JP2000301178A - 汚染環境の生物学的浄化方法 - Google Patents
汚染環境の生物学的浄化方法Info
- Publication number
- JP2000301178A JP2000301178A JP11114076A JP11407699A JP2000301178A JP 2000301178 A JP2000301178 A JP 2000301178A JP 11114076 A JP11114076 A JP 11114076A JP 11407699 A JP11407699 A JP 11407699A JP 2000301178 A JP2000301178 A JP 2000301178A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- microorganisms
- protozoa
- contaminated
- injection
- environment
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Processing Of Solid Wastes (AREA)
- Treatment Of Biological Wastes In General (AREA)
- Purification Treatments By Anaerobic Or Anaerobic And Aerobic Bacteria Or Animals (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【課題】 低コストかつ簡単な操作で、汚染環境を効率
よく浄化することができる汚染環境の生物学的浄化方法
を提案する。 【解決手段】 培養槽１で培養した微生物２を含む培養
液を、注入井３から汚染地下水路１７に注入し、微生物
２の作用により汚染環境中の汚染物質を分解すると、時
間の経過とともに注入した微生物２を捕食した原生動物
の個体数が増加するので浄化の効果は低下し、さらに時
間が経過すると捕食する微生物がなくなり栄養源がなく
なるので原生動物の個体数も自然に減少するので、この
時再び前記微生物２を含む培養液を前記と同様に汚染地
下水路１７に注入し、このような間欠的な微生物２の注
入を繰り返すことにより、汚染環境を浄化する。
よく浄化することができる汚染環境の生物学的浄化方法
を提案する。 【解決手段】 培養槽１で培養した微生物２を含む培養
液を、注入井３から汚染地下水路１７に注入し、微生物
２の作用により汚染環境中の汚染物質を分解すると、時
間の経過とともに注入した微生物２を捕食した原生動物
の個体数が増加するので浄化の効果は低下し、さらに時
間が経過すると捕食する微生物がなくなり栄養源がなく
なるので原生動物の個体数も自然に減少するので、この
時再び前記微生物２を含む培養液を前記と同様に汚染地
下水路１７に注入し、このような間欠的な微生物２の注
入を繰り返すことにより、汚染環境を浄化する。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、有害物質で汚染さ
れた土壌、地下水または排水等の汚染環境を生物学的に
浄化する汚染環境の生物学的浄化方法に関するものであ
る。
れた土壌、地下水または排水等の汚染環境を生物学的に
浄化する汚染環境の生物学的浄化方法に関するものであ
る。
【０００２】
【従来の技術】有機塩素化合物等の化学物質その他の有
害物質により土壌、地下水または排水等の環境が汚染さ
れると、その汚染は長期にわたって続き、また汚染が広
範囲に拡散するので、汚染環境の浄化が必要になる。こ
のような有害物質で汚染された土壌、地下水または排水
を浄化する場合、汚染から年数が経過していない、比較
的範囲の狭い高濃度の汚染に対しては物理化学的な処理
が有効であるが、ある程度の時間が経過し、拡散や地下
水の流れによって汚染物質が広範囲に広がった後の低濃
度汚染に対しては生物学的な浄化が効果的であると言わ
れている。
害物質により土壌、地下水または排水等の環境が汚染さ
れると、その汚染は長期にわたって続き、また汚染が広
範囲に拡散するので、汚染環境の浄化が必要になる。こ
のような有害物質で汚染された土壌、地下水または排水
を浄化する場合、汚染から年数が経過していない、比較
的範囲の狭い高濃度の汚染に対しては物理化学的な処理
が有効であるが、ある程度の時間が経過し、拡散や地下
水の流れによって汚染物質が広範囲に広がった後の低濃
度汚染に対しては生物学的な浄化が効果的であると言わ
れている。
【０００３】土壌、地下水または排水中の有害物質を生
物学的に浄化するには、有機物や栄養塩および酸素など
を汚染サイトに添加し、対象汚染物質を分解できる微生
物を現場に生育させることが必要であり、また場合によ
っては温度やｐＨ等の環境条件の制御が必要な場合もあ
る。そして対象汚染物質が生物易分解性であり、その分
解微生物が現場サイトにある一定量以上存在する場合
は、特定の微生物を外部から添加せず、現場に土着する
微生物を処理に利用するのが一般的である。しかし、現
場サイトに分解菌がほとんど存在しない場合や、汚染物
質が生物難分解性であり、汚染物質を基質とした増殖だ
けでは高い分解効率が得られない場合や、その汚染物質
をエネルギー源や炭素源として増殖できる微生物が地球
上に存在しない場合などは、外部から特定の分解微生物
を添加し、処理の効率化を図ることが必要である。
物学的に浄化するには、有機物や栄養塩および酸素など
を汚染サイトに添加し、対象汚染物質を分解できる微生
物を現場に生育させることが必要であり、また場合によ
っては温度やｐＨ等の環境条件の制御が必要な場合もあ
る。そして対象汚染物質が生物易分解性であり、その分
解微生物が現場サイトにある一定量以上存在する場合
は、特定の微生物を外部から添加せず、現場に土着する
微生物を処理に利用するのが一般的である。しかし、現
場サイトに分解菌がほとんど存在しない場合や、汚染物
質が生物難分解性であり、汚染物質を基質とした増殖だ
けでは高い分解効率が得られない場合や、その汚染物質
をエネルギー源や炭素源として増殖できる微生物が地球
上に存在しない場合などは、外部から特定の分解微生物
を添加し、処理の効率化を図ることが必要である。
【０００４】ところで特定の微生物を汚染サイトに注入
する場合、対象とする土壌、地下水または排水中にはも
ともと他の様々な生物が存在するため、これらが添加し
た微生物の機能や生育を阻害する場合がある。中でも原
生動物による添加微生物の捕食は大きな問題であり、特
にｆｌａｇｅｌｌａｔｅやｃｉｌｉａｔｅと呼ばれる原
生動物は微生物を捕食しながら急速に増殖するため、数
時間の内に添加した微生物のほとんどを食べ尽くしてし
まう場合がある（Ｋ．Ｃｈｒｉｓｔｏｆｆｅｒｓｅｎ，
ｅｔ ａｌ．，Ｍｉｃｒｏ．Ｅｃｏｌ．，３０，ｐ６７
−７８）。
する場合、対象とする土壌、地下水または排水中にはも
ともと他の様々な生物が存在するため、これらが添加し
た微生物の機能や生育を阻害する場合がある。中でも原
生動物による添加微生物の捕食は大きな問題であり、特
にｆｌａｇｅｌｌａｔｅやｃｉｌｉａｔｅと呼ばれる原
生動物は微生物を捕食しながら急速に増殖するため、数
時間の内に添加した微生物のほとんどを食べ尽くしてし
まう場合がある（Ｋ．Ｃｈｒｉｓｔｏｆｆｅｒｓｅｎ，
ｅｔ ａｌ．，Ｍｉｃｒｏ．Ｅｃｏｌ．，３０，ｐ６７
−７８）。
【０００５】現場環境下にもともと存在する微生物は、
増殖と原生動物による捕食が均衡を保っているか、ある
いは生物膜を形成したり、糸状性になったりすることに
よって原生動物による捕食を防ぎながら（Ｍ．Ｗ．Ｈａ
ｈｎ，ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉ
ｃｒｏｂｉｏｌ．，６４，ｐ１９１０−１９１８）生育
していると考えられる。しかし、汚染サイトとは異なる
環境で培養された後に現場へ注入される微生物の場合、
原生動物の捕食に対する備えを持たないため、添加後速
やかに原生動物の餌食になってしまう可能性が高い。
増殖と原生動物による捕食が均衡を保っているか、ある
いは生物膜を形成したり、糸状性になったりすることに
よって原生動物による捕食を防ぎながら（Ｍ．Ｗ．Ｈａ
ｈｎ，ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉ
ｃｒｏｂｉｏｌ．，６４，ｐ１９１０−１９１８）生育
していると考えられる。しかし、汚染サイトとは異なる
環境で培養された後に現場へ注入される微生物の場合、
原生動物の捕食に対する備えを持たないため、添加後速
やかに原生動物の餌食になってしまう可能性が高い。
【０００６】現場にて増殖可能なタイプの微生物であっ
ても、増殖速度よりも捕食される速度が大きければ、菌
数は時間と共に減少してしまう。増殖速度の方が捕食速
度より大きい場合でも、捕食される分、見かけの増殖速
度は低下する。いずれにしろ、汚染物質の処理効果は原
生動物の捕食によって大幅に低下してしまうことにな
る。さらに、もともと現場の環境下では増殖することが
できない、使い捨てタイプの分解微生物の場合、本来の
機能を十分に発揮する前に原生動物に捕食されて、添加
菌体量当たりの処理効果が著しく低下してしまう結果に
なる。
ても、増殖速度よりも捕食される速度が大きければ、菌
数は時間と共に減少してしまう。増殖速度の方が捕食速
度より大きい場合でも、捕食される分、見かけの増殖速
度は低下する。いずれにしろ、汚染物質の処理効果は原
生動物の捕食によって大幅に低下してしまうことにな
る。さらに、もともと現場の環境下では増殖することが
できない、使い捨てタイプの分解微生物の場合、本来の
機能を十分に発揮する前に原生動物に捕食されて、添加
菌体量当たりの処理効果が著しく低下してしまう結果に
なる。
【０００７】このような、原生動物の捕食を防ぐ方法と
して、微生物をポリビニルアルコールやポリアクリルア
ミド等の高分子化合物を用いて包括固定化する方法（例
えば特開平７−９７６７３号）、微生物を吸水性ポリマ
ーに保持させて汚染環境に注入して浄化する方法（例え
ば特開平７−１２４５４３号）が提案されている。しか
し、これら従来の方法はコスト高になるほか、微生物を
固定化または保持させる操作が複雑で熟練を要するなど
の問題点がある。
して、微生物をポリビニルアルコールやポリアクリルア
ミド等の高分子化合物を用いて包括固定化する方法（例
えば特開平７−９７６７３号）、微生物を吸水性ポリマ
ーに保持させて汚染環境に注入して浄化する方法（例え
ば特開平７−１２４５４３号）が提案されている。しか
し、これら従来の方法はコスト高になるほか、微生物を
固定化または保持させる操作が複雑で熟練を要するなど
の問題点がある。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】本発明の課題は、低コ
ストかつ簡単な操作で、汚染環境を効率よく浄化するこ
とができる汚染環境の生物学的浄化方法を提案すること
である。
ストかつ簡単な操作で、汚染環境を効率よく浄化するこ
とができる汚染環境の生物学的浄化方法を提案すること
である。
【０００９】
【課題を解決するための手段】本発明は次の汚染環境の
生物学的浄化方法である。 （１）汚染物質浄化能を有する微生物を汚染環境に間欠
的に注入して浄化することを特徴とする汚染環境の生物
学的浄化方法。 （２）原生動物の個体数が減少する間隔を置いて間欠的
に注入する上記（１）記載の方法。 （３）２日以上の間隔を置いて間欠的に注入する上記
（１）または（２）記載の方法。
生物学的浄化方法である。 （１）汚染物質浄化能を有する微生物を汚染環境に間欠
的に注入して浄化することを特徴とする汚染環境の生物
学的浄化方法。 （２）原生動物の個体数が減少する間隔を置いて間欠的
に注入する上記（１）記載の方法。 （３）２日以上の間隔を置いて間欠的に注入する上記
（１）または（２）記載の方法。
【００１０】本発明の汚染環境の生物学的浄化方法にお
いては、汚染物質浄化能を有する微生物を間欠的に汚染
環境に注入（添加）し、微生物より汚染物質を分解また
は無害化することにより汚染環境を浄化する。微生物が
汚染環境に初めて注入されると、この注入された微生物
により汚染物質が分解され、汚染環境がある程度浄化さ
れる。しかし、時間が経過するとともに注入された微生
物が原生動物に捕食され、原生動物の個体数が増加する
ので、この状態で微生物の注入を続けても、注入された
微生物の多くは原生動物に捕食されるだけで、汚染物質
の浄化にはほとんど作用しない。このため、環境の浄化
はこれ以上にはほとんど進まない。
いては、汚染物質浄化能を有する微生物を間欠的に汚染
環境に注入（添加）し、微生物より汚染物質を分解また
は無害化することにより汚染環境を浄化する。微生物が
汚染環境に初めて注入されると、この注入された微生物
により汚染物質が分解され、汚染環境がある程度浄化さ
れる。しかし、時間が経過するとともに注入された微生
物が原生動物に捕食され、原生動物の個体数が増加する
ので、この状態で微生物の注入を続けても、注入された
微生物の多くは原生動物に捕食されるだけで、汚染物質
の浄化にはほとんど作用しない。このため、環境の浄化
はこれ以上にはほとんど進まない。
【００１１】そこで本発明の方法では、増加した原生動
物の個体数が減少するまでの間隔を置いて、すなわち一
旦増加した原生動物の個体数が減少した後、好ましくは
微生物を注入する前の個体数程度まで減少した後、再度
微生物を注入する。このように間欠的に微生物を注入す
ると、初めて微生物が注入された場合と同じように微生
物により汚染物質が分解されるので、環境の浄化がさら
に進行する。このような間欠的な注入を繰り返すことに
より、原生動物の捕食による環境浄化の効率の低下を防
止して、汚染物質の浄化を簡単に、効率よく行うことが
できる。
物の個体数が減少するまでの間隔を置いて、すなわち一
旦増加した原生動物の個体数が減少した後、好ましくは
微生物を注入する前の個体数程度まで減少した後、再度
微生物を注入する。このように間欠的に微生物を注入す
ると、初めて微生物が注入された場合と同じように微生
物により汚染物質が分解されるので、環境の浄化がさら
に進行する。このような間欠的な注入を繰り返すことに
より、原生動物の捕食による環境浄化の効率の低下を防
止して、汚染物質の浄化を簡単に、効率よく行うことが
できる。
【００１２】本発明において浄化の対象となる汚染環境
は、テトラクロロエチレン、トリクロロエチレン（ＴＣ
Ｅ）、ｃｉｓ−１，２−ジクロロエチレン、ｔｒａｎｓ
−１，２−ジクロロエチレン、１，１−ジクロロエチレ
ン、ビニルクロリド、塩化メチル、ジクロロメタン、ク
ロロホルム、四塩化炭素、１，１−ジクロロエタン、
１，２−ジクロロエタン、１，１，１−トリクロロエタ
ン、１，１，２−トリクロロエタン、１，３−ジクロロ
プロペン、１，２−ジクロロプロパン、クロロベンゼ
ン、ジクロロベンゼン、ＰＣＢ、ダイオキシン類等の有
機塩素化合物；ベンゼン、エチルベンゼン、トルエン、
キシレン、多環芳香族化合物、重金属などの有害物質に
より汚染された土壌、地下水または排水などの環境であ
る。このような環境には汚染源が河川や湖沼である場合
には、これらの河川や湖沼も含まれる。
は、テトラクロロエチレン、トリクロロエチレン（ＴＣ
Ｅ）、ｃｉｓ−１，２−ジクロロエチレン、ｔｒａｎｓ
−１，２−ジクロロエチレン、１，１−ジクロロエチレ
ン、ビニルクロリド、塩化メチル、ジクロロメタン、ク
ロロホルム、四塩化炭素、１，１−ジクロロエタン、
１，２−ジクロロエタン、１，１，１−トリクロロエタ
ン、１，１，２−トリクロロエタン、１，３−ジクロロ
プロペン、１，２−ジクロロプロパン、クロロベンゼ
ン、ジクロロベンゼン、ＰＣＢ、ダイオキシン類等の有
機塩素化合物；ベンゼン、エチルベンゼン、トルエン、
キシレン、多環芳香族化合物、重金属などの有害物質に
より汚染された土壌、地下水または排水などの環境であ
る。このような環境には汚染源が河川や湖沼である場合
には、これらの河川や湖沼も含まれる。
【００１３】このような汚染環境を浄化するために添加
する微生物は、汚染環境に含まれる汚染有害物質を分解
または無害化して浄化する汚染物質浄化能を有する微生
物である。このような微生物はその後の効果の持続性の
観点から次の２つのタイプに分けることができる。その
一つは、現場にて増殖でき、一度注入すれば処理効果が
継続するタイプのものである。それに対し、他の一つは
現場では増殖できず、添加した微生物が一定の機能を発
揮した後、やがてはその機能を失う使い捨てタイプのも
のである。
する微生物は、汚染環境に含まれる汚染有害物質を分解
または無害化して浄化する汚染物質浄化能を有する微生
物である。このような微生物はその後の効果の持続性の
観点から次の２つのタイプに分けることができる。その
一つは、現場にて増殖でき、一度注入すれば処理効果が
継続するタイプのものである。それに対し、他の一つは
現場では増殖できず、添加した微生物が一定の機能を発
揮した後、やがてはその機能を失う使い捨てタイプのも
のである。
【００１４】本発明で使用する微生物は、上記二つのい
ずれのタイプのものでもよく、自然界から単離された純
粋培養菌、純粋培養菌の数種類を混合した微生物群、対
象汚染物質に対する高い分解活性を示すような条件で集
積された混合微生物、自然界に存在する微生物よりも高
い分解能を示すように遺伝子組換え操作によって改良さ
れた遺伝子組換え体、およびこれらの混合物などが使用
できる。
ずれのタイプのものでもよく、自然界から単離された純
粋培養菌、純粋培養菌の数種類を混合した微生物群、対
象汚染物質に対する高い分解活性を示すような条件で集
積された混合微生物、自然界に存在する微生物よりも高
い分解能を示すように遺伝子組換え操作によって改良さ
れた遺伝子組換え体、およびこれらの混合物などが使用
できる。
【００１５】上記遺伝子組換え体としては、例えばトリ
クロロエチレン（ＴＣＥ）を分解できるように改変され
た遺伝子組換え体であるPseudomonas putida KN1-10A
（環境工学研究論文集、Ｖｏｌ．３３、ｐ１６５−１７
５、１９９６）、Ralstonia sp. KN1-200A（Pseudomona
s putida KN1-200Aが改名されたものであり、Pseudomon
as putida KN1-200Aについては特開平１１−１８７７３
号に詳しく記載されている）、Ralstonia sp. KN1-210A
（Pseudomonas putida KN1-210Aが改名されたものであ
り、Pseudomonas putida KN1-210Aについては特開平１
１−１８７７４号に詳しく記載されている）などがあげ
られる。これらの組換え体は、ＴＣＥを酸化分解できる
酵素フェノールヒドロキシラーゼをコードする遺伝子
が、フェノール誘導なしに発現するように改変された遺
伝子組換え体である。その他にも、塩素化エチレン分解
能を有するEscherichia coli KWI-10（通商産業省工業
技術院生命工学工業技術研究所に、ＦＥＲＭ Ｐ−１３
９６６の微生物受託番号で寄託されており、その菌株的
性質および培養方法等については特開平７−１４３８８
２号に記載されている）などがあげられる。これらの組
換え体はＴＣＥを基質として増殖することはできないた
め、土壌、地下水または排水に添加した菌体は一定量の
ＴＣＥを分解した後、死滅する。
クロロエチレン（ＴＣＥ）を分解できるように改変され
た遺伝子組換え体であるPseudomonas putida KN1-10A
（環境工学研究論文集、Ｖｏｌ．３３、ｐ１６５−１７
５、１９９６）、Ralstonia sp. KN1-200A（Pseudomona
s putida KN1-200Aが改名されたものであり、Pseudomon
as putida KN1-200Aについては特開平１１−１８７７３
号に詳しく記載されている）、Ralstonia sp. KN1-210A
（Pseudomonas putida KN1-210Aが改名されたものであ
り、Pseudomonas putida KN1-210Aについては特開平１
１−１８７７４号に詳しく記載されている）などがあげ
られる。これらの組換え体は、ＴＣＥを酸化分解できる
酵素フェノールヒドロキシラーゼをコードする遺伝子
が、フェノール誘導なしに発現するように改変された遺
伝子組換え体である。その他にも、塩素化エチレン分解
能を有するEscherichia coli KWI-10（通商産業省工業
技術院生命工学工業技術研究所に、ＦＥＲＭ Ｐ−１３
９６６の微生物受託番号で寄託されており、その菌株的
性質および培養方法等については特開平７−１４３８８
２号に記載されている）などがあげられる。これらの組
換え体はＴＣＥを基質として増殖することはできないた
め、土壌、地下水または排水に添加した菌体は一定量の
ＴＣＥを分解した後、死滅する。
【００１６】このような有用な機能を持った特定の微生
物を自然環境に添加する際、それらを捕食し効果を減少
させてしまうのは原生動物であり、その中で特に問題と
なるのはｆｌａｇｅｌｌａｔｅやｃｉｌｉａｔｅなどで
ある。これらは微生物を捕食することによって急速に増
殖していく。このため、第１回目の注入では、微生物に
より浄化の効果が得られるが、時間が経過するとともに
原生動物に捕食されて微生物の菌体数は減少し、一方原
生動物の個体数が増加するので、浄化の効果は小さくな
る。原生動物の個体数が増加した状態で微生物の注入を
継続しても、注入した微生物は原生動物に捕食されるの
で、効果は小さい。しかし、原生動物の個体数が減少し
た後再び微生物を注入すると、第１回目の注入と同様に
効果が得られる。
物を自然環境に添加する際、それらを捕食し効果を減少
させてしまうのは原生動物であり、その中で特に問題と
なるのはｆｌａｇｅｌｌａｔｅやｃｉｌｉａｔｅなどで
ある。これらは微生物を捕食することによって急速に増
殖していく。このため、第１回目の注入では、微生物に
より浄化の効果が得られるが、時間が経過するとともに
原生動物に捕食されて微生物の菌体数は減少し、一方原
生動物の個体数が増加するので、浄化の効果は小さくな
る。原生動物の個体数が増加した状態で微生物の注入を
継続しても、注入した微生物は原生動物に捕食されるの
で、効果は小さい。しかし、原生動物の個体数が減少し
た後再び微生物を注入すると、第１回目の注入と同様に
効果が得られる。
【００１７】注入の方法は微生物を汚染された土壌表面
に散布する方法、注入管から土壌中に注入する方法、地
下水源に注入する方法、排水に添加する方法などがあ
る。浄化の方法はこれらの微生物を注入するだけでよい
場合もあるが、微生物の種類によっては水、酸素、栄養
源等を供給することもできる。
に散布する方法、注入管から土壌中に注入する方法、地
下水源に注入する方法、排水に添加する方法などがあ
る。浄化の方法はこれらの微生物を注入するだけでよい
場合もあるが、微生物の種類によっては水、酸素、栄養
源等を供給することもできる。
【００１８】注入する間隔は、注入する環境により異な
り、一概に限定することはできないが、通常２日以上、
好ましくは３〜７日間の間隔を置いて注入するのが好ま
しい。注入する間隔は、予備試験などにより、原生動物
の減少速度を予め求めておくことにより決定することが
できる。また注入は目的の浄化度が得られるまで、何度
でも繰り返し行うことができる。
り、一概に限定することはできないが、通常２日以上、
好ましくは３〜７日間の間隔を置いて注入するのが好ま
しい。注入する間隔は、予備試験などにより、原生動物
の減少速度を予め求めておくことにより決定することが
できる。また注入は目的の浄化度が得られるまで、何度
でも繰り返し行うことができる。
【００１９】
【発明の効果】本発明によれば、汚染物質浄化能を有す
る微生物を間欠的に汚染環境に注入して浄化するように
したので、低コストかつ簡単な操作で、汚染環境を効率
よく浄化することができる。
る微生物を間欠的に汚染環境に注入して浄化するように
したので、低コストかつ簡単な操作で、汚染環境を効率
よく浄化することができる。
【００２０】
【発明の実施の形態】本発明の方法を図面を用いて説明
する。図１は微生物を汚染地下水に注入して浄化する例
を示す実施例の模式的断面図であり、１は培養槽、２は
微生物、３は注入井、１５は表面土壌、１６は汚染土
壌、１７は汚染地下水路、１８は不透水層である。注入
井３は表面土壌１５からその下端が汚染地下水路１７に
到達するように形成されている。
する。図１は微生物を汚染地下水に注入して浄化する例
を示す実施例の模式的断面図であり、１は培養槽、２は
微生物、３は注入井、１５は表面土壌、１６は汚染土
壌、１７は汚染地下水路、１８は不透水層である。注入
井３は表面土壌１５からその下端が汚染地下水路１７に
到達するように形成されている。
【００２１】図１の方法では、培養槽１に微生物供給路
５から植種用微生物を添加した後、培養する微生物が資
化できる有機物および栄養塩類を栄養素供給路６から添
加し、必要により送気路７から空気または酸素を送気す
るとともに、撹拌機８で撹拌しながら培養する。培養は
微生物２の増殖に最適な温度に制御しながら行うのが好
ましい。このようにして培養した微生物２を含む培養液
を、ポンプ１０により注入井路１１を通して注入井３に
導入し、注入井３の下端から汚染地下水路１７に注入す
る。
５から植種用微生物を添加した後、培養する微生物が資
化できる有機物および栄養塩類を栄養素供給路６から添
加し、必要により送気路７から空気または酸素を送気す
るとともに、撹拌機８で撹拌しながら培養する。培養は
微生物２の増殖に最適な温度に制御しながら行うのが好
ましい。このようにして培養した微生物２を含む培養液
を、ポンプ１０により注入井路１１を通して注入井３に
導入し、注入井３の下端から汚染地下水路１７に注入す
る。
【００２２】このようにして汚染地下水路１７中に注入
された第１回目の微生物２は、地下水の流れ（図１で
は、左から右）に乗って下流に拡散するとともに、汚染
土壌１６中にも入り込む。このようにして汚染地下水路
１７および汚染土壌１６に注入された微生物２の作用に
より汚染環境中の汚染物質が分解される。時間が経過す
るとともに、注入した微生物２を捕食した原生動物の個
体数が増加するので、時間の経過とともに浄化の効果は
低下する。さらに時間が経過すると、捕食する微生物が
なくなり、栄養源がなくなるので原生動物の個体数も自
然に減少する。この時再び前記微生物２を含む培養液を
前記と同様に汚染地下水路１７に注入する。この場合、
第１回目の注入の場合と同様に、微生物２により汚染物
質が分解され、環境がさらに浄化される。このような間
欠的な微生物２の注入を繰り返すことにより、低コスト
で、簡単に、効率よく汚染環境を浄化することができ
る。
された第１回目の微生物２は、地下水の流れ（図１で
は、左から右）に乗って下流に拡散するとともに、汚染
土壌１６中にも入り込む。このようにして汚染地下水路
１７および汚染土壌１６に注入された微生物２の作用に
より汚染環境中の汚染物質が分解される。時間が経過す
るとともに、注入した微生物２を捕食した原生動物の個
体数が増加するので、時間の経過とともに浄化の効果は
低下する。さらに時間が経過すると、捕食する微生物が
なくなり、栄養源がなくなるので原生動物の個体数も自
然に減少する。この時再び前記微生物２を含む培養液を
前記と同様に汚染地下水路１７に注入する。この場合、
第１回目の注入の場合と同様に、微生物２により汚染物
質が分解され、環境がさらに浄化される。このような間
欠的な微生物２の注入を繰り返すことにより、低コスト
で、簡単に、効率よく汚染環境を浄化することができ
る。
【００２３】
【実施例】次に本発明の実施例について説明する。製造
例で使用したプラスミドおよび微生物は次の通りであ
る。
例で使用したプラスミドおよび微生物は次の通りであ
る。
【００２４】《ラルストニア ｓｐ． ＫＷＩ−９（Ra
lstonia sp. KWI-9）》フェノール資化能を有し、トル
エン資化能を有さない塩素化エチレン分解性菌株であ
る。塩素化エチレン分解性はフェノールの共存により著
しく阻害される。ラルストニア ｓｐ． ＫＷＩ−９
は、シュードモナス プチダ ＫＷＩ−９（Pseudomona
s putida KWI-9）が改名されたものであり、シュードモ
ナス プチダＫＷＩ−９菌株は通商産業省工業技術院生
命工学工業技術研究所に、ＦＥＲＭＢＰ−６３５６（微
工研菌寄第Ｐ−１３１０９号より移管）の微生物受託番
号で寄託されており、その菌株的性質および培養方法等
については特開平６−７０７５３号に記載されている。 《E. coli S17-1株》IncP系プラスミドＲＰ４を染色体
上に内在する大腸菌であって、作成方法はBIO/TECHNOLO
GY 1, 784-791(1983)に記載されており、またUS. Depar
tment of Agriculture, Northern Regional Research C
enterに寄託されている（Accession No. B-15483, US.
Patent 4,680,264)。 《pTrc99A》タンパク質の発現ベクターpKK233-2（ファ
ルマシア社の製品コード番号27-4935-01）の誘導体。こ
のプラスミドはファルマシア社から市販されており、製
品コード番号は27-5007-01である。
lstonia sp. KWI-9）》フェノール資化能を有し、トル
エン資化能を有さない塩素化エチレン分解性菌株であ
る。塩素化エチレン分解性はフェノールの共存により著
しく阻害される。ラルストニア ｓｐ． ＫＷＩ−９
は、シュードモナス プチダ ＫＷＩ−９（Pseudomona
s putida KWI-9）が改名されたものであり、シュードモ
ナス プチダＫＷＩ−９菌株は通商産業省工業技術院生
命工学工業技術研究所に、ＦＥＲＭＢＰ−６３５６（微
工研菌寄第Ｐ−１３１０９号より移管）の微生物受託番
号で寄託されており、その菌株的性質および培養方法等
については特開平６−７０７５３号に記載されている。 《E. coli S17-1株》IncP系プラスミドＲＰ４を染色体
上に内在する大腸菌であって、作成方法はBIO/TECHNOLO
GY 1, 784-791(1983)に記載されており、またUS. Depar
tment of Agriculture, Northern Regional Research C
enterに寄託されている（Accession No. B-15483, US.
Patent 4,680,264)。 《pTrc99A》タンパク質の発現ベクターpKK233-2（ファ
ルマシア社の製品コード番号27-4935-01）の誘導体。こ
のプラスミドはファルマシア社から市販されており、製
品コード番号は27-5007-01である。
【００２５】製造例１ 《１．Ralstonia sp. KN1-200Aの作製》Ralstonia sp.
KWI-9の染色体上にコードされている塩素化エチレン分
解能を有するフェノールヒドロキシラーゼ遺伝子群を、
図２に示す。塩素化エチレン分解のための必須遺伝子
は、pheAからpheEまでの５つの遺伝子群（塩素化エチレ
ン分解遺伝子群）である。またpheA上流のpheZは塩素化
エチレン分解促進遺伝子である。pheZの上流に、下記方
法によりtacプロモーターを導入した。そしてRalstonia
sp. KN1-200Aを、以下に示すように相同的組換えによ
って作製した（図２参照）。
KWI-9の染色体上にコードされている塩素化エチレン分
解能を有するフェノールヒドロキシラーゼ遺伝子群を、
図２に示す。塩素化エチレン分解のための必須遺伝子
は、pheAからpheEまでの５つの遺伝子群（塩素化エチレ
ン分解遺伝子群）である。またpheA上流のpheZは塩素化
エチレン分解促進遺伝子である。pheZの上流に、下記方
法によりtacプロモーターを導入した。そしてRalstonia
sp. KN1-200Aを、以下に示すように相同的組換えによ
って作製した（図２参照）。
【００２６】１）相同的組換えに必要なpheZ上流の相同
部分の取得pheZ 上流の１．１ｋｂをＰＣＲで合成するために、以下
のプライマーペアを用い、Ralstonia sp. KWI-9の染色
体をテンプレートとした。 Upper Primer: 5'-GGG GAA TTC GGG GGA GGG GGT AAG GGG GTG GTG-3' Lower Primer: 5'-GGG CCC GGG AAG AGC GTG CCA GCT GGC GCA AAC-3' (Upper PrimerのアンダーラインはEcoRIサイト、Lower Primerのアンダーライン はSmaIサイトを示す。)
部分の取得pheZ 上流の１．１ｋｂをＰＣＲで合成するために、以下
のプライマーペアを用い、Ralstonia sp. KWI-9の染色
体をテンプレートとした。 Upper Primer: 5'-GGG GAA TTC GGG GGA GGG GGT AAG GGG GTG GTG-3' Lower Primer: 5'-GGG CCC GGG AAG AGC GTG CCA GCT GGC GCA AAC-3' (Upper PrimerのアンダーラインはEcoRIサイト、Lower Primerのアンダーライン はSmaIサイトを示す。)
【００２７】２）ＰＣＲ合成された相同部分の１．１ｋ
ｂの EcoRI-SmaI 断片のpKNA82（図３参照）への挿入 ＰＣＲ合成された相同部分の１．１ｋｂの EcoRI-SmaI
断片（図２においてＦ１で示されている断片）は、左右
にPacIサイトを有するプラスミドベクターpKNA82のEcoR
I-SmaIの部分に挿入した。
ｂの EcoRI-SmaI 断片のpKNA82（図３参照）への挿入 ＰＣＲ合成された相同部分の１．１ｋｂの EcoRI-SmaI
断片（図２においてＦ１で示されている断片）は、左右
にPacIサイトを有するプラスミドベクターpKNA82のEcoR
I-SmaIの部分に挿入した。
【００２８】３）相同的組換えに必要なpheZおよびpheA
の一部分を有する相同部分の取得pheZ およびpheAをＰＣＲ合成により取得するため、以下
のプライマーペアーを用いて、Ralstonia sp. KWI-9の
染色体をテンプレートとした。 Upper Primer: 5'-GGG GGA TCC CGC AAT AGA GGC CAT ACC GCC CA-3' Lower Primer: 5'-CGC GGA TCC GGC GGT TTC CTC AGG CGG CAA GGC-3' (Upper PrimerおよびLower PrimerのアンダーラインはBamHIサイトを示す。)
の一部分を有する相同部分の取得pheZ およびpheAをＰＣＲ合成により取得するため、以下
のプライマーペアーを用いて、Ralstonia sp. KWI-9の
染色体をテンプレートとした。 Upper Primer: 5'-GGG GGA TCC CGC AAT AGA GGC CAT ACC GCC CA-3' Lower Primer: 5'-CGC GGA TCC GGC GGT TTC CTC AGG CGG CAA GGC-3' (Upper PrimerおよびLower PrimerのアンダーラインはBamHIサイトを示す。)
【００２９】合成されたDNA断片は、BamHIとSalIで消化
し、pheZの開始点からpheA中のSalIサイトまでの１ｋｂ
の BamHI-SalI 断片（図２においてＦ２で示されている
断片）をもう一つの相同部分とした。
し、pheZの開始点からpheA中のSalIサイトまでの１ｋｂ
の BamHI-SalI 断片（図２においてＦ２で示されている
断片）をもう一つの相同部分とした。
【００３０】４）ＰＣＲ合成された相同部分の１ｋｂの
BamHI-SalI 断片のpKNA82への挿入 ＰＣＲ合成された相同部分の１ｋｂの BamHI-SalI 断片
（Ｆ２）は、前記２）ですでに挿入されたEcoRI-SmaI
断片（Ｆ１）に続いてpKNA82の BamHI-SalIに挿入し
た。
BamHI-SalI 断片のpKNA82への挿入 ＰＣＲ合成された相同部分の１ｋｂの BamHI-SalI 断片
（Ｆ２）は、前記２）ですでに挿入されたEcoRI-SmaI
断片（Ｆ１）に続いてpKNA82の BamHI-SalIに挿入し
た。
【００３１】５）相同な断片に挟まれたSmaI-BamHIサイ
トへのtacプロモーターの挿入 Ｆ１およびＦ２の２個の断片が挿入されたpKNA82におい
て、まず左側（Ｆ１）の相同部分の右端のSmaIサイトに
HindIIIリンカー（d(pCAAGCTTG)）を挿入した。次に、
このプラスミドをHindIIIおよびBamHIで切断し、この部
分に以下のtacプロモーター（二本鎖ＤＮＡ、表示は一
本鎖ＤＮＡ）をHindIIIおよびBamHIで切断後挿入した。 5'-AAG CTT ACT CCC CAT CCC CCT GTT GAC AAT TAA TCA TCG GCT CGT ATA ATG TGT GGA ATT GTG AGC GGA TAA CAA TTT CAC ACA GGA AAC AGG ATC C-3' （アンダーライン部はHindIIIおよびBamHIサイトを示す。）
トへのtacプロモーターの挿入 Ｆ１およびＦ２の２個の断片が挿入されたpKNA82におい
て、まず左側（Ｆ１）の相同部分の右端のSmaIサイトに
HindIIIリンカー（d(pCAAGCTTG)）を挿入した。次に、
このプラスミドをHindIIIおよびBamHIで切断し、この部
分に以下のtacプロモーター（二本鎖ＤＮＡ、表示は一
本鎖ＤＮＡ）をHindIIIおよびBamHIで切断後挿入した。 5'-AAG CTT ACT CCC CAT CCC CCT GTT GAC AAT TAA TCA TCG GCT CGT ATA ATG TGT GGA ATT GTG AGC GGA TAA CAA TTT CAC ACA GGA AAC AGG ATC C-3' （アンダーライン部はHindIIIおよびBamHIサイトを示す。）
【００３２】６）tacプロモーターを含む相同部分のpMO
K180への挿入tac プロモーターを含む相同部分は、PacIで切り出し、
図２に示すpMOK180のPacIサイトに挿入した。作製され
たプラスミドは、E. coli S17-1株に導入した後、下記
のようにしてRalstonia sp. KWI-9と接合し、相同的組
換えによってtacプロモーターが染色体上のpheZ上流に
組み込まれた組換え体Ralstonia sp. KN1-200Aを選出し
た。
K180への挿入tac プロモーターを含む相同部分は、PacIで切り出し、
図２に示すpMOK180のPacIサイトに挿入した。作製され
たプラスミドは、E. coli S17-1株に導入した後、下記
のようにしてRalstonia sp. KWI-9と接合し、相同的組
換えによってtacプロモーターが染色体上のpheZ上流に
組み込まれた組換え体Ralstonia sp. KN1-200Aを選出し
た。
【００３３】７）染色体上への挿入 相同的組換えを行う際には、供与菌のE. coli S17-1に
上記６）のtacプロモーターを含むpMOK180プラスミドを
導入後、ＬＢ液体培地（トリプトン１０ｇ、酵母エキス
５ｇおよびＮａＣｌ ５ｇを蒸留水１ literに溶解）
で、３７℃で一晩培養し、同時に受容菌であるRalstoni
a sp. KWI-9株を３０℃で、ＬＢ培地で一晩培養し、各
々の培養液０．５ｍＬから菌体を遠心分離で集菌した。
これらの菌体は、生理食塩水（０．８％ＮａＣｌ）１ｍ
Ｌで懸濁、混合した上で、再び遠心分離で集菌、上澄み
を捨て、生理食塩水１ｍＬで洗浄した。この洗浄操作を
再び繰り返し、沈殿させた後、混合菌体は５０μＬの生
理食塩水に懸濁させ、ＬＢ培地上の直径２５ｍｍ、孔径
０．２２μｍの滅菌ミリポアフィルター上に滴下させ、
３０℃で１０時間接合させた。その後、フィルター上の
菌体を１ｍＬの生理食塩水に懸濁させ、希釈液を無機塩
類、フルクトース２０ｍＭおよびカナマイシン１００μ
ｇ／ｍＬを含む寒天培地に塗布し、３０℃で３〜４日間
培養し、前記プラスミドすべてが染色体に挿入された菌
株を選出した。
上記６）のtacプロモーターを含むpMOK180プラスミドを
導入後、ＬＢ液体培地（トリプトン１０ｇ、酵母エキス
５ｇおよびＮａＣｌ ５ｇを蒸留水１ literに溶解）
で、３７℃で一晩培養し、同時に受容菌であるRalstoni
a sp. KWI-9株を３０℃で、ＬＢ培地で一晩培養し、各
々の培養液０．５ｍＬから菌体を遠心分離で集菌した。
これらの菌体は、生理食塩水（０．８％ＮａＣｌ）１ｍ
Ｌで懸濁、混合した上で、再び遠心分離で集菌、上澄み
を捨て、生理食塩水１ｍＬで洗浄した。この洗浄操作を
再び繰り返し、沈殿させた後、混合菌体は５０μＬの生
理食塩水に懸濁させ、ＬＢ培地上の直径２５ｍｍ、孔径
０．２２μｍの滅菌ミリポアフィルター上に滴下させ、
３０℃で１０時間接合させた。その後、フィルター上の
菌体を１ｍＬの生理食塩水に懸濁させ、希釈液を無機塩
類、フルクトース２０ｍＭおよびカナマイシン１００μ
ｇ／ｍＬを含む寒天培地に塗布し、３０℃で３〜４日間
培養し、前記プラスミドすべてが染色体に挿入された菌
株を選出した。
【００３４】８）Ralstonia sp. KN1-200Aの選出 上記７）で作製された菌株をＬＢ液体培地で一晩培養
後、希釈液を２０μｇ／ｍＬのＸガル（すなわち５−ブ
ロモ−４−クロロ−３−インドイル−β−Ｄ−ガラクト
シド）を含むＬＢ寒天培地に塗布し、青いコロニーに混
じって観察された白いコロニーをpMOK180が抜け落ちた
菌株として選出した。この中から、０．１Ｍのカテコー
ルをスプレーすることによって黄変する菌株（tacプロ
モーターの働きによってカテコール−２，３−オキシゲ
ナーゼをコードするpheFが発現するため）を、tacプロ
モーターがpheZ上流に挿入されたRalstonia sp. KN1-20
0Aとして選出した。
後、希釈液を２０μｇ／ｍＬのＸガル（すなわち５−ブ
ロモ−４−クロロ−３−インドイル−β−Ｄ−ガラクト
シド）を含むＬＢ寒天培地に塗布し、青いコロニーに混
じって観察された白いコロニーをpMOK180が抜け落ちた
菌株として選出した。この中から、０．１Ｍのカテコー
ルをスプレーすることによって黄変する菌株（tacプロ
モーターの働きによってカテコール−２，３−オキシゲ
ナーゼをコードするpheFが発現するため）を、tacプロ
モーターがpheZ上流に挿入されたRalstonia sp. KN1-20
0Aとして選出した。
【００３５】９）pKNA82の作製（図３参照） ファルマシア製のpTrc99AのlacIqおよびtrcプロモータ
ー部分を、EcoT22IおよびNcoIで切断、削除し、得られ
た断片をＴ４ポリメラーゼで両端を平滑化した後、PacI
リンカー(d(pTTAATTAA))を挿入した。上記プラスミドの
マルチクローニングサイト内のHindIIIサイトをHindIII
で切断、Ｔ４ポリメラーゼで平滑化処理し、ここにもう
一つのPacIリンカー(d(pGTTAATTAAC))を挿入した。この
プラスミドをpKNA82とした。
ー部分を、EcoT22IおよびNcoIで切断、削除し、得られ
た断片をＴ４ポリメラーゼで両端を平滑化した後、PacI
リンカー(d(pTTAATTAA))を挿入した。上記プラスミドの
マルチクローニングサイト内のHindIIIサイトをHindIII
で切断、Ｔ４ポリメラーゼで平滑化処理し、ここにもう
一つのPacIリンカー(d(pGTTAATTAAC))を挿入した。この
プラスミドをpKNA82とした。
【００３６】１０）pMOK180の作製 pMOK180は、環境工学研究論文集 Vol. 33, pp165-175
(1996)に記載された方法により作製した。pMOK180はpBR
322由来のori遺伝子を使用し、可動化に必要な遺伝子は
pKT240のmobA、mobB、oriTを使用した。またマーカーと
しては、pCH110由来のgptプロモーターおよびlacZを含
む断片を利用した。
(1996)に記載された方法により作製した。pMOK180はpBR
322由来のori遺伝子を使用し、可動化に必要な遺伝子は
pKT240のmobA、mobB、oriTを使用した。またマーカーと
しては、pCH110由来のgptプロモーターおよびlacZを含
む断片を利用した。
【００３７】実施例１、比較例１ 図４は実施例において用いた浄化装置の試験装置を示す
フロー図である。図４において、２１は処理槽（内径４
０ｍｍ、高さ７５０ｍｍ、有効容積９４２ｍＬ）であ
り、内部に平均粒径０．３５ｍｍ、比重２．６ｇ／ｃｍ
3、空隙率０．４２の土壌２２が充填されている。処理
槽２１の下部には原水路２３およびこれに合流する菌体
注入路２４が連絡し、上部に処理水路２５が連絡してい
る。この装置を、下記浄化試験に使用した。
フロー図である。図４において、２１は処理槽（内径４
０ｍｍ、高さ７５０ｍｍ、有効容積９４２ｍＬ）であ
り、内部に平均粒径０．３５ｍｍ、比重２．６ｇ／ｃｍ
3、空隙率０．４２の土壌２２が充填されている。処理
槽２１の下部には原水路２３およびこれに合流する菌体
注入路２４が連絡し、上部に処理水路２５が連絡してい
る。この装置を、下記浄化試験に使用した。
【００３８】汚染物質をトリクロロエチレン（ＴＣＥ）
とし、前述の製造例１で得た遺伝子組換え体Ralstonia
sp. KN1-200A株を用いて以下の浄化試験を行った。
とし、前述の製造例１で得た遺伝子組換え体Ralstonia
sp. KN1-200A株を用いて以下の浄化試験を行った。
【００３９】１）菌体懸濁液の調製 ＬＢ培地で培養したRalstonia sp. KN1-200A株をリン酸
緩衝液（５ｍＭ ＰＯ 4、ｐＨ７．０）で遠心洗浄した
後、再び新鮮なリン酸緩衝液に懸濁させた。これを菌体
懸濁液（菌体濃度＝３２００ｍｇ／Ｌ）とした。
緩衝液（５ｍＭ ＰＯ 4、ｐＨ７．０）で遠心洗浄した
後、再び新鮮なリン酸緩衝液に懸濁させた。これを菌体
懸濁液（菌体濃度＝３２００ｍｇ／Ｌ）とした。
【００４０】２）Ralstonia sp. KN1-200Aの生菌数測定 テロラサイクリンを１０μｇ／ｍＬの濃度で含むＲ２Ａ
寒天培地に、数段階希釈したサンプル液を塗布し、３０
℃で培養した。１週間後、生育したコロニーをカウント
することによって、Ralstonia sp. KN1-200A株の生菌数
を求めた。なお、他の微生物が共存する系では、コロニ
ーの形態からRalstonia sp. KN1-200A株のコロニーと他
の微生物のコロニーとを区別し、測定した。
寒天培地に、数段階希釈したサンプル液を塗布し、３０
℃で培養した。１週間後、生育したコロニーをカウント
することによって、Ralstonia sp. KN1-200A株の生菌数
を求めた。なお、他の微生物が共存する系では、コロニ
ーの形態からRalstonia sp. KN1-200A株のコロニーと他
の微生物のコロニーとを区別し、測定した。
【００４１】３）原生動物の個体数の定量 サンプル液に１／１０容量の１０％グルタルアルデヒド
水溶液を添加し、固定化のため１０分間反応させた。次
に、ＤＡＰＩ（４’，６’−ジアミジノ−２−フェニル
インドール（4',6'-diamidino-2-phenylindole））溶液
（３００μｇ／ｍＬ）を１／１０００容量添加し、さら
に１０分間反応させた。この液を孔径０．８μｍのポリ
カーボネートフィルター（ニュークリポア社製）でろ過
し、原生動物を捕捉した。このフィルターを蛍光顕微鏡
で観察し、ＤＡＰＩに染まった原生動物の個数をカウン
トした。ここでは、大きさが３〜１０μｍのものだけを
原生動物として測定した。
水溶液を添加し、固定化のため１０分間反応させた。次
に、ＤＡＰＩ（４’，６’−ジアミジノ−２−フェニル
インドール（4',6'-diamidino-2-phenylindole））溶液
（３００μｇ／ｍＬ）を１／１０００容量添加し、さら
に１０分間反応させた。この液を孔径０．８μｍのポリ
カーボネートフィルター（ニュークリポア社製）でろ過
し、原生動物を捕捉した。このフィルターを蛍光顕微鏡
で観察し、ＤＡＰＩに染まった原生動物の個数をカウン
トした。ここでは、大きさが３〜１０μｍのものだけを
原生動物として測定した。
【００４２】４）原生動物共存水道水中でのRalstonia
sp. KN1-200Aの生存数 脱塩素水道水（活性炭に通水することによって残留塩素
を除去した水道水）約１００ｍＬを加えた容量１５７ｍ
Ｌのガラスバイアルビンに前記１）で得た菌体懸濁液
を、最終の液中濃度が２．５ｍｇ／Ｌとなるように添加
した。これに、原生動物が存在する活性汚泥を１０μＬ
添加した。テフロンコートブチルゴムセプタムで栓を
し、アルミシールで密閉した。このバイアルを２０℃の
室内で静置し、定期的にバイアル中の液をセプタムを通
してサンプリングし、Ralstonia sp.KN1-200Aの菌体数
および原生動物の個体数を測定した。結果を図５に示
す。
sp. KN1-200Aの生存数 脱塩素水道水（活性炭に通水することによって残留塩素
を除去した水道水）約１００ｍＬを加えた容量１５７ｍ
Ｌのガラスバイアルビンに前記１）で得た菌体懸濁液
を、最終の液中濃度が２．５ｍｇ／Ｌとなるように添加
した。これに、原生動物が存在する活性汚泥を１０μＬ
添加した。テフロンコートブチルゴムセプタムで栓を
し、アルミシールで密閉した。このバイアルを２０℃の
室内で静置し、定期的にバイアル中の液をセプタムを通
してサンプリングし、Ralstonia sp.KN1-200Aの菌体数
および原生動物の個体数を測定した。結果を図５に示
す。
【００４３】５）土カラム中でのＴＣＥ分解実験 図４の試験装置に川砂（粒径０．３５ｍｍ）を充填した
後、ＴＣＥを約５００μｇ／Ｌの濃度で含んだ脱塩素水
道水（原水）を４０ｍＬ／ｄ、ＨＲＴ＝１０日の条件で
通水した。約３０日間、予備通水を行った後、脱塩素水
道水の流量を３６ｍＬ／ｄに低下させ、２５ｍｇ／Ｌの
菌体懸濁液を菌体注入路２４から４ｍＬ／ｄで連続的に
注入した（比較例１）。またこれと並行して、脱塩素水
道水の流量を４０ｍＬ／ｄに設定した別のカラムに菌体
懸濁液（２５０ｍｇ／Ｌ）１．２ｍＬを３日に一度、菌
体注入路２４から間欠的に注入した（実施例１）。処理
槽２１としてのカラムは３本同じものを用意し、カラム
Ａには連続的に供給し（比較例１）、カラムＢには３日
ごとに間欠的に注入し（実施例１）、カラムＣはコント
ロールとして菌体を添加しなかった。結果を図６に示
す。
後、ＴＣＥを約５００μｇ／Ｌの濃度で含んだ脱塩素水
道水（原水）を４０ｍＬ／ｄ、ＨＲＴ＝１０日の条件で
通水した。約３０日間、予備通水を行った後、脱塩素水
道水の流量を３６ｍＬ／ｄに低下させ、２５ｍｇ／Ｌの
菌体懸濁液を菌体注入路２４から４ｍＬ／ｄで連続的に
注入した（比較例１）。またこれと並行して、脱塩素水
道水の流量を４０ｍＬ／ｄに設定した別のカラムに菌体
懸濁液（２５０ｍｇ／Ｌ）１．２ｍＬを３日に一度、菌
体注入路２４から間欠的に注入した（実施例１）。処理
槽２１としてのカラムは３本同じものを用意し、カラム
Ａには連続的に供給し（比較例１）、カラムＢには３日
ごとに間欠的に注入し（実施例１）、カラムＣはコント
ロールとして菌体を添加しなかった。結果を図６に示
す。
【００４４】６）結果 原生動物共存水道水中でのRalstonia sp. KN1-200Aの
生存数 図５の結果からわかるように、Ralstonia sp. KN1-200A
の生菌数は０〜２４時間の間に約１００分の１まで低下
した。また液中の原生動物の個体数は菌数の急激な低下
が見られた期間に急激に増加しており、これらの原生動
物がRalstoniasp. KN1-200Aを捕食することによって増
殖したことが確認された。増殖した原生動物は２４〜４
８時間で急激に低下した。
生存数 図５の結果からわかるように、Ralstonia sp. KN1-200A
の生菌数は０〜２４時間の間に約１００分の１まで低下
した。また液中の原生動物の個体数は菌数の急激な低下
が見られた期間に急激に増加しており、これらの原生動
物がRalstoniasp. KN1-200Aを捕食することによって増
殖したことが確認された。増殖した原生動物は２４〜４
８時間で急激に低下した。
【００４５】土カラム中でのＴＣＥ分解実験 図６の結果からわかるように、菌体懸濁液を連続的に注
入した比較例の場合は、ほとんどＴＣＥは分解されなか
った。これに対して、回分実験の結果（微生物注入によ
って増殖した原生動物が３日後には低下した）を基に３
日に一度の割合で菌体懸濁液を間欠的に注入した実施例
の場合は、５００μｇ／ＬのＴＣＥを約２５０μｇ／Ｌ
分解することができ、この能力は３か月間以上安定して
いた。このように、間欠的注入は土壌が存在する系でも
効果があることが確認された。
入した比較例の場合は、ほとんどＴＣＥは分解されなか
った。これに対して、回分実験の結果（微生物注入によ
って増殖した原生動物が３日後には低下した）を基に３
日に一度の割合で菌体懸濁液を間欠的に注入した実施例
の場合は、５００μｇ／ＬのＴＣＥを約２５０μｇ／Ｌ
分解することができ、この能力は３か月間以上安定して
いた。このように、間欠的注入は土壌が存在する系でも
効果があることが確認された。
【００４６】
【配列表】 配列番号：1 配列の長さ：33 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成プライマーDNA 配列の特徴 存在位置：4..9 他の情報：EcoRIサイト 特徴を決定した方法：S 配列 GGGGAATTCG GGGGAGGGGG TAAGGGGGTG GTG 33
【００４７】 配列番号：2 配列の長さ：33 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成プライマーDNA 配列の特徴 存在位置：4..9 他の情報：SmaIサイト 特徴を決定した方法：S 配列 GGGCCCGGGA AGAGCGTGCC AGCTGGCGCA AAC 33
【００４８】 配列番号：3 配列の長さ：32 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成プライマーDNA 配列の特徴 存在位置：4..9 他の情報：BamHIサイト 特徴を決定した方法：S 配列 GGGGGATCCC GCAATAGAGG CCATACCGCC CA 32
【００４９】 配列番号：4 配列の長さ：33 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成プライマーDNA 配列の特徴 存在位置：4..9 他の情報：BamHIサイト 特徴を決定した方法：S 配列 CGCGGATCCG GCGGTTTCCT CAGGCGGCAA GGC 33
【００５０】 配列番号：5 配列の長さ：97 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成プロモーターDNA 配列の特徴 存在位置：1..6 他の情報：HindIIIサイト 特徴を決定した方法：S 特徴を表す記号：promoter 存在位置：7..91 特徴を決定した方法：S 存在位置：92..97 他の情報：BamHIサイト 特徴を決定した方法：S 配列 AAGCTTACTC CCCATCCCCC TGTTGACAAT TAATCATCGG CTCGTATAAT GTGTGGAATT 60 GTGAGCGGAT AACAATTTCA CACAGGAAAC AGGATCC 97
【図１】微生物を汚染地下水に注入して浄化する例を示
す実施例の模式的断面図である。
す実施例の模式的断面図である。
【図２】フェノールヒドロキシラーゼ遺伝子群（pheR〜
pheG）およびtacプロモーター挿入に必要な相同部分のp
KNA82への挿入過程を示す概略図である。
pheG）およびtacプロモーター挿入に必要な相同部分のp
KNA82への挿入過程を示す概略図である。
【図３】プラスミドpKNA82の制限酵素切断位置を示す概
略図である。
略図である。
【図４】実施例で用いた浄化装置の試験装置を示すフロ
ー図である。
ー図である。
【図５】実施例１および比較例１の結果を示すグラフで
ある。
ある。
【図６】実施例１および比較例１の結果を示すグラフで
ある。
ある。
１ 培養槽 ２ 微生物 ３ 注入井 ５ 微生物供給路 ６ 栄養素供給路 ７ 送気路 ８ 撹拌機 １０ ポンプ １１ 注入井路 １５ 表面土壌 １６ 汚染土壌 １７ 汚染地下水路 １８ 不透水層 ２１ 処理槽 ２２ 土壌 ２３ 原水路 ２４ 菌体注入路 ２５ 処理水路pheA 、pheB、pheC、pheD、pheE 塩素化エチレン分解遺
伝子pheZ 塩素化エチレン分解促進遺伝子pheF 機能不明な遺伝子pheG カテコール−２，３−オキシゲナーゼ遺伝子pheR フェノールによって誘導される調節遺伝子tac tacプロモーター Amp アンピシリン耐性遺伝子 Km カナマイシン耐性遺伝子lacZ β−ガラクトシダーゼ遺伝子
伝子pheZ 塩素化エチレン分解促進遺伝子pheF 機能不明な遺伝子pheG カテコール−２，３−オキシゲナーゼ遺伝子pheR フェノールによって誘導される調節遺伝子tac tacプロモーター Amp アンピシリン耐性遺伝子 Km カナマイシン耐性遺伝子lacZ β−ガラクトシダーゼ遺伝子
─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成１１年５月２０日（１９９９．５．２
０）
０）
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４０
【補正方法】変更
【補正内容】
【００４０】２）Ralstonia sp. KN1-200Aの生菌数測定 テトラサイクリンを１０μｇ／ｍＬの濃度で含むＲ２Ａ
寒天培地に、数段階希釈したサンプル液を塗布し、３０
℃で培養した。１週間後、生育したコロニーをカウント
することによって、Ralstonia sp. KN1-200A株の生菌数
を求めた。なお、他の微生物が共存する系では、コロニ
ーの形態からRalstonia sp. KN1-200A株のコロニーと他
の微生物のコロニーとを区別し、測定した。
寒天培地に、数段階希釈したサンプル液を塗布し、３０
℃で培養した。１週間後、生育したコロニーをカウント
することによって、Ralstonia sp. KN1-200A株の生菌数
を求めた。なお、他の微生物が共存する系では、コロニ
ーの形態からRalstonia sp. KN1-200A株のコロニーと他
の微生物のコロニーとを区別し、測定した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） // Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡ Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｒ 1:01） (Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡ Ｃ１２Ｒ 1:01） Ｆターム(参考） 4B024 AA17 BA08 CA03 CA04 DA05 EA04 FA02 FA04 FA10 GA11 HA01 4B065 AA01X AC20 CA56 4D004 AA41 AB06 AB07 CA18 CC07 4D027 CA03 CA07 4D040 DD01 DD11
Claims (3)
- 【請求項１】 汚染物質浄化能を有する微生物を汚染環
境に間欠的に注入して浄化することを特徴とする汚染環
境の生物学的浄化方法。 - 【請求項２】 原生動物の個体数が減少する間隔を置い
て間欠的に注入する請求項１記載の方法。 - 【請求項３】 ２日以上の間隔を置いて間欠的に注入す
る請求項１または２記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11114076A JP2000301178A (ja) | 1999-04-21 | 1999-04-21 | 汚染環境の生物学的浄化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11114076A JP2000301178A (ja) | 1999-04-21 | 1999-04-21 | 汚染環境の生物学的浄化方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2000301178A true JP2000301178A (ja) | 2000-10-31 |
Family
ID=14628459
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP11114076A Pending JP2000301178A (ja) | 1999-04-21 | 1999-04-21 | 汚染環境の生物学的浄化方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2000301178A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104671437A (zh) * | 2015-03-03 | 2015-06-03 | 南华大学 | 一种利用黑曲霉分解磷矿粉修复u(vi)污染水体的方法 |
| CN118702360A (zh) * | 2024-08-08 | 2024-09-27 | 核工业北京化工冶金研究院 | 一种酸性采铀地下水的原位抽注微生物修复方法 |
-
1999
- 1999-04-21 JP JP11114076A patent/JP2000301178A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104671437A (zh) * | 2015-03-03 | 2015-06-03 | 南华大学 | 一种利用黑曲霉分解磷矿粉修复u(vi)污染水体的方法 |
| CN118702360A (zh) * | 2024-08-08 | 2024-09-27 | 核工业北京化工冶金研究院 | 一种酸性采铀地下水的原位抽注微生物修复方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Trevors et al. | Gene transfer among bacteria in soil and aquatic environments: a review | |
| Tay et al. | Presence of anaerobic Bacteroides in aerobically grown microbial granules | |
| Boon et al. | Bioaugmentation of activated sludge by an indigenous 3-chloroaniline-degrading Comamonas testosteroni strain, I2 gfp | |
| Smith et al. | Small-scale, hydrogen-oxidizing-denitrifying bioreactor for treatment of nitrate-contaminated drinking water | |
| McCLURE et al. | Survival and catabolic activity of natural and genetically engineered bacteria in a laboratory-scale activated-sludge unit | |
| Hendrickx et al. | Natural genetic transformation in monoculture Acinetobacter sp. strain BD413 biofilms | |
| Fujitani et al. | Isolation of sublineage I N itrospira by a novel cultivation strategy | |
| Louati et al. | The roles of biological interactions and pollutant contamination in shaping microbial benthic community structure | |
| Mancini et al. | Mobilization of plasmid pHSV106 from Escherichia coli HB101 in a laboratory-scale waste treatment facility | |
| Devers et al. | Horizontal gene transfer of atrazine‐degrading genes (atz) from Agrobacterium tumefaciens St96‐4 pADP1:: Tn5 to bacteria of maize‐cultivated soil | |
| EP0251320B1 (en) | Microorganisms for degrading toxic waste materials | |
| Jiao et al. | Bioaugmentation of a biological contact oxidation ditch with indigenous nitrifying bacteria for in situ remediation of nitrogen-rich stream water | |
| Bathe et al. | Plasmid‐mediated bioaugmentation of activated sludge bacteria in a sequencing batch moving bed reactor using pNB2 | |
| CN102220264A (zh) | 一株兼性厌氧反硝化细菌及其在水体生物脱氮中的应用 | |
| Shelly et al. | A new acinetobacter isolate is an extremely efficient biofilm-formative denitrifying bacterium | |
| Wang et al. | Isolation and characterization of a nitrobenzene-degrading bacterium Klebsiella ornithinolytica NB1 from aerobic granular sludge | |
| US6863815B1 (en) | Small-scale hydrogen-oxidizing-denitrifying bioreactor | |
| Shinohara et al. | Partial nitritation treatment of underground brine waste with high ammonium and salt content | |
| Zhang et al. | Evaluation of long term stability of seeded bacteria in a bio-enhanced activated carbon filter used for treating drinking water | |
| JP2000317436A (ja) | 汚染環境の生物学的浄化方法 | |
| McClure et al. | Gene transfer in activated sludge | |
| Bastos et al. | Introduction of green fluorescent protein gene into phenol-degrading Alcaligenes faecalis cells and their monitoring in phenol-contaminated soil | |
| JP2000301193A (ja) | 汚染環境の生物学的浄化方法 | |
| JP2000301178A (ja) | 汚染環境の生物学的浄化方法 | |
| Hohnstock et al. | Naphthalene and donor cell density influence field conjugation of naphthalene catabolism plasmids |