオキシ法により決定した(以下、同)。これによ
り、得られたDNA断片が、前記EST(ID No.W0483
5)とほぼ同様の配列を有していることを確認した。
【0059】このDNA断片(32Pでラベルしたもの)
をプローブとし、プラークハイブリダイゼーションを行
った。cDNAライブラリーは、前記と同様のヒト胎児
肺由来cDNAライブラリーを用いた。
をプローブとし、プラークハイブリダイゼーションを行
った。cDNAライブラリーは、前記と同様のヒト胎児
肺由来cDNAライブラリーを用いた。
【0060】プラークハイブリダイゼーションは、以下
のように高ストリンジェントな条件下で行った。すなわ
ち、プラ−クをアルカリ処理し、DNAを変性固定した
ナイロンメンブレン(Hybond-N+)を、プローブを含む
ハイブリダイゼーション溶液(6xSSC、0.5%S
DS、5xデンハルト溶液、100μg/mlのサケ精
子DNA)中、65℃、16時間、置いてハイブリダイ
ゼーションさせた。(なお、1xSSCの組成は、0.
15M塩化ナトリウムおよび15mMクエン酸ナトリウ
ム、pH7.0であり、1xデンハルト溶液の組成は、
0.02%ウシ血清アルブミン、0.02%ポリビニル
ピロリドンおよびFicoll 400である。以下、
同)ついで予備洗浄溶液(2xSSC、0.5%SD
S)を用い、室温で10分間、メンブレンを洗浄した
後、さらに洗浄溶液(0.1xSSC、0.5%SD
S)を用い、65℃で30分間、2度洗浄した。その後
−70℃で1日間、オートラジオグラフィーを行い、陽
性クローンを検出した。
のように高ストリンジェントな条件下で行った。すなわ
ち、プラ−クをアルカリ処理し、DNAを変性固定した
ナイロンメンブレン(Hybond-N+)を、プローブを含む
ハイブリダイゼーション溶液(6xSSC、0.5%S
DS、5xデンハルト溶液、100μg/mlのサケ精
子DNA)中、65℃、16時間、置いてハイブリダイ
ゼーションさせた。(なお、1xSSCの組成は、0.
15M塩化ナトリウムおよび15mMクエン酸ナトリウ
ム、pH7.0であり、1xデンハルト溶液の組成は、
0.02%ウシ血清アルブミン、0.02%ポリビニル
ピロリドンおよびFicoll 400である。以下、
同)ついで予備洗浄溶液(2xSSC、0.5%SD
S)を用い、室温で10分間、メンブレンを洗浄した
後、さらに洗浄溶液(0.1xSSC、0.5%SD
S)を用い、65℃で30分間、2度洗浄した。その後
−70℃で1日間、オートラジオグラフィーを行い、陽
性クローンを検出した。
【0061】得られた陽性クローン(クローンヒトPD
E10A1と称する)から挿入cDNA断片を単離し、
ベクタープラスミドpBluescriptII SK
(+)(Stratagene社製)にサブクローニン
グした。得られたプラスミドを用いcDNA断片の塩基
配列を決定した。
E10A1と称する)から挿入cDNA断片を単離し、
ベクタープラスミドpBluescriptII SK
(+)(Stratagene社製)にサブクローニン
グした。得られたプラスミドを用いcDNA断片の塩基
配列を決定した。
【0062】単離したcDNA(4576bp)は、新
規なヒトPDE(以下、PDE10と称する)遺伝子の
全長cDNAであると考えられた。このcDNAの塩基
配列を解析して、オープンリーディングフレームを同定
し、さらにそれにコードされる蛋白質のアミノ酸配列を
決定した。
規なヒトPDE(以下、PDE10と称する)遺伝子の
全長cDNAであると考えられた。このcDNAの塩基
配列を解析して、オープンリーディングフレームを同定
し、さらにそれにコードされる蛋白質のアミノ酸配列を
決定した。
【0063】後記配列表の配列番号1に、この全長cD
NAの塩基配列(配列番号1上段)及びそれにコードさ
れる蛋白質(新規なヒトPDE(PDE10))のアミ
ノ酸配列(配列番号1下段)を示した。アミノ酸配列
(779アミノ酸残基)から推定されるPDE10の分
子量は、約88Kdであった。
NAの塩基配列(配列番号1上段)及びそれにコードさ
れる蛋白質(新規なヒトPDE(PDE10))のアミ
ノ酸配列(配列番号1下段)を示した。アミノ酸配列
(779アミノ酸残基)から推定されるPDE10の分
子量は、約88Kdであった。
【0064】また、既知PDEとのアミノ酸配列上のホ
モロジーを調べたところ、配列の類似性から、PDE1
0のcGMP結合領域及び触媒領域は、各々第243〜
445番目及び493〜728番目のアミノ酸残基に相
当する領域と推定された。
モロジーを調べたところ、配列の類似性から、PDE1
0のcGMP結合領域及び触媒領域は、各々第243〜
445番目及び493〜728番目のアミノ酸残基に相
当する領域と推定された。
【0065】PDE10のアミノ酸配列を、既知の各種
cGMP結合型ヒトPDEと比較すると、触媒領域にお
いては、PDE2Aと42%、PDE5Aと47%、P
DE6Aと40%、PDE6Bと42%のホモロジーを
示した。
cGMP結合型ヒトPDEと比較すると、触媒領域にお
いては、PDE2Aと42%、PDE5Aと47%、P
DE6Aと40%、PDE6Bと42%のホモロジーを
示した。
【0066】また、cGMP結合領域においては、PD
E2A、PDE5A及び光受容体ホスホジエステラーゼ
と、各々の18〜38%のホモロジーを示した。
E2A、PDE5A及び光受容体ホスホジエステラーゼ
と、各々の18〜38%のホモロジーを示した。
【0067】PDE10は、典型的なcGMP結合モチ
ーフを含むcGMP結合領域を1つ有する。しかし、P
DE5A中に見つけられたcAMP又はcGMP依存キ
ナーゼのリン酸化領域は、この配列中には認めれなかっ
た。
ーフを含むcGMP結合領域を1つ有する。しかし、P
DE5A中に見つけられたcAMP又はcGMP依存キ
ナーゼのリン酸化領域は、この配列中には認めれなかっ
た。
【0068】さらに、得られたPDE10のcDNA塩
基配列情報をもとに翻訳領域を囲むPCRプライマーを
設計し、これを用いるRT−PCR(reverse transcri
pt -polymerase chain reaction) により、ヒト肺由来
mRNA中に前記と同一のPDE10クローンが存在す
ることを以下のようにして確認した。
基配列情報をもとに翻訳領域を囲むPCRプライマーを
設計し、これを用いるRT−PCR(reverse transcri
pt -polymerase chain reaction) により、ヒト肺由来
mRNA中に前記と同一のPDE10クローンが存在す
ることを以下のようにして確認した。
【0069】すなわち、ヒト胎児肺ポリ(A)+RNA
(Clontech Laboratories社製)
とランダムプライマー(ヘキサマー)を用いて42℃、
60分間、逆転写反応を行った後、得られたcDNAを
鋳型としてPCRを行った。PCRのプライマーは、後
記配列表の配列番号7〜10に示した塩基配列を有する
オリゴヌクレオチドを合成して用いた。PCRの反応は
前記と同様の条件で行った。
(Clontech Laboratories社製)
とランダムプライマー(ヘキサマー)を用いて42℃、
60分間、逆転写反応を行った後、得られたcDNAを
鋳型としてPCRを行った。PCRのプライマーは、後
記配列表の配列番号7〜10に示した塩基配列を有する
オリゴヌクレオチドを合成して用いた。PCRの反応は
前記と同様の条件で行った。
【0070】PCRで増幅されたDNA断片(約2.4
kb)の塩基配列を決定し、前記cDNA配列と比較し
たところ、PCRで増幅された部分の塩基配列は一致し
た。
kb)の塩基配列を決定し、前記cDNA配列と比較し
たところ、PCRで増幅された部分の塩基配列は一致し
た。
【0071】実施例2 ヒト新規PDE(PDE10)
のcDNAの単離(2) 前記実施例1で得られたPDE10のcDNA塩基配列
情報をもとに翻訳領域を囲むPCRプライマーを設計
し、これを用いるRT−PCRにより、新たなcDNA
クローンの取得を試みた。
のcDNAの単離(2) 前記実施例1で得られたPDE10のcDNA塩基配列
情報をもとに翻訳領域を囲むPCRプライマーを設計
し、これを用いるRT−PCRにより、新たなcDNA
クローンの取得を試みた。
【0072】まず、ヒト胎児肺ポリ(A)+RNA(C
lontech Laboratories社製)とラ
ンダムプライマー(ヘキサマー)を用いて42℃、60
分間、逆転写反応を行った後、得られたcDNAを鋳型
としてPCRを行った。PCRのプライマーは、後記配
列表の配列番号11〜14に示した塩基配列を有するオ
リゴヌクレオチドを合成して用いた。PCRの反応は、
1サイクルが94℃30秒間、55℃30秒間、および
72℃2分間の条件で、合計60サイクル行い、最終サ
イクルとして72℃で5分間の条件で1サイクルを行っ
た。
lontech Laboratories社製)とラ
ンダムプライマー(ヘキサマー)を用いて42℃、60
分間、逆転写反応を行った後、得られたcDNAを鋳型
としてPCRを行った。PCRのプライマーは、後記配
列表の配列番号11〜14に示した塩基配列を有するオ
リゴヌクレオチドを合成して用いた。PCRの反応は、
1サイクルが94℃30秒間、55℃30秒間、および
72℃2分間の条件で、合計60サイクル行い、最終サ
イクルとして72℃で5分間の条件で1サイクルを行っ
た。
【0073】最初の30サイクルは、プライマーとし
て、後記配列表の配列番号11及び配列番号12に示し
た配列を有するオリゴヌクレオチドを、各々センスプラ
イマー及びアンチセンスプライマーとして用いた。続く
30サイクルは、プライマーとして、後記配列表の配列
番号13及び配列番号14に示した配列を有するオリゴ
ヌクレオチドを、各々センスプライマー及びアンチセン
スプライマーとして用いた。
て、後記配列表の配列番号11及び配列番号12に示し
た配列を有するオリゴヌクレオチドを、各々センスプラ
イマー及びアンチセンスプライマーとして用いた。続く
30サイクルは、プライマーとして、後記配列表の配列
番号13及び配列番号14に示した配列を有するオリゴ
ヌクレオチドを、各々センスプライマー及びアンチセン
スプライマーとして用いた。
【0074】PCRで増幅されたDNA断片(約2.4
kb)を新規cDNAクローン(クローンヒトPDE1
0A2と称する)として取得し、その塩基配列を決定し
た。
kb)を新規cDNAクローン(クローンヒトPDE1
0A2と称する)として取得し、その塩基配列を決定し
た。
【0075】これを、実施例1で得たcDNA配列と比
較したところ、5'末端領域で一部塩基配列の相違が見
られたが、それ以外では一致していた。
較したところ、5'末端領域で一部塩基配列の相違が見
られたが、それ以外では一致していた。
【0076】新たに得られたクローン(ヒトPDE10
A2)のcDNA塩基配列及びそれにコードされる蛋白
質のアミノ酸配列を、後記配列表の配列番号2に示し
た。
A2)のcDNA塩基配列及びそれにコードされる蛋白
質のアミノ酸配列を、後記配列表の配列番号2に示し
た。
【0077】新たに得られたクローン(ヒトPDE10
A2)は、実施例1のPDE10(ヒトPDE10A1
と称する)のスプライシングバリアントに相当すると推
察された。ヒトPDE10A1とヒトPDE10A2
は、アミノ酸配列上のN末端側(配列番号1の第1〜1
3番目のアミノ酸残基、配列番号2の第1〜23番目の
アミノ酸残基)及びこれらに対応するcDNA配列が相
違している。またこの相違部分には、cAMP又はcG
MP依存キナーゼによってリン酸化を受けるとされるア
ミノ酸配列のモチーフが存在することを確認した。
A2)は、実施例1のPDE10(ヒトPDE10A1
と称する)のスプライシングバリアントに相当すると推
察された。ヒトPDE10A1とヒトPDE10A2
は、アミノ酸配列上のN末端側(配列番号1の第1〜1
3番目のアミノ酸残基、配列番号2の第1〜23番目の
アミノ酸残基)及びこれらに対応するcDNA配列が相
違している。またこの相違部分には、cAMP又はcG
MP依存キナーゼによってリン酸化を受けるとされるア
ミノ酸配列のモチーフが存在することを確認した。
【0078】実施例3 ヒトPDE10のCOS細胞
中での発現と精製 (1)PDE10発現用ベクタープラスミドの構築 前記実施例1で得たヒトPDE10のcDNAを、制限
酵素SspI及びNotIで消化し、得られた断片(約
2.8kb)をベクタープラスミドpBluescri
pt II SK(+)(Stratagene社製)
のSpeI(平滑末端化)−NotI部位に挿入した。
得られたプラスミドを、制限酵素NotI(平滑末端
化)及びBamHIで消化し得られた断片(約2.8k
b)を、ベクタープラスミドpSVL(Amersha
m Pharmacia Biotech社製)のXb
aI(平滑末端化)−BamHI部位に挿入して、PD
E10発現用ベクタープラスミドpSVL−PDE10
を得た。pSVL−PDE10においては、SV40プ
ロモーターの下流にヒトPDE10のcDNAが機能的
に連結されている。
中での発現と精製 (1)PDE10発現用ベクタープラスミドの構築 前記実施例1で得たヒトPDE10のcDNAを、制限
酵素SspI及びNotIで消化し、得られた断片(約
2.8kb)をベクタープラスミドpBluescri
pt II SK(+)(Stratagene社製)
のSpeI(平滑末端化)−NotI部位に挿入した。
得られたプラスミドを、制限酵素NotI(平滑末端
化)及びBamHIで消化し得られた断片(約2.8k
b)を、ベクタープラスミドpSVL(Amersha
m Pharmacia Biotech社製)のXb
aI(平滑末端化)−BamHI部位に挿入して、PD
E10発現用ベクタープラスミドpSVL−PDE10
を得た。pSVL−PDE10においては、SV40プ
ロモーターの下流にヒトPDE10のcDNAが機能的
に連結されている。
【0079】(2)COS細胞中での発現 COS−7細胞(ATCC;CRL1651)は、10
%ウシ胎児血清、100ユニット/mlペニシリン及び
100μM/ストレプトマイシンを添加したダルベッコ
・イーグル培地(Dulbecco's modified Eagle's mediu
m)(Gibco社製)中、37℃、5%二酸化炭素の
条件下で継代培養した。
%ウシ胎児血清、100ユニット/mlペニシリン及び
100μM/ストレプトマイシンを添加したダルベッコ
・イーグル培地(Dulbecco's modified Eagle's mediu
m)(Gibco社製)中、37℃、5%二酸化炭素の
条件下で継代培養した。
【0080】COS−7細胞に、前記pSVL−PDE
10(又は対照としてベクターpSVL)をトランスフ
ェクション(一過性トランスフェクション;transient
transfection)した。トランスフェクションは、ポリカ
チオン性リポソーム試薬(商品名:LipofectAMINE、G
ibco社製)を用いて行った。
10(又は対照としてベクターpSVL)をトランスフ
ェクション(一過性トランスフェクション;transient
transfection)した。トランスフェクションは、ポリカ
チオン性リポソーム試薬(商品名:LipofectAMINE、G
ibco社製)を用いて行った。
【0081】(3)組換えヒトPDE10の精製 トランスフェクションの48時間後、細胞を、氷冷した
リン酸塩緩衝液で洗浄した後、氷冷ホモジナイズ用緩衝
液(20mM Tris−HCl、pH7.4、2mM
酢酸マグネシウム、0.3mM塩化カルシウム、1mM
ジチオスレイトール、40μMロイペプチン、1.3m
Mベンズアミジン、0.2mMフェニルメチルスルホニ
ル フルオリド、1mMアジ化ナトリウム)中で超音波
処理して破砕した。得られたホモジネートを遠心(10
0000g、60分間)し、上清を分取した。
リン酸塩緩衝液で洗浄した後、氷冷ホモジナイズ用緩衝
液(20mM Tris−HCl、pH7.4、2mM
酢酸マグネシウム、0.3mM塩化カルシウム、1mM
ジチオスレイトール、40μMロイペプチン、1.3m
Mベンズアミジン、0.2mMフェニルメチルスルホニ
ル フルオリド、1mMアジ化ナトリウム)中で超音波
処理して破砕した。得られたホモジネートを遠心(10
0000g、60分間)し、上清を分取した。
【0082】溶出緩衝液(20mM Tris−HC
l、pH7.4、1mM塩化カルシウム、1mMジチオ
トレイトール、2μMロイペプチン、5mMベンズアミ
ジン)で平衡化したMonoQセファロース高速カラム
(Amersham Pharmacia Biote
ch社製)に、前記で得た上清を供した。カラムを溶出
緩衝液20mlで洗浄した後、塩化ナトリウム勾配
(0、350及び800mM、各20ml)で蛋白を溶
出し、氷冷下2mlずつ分画した。各画分について、c
AMP及びcGMPを基質とする加水分解活性(PDE
活性)を測定した。
l、pH7.4、1mM塩化カルシウム、1mMジチオ
トレイトール、2μMロイペプチン、5mMベンズアミ
ジン)で平衡化したMonoQセファロース高速カラム
(Amersham Pharmacia Biote
ch社製)に、前記で得た上清を供した。カラムを溶出
緩衝液20mlで洗浄した後、塩化ナトリウム勾配
(0、350及び800mM、各20ml)で蛋白を溶
出し、氷冷下2mlずつ分画した。各画分について、c
AMP及びcGMPを基質とする加水分解活性(PDE
活性)を測定した。
【0083】PDE活性の測定は、ラジオラベル核酸法
により行った。すなわち、1μMの非標識cGMP(又
はcAMP)及び22nMの[3H]−cGMP(又は
[3H]−cAMP)(Amersham Pharm
acia Biotech社製)を含むアッセイ用緩衝
液(50mM Tris−HCl、pH8.0、5mM
塩化マグネシウム、4mM 2−メルカプトエタノー
ル、0.33mg/mlウシ血清アルブミン(脂肪酸不
含、シグマ社製)、)500μl中に10〜30μlの
酵素溶液を添加して反応を開始した。37℃で30分間
保温して反応を行った後、1.5分間煮沸して反応を停
止させ、さらに1mg/mlのヘビ毒(Crotalus atrox
snake venom)100μlを添加して37℃で30分間
保温した。ついで、500μlのメタノールを添加し、
反応液をDowexカラム(1x8−400)で処理し
た後、各溶出液に液体シンチレーションカクテルを加
え、ラジオ活性を測定した。
により行った。すなわち、1μMの非標識cGMP(又
はcAMP)及び22nMの[3H]−cGMP(又は
[3H]−cAMP)(Amersham Pharm
acia Biotech社製)を含むアッセイ用緩衝
液(50mM Tris−HCl、pH8.0、5mM
塩化マグネシウム、4mM 2−メルカプトエタノー
ル、0.33mg/mlウシ血清アルブミン(脂肪酸不
含、シグマ社製)、)500μl中に10〜30μlの
酵素溶液を添加して反応を開始した。37℃で30分間
保温して反応を行った後、1.5分間煮沸して反応を停
止させ、さらに1mg/mlのヘビ毒(Crotalus atrox
snake venom)100μlを添加して37℃で30分間
保温した。ついで、500μlのメタノールを添加し、
反応液をDowexカラム(1x8−400)で処理し
た後、各溶出液に液体シンチレーションカクテルを加
え、ラジオ活性を測定した。
【0084】MonoQセファロースカラムクロマトグ
ラフィーで分画した細胞抽出液の各画分のPDE活性
を、図1に示した。
ラフィーで分画した細胞抽出液の各画分のPDE活性
を、図1に示した。
【0085】PDE10発現用ベクター(pSLV−P
DE10)をトランスフェクトした細胞の抽出液画分N
o.14に、cAMP及びcGMPに対する強い加水分解活
性のピークが認められた。このピークは、ベクター(p
SLV)のみをトランスフェクトした細胞の抽出液では
見られなかったことから、組換えヒトPDEに由来する
と考えられた。また、PDE10はcAMP及びcGM
Pのいずれをも加水分解する活性を有することがわかっ
た。この画分No.14を部分精製組換えヒトPDEとして
用いた。
DE10)をトランスフェクトした細胞の抽出液画分N
o.14に、cAMP及びcGMPに対する強い加水分解活
性のピークが認められた。このピークは、ベクター(p
SLV)のみをトランスフェクトした細胞の抽出液では
見られなかったことから、組換えヒトPDEに由来する
と考えられた。また、PDE10はcAMP及びcGM
Pのいずれをも加水分解する活性を有することがわかっ
た。この画分No.14を部分精製組換えヒトPDEとして
用いた。
【0086】画分No.24付近にも活性のピークが認めら
れたが、ベクターのみをトランスフェクトした細胞の抽
出液でも同様のピークは見られたことから、これは宿主
であるCOS細胞のPDEに由来すると考えられた。
れたが、ベクターのみをトランスフェクトした細胞の抽
出液でも同様のピークは見られたことから、これは宿主
であるCOS細胞のPDEに由来すると考えられた。
【0087】実施例4 ヒトPDE10の酵素的性質の
解析 前記実施例3と同様にして得た精製組換えヒトPDEを
用い、以下のようにして種々の酵素的性質を解析した。
解析 前記実施例3と同様にして得た精製組換えヒトPDEを
用い、以下のようにして種々の酵素的性質を解析した。
【0088】(1)酵素反応の速度論的解析 種々の基質(cGMP又はcAMP)濃度を用いて酵素
反応を行い、PDE活性(反応初速度)を測定した。酵
素反応とPDE活性測定は、前記実施例3(3)と同様
にして行った。但し、反応液中、非標識cAMPを添加
する場合の濃度は0.1〜2μM、非標識cGMPを添
加する場合の濃度は0.2〜16μMとした。また、反
応終了後の基質の分解率が約10%程度となるよう、酵
素量を設定し、反応時間は30分間とした。
反応を行い、PDE活性(反応初速度)を測定した。酵
素反応とPDE活性測定は、前記実施例3(3)と同様
にして行った。但し、反応液中、非標識cAMPを添加
する場合の濃度は0.1〜2μM、非標識cGMPを添
加する場合の濃度は0.2〜16μMとした。また、反
応終了後の基質の分解率が約10%程度となるよう、酵
素量を設定し、反応時間は30分間とした。
【0089】結果(Lineweaver-Burk plot)を図2に示
した。解析の結果から、ヒトPDE10のcAMPを基
質とした時のKm値は、7.2±0.62μMであり、
Vmaxは1.4±0.077pmol/分/μgであ
った。また、cGMPを基質とした時のKm値は、0.
26±0.048μMであり、Vmaxは0.63±
0.12pmol/分/μgであった。
した。解析の結果から、ヒトPDE10のcAMPを基
質とした時のKm値は、7.2±0.62μMであり、
Vmaxは1.4±0.077pmol/分/μgであ
った。また、cGMPを基質とした時のKm値は、0.
26±0.048μMであり、Vmaxは0.63±
0.12pmol/分/μgであった。
【0090】これらのことから、PDE10はcAMP
及びcGMPのいずれをも加水分解する活性を有する
が、cAMPに対してより強い親和性を有することがわ
かった。
及びcGMPのいずれをも加水分解する活性を有する
が、cAMPに対してより強い親和性を有することがわ
かった。
【0091】(2)cAMP分解活性に対するcGMP
の影響 cAMPを基質として酵素反応を行い、反応液中に種々
の濃度のcGMPを添加してPDE活性に対する影響を
調べた。
の影響 cAMPを基質として酵素反応を行い、反応液中に種々
の濃度のcGMPを添加してPDE活性に対する影響を
調べた。
【0092】酵素反応及びPDE活性測定は、前記実施
例3(3)と同様にして行った。但し、反応液中、非標
識cAMPを0.3μM([3H]−cAMPは22n
M)添加し、さらにcGMP(非標識)を0.01〜3
0μM添加(もしくは非添加)した。また、反応終了後
の基質の分解率が約10%程度となるよう、酵素量を設
定し、反応時間は30分間とした。
例3(3)と同様にして行った。但し、反応液中、非標
識cAMPを0.3μM([3H]−cAMPは22n
M)添加し、さらにcGMP(非標識)を0.01〜3
0μM添加(もしくは非添加)した。また、反応終了後
の基質の分解率が約10%程度となるよう、酵素量を設
定し、反応時間は30分間とした。
【0093】cGMP非添加の場合のcAMP分解活性
を100%とし、活性の相対値(%)を算出した。結果
を図3に示した。図3から明らかなように、cGMPの
添加濃度に依存して、cAMP分解活性の低下が認めら
れた。PDE10は、PDE2とは異なりcGMP濃度
によってPDE活性の上昇は認められなかった。
を100%とし、活性の相対値(%)を算出した。結果
を図3に示した。図3から明らかなように、cGMPの
添加濃度に依存して、cAMP分解活性の低下が認めら
れた。PDE10は、PDE2とは異なりcGMP濃度
によってPDE活性の上昇は認められなかった。
【0094】(3)各種既知PDE阻害剤による活性阻
害 ヒトPDE10のcAMP及びcGMP加水分解活性
(PDE活性)に対する各種既知PDE阻害剤(IBM
X、ビンポセチン、EHNA、ザプリナスト、ジピリダモー
ル、ロリプラム、ミルリノン、SCH51866及びE-4021)の
作用を以下のようにして調べた。
害 ヒトPDE10のcAMP及びcGMP加水分解活性
(PDE活性)に対する各種既知PDE阻害剤(IBM
X、ビンポセチン、EHNA、ザプリナスト、ジピリダモー
ル、ロリプラム、ミルリノン、SCH51866及びE-4021)の
作用を以下のようにして調べた。
【0095】cAMP又はcGMPを基質として酵素反
応を行い、反応液中に種々の既知PDE阻害剤を添加し
て加水分解活性を測定した。酵素反応及びPDE活性測
定は、前記実施例3(3)と同様にして行った。但し、
反応液中、非標識cAMPを添加する場合の濃度は0.
3μMとし、非標識cGMPを添加する場合の濃度は7
μMとし、反応液中に各種PDE阻害剤を0〜100μ
M添加した。
応を行い、反応液中に種々の既知PDE阻害剤を添加し
て加水分解活性を測定した。酵素反応及びPDE活性測
定は、前記実施例3(3)と同様にして行った。但し、
反応液中、非標識cAMPを添加する場合の濃度は0.
3μMとし、非標識cGMPを添加する場合の濃度は7
μMとし、反応液中に各種PDE阻害剤を0〜100μ
M添加した。
【0096】反応終了後の基質の分解率が約10%程度
となるよう、酵素量を設定し、反応時間は30分間とし
た。
となるよう、酵素量を設定し、反応時間は30分間とし
た。
【0097】ヒトPDE10の活性に対する各種PDE
阻害剤の阻害作用をIC50で表した結果を、表1に示
した。
阻害剤の阻害作用をIC50で表した結果を、表1に示
した。
【0098】
【表1】
【0099】実施例5 ヒトの各種組織におけるPDE
10の発現 ヒトの種々の組織(心臓、脳、脾臓、肺、肝臓、骨格
筋、腎臓、精巣、大腿骨、頭頂骨)におけるPDE10
遺伝子発現の有無を、以下のように調べた。
10の発現 ヒトの種々の組織(心臓、脳、脾臓、肺、肝臓、骨格
筋、腎臓、精巣、大腿骨、頭頂骨)におけるPDE10
遺伝子発現の有無を、以下のように調べた。
【0100】各種のヒト組織由来mRNA(ポリ(A)
+RNA)(商品名 ヒトRNAマルチプル・ティシュ
・ノーザン(MTN)ブロット(Clontech L
aboratories社製)を用いてドットブロット
解析を行った。プローブとしては、実施例1で得たヒト
PDE10cDNAの中の触媒領域に対応する断片(E
coRI切断断片;配列番号1の第1509〜2308
番目の塩基配列に相当)を32Pで標識して用いた。
+RNA)(商品名 ヒトRNAマルチプル・ティシュ
・ノーザン(MTN)ブロット(Clontech L
aboratories社製)を用いてドットブロット
解析を行った。プローブとしては、実施例1で得たヒト
PDE10cDNAの中の触媒領域に対応する断片(E
coRI切断断片;配列番号1の第1509〜2308
番目の塩基配列に相当)を32Pで標識して用いた。
【0101】ポリ(A)+RNA量は、ヒトユビキチン
のcDNAと主組織適合性複合体クラスIcをプローブ
とし、それらに対するシグナルが一定になる様に調節し
た量を用いた。ハイブリダイゼーションは、以下のよう
な条件下で行った。すなわち、ナイロンメンブレン(Hy
bond-N+)を、32Pで標識したプローブを含むハイブリ
ダイゼーション溶液(50%ホルムアミド、4xSS
C、0.5%SDS、5xデンハルト溶液、100μg
/mlのサケ精子DNA)中、42℃、16時間、置い
てハイブリダイゼーションさせた。ついで洗浄溶液
(0.2xSSC、0.1%SDS)を用い、60℃で
1時間、洗浄した。その後−70℃で5日間、オートラ
ジオグラフィーを行った。
のcDNAと主組織適合性複合体クラスIcをプローブ
とし、それらに対するシグナルが一定になる様に調節し
た量を用いた。ハイブリダイゼーションは、以下のよう
な条件下で行った。すなわち、ナイロンメンブレン(Hy
bond-N+)を、32Pで標識したプローブを含むハイブリ
ダイゼーション溶液(50%ホルムアミド、4xSS
C、0.5%SDS、5xデンハルト溶液、100μg
/mlのサケ精子DNA)中、42℃、16時間、置い
てハイブリダイゼーションさせた。ついで洗浄溶液
(0.2xSSC、0.1%SDS)を用い、60℃で
1時間、洗浄した。その後−70℃で5日間、オートラ
ジオグラフィーを行った。
【0102】ドットブロットの結果、図4に示した通
り、PDE10mRNAの強い発現が果核、尾状核及び
精巣で検出された。また、やや弱い発現が甲状腺、下垂
体腺、視床及び小脳で見られた(発現の強さの順は記載
順序の通りであった)。
り、PDE10mRNAの強い発現が果核、尾状核及び
精巣で検出された。また、やや弱い発現が甲状腺、下垂
体腺、視床及び小脳で見られた(発現の強さの順は記載
順序の通りであった)。
【0103】また、種々のヒト組織由来mRNAについ
て、ノーザンブロット解析を、上記と同様のプローブを
用い、同様の条件で行った。
て、ノーザンブロット解析を、上記と同様のプローブを
用い、同様の条件で行った。
【0104】ノーザンブロッティングの結果、約10k
bのバンドが、多数の組織で検出された。しかし、特に
精巣では、約10kbのバンドに加え、約4.0kbの
バンドが観察されたことから、これら組織では変異型
(variant forms)のPDEmRNAが発
現していることが考えられた。また、mRNAのバンド
のサイズが、単離されたcDNAより長いことから、P
DE10のmRNAは長い非翻訳部分を持つと考えられ
た。
bのバンドが、多数の組織で検出された。しかし、特に
精巣では、約10kbのバンドに加え、約4.0kbの
バンドが観察されたことから、これら組織では変異型
(variant forms)のPDEmRNAが発
現していることが考えられた。また、mRNAのバンド
のサイズが、単離されたcDNAより長いことから、P
DE10のmRNAは長い非翻訳部分を持つと考えられ
た。
【0105】実施例6 ラット新規PDE(PDE1
0)のcDNAの単離 後記配列表の配列番号1に示したヒトPDE10cDN
Aの翻訳領域のcDNA塩基配列をクエリー配列とし
て、BLAST(Basic Local Align
ment Search Tool)法により、EST
(Expressed sequence tags)
データベースを検索した。これにより、クエリー配列と
極めて相同性の高い、ラットPC12細胞由来の1つの
EST(IDNo:H32734)を見出した。
0)のcDNAの単離 後記配列表の配列番号1に示したヒトPDE10cDN
Aの翻訳領域のcDNA塩基配列をクエリー配列とし
て、BLAST(Basic Local Align
ment Search Tool)法により、EST
(Expressed sequence tags)
データベースを検索した。これにより、クエリー配列と
極めて相同性の高い、ラットPC12細胞由来の1つの
EST(IDNo:H32734)を見出した。
【0106】このEST(ID No. H32734)に相当する
DNA断片を、PCR(polymerasechain reaction)法
にて取得した。
DNA断片を、PCR(polymerasechain reaction)法
にて取得した。
【0107】PCRの反応は、1サイクルが94℃1分
間、55℃1分間、および72℃1分間の条件で、合計
30サイクル行った。
間、55℃1分間、および72℃1分間の条件で、合計
30サイクル行った。
【0108】プライマーとして、後記配列表の配列番号
17及び配列番号18に示した配列を有するオリゴヌク
レオチドを用いた。また、鋳型としては、ラット脳由来
cDNA(Clontech社製)を用いた。
17及び配列番号18に示した配列を有するオリゴヌク
レオチドを用いた。また、鋳型としては、ラット脳由来
cDNA(Clontech社製)を用いた。
【0109】得られたPCR産物をTA−クローニング
ベクタープラスミドpGEM−Teasy(Prome
ga社製)に連結し、その塩基配列を決定した。塩基配
列は、自動DNAシーケンサー(ABI PRISM3
10;PEアプライドバイオシステムズ社製)を用い、
ダイデオキシ法により決定した。
ベクタープラスミドpGEM−Teasy(Prome
ga社製)に連結し、その塩基配列を決定した。塩基配
列は、自動DNAシーケンサー(ABI PRISM3
10;PEアプライドバイオシステムズ社製)を用い、
ダイデオキシ法により決定した。
【0110】これにより、得られたDNA断片が、前記
EST(ID No. H32734)とほぼ同様の配列を有してい
ることを確認した。
EST(ID No. H32734)とほぼ同様の配列を有してい
ることを確認した。
【0111】このDNA断片(32Pでラベルしたもの)
をプローブとし、プラークハイブリダイゼーションを行
った。cDNAライブラリーは、λZAPシステムによ
り構築されたラット脳由来cDNAライブラリー(St
ratagene社製)を用いた。
をプローブとし、プラークハイブリダイゼーションを行
った。cDNAライブラリーは、λZAPシステムによ
り構築されたラット脳由来cDNAライブラリー(St
ratagene社製)を用いた。
【0112】プラークハイブリダイゼーションは、以下
のような条件下で行った。すなわち、1プレート当り約
5X104個のプラ−クとなるようにして、18のプレ
ートのプラ−クをナイロンメンブレン(Hybond-N+)に
移した。このナイロンメンブレンを、プローブを含むハ
イブリダイゼーション溶液(6xSSC、0.5%SD
S、5xデンハルト溶液、100μg/mlのサケ精子
DNA)中、65℃、16時間置いてハイブリダイゼー
ションさせた。(なお、1xSSCの組成は、0.15
M塩化ナトリウムおよび15mMクエン酸ナトリウム、
pH7.0であり、1xデンハルト溶液の組成は、0.
02%ウシ血清アルブミン、0.02%ポリビニルピロ
リドンおよびFicoll 400である。) ついで予備洗浄溶液(2xSSC、0.5%SDS)を
用い、室温で10分間、メンブレンを洗浄した後、さら
に洗浄溶液(0.2xSSC、0.1%SDS)を用
い、65℃で30分間、2度洗浄した。その後−70℃
で2日間、オートラジオグラフィーを行い、陽性クロー
ンを検出した。
のような条件下で行った。すなわち、1プレート当り約
5X104個のプラ−クとなるようにして、18のプレ
ートのプラ−クをナイロンメンブレン(Hybond-N+)に
移した。このナイロンメンブレンを、プローブを含むハ
イブリダイゼーション溶液(6xSSC、0.5%SD
S、5xデンハルト溶液、100μg/mlのサケ精子
DNA)中、65℃、16時間置いてハイブリダイゼー
ションさせた。(なお、1xSSCの組成は、0.15
M塩化ナトリウムおよび15mMクエン酸ナトリウム、
pH7.0であり、1xデンハルト溶液の組成は、0.
02%ウシ血清アルブミン、0.02%ポリビニルピロ
リドンおよびFicoll 400である。) ついで予備洗浄溶液(2xSSC、0.5%SDS)を
用い、室温で10分間、メンブレンを洗浄した後、さら
に洗浄溶液(0.2xSSC、0.1%SDS)を用
い、65℃で30分間、2度洗浄した。その後−70℃
で2日間、オートラジオグラフィーを行い、陽性クロー
ンを検出した。
【0113】得られた53個の陽性クローンのうち、1
5個について挿入cDNA断片をプラスミドとして単離
回収した。ヒトPDE10のN末端部分に対応する断片
(配列番号1の第68〜448番目の塩基配列に相当)
とC末端部分に対応する断片(配列番号1の第1990
〜2304番目の塩基配列に相当)をコードするヒトP
DE10のcDNA断片をプローブとしてドットブロッ
ト解析を行った。
5個について挿入cDNA断片をプラスミドとして単離
回収した。ヒトPDE10のN末端部分に対応する断片
(配列番号1の第68〜448番目の塩基配列に相当)
とC末端部分に対応する断片(配列番号1の第1990
〜2304番目の塩基配列に相当)をコードするヒトP
DE10のcDNA断片をプローブとしてドットブロッ
ト解析を行った。
【0114】ハイブリダイゼーションは、以下のような
条件下で行った。すなわち、ナイロンメンブレン(Hybo
nd-N+)を、32Pで標識したプローブを含むハイブリダ
イゼーション溶液(6xSSC、0.5%SDS、5x
デンハルト溶液、100μg/mlのサケ精子DNA)
中、55℃、16時間、置いてハイブリダイゼーション
させた。ついで洗浄溶液(1xSSC、0.5%SD
S)を用い、55℃で10分間、洗浄した。その後−7
0℃で4時間、オートラジオグラフィーを行った。
条件下で行った。すなわち、ナイロンメンブレン(Hybo
nd-N+)を、32Pで標識したプローブを含むハイブリダ
イゼーション溶液(6xSSC、0.5%SDS、5x
デンハルト溶液、100μg/mlのサケ精子DNA)
中、55℃、16時間、置いてハイブリダイゼーション
させた。ついで洗浄溶液(1xSSC、0.5%SD
S)を用い、55℃で10分間、洗浄した。その後−7
0℃で4時間、オートラジオグラフィーを行った。
【0115】両プローブとハイブリダイズする5種のク
ローン(完全長cDNAを保持している可能性のある)
を選択した。このうち2種のクローン(クローンNo.8
及び17)の挿入cDNA断片の全塩基配列或いは部分
塩基配列(クローンラットPDE10A2及びA3と称
する)を決定した。
ローン(完全長cDNAを保持している可能性のある)
を選択した。このうち2種のクローン(クローンNo.8
及び17)の挿入cDNA断片の全塩基配列或いは部分
塩基配列(クローンラットPDE10A2及びA3と称
する)を決定した。
【0116】単離したcDNA(3427及び3080
bp)は、新規なラットPDE(以下、PDE10と称
する)をコードするcDNAであると考えられた。この
cDNAの塩基配列を解析して、オープンリーディング
フレームを同定し、さらにそれにコードされる蛋白質の
アミノ酸配列を決定した。
bp)は、新規なラットPDE(以下、PDE10と称
する)をコードするcDNAであると考えられた。この
cDNAの塩基配列を解析して、オープンリーディング
フレームを同定し、さらにそれにコードされる蛋白質の
アミノ酸配列を決定した。
【0117】後記配列表の配列番号15及び16に、こ
れらcDNAの塩基配列(配列番号15上段及び16上
段)及びそれにコードされる蛋白質(新規なヒトPDE
(PDE10))のアミノ酸配列(配列番号15下段及
び16下段)を示した。アミノ酸配列(794及び78
8アミノ酸残基)から推定されるPDE10の分子量
は、約90Kdであった。
れらcDNAの塩基配列(配列番号15上段及び16上
段)及びそれにコードされる蛋白質(新規なヒトPDE
(PDE10))のアミノ酸配列(配列番号15下段及
び16下段)を示した。アミノ酸配列(794及び78
8アミノ酸残基)から推定されるPDE10の分子量
は、約90Kdであった。
【0118】ラットPDE10A2とラットPDE10
A3は、アミノ酸配列上のN末端側(配列番号15の第
1〜23番目のアミノ酸残基、配列番号16の第1〜1
7番目のアミノ酸残基)及びこれらに対応するcDNA
配列が相違している。
A3は、アミノ酸配列上のN末端側(配列番号15の第
1〜23番目のアミノ酸残基、配列番号16の第1〜1
7番目のアミノ酸残基)及びこれらに対応するcDNA
配列が相違している。
【0119】ラット由来の2種のPDE10(PDE1
0A2及びPDE10A3)のアミノ酸配列を、ヒト由
来のPDE10(PDE10A1及びPDE10A2)
のアミノ酸配列と比較したところ、約96%と高い相同
性が認められたが、N末端部分及びC末端部分に相違が
見られた。
0A2及びPDE10A3)のアミノ酸配列を、ヒト由
来のPDE10(PDE10A1及びPDE10A2)
のアミノ酸配列と比較したところ、約96%と高い相同
性が認められたが、N末端部分及びC末端部分に相違が
見られた。
【0120】実施例7 ラットの各種組織におけるPD
E10の発現 ラットの種々の組織(心臓、脳、脾臓、肺、肝臓、骨格
筋、腎臓、精巣、大腿骨、頭頂骨)におけるPDE10
遺伝子発現の有無を、以下のように調べた。
E10の発現 ラットの種々の組織(心臓、脳、脾臓、肺、肝臓、骨格
筋、腎臓、精巣、大腿骨、頭頂骨)におけるPDE10
遺伝子発現の有無を、以下のように調べた。
【0121】各種のラット組織由来mRNA(ポリ
(A)+RNA)(商品名 ラットRNAマルチプル・
ティシュ・ノーザン(MTN)ブロット(Clonte
ch Laboratories社製)を用い、実施例
5と同様にしてノーザンブロッティングを行った。但
し、プローブとしては、実施例6で得たラットPDE1
0cDNAの中の断片(配列番号15の第1172〜1
519番目の塩基配列に相当)を32Pで標識して用い
た。
(A)+RNA)(商品名 ラットRNAマルチプル・
ティシュ・ノーザン(MTN)ブロット(Clonte
ch Laboratories社製)を用い、実施例
5と同様にしてノーザンブロッティングを行った。但
し、プローブとしては、実施例6で得たラットPDE1
0cDNAの中の断片(配列番号15の第1172〜1
519番目の塩基配列に相当)を32Pで標識して用い
た。
【0122】ノーザンブロッティングの結果、脳及び精
巣においてPDE10mRNAの発現が認められ、脳で
は約9.5kbのバンドが、精巣では約3.5kbのバ
ンドが観察された。
巣においてPDE10mRNAの発現が認められ、脳で
は約9.5kbのバンドが、精巣では約3.5kbのバ
ンドが観察された。
【0123】さらにラット脳に対するin situハイブリ
ダイゼーションを行った。in situハイブリダイゼーシ
ョン用のRNAプローブは、ジゴキシゲニン−UTP及
びDIG RNA標識キット(Boehringer Mannheim社
製)を用い、in vitro転写により調製した。その際、鋳
型とするDNAとしては、実施例6におけるプラ−クハ
イブリダイゼーションのためのプローブとして用いたc
DNA断片を、ベクタープラスミドpGEM−Teas
y(Promega社製)にサブクローニングした後、
制限酵素SphI(アンチセンスプローブ用)及び制限
酵素SacI(センスプローブ用)でリニアライズした
ものを各1μg用いた。アンチセンスプローブはT7
RNAポリメラーゼを、またセンスプローブはSP6
RNAポリメラーゼを用いて合成した。
ダイゼーションを行った。in situハイブリダイゼーシ
ョン用のRNAプローブは、ジゴキシゲニン−UTP及
びDIG RNA標識キット(Boehringer Mannheim社
製)を用い、in vitro転写により調製した。その際、鋳
型とするDNAとしては、実施例6におけるプラ−クハ
イブリダイゼーションのためのプローブとして用いたc
DNA断片を、ベクタープラスミドpGEM−Teas
y(Promega社製)にサブクローニングした後、
制限酵素SphI(アンチセンスプローブ用)及び制限
酵素SacI(センスプローブ用)でリニアライズした
ものを各1μg用いた。アンチセンスプローブはT7
RNAポリメラーゼを、またセンスプローブはSP6
RNAポリメラーゼを用いて合成した。
【0124】10週齢の雄性ラットから得た脳を用いて
10μm厚の凍結切片を作成し、4%ホルムアルデヒド
を用いて固定後、10μg/mlプロテイナーゼK及び
0.1Mトリエタノールアミン(0.25%無水酢酸
中)で処理した。その後アルコールで脱水した。800
μlのハイブリダイゼーション溶液(20mM Tri
s−HCl、pH8.0、300mM塩化ナトリウム、
10% Sodiumdextran sulfate、
50%ホルムアミド、0.2% N−ラウロイルサルコ
シン、100μg/mlのサケ精子DNA、1xデンハ
ルト溶液)で50℃30分間プレハイブリダイゼーショ
ンした後、ジゴキシゲニンにより標識したRNAプロー
ブを用いて、800μlのハイブリダイゼーション溶液
中、50℃、16時間、湿潤箱中でハイブリダイゼーシ
ョンを行った。
10μm厚の凍結切片を作成し、4%ホルムアルデヒド
を用いて固定後、10μg/mlプロテイナーゼK及び
0.1Mトリエタノールアミン(0.25%無水酢酸
中)で処理した。その後アルコールで脱水した。800
μlのハイブリダイゼーション溶液(20mM Tri
s−HCl、pH8.0、300mM塩化ナトリウム、
10% Sodiumdextran sulfate、
50%ホルムアミド、0.2% N−ラウロイルサルコ
シン、100μg/mlのサケ精子DNA、1xデンハ
ルト溶液)で50℃30分間プレハイブリダイゼーショ
ンした後、ジゴキシゲニンにより標識したRNAプロー
ブを用いて、800μlのハイブリダイゼーション溶液
中、50℃、16時間、湿潤箱中でハイブリダイゼーシ
ョンを行った。
【0125】ハイブリダイゼーション終了後、高ストリ
ンジェントな溶液(50%ホルムアミド、300mM塩
化ナトリウム、30mMクエン酸ナトリウム)で60
℃、30分間洗浄し、1μg/mlのRNaseAで3
7℃、10分間処理し、もう一度、前記の高ストリンジ
ェントな溶液で洗浄した。
ンジェントな溶液(50%ホルムアミド、300mM塩
化ナトリウム、30mMクエン酸ナトリウム)で60
℃、30分間洗浄し、1μg/mlのRNaseAで3
7℃、10分間処理し、もう一度、前記の高ストリンジ
ェントな溶液で洗浄した。
【0126】さらに、切片を抗ジゴキシゲニンポロクロ
ーナル抗体(1.5%のブロッキング試薬(Boehringer
Mannheim社製)を含有する緩衝液A(100mM T
ris−HCl、pH7.5、150mM塩化ナトリウ
ム)にて1/500希釈したもの)と共に5分間、室温
でインキュべートし、その後緩衝液Aで充分に洗浄し
た。
ーナル抗体(1.5%のブロッキング試薬(Boehringer
Mannheim社製)を含有する緩衝液A(100mM T
ris−HCl、pH7.5、150mM塩化ナトリウ
ム)にて1/500希釈したもの)と共に5分間、室温
でインキュべートし、その後緩衝液Aで充分に洗浄し
た。
【0127】さらに切片を、調製したばかりのニトロブ
ルーテトラゾリウム及び5−ブルモ−4−クロロ−3−
インドリルホスフェートを含有するColor-Substrate溶
液(100mM Tris−HCl、pH9.5、10
0mM塩化ナトリウム、50mM塩化マグネシウム)で
インキュべートし、暗箱中、室温で2日間染色した。
ルーテトラゾリウム及び5−ブルモ−4−クロロ−3−
インドリルホスフェートを含有するColor-Substrate溶
液(100mM Tris−HCl、pH9.5、10
0mM塩化ナトリウム、50mM塩化マグネシウム)で
インキュべートし、暗箱中、室温で2日間染色した。
【0128】in situハイブリダイゼーションの結果、
線条体及び嗅結節の神経細胞に強い発現が認められた。
線条体及び嗅結節の神経細胞に強い発現が認められた。
【0129】
【発明の効果】本発明の新規PDE及びその遺伝子は、
細胞内情報伝達の複合的なメカニズムの研究のために有
用である。また、新たな疾患に対する治療薬の標的分子
となり得る。
細胞内情報伝達の複合的なメカニズムの研究のために有
用である。また、新たな疾患に対する治療薬の標的分子
となり得る。
【0130】また、本発明の新規PDE及びその遺伝子
を利用した阻害剤の特徴付け、同定、及び選択方法は、
選択性の高い阻害剤、治療効果が高く副作用の少ない優
れた医薬を開発するために有用である。
を利用した阻害剤の特徴付け、同定、及び選択方法は、
選択性の高い阻害剤、治療効果が高く副作用の少ない優
れた医薬を開発するために有用である。
【0131】
【配列表】 配列番号:1 配列の長さ:4576 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 起源 生物名:ヒト 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:251..2590 配列: GAATTCCGGG CGGCGGCGGC CAAACTCCGC GGCGTCCCCA GGGCGCCACG TTCGCCCTCG 60 CCGCCGCGGC CGCGCTGCTC TTCGGCTCCG ACATGGAAGA TGGACCTTCT AATAATGCGA 120 GCTGCTTCCG AAGGCTGACC GAGTGCTTCC TGAGCCCCAA AGCTAATGGT ATAGATATAG 180 AAGTCATCCA CAGAGATGTT ACAGTTGAAG AGATGGGGGT AGAGAAGACT TTGAAGGAAA 240 AGAATGTAGA 250 ATG AGG ATA GAA GAG AGG AAA TCC CAA CAT TTA ACA GGT TTG ACA GAT 298 Met Arg Ile Glu Glu Arg Lys Ser Gln His Leu Thr Gly Leu Thr Asp 1 5 10 15 GAA AAA GTG AAG GCA TAT CTT TCT CTT CAC CCC CAG GTA TTA GAT GAA 346 Glu Lys Val Lys Ala Tyr Leu Ser Leu His Pro Gln Val Leu Asp Glu 20 25 30 TTT GTA TCT GAA AGT GTT AGT GCA GAG ACA GTA GAG AAA TGG CTG AAG 394 Phe Val Ser Glu Ser Val Ser Ala Glu Thr Val Glu Lys Trp Leu Lys 35 40 45 AGG AAG AAC AAC AAA TCA GAA GAT GAA TCA GCT CCT AAG GAA GTC AGC 442 Arg Lys Asn Asn Lys Ser Glu Asp Glu Ser Ala Pro Lys Glu Val Ser 50 55 60 AGG TAC CAA GAT ACG AAT ATG CAG GGA GTT GTA TAT GAA CTA AAC AGC 490 Arg Tyr Gln Asp Thr Asn Met Gln Gly Val Val Tyr Glu Leu Asn Ser 65 70 75 80 TAT ATA GAA CAA CGG TTG GAC ACA GGA GGA GAC AAC CAG CTA CTC CTC 538 Tyr Ile Glu Gln Arg Leu Asp Thr Gly Gly Asp Asn Gln Leu Leu Leu 85 90 95 TAT GAA CTG AGC AGC ATC ATT AAA ATA GCC ACA AAA GCC GAT GGA TTT 586 Tyr Glu Leu Ser Ser Ile Ile Lys Ile Ala Thr Lys Ala Asp Gly Phe 100 105 110 GCA CTG TAT TTC CTT GGA GAG TGC AAT AAT AGC CTG TGT ATA TTC ACG 634 Ala Leu Tyr Phe Leu Gly Glu Cys Asn Asn Ser Leu Cys Ile Phe Thr 115 120 125 CCA CCT GGG ATA AAG GAA GGA AAA CCC CGC CTC ATC CCT GCT GGG CCC 682 Pro Pro Gly Ile Lys Glu Gly Lys Pro Arg Leu Ile Pro Ala Gly Pro 130 135 140 ATC ACT CAG GGC ACC ACC GTC TCT GCT TAT GTG GCC AAG TCC AGG AAA 730 Ile Thr Gln Gly Thr Thr Val Ser Ala Tyr Val Ala Lys Ser Arg Lys 145 150 155 160 ACA CTG CTA GTA GAA GAC ATC CTT GGA GAT GAA CGA TTT CCA AGA GGT 778 Thr Leu Leu Val Glu Asp Ile Leu Gly Asp Glu Arg Phe Pro Arg Gly 165 170 175 ACT GGA CTG GAA TCA GGG ACT CGT ATC CAG TCT GTT CTT TGC TTA CCA 826 Thr Gly Leu Glu Ser Gly Thr Arg Ile Gln Ser Val Leu Cys Leu Pro 180 185 190 ATT GTC ACT GCA ATT GGT GAC TTG ATT GGT ATT CTC GAG CTG TAT CGG 874 Ile Val Thr Ala Ile Gly Asp Leu Ile Gly Ile Leu Glu Leu Tyr Arg 195 200 205 CAC TGG GGC AAA GAA GCC TTC TGT CTT AGT CAC CAG GAG GTT GCA ACA 922 His Trp Gly Lys Glu Ala Phe Cys Leu Ser His Gln Glu Val Ala Thr 210 215 220 GCA AAT CTT GCC TGG GCT TCA GTA GCA ATA CAT CAG GTG CAG GTA TGC 970 Ala Asn Leu Ala Trp Ala Ser Val Ala Ile His Gln Val Gln Val Cys 225 230 235 240 AGA GGC CTT GCC AAA CAG ACA GAA TTG AAT GAC TTC CTA CTC GAC GTA 1018 Arg Gly Leu Ala Lys Gln Thr Glu Leu Asn Asp Phe Leu Leu Asp Val 245 250 255 TCA AAA ACA TAT TTT GAT AAC ATA GTT GCA ATA GAT TCT CTA CTT GAA 1066 Ser Lys Thr Tyr Phe Asp Asn Ile Val Ala Ile Asp Ser Leu Leu Glu 260 265 270 CAC ATA ATG ATA TAT GCA AAA AAC CTG GTG AAT GCC GAT CGT TGT GCG 1114 His Ile Met Ile Tyr Ala Lys Asn Leu Val Asn Ala Asp Arg Cys Ala 275 280 285 CTT TTC CAG GTG GAC CAT AAG AAC AAG GAG TTA TAT TCA GAC CTT TTT 1162 Leu Phe Gln Val Asp His Lys Asn Lys Glu Leu Tyr Ser Asp Leu Phe 290 295 300 GAT ATT GGA GAG GAA AAG GAA GGA AAA CCT GTC TTC AAG AAG ACC AAA 1210 Asp Ile Gly Glu Glu Lys Glu Gly Lys Pro Val Phe Lys Lys Thr Lys 305 310 315 320 GAG ATA AGA TTT TCA ATT GAG AAA GGA ATT GCT GGC CAA GTA GCA AGA 1258 Glu Ile Arg Phe Ser Ile Glu Lys Gly Ile Ala Gly Gln Val Ala Arg 325 330 335 ACA GGG GAA GTC CTG AAC ATT CCA GAT GCC TAT GCA GAC CCA CGC TTT 1306 Thr Gly Glu Val Leu Asn Ile Pro Asp Ala Tyr Ala Asp Pro Arg Phe 340 345 350 AAC AGA GAA GTA GAC TTG TAC ACA GGC TAC ACC ACG CGG AAC ATC CTG 1354 Asn Arg Glu Val Asp Leu Tyr Thr Gly Tyr Thr Thr Arg Asn Ile Leu 355 360 365 TGC ATG CCC ATC GTC AGC CGA GGC AGC GTG ATA GGT GTG GTG CAG ATG 1402 Cys Met Pro Ile Val Ser Arg Gly Ser Val Ile Gly Val Val Gln Met 370 375 380 GTC AAC AAA ATC AGT GGC AGT GCC TTC TCT AAA ACA GAT GAA AAC AAC 1450 Val Asn Lys Ile Ser Gly Ser Ala Phe Ser Lys Thr Asp Glu Asn Asn 385 390 395 400 TTC AAA ATG TTT GCC GTC TTT TGT GCT TTA GCC TTA CAC TGT GCT AAT 1498 Phe Lys Met Phe Ala Val Phe Cys Ala Leu Ala Leu His Cys Ala Asn 405 410 415 ATG TAT CAT AGA ATT CGC CAC TCA GAG TGC ATT TAC CGG GTA ACG ATG 1546 Met Tyr His Arg Ile Arg His Ser Glu Cys Ile Tyr Arg Val Thr Met 420 425 430 GAA AAG CTG TCC TAC CAT AGC ATT TGT ACT TCA GAA GAG TGG CAA GGT 1594 Glu Lys Leu Ser Tyr His Ser Ile Cys Thr Ser Glu Glu Trp Gln Gly 435 440 445 CTC ATG CAA TTC ACC CTT CCC GTG CGT CTC TGC AAA GAA ATT GAA TTA 1642 Leu Met Gln Phe Thr Leu Pro Val Arg Leu Cys Lys Glu Ile Glu Leu 450 455 460 TTC CAC TTT GAC ATT GGT CCT TTT GAA AAC ATG TGG CCT GGA ATT TTT 1690 Phe His Phe Asp Ile Gly Pro Phe Glu Asn Met Trp Pro Gly Ile Phe 465 470 475 480 GTC TAC ATG GTT CAT CGG TCC TGT GGG ACA TCC TGC TTT GAG CTT GAA 1738 Val Tyr Met Val His Arg Ser Cys Gly Thr Ser Cys Phe Glu Leu Glu 485 490 495 AAG TTG TGT CGT TTT ATT ATG TCT GTG AAG AAG AAC TAT CGG CGG GTT 1786 Lys Leu Cys Arg Phe Ile Met Ser Val Lys Lys Asn Tyr Arg Arg Val 500 505 510 CCT TAT CAC AAC TGG AAG CAT GCG GTC ACT GTA GCA CAC TGC ATG TAT 1834 Pro Tyr His Asn Trp Lys His Ala Val Thr Val Ala His Cys Met Tyr 515 520 525 GCC ATA CTT CAG AAC AAT CAC ACG CTT TTC ACA GAC CTT GAG CGC AAA 1882 Ala Ile Leu Gln Asn Asn His Thr Leu Phe Thr Asp Leu Glu Arg Lys 530 535 540 GGA CTG CTG ATT GCG TGT CTG TGT CAT GAC CTG GAC CAC AGG GGC TTC 1930 Gly Leu Leu Ile Ala Cys Leu Cys His Asp Leu Asp His Arg Gly Phe 545 550 555 560 AGT AAC AGC TAC CTG CAG AAG TTC GAC CAC CCT CTG GCC GCT CTC TAC 1978 Ser Asn Ser Tyr Leu Gln Lys Phe Asp His Pro Leu Ala Ala Leu Tyr 565 570 575 TCC ACT TCC ACC ATG GAG CAG CAC CAC TTC TCC CAG ACT GTG TCC ATC 2026 Ser Thr Ser Thr Met Glu Gln His His Phe Ser Gln Thr Val Ser Ile 580 585 590 CTT CAG TTG GAA GGG CAC AAT ATC TTC TCC ACT CTG AGC TCC AGT GAA 2074 Leu Gln Leu Glu Gly His Asn Ile Phe Ser Thr Leu Ser Ser Ser Glu 595 600 605 TAT GAG CAG GTG CTT GAG ATC ATC CGC AAA GCC ATC ATT GCC ACA GAC 2122 Tyr Glu Gln Val Leu Glu Ile Ile Arg Lys Ala Ile Ile Ala Thr Asp 610 615 620 CTT GCT TTA TAC TTT GGA AAC AGG AAG CAG TTG GAA GAG ATG TAC CAG 2170 Leu Ala Leu Tyr Phe Gly Asn Arg Lys Gln Leu Glu Glu Met Tyr Gln 625 630 635 640 ACC GGA TCA CTA AAC CTT AAT AAT CAA TCA CAT AGA GAC CGT GTA ATT 2218 Thr Gly Ser Leu Asn Leu Asn Asn Gln Ser His Arg Asp Arg Val Ile 645 650 655 GGT TTG ATG ATG ACT GCC TGT GAC CTT TGT TCT GTG ACA AAA CTG TGG 2266 Gly Leu Met Met Thr Ala Cys Asp Leu Cys Ser Val Thr Lys Leu Trp 660 665 670 CCC GTT ACA AAA TTG ACG GCA AAT GAT ATA TAT GCA GAA TTC TGG GCT 2314 Pro Val Thr Lys Leu Thr Ala Asn Asp Ile Tyr Ala Glu Phe Trp Ala 675 680 685 GAG GGT GAT GAA ATG AAG AAA TTG GGA ATA CAG CCT ATT CCT ATG ATG 2362 Glu Gly Asp Glu Met Lys Lys Leu Gly Ile Gln Pro Ile Pro Met Met 690 695 700 GAC AGA GAC AAG AAG GAT GAA GTC CCC CAA GGC CAG CTT GGG TTC TAC 2410 Asp Arg Asp Lys Lys Asp Glu Val Pro Gln Gly Gln Leu Gly Phe Tyr 705 710 715 720 AAT GCC GTG GCC ATT CCC TGC TAT ACA ACC CTT ACC CAG ATC CTC CCT 2458 Asn Ala Val Ala Ile Pro Cys Tyr Thr Thr Leu Thr Gln Ile Leu Pro 725 730 735 CCC ACG GAG CCT CTT CTG AAA GCA TGC AGG GAT AAT CTC AGT CAG TGG 2506 Pro Thr Glu Pro Leu Leu Lys Ala Cys Arg Asp Asn Leu Ser Gln Trp 740 745 750 GAG AAG GTG ATT CGA GGG GAG GAG ACT GCA ACC TGG ATT TCA TCC CCA 2554 Glu Lys Val Ile Arg Gly Glu Glu Thr Ala Thr Trp Ile Ser Ser Pro 755 760 765 TCC GTG GCT CAG AAG GCA GCT GCA TCT GAA GAT TGA 2590 Ser Val Ala Gln Lys Ala Ala Ala Ser Glu Asp 770 775 779 GCACTGGTCA CCCTGACACG CTGTCCCACC TACAGATCCT CATCTTGCTT CTTTGACATT 2650 CTTTTCCTTT TTTTGGGGGG GGTGGGGGGA ACCTGCACCT GGTAACTGGG GTGCAAACCT 2710 CTTCAAGAAG GTAACATCAA ATAAATAAGT CAAGCAGAGG ACTTCCTGCC AATCTCTTCT 2770 GTGAGGCATC ATAGACACTG AGCAACCAGG ACCACCCCCA CGTTCAGAAA TCAGCTGGCC 2830 AAGTGACTCC ATTTGACTTG CAAACCAGCC TTTTCTAATA GGCTAATATT GCTGAGGCCT 2890 TAAAGGAAAT GGACAAAAAT TATCCAGAAG GGGTACTTTT CCATTGTATC TTTCTAATAA 2950 GGGTTTAAAA TGGTACTATT ATGGTATTGT ACTTGGGCTT TAACATCAAT GTTGCTTTGA 3010 TGTTGTTGGA TATAAATAGG AATTTTACAC ATTACTATTG TGAATGGTGA ATGTTCATGT 3070 ATGACCTACT TGTAATTAAC TTGAGTTGTA GTCCACAGCC TCAGGACAAA TGTCGTTGAG 3130 GTTACAGAGT AAGAAATGAT GGCAAAACGT CAAACTCTTA TTTCAGAGCT TCATGAATTT 3190 AGTTAGACTA AACATAATTC TTTAAGTTCA ACCTAAAGGG CTGAGATCAA TAAATTTAAC 3250 ACTAGACGAA GTAGACTTCC TGTCTTTTTG AGAAGAGATG AGGTATATGT TACAATAAAT 3310 CTCAGAACTT CAAGTAGCAG TTCAAAAGAT GTCAGTTTTT AAAATTGTTT TTGTTGTTGT 3370 CTTGGCAGTT TTACTGAACC CTTTGCATAA AGAACAAAAT AAAAGCTCGG CATTGTAATT 3430 TTTTTAATGG ACAAGTCTTA TGGATACGAG GGGTACATTT TTCATAATGA TTCCTTTATA 3490 TTTTCACTTT GTGTCATATG CAGAATTTTA GACTCTCATT CACAATGAAA AGTTTATTTT 3550 AAACATTGTT TAATTAAAAT ACCATACAGT TCTCTTTTAA ACATCAAACC ATAAAAAGTG 3610 TATTTTGTAA TTTTACTCTG ACCTGCCGCA GTCACCTCTC ACTTATCTCT TCCACGTACT 3670 GCACGGTCGT ATTTCATGAG CTTTCTGTCC ATAGCACAGA AACAGAGCAG AAAGTAGTAC 3730 AATCATGTTG GACCTTCTTT CTGTTCTCTT TACTCTTCTC ACAGATCAGA TCACTCCATA 3790 GAAGCCTGTG GGTTTCGATG GTTTCTTCTA TACACCTTTT TGGTTGACCA GTATTACTAT 3850 ACAATGTAAG TGTTTTAAAA AATACGAAAG TAATACTCTG CACCCCTTCC TACAAAGATG 3910 ATAAAGCAGT CACTTCTGGC GCATTTTAAT AATTTAAAGA TTTTTAGTGC AATGGCACGG 3970 TAACCTCCAA ACCTGAATTA GACAGAGACT CACTCAGGAA GTGACAGGCC CATCATATCA 4030 AATAACTTAT TCACTTTTCA TGTGGCAGGA AACTGGAATA TCGCTTTTAA TAAAATGGAA 4090 AAATATGCTT CTACATATTT ACCACCATAG GCGTTTTGTT CATATGAGCC TGGTTTGTGC 4150 AAAATTAAAT CAGAGGCTTC TACAACATGG TTTATTTATG TTGTAGCAAA GTTGGCTCTA 4210 CATAAACATT GTTCTTATTT TAAAATTAAC ACTATGTGTT CAGTTTTCTT GTGGGCTTCT 4270 GAAAGTTGCC ATCTTCCCTC CGTGGAGCTC CATTTGCTAT TTTCATTATA CACTATGAGG 4330 TAAAATGTAA TAACAAAAGA GAGAGAAGTA CCACTGTGGC TAGATATATA CACACACATA 4390 TATATATGGA TGGATGTAAT ATATGTAGCA CACACACATA GATGTATATA GGATACACAC 4450 TCATGTATGT AAACGTATAC ATATGTGTAT ATATGATACA TACACATACA CACACACGAG 4510 AGACAGAAGG AAAGAGAGGA AGAGAGAAGC AAACATGTAG GAAAAAATAT AAATCAGCCG 4570 GAATTC 4576。
【0132】 配列番号:2 配列の長さ:2406 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 起源 生物名:ヒト 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:15..2384 配列: TCTTCGGCTC CGAC 14 ATG GAA GAT GGA CCT TCT AAT AAT GCG AGC TGC TTC CGA AGG CTG ACC 62 Met Glu Asp Gly Pro Ser Asn Asn Ala Ser Cys Phe Arg Arg Leu Thr 1 5 10 15 GAG TGC TTC CTG AGC CCC AGT TTG ACA GAT GAA AAA GTG AAG GCA TAT 110 Glu Cys Phe Leu Ser Pro Ser Leu Thr Asp Glu Lys Val Lys Ala Tyr 20 25 30 CTT TCT CTT CAC CCC CAG GTA TTA GAT GAA TTT GTA TCT GAA AGT GTT 158 Leu Ser Leu His Pro Gln Val Leu Asp Glu Phe Val Ser Glu Ser Val 35 40 45 AGT GCA GAG ACA GTA GAG AAA TGG CTG AAG AGG AAG AAC AAC AAA TCA 206 Ser Ala Glu Thr Val Glu Lys Trp Leu Lys Arg Lys Asn Asn Lys Ser 50 55 60 GAA GAT GAA TCA GCT CCT AAG GAA GTC AGC AGG TAC CAA GAT ACG AAT 254 Glu Asp Glu Ser Ala Pro Lys Glu Val Ser Arg Tyr Gln Asp Thr Asn 65 70 75 80 ATG CAG GGA GTT GTA TAT GAA CTA AAC AGC TAT ATA GAA CAA CGG TTG 302 Met Gln Gly Val Val Tyr Glu Leu Asn Ser Tyr Ile Glu Gln Arg Leu 85 90 95 GAC ACA GGA GGA GAC AAC CAG CTA CTC CTC TAT GAA CTG AGC AGC ATC 350 Asp Thr Gly Gly Asp Asn Gln Leu Leu Leu Tyr Glu Leu Ser Ser Ile 100 105 110 ATT AAA ATA GCC ACA AAA GCC GAT GGA TTT GCA CTG TAT TTC CTT GGA 398 Ile Lys Ile Ala Thr Lys Ala Asp Gly Phe Ala Leu Tyr Phe Leu Gly 115 120 125 GAG TGC AAT AAT AGC CTG TGT ATA TTC ACG CCA CCT GGG ATA AAG GAA 446 Glu Cys Asn Asn Ser Leu Cys Ile Phe Thr Pro Pro Gly Ile Lys Glu 130 135 140 GGA AAA CCC CGC CTC ATC CCT GCT GGG CCC ATC ACT CAG GGC ACC ACC 494 Gly Lys Pro Arg Leu Ile Pro Ala Gly Pro Ile Thr Gln Gly Thr Thr 145 150 155 160 GTC TCT GCT TAT GTG GCC AAG TCC AGG AAA ACA CTG CTA GTA GAA GAC 542 Val Ser Ala Tyr Val Ala Lys Ser Arg Lys Thr Leu Leu Val Glu Asp 165 170 175 ATC CTT GGA GAT GAA CGA TTT CCA AGA GGT ACT GGA CTG GAA TCA GGG 590 Ile Leu Gly Asp Glu Arg Phe Pro Arg Gly Thr Gly Leu Glu Ser Gly 180 185 190 ACT CGT ATC CAG TCT GTT CTT TGC TTA CCA ATT GTC ACT GCA ATT GGT 638 Thr Arg Ile Gln Ser Val Leu Cys Leu Pro Ile Val Thr Ala Ile Gly 195 200 205 GAC TTG ATT GGT ATT CTC GAG CTG TAT CGG CAC TGG GGC AAA GAA GCC 686 Asp Leu Ile Gly Ile Leu Glu Leu Tyr Arg His Trp Gly Lys Glu Ala 210 215 220 TTC TGT CTT AGT CAC CAG GAG GTT GCA ACA GCA AAT CTT GCC TGG GCT 734 Phe Cys Leu Ser His Gln Glu Val Ala Thr Ala Asn Leu Ala Trp Ala 225 230 235 240 TCA GTA GCA ATA CAT CAG GTG CAG GTA TGC AGA GGC CTT GCC AAA CAG 782 Ser Val Ala Ile His Gln Val Gln Val Cys Arg Gly Leu Ala Lys Gln 245 250 255 ACA GAA TTG AAT GAC TTC CTA CTC GAC GTA TCA AAA ACA TAT TTT GAT 830 Thr Glu Leu Asn Asp Phe Leu Leu Asp Val Ser Lys Thr Tyr Phe Asp 260 265 270 AAC ATA GTT GCA ATA GAT TCT CTA CTT GAA CAC ATA ATG ATA TAT GCA 878 Asn Ile Val Ala Ile Asp Ser Leu Leu Glu His Ile Met Ile Tyr Ala 275 280 285 AAA AAC CTG GTG AAT GCC GAT CGT TGT GCG CTT TTC CAG GTG GAC CAT 926 Lys Asn Leu Val Asn Ala Asp Arg Cys Ala Leu Phe Gln Val Asp His 290 295 300 AAG AAC AAG GAG TTA TAT TCA GAC CTT TTT GAT ATT GGA GAG GAA AAG 974 Lys Asn Lys Glu Leu Tyr Ser Asp Leu Phe Asp Ile Gly Glu Glu Lys 305 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Tyr His Arg Ile Arg 420 425 430 CAC TCA GAG TGC ATT TAC CGG GTA ACG ATG GAA AAG CTG TCC TAC CAT 1358 His Ser Glu Cys Ile Tyr Arg Val Thr Met Glu Lys Leu Ser Tyr His 435 440 445 AGC ATT TGT ACT TCA GAA GAG TGG CAA GGT CTC ATG CAA TTC ACC CTT 1406 Ser Ile Cys Thr Ser Glu Glu Trp Gln Gly Leu Met Gln Phe Thr Leu 450 455 460 CCC GTG CGT CTC TGC AAA GAA ATT GAA TTA TTC CAC TTT GAC ATT GGT 1454 Pro Val Arg Leu Cys Lys Glu Ile Glu Leu Phe His Phe Asp Ile Gly 465 470 475 480 CCT TTT GAA AAC ATG TGG CCT GGA ATT TTT GTC TAC ATG GTT CAT CGG 1502 Pro Phe Glu Asn Met Trp Pro Gly Ile Phe Val Tyr Met Val His Arg 485 490 495 TCC TGT GGG ACA TCC TGC TTT GAG CTT GAA AAG TTG TGT CGT TTT ATT 1550 Ser Cys Gly Thr Ser Cys Phe Glu Leu Glu Lys Leu Cys Arg Phe Ile 500 505 510 ATG TCT GTG AAG AAG AAC TAT CGG CGG GTT CCT TAT CAC AAC TGG AAG 1598 Met Ser Val Lys Lys Asn Tyr Arg Arg Val Pro Tyr His Asn Trp Lys 515 520 525 CAT GCG GTC ACT GTA GCA CAC TGC ATG TAT GCC ATA CTT CAG AAC AAT 1646 His Ala Val Thr Val Ala His Cys Met Tyr Ala Ile Leu Gln Asn Asn 530 535 540 CAC ACG CTT TTC ACA GAC CTT GAG CGC AAA GGA CTG CTG ATT GCG TGT 1694 His Thr Leu Phe Thr Asp Leu Glu Arg Lys Gly Leu Leu Ile Ala Cys 545 550 555 560 CTG TGT CAT GAC CTG GAC CAC AGG GGC TTC AGT AAC AGC TAC CTG CAG 1742 Leu Cys His Asp Leu Asp His Arg Gly Phe Ser Asn Ser Tyr Leu Gln 565 570 575 AAG TTC GAC CAC CCT CTG GCC GCT CTC TAC TCC ACT TCC ACC ATG GAG 1790 Lys Phe Asp His Pro Leu Ala Ala Leu Tyr Ser Thr Ser Thr Met Glu 580 585 590 CAG CAC CAC TTC TCC CAG ACT GTG TCC ATC CTT CAG TTG GAA GGG CAC 1838 Gln His His Phe Ser Gln Thr Val Ser Ile Leu Gln Leu Glu Gly His 595 600 605 AAT ATC TTC TCC ACT CTG AGC TCC AGT GAA TAT GAG CAG GTG CTT GAG 1886 Asn Ile Phe Ser Thr Leu Ser Ser Ser Glu Tyr Glu Gln Val Leu Glu 610 615 620 ATC ATC CGC AAA GCC ATC ATT GCC ACA GAC CTT GCT TTA TAC TTT GGA 1934 Ile Ile Arg Lys Ala Ile Ile Ala Thr Asp Leu Ala Leu Tyr Phe Gly 625 630 635 640 AAC AGG AAG CAG TTG GAA GAG ATG TAC CAG ACC GGA TCA CTA AAC CTT 1982 Asn Arg Lys Gln Leu Glu Glu Met Tyr Gln Thr Gly Ser Leu Asn Leu 645 650 655 AAT AAT CAA TCA CAT AGA GAC CGT GTA ATT GGT TTG ATG ATG ACT GCC 2030 Asn Asn Gln Ser His Arg Asp Arg Val Ile Gly Leu Met Met Thr Ala 660 665 670 TGT GAC CTT TGT TCT GTG ACA AAA CTG TGG CCC GTT ACA AAA TTG ACG 2078 Cys Asp Leu Cys Ser Val Thr Lys Leu Trp Pro Val Thr Lys Leu Thr 675 680 685 GCA AAT GAT ATA TAT GCA GAA TTC TGG GCT GAG GGT GAT GAA ATG AAG 2126 Ala Asn Asp Ile Tyr Ala Glu Phe Trp Ala Glu Gly Asp Glu Met Lys 690 695 700 AAA TTG GGA ATA CAG CCT ATT CCT ATG ATG GAC AGA GAC AAG AAG GAT 2174 Lys Leu Gly Ile Gln Pro Ile Pro Met Met Asp Arg Asp Lys Lys Asp 705 710 715 720 GAA GTC CCC CAA GGC CAG CTT GGG TTC TAC AAT GCC GTG GCC ATT CCC 2222 Glu Val Pro Gln Gly Gln Leu Gly Phe Tyr Asn Ala Val Ala Ile Pro 725 730 735 TGC TAT ACA ACC CTT ACC CAG ATC CTC CCT CCC ACG GAG CCT CTT CTG 2270 Cys Tyr Thr Thr Leu Thr Gln Ile Leu Pro Pro Thr Glu Pro Leu Leu 740 745 750 AAA GCA TGC AGG GAT AAT CTC AGT CAG TGG GAG AAG 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【0133】配列番号:3 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: AAGCTGTCCT ACCATAGC 18 。
【0134】配列番号:4 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: GGCTGCGGCC AGAGGGTG 18 。
【0135】配列番号:5 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: ACTTTCAGAA GAGTGGCC 18。
【0136】配列番号:6 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: TGCAGGTAAC TGTTACTG 18 。
【0137】配列番号:7 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: CGCTGCTCTT CGGCTCCG 18 。
【0138】配列番号:8 配列の長さ:21 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: GGATCTGTAG GTGGGACAGC G 21 。
【0139】配列番号:9 配列の長さ:31 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: GGGAATTCAT GAGGATAGAA GAGAGGAAAT C 31 。
【0140】配列番号:10 配列の長さ:22 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: AGCGTGTCAG GGTGACCAGT GC 22 。
【0141】配列番号:11 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: CGCTGCTCTT CGGCTCCG 18 。
【0142】配列番号:12 配列の長さ:21 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: GGATCTGTAG GTGGGACAGC G 21 。
【0143】配列番号:13 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: TCTTCGGCTC CGACATGG 18 。
【0144】配列番号:14 配列の長さ:22 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: AGCGTGTCAG GGTGACCAGT GC 22 。
【0145】 配列番号:15 配列の長さ:3427 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 起源 生物名:ラット 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:281..2665 配列: GAATTCGGCA CGAGGCAGCG GCGGGCGGCG GCGGCTCTTC CTTTCGCCTG CGATCCAAGG 60 CTTGCTGCTC CCAGCCCGCT CCGGGCCCCG GCCACCTCCA CCGCCGCGGC TCCCCTTACA 120 CCCGGGCGCA CACCGCGCGG ACTCCTTGGG TTTTCCGGGT GCCGGCGGGG GCTGCCCTGG 180 CCTCGGCCCC GGCTCTGCGG CCGGTGGCCG AACTCCGTGG CGGCCCCGAG GCACCGCCCT 240 CCCCCTTGCC ACTGCCTGGC CGCTGCTCTT CGGCTCCGAC 280 ATG GAA GAT GGA CCC TCT AAC AAT GCG AGT TGC TTC CGA AGG CTG ACC 328 Met Glu Asp Gly Pro Ser Asn Asn Ala Ser Cys Phe Arg Arg Leu Thr 1 5 10 15 GAG TGT TTC CTC AGC CCC AGT TTG ACG GAT GAA AAG GTG AAG GCC TAT 376 Glu Cys Phe Leu Ser Pro Ser Leu Thr Asp Glu Lys Val Lys Ala Tyr 20 25 30 CTT TCC CTC CAT CCC CAG GTA TTA GAC GAG TTT GTT TCT GAA AGT GTT 424 Leu Ser Leu His Pro Gln Val Leu Asp Glu Phe Val Ser Glu Ser Val 35 40 45 AGT GCG GAG ACT GTG GAG AAG TGG CTG AAG AGG AAA AAC AAC AAA GCA 472 Ser Ala Glu Thr Val Glu Lys Trp Leu Lys Arg Lys Asn Asn Lys Ala 50 55 60 GAA GAT GAA CCA TCT CCT AAG GAA GTC AGC AGG TAC CAG GAC ACG AAC 520 Glu Asp Glu Pro Ser Pro Lys Glu Val Ser Arg Tyr Gln Asp Thr Asn 65 70 75 80 ATG CAG GGA GTC GTG TAC GAG CTG AAC AGC TAC ATA GAG CAG CGC CTG 568 Met Gln Gly Val Val Tyr Glu Leu Asn Ser Tyr Ile Glu Gln Arg Leu 85 90 95 GAC ACC GGC GGG GAC AAC CAC CTG CTC CTG TAC GAG CTA AGC AGT ATC 616 Asp Thr Gly Gly Asp Asn His Leu Leu Leu Tyr Glu Leu Ser Ser Ile 100 105 110 ATC AGG ATA GCC ACA AAA GCC GAC GGA TTT GCA CTG TAC TTC CTT GGA 664 Ile Arg Ile Ala Thr Lys Ala Asp Gly Phe Ala Leu Tyr Phe Leu Gly 115 120 125 GAG TGC AAT AAT AGT CTG TGT GTC TTC ACA CCA CCC GGA ATG AAG GAA 712 Glu Cys Asn Asn Ser Leu Cys Val Phe Thr Pro Pro Gly Met Lys Glu 130 135 140 GGT CAA CCC CGT CTC ATC CCC GCA GGG CCC ATC ACC CAG GGC ACC ACC 760 Gly Gln Pro Arg Leu Ile Pro Ala Gly Pro Ile Thr Gln Gly Thr Thr 145 150 155 160 ATC TCT GCC TAT GTG GCC AAG TCT AGG AAG ACC CTG CTG GTA GAG GAC 808 Ile Ser Ala Tyr Val Ala Lys Ser Arg Lys Thr Leu Leu Val Glu Asp 165 170 175 ATC CTT GGG GAT GAG CGA TTT CCC AGA GGC ACT GGT CTG GAG TCA GGA 856 Ile Leu Gly Asp Glu Arg Phe Pro Arg Gly Thr Gly Leu Glu Ser Gly 180 185 190 ACC CGA ATC CAG TCT GTC CTT TGC TTG CCT ATT GTC ACT GCC ATT GGA 904 Thr Arg Ile Gln Ser Val Leu Cys Leu Pro Ile Val Thr Ala Ile Gly 195 200 205 GAC TTG ATT GGC ATC CTT GAA CTG TAC AGG CAC TGG GGC AAA GAG GCC 952 Asp Leu Ile Gly Ile Leu Glu Leu Tyr Arg His Trp Gly Lys Glu Ala 210 215 220 TTC TGC CTC AGC CAT CAG GAG GTT GCA ACC GCC AAT CTC GCT TGG GCT 1000 Phe Cys Leu Ser His Gln Glu Val Ala Thr Ala Asn Leu Ala Trp Ala 225 230 235 240 TCC GTA GCA ATA CAC CAG GTG CAG GTG TGC AGA GGT CTC GCC AAG CAG 1048 Ser Val Ala Ile His Gln Val Gln Val Cys Arg Gly Leu Ala Lys Gln 245 250 255 ACC GAA CTG AAT GAC TTC CTG CTC GAT GTA TCA AAG ACA TAC TTT GAT 1096 Thr Glu Leu Asn Asp Phe Leu Leu Asp Val Ser Lys Thr Tyr Phe Asp 260 265 270 AAC ATA GTC GCC ATA GAC TCT CTA CTT GAA CAC ATC ATG ATA TAT GCA 1144 Asn Ile Val Ala Ile Asp Ser Leu Leu Glu His Ile Met Ile Tyr Ala 275 280 285 AAA AAT CTA GTG AAC GCC GAC CGC TGC GCG CTC TTC CAG GTG GAC CAC 1192 Lys Asn Leu Val Asn Ala Asp Arg Cys Ala Leu Phe Gln Val Asp His 290 295 300 AAG AAC AAG GAG CTG TAC TCG GAC CTG TTT GAC ATT GGG GAG GAG AAG 1240 Lys Asn Lys Glu Leu Tyr Ser Asp Leu Phe Asp Ile Gly Glu Glu Lys 305 310 315 320 GAG GGG AAG CCC GTC TTC AAG AAG ACC AAG GAG ATC AGA TTT TCC ATT 1288 Glu Gly Lys Pro Val Phe Lys Lys Thr Lys Glu Ile Arg Phe Ser Ile 325 330 335 GAG AAA GGG ATT GCT GGT CAA GTG GCA AGA ACG GGA GAA GTC CTG AAC 1336 Glu Lys Gly Ile Ala Gly Gln Val Ala Arg Thr Gly Glu Val Leu Asn 340 345 350 ATT CCT GAT GCC TAC GCA GAC CCG CGC TTT AAC AGG GAG GTG GAC CTG 1384 Ile Pro Asp Ala Tyr Ala Asp Pro Arg Phe Asn Arg Glu Val Asp Leu 355 360 365 TAC ACA GGC TAT ACC ACG CGG AAC ATT CTG TGT ATG CCC ATA GTG AGC 1432 Tyr Thr Gly Tyr Thr Thr Arg Asn Ile Leu Cys Met Pro Ile Val Ser 370 375 380 CGC GGC AGC GTG ATC GGT GTG GTG CAA ATG GTT AAC AAG ATC AGC GGC 1480 Arg Gly Ser Val Ile Gly Val Val Gln Met Val Asn Lys Ile Ser Gly 385 390 395 400 AGC GCC TTC TCC AAG ACG GAT GAG AAC AAC TTC AAG ATG TTT GCT GTC 1528 Ser Ala Phe Ser Lys Thr Asp Glu Asn Asn Phe Lys Met Phe Ala Val 405 410 415 TTC TGC GCT CTG GCC CTG CAC TGC GCT AAC ATG TAC CAC AGG ATC CGC 1576 Phe Cys Ala Leu Ala Leu His Cys Ala Asn Met Tyr His Arg Ile Arg 420 425 430 CAC TCA GAG TGC ATC TAC AGG GTT ACC ATG GAG AAG CTG TCT TAC CAC 1624 His Ser Glu Cys Ile Tyr Arg Val Thr Met Glu Lys Leu Ser Tyr His 435 440 445 AGC ATC TGC ACC TCT GAG GAA TGG CAA GGC CTC ATG CAC TTC AAC TTG 1672 Ser Ile Cys Thr Ser Glu Glu Trp Gln Gly Leu Met His Phe Asn Leu 450 455 460 CCA GCA CGC ATC TGC CGG GAC ATC GAG CTA TTC CAC TTT GAC ATT GGT 1720 Pro Ala Arg Ile Cys Arg Asp Ile Glu Leu Phe His Phe Asp Ile Gly 465 470 475 480 CCT TTC GAG AAC ATG TGG CCT GGG ATC TTT GTC TAC ATG ATC CAT CGG 1768 Pro Phe Glu Asn Met Trp Pro Gly Ile Phe Val Tyr Met Ile His Arg 485 490 495 TCT TGT GGG ACA TCC TGT TTT GAA CTT GAA AAA TTG TGC CGT TTT ATC 1816 Ser Cys Gly Thr Ser Cys Phe Glu Leu Glu Lys Leu Cys Arg Phe Ile 500 505 510 ATG TCT GTG AAG AAG AAC TAT AGG CGG GTT CCT TAC CAC AAC TGG AAG 1864 Met Ser Val Lys Lys Asn Tyr Arg Arg Val Pro Tyr His Asn Trp Lys 515 520 525 CAT GCA GTC ACG GTG GCG CAC TGC ATG TAC GCC ATA CTT CAA AAC AAC 1912 His Ala Val Thr Val Ala His Cys Met Tyr Ala Ile Leu Gln Asn Asn 530 535 540 AAT GGC CTC TTC ACA GAC CTT GAG CGC AAA GGC CTG CTA ATT GCC TGT 1960 Asn Gly Leu Phe Thr Asp Leu Glu Arg Lys Gly Leu Leu Ile Ala Cys 545 550 555 560 CTG TGC CAT GAC CTG GAC CAC AGG GGC TTC AGT AAC AGC TAC CTG CAG 2008 Leu Cys His Asp Leu Asp His Arg Gly Phe Ser Asn Ser Tyr Leu Gln 565 570 575 AAA TTC GAC CAC CCC CTG GCT GCG TTG TAC TCC ACC TCC ACC ATG GAG 2056 Lys Phe Asp His Pro Leu Ala Ala Leu Tyr Ser Thr Ser Thr Met Glu 580 585 590 CAA CAC CAC TTC TCC CAG ACG GTG TCC ATC CTC CAG CTG GAA GGA CAC 2104 Gln His His Phe Ser Gln Thr Val Ser Ile Leu Gln Leu Glu Gly His 595 600 605 AAC ATC TTC TCC ACC CTG AGC TCC AGC GAG TAC GAG CAG GTG CTG GAG 2152 Asn Ile Phe Ser Thr Leu Ser Ser Ser Glu Tyr Glu Gln Val Leu Glu 610 615 620 ATC ATC CGC AAA GCC ATC ATC GCC ACT GAC CTC GCA CTG TAC TTT GGG 2200 Ile Ile Arg Lys Ala Ile Ile Ala Thr Asp Leu Ala Leu Tyr Phe Gly 625 630 635 640 AAC AGG AAG CAG TTG GAG GAG ATG TAC CAG ACA GGG TCG CTG AAC CTC 2248 Asn Arg Lys Gln Leu Glu Glu Met Tyr Gln Thr Gly Ser Leu Asn Leu 645 650 655 CAC AAC CAG TCC CAT CGA GAC CGC GTC ATC GGC TTG ATG ATG ACT GCC 2296 His Asn Gln Ser His Arg Asp Arg Val Ile Gly Leu Met Met Thr Ala 660 665 670 TGC GAT CTT TGC TCT GTG ACG AAA CTA TGG CCA GTT ACA AAA TTG ACA 2344 Cys Asp Leu Cys Ser Val Thr Lys Leu Trp Pro Val Thr Lys Leu Thr 675 680 685 GCA AAT GAT ATA TAT GCA GAG TTC TGG GCT GAG GGG GAT GAG ATG AAG 2392 Ala Asn Asp Ile Tyr Ala Glu Phe Trp Ala Glu Gly Asp Glu Met Lys 690 695 700 AAG TTG GGG ATA CAG CCC ATC CCT ATG ATG GAC AGA GAC AAG CGA GAT 2440 Lys Leu Gly Ile Gln Pro Ile Pro Met Met Asp Arg Asp Lys Arg Asp 705 710 715 720 GAA GTC CCT CAA GGA CAG CTT GGA TTC TAC AAT GCT GTG GCC ATC CCC 2488 Glu Val Pro Gln Gly Gln Leu Gly Phe Tyr Asn Ala Val Ala Ile Pro 725 730 735 TGC TAT ACC ACC CTG ACG CAG ATC CTC CCA CCC ACA GAG CCT CTG CTG 2536 Cys Tyr Thr Thr Leu Thr Gln Ile Leu Pro Pro Thr Glu Pro Leu Leu 740 745 750 AAG GCC TGC AGG GAT AAC CTC AAT CAG TGG GAG AAG GTA ATT CGA GGG 2584 Lys Ala Cys Arg Asp Asn Leu Asn Gln Trp Glu Lys Val Ile Arg Gly 755 760 765 GAA GAG ACA GCA ATG TGG ATT TCA GGC CCA GCA ACT AGC AAA AGC ACA 2632 Glu Glu Thr Ala Met Trp Ile Ser Gly Pro Ala Thr Ser Lys Ser Thr 770 775 780 TCT GAG AAG CCG ACC AGG AAG GTC GAT GAC TGA 2665 Ser Glu Lys Pro Thr Arg Lys Val Asp Asp 785 790 794 TCCTGAGGTG ATGTCTGCCT AGCAACTGAC TCAACCTGCT TCTGTGACTT CGTTCTTTTT 2725 ATTTTTATTT TTTTAACGGG GTGAAAACCT CTCTCAGAAG GTACCGTCGC ATATCCATGT 2785 GAAGCAGATG ACTCCCTGCG CACACCTCGG ACCGTGAGCA ACCCGGGCTC CACCGTGTTC 2845 AGACGTCGGC TATTCCATGG CTCCGCCTGA CCCCCGAATG CCATTTGCTA CCAGGCCAGA 2905 ACTGCGCTGG CTGGAGGGGG CAGAGACGAC AGGAGGGGTT CTTACCTGCA TCCTTCCATG 2965 AGGGTGTGGT TCTGTGTTTC ATCTCTAACA GAGATGCTAC TGCTTGGTGG CGTTTGTTAG 3025 AAATGGGACA CATGCCCCTG TCGTGAAGTT TACATGTGAC CTTCTTGTAG GTAACTTGAG 3085 TTCGTAGCCT GGGACCCCTG TAATGAAGGT TACAGTCCAC AGGTGATAGA GAAATTCAAG 3145 CTGTAAGTTA CAGGTGCACT ACAAGTGTGT TCATTCAGTT TACCTGGGGG CATGGAGGTG 3205 AGTCAGCTCC ACGAGGAAGG AAGCATACCT CTGCCCTCAT CAAGGGGACA CAGGGTACAT 3265 CCCAGGCATC AGAGAACTGC AGCTCACCTC AAACCATGTC AAAGAATTAA AACACACCCC 3325 CATCCCCTCA CTGTAGCCTT TGGCAACTTC GCCAAACCCT TCACACAAAG AAAATAAAAG 3385 TAAGGCGTAT AAATTTCCTC CAGCAAGCCT CGTGCCGAAT TC 3427。
【0146】 配列番号:16 配列の長さ:3080 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 起源 生物名:ラット 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:634..3000 配列: GAATTCGGCA CGAGCTTCAG AGCACACGCA GCCCCCCAAC TCCGCCCCTA TGTCAAGTGC 60 ACGCGGGCAC ACGGGTTGGA CACTCGCCCA CGCACGCACA CACACGCGCG TGCACATACA 120 TGCACACTCG TGCACACACA CTACTTCTAG GTGTGTGGGT CTAAAGTTGC TTCCGTCGAG 180 AGGCTGAGCT GAGATGGACC AGTCTTCATT GGTGCCTAGA AAGCTCCTTA CAGCTTTCCT 240 GAGGATCCCA GAAAGGAAGG CGGGAGGGAG TAGCATCGCT CCTTCTTAGA GTTGTCTCCC 300 CCTTTTGCGA GATGGCCAGC GCAGAAACTC CAAGTACCCG AAGCCCTTGG AATACTGCTG 360 CATGGAGCAT ATTCGAGCAT CTTGGAGAGG TCCTGGACTT GGGCCACCCG GGTTTGGCAA 420 CTTGTTTTGA GCAGCCCTGG ATGGAGCCCG GATCCACCTT TCCCAGAGAC TTGTCCCTAC 480 GGCCCCACTT TGAATTTGTG AACTGGCAAT GAAGCAGAAA GGAGTTTTGT ACTGGAGGAT 540 ACTTTGGCGG GCTGCCTCCC GATCACATTT AAAGGTGGGA GCAAAGGCCC CGCTCTGCTG 600 GCACTTCGAA ACCGCACAGA CTCTCGGGGG CAG 633 ATG AGC AAT GAC TCC CCA GAA GGT GCC GTG GGC TCC TGC AAC GCA ACA 681 Met Ser Asn Asp Ser Pro Glu Gly Ala Val Gly Ser Cys Asn Ala Thr 1 5 10 15 GGT TTG ACG GAT GAA AAG GTG AAG GCC TAT CTT TCC CTC CAT CCC CAG 729 Gly Leu Thr Asp Glu Lys Val Lys Ala Tyr Leu Ser Leu His Pro Gln 20 25 30 GTA TTA GAC GAG TTT GTT TCT GAA AGT GTT AGT GCG GAG ACT GTG GAG 777 Val Leu Asp Glu Phe Val Ser Glu Ser Val Ser Ala Glu Thr Val Glu 35 40 45 AAG TGG CTG AAG AGG AAA AAC AAC AAA GCA GAA GAT GAA CCA TCT CCT 825 Lys Trp Leu Lys Arg Lys Asn Asn Lys Ala Glu Asp Glu Pro Ser Pro 50 55 60 AAG GAA GTC AGC AGG TAC CAG GAC ACG AAC ATG CAG GGA GTC GTG TAC 873 Lys Glu Val Ser Arg Tyr Gln Asp Thr Asn Met Gln Gly Val Val Tyr 65 70 75 80 GAG CTG AAC AGC TAC ATA GAG CAG CGC CTG GAC ACC GGC GGG GAC AAC 921 Glu Leu Asn Ser Tyr Ile Glu Gln Arg Leu Asp Thr Gly Gly Asp Asn 85 90 95 CAC CTG CTC CTG TAC GAG CTA AGC AGT ATC ATC AGG ATA GCC ACA AAA 969 His Leu Leu Leu Tyr Glu Leu Ser Ser Ile Ile Arg Ile Ala Thr Lys 100 105 110 GCC GAC GGA TTT GCA CTG TAC TTC CTT GGA GAG TGC AAT AAT AGT CTG 1017 Ala Asp Gly Phe Ala Leu Tyr Phe Leu Gly Glu Cys Asn Asn Ser Leu 115 120 125 TGT GTC TTC ACA CCA CCC GGA ATG AAG GAA GGT CAA CCC CGT CTC ATC 1065 Cys Val Phe Thr Pro Pro Gly Met Lys Glu Gly Gln Pro Arg Leu Ile 130 135 140 CCC GCA GGG CCC ATC ACC CAG GGC ACC ACC ATC TCT GCC TAT GTG GCC 1113 Pro Ala Gly Pro Ile Thr Gln Gly Thr Thr Ile Ser Ala Tyr Val Ala 145 150 155 160 AAG TCT AGG AAG ACC CTG CTG GTA GAG GAC ATC CTT GGG GAT GAG CGA 1161 Lys Ser Arg Lys Thr Leu Leu Val Glu Asp Ile Leu Gly Asp Glu Arg 165 170 175 TTT CCC AGA GGC ACT GGT CTG GAG TCA GGA ACC CGA ATC CAG TCT GTC 1209 Phe Pro Arg Gly Thr Gly Leu Glu Ser Gly Thr Arg Ile Gln Ser Val 180 185 190 CTT TGC TTG CCT ATT GTC ACT GCC ATT GGA GAC TTG ATT GGC ATC CTT 1257 Leu Cys Leu Pro Ile Val Thr Ala Ile Gly Asp Leu Ile Gly Ile Leu 195 200 205 GAA CTG TAC AGG CAC TGG GGC AAA GAG GCC TTC TGC CTC AGC CAT CAG 1305 Glu Leu Tyr Arg His Trp Gly Lys Glu Ala Phe Cys Leu Ser His Gln 210 215 220 GAG GTT GCA ACC GCC AAT CTC GCT TGG GCT TCC GTA GCA ATA CAC CAG 1353 Glu Val Ala Thr Ala Asn Leu Ala Trp Ala Ser Val Ala Ile His Gln 225 230 235 240 GTG CAG GTG TGC AGA GGT CTC GCC AAG CAG ACC GAA CTG AAT GAC TTC 1401 Val Gln Val Cys Arg Gly Leu Ala Lys Gln Thr Glu Leu Asn Asp Phe 245 250 255 CTG CTC GAT GTA TCA AAG ACA TAC TTT GAT AAC ATA GTC GCC ATA GAC 1449 Leu Leu Asp Val Ser Lys Thr Tyr Phe Asp Asn Ile Val Ala Ile Asp 260 265 270 TCT CTA CTT GAA CAC ATC ATG ATA TAT GCA AAA AAT CTA GTG AAC GCC 1497 Ser Leu Leu Glu His Ile Met Ile Tyr Ala Lys Asn Leu Val Asn Ala 275 280 285 GAC CGC TGC GCG CTC TTC CAG GTG GAC CAC AAG AAC AAG GAG CTG TAC 1545 Asp Arg Cys Ala Leu Phe Gln Val Asp His Lys Asn Lys Glu Leu Tyr 290 295 300 TCG GAC CTG TTT GAC ATT GGG GAG GAG AAG GAG GGG AAG CCC GTC TTC 1593 Ser Asp Leu Phe Asp Ile Gly Glu Glu Lys Glu Gly Lys Pro Val Phe 305 310 315 320 AAG AAG ACC AAG GAG ATC AGA TTT TCC ATT GAG AAA GGG ATT GCT GGT 1641 Lys Lys Thr Lys Glu Ile Arg Phe Ser Ile Glu Lys Gly Ile Ala Gly 325 330 335 CAA GTG GCA AGA ACG GGA GAA GTC CTG AAC ATT CCT GAT GCC TAC GCA 1689 Gln Val Ala Arg Thr Gly Glu Val Leu Asn Ile Pro Asp Ala Tyr Ala 340 345 350 GAC CCG CGC TTT AAC AGG GAG GTG GAC CTG TAC ACA GGC TAT ACC ACG 1737 Asp Pro Arg Phe Asn Arg Glu Val Asp Leu Tyr Thr Gly Tyr Thr Thr 355 360 365 CGG AAC ATT CTG TGT ATG CCC ATA GTG AGC CGC GGC AGC GTG ATC GGT 1785 Arg Asn Ile Leu Cys Met Pro Ile Val Ser Arg Gly Ser Val Ile Gly 370 375 380 GTG GTG CAA ATG GTT AAC AAG ATC AGC GGC AGC GCC TTC TCC AAG ACG 1833 Val Val Gln Met Val Asn Lys Ile Ser Gly Ser Ala Phe Ser Lys Thr 385 390 395 400 GAT GAG AAC AAC TTC AAG ATG TTT GCT GTC TTC TGC GCT CTG GCC CTG 1881 Asp Glu Asn Asn Phe Lys Met Phe Ala Val Phe Cys Ala Leu Ala Leu 405 410 415 CAC TGC GCT AAC ATG TAC CAC AGG ATC CGC CAC TCA GAG TGC ATC TAC 1929 His Cys Ala Asn Met Tyr His Arg Ile Arg His Ser Glu Cys Ile Tyr 420 425 430 AGG GTT ACC ATG GAG AAG CTG TCT TAC CAC AGC ATC TGC ACC TCT GAG 1977 Arg Val Thr Met Glu Lys Leu Ser Tyr His Ser Ile Cys Thr Ser Glu 435 440 445 GAA TGG CAA GGC CTC ATG CAC TTC AAC TTG CCA GCA CGC ATC TGC CGG 2025 Glu Trp Gln Gly Leu Met His Phe Asn Leu Pro Ala Arg Ile Cys Arg 450 455 460 GAC ATC GAG CTA TTC CAC TTT GAC ATT GGT CCT TTC GAG AAC ATG TGG 2073 Asp Ile Glu Leu Phe His Phe Asp Ile Gly Pro Phe Glu Asn Met Trp 465 470 475 480 CCT GGG ATC TTT GTC TAC ATG ATC CAT CGG TCT TGT GGG ACA TCC TGT 2121 Pro Gly Ile Phe Val Tyr Met Ile His Arg Ser Cys Gly Thr Ser Cys 485 490 495 TTT GAA CTT GAA AAA TTG TGC CGT TTT ATC ATG TCT GTG AAG AAG AAC 2169 Phe Glu Leu Glu Lys Leu Cys Arg Phe Ile Met Ser Val Lys Lys Asn 500 505 510 TAT AGG CGG GTT CCT TAC CAC AAC TGG AAG CAT GCA GTC ACG GTG GCG 2217 Tyr Arg Arg Val Pro Tyr His Asn Trp Lys His Ala Val Thr Val Ala 515 520 525 CAC TGC ATG TAC GCC ATA CTT CAA AAC AAC AAT GGC CTC TTC ACA GAC 2265 His Cys Met Tyr Ala Ile Leu Gln Asn Asn Asn Gly Leu Phe Thr Asp 530 535 540 CTT GAG CGC AAA GGC CTG CTA ATT GCC TGT CTG TGC CAT GAC CTG GAC 2313 Leu Glu Arg Lys Gly Leu Leu Ile Ala Cys Leu Cys His Asp Leu Asp 545 550 555 560 CAC AGG GGC TTC AGT AAC AGC TAC CTG CAG AAA TTC GAC CAC CCC CTG 2361 His Arg Gly Phe Ser Asn Ser Tyr Leu Gln Lys Phe Asp His Pro Leu 565 570 575 GCT GCG TTG TAC TCC ACC TCC ACC ATG GAG CAA CAC CAC TTC TCC CAG 2409 Ala Ala Leu Tyr Ser Thr Ser Thr Met Glu Gln His His Phe Ser Gln 580 585 590 ACG GTG TCC ATC CTC CAG CTG GAG GGA CAC AAC ATC TTC TCC ACC CTG 2457 Thr Val Ser Ile Leu Gln Leu Glu Gly His Asn Ile Phe Ser Thr Leu 595 600 605 AGC TCC AGC GAG TAC GAG CAG GTG CTG GAG ATC ATC CGC AAA GCC ATC 2505 Ser Ser Ser Glu Tyr Glu Gln Val Leu Glu Ile Ile Arg Lys Ala Ile 610 615 620 ATC GCC ACT GAC CTC GCA CTG TAC TTT GGG AAC AGG AAG CAG TTG GAG 2553 Ile Ala Thr Asp Leu Ala Leu Tyr Phe Gly Asn Arg Lys Gln Leu Glu 625 630 635 640 GAG ATG TAC CAG ACA GGG TCG CTG AAC CTC CAC AAC CAG TCC CAT CGA 2601 Glu Met Tyr Gln Thr Gly Ser Leu Asn Leu His Asn Gln Ser His Arg 645 650 655 GAC CGC GTC ATC GGC TTG ATG ATG ACT GCC TGC GAT CTT TGC TCT GTG 2649 Asp Arg Val Ile Gly Leu Met Met Thr Ala Cys Asp Leu Cys Ser Val 660 665 670 ACG AAA CTA TGG CCA GTT ACA AAA TTG ACA GCA AAT GAT ATA TAT GCA 2697 Thr Lys Leu Trp Pro Val Thr Lys Leu Thr Ala Asn Asp Ile Tyr Ala 675 680 685 GAG TTC TGG GCT GAG GGG GAT GAG ATG AAG AAG TTG GGG ATA CAG CCC 2745 Glu Phe Trp Ala Glu Gly Asp Glu Met Lys Lys Leu Gly Ile Gln Pro 690 695 700 ATC CCT ATG ATG GAC AGA GAC AAG CGA GAT GAA GTC CCT CAA GGA CAG 2793 Ile Pro Met Met Asp Arg Asp Lys Arg Asp Glu Val Pro Gln Gly Gln 705 710 715 720 CTT GGA TTC TAC AAT GCT GTG GCC ATC CCC TGC TAT ACC ACC CTG ACG 2841 Leu Gly Phe Tyr Asn Ala Val Ala Ile Pro Cys Tyr Thr Thr Leu Thr 725 730 735 CAG ATC CTC CCA CCC ACA GAG CCT CTG CTG AAG GCC TGC AGG GAT AAC 2889 Gln Ile Leu Pro Pro Thr Glu Pro Leu Leu Lys Ala Cys Arg Asp Asn 740 745 750 CTC AAT CAG TGG GAG AAG GTA ATT CGA GGG GAA GAG ACA GCA ATG TGG 2937 Leu Asn Gln Trp Glu Lys Val Ile Arg Gly Glu Glu Thr Ala Met Trp 755 760 765 ATT TCA GGC CCA GCA ACT AGC AAA AGC ACA TCT GAG AAG CCG ACC AGG 2985 Ile Ser Gly Pro Ala Thr Ser Lys Ser Thr Ser Glu Lys Pro Thr Arg 770 775 780 AAG GTC GAT GAC TGA 3000 Lys Val Asp Asp 785 788 TCCTGAGGTG ATGTCTGCCT AGCAACTGAC TCAACCTGCT TCTGTGACTT CGTTCTTTTT 3060 ATTTTTATTT TTTTAACGGG 3080。
【0147】配列番号:17 配列の長さ:19 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: GCGCTCTTCC AGGTGGACC 19 。
【0148】配列番号:18 配列の長さ:18 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸(合成プライマー) 配列: CATCTTGAAG TTGTTCTC 18 。
【図1】 組換えヒトPDE10を発現させたCOS細
胞の細胞抽出液をMonoQセファロースカラムクロマトグ
ラフィーで分画した結果(各画分のcAMP又はcGM
P加水分解活性)を示した図。
胞の細胞抽出液をMonoQセファロースカラムクロマトグ
ラフィーで分画した結果(各画分のcAMP又はcGM
P加水分解活性)を示した図。
【図2】 ヒトPDE10によるcAMP又はcGMP
加水分解反応の速度論的解析結果(Lineweaver-Burk pl
ot)を示した図。
加水分解反応の速度論的解析結果(Lineweaver-Burk pl
ot)を示した図。
【図3】 ヒトPDE10のcAMP分解活性に対する
cGMPの影響を調べた結果を示した図。cGMP非添
加の場合のcAMP分解活性を100%とし、活性の相
対値(%)を示した。
cGMPの影響を調べた結果を示した図。cGMP非添
加の場合のcAMP分解活性を100%とし、活性の相
対値(%)を示した。
【図4】 ヒトの各組織におけるPDE10遺伝子の発
現(ドットブロットの結果)を示した図。
現(ドットブロットの結果)を示した図。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C12N 5/10 C12N 9/16 C 9/16 C12P 21/08 15/02 C12Q 1/44 C12P 21/08 1/68 A C12Q 1/44 G01N 33/15 Z 1/68 33/50 Z G01N 33/15 33/573 A 33/50 C12N 5/00 B 33/573 A //(C12N 9/16 15/00 C C12R 1:91) (72)発明者 道端 英雄 埼玉県戸田市川岸2丁目3番8号田辺製薬 戸田寮 (72)発明者 湯浅 恵造 埼玉県戸田市川岸2丁目3番8号田辺製薬 戸田寮
Claims (22)
- 【請求項1】 10型ホスホジエステラーゼ。
- 【請求項2】 以下の(A)及び(B)から選択される
蛋白質である請求項1記載のホスホジエステラーゼ。 (A)配列番号1、配列番号2、配列番号15又は配列
番号16で示されるアミノ酸配列を有する蛋白質。 (B)配列番号1、配列番号2、配列番号15又は配列
番号16で示されるアミノ酸配列において、1もしくは
複数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミ
ノ酸配列を有する蛋白質であって、かつ、環状ヌクレオ
チドを加水分解する活性を有する蛋白質。 - 【請求項3】 以下の(A)及び(B)から選択される
蛋白質である請求項1記載のホスホジエステラーゼ。 (A)配列番号1又は配列番号2で示されるアミノ酸配
列を有する蛋白質。 (B)配列番号1又は配列番号2で示されるアミノ酸配
列において、1もしくは複数個のアミノ酸が欠失、置換
もしくは付加されたアミノ酸配列を有する蛋白質であっ
て、かつ、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有す
る蛋白質。 - 【請求項4】 ヒト由来である請求項1、2又は3記載
のホスホジエステラーゼ。 - 【請求項5】 ラット由来である請求項1又は2記載の
ホスホジエステラーゼ。 - 【請求項6】 請求項1、2又は3記載のホスホジエス
テラーゼをコードする遺伝子又は核酸。 - 【請求項7】 以下の(a)及び(b)から選択される
遺伝子又は核酸。 (a)配列番号1、配列番号2、配列番号15又は配列
番号16で示される塩基配列を有するDNAからなる遺
伝子又は核酸。 (b)配列番号1、配列番号2、配列番号15又は配列
番号16で示される塩基配列を有するDNAとストリン
ジェントな条件下でハイブリダイズするDNAからなる
遺伝子又は核酸であって、かつ、環状ヌクレオチドを加
水分解する活性を有する蛋白質をコードする遺伝子又は
核酸。 - 【請求項8】 以下の(a)及び(b)から選択される
遺伝子又は核酸。 (a)配列番号1又は配列番号2で示される塩基配列を
有するDNAからなる遺伝子又は核酸。 (b)配列番号1又は配列番号2で示される塩基配列を
有するDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダ
イズするDNAからなる遺伝子又は核酸であって、か
つ、環状ヌクレオチドを加水分解する活性を有する蛋白
質をコードする遺伝子又は核酸。 - 【請求項9】 ヒト由来である請求項7又は8記載の遺
伝子又は核酸。 - 【請求項10】 ラット由来である請求項7記載の遺伝
子又は核酸。 - 【請求項11】 請求項6、7又は8記載の遺伝子又は
核酸を含有する組換えベクター。 - 【請求項12】 発現ベクターである請求項11記載の
組換えベクター。 - 【請求項13】 請求項12記載の組換えベクターが導
入された宿主細胞。 - 【請求項14】 請求項1記載のホスホジエステラー
ゼ、酵素の基質及び被験物質を含む系内で酵素反応を行
う工程と、請求項1記載のホスホジエステラーゼの酵素
活性に対する被験物質の阻害作用を検定する工程を含
む、ホスホジエステラーゼ阻害薬を特徴付け、同定又は
選択するための方法。 - 【請求項15】 酵素の基質が、cAMP及びcGMP
から選択される環状ヌクレオチドである、請求項14記
載の方法。 - 【請求項16】 ホスホジエステラーゼの酵素活性が、
環状ヌクレオチドの加水分解活性である、請求項14記
載の方法。 - 【請求項17】 請求項1記載のホスホジエステラーゼ
及び被験物質を含む系内で結合反応を行う工程と、被験
物質が請求項1記載のホスホジエステラーゼとの結合能
を有するか否かを検定する工程を含む、ホスホジエステ
ラーゼ阻害薬を特徴付け、同定又は選択するための方
法。 - 【請求項18】 複数の型のホスホジエステラーゼに対
する阻害作用の選択性によって特徴付け、同定又は選択
するために使用される請求項14又は17記載の方法。 - 【請求項19】 配列番号1、配列番号2、配列番号1
5又は配列番号16で示される塩基配列を有するDNA
とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸
をプローブ又はプライマーとして用いて、請求項6、7
又は8記載の遺伝子又は核酸を検出する方法。 - 【請求項20】 請求項6、7又は8記載の遺伝子の細
胞中での発現を抑制するために使用される、配列番号
1、配列番号2、配列番号15又は配列番号16で示さ
れる塩基配列を有するDNAとストリンジェントな条件
下でハイブリダイズする核酸。 - 【請求項21】 請求項1記載のホスホジエステラーゼ
を認識する抗体。 - 【請求項22】 請求項1記載のホスホジエステラーゼ
を認識する抗体を用いて、請求項1記載のホスホジエス
テラーゼの細胞中又は組織中での発現を検出する方法。
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| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11129343A JP2000224992A (ja) | 1998-11-30 | 1999-05-11 | 新規ホスホジエステラーゼ及びその遺伝子 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33886198 | 1998-11-30 | ||
| JP10-338861 | 1998-11-30 | ||
| JP11129343A JP2000224992A (ja) | 1998-11-30 | 1999-05-11 | 新規ホスホジエステラーゼ及びその遺伝子 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2000224992A true JP2000224992A (ja) | 2000-08-15 |
| JP2000224992A5 JP2000224992A5 (ja) | 2006-01-12 |
Family
ID=26464768
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP11129343A Pending JP2000224992A (ja) | 1998-11-30 | 1999-05-11 | 新規ホスホジエステラーゼ及びその遺伝子 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2000224992A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2004050091A1 (ja) * | 2002-12-03 | 2004-06-17 | Kyorin Pharmaceutical Co., Ltd. | ホスホジエステラーゼ10a阻害剤 |
| EP1608743A2 (en) * | 2003-04-03 | 2005-12-28 | Memory Pharmaceutical Corporation | Phosphodiesterase 10a7 isoforms and methods of use |
| JP2010095525A (ja) * | 2001-08-31 | 2010-04-30 | Rockefeller Univ | 脳におけるホスホジエステラーゼ活性およびホスホジエステラーゼ1b媒介シグナル伝達の調節 |
| US9605041B2 (en) | 2009-08-05 | 2017-03-28 | Intra-Cellular Therapies, Inc. | Regulatory proteins and inhibitors |
-
1999
- 1999-05-11 JP JP11129343A patent/JP2000224992A/ja active Pending
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