JP2000503204A - Ｗｓｘレセプター及びリガンド類 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 WSXレセプターとそれに結合する抗体(作用剤及び中性化抗体を含む)が開示され、それには様々なそれらの使用が含まれる。造血におけるWSXリガンド(例えば抗WSXレセプター作用剤抗体またはOBタンパク質)に対する使用もまた開示される。

Description

【発明の詳細な説明】 ＷＳＸレセプター及びリガンド類 相互参照 本願は、同時継続中である１９９６年６月２０日出願の合衆国出願番号08/667 ,197号の一部継続出願であり、同合衆国出願は、同時継続中である１９９６年１ 月８日出願の合衆国出願番号08/585,005号の一部継続出願であり、これらの出願 はここに参考として取り入れられ、またこれらの出願の優先権が35 USC § 120 の基に請求される。 発明の背景 発明の分野 本発明は、一般にＷＳＸレセプター及びリガンド類並びにこれらの分子の使用 に関するものである。 関連技術の記述 Ａ．造血 骨髄中にある細胞の分裂によって赤血球及び白血球細胞が置き換えられる血液 細胞形成工程は、造血と称されている。造血のレビューのためには、Dexter及び Sponcerの(Ann．Rev．Cell Biol．3:423-441(1987))参照。 異なる細胞系統に属する血液細胞の多くの異なった型が存在する。各系統に従 って、異なった成熟段階の細胞が存在する。成熟血液細胞は、異なる機能に特化 される。例えば、赤血球はO₂及びＣＯ₂運搬に関与し；Ｔ及びＢリンパ細胞は、 それぞれ細胞及び抗体媒介免疫応答に関与し；血小板は、血液凝固に必要とされ ；並びに顆粒球細胞及びマクロファージは、一般的清掃及び補助的細胞として機 能する。顆粒球は、更に好塩基球、好酸球、好中球及びマスト細胞に分化しうる 。 種々の血液細胞型のそれぞれは、自己回復を経ることが出来るか、あるいはよ り制限された細胞型の系統を生じる先駆細胞またはコロニー形成単位（ＣＦＵ） の生成を与えることが出来る多能性または全能幹細胞から生じる。幹細胞は、そ れらの自己回復能力を次第に失うため、それらは徐々に系統制限的になる。幹細 胞が多機能性細胞（Dexter及びSpooncerによって“ＣＦＣ−Ｍｉｘ”と称される 。前出文献参照）を発生しうることが示されている。ＣＦＣ−Ｍｉｘ細胞のいく らかは、回復を行いうるが、その他は結局は成熟骨髄細胞（例えば、好中球、巨 核球、マクロファージ及び好塩基球）に発展する。同様に、多能性幹細胞は、そ れぞれＢ及びＴリンパ球に分化する前駆Ｂ及び前駆Ｔリンパ細胞系を生じうる。 先駆細胞は、例えば、顆粒球／マクロファージコロニー形成先駆細胞（ＧＭ−Ｃ ＦＵ）は、好中球またはマクロファージに分化し；原始赤血球系群発形成単位（ ＢＦＵ−Ｅ）が赤血球系コロニー形成単位（ＣＦＵ−Ｅ）に分化し、これが成熟 赤血球を生じる等、それらの子孫により定義される。同様に、Ｍｅｇ−ＣＦＵ、 Ｅｏｓ−ＣＦＵ及びＢａｓ−ＣＦＵ先駆体は、それぞれ巨核球、好酸球、好塩基 球に分化しうる。 造血性成長因子(Andrea，NEJM 330(12):839-846(1994)に総説がある）は、骨 髄の血液先駆細胞の表面に存在するレセプターの活性化を介して、血液細胞の成 長及び／または分化を向上させることが示された。これらの成長因子のいくつか が、血液細胞の制限された系統の増殖を促進する一方で、他のものは血液細胞の 複数系統の増殖を向上させる。例えば、エリスロポイエチン（ＥＰＯ）は、赤血 球細胞の増殖を支持するが、その一方で、インターロイキン−３（ＩＬ−３）は 、赤血球細胞及び骨髄細胞系統の増殖を誘導し、従って、多系統因子と考えられ る。 近年、いくつかの造血性成長因子レセプターが単離された。それらの量が少な いこと及びそれらが高親和性及び低親和性形態にて存在することにより、これら のレセプターの性質決定が妨げられていた。 サイトカインレセプターは、しばしば複数サブユニットの複合体を組み立てる 。ある場合には、この複合体のαサブユニットは同種成長因子の結合に関与し、 またβ−サブユニットは信号を細胞に伝達する能力を有しうる。これらのレセプ ターは、形成される複合体に依存して、３種の亜科に割り当てられる。亜科１は 、エリスロポイエチン（ＥＰＯ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、イ ンターロイキン−４（ＩＬ−４）、インターロイキン−７（ＩＬ−７）、成長ホ ルモン（ＧＨ）及びプロラクチン（ＰＲＬ）に対するレセプター類を含む。この 亜科に属するレセプターに結合するリガンドは、レセプターの同種２量体を生じ る ものと考えられる。亜科２レセプターは、リガンド結合のためのα−サブユニッ ト、並びに信号伝達のためのβ−サブユニット（あるいは、ＩＬ−３、ＧＭ−Ｃ ＳＦ及びＩＬ−５の共有サブユニット、またはＩＬ−６、ＬＩＦ、ＯＳＭ及びＣ ＮＴＦレセプターのｇｐ１３０サブユニットのいずれか）を有する異種２量体で ある。亜科３は、インターロイキン−２（ＩＬ−２）レセプターのみを含む。Ｉ Ｌ−２レセプター複合体のβ及びγサブユニットは、非関連Ｔａｃ抗原のα−サ ブユニットに会合するサイトカインレセプターポリペプチドである。 Ｂ．肥満 最近の疫学的研究によれば、２０歳以上のアメリカ人の約３分の１が冒されて いる最も一般的な栄養学的疾患である。Kuczmarski et al.，J．Am．Med．Assoc .272:205-11(1994)。肥満は、心臓血管障害、II型糖尿病、インシュリン耐性、 高血圧、高グリセリド血症、低リポ蛋白血症、及び癌のある種の形態を含む種々 の重篤な健康問題の原因となる。Pi-Sunyer，F.，Anns．Int．Med．119:655-60( 1993)；Colfitz，G.，Am．J．Clin．Nutr．55:503S-507S(1992)。単一の遺伝子 変異（肥満または“ｏｂ”変異）が、マウスにおいて肥満及びII型糖尿病を生じ ることが示された。Friedman，Genomics 11:1054-1062(1991)。 Zhang et al.，Nature 372:425-431(1994)は、最近マウスｏｂ遺伝子のクロー ニング及び配列決定を報告し、ｏｂ遺伝子生成物であるレプチンまたはＯＢ蛋白 質が、体脂肪貯蔵の大きさの調整作用をする脂肪組織からの信号伝達経路の一部 として機能するであろうことを示唆した。２０年以上も以前に実施された並体結 合実験は、ｏｂ遺伝子の２個の変異コピーを含む遺伝的糖尿病マウス（ｏｂ／ｏ ｂマウス）が、食物摂取を調節する満喫因子を産生せず、その一方で糖尿病（ｄ ｂ／ｄｂ）マウスは満喫因子を産生するがそれに応答しないことか予測された。 Coleman and Hummal，Am．J．Physiol．217:1298-1304(1969)；Coleman，Diabet ol．9:294-98(1973)。３組の別個の研究チームによる最近の報告は、組換えＯＢ 蛋白質の毎日の投与が食物摂取を阻害し、肥満ｏｂ／ｏｂマウスにおいては体重 及び脂肪を減少させるがｄｂ／ｄｂマウスにおいては減少させないことが示され (Pelleymounter et al.，Science269:540-43(1995)；Halaas et al.，S cience 269:543-46(1995)；Campfield et al.，Science 269:546-49(1995))、Ｏ Ｂ蛋白質が初期の交差循環研究において提案されたようにそのような満喫因子で あることを示唆している。 研究者らは、少なくとも１種のＯＢレセプターが、脳に存在することを示唆し ている。レプチンレセプター（ＯＢ−Ｒ）の同定及び発現クローニングが、Tart aglia et al，Cell 83:1263-71(1995)により報告されている。種々のＯＢレセプ ターのアイソフォームが、Cioffi et al.，Nature 2:585-89(1996)により記述さ れている。WO 96/08510も参照のこと。 マウスｄｂ遺伝子は、最近クローニングされた(Lee et al.，Nature 379:632( 1996)及びChen et al.，Cell 84:491-496(1996))。以前のデータは、ｄｂ遺伝子 が肥満（ｏｂ）遺伝子生成物、レプチンのレセプターをコードすることを示唆し た(Coleman et al.，Diebetologia 9:294-8(1973)及びColeman et al.，Diebeto logia 14:141-8(1978))。ｄｂ／ｄｂマウスが、信号伝達において欠陥を有する レセプターを与えるであろうＯＢレセプターの切断されたスプライシング変異体 の結果として生じることは、極最近に確認された(Lee et al.，Nature379:632(1 996)及びChen et al.，Cell 84:491-495(1996))。 発明の要約 ここにおける発明は、ＷＳＸサイトカインレセプター及び該ＷＳＸサイトカイ ンレセプターの細胞外領域（ＥＣＤ）であるレセプター可溶性形態に関するもの である。該ＷＳＸレセプターポリペプチドは、場合によりその血清中半減期を増 大する分子に接合または融合され、また該ポリペプチド及び生理学的に許容され る担体を含む医薬組成物として製剤化されうる。 ある実施態様において、ＷＳＸレセプターＥＣＤは、ＷＳＸリガンドに結合し 得て、それにより内因性ＷＳＸレセプターの活性化を低減しうる限りにおいて、 拮抗剤として使用されてもよい。これは、哺乳動物におけるＷＳＸリガンドの過 剰濃度及び／またはＷＳＸレセプターの過剰活性化に特徴づけられる症状に有用 であり得る。ＷＳＸレセプターＥＣＤは、例えば代謝疾患（例えば、食欲不振ま たは体幹肥満症）、ＷＳＸレセプターを発現する幹細胞腫瘍及び他の腫瘍の治療 に使用され得る。 ＷＳＸレセプターＣＤの医薬組成物は、更にＷＳＸリガンドを含んでよい。そ のような二重性組成物は、ＷＳＸリガンドの半減期の延長、及び／または内因性 ＷＳＸレセプターを直接的に異種３量体性複合体として活性することが治療的に 有用である場合に有利であろう。 本発明は、ＷＳＸレセプターイムノアドヘシン等のキメラＷＳＸレセプター分 子（これにより治療を受ける患者の血清中において長い半減期を有する）、及び エピトープ標識化ＷＳＸレセプターにも関連するものである。イムノアドヘシン は、ＷＳＸレセプターの生物学的活性の中和が有利であろう症状または疾患にお けるＷＳＸレセプター拮抗剤として採用されうる。二重特異性イムノアドヘシン （ＷＳＸレセプターＥＣＤと他のサイトカインレセプターの領域とを組み合わせ る）は、ＷＳＸリガンドに対して高度に親和性の結合性複合体を形成しうる。 本発明は、更にＷＳＸレセプターに結合するか、及び／または活性化する分子 の同定方法を提供する。これは、ＷＳＸレセプターの作動剤または拮抗剤である 分子（ペプチド類、抗体類、及び低分子等）を発見するために有用である。この ような方法は、一般的に、固定化されたＷＳＸレセプターをそれに結合すると考 えられる分子に曝し、該固定化ＷＳＸレセプターに対する分子の結合を測定する か、及び／または該分子がＷＳＸレセプターを活性化（または活性化を阻止）す るか否かを評価することを含む。このようなＷＳＸリガンドを同定するために、 ＷＳＸレセプターが細胞表面に発現され、合成化合物及び天然産生化合物のライ ブラリー（例えば、血清等の天然産生化合物内因性供給源）をスクリーニングす るために使用され得る。ＷＳＸレセプターは、内因性ＷＳＸリガンドの血清濃度 測定のための、診断道具としても使用され得る。 更なる実施態様において、ＷＳＸレセプターに結合する分子の精製方法が提供 される。これは、このレセプターに結合する治療的に活性な分子の商業的製造及 び精製において使用され得る。該方法において、興味ある分子（一般的には１種 以上の夾雑物を含む組成物）が、固定化されたＷＳＸレセプター（例えば、蛋白 質Ａカラムに固定化されたＷＳＸレセプターイムノアドヘシン）に吸着される。 夾雑物が、ＷＳＸレセプターへの結合能力の欠如によって、一般にカラムを通っ て流出する。従って、次いで溶出条件を該分子が固定化レセプターに結合しない ように変化させることにより、興味ある分子をカラムから回収することが可能と なる。 更なる実施態様において、本発明はＷＳＸレセプターに特異的に結合する抗体 を提供する。好ましい抗体は、ヒトにおいて非免疫原性であり、かつ該レセプタ ーの細胞外領域のエピトープに結合するモノクローナル抗体である。好ましい抗 体は、ＷＳＸレセプターに少なくとも約１０⁶Ｌ／モル、好ましくは１０⁷Ｌ／モ ルの親和性を持って結合する。 ＷＳＸレセプターに結合する抗体は、場合により異種ポリペプチドと融合して もよく、該抗体またはその融合物は、レセプター供給源からＷＳＸレセプターを 単離、精製するために使用され得る。 更なる側面において、本発明は、該レセプターを含むと思われる試料を該抗体 と接触させ、結合が起きたか否かを検出することを含むインビトロまたはインビ ボにおけるＷＳＸレセプターの検出方法を提供する。ＣＤ３４＋細胞がＷＳＸレ セプターを有するという観察に基づいて、幹細胞母集団の同定及び／または富裕 化のためのＷＳＸ抗体の使用（ＣＤ３４抗体が現在使用されているのと同様にし て）が考えられる。 ある種の応用について、ここに記述されるようにスクリーニングされる作動性 抗体を有することが望ましい。このような作動性抗体は、インビトロの使用につ いてＷＳＸレセプターを活性化するための有用であり、これによつて該レセプタ ーを有する細胞の増殖及び／または分化の向上が望まれる。更に、これらの抗体 は、有効量のＷＳＸレセプター性化が治療される哺乳動物に治療的利益をもたら す症状の治療に使用され得る。例えば、作動性抗体はＷＳＸレセプターを有する 細胞の生存、増殖及び／または分化を向上させるために使用され得る。特に、作 動性抗体及び他のＷＳＸリガンドは、インビトロまたはインビボのいずれかにお いて幹細胞及び／または先駆細胞の増殖を刺激するために使用され得る。他の可 能性ある治療適応用は、代謝性疾患（肥満及び糖尿病等）に治療のため、及び腎 臓、肝臓または肺の成長及び／または修復（例えば腎疾患等）の促進のための作 動性抗体の使用を含む。 治療的応用に対しては、作動性抗体及び生理学的に許容される担体を含んでな る組成物を調製することが望ましい。場合により、このような組成物は更に１種 以上のサイトカインを含んでもよい。 他の実施態様において、抗体は中和抗体である。このような分子は、ＷＳＸレ セプターの望ましくない、または過剰な活性化により特徴づけられる症状の治療 のために使用され得る。 上記に加えて、本発明はここにおいて記述されるようにＷＳＸレセプターの組 換え製造に使用され得る、ＷＳＸレセプターをコードしている単離された核酸分 子、発現ベクター及び宿主細胞を提供する。単離された核酸分子及びベクターは 、ＷＳＸリガンドに対する細胞のＷＳＸレセプターの応答性の欠如及び／または 増大を伴う患者の治療のための遺伝子療法の応用にも有用である。 本願は、ＷＳＸレセプターに特異的に結合し、天然に生じるＷＳＸリガンド、 ＯＢ蛋白質の１種以上の生物学的活性を模倣する作動性抗体にも関連する。好ま しい抗体は、ヒトＷＳＸレセプターに対する強い結合親和性を有するもの（例え ば、約１ｘ１０⁸Ｍ未満、好ましくは約１ｘ１０⁹Ｍ未満のＫｄを有する）である 。好ましい実施態様において、作動性抗体はヒト及びネズミＷＳＸレセプターの 両者に結合する。 バイオアッセイ、KIRA ELISAにおいて定義される作動性活性を持った抗体がこ こに開示される。好ましい抗体は、KIRA ELISAにおけるＩＣ５０として約0.5μ ｇ／ｍｌ以下、好ましくは約0.2μｇ／ｍｌ以下、最も好ましくは約0.1μｇ／ｍ ｌ以下を有する。 ここにおいて興味ある作動性抗体は、抗体2D7，IG4，1E11若しくは1C11（実施 例１３参照）またはクローン３，４，若しくは１７（実施例１４参照）の生物学 的特徴の１種類以上を有するものである。例えば、該抗体は、これらの抗体のい ずれか一つに結合するエピトープに結合してもよく、及び／またはこれらの抗体 の超可変領域残基のいくらかまたは全部を有してもよい。 作動性抗体は、肥満哺乳動物（例えば、ｏｂ／ｏｂマウス）において体重及び ／または脂肪貯蔵重量及び／または食物摂取を減少させるものであり得る。好ま しい作動性抗体は、肥満哺乳動物（例えば、ｏｂ／ｏｂマウス）において脂肪減 少効果を及ぼし、その過剰量が食物摂取を低減させるものである(Levin et al., Proc．Natl．Acad．Sci．USA 93:1726-1730(1996))。 作動性抗体は、造血性先駆細胞の分化及び／または増殖及び／または生存を誘 発する性質を有するものであり得る。例えば、作動性抗体はリンパ細胞形成、赤 血球形成及び／または骨髄細胞系性を誘発する。 本発明は、更に作動性抗体及び生理学的に許容される担体を含んでなる組成物 を提供する。治療のための該組成物は、滅菌的であり、また凍結乾燥されていて よい。例えば、造血において使用される場合に、該組成物は更にサイトカインを 含んでよい。 他の側面において、本発明はＷＳＸレセプターの活性化方法を提供し、該方法 はＷＳＸレセプターを、該レセプターの活性化に有効な量の作動剤、抗−ＷＳＸ レセプター抗体に曝すことを含んでなる。本発明は、更にＷＳＸレセプターを細 胞表面に発現する細胞の増殖及び／または分化の増強方法を提供し、該方法は該 細胞を、その増殖及び／または分化の増強に有効な量の外因性作動剤、抗−ＷＳ Ｘレセプター抗体に曝すことを含んでなる。他の実施態様において、本発明は肥 満哺乳動物（例えばヒト）における体重及び／または脂肪貯蔵重量及び／または 食物摂取量の低減方法を提供し、該方法は該哺乳動物に有効量の作動性抗体を投 与することを含んでなる。本発明は、例えば動脈硬化症、II型糖尿病、多嚢胞性 卵巣疾患、心臓血管障害、変形性関節症、皮膚疾患、高血圧、インシュリン耐性 、過コレステロール血症、過グリセリド血症、腫瘍及び胆石症等の哺乳動物にお ける肥満の続発症の治療方法を提供し、該方法は、有効量の作動剤、抗−ＷＳＸ レセプター抗体を哺乳動物に投与することを含む。治療されるべき哺乳動物は、 これらの疾患のいずれか一つについて診断を受けたか、あるいはこれらの疾患の 傾向があるであろう動物である。 他の側面において、本発明は肥満（ＯＢ）蛋白質等のＷＳＸリガンドが、ＷＳ Ｘレセプターを介する信号伝達によって造血作用の役割を演じるというここにお ける発見に関連する。ＷＳＸレセプター−リガンド信号伝達経路の役割は、骨髄 細胞形成、赤血球形成（例えば牌臓赤血球形成）及び最も劇的にはリンパ細胞形 成を刺激するというＯＢ蛋白質の能力によって明確にされるように、初期の造血 性前駆体の水準にて現れる。従って、ＷＳＸリガンドは、インビトロまたはイン ビボのいずれかにおける造血性先駆細胞の増殖及び／または分化及び／または生 存を刺激するために使用され得る。 従って、本発明は、細胞表面にＷＳＸレセプター（特に、ここにおいて増殖信 号の伝達能力を有することが示されたＷＳＸレセプター変異体13.2）を発現する 細胞の増殖及び／または分化の刺激方法を提供し、該方法は、ＷＳＸレセプター を、細胞の増殖及び／またはＯＢ蛋白質分化に有効な量のＷＳＸリガンドに接触 させる工程を含む。好ましい実施態様において、ＷＳＸリガンドに曝される細胞 は、例えばＣＤ３４＋細胞等の造血性先駆体である。ＷＳＸリガンドは、ＯＢ蛋 白質またはＷＳＸレセプターに結合する作動性抗体であってよい。インビボにお ける使用については、選択されるＷＳＸリガンドは、ＯＢ−イムノグロブリンキ メラ及び／またはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の非蛋白質性ホリマーに より修飾されたＯＢ蛋白質等の長い半減期を持ったＯＢ蛋白質誘導体であってよ い。ここにおいて考慮される方法は、リンパ性、骨髄性及び／または赤血球細胞 系統の増殖及び／または分化における増大を導くことが出来、インビボ及びイン ビトロ適法法の両者を含むことが出来る。インビトロにおける使用については、 ＷＳＸレセプターを有する細胞は、細胞培養物中に存在してよい。インビボの方 法については、細胞は哺乳動物、特にヒト（例えば、血液量の減少を患うか、ま たは種々の血液細胞の増大が利益をもたらすヒト）に存在してよい。可能性ある 患者は、化学または放射線療法を受けるもの、または骨髄移植療法を植えｋるも のを含みうる。而して本発明は、哺乳動物における血液細胞（例えば、赤血球、 骨髄性及び／またはリンパ性細胞）の母集団再構成の方法を提供し、該方法は哺 乳動物に治療的に有効量のＷＳＸリガンドを投与することを含む。 リンパ細胞形成の向上により利益を受ける哺乳動物は、次の例示的症状のいず れか一つ以上に罹りやすいか、または患っているものである：リンパ球減少症； リンパ流出；リンパ欝滞；免疫不全（例えばＨＩＶ及びＡＩＤＳ等）；感染症（ 例えば、日和見感染及び結核を含む）；狼瘡；並びにリンパ細胞不全に特徴づけ られる他の疾患。ＷＳＸリガンドの有効量が、哺乳動物における免疫強化または 免疫機能の改善方法において使用され得る。 他方において、ＷＳＸレセプターまたはＷＳＸリガンド拮抗剤（ＷＳＸレセプ ターＥＣＤまたはイムノアドヘシン、及びＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質中 和抗体）は、哺乳動物において許容し得ないリンパ細胞濃度が存在する疾患の治 療において、特にはそれがＷＳＸレセプターの過剰な活性化により生じる場合に 使用され得る。このような拮抗剤の投与が有利であり得る症状の例は、新形成疾 患（ホジキン病；リンパ肉腫；リンパ芽球腫；リンパ細胞性白血病及びリンパ腫 ）並びにリンパ球増加症を含む。 赤血球形成の増大が有利であり得る疾患または不全は、限定されるものではな いが、赤血球減少症；赤血球変形性疾患；赤芽球減少症；白赤芽球症；赤血球崩 壊；地中海貧血；及び貧血（後天性、自己免疫性若しくは細小血管症性溶血性貧 血等の溶血性貧血；無形成貧血；例えば先天性赤血球生成不全性貧血、先天性溶 血性貧血若しくは先天性再生不良性貧血等の先天性貧血；造血不全性貧血；ファ ンコーニ貧血；遺伝性貧血；出血性貧血；高色素性若しくは低色素性貧血；栄養 性、鉄欠乏性貧血；再生不良性貧血；感染性貧血；鉛貧血；局所貧血；大球性若 しくは小球性貧血；悪性貧血；巨赤芽球性貧血；分子性貧血；正球性貧血；生理 的貧血；外傷性若しくは出血後貧血；難治性貧血；放射線性貧血；鎌状赤血球貧 血；脾性貧血；並びに中毒性貧血）を含む。 逆に言えば、ＷＳＸレセプターまたはＷＳＸリガンド拮抗剤は、哺乳動物にお いて過剰な赤血球量がある症状、例えば、赤白血病等の新形成疾患；赤芽球症； 並びに赤血病または多血症等の治療に使用され得る。 骨髄細胞形成の増大は、以下の例示的症状に加えて上述した疾患または不全の いずれにおいても有益であり得る：骨髄線維症；血小板減少症；形成不全；散在 性血管内凝集（ＤＩＣ）；免疫（自己免疫）性血小板減少性紫斑（ＩＴＰ）；Ｈ ＩＶ誘発ＩＴＰ；骨髄形成不全；血小板性疾患並びに血小板増加症。 ＷＳＸレセプター拮抗剤−ＷＳＸリガンド相互作用は、悪性疾患（例えば、骨 髄肉腫、骨髄芽球腫、骨髄腫、骨髄性白血病及び骨髄球腫症）；骨髄芽球症；骨 髄球増加症；並びに骨髄症等の骨髄細胞−関連症状の治療のためにも使用され得 る。 該方法は、更に造血性細胞（それらが細胞培養物中にある場合も、哺乳動物中 にある場合にも）を、１種以上の他のサイトカイン（例えば系統−特異的サイト カイン）に曝す工程を含んでよく、このことは、細胞の増殖及び／または分化の 相乗的向上をもたらしうる。例示的にはサイトカインは、トロンボポイエチン（ ＴＰＯ）；エリスロポイエチン（ＥＰＯ）；マクロファージ−コロニー剌激因子 (Ｍ−ＣＳＦ）；顆粒球−マクロファージ−ＣＳＦ（ＧＭ−ＣＳＦ）；顆粒球− ＣＳＦ（Ｇ−ＣＳＦ）；インターロイキン−１（ＩＬ−１）、ＩＬ−１α；ＩＬ −２；ＩＬ−３；ＩＬ−４；ＩＬ−５；ＩＬ−６；ＩＬ−７；ＩＬ−８；ＩＬ− ９；ＩＬ−１１；ＩＬ−１０；ＩＬ−１２；白血病阻害因子（ＬＩＦ）またはキ ットリガンドを含む。この実施態様において、サイトカインに対する暴露は、Ｗ ＳＸリガンドに対する暴露に先行するか、同時に起こすかまたは引き続いて行わ れてもよい。好ましくは、ＷＳＸリガンド及び１種以上の更なるサイトカインは 、患者に対して（方法がインビボの場合）同時に投与され、また場合により合わ されて医薬組成物が形成される。 上記方法において使用するために、本発明は、容器；容器のラベル；及び該容 器内の活性物質を含む組成物を含む製造用物品をも提供するものであり、ここに おいて該組成物は、哺乳動物のＷＳＸレセプターを含む細胞の増殖及び／または 分化を向上させるために有効であり、該容器状のラベルは、該組成物がそれらの 細胞の増殖及び／または分化を向上させるために使用され得ること、及び活性物 質がＷＳＸリガンドであることを示している。場合により、製造用物品は、更な るサイトカインを収容する１個以上の容器を、ＷＳＸリガンドを収容する容器と 共に包装された組み合わせとして含む。 他の実施態様において、ＷＳＸリガンドの有効量は、骨髄移植における移植の 改善、または末梢血からの造血性先駆細胞採取に先行して、哺乳動物の造血性幹 細胞の可動化を促進するためにも使用され得る。 図面の簡単な記述 図１Ａ−Ｈは、共にヒトＷＳＸレセプター変異体13.2の全長をコードする二重 鎖ヌクレオチド（配列番号：１）及び演繹されるアミノ酸配列（配列番号：２） を示す。ヌクレオチドは、センス鎖の最初の部分から番号付けされている。アミ ノ酸残基は、アミノ酸配列の最初の部分から番号付けされている。制限酵素部位 は、ヌクレオチド配列の上側に表されている。 図２Ａ−Ｂは、共に全長のヒトＷＳＸレセプター変異体6.4（配列番号：３） 、12.1（配列番号：４）及び13.2のアミノ酸配列の整列をそれぞれ示す。相同的 残基は枠に入れてある。ＷＳＸレセプター変異体6.4、12.1及び13.2は、何れか 一つの理論に支配されることなくＷＳＸレセプターｍＲＮＡの交互に起こるスプ ライシングにより生成されたものと考えられる天然配列のヒトＷＳＸレセプター 変異体である。推定されるシグナルペプチド、膜内外、Box 1、Box 2及びBox ３ 領域が示されている。細胞外及び細胞質領域は、それぞれ膜内外領域に対してア ミノ及びカルボキシ末端である。Box 1-3領域は、Baumann et al.，Mol．Cell． Biol．14(1):138-146(1994)に記述されるBox 1-3モチーフに対応する。 図３Ａ−Ｅは、共にヒトＷＳＸレセプター変異体6.4（配列番号：５）、12.1 （配列番号：６）及び13.2のヌクレオチド配列の整列をそれぞれ示す。 図４Ａ−Ｂは、全長のヒトＷＳＸレセプター変異体13.2のアミノ酸配列（上側 ）を、実施例７に記述されるようにして得られた部分的なネズミＷＳＸレセプタ ー細胞外領域配列（下側）（配列番号：７）のアミノ酸配列と共にそれらの整列 を示す。推定されるネズミのシグナルペプチドは、矢印により示されている。 図５Ａ−Ｆは、ヒトＷＳＸレセプター変異体13.2（下側）及び部分的なネズミ ＷＳＸレセプター細胞外領域配列（上側）（配列番号：８）をコードするヌクレ オチド配列の整列をそれぞれ示す。 図６は、実施例５に記述されるチミジン取り込みアッセイの結果を示す棒グラ フである。母体となるBaf3細胞またはGH/WSX変異体13.2キメラ芽エレクトロポー レイションされたBaf3細胞における種々の濃度のヒト成長ホルモン（GH）の存在 下における３Ｈ−チミジン取り込み量（毎分の計数、ＣＰＭ）が示される。 図７は、実施例８に記述されるアンチセンス実験に使用されたヒト及びネズミ オリゴヌクレオチド（それぞれ配列番号：９−３８）を示す。 図８及び９は、Baf3細胞におけるチミジン取り込みアッセイを示す。これらの アッセイのために、細胞は１６−１８時間、ＩＬ−３を与えられていない（１０ ％ウシ胎児血清を補充したＲＰＭＩ１６４０中）。細胞は血清非含有ＲＰＭＩ１ ６４０中で洗浄され、示された濃度のヒトGHまたはヒトＯＢ蛋白質を補充したO. ２ｍｌの血清非含有ＲＰＭＩ１６４０中に、ウエルあたり50,000細胞を蒔いた。 細胞は２４時間刺激され、チミジン取り込み量が記述されるように測定された（ Zeigler et al.Blood 84:2422-2430(1994)）。アッセイを３重に実施し、結果を ３組の独立した実験により確認した。 図８において、ＧＨレセプター−ＷＳＸレセプター変異体12.1または13.2キメ ラ蛋白質は、実施例５に記述されるようにBaf-3細胞にて発現された。これらの トランスフェクト細胞及び母体となるBaf-3系は、hGHにより剌激され、力価測定 されたチミジンの取り込みが測定された。 図９において、Baf-3細胞は、ＷＳＸレセプター変異体13.2により安定にトラ ンスフェクトされた。次いでチミジン取り込みか、ヒトＯＢ蛋白質による刺激に 続いてこれらの細胞系において測定された。 図１０Ａ−Ｃにおいて、ネズミ胎児肝AA4⁺Sca⁺Kit⁺(fkASK)幹細胞は、懸濁培 養またはメチルセルロース中にて培養された。図１０ＡにおいてflASK細胞は、 Ｋｉｔリガンド（KL）またはＫｉｔリガンドとＯＢ蛋白質を伴った血清を含む懸 濁培養物中で培養された。細胞計数及びサイトスピン分析は７日後に行われた。 図１０Ｂにおいて、flASK細胞は実施例１０に記述されるように骨髄性またはリ ンパ性の条件下で、メチルセルロース中に播種された。コロニーの計数は１４日 後に行われた。リンパ性条件下で生成されたコロニーについて、ＦＡＣＳ分析は 細胞のほとんどの主要部分が、Ｂ２２０陽性であることを示した。図１０Ｃにお いて、flASK細胞はＫｉｔリガンドを含むメチルセルロース中に播種された。こ の基本媒体には、次いでエリスロポイエチン（ＥＰＯ）またはエリスロポイエチ ン及びＯＢ蛋白質が添加された。結果として生じるコロニーは、１４日後に計数 された。ＦＡＣＳ分析は、これらのコロニーの約９５％がＴＥＲ陽性であること を示した。全てのアッセイは３重に行われ、少なくとも３つの独立した実験によ り確認された。 図１１は、ｄｂ／ｄｂ、ｏｂ／ｏｂ及び対応する天然型骨髄のコロニー形成能 力を測定するためのメチルセルロースアッセイを例示する。100,000個の骨髄細 胞をメチルセルロース中に播種し、生じたコロニーを１４日後に計数した。アッ セイは、骨髄性及びリンパ性条件の両者を使用して行われた。アッセイは３重に 行われ、実験は最低３回反復された。 図１２Ａ−Ｂは、天然型淡灰色同型接合体、淡灰色／ｄｂ異型接合体、及び同 型接合体ｄｂ／ｄｂマウスの骨髄の細胞的特徴を示す。ｄｂ／ｄｂ骨髄における 全体的細胞充実性は、対照と比較して変化していない。図１２Ａは、抗−２２０ 、抗−ＣＤ４３及び抗−ＴＥＲ１１９抗体を使用して決定された細胞の特徴を示 す。図１２Ｂは、上記の群由来の脾臓の細胞的特徴を示す。 図１３Ａ−Ｃは、ｄｂ／ｄｂ同型接合体、ｄｂ／ｄｂ淡灰色異型接合体及び淡 灰色同型接合体の末梢血の分析を示す。４０マイクロリットルの末梢血を眼窩出 血により採り、セロノ・ベイカーシステム(Serrono Baker system)9018にて分析 した。枠により記述される全ての領域は、２個のパラメータの平均±１標準偏差 を表す。 図１４は、末梢リンパ数及び血液グルコース濃度の対比である。動物の５群、 淡灰色、淡灰色／ｄｂ、ｄｂ／ｄｂ、インターフェロンα−トランスジェニック 、及びグルコキナーゼ・トランスジェニック異型接合体マウス（gLKa）を、レト ロ−眼窩出血により試料採取した。これらのマウスの血中グルコース濃度を測定 した。枠により記述される全ての領域は、２個のパラメータの平均±１標準偏差 を表す。 図１５Ａ−Ｃにおいて、淡灰色同型接合体、ｄｂ／淡灰色異型接合体及び同型 接合体ｄｂ／ｄｂマウスは、致命的放射よりわずかに低い放射に曝され、末梢血 の回収動力学が、レトロ−眼窩出血により測定された。 図１６Ａ−１６Ｑは、共に実施例１１に記述されるプラスミド中のヒトＯＢ− イムノグロブリンキメラのヌクレオチド配列（配列番号：４６）及びアミノ酸配 列（配列番号：４７）を示す。 図１７は、抗−ＷＳＸレセプター作動性抗体のヒトＷＳＸレセプターへの結合 を示す。実施例１３に記述されるように生成された抗−ＷＳＸレセプター作動性 抗体（２Ｄ７、及び１Ｇ４）及びＩｇＧアイソトープ対照が、捕捉ＥＬＩＳＡに よってヒトＷＳＸレセプターに対する結合能力について評価された。 図１８は、ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡ（実施例１３参照）におけるｍＡｂ２Ｄ７及 び１Ｇ４並びにＯＢ蛋白質の活性を示す。このアッセイにおける抗体またはリガ ンド濃度に対する４９０ｎｍの吸光度が示されている。 図１９は、抗−ＷＳＸレセプター作動性抗体のネズミＷＳＸレセプターに対す る結合を表す。該抗−ＷＳＸレセプター作動性抗体（２Ｄ７、及び１Ｇ４）及び ＩｇＧアイソトープ対照が、捕捉ＥＬＩＳＡによるネズミＷＳＸレセプターに対 する結合能力について評価された。 図２０Ａ−Ｂは、実施例１３に記述されるように生成された作動性抗−ＷＳＸ レセプター抗体のエピトープマッピングの結果を示す。図２０Ａは、ビオチン化 ２Ｄ７を使用するエピトープＡ上の抗−ＷＳＸレセプター抗体の阻止能力を示す 。図２０Ｂは、ビオチン化１Ｃ１１を使用するエピトープＢ上の抗−ＷＳＸレセ プター抗体の阻止能力を示す。競合結合ＥＬＩＳＡに基づくと、２Ｄ７は、１Ｅ １１、１Ｃ１１及びＩＧ４とは異なるエピトープと結合した。 図２１は、全長ヒトＷＳＸレセプター変異体６.４（ｈＷＳＸＲ）（配列番号 ：３）及びネズミレセプター（ｍＷＳＸＲ）（配列番号：５１）のアミノ酸配列 の整列を示す。 図２２は、ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡにおけるヒトＯＢ蛋白質の標準曲線であり、 実施例１４に記述されるように、ｓｃＦｖファージを用いて選別するＷＳＸレセ プターのＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡをグラフ内に模式的に例示する。 図２３は、ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡにおける実施例１４からのクローン＃３、＃ ４及び＃１７ｓｃＦｖファージ並びに抗−Ｈｅｒ２ｓｃＦｖファージ対照の活性 を示す。 図２４は、ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡにおける実施例１４からのクローン＃３、＃ ４及び＃１７ｓｃＦｖ並びに抗−Ｈｅｒ２ｓｃＦｖファージ対照（Ｈｅｒ２クロ ーン）及びＯＢ蛋白質の活性を示す。抗体濃度に対する吸光度が示される。 図２５は、実施例１４に記述されるようにして得られた作動性抗体クローン＃ ３（３．ｓｃＦｖ）（配列番号：４８）、クローン＃４（４．ｓｃＦｖ）（配列 番号：４９）及びクローン＃１７（１７．ｓｃＦｖ）（配列番号：５０）のアミ ノ酸配列を並べてある。Kabat et al.，Sequence of Proteins of Immunologica l Interest．%th Ed．Public Health Service，National Institutes of Health , Bethesda，MD．(1991)に従った相補性決定領域（ＣＤＲ）残基は、下線が付され ており、また超可変ループ残基（Chothia et al.，Nature342:8767(1989)）は斜 体字である。 好ましい実施態様の詳細な記述 Ｉ．定義 本発明の記述において、以下に示されるように定義されることを意図した下記 の用語が使用される。 ここにおいて使用される場合、ＷＳＸ“レセプター”または“ＷＳＸレセプタ ーポリペプチド”なる用語は、天然配列のＷＳＸレセプター；ＷＳＸレセプター 変異体；ＷＳＸ細胞外領域；及びキメラＷＳＸレセプター（それぞれがここにお いて定義される）を包含する。場合により、ＷＳＸレセプターは天然のグリコシ ル化を含まない。“天然のグリコシル化”は、天然に誘導される哺乳動物細胞内 にて産生された場合に、ＷＳＸレセプターに共役的に結合する炭水化物残基を指 す。従って、非ヒト細胞にて産生されるヒトＷＳＸレセプターは、“天然のグリ コシル化を伴わない”ＷＳＸレセプターの例である。ある場合には、（例えば、 原核性細胞内で組換え的に産生された結果として）ＷＳＸレセプターはグリコシ ル化されていない。 “ＷＳＸリガンド”は、天然配列のＷＳＸレセプター（特にＷＳＸレセプター 変異体13.2）に結合し、活性化させる分子である。分子のＷＳＸレセプターへの 結合能力は、例えば推定されるＷＳＸリガンドの、アッセイプレートに被覆され たＷＳＸレセプターイムノアドヘシンに対する結合能力によって測定されうる（ 実施例２参照）。チミジン取り込みアッセイは、ＷＳＸレセプターを活性化する ＷＳＸリガンドのスクリーニング手段を提供する。ＷＳＸリガンドの例は、抗− ＷＳＸレセプター作動性抗体及びＯＢ蛋白質を含む（例えば、Zhang et al.,Nat ure 372:425-431(1994)に記述される）。 “ＯＢ蛋白質”及び“ＯＢ”は、ここにおいて可換的に使用され、天然配列Ｏ Ｂ蛋白質（“レプチン”としても知られる）及びそれらの機能的誘導体を指す。 “天然配列”のポリペプチドは、天然から誘導されるポリペプチド（例えばＷ ＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質）と同じアミノ酸配列を有するものである。こ のような天然配列のポリペプチドは、天然から単離されるか、または組換え若し くは合成手段により生成されうる。而して、天然配列のポリペプチドは、天然に 生じるヒトポリペプチド、ネズミポリペプチドまたは何れかの他の哺乳動物種由 来のポリペプチドのアミノ酸配列を有しうる。 “天然配列のＷＳＸレセプター”なる用語は、特定的にはＷＳＸレセプターの 天然に生じる切断形態、天然に生じる変異形態（例えば、ここに記述されるヒト ＷＳＸレセプター変異体6.4、12.1及び13.2等の代替スプライシング形態）及び ＷＳＸレセプターの天然に生じる対立遺伝子変異体を包含する。好ましい天然配 列のＷＳＸレセプターは、ヒトＷＳＸレセプター変異体6.4、ヒトＷＳＸレセプ ター変異体12.1またはヒトＷＳＸレセプター変異体13.2（それぞれ図２Ａ−Ｂに 示される）等の成熟天然配列ヒトＷＳＸレセプターである。最も好ましくは成熟 ヒトＷＳＸレセプター変異体13.2である。 “天然配列のＯＢ蛋白質”なる用語は、何れかの動物種（例えば、ヒト、ネズ ミ、ウサギ、ネコ、ウシ、ヒツジ、ニワトリ、ブタ、ウマ等）に由来する天然に 生じるＯＢ蛋白質を含む。この定義は、Zhang et al.前出文献のアミノ酸番号付 けを使用して、アミノ酸位置４９のグルタミンを伴うかあるいは伴わない変異体 を特に包含する。“天然配列のＯＢ蛋白質”なる用語は、最初のＮ−末端メチオ ニン（Ｍｅｔ）を伴うかあるいは伴わず、また天然のシグナル配列を伴うかまた は伴わない単量体または二量体の何れかの形態である天然の蛋白質を含む。この 技術において既知の天然配列のヒト及びネズミＯＢ蛋白質は、１６７アミノ酸長 であり、２個の保存されたシステインを含み、分泌蛋白質の特徴を有している。 該蛋白質は高度に親水性であり、予想されるシグナル配列切断部位はZhang et a l.前出文献のアミノ酸番号付けを使用して、２１位である。ヒト及びネズミ配列 の全体配列の相同性は、約８４％である。２種の蛋白質は、成熟蛋白質のＮ−末 端領域においてより広範な同等性を示し、シグナル配列切断部位と１１７位の保 存的Ｃｙｓとの間の残基の間で、わずかに４個の保存的及び３個の非保存的置換 を有する。ＯＢ蛋白質の分子量は、単量体形態で約１６ｋＤである。 “ＷＳＸレセプター細胞外領域”（ＥＣＤ）は、ＷＳＸレセプターの膜内外領 域及び細胞質領域を実質的に含まず、すなわちこのような領域が１％未満、好ま しくはこのような領域が０．５〜０％、更に好ましくはこのような領域が０．１ 〜０％であるＷＳＸレセプターの形態である。通常は、ＷＳＸレセプターＥＣＤ は、ＷＳＸレセプター変異体6.4、12.1及び13.2についての図１２Ａ−Ｂに示さ れるＷＳＸレセプター変異体のアミノ酸配列と、少なくとも約９５％のアミノ酸 配列同等性、好ましくは少なくとも約９８％、更に好ましくは少なくとも約９９ ％のアミノ酸配列の同等性を持ったアミノ酸配列を有し、而して下記に定義され るＷＳＸレセプター変異体を包含する。 “変異体”ポリペプチドは、天然配列ポリペプチドに対して１００％未満の配 列同等性を有する下記に定義される生物学的に活性なポリペプチド（例えば、ヒ トＷＳＸレセプター変異体13.2についての図１Ａ−Ｈに示される演繹されたアミ ノ酸配列を有するＷＳＸレセプター）を意味する。このような変異体は、１個以 上のアミノ酸残基が、天然配列のＮ−末端またはＣ−末端、あるいは内部に付加 されるか；１〜３０個のアミノ酸残基が削除され、及び場合により１個以上のア ミノ酸残基が置換されたポリペプチド；並びに得られる生成物が天然に生じない アミノ酸を有するようにアミノ酸残基が共有的に修飾された上記ボリペプチドの 誘導体を含む。通常は、生物学的に活性なＷＳＸレセプター変異体は、図１Ａ− Ｈに示されるヒトＷＳＸレセプター変異体13.2に対して少なくとも約９０％のア ミノ酸配列の同等性、好ましくは少なくとも約９５％、更に好ましくは少なくと も約９９％の同等性を持ったアミノ酸配列を有するであろう。通常は、生物学的 に活性なＯＢ蛋白質変異体は、天然配列のＯＢ蛋白質に対して少なくとも約９０ ％のアミノ酸配列の同等性、好ましくは少なくとも約９５％、更に好ましくは少 なくとも約９９％の同等性を持ったアミノ酸配列を有するであろう。 “キメラ”ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプターは、異種ポリペプチドに融合ま たは結合するＯＢ蛋白質若しくは全長−ＷＳＸレセプター、またはその一つ以上 の領域（例えば、ＷＳＸレセプターの細胞外領域）を含むポリペプチドである。 キメラＷＳＸレセプターは、一般にヒトＷＳＸレセプター変異体13.2と共通する 少なくとも一つの生物学的性質を共有するであろう。キメラＯＢ蛋白質は、一般 に天然配列のＯＢ蛋白質と共通する少なくとも一つの生物学的性質を共有するで あろう。キメラポリペプチドの例は、イムノアドヘシン及びエピトープ標識ポリ ペプチドを含む。 “ＷＳＸイムノアドヘシン”なる用語は、“ＷＳＸレセプターイムノグロブリ ンキメラ”という表現と可換的に使用され、ＷＳＸレセプターの部分（一般には その細胞外領域）をイムノグロブリン配列と組み合わせたキメラ分子を指す。同 様に、“ＯＢ蛋白質イムノアドヘシン”または“ＯＢ−イムノグロブリンキメラ ”は、ＯＢ蛋白質（またはその部分）をイムノグロブリン配列と組み合わせたキ メラ分子を指す。必須ではないが、イムノグロブリン配列は好ましくはイムノグ ロブリン定常配列である。本発明のキメラにおいてイムノグロブリン残基は、Ｉ ｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３またはＩｇＧ４サブタイプ、ＩｇＡ、ＩｇＥ、Ｉｇ ＤまたはＩｇＭから得られてよく、好ましくはＩｇＧ１またはＩｇＧ３である。 ここにおいて使用される場合“エピトープ標識される”なる用語は、“標識ポ リペプチド”に融合されるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質を含むキメラポリ ペプチドを指す。標識ポリペプチドは、抗体が生じ得る様なエピトープを与える に充分な残基を有し、しかもＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の生物活性を妨 害しない程度に十分短い。標識ポリペプチドは、好ましくはそれに対する抗体が 他のエピトープと実質的に交差反応しない程度に十分固有なものでもある。好適 な標識ポリペプチドは、一般的には少なくとも６個のアミノ酸残基、通常は８− ５０個のアミノ酸残基（好ましくは９−３０個の残基）を有する。 “単離された”ＷＳＸレセプター（またはＯＢ蛋白質）は、ＷＳＸレセプター （またはＯＢ蛋白質）供給源から精製されるか、組換えまたは合成方法により調 製され、（１）スピニングカップシークェンターまたは本願出願当時において市 販されるか、若しくは刊行された方法により修飾される最良の商業的に入手可能 なアミノ酸シークェンターを使用して、Ｎ−末端または内部アミノ酸配列の少な くとも１５個、好ましくは２０個のアミノ酸残基を得るか、（２）クーマシーブ ルーまたは好ましくは銀染色を使用して非還元または還元条件下でのＳＤＳ−Ｐ ＡＧＥによって均質である様な、他のペプチドまたは蛋白質から充分に遊離され たＷＳＸレセプター（またはＯＢ蛋白質）を意味する。ここにおいて均質とは、 他の供給源による５％未満の夾雑を意味する。 “本質的に純粋な”蛋白質は、組成物の全重量に基づき蛋白質の重量で少なく とも約９０％、好ましくは重量で少なくとも９５％を含む組成物を意味する。“ 本質的に均質な”蛋白質は、組成物の全重量に基づき蛋白質の重量で少なくとも 約９９％を含む組成物を意味する。 “ＷＳＸレセプター”または“単離されたＷＳＸレセプター”の何れかとの関 連において使用される場合に“生物学的活性”とは、天然配列ＷＳＸレセプター （その天然または変性配位のいずれであろうとも）により直接または間接的に生 じるか、または演じられるエフェクターまたは抗原性機能または活性を有するこ とを意味する。エフェクター機能は、リガンド結合；及び細胞の生存、分化及び ／または増殖（特には細胞の増殖）の向上を含む。しかしながら、エフェクター 機能は、天延配列ＷＳＸレセプターに対して生じた抗体との交差反応が可能なエ ピトープまたは抗原性部位を有することを含まない。 “ＯＢ蛋白質”または“単離されたＯＢ蛋白質”の何れかとの関連において使 用される場合に、“生物学的活性”とは、天然配列ＯＢ蛋白質により直接または 間接的に生じるかまたは演じられるエフェクター機能を有することを意味する。 天然配列ＯＢ蛋白質のエフェクター機能は、ＷＳＸレセプター結合及び活性化； 並びにこれらのレセプターを発現する細胞の分化及び／または増殖（例えばチミ ジン取り込みアッセイにより測定されるように）を含む。“生物学的に活性な” ＯＢ蛋白質は、天然配列ＯＢ蛋白質の生物学的活性を有するものである。 天然配列ＯＢ蛋白質の“機能的誘導体”は、天然配列ＯＢ蛋白質と共通する定 性的な生物学的性質を有する化合物である。“機能的誘導体”は、限定されるも のではないが、それらが対応する天然配列ＯＢ蛋白質に共通する生物学的活性を 有する限り、天然配列ＯＢ蛋白質の断片、天然配列ＯＢ蛋白質の誘導体及びそれ らの断片を含む。“誘導体”なる用語は、ＯＢ蛋白質のアミノ酸変異体及びその 共有結合的修飾物の両者を含む。 ＯＢ誘導体との関連において使用される“長い半減期”なる句は、対応する天 然配列ＯＢ蛋白質よりも長い血漿半減期及び／またはより遅い排除期間を有する ＯＢ誘導体に関する。長い半減期の誘導体は、好ましくは天然のＯＢ蛋白質より 少なくとも１．５倍長い、更に好ましくは天然のＯＢ蛋白質より少なくとも２倍 長い、更に好ましくは天然のＯＢ蛋白質より少なくとも３倍長い半減期を有する であろう。天然ＯＢ蛋白質は、好ましくは治療されるべき個体のものである。 “抗原性機能”は、天然配列ＷＳＸレセプターに対して生じる抗体と交差反応 可能なエピトープまたは抗原性部位を有することを意味する。ＷＳＸレセプター の基本的抗原性機能は、天然配列ＷＳＸレセプターに対して生じた抗体に対して 、少なくとも約１０⁶Ｌ／モルの親和性を持って結合することである。通常は、 該ポリペプチドは少なくとも約１０⁷Ｌ／モルの親和性を持って結合する。“抗 原性機能”を定義するために使用した抗体は、フロイント完全アジュバント中に ＷＳＸレセプターを製剤化し、該製剤を皮下的に注射し、免疫応答を抗−ＷＳＸ レセプターまたは抗体の力価がプラトーに達するまで該製剤を腹腔内的に注射す ることにより追加免疫することにより生じさせたウサギポリクローナル抗体であ る。 “ＷＳＸレセプター”または“単離されたＷＳＸレセプター”との関連におい て使用される場合に、“生物学的活性”とは、天然配列ＷＳＸレセプターのエフ ェクター機能を示すか、または共有し、かつ（必須ではないにしても）抗原性機 能を付加的に有してもよいＷＳＸレセプターポリペプチドを意味する。ＷＳＸレ セプターの基本的エフェクター機能は、実施例８に記述されるコロニーアッセイ におけるＣＤ３４＋ヒト臍帯血細胞の増殖を誘導する能力である。 “抗原的に活性な”ＷＳＸレセプターは、ＷＳＸレセプターの抗原性機能を有 し、かつ（必須ではないにしても）エフェクター機能を付加的に有してもよいポ リペプチドを意味する。 ここにおいて“アミノ酸配列同等性の百分率”は、配列を整列させ、必要に応 じてギャップを導入して配列同等性の百分率を最大にし、かついずれの保存的置 換も配列同等性の一部としては考慮せずに、天然配列中の残基と同等な候補配列 のアミノ酸残基の百分率として定義される。候補配列のＮ−末端、Ｃ−末端また は中間の伸長、削除または挿入は、配列同等性または相同性に影響するものとは 解釈されない。 “チミジン取り込みアッセイ”は、ＷＳＸレセプターを活性化する分子のスク リーニングに使用され得る。このアッセイを実施するために、ＩＬ−３依存性Ｂ ａｆ３細胞（Palacios et al.，Cell，41:727-734(1985)）が、実施例４に記述 されるように天然配列ＷＳＸレセプターにより安定的にトランスフェクトされた 。こうして生成されたＷＳＸレセプター／Ｂａｆ３細胞は、５％ＣＯ₂及び空気 中の３７℃加湿された培養器内にて、例えば２４時間ＩＬ−３を与えられない状 態にする。ＩＬ−３飢餓状態に続いて、細胞を、可能性ある作動剤を含む試験試 料（かかる試験試料は場合により希釈される）を含むかまたは含まない９６ウエ ルの培養皿に塗布され、細胞培養機内で２４時間培養される。１μＣｉの³Ｈチ ミジンを含む２０μｌの血清非含有ＲＰＭＩ培地を最後の６−８時間に各ウエル に添加する。次いで、該細胞を９６ウエルのフィルタープレートに採集し、水に て洗浄する。次いでフィルターを、例えば、パッカード・トップ・カウント・マ イクロプレート・シンチレーション・カウンターを使用して計数する。作動剤は 、対照に比較して統計的に有意な³Ｈ取り込みの増加（0.05のＰ値まで）を誘導 することが期待される。好ましい作動剤は、対照の少なくとも２倍の³Ｈ取り込 みの増大を導く。 “単離された”ＷＳＸレセプター核酸分子は、同定され、かつ通常、ＷＳＸレ セプター核酸の天然の供給源に伴う少なくとも１種の夾雑核酸分子から分離され た核酸分子である。単離されたＷＳＸレセプター核酸分子は、天然に見出される 形態または配置とは別のものである。従って、単離されたＷＳＸレセプター核酸 分子は、天然細胞中に存在するＷＳＸレセプター核酸分子とは区別される。しか しながら、ＷＳＸレセプター核酸分子は、例えば核酸分子が天然細胞とは異なる 染色体位置にある場合にも通常にＷＳＸレセプターを発現する細胞中に含まれる ＷＳＸレセプター核酸分子を含む。 “制御配列”なる表現は、特定の宿主中で機能的に連結されたコード配列を発 現するために必要なＤＮＡ配列を指す。原核生物に好適な制御配列は、例えばプ ロモータ、場合によりオペレータ配列、リボソーム結合部位及び多分他の未だ十 分に理解されていない配列を含む。真核性細胞は、プロモータ、ポリアデニル化 シグナル、及びエンハンサーを使用することが知られている。 核酸は、他の核酸配列と機能的に関連して配置される場合に、“機能的に連結 されている”。例えば、先行配列または分泌リーダーのＤＮＡは、それがポリぺ プチドの分泌に関与する先行蛋白質として発現される場合にボリペプチドのＤＮ Ａに機能的に連結され；またプロモータ若しくはエンハンサーは、それが配列の 転写に影響する場合にコード配列に対して機能的に連結され：またリボソーム結 合部位は、それが翻訳を促進するように位置する場合にコード配列に機能的に連 結されている。一般的に、“機能的に連結”とは、ＤＮＡ配列が連続し、分泌リ ーダーの場合には連続かつ読み取りの位相内に連結されることを意味する。しか しながら、エンハンサーは連続する必要はない。連活は、慣用の制限部位におい ての連結により達成される。そのような部位が存在しない場合には、合成オリゴ ヌクレオチドアダプタまたはリンカーが慣用の方法により使用される。 ここにおいて使用されるように、“細胞”、“細胞系”及び“細胞培養物”な る表現は、可換的に使用され、全てのこのような表記は子孫の細胞も含む。従っ て、“形質転換体”及び“形質転換細胞”の用語は、最初の原因細胞及び形質転 換数に関わりなくそれから誘導される培養物を含む。また全ての子孫は、計画的 または不慮の変異のためにＤＮＡ含量において正確に同等である必要はないもの と理解される。元の形質転換細胞についてスクリーニングしたのと同様な機能及 び生物学的活性を有する変異子孫細胞が含まれる。別の指定が望まれる場合には 内容から明確となるであろう。 抗体”なる用語は、最も広い意味において使用されており、特定的にはそれら が所望の生物学的活性を有する限りにおいてモノクローナル抗体、ポリエピトー プ特異性を持った抗体組成物、２重特異的抗体、ジアボディ、及び単鎖分子、並 びに抗体断片（例えば、Ｆａｂ、Ｆ(ａｂ’)₂及びＦｖ）を包含する。 ここにおいて使用される“モノクローナル抗体”なる用語は、実質的に均質な 抗体、すなわち母集団を含むそれぞれの抗体がわずかに存在してもよい天然に生 じ得る変異を除いて同等であるような母集団から得られる抗体を指す。モノクロ ーナル抗体は高度に特異的であり、単一の抗原性部位を指向する。更に、典型的 には異なる決定基（エピトープ）に向けられた異なる抗体を含む慣用の（ポリク ローナル）抗体調製物とは対照的に、各モノクローナル抗体は抗原上の単一の決 定基に向けられている。それらの特異性に加えて、モノクローナル抗体は他のイ ムノグロブリンで夾雑していないハイブリドーマ培養物により合成される点にお いても有利である。“モノクローナル”なる修飾語は、実質的に均質な抗体の母 集団から得られ、いずれかの特定方法による産生を要求するものとも解されない 抗体の特徴を示す。例えば、本発明に従って使用されるべきモノクローナル抗体 は、Kohler et al.，Nature 256:495(1975)により最初に記述されたハイブリド ーマ法により調製されてよく、あるいは組換えＤＮＡ法により調製されてもよい 。“モノクローナル抗体”は、例えばClackson et al.，Nature 352:624-628(19 91)及びMarks et al.，J．Mol．Biol．222:581-597(1991)に記述される技術を使 用してファージ抗体ライブラリーからも単離されうる。 ここにおけるモノクローナル抗体は、特定的には“キメラ”抗体（イムノグロ ブリン）を含み、その重及び／または軽鎖の一部は特定の種から誘導された抗体 の対応する配列に同等、若しくは相同的であるか、または特定の抗体種若しくは 亜種に属するものであり、その一方で鎖の残る部分は他の種から誘導された抗体 の対応する配列に同等、若しくは相同的であるか、または他の抗体種若しくは亜 種に属するものであり、加えて、それらが所望の生物学的活性を示す限りこのよ うな抗体の断片も含む（Cabilly et al.，前出文献；Morrison et al.，Proc．N atl．Acad．Sci．USA，81:6851-6855(1984)）。 非ヒト（例えばネズミ）抗体の“ヒト化”形態は、非ヒトイムノグロブリンか ら誘導された最小の配列を含むキメラ性イムノグロブリン、イムノグロブリン鎖 、またはその断片（Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’Ｆ（ａｂ’）₂若しくは抗体の他の 抗原結合配列等）である。ほとんどの部分についてヒト化抗体はヒトイムノグロ ブリン（受容抗体）であり、そのレセプターの相補性決定領域（ＣＤＲ）の残基 は、所望の特異性、親和性、及び容量を持ったマウス、ラットまたはウサギ等の 非ヒト種（提供側抗体）のＣＤＲの残基により置換されている。ある例において は、ヒトイムノグロブリンのＦｖフレームワーク領域（ＦＲ）は、対応する非ヒ ト残基により置換されている。更に、ヒト化抗体は、受容抗体にも、あるいは導 入されるＣＤＲまたはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでもよい 。これらの修飾は、抗体の性能を更に洗練させるかまたは最適化させるために行 われる。一般的に、ヒト化抗体は実質的に全て、または少なくとも１つ、典型的 には２つの可変領域を有し、全てまたは実質的に全てのＣＤＲ領域が非ヒトイム ノグロブリンのものに対応し、また全てまたは実質的に全てのＦＲ領域がヒトイ ムノグロ ブリンのものである。ヒト化抗体は、最適にはイムノグロブリンの定常領域（Ｆ ｃ）、典型的にはヒトイムノグロブリンのものの少なくとも一部をも含んでよい 。更に詳細には、Jones et al.，Nature 321:522-525(1986)；Reichmann et al. ,Nature 332:323-329(1988);及びPresta，Curr．Op．Struct．Biol．2:593-596( 1992)参照。ヒト化抗体は、抗体の抗原結合部位が、マカクザルを興味ある抗原 にて免疫して生成された抗体から誘導された、Primatized^TM抗体を含む。 ここにおいて使用される場合に、“超可変領域”なる用語は、抗原結合につい て責任を負った抗体のアミノ酸残基を指す。超可変領域は、“相補性決定領域” または“ＣＤＲ”からのアミノ酸残基（すなわち、軽鎖可変領域における残基２ ４−３４（Ｌ１）、５０−５６（Ｌ２）及び８９−９７（Ｌ３）並びに重鎖可変 領域における３１−３５（Ｈ１）、５０−６５（Ｈ２）及び９５−１０２（Ｈ３ ）;Kabat et al.，Sequence of Proteins of Immunological Interest．%th Ed. Public Health Service，National Institutes of Health，Bethesda，MD．(199 1)）及び／または“超可変ループ”（すなわち、軽鎖可変領域の残基２６−３２ （Ｌ１）、５０−５２（Ｌ２）及び９１−９６（Ｌ３）並びに重鎖可変領域にお ける２６−３２（Ｈ１）、５３−５５（Ｈ２）及び９６−１０１（Ｈ3）；Choth ia and Lesk J．Mol．Biol．196:901-917(1987)）を含む。“フレームワーク” または“ＦＲ”残基は、ここに定義される超可変領域の残基以外の可変領域残基 である。 “ヒトにおいて非免疫性”とは、生理学的に許容される担体中の治療的に有効 量の興味あるポリペプチドを、ヒトの適切な組織に接触させた場合に、適切な潜 在期間（例えば８〜１４日）の後に、興味あるポリペプチドの第２回の投与にお いて、該興味あるポリペプチドの対して感受性または抵抗性の状態が示されない ことを意味する。 “作動性抗体”は、天然配列ＷＳＸレセプターを活性化しうる抗体を意味する 。ここにおいて特に興味ある作動性抗体は、天然に生じるＷＳＸリガンド、ＯＢ 蛋白質の生物学的性質の一部またはそれ以上（例えば全て）を模倣するものであ る。好ましい実施態様において、作動性抗体は、約２のオーダーの強度内、好ま しくは約１のオーダーの強度内のＯＢ蛋白質の定量的生物学的性質を有する。作 動性 抗体はＷＳＸレセプターに結合して活性化し、これによってＷＳＸレセプターを 発現する細胞（例えばＷＳＸレセプター変異体13.2）の増殖及び／または分化及 び／または成熟及び／または生存を剌激する。本発明のこの実施態様において、 作動性抗体は、細胞表面にＷＳＸレセプターを発現する造血性先駆体細胞の増殖 及び／または分化を向上する；リンパ性血液細胞系の増殖及び／または分化を向 上する；骨髄性血液細胞系の増殖及び／または分化を向上する；及び／または赤 血球性血液細胞系の増殖及び／または分化を向上するものであり得る。作動性抗 体は、ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡにおいてＷＳＸレセプター細胞外領域を有するキメ ラレセプターに結合して作動的活性を示してもよい。作動性抗体は、シグナルＷ ＳＸレセプター（上記参照）を使用するチミジン取り込みアッセイにおいて、³ Ｈ摂取を向上し；肥満動物（例えばｏｂ／ｏｂマウス）において体重及び／また は脂肪蓄積重量及び／または食物摂取を減少させ；脂肪細胞においてCa²⁺流入に 影響を与え；及び／またはＯＢ蛋白質の顆粒のシグナル分子を活性化させ得る。 “中和抗体”は、天然配列ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のエフェクター 機能を阻害するかまたは顕著に低減しうるものである。例えば、中和抗体は、チ ミジン取り込みアッセイまたはＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡにおいて測定されるように ＷＳＸリガンドによるＷＳＸレセプター活性化を阻害または低減しうる。 ここにおいて使用されるように、“細胞毒物質”なる用語は、細胞の機能を阻 害または妨害し、及び／または細胞の破壊をもたらす物質を指す。該用語は、放 射性同位体（例えば、Ｉ¹³¹、Ｉ¹²⁵、Ｙ⁹⁰及びＲｅ¹⁸⁶）、化学療法剤、細菌、 カビ、植物または動物由来の酵素的に活性なトキシン等のトキシンを包含するこ とを意図する。 “化学療法剤”は、腫瘍治療に有用な化学的化合物である。化学療法剤の例は 、アドリアマイシン、ドキソルビシン、５−フルオロウラシル、シトシン・アラ ビノシド（“Ａｒａ−Ｃ”）、シクロホスファミド、チオテパ、タキソテレ（ド セタキセル）、ブスルファン、サイトキシン、タキソール、メトトレキセート、 シスプラチン、メルファラン、ビンブラスチン、ベロマイシン、エトプシド、イ フォスファミド、ミトマイシンＣ、ミトキサントロン、ビンクレスチン、ビノレ ルビン、カルボプラチン、テニポシド、ダウノマイシン、カルミノマイシン、ア ミ ノプテリン、ミトマイシン類、エスプラミシン類（米国特許4,675,187参照）、 メルファラン及び他の関連する窒素性マスタード類を含む。 本出願において使用されるように“プロドラッグ”なる用語は、医薬的に活性 な物質の前駆体または誘導体形態を指し、親薬剤に比較して腫瘍細胞に対する細 胞毒性が低く、酵素的に活性化されるかまたはより活性な親の形態に変換されう る。例えば、Wilman，“Prodrugs in Cancer Chemotherapy”Biochemical Socie ty Transactions，14，pp．375-382，615th Meeting Belfast(1986)及びStellae t al.，“Prodrugs: A Chemical Approach to Targeted Drug Delivery,”Direc ted Drug Delivery，Borchardt et al.,(ed.)，pp．247-267，Human Press(1985 )参照。本発明のプロドラッグは、限定されるものではないが、より活性な細胞 毒性遊離薬剤に変換され得るリン酸−含有プロドラッグ、チオリン酸−含有プロ ドラッグ、硫酸−含有プロドラッグ、ペプチド−含有プロドラッグ、Ｄ−アミノ 酸−修飾プロドラッグ、グリコシル化プロドラッグ、β−ラクタム−含有プロド ラッグ、場合により置換されるフェノキシアセタミド−含有プロドラッグ、場合 により置換されるフェニル−含有プロドラッグ、５−フルオロシトシン及び５− フルオロウリジンプロドラッグを含む。本発明において使用するためにプロドラ ッグの形態に誘導されうる細胞毒性薬剤の例は、限定されるものではないか、上 記の化学療法剤を含む。 ＷＳＸレセプター及び／またはＯＢ蛋白質の“拮抗剤”は、ＷＳＸレセプター またはＯＢ蛋白質の結合及び／または活性化を阻止または妨害する分子である。 このような分子は、例えば、ここに開示されるチミジン取り込みアッセイにおい て、ＯＢ蛋白質によるＷＳＸレセプターの活性化を競合的に阻害する能力につい てスクリーニングされうる。このような分子の例は：ＷＳＸレセプターＥＣＤ； ＷＳＸレセプターイムノアドヘシン；ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質に対す る中和抗体；低分子及びペプチド拮抗剤：及びＷＳＸレセプターまたはｏｂ遺伝 子に対するアンチセンスヌクレオチドを含む。 “細胞増殖を向上”なる句は、インビトロまたはインビボの何れかにおいて、 非処理細胞に比較して細胞の生育及び／または再生の程度を増大する工程を包含 する。細胞培養物中における細胞増殖の増加は、興味ある分子に対する暴露の前 後における細胞数の計数により検出されうる。増殖の程度は、密集の程度の顕微 鏡的検査により定量化されうる。細胞増殖は、ここに記述されるチミジン取り込 みアッセイを使用しても定量化されうる。 “細胞分化を向上”とは、元の細胞とは異なる１種以上の特徴または機能の獲 得または所有の程度の増加作用を意味する（細胞の特化）。これは細胞のフェノ タイプにおける変化のスクリーニングにより検出されうる（例えば、細胞の形態 学的変化を同定する）。 “造血性先駆体細胞”または“初原的造血性細胞”は、より専心的または成熟 した細胞型を形成するように分化可能なものである。 “リンパ性血液細胞系”は、リンパ細胞（Ｂ−細胞またはＴ−細胞）を形成す るように分化可能な造血性先駆体細胞である。同様に、“リンパ形成”は、リン パ細胞形成である。 “赤血球細胞系”は、赤血球細胞（赤血球）を形成するように分化可能な造血 性先駆体細胞であり、“赤血球形成”は、赤血球の形成である。 ここにおける目的について“骨髄性血液細胞系”なる句は、上記に定義される リンパ性及び赤血球性血液細胞系以外の全ての造血性先駆体細胞を包含し、“骨 髄形成”は、血液細胞（リンパ細胞及び赤血球細胞を除く）の形成に関与する。 “ＣＤ３４＋細胞母集団”は、造血性幹細胞について富裕化されている。ＣＤ ３４＋細胞母集団は、例えば臍帯血または骨髄から得られる。ヒト臍帯血ＣＤ３ ４＋細胞は、Miltenyi（カリフォルニア）により販売される免疫磁性ビーズを、 製造者の指示に従って使用して選択されうる。 “生理学的に許容される”担体、賦形剤、または安定化剤は、採用される投与 量または濃度においてそれに曝される細胞または哺乳類に対して非毒性のもので ある。しばしば、生理学的に許容される担体は、水性ｐＨ緩衝溶液である。生理 学的に許容される担体の例は、リン酸塩、クエン酸塩及び他の有機酸等の緩衝剤 ；アスコルビン酸を含む抗酸化剤；低分子量（約１０残基未満）のポリペプチド ；血清アルブミン、ゼラチンまたはイムノグロブリン等の蛋白質；ポリビニルピ ロリドン等の親水性ポリマー；グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニ ンまたはリジン等のアミノ酸；グルコース、マンノース、またはデキストリン等 を含むモノサッカライド、ジサッカライド及び他の炭水化物；ＥＤＴＡ等のキレ ート剤；マンニトールまたはソルビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の塩 形成対イオン；及び／またはTween、Pluronicsまたはポリエチレングリコール（ ＰＥＧ）等の非イオン性界面活性剤を含む。 ここにおいて使用される“救出レセプター結合エピトープ”なる用語は、Ｉｇ Ｇ分子のインビボにおける半減期を増大させるＩｇＧ分子（例えば、ＩｇＧ１、 ＩｇＧ２、ＩｇＧ３及びＩｇＧ４）のＦｃ領域のエピトープを指す。例示的救出 レセプター結合エピトープ配列は、ＨＱＮＬＳＤＧＫ（配列番号：３９）、ＨＱ ＮＩＳＤＧＫ（配列番号：４０）、ＨＱＳＬＧＴＱ（配列番号：４１），ＶＩＳ ＳＨＬＧＱ（配列番号：４２）及びＰＫＮＳＳＭＩＳＮＴＰ（配列番号：４３） を含む。 “サイトカイン”なる用語は、細胞間媒体として他の細胞に作用するある細胞 母集団から放出される蛋白質についての一般的用語である。このようなサイトカ インの例は、リンホカイン類、モノカイン類、及び伝統的ポリペプチドホルモン 類である。サイトカインの内に含まれるものは、ＯＢ蛋白質；ヒト成長ホルモン 、Ｎ−メチオニルヒト成長ホルモン、及びウシ成長ホルモン等の成長ホルモン類 ；副甲状腺ホルモン；チロキシン；インスリン；プロインスリン；リラキシン； プロリラキシン；卵胞剌激ホルモン（ＦＳＨ）、甲状腺剌激ホルモン（ＴＳＨ） 、黄体形成ホルモン（ＬＨ）等の糖蛋白ホルモン類；肝細胞成長因子；線維芽細 胞成長因子；プロラクチン；胎盤性ラクトゲン；腫瘍壊死因子−α及び−β；ミ ュラー阻害物質；マウスゴナドトロピン−会合ペプチド；インヒビン；アクチビ ン；血管内皮成長因子；インテグリン；トロンボポイエチン（ＴＰＯ）；ＮＧＦ −β等の神経成長因子；血小板成長因子；ＴＧＦ−α及びＴＧＦ−β等のトラン スフォーミング成長因子（ＴＧＦ）；インスリン様成長因子−Ｉ及び−II；エリ スロポイエチン（ＥＰＯ）；骨誘導因子；インターフェロンーα、−β及びーγ 等のインターフェロン；マクロファージ−ＣＳＦ（Ｍ−ＣＳＦ）、顆粒球−マク ロファージ−ＣＳＦ（ＧＭ−ＣＳＦ）及び顆粒球−ＣＳＦ（Ｇ−ＣＳＦ）等のコ ロニー刺激因子（ＣＳＦ）；ＩＬ−１、ＩＬ−１α、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ −４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１１、ＩＬ − １２等のインターロイキン（ＩＬ）；並びに白血病阻害因子（ＬＩＦ）及びキッ トリガンド（ＫＬ）等を含む他のポリペプチド因子等である。ここにおいて使用 されるように、サイトカインなる用語は天然供給源由来または、組換え細胞培養 物由来の蛋白質、及び天然配列サイトカインの生物学的活性同等物を含む。 “細胞系特異的サイトカイン”は、造血性のカスケードの比較的特化した細胞 に作用し、単一系統の血液細胞における展開を生じる。このようなサイトカイン の例は、ＥＰＯ、ＴＰＯ及びＧ−ＣＳＦを含む。 “処置”は、治療的処置及び予防的または防止手段の両者を指す。処置を必要 とするものは、すでに疾患を有するもの並びに疾患が防止されなければならない ものを含む。 “肥満”なる用語は、過剰な体脂肪を伴った過剰重量の症状を指す。ある個人 の望ましい体重は、性、身長、年齢、全体型等を含む多くの因子に依存する。所 定の個人の最適体重の決定は、通常の医師の技術範囲に充分にある。 治療のための“哨乳動物”は、ヒト、イヌ、ウマ、ネコ、ウシ等の家庭及び農 場の動物、及び動物園、スポーツまたはペット用の動物を含む哺乳類に分類され る何れかの動物を指す。好ましくは哺乳動物はヒトである。 “固相”とは、興味ある試薬（例えばＷＳＸレセプターまたはそれに対する抗 体）か付着しうる非−水性担体を意味する。固相の例は、ガラス（調節された多 孔質ガラス）、ポリサッカライド（例えば、アガロース）、ポリアクリルアミド 、ポリスチレン、ポリビニルアルコール及びシリコーンにより部分的または全体 が形成されるものを含む。ある実施態様において、内容に依存するが、固相はア ッセイプレートのウエルを含むことが出来、他の態様ではそれは精製カラム（例 えば、アフィニティクロマトグラフィーカラム）である。この用語は、米国特許 第4,275,149号に記述されるような、分散的粒子の非連続的固相も含む。 II．発明実施の態様 本発明はＷＳＸレセプターの発見に基づく。ここに記述される実験は、この分 子が、造血性細胞の増殖及び／または分化の向上に役割を演じると思われるサイ トカインレセプターであることを例示している。特に、このレセプターは、富裕 化したヒト幹細胞母集団に存在することが見出されており、而して作動性抗体等 のＷＳＸリガンドが、造血性幹細胞／先駆体細胞の増殖刺激に使用され得ること を示している。このレセプターの他の用途は、以下の検討から明らかになろう。 記述は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質が如何にして調製されるかについて 続けられる。 ａ．ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の調製 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の産生に好適な技術は、この分野で周知で あり、該ポリペプチドの内因性供給源、ペプチド合成（ペプチド合成装置を使用 して）及び組換え技術（またはこれらの技術の組み合わせ）から、ＷＳＸレセプ ターまたはＯＢ蛋白質を単離することを含む。ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白 質の産生のための好適な技術は、如何に記述されるように組換え技術である。 下記の検討のほとんどは、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質核酸を含むベク ターにより形質転換された細胞の培養、及び該細胞培養物からのポリペプチドの 回収によるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の組換え産生に関連する。本発明 のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質が、１９９１年５月１６日発行のＷＯ９１ ／０６６６７に示されるように相同的組換えによって産生されることも、更に想 像される。 略述すれば、この方法は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質−コード遺伝子 を含む一次ヒト細胞を、増幅可能な遺伝子（ジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦ Ｒ）または下記に議論される他のもの）及びＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 遺伝子のコード領域の遺伝子座におけるＤＮＡ配列に相同性の少なくとも１５０ ｂｐの長さの少なくとも１個のフランキング領域を含む構築物（すなわちベクタ ー）により形質転換し、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質遺伝子の増幅を与え ることを含む。増幅可能な遺伝子は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質遺伝子 の発現を妨害しない部位でなければならない。形質転換は、構築物が一次細胞の ゲノムに相同的に組み込まれて、増幅可能領域を定義するように実施される。 次いで、構築物を含む一次細胞は、増幅可能な遺伝子または構築物内の他のマ ーカーによって選択される。マーカー遺伝子の存在は、該構築物の宿主ゲノム中 の存在及び組み込みを立証する。選択が二次宿主において行われるため、一次細 胞の更なる選択は必要とされない。所望により、相同的組換えの事象の発生は、 ＰＣＲの採用、及び、正しい相同的組み込みによるＤＮＡが存在し、そのような 断片を含む細胞のみが増加した場合における、得られた増幅ＤＮＡ配列の配列決 定または適切な長さのＰＣＲ断片の測定の何れかにより決定されうる。また、所 望により、この時点において選択された細胞は、該細胞を適当な増幅試薬（増幅 可能な遺伝子がＤＨＦＲの場合にはメトレキセート）により圧力をかけて増幅し 、標的遺伝子の複数コピーを得ることもできる。しかしながら、好ましくは増幅 工程は、下記の第二の形質転換の後まで行われない。 選択工程の後に、増幅可能領域の全体を含むように十分大きいゲノムのＤＮＡ 部分が、選択された一次細胞から単離される。次いで、第二の哺乳動物発現宿主 細胞が、これらのケノム性ＤＮＡ部分により形質転換され、またクローニングさ れ、増幅可能領域を含むクローンが選択される。次いで、一次細胞において既に 増幅されていない場合に、増幅可能領域が増幅試薬によって増幅される。再左右 的に第二の発現宿主細胞は、この時点でＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質を含 む増幅可能領域の複数コピーを含み、該遺伝子を発現し、該蛋白質が産生される ように生育される。 ｉ．ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードする遺伝子の単離 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードするＤＮＡは、ＷＳＸレセプター またはＯＢ蛋白質ｍＲＮＡを有し、かつそれを検出可能な水準で発現すると考え られる組織から調製されるｃＤＮＡライブラリーから得ることが出来る。従って 、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質ＤＮＡは、哺乳動物胎児性肝臓から調製さ れたｃＤＮＡライブラリーから都合よく得られうる。ＷＳＸレセプターまたはＯ Ｂ蛋白質−コード遺伝子は、ゲノムライブラリーまたはオリゴヌクレオチド合成 からも得られ得る。 ライブラリーは、興味ある遺伝子またはそれによりコードされる蛋白質を同定 すべく設計されたブローブ（ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質に対する抗体ま たは約２０−８０塩基のオリゴヌクレオチド）を用いてスクリーニングされる。 ｃＤＮＡまたはケノムライブラリーの選択されたプローブを用いるスクリーニン グは、Sambrook et al.，Molecular Cloning: A Laboratory Manual(New York:C old Spring Harbor Laboratory Press)の１０−１２章に記述される標準的方法 を使用して行われうる。ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードする遺伝子 を単離するための別の手段は、Sambrook et al.,前出文献の14 節に記述される ＰＣＲ方法を使用することである。 本発明の実施の好適な方法は、種々のヒト組織、好ましくはヒト胎児性肝臓由 来のｃＤＮＡをスクリーニングするために、注意深く選択されたオリゴヌクレオ チド配列を使用することである。プローブとして選択されたオリゴヌクレオチド 配列は、擬陽性が最小化されるように充分な長さ及び充分な明確さでなければな らない。 該オリゴヌクレオチドは、スクリーニングされるライブラリー中のＤＮＡに対 するハイブリッド形成を検出可能とすべく、標識されなければならない。標識の 好ましい方法は、この分野で周知のようにオリゴヌクレオチドを放射標識するた めの、ポリヌクレオチドキナーゼを用いる３２Ｐ−標識ＡＴＰを使用することで ある。しかしながら、限定されるものではないが、ビオチニル化または酵素標識 を含む別の方法が、オリゴヌクレオチドの標識のために使用されてもよい。 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のアミノ酸配列変異体は、適当なヌクレオ チド変化をＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質ＤＮＡに導入するか、または所望 のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質を合成することにより調製される。このよ うな変異体は、図２Ａ−Ｂに示されるＷＳＸレセプター変異体またはZhang et a l.のヒトＯＢ蛋白質等の天然に生じるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のアミ ノ酸配列の内部、または一方若しくは両方の末端における残基の、挿入、置換、 及び／または特定の削除を示す。好ましくは、これらの変異体は、成熟配列の内 部、一方若しくは両方の末端における挿入及び／または置換、及び／またはＷＳ ＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のシグナル配列の内部、一方若しくは両方の末端 における挿入、置換及び／または特定の削除を示す。最終構築物が、ここに定義 される所望の生物学的活性を有する限り、挿入、置換及び／または特定の削除の 何れかの組み合わせが、最終構築物に到達するように作成される。アミノ酸の変 化は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の翻訳後修飾工程も変化させ、グリコ シル化部位の数及び位置の変化、膜結合特性の改変、及び／または挿入、削除、 若しくはＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の先行配列に変化を与えることによ りＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の細胞内位置に改変を与える。 上述の天然配列の変化は、米国特許第5,364,934号に示される保存的及び非保 存的変異生成についての技術及びガイドラインの何れかを使用して行われうる。 これらは、オリゴヌクレオチド−媒介（部位−特異的）変異生成、アラニン走査 、及びＰＣＲ変異生成を含む。例えば、変化、付加または削除すべくアミノ酸を 選択する指導についてはその表１、及びその表の周囲の検討も参照されたい。 ii．複製可能なベクターへの核酸の挿入 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードする核酸（例えばｃＤＮＡまたは ケノムＤＮＡ）は、更なるクローニング（ＤＮＡの増幅）または発現のために複 製可能なベクターに挿入される。多くのベクターが利用可能である。ベクターの 成分は、限定されるものではないが、一般に次の１種以上を含む：シグナル配列 、複製のオリジン、１種以上のマーカー遺伝子、エンハンサー要素、プロモータ ー、及び転写停止配列。 （１）シグナル配列成分 本発明のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質は、組換え的に直接に産生されう るのみならず、好ましくはシグナル配列、または成熟蛋白質若しくはポリペプチ ドのＮ−末端に特異的切断部位を有する他のポリペプチドである異種的ボリペプ チドとの融合ポリペプチドとしても産生されうる。一般的に、シグナル配列は、 ベクターの成分であってよく、あるいはベクターに挿入されるＷＳＸレセプター またはＯＢ蛋白質ＤＮＡの一部であってもよい。選択される異種的シグナル配列 は、好ましくは宿主細胞により認識され、処理（すなわち、シグナルペプチダー ゼにより切断）されるものである。天然ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質シグ ナル配列を認識及び処理しない原核性宿主細胞については、シグナル配列は、例 えばアルカリホスファターゼ、ペニシリナーゼ、ｌｐｐ、または熱安定性エンテ ロトキシンIIリーダーからなる群から選択される原核細胞性シグナル配列に置換 される。酵母分泌のためには、天然シグナル配列は、例えば酵母インベルターゼ リーダー、α因子リーダー(Saccharomyces及びKluyveromycesα−因子リーダー を含む、後者は１９９１年４月２３日発行の米国特許第5,010,182号に記述され ている）、またはC．albicansグルコアミラーゼリーダー（１９９０年４月４日 発行のEP 362,179号）または１９９０年１１月１５日発行のW090/13646に記述さ れるシグナルにより置換されてよい。哺乳動物細胞の発現において、天然シグナ ル配列（例えば、インビボにおいてＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のヒト細 胞からの分泌を通常支配するＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質先行配列）が満 足できるものであるが、他の動物のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質由来のシ グナル配列、同じまたは関連する種の分泌ポリペプチド由来のシグナル配列等の 他の哺乳動物シグナル配列、並びに例えば単純ヘルペスｇＤシグナル等のウイル ス性分泌リーダーも好適であり得る。 このような前駆領域についてのＤＮＡは、成熟ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋 白質をコードするＤＮＡに読枠内にて連結される。 （２）複製成分のオリジン 発現及びクローニングベクターの両者は、１種以上の選択される宿主細胞内で 複製を可能とする核酸配列を含む。一般的に、クローニングベクター内でこの配 列は、宿主の染色体ＤＮＡとは独立してベクターの複製を可能とするもので、複 製のオリジンまたは自動的複製配列を含んでいる。この配列は、種々の細菌、酵 母及びウイルスについて周知である。プラスミドｐＢＲ３２２由来の複製オリジ ンは、ほとんどのグラム陰性細菌に好適であり、２μプラスミドオリジンは酵母 に好適であり、種々のウイルスオリジン（ＳＶ４０、ポリオーマ、アデノウイル ス、ＶＳＶまたはＢＰＶ）は、ベクターを哺乳動物細胞中にクローニングするた めに有用である。一般に、複製成分のオリジンは、哺乳動物発現ベクターについ ては必要ではない（ＳＶ４０オリジンは、早期プロモーターを含むことのみの理 由で典型的には使用される）。 ほとんどの発現ベクターは、“シャトル”ベクターであり、即ちそれらは少な くとも１種の生物において複製可能であり、他の生物に発現のためにトランスフ ェクトされうる。例えば、ベクターはＥ．ｃｏｌｉ中でクローニングされ、次い でそれは宿主細胞染色体と独立して複製することは出来ないか、同じベクターが 酵母または哺乳動物細胞に発現のためにトランスフェクトされる。 ＤＮＡは、宿主ゲノム中への挿入によっても増幅されうる。このことば、例え ば宿主としてBacillus種を使用し、BacillusゲノムＤＮＡに見出される配列に相 補的なＤＮＡ配列をベクター中に含ませることにより達成される。Bacillusのこ のベクターによるトランスフェクションは、ゲノムとの相同的組換え及びＷＳＸ レセプターまたはＯＢ蛋白質ＤＮＡの挿入を生じる。しかしながら、ＷＳＸレセ プターまたはＯＢ蛋白質をコードするゲノムＤＮＡの回収は、制限酵素消化がＷ ＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質ＤＮＡの切断に要求される為、外部的に複製さ れるベクターよりも複雑である。 （３）選択遺伝子成分 発現及びクローニングベクターは、選択可能マーカーとも称される選択遺伝子 を含まなければならない。この遺伝子は、選択培養培地中で形質転換された宿主 細胞が生存または生育するために必要な蛋白質をコードする。選択遺伝祖を含む ベクターにより形質転換されていない宿主細胞は、培養培地中で生存しないであ ろう。典型的な選択遺伝子は、（ａ）例えばアンピシリン、ネオマイシン、メト トレキセートまたはテトラサイクリン等の抗生物質または他のトキシンに対する 抵抗性を与える、（ｂ）栄養素要求株の欠陥を補充する、あるいは（ｃ）例えば Bacilliに対するＤ−アラニンラセミ化酵素をコードする遺伝子等、複合媒体か ら入手できない重要な栄養素を供給する蛋白質をコードする。 選択スキームの一例は、宿主細胞の生育を阻止する薬剤を使用する。異種遺伝 子により成功裏に形質転換されたそれらの細胞は、薬剤耐性を付与する蛋白質を 産生し、選択処方を生き延びる。このような主要な選択の例は、薬剤ネオマイシ ン、マイコフェノール酸及びハイグロマイシンを使用する。 哺乳動物細胞についての好適な選択マーカーの別の例は、ＤＨＦＲまたはチミ ジンキナーゼ等のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質核酸を取り上げるために細 胞成分の同定を可能とするものである。哺乳動物細胞形質転換体は、形質転換体 のみがマーカーの取り込みによって固有に生存に適合する選択圧の下におかれる 。選択圧は、培地中の選択試薬の濃度が順次変化し、これによって選択遺伝子と ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードするＤＮＡの両者の増幅をもたらす 条件下で、形質転換体を培養することにより付加される。増幅は、生育のために 重要な蛋白質の産生に対する要求がより大きい遺伝子が、組換え細胞の引き続く 世代の染色体中で、縦列に反復される工程である。増大した量のＷＳＸレセプタ ーまたはＯＢ蛋白質が、増幅ＤＮＡから合成される。増幅可能な遺伝子の他の例 は、メタロチオネイン−Ｉ及び−II、好ましくは霊長類メタロチオネイン遺伝子 、アデノシン、オルニチンデカルボキシラーゼ等を含む。 例えば、ＤＨＦＲ選択遺伝子により形質転換された細胞は、全ての形質転換体 をＤＨＦＲの競合的拮抗剤であるメトレキセート（Ｍｔｘ）を含む培養培地中で 培養することにより最初に同定される。天然型のＤＨＦＲが採用される場合に適 切な宿主細胞は、Urlaub et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 77:4216(1980) により記述されるように調製され、繁殖された、ＤＨＦＲ欠損のモルモット卵巣 （ＣＨＯ）細胞である。次いで形質転換細胞は、増大された濃度のメトトレキセ ートに曝される。これは、ＤＨＦＲ遺伝子の複数コピーの合成を誘導し、また、 これに付随してＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードするＤＮＡ等の発現 ベクターを含む他のＤＮＡの複数コピーの合成を誘導する。この増幅技術は、例 えばＭｔＸに対して高度に抵抗性の変異ＤＨＦＲ遺伝子を採用する場合に（EP 1 17,060）、内因性のＤＨＦＲの存在に関わらず、他の適当な宿主、例えばATCC N o. CCL61 CH0-K1を用いて使用可能である。 別法として、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質、天然型ＤＨＦＲ蛋白質及び アミノグリコシド３’−ホスホトランスフェラーゼ（ＡＰＨ）等の他の選択可能 なマーカーをコードするＤＮＡ配列により形質転換または同時形質転換された宿 主細胞（特には内因性ＤＨＦＲを含む天然型宿主）は、例えばカナマイシン、ネ オマイシン、またはＧ４１８等のアミノグリコシド抗生物質等の選択可能なマー カーに対する選択試薬を含む培地中で、細胞育成して選択されうる。米国特許第 4,965,199号参照。 公募中で使用するための好適な選択遺伝子は、酵母プラスミドＹＲｐ７二存在 するｔｒｐI遺伝子である（Stinchcomb et al．Nature 282:39(1979)）。ｔｒｐ Ｉ遺伝子は、例えばATCC No．44076またはPEP4-1等のトリプトファン中での生育 能力を欠く酵母変異株のための選択マーカーを与える。Jones，Genetics 85:12( 1977)。次いで、酵母宿主細胞ゲノム中のｔｒｐＩ傷害の存在は、トリプトファ ンの不在下での生育による形質転換検出のための有効な環境を提供する。同様に 、Ｌｅｕ２−欠損酵母株(ATCC 20,622及び38,626)は、Ｌｅｕ２遺伝子を保持す る既知のプラスミドにより補完される。 加えて、1.6μｍ環状プラスミドｐＫＤ１から誘導されるベクターは、Kluyver omyces酵母の形質転換に使用され得る。Bianchi et al.，Curr．Genet．12:185( 1987)。更に最近には、組換えウシキモシンの大規模製造の為の発現系が、K．la ctisについて報告された。Van den Berg，Bio/Technology 8:135(1990)。Kluyve romycesの工業用株による成熟組換えヒト血清アルブミンの分泌用安定複数コピ ー発現ベクターも開示されている。Fleer et al.，Bio/Tschnology 9:968-975(1 991)。 （４）プロモーター成分 通常、発現及びクローニングベクターは、宿主生物により認識され、ＷＳＸレ セプターまたはＯＢ蛋白質核酸に機能的に連結されるプロモーターを含む。プロ モーターは、構造遺伝子の開始コドンの上流（５’）（一般に約１００〜１００ ０ｂｐ内）に位置する非翻訳配列であり、機能的に連結されるＷＳＸレセプター またはＯＢ蛋白質核酸配列等の特定の核酸配列の転写及び翻訳を制御する。この ようなプロモーターは、典型的には２つの種類、誘導性及び構成性に分けられる 。誘導性プロモーターは、培養条件の何らかの変化、例えば栄養素の存在または 不在、または温度変化に応答して、その制御下で増大したレベルのＤＮＡからの 転写を開始するプロモーターである。この時点において、種々の可能性ある宿主 により認識される多くのプロモーターが周知である。これらのプロモーターは、 制限酵素消化により供給源のＤＮＡからプロモーターを除去し、単離されたプロ モーターをベクター中に挿入することにより、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白 質 ーコードＤＮＡに機能的に連結される。天然ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 プロモーター配列及び多くの異種プロモーターの両者が、ＷＳＸレセプターまた はＯＢ蛋白質ＤＮＡの直接増幅及び／または発現に使用され得る。しかしながら 、天然のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質プロモーターに比べて、異種プロモ ーターは一般により大きい転写及びＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のより多 い収量を可能とするため、異種プロモーターが好ましい。 原核性宿主と共に使用する為に好適なプロモーターは、β−ラクタマーゼ及び ラクトースプロモーター系（Chang et al.，Nature 275:615(1978); Goeddel et al.，Nature 281:544(1979)）、アルカリホスファターゼ、トリプトファン（ｔ ｒｐ）プロモーター系（Goeddel，Nucleic Acid Res．8:4057(1980); EP 36,776 ）及びｔａｃプロモーター等のハイブリッドプロモーターを含む。deBoeret al. ，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 80:21-25(1983)。しかしながら、他の既知の細 菌プロモータが好適である。それらのヌクレオチド配列は刊行されており、それ によって当業者が、任意の要求される制限部位を供給するためにリンカーまたは アダプターを使用して、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードするＤＮＡ に対してそれらを機能的に連結することを可能とする。細菌系において使用する ためのプロモーターは、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードするＤＮＡ に機能的に連結されるシャイン−ダルガルノ（ＳＤ）配列も含むであろう。 プロモーター配列は、真核性細胞について知られている。実質上、全ての真核 性遺伝子は転写開始部位からおよそ２５〜３０塩基上流に位置するＡＴ−富裕領 域を有している。多くの遺伝子の転写開始から７０〜８０塩基上流に見出される 他の配列は、Ｘが任意のヌクレオチドであり得るＣＸＣＡＡＴ領域である。ほと んどの真核性遺伝子の３’末端はＡＡＴＡＡＡ配列であり、これはコード配列の ３’末端にポリＡテールを付加するシグナルであり得る。これらの配列の全ては 、真核性発現ベクターに適切に挿入される。 酵母宿主と共に使用するための適当な促進配列の例は、３−ホスホグリセレー トキナーゼ（Hitzeman et al.，J．Biol．Chem．255:2073(1980)）、またはエノ ラーゼ、グリセルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロケナーゼ、ヘキソキナ ーゼ、ピルベートデカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース −６−ホスフェートイソメラーゼ、３−ホスホグリセレートムターゼ、ビルベー トキナーゼ、トリオースホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラ ーゼ、及びグルコキナーゼ等の糖分解酵素（Hess et al.，J．Adv．Enzyme Reg. 7:149(1968); Holland，Biochemistry 17:4900(1978)）のプロモーターを含む。 転写が生育条件によって調節される付加的優位点を有する誘導性プロモーター である他のプロモーターは、アルコールデヒドロゲナーゼ２、イソチトクローム Ｃ、酸ホスファターゼ、窒素代謝に関わる分解酵素、メタロチオネイン、グリセ ルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、並びにマルトース及びガラ クトース利用を司る酵素のプロモーター領域である。酵母発現において使用する ための好適なベクター及びプロモーターは、EP 73,657に更に記述されている。 酵母エンハンサーも、利点を持って酵母プロモーターと共に使用される。 哺乳動物宿主細胞におけるベクターからのＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 の転写は、プロモーターが宿主細胞系と適合性を有する限り、例えば、ポリオー マウィルス、フォウルポックスウイルス（１９８９年７月５日発行のUK 2,211,5 04）、アデノウイルス（アデノウイルス２等）、ウシパピローマウイルス、トリ 肉腫ウイルス、サイトメガロウイルス、レトロウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス及び 最も好ましくはシミアンウイルス４０（ＳＶ４０）等のゲノムに由来するか、例 えばアクチンプロモーターまたはイムノグロブリンプロモーター等の異種的哺乳 動物プロモーターに由来するか、熱ショックプロモーターに由来するか、及び通 常にＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質配列に伴われるプロモーターに由来して 得たブロモーターにより調節される。 ＳＶ４０ウイルスの早期及び後期プロモーターは、ＳＶ４０制限断片として都 合よく得られ、それは複製のＳＶ４０ウイルスオリジンを含む。Fiers et al.,N ature 273:113(1978); Mulligan et al.，Science 209:1422-1427(1980); Pavla kis et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 78:7398-7403(1981)。ヒトサイトメ ガロウイルスの直前プロモーターは、Hind III E制限断片として都合よく得られ る。Greenaway et al.，Gene 18:355-360(1982)。ウシパピローマウイルスをベ クターとして使用する哺乳動物宿主におけるＤＮＡ発現系は、米国特許第4, 419,446号に開示されている。この系の修飾は、米国特許第4,601,978号に記述さ れている。免疫インターフェロンをコードするｃＤＮＡのサル細胞における発現 についてはGray et al.，Nature 295:503-508(1982); 単純ヘルペスウイルス由 来のチミジンキナーゼプロモーターの制御下における、マウス細胞中でのヒトβ −インターフェロンｃＤＮＡの発現についてはReyes et al.，Nature 297:598-6 01(1982); 培養マウス及びウサギ細胞中でのヒトインターフェロンβ１遺伝子 の発現についてはCanaani et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 79:5166-5170( 1982); ラウス肉腫ウイルスの長末端反復をプロモーターとして使用する、ＣＶ −１サル腎細胞、ニワトリ胚線維芽細胞、モルモット卵巣細胞、HeLa細胞、及び マウスNIH-3T3細胞における細菌ＣＡＴ配列の発現に関してはGorman et al.,Pro c．Natl．Acad．Sci．USA 79:6777-6781(1982)参照。 （５）エンハンサー要素成分 高等真核性細胞による本発明のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコードす るＤＮＡの転写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによりしばし ば増大される。エンハンサーは、ＤＮＡのｃｉｓ−作用要素であり、通常約１０ 〜３００ｂｐであり、プロモーターに作用して転写を増大させる。エンハンサー は、相対的に配向及び位置に非依存的であり、転写単位に対して５’側（Laimin s et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 78:993(1981)）及び３’側（Lusky et al.，Mol．Cell Bio．3:1108(1983)）、イントロン内（Banerji et al.，Cell 3 3:729(1983)）並びにコード配列それ自体の内部に見出されている。Osborne et al.，Mol．Cell Bio．4:1293(1984)。今では多くのエンハンサー配列が哺乳動物 遺伝子から知られている（グロブリン、エラスターゼ、アルブミン、α−フェト 蛋白質、及びインスリン）。しかしながら、典型的には真核性細胞ウイルスから のエンハンサーが使用されるであろう。例としては、複製オリジンの後方側のＳ Ｖ４０エンハンサー（ｂｐ １００−２７０）、サイトメガロウイルスの初期プ ロモーターエンハンサー、複製オリジンの後方側のポリオーマエンハンサー、及 びアデノウイルスのエンハンサーを含む。真核性プロモーター活性化のための増 強因子については、Yaniv，Nature 297:17-18(1982)も参照。エンハンサーは、 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質コード配列の５’または３’位置において、 ベクタ一中に結合されてよいが、好ましくはプロモーターから５’側の部位に位 置する。 （６）転写停止成分 真核性宿主細胞（酵母、カビ、昆虫、植物、動物、ヒトまたは他の多細胞生物 からの有核細胞）において使用される発現ベクターは、転写の停止及びｍＲＮＡ の安定化のために必要な配列も含むであろう。このような配列は、真核性または ウイルス性ＤＮＡまたはｃＤＮＡの５’及び場合により３’非翻訳領域から一般 的に入手可能である。これらの領域は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコ ードするｍＲＮＡの非翻訳部分において、ポリアデニル化断片として転写される ヌクレオチド分節を含む。 （７）ベクターの構築及び分析 上記に掲げた成分の１種以上を含む適当なベクターの構築は、標準的連結技術 を採用する。単離されたプラスミドまたはＤＮＡ断片は、切断され、修復され、 所望の形態をもって再連結されて必要なプラスミドを生成させる。 構築されたプラスミドにおける正しい配列を確認するための分析には、連結混 合物がE．coli K12 294株(ATCC 31,446)を形質転換するために使用され、成功し た形質転換体が、適切な場合にはアンピシリンまたはテトラサイクリン耐性によ り選択される。形質転換体からプラスミドが調製され、制限エンドヌクレアーゼ 消化により分析されるか、及び／またはMessing et al.，Nucleic Acids Res.9: 309(1981)の方法若しくはMaxam et al.，Methods in Enzymology 65:499(1980) の方法により配列決定される。 一時的発現ベクター 本発明の実施において特に有用なものは、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 をコードするＤＮＡの哺乳動物細胞における一時的発現を与える発現ベクターで ある。一般に一時的発現は、宿主細胞が多数の発現ベクターのコピーを蓄積し、 従って、該発現ベクターによりコードされる所望のポリペプチドを高水準で合成 するように、宿主細胞において効率的に複製することが出来る発現ベクターの使 用を含む。Sambrook et al.,前出文献pp.16.17-16.22。適当な発現ベクター及び 宿主細胞を有してなる一時的発現系は、クローン化されたＤＮＡによりコードさ れるポリペプチドの都合よい陽性の同定を可能とし、所望の生物学的または生理 学的性質についてそのようなポリペプチドの迅速なスクリーニングも可能とする 。従って、一時的発現系は、生物学的に活性なＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白 質であるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の類似体及び変異体を同定する目的 で、本発明において特に有用である。 （８）好適な例としての脊椎動物細胞ベクター 組換え脊椎動物細胞培養物におけるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の合成 に適合される好適な別の方法、ベクター及び宿主細胞は、Gething et al.，Natu re 293:620-625(1981); Mantei et al．Nature 281:40-46(1979); EP117,060及 びEP 117,058に記述されている。ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の哺乳動物 細胞培養物発現のための特に有用なプラスミドは、pRK5(EP 307,247)またはpSV1 6Bである。１９９１年６月１３日発行のW091/08291。 iii．宿主細胞の選択及び形質転換 ここにおいてベクター中のＤＮＡのクローニングまたは発現の為に好適な宿主 細胞は、上述した原核性細胞、酵母、またはより高等な真核性細胞である。この 目的のために好適な原核性細胞は、グラム−陰性またはグラム−陽性生物等の真 正細菌、例えばE．coli等のEscherichia、Enterobacter、Erwinia、Klebsiella 、Proteus、例えばSalmonella typhimurium等のSalmonella、例えばSerratia ma rcescans等のSerratia及びShigella、並びにB．subtilis及びB．licheniformis （例えば１９８９年４月１２日発行のDD 266,710に開示されるB．licheniformis 41P）等のBacilli、P．aeruginosa等のPseudomonas並びにStreptomyces等、腸内 細菌科である。好適なE．coliクローニング宿主は、Ｅ．coli 294(ATCC 31,446) であるが、Ｅ．coli B、E．coli Ｘ1776(ATCC 31,537)及びE．coli W3110(ATC C 27,325)等の他の株も好適である。これらの例は、限定的ではなくして例示的 なものである。W3110株は、組換えＤＮＡ産生発酵のための一般的な宿主株であ り、宿主または親宿主として特に好ましい。好ましくは宿主細胞は、最小量の蛋 白質分解酵素を分泌するものである。例えば、W3110株は、蛋白質をコードする 遺伝子において、遺伝的変異を与える修飾を受けてもよく、このような宿主の例 としてはW3110 27C7株を含む。27C7の完全なケノタイプは、tonAΔ ptr3 phoA ΔE15 Δ(argF-lac)169 ompTΔ degP4Ikan^r である。27C7株は、アメリカン・タ イプ・カルチャー・コレクションに、ATCC No．55,244として１９９１年１０月 ３０日に寄託されている。別法として、１９９０年８月７日発行の米国特許第4, 946,783号に開示された変異周辺細胞質プロテアーゼを有するE．coliが採用され てもよい。更に別法として、ＰＣＲまたは他の核酸ポリメラーゼ反応等のクロー ニング方法も好適である。 原核性細胞に加えて、糸状菌または酵母等の真核性微生物も、ＷＳＸレセプタ ーまたはＯＢ蛋白質−コードベクターの好適なクローニングまたは発現宿主であ る。Saccharomyces cerevisiaeまたは通常のベーカーズイーストは、下等真核性 宿主微生物の内では最も通常に使用されている。しかしながら、Schizosaccharo myces pombe(Beach et al.，Nature 290:140(1981); １９８５年５月２日発行 のEP 139,383); 例えば、K．lactis(MW98-8C，CBS683，CBS4574)，K．Fragilis( ATCC 12,424)，K．bulgaricus(ATCC 16,045)，K．wickeramii(ATCC 24,178),K． waltii(ATCC 56,500)，K．drosophilarum(ATCC 36,906；Van den Berg et al., 前出文献),K．thermotolerans,及びK．marxianus; yarrowia(EP 402,226)等のKl uyveromyces宿主（米国特許第4,943,529; Fleer et al.，前出文献）;Pichia pa storis(EP 183,070; Sreekrishna et al.，J．Basic Microbiol．28:265-278(19 88))；Candida; Trichoderma reesia(EP 244,234); Neurospora crassa(Case et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 76:5259-5263(1979))；Schwanniomyces occ identalis(１９９０年１０月３１日発行のEP 394,538)等のSchwanniomyces；並 びに、例えばNeurospora，Penicillium，Tolypocladium(１９９１年１月１０日 発行のWO91/00357)、及びA．nidulans(Ballance et al.，Biochem.Biophys．Res ．Commun．112:284-289(1983); Tilburn et al.，Gene 26：205- 221(1983)；Yelton et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 81:1470-1474(1984)) 及びA．niger(Kelly et al.，EMBO J．4：475-479(1985))等のAspergillus宿主 等、多くの他の属、種及び株が一般的に入手可能であり、また有用である。 グリコシル化ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の発現のために好適な宿主細 胞は、多細胞生物から誘導される。このような宿主細胞は、複雑な処理及びグリ コシル化活性が可能である。原理的には、脊椎動物または無脊椎動物のいずれか ら誘導されようが、任意の高等真核性細胞培養物が利用可能である。無脊椎動物 細胞の例は、植物及び昆虫細胞である。多くのバキュロウイルス株及び変異体、 並びに対応する許容可能な昆虫宿主細胞が、Spodoptera frugiperda（イモ虫） 、Aedes aegypti（蚊）、Aedes albopictus（蚊）、Drosophila melanogaster、 （ショウジョウバエ）及びBombyx mori等の宿主から同定されている。例えば、L uckow et al.，Bio/Technology 6:47-55(1988)；Miller et al.，in Genetic En gineering，Setlow et al.，eds．Vol．8(Plenum Publishing，1986)，pp.277-2 79；及びMaeda et al.，Nature 315:592-594(1985)参照。例えばAutographa cal ifornixa NPVのL-1変異体及びBombyx mori NPVのBm-5株等のトランスフェクショ ンのための多くのウイルス株が一般に入手可能であり、このようなウイルスは本 発明におけるウイルスとして特にSpodoptera frugiperda細胞のトランスフェク トのために使用され得る。 綿、トウモロコシ、ポテト、ダイズ、ペチュニア、トマト及びタバコの植物細 胞培養物は、宿主として使用され得る。典型的には、植物細胞は、予めＷＳＸレ セプターまたはＯＢ蛋白質−コードＤＮＡを含むように操作された細菌のある種 の株、Agrobacterium tumefaciensと共に培養することによりトランスフェクト される。植物細胞培養物とA．tumefaciensとの培養の間に、ＷＳＸレセプターま たはＯＢ蛋白質をコードするＤＮＡが植物細胞宿主に移動し、それがトランスフ ェクトされて適当な条件下でＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質−コードＤＮＡ を発現するであろう。加えて、ノパリン合成酵素プロモーター及びポリアデニル 化シグナル配列等の植物細胞に適合性の調節及びシグナル配列も入手可能である 。Depicker et al.，J．Mol．Appl．Gen．1:561(1982)。加えて、T-DNA 780遺伝 子の上流領域から単離されたＤＮＡ断片は、組換えＤＮＡ含有植物組織において 、 植物が発現可能な遺伝子の転写レベルを活性化及び増大させうる。１９８９年６ 月２１日発行のEP 321,196。 しかしながら、最も興味あるのは脊椎動物細胞であり、培養物（組織培養物） 中での脊椎動物細胞の増殖は情報になっている。例えば、Tissue Culture，Acad emic Press Kruse and Patterson，編(1973)参照。有用な哺乳動物細胞系の例は 、ＳＶ４０により形質転換されたサル腎臓ＣＶ１系（COS-7，ATCC CRL 1651）； ヒト胚腎細胞系（２９３または懸濁培養中の生育についてサブクローンされた２ ９３細胞、Graham et al.，J．Gen．Virol．36:59(1977)）；仔ハムスター腎細 胞（BHK，ATCC CCL 10）；モルモット卵巣細胞／−ＤＨＦＲ（CHO，Urlaub et a l.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 77:4216(1980)）；マウスセルトリ細胞（TM4 ，Mather，Biol．Reprod．23:243-251(1980)）；サル腎細胞（CV1 ATCC CCL 70 ）；アフリカミドリザル腎細胞（VERO-76，ATCC CRL-1587）；ヒト頸部腫瘍細胞 （HELA，ATCC CCL 2）；イヌ腎細胞（MDCK，ATCC CCL 34）；バッファローラッ ト肝細胞（BRL 3A，ATCC CRL 1442）；ヒト肺細胞（W138，ATCC CCL 75）；ヒト 肝細胞（Hep G2，HB 8065）；マウス乳癌（MMT 060562，ATCC CCL 51）；ＴＲＩ 細胞（Mather et al.，Annal．N．Y．Acad．Sci．383:44-68(1982)）；ＭＲＣ５ 細胞；ＦＳ４細胞；並びにヒト肝癌系（Hep G2）である。 宿主細胞は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質産生のための上述した発現ま たはクローニングベクターによりトランスフェクト、好ましくは形質転換され、 プロモーターの誘発、形質転換体の選択または所望の配列をコードする遺伝子の 増幅のために適切に修飾された慣用の栄養媒体中で培養される。 トランスフェクションは、何れかのコード配列が実際に発現されるか否かには 関わらず、宿主細胞により発現ベクターが取り入れられることを指す。例えばＣ ａＰＯ₄及びエレクトロポレーション等の多くのトランスフェクション方法が当 業者に知られている。成功したトランスフェクションは、このベクターの作用の 何れかの兆候が宿主細胞内で起こることにより、一般に認識される。 形質転換は、ＤＮＡが、染色体外要素として、あるいは染色体組み込みにより ＤＮＡが複製可能となるように、ＤＮＡを生体内に導入することを意味する。使 用される宿主細胞に依存して、形質転換はこのような細胞に適当な標準的方法を 使用して行われる。Sambrook et al.,前出文献1.82節に記述されるようにして塩 化カルシウムを使用するカルシウム処理、またはエレクトロポレーションが、原 核細胞または実質的に細胞壁障害を有する他の細胞について一般に使用される。 Agrobacteriumu tumefacienceを用いる感染が、Shaws et al.，Gene 23：315(19 83)及び１９８９年６月２９日発行のWO89/05859に記述されるようにある種の植 物細胞の形質転換のために使用される。更に、植物は、１９９１年１月１０日発 行のWO91/00358に記述されるように超音波処理を使用してトランスフェクトされ てもよい。 そのような細胞壁を有さない哺乳動物細胞については、Graham et al.，Virol ogy 52:456-457(1978)のリン酸カルシウム沈殿法が好ましい。哺乳動物細胞宿主 形質転換の一般的側面に関しては、１９８３年８月１６日発行の米国特許第4,39 9,216号に記述されている。酵母への形質転換は、典型的には、Van Solingen et al.，J．Bact．130:946(1977)及びHsiao et al.，Proc Natl．Acad，Sci．USA 76:3829(1979)の方法に従って行われる。しかしながら、細胞への他のＤＮＡ導 入方法、例えば、核マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、真細 胞との細菌性プロトプラスト融合、例えばポリブレン、ポリオミチン等の多価陽 イオン等も使用され得る。哺乳動物細胞を形質転換するための種々の技術につい ては、Keown et al.，Methods in Enzymology 185:527-537(1990)及びMans our et al.，Nature 336:348-352(1988)参照。 iv．宿主細胞の培養 本発明のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の産生に使用される原核性細胞は 、一般にSambrook et al.，前出文献に記述されるように適当な培地中で培養さ れる。 本発明のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質を産生するために使用される哺乳 動物宿主細胞は、種々の媒体中で培養されうる。商業的に入手可能な、例えばHa m's F10(Sigma)、最小必須培地（(MEM)，Sigma）、ＲＰＭＩ−１６４０（Ｓｉｇ ｍａ）及び、ダルベッコ修飾イーグル培地（(DMEM)、Sigma）が、宿主細胞の培 養に好適である。加えて、Hma et al.，Meth．Enz．58:44（1979，Barns et la. ， Anal．Biochem．102:255(1980)，米国特許第4,767,704；4,657,866；4,927,762 ；4,562,655または5,122,469；WO90/03430；WO87/00195；及び米国再審査特許30 ,985に記述されている何れかの培地も宿主細胞の培養培地として使用され得る。 これらのいずれの培地も、必要に応じてホルモン類及び／または多の成長因子（ インスリン、トランスフェリン、または表皮成長因子等）、塩類（塩化ナトリウ ム、カルシウム、マグネシウム及びリン酸等）、緩衝剤（HEPES等）、ヌクレオ シド（アデノシン及びチミジン等）、抗生物質（ゲンタマイシン^TM等）、微量元 素（通常マイクロモルの最終濃度で存在する無機化合物として定義される）、並 びにグルコースまたは他の同等なエネルギー源が補充されてもよい。その他の必 要な補充物が、当業者に知られている適当な濃度をもって含まれてもよい。温度 、ｐＨ等の培養条件は、発現のために選択された宿主について従来使用されてい るとおりで、当業者には明らかであろう。 一般的に、哺乳動物細胞の生産性を最大にする為の原理、プロトコール及び実 際的技術は、Mammalian Cell Biotechnology：a Practical Approach，M．Butle r，ed．(IRL Press，1991)に見出される。 この開示において引用される宿主細胞は、培養物中の細胞、並びに宿主動物内 にある細胞を含む。 ｖ．遺伝子増幅／発現の検出 遺伝子増幅及び／または発現は、試料中において例えば慣用のサザンブロッテ ィング、ｍＲＮＡの転写を定量するノーサンブロッティング（Thomas，Proc．Na tl．Acad．Sci．USA 77:5201-5205(1980)）、ドットブロッティング（ＤＮＡ分 析）、またはインサイツ・ハイブリダイゼーションにより、ここに提供される配 列に基づいた適当な標識プローブを使用して直接に測定されうる。種々の標識が 使用され得、最も普通には放射性同位体、特に³²Ｐである。しかしながら、ポリ ヌクレオチドに導入するためのビオチン修飾ヌクレオチドの使用等、他の技術も 採用されうる。次いでビオチンは、放射性核種、蛍光体、酵素等の広範囲の種々 の標識により標識されたアビジンまたは抗体に対する結合部位として作用する。 別法として、ＤＮＡ二重体、ＲＮＡ二重体、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド二重体 またはＤＮＡ−蛋白質二重体等の特定の二重体を認識する抗体が採用されうる。 次いで抗体は、標識され、またアッセイが実行され、ここにおいて二重体は表面 に結合され、該表面の二重体形成により該二重体に結合する抗体が検出されうる 。 別法として、遺伝子発現は組織断面の免疫組織化学的染色、及び細胞培養物ま たは体液のアッセイ等の免疫学的方法により、遺伝子生成物の発現を直接に定量 して測定されうる。免疫組織化学的染色技術によれば、細胞試料が典型的には脱 水及び固定化により調製され、次いで結合される遺伝子生成物に対して特異的な 標識抗体が反応に付され、ここにおいて標識は、一般に酵素標識、蛍光標識、発 光正標識等の目視検出可能なものである。本発明に使用するために好適な特に高 感度の染色技術は、Hsu et al.，Am．J．Clin．Path．75:734-738(1980)に記述 されている。 免疫組織化学的染色及び／または試料液体のアッセイのために有用な抗体は、 モノクローナルまたはポリクローナルのいずれでもよく、ここに記述されるよう に調製されうる。 vi．ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の精製 ＷＳＸレセプター（例えば、ＷＳＸレセプターＥＣＤ）またはＯＢ蛋白質は、 好ましくは培養培地から分泌蛋白質として回収されるが、宿主細胞溶解物から回 収されてもよい。ＷＳＸレセプターが膜結合である場合には、適当な界面活性剤 溶液（例えばTriton-X 100）を使用して膜から解放されうる。 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質がヒト起源のもの以外の組換え細胞におい て産生される場合には、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質は、ヒト起源の蛋白 質またはポリペプチドを全く含まない。しかしながら、ＷＳＸレセプターまたは ＯＢ蛋白質として実質的に均質な調製物を得るためには、組換え細胞蛋白質また はポリペプチドからＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質を生成する必要がある。 第一の工程として、培養培地または溶解物は遠心分離されて粒状細胞破砕物が除 去される。その後に、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質が、可溶性蛋白質また はポリペプチド夾雑物から、好適な精製方法の例である次の方法により精製され る：イオン交換カラムによる分画；エタノール沈殿；逆相ＨＰＬＣ；シリカ上ま たはＤＥＡＥ等の陽イオン交換樹脂上のクロマトグラフィー；クロマトフォーカ シング；ＳＤＳ−ＰＡＧＥ；硫酸アンモニウム沈殿；例えばセファデックスＧ− ７５^TMを使用するゲル濾過；並びにＩｇＧ等の夾雑を除去する蛋白質Ａセファロ ース^TMカラム。 残基が除去、挿入または置換されたＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質変異体 は、変異による性質の実質的変化を考慮して、天然のＷＳＸレセプターまたはＯ Ｂ蛋白質と同様な様式で回収されうる。ウサギポリクローナル抗−ＷＳＸレセプ ターまたはＯＢ蛋白質カラム等の免疫アフィニティカラムが、少なくとも残る免 疫エピトープとの結合により、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質変異体を吸着 するために使用され得る。 フェニルメチルスルホニルフルオライド（ＰＭＳＦ）等のプロテアーゼ阻害剤 は、精製の間の蛋白質分解を阻害するために有用であり、また抗生物質は、外因 性の夾雑の生育を防止するために含まれてよい。 vii．共有性修飾 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の共有性修飾物は、本発明の範囲内に含ま れる。天然配列ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質及びＷＳＸレセプターまたは ＯＢ蛋白質のアミノ酸配列変異体の両者は、共有結合的に修飾されてよい。ＷＳ ＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の一つの型の共有性修飾は、ＷＳＸレセプターま たはＯＢ蛋白質の標的アミノ酸残基を、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の選 択された側鎖またはＮ−若しくはＣ−末端残基と反応しうる有機誘導試薬と反応 させることにより、該分子に導入される。 最も普通には、システイン残基が、クロロ酢酸またはクロロアセタミド等のα −ハロアセテート（及び対応するアミン）と反応に付されて、カルボキシメチル またはカルボキシアミドメチル誘導体を与える。システイン残基は、ブロモトリ フルオロアセトン、α−ブロモ−β−（５−イミダゾイル）プロピオン酸、クロ ロアセチルホスフェート、Ｎ−アルキルマレイミド、３−ニトロ−２−ピリジル ジスルフィド、メチル２−ピリジルジスルフィド、ｐ−クロロメルクリベンゾエ ート、２−クロロメルクリ−４−ニトロフェノール、またはクロロ−７−ニトロ ベンゾ−２−オキサ−１，３−ジアゾールとの反応により誘導される。 ヒスチジン残基は、ｐＨ５．５−７．０においてジエチルピロカルボネートと の反応により誘導され、けだしこの試薬はヒスチジン側鎖に比較的特異的である からである。パラ−ブロモフェナシルブロマイドも有用であり、該反応は、好ま しくはｐＨ６．０において０．１Ｍカコジル酸ナトリウム中で行われる。 リジン及びアミノ末端残基は、コハク酸または他のカルボン酸無水物と反応に 付される。これらの試薬による誘導は、リジン残基の電荷の逆転の効果がある。 α−アミノ−含有残基の誘導のための他の好適な試薬は、メチルピコリンイミデ ート等のイミドエステル類、ピリドキサルホスフェート、ピリドキサル、クロロ ボロハイドライド、トリニトロベンゼンスルホン酸、Ｏ−メチルイソウレア、２ ，４−ペンタンジオン、及びグリオキシレートとのトランスアミナーゼ触媒反応 を含む。 アルキニン残基は、１種または数種の慣用の試薬により修飾され、それらの内 にはフェニルグリオキサール、２，３−ブタンジオン、１，２−しくろヘキサン ジオン及びニンヒドリンがある。グアニジン官能基の高いｐＫａ故に、アルギニ ン残基の誘導は、アルカリ条件下で反応を行うことが必要である。更に、これら の試薬は、アルギニンイプシロン−アミノ基に加えて、リジンの基とも反応しう る。 チロシン残基の特異的修飾は、芳香族性ジアゾニウム化合物またはテトラニト ロメタンとの反応によりチロシル残基に分光学的標識を導入することに特に興味 を持って行われうる。最も一般的には、Ｎ−アセチルイミジゾール及びテトラニ トロメタンが、それそれＯ−アセチルチロシン分子種及び３−ニトロ誘導体を形 成するために使用される。チロシル残基は、放射免疫アッセイにおいて使用され る標識蛋白質を調製するために、¹²⁵Ｉまたは¹³¹Ｉを使用してヨウ素化され、ク ロラミンＴ法が好適である。 カルボキシル側鎖基（アスパルチルまたはグルタミル）は、１−シクロヘキシ ル−３−（２−モルホリニル−４−エチル）カルボジイミドまたは１−エチル− ３−（４−アゾニア−４，４−ジメチルペンチル）カルボジイミド等の、Ｒ及び Ｒ’が異なるアルキル基であるカルボジイミド（Ｒ−Ｎ＝Ｃ＝Ｎ＝Ｒ’）との反 応により選択的に修飾される。更に、アスパルチル及びグルタミル残基は、アン モニウムイオンとの反応によりアスパラギニル及びグルタミニル残基に変換され る。 二官能性試薬による誘導は、抗−ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質抗体の精 製方法において使用される水不溶性支持担体または表面に、ＷＳＸレセプターま たはＯＢ蛋白質を交差結合するために有用であり、その逆もしかりである。一般 に使用される交差結合試薬は、例えば、１，１−ビス（ジアゾアセチル）−２− フェニルエタン、グルタルアルデヒド、例えば４−アジドサリチル酸エステル等 のＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステル、３，３’−ジチオビス（スクシンイ ミジルプロピオネート）等のジスクシンイミジルエステルを含むホモ二官能性イ ミドエステル、並びにビス−Ｎ−マレイミド−１，８−オクタン等の二官能性マ レイミドを含む。メチル−３−（（ｐ−アジドフェニル）ジチオ）プロピオイミ デート等の誘導試薬は、光の存在下で公差結合の形成が可能な光活性化可能な中 間体を生じる。別法として、シアノゲンブロマイド−活性化炭水化物等の反応性 水不溶性担体、及び米国特許第3,969,287；3,691,016；4,195,128：4,247,642； 4,229,537;及び4,330,440に記述される反応性基質は、蛋白質の固定化に使用さ れる。 グルタミニル及びアスパラギニル残基は、それぞれ対応するグルタミル及びア スパルチル残基にしばしば脱アミド化される。これらの残基は中性または塩基性 条件下で脱アミド化される。これらの残基の脱アミド化形態は、本発明の範囲内 にある。 そのほかの修飾は、プロリン及びリジンのヒドロキシル化、セリンまたはスレ オニン残基のヒドロキシル基のホスホリル化、リジン、アルギニン、及びヒスチ ジン側鎖のα−アミノ基のメチル化（T.E．Creighton，Proteins：Structure an d Molecular Properties，W.H．Freeman & Co.，San Francisco，pp．79-86(198 3)）、Ｎ−アミノ末端のアセチル化、並びにＣ−末端カルボキシル基のアミド化 を含む。 本発明の範囲内に含まれるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の他の型の共有 性修飾は、ポリペプチドの天然のグリコシル化パターンの改変を含む。改変とは 、 天然ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質に見出される炭化水素残基の一つ以上の 除去、及び／または天然のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質には存在しない一 つ以上のグリコシル化部位の付加を意味する。 ポリペプチドのグリコシル化は、典型的にはＮ−結合またはＯ−結合の何れか である。Ｎ−結合は、アスパラギン残基の側鎖への炭水化物残基の結合を指す。 Ｘがプロリン以外のアミノ酸であるトリペプチド配列アスパラギン−Ｘ−セリン 及びアスパラギン−Ｘ−スレオニンは、炭水化物残基のアスパラギン側鎖への酵 素的結合について、認識配列である。而して、ポリペプチド中の、これらのトリ ペプチド配列の何れかの存在は、可能性あるグリコシル化部位を創成する。Ｏ− 結合グリコシル化は、Ｎ−アセチルグルコサミン、ガラクトースまたはキシロー ス等の糖類の一つがヒドロキシルアミノ酸、最も一般的にはセリンまたはスレオ ニンに結合することを指すが、５−ヒドロキシプロリン及び５−ヒドロキシリジ ンも使用され得る。 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質へのグリコシル化部位の付加は、それが上 述したトリペプチド配列（Ｎ−結合グリコシル化部位）を一つ以上含むようにア ミノ酸配列を改変することによって都合よく達成される。改変は、１個以上のセ リンまたはスレオニン残基を天然のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質配列に付 加するか、またはこれらにより置換することによってもなされうる（Ｏ−結合グ リコシル化部位）。簡単には、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質アミノ酸配列 は、ＤＮＡレベルの変化を介して、特にＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質をコ ードするＤＮＡを、予め選択した塩基においてコドンが所望のアミノ酸に翻訳さ れるように生成されるよう変異させることによって改変される。ＤＮＡの変異は 、上記の米国特許第5,364,934号に記述される方法を使用して行われてよい。 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質上に炭水化物残基の数を増大させる他の手 段は、ポリペプチドに対するグリコシドの化学的または酵素的結合による。これ らの手法は、Ｎ−またはＯ−結合グリコシル化についてグリコシル化能力を持っ た宿主細胞中でのポリペプチド産生を必要としない点で有利である。使用される カップリングの態様に依存して、糖類は（ａ）アルギニン及びヒスチジン、（ｂ ）遊離のカルボキシル基、（ｃ）システインのもの等の遊離のスルフィドリル基 、 （ｄ）セリン、スレオニンまたはヒドロキシルプロリンのもの等の遊離のヒドロ キシル基、（ｅ）フェニルアラニン、チロシン、またはトリプトファンのもの等 の芳香族残基、あるいは（ｆ）グルタミンのアミド基に結合する。これらの方法 は、１９８７年９月１１日発行のWO 87/05330及びAplin et al.，CRC Crit．Rec ．Biochem．259-306(1981)に記述されている。 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質に存在する炭水化物残基の除去は、化学的 または酵素的に行いうる。化学的脱グリコシル化は、化合物トリフルオロメタン スルホン酸または同等な化合物に対するポリペプチドの暴露を必要とする。この 処理は、結合糖（Ｎ−アセチルグルコサミンまたはＮ−アセチルガラクトサミン ）を除いてほとんどまたは全ての糖類の切断をもたらし、その一方でポリペプチ ドを無傷のまま残す。化学的脱グリコシル化は、Hakimuddin，et al.，Arch．Bi ochem．Biophys．259:52(1987)及びEdge et al.，Anal．Biochem．118:131(1981 )に記述されている。ポリペプチドの炭水化物残基の酵素的切断は、Thotakura e t al.，Meth．Enzymol．138:350(1987)に記述されているように種々のエンド− 及びエキソ−グリコシダーゼの使用により行われうる。 可能性あるグリコシル化部位におけるグリコシル化は、Duskin et al.，J．Bi ol．Chem．257:3105(1982)に記述されるように化合物チュニカマイシン(tunicam ycin)の使用により阻止されうる。チュニカマイシンは、蛋白質−Ｎ−グリコシ ド結合の形成を阻止する。 ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の共有性修飾の他の型は、米国特許第4,64 0,835；4,496,689；4,301,144；4,670,417；4,791,192または4,179,337号に示さ れた方法で、例えばポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコールまたは ポリオキシアルキレン糖の種々の非蛋白質性ポリマーの一つにたいして、ＷＳＸ レセプターまたはＯＢ蛋白質を結合することを含む。 変異体ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の性質を予め予想することはしばし ば困難であるため、回収された変異体の何らかのスクリーニングが、最適な変異 体を選択する為に必要であることが認識されるであろう。所定の抗体に対する親 和性等の、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質分子の免疫学的性質の変化は、競 合型のイムノアッセイにより測定可能である。ＷＳＸレセプター変異体は、実施 例８のコロニーアッセイにおいて、該蛋白質の細胞増殖誘導能力における変化に ついてアッセイされる。酸化還元若しくは熱安定性、疎水性、蛋白質分解に対す る感受性、または担体との凝集傾向若しくは多量体への凝集傾向等の、蛋白質ま たはポリペプチドの性質の他の可能性ある修飾は、この技術で周知の方法により アッセイされる。 viii．エピトープ−標識ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 この発明は、異種ポリペプチドに融合するＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 を含んでなるキメラポリペプチドを包含する。キメラＷＳＸレセプターまたはＯ Ｂ蛋白質は、ここにおいて定義されるＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質変異体 の一つの型である。好ましい実施態様において、キメラポリペプチドは、抗−標 識抗体が選択的に結合可能なエピトープを与える標識ポリペプチドとの、ＷＳＸ レセプターまたはＯＢ蛋白質の融合体を含む。エピトープ標識は、一般的にはＷ ＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のアミノ−またはカルボキシル−末端に与えら れる。このようなＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質のエピトープ標識形態は、 その存在が標識ポリペプチドに対する標識抗体を使用して検出可能であるため、 望ましい。また、エピトープ標識の提供は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質 を、抗−標識抗体を使用してアフィニティ精製により容易に精製することを可能 とする。抗体に関与するアフィニティ精製及び診断アッセイは、ここにおいて後 述される。 標識ポリペプチド類及びぞれそれに対する抗体は、この技術では周知である。 例としては、ＨＡ標識ポリペプチド及びその抗体（Field et al.，Mol．Cell Bi ol．8:2159-2165(1988)）；ｃ−ｍｙｃ標識及びそれに対する8F9，3C7，6E10,G4 ，B7及び9E10抗体（Evan et al.，Molecular and Cellular Biology 5:3610-361 6(1985)）；及び単純ヘルペスウイルス糖蛋白質Ｄ（ｇＤ）標識及びその抗体が 含まれる。Paborsky et al.，Protein Engineering 3(6):547-553(1990)。他の 標識ポリペプチドが開示されている。例としては、Flag-ペプチド（Hopp et al. ，BioTechnology 6:1204-1210(1988)）；ＫＴ３エピトープペプチド（Martin et al.，Science 255:192-194(1992)）；α−ツブリンエピトープペプチド（S kinner et al.，J．Biol．Chem．266:15163-15166(1991)）；及びＴ７遺伝子１ ０ペプチド標識を含む。Lutz-Freyermuth et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 87:6393-6397(1990)。標識ポリペプチドが一旦選択されたならば、それに対する 抗体はここに開示される技術により生成されうる。 エピトープ標識ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質の構築及び産生のために好 適な一般的方法は、先に開示した方法と同様である。ＷＳＸレセプターまたはＯ Ｂ蛋白質−標識ポリペプチド融合体は、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質部分 をコードするｃＤＮＡ配列を、読枠において、標識ポリペプチドＤＮＡに融合し 、得られたＤＮＡ融合構築物を適切な宿主細胞にて発現させることにより、最も 都合よく構築される。通常には、本発明のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質− 標識ポリペプチドキメラを調製する場合には、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白 質をコードする核酸が、標識ポリペプチドのＮ−末端をコードする核酸の３’末 端に融合されるであろうが、５’融合もまた可能である。 エピトープ標識ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質は、抗−標識抗体を使用す るアフィニティクロマトグラフィーにより都合よく精製されうる。アフィニティ 抗体が結合される担体は、ほとんどの場合アガロースであるが、他の担体も利用 可能である（例えば、調節多孔性ガラスまたはポリ（スチレンジビニル）ベンゼ ン）。エピトープ標識ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質は、例えば、緩衝溶液 のｐＨ若しくはイオン強度の変化、またはカオトロピズム溶媒の添加により、ア フィニティカラムから溶離されうる。 ix．ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質イムノアドヘシン 適切なイムノグロブリン定常領域配列に結合されたレセプター配列から構築さ れたキメラ（イムノアドヘシン）が、この技術で知られている。文献中に報告さ れたイムノアドヘシンは、Ｔ細胞レセプター^*（Gascoigne et al.，Proc．Natl. Acad．Sci．USA 84:2936-2940(1987)）；ＣＤ４^*（Capon et al.，Nature 337:5 25-531(1980)；Traunecker et al.，Nature 339:68-70(1980)；Zetmeissl et al .，DNA Ceel Biol．USA 9：347-353(1990)；Byrn et al.，Nature 344:667-670( 1990)）；Ｌ−セレクチン（ホーミングレセプター）（Watson et al.，J． Cell．Biol．110:2221-2229(1990)；Watson et al.，Nature 349:164-167(1991) ）；ＣＤ４４^*（Aruffo et al.，Cell 61:1303-1313(1990)）；ＣＤ２８^*および Ｂ７^*（Linsley et al.，J．Exp．Med．174:651-569(1991)）；ＣＤ２２^*（Stam enkovic et al.，Cell 66:1133-1144(1991)）；ＴＮＦレセプター（Ashkenazi e t al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 88:10535-10539(1991)；Lesslauer et al. ，Eur．J．Immnol．27:2883-2886(1991)；Peppel et al.，J．Exp．Med．174:14 83-1489(1991)）；ＮＰレセプター（Benett et al.，J．Biol．Chem．266:23060 -23067(1991)）；並びにＩｇＥレセプターα^*（Ridgway et al.，J．Cell Biol ．115：abstr．1448(1991)）の融合物を含み、ここにおいてアステリスク（^*） は、レセプターがイムノグロブリンの上位科の構成員であることを示す。 最も単純かつ最も素直なイムノアドヘシンの設計は、“アドヘシン”蛋白質の 結合領域を、イムノグロブリン重鎖のヒンジ及びＦｃ領域と組み合わせることで ある。一般に、本発明のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質−イムノグロブリン キメラを調製する場合に、ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプターの細胞外領域をコ ードする核酸が、Ｃ−末端においてイムノグロブリン定常領域配列のＮ−末端を コードする核酸に融合されるが、Ｎ−末端の融合も可能である。ＯＢ−イムノグ ロブリンキメラについては、ＷＳＸレセプターに対する結合能力を維持したＯＢ 蛋白質の断片が使用され得る。 典型的には、このような融合において、コードされるキメラポリペプチドは、 少なくともイムノグロブリン重鎖の機能的に活性化ヒンジ、定常領域のＣＨ２及 びＣＨ３領域を維持するであろう。融合は、定常領域のＦｃ部分のＣ−末端、若 しくは重鎖のＣＨ１に対して直ぐＮ−末端側、または軽鎖の対応する領域におい ても行われる。 融合が行われる厳密な位置は重要ではなく；特定の部位は周知であり、またＷ ＳＸレセプターまたはＯＢ−イムノグロブリンキメラの生物学的活性、分泌また は結合特性を最適化するように選択されうる。 いくつかの実施態様において、基本的にはWO91/08298に例示されるように、Ｗ ＳＸレセプターまたはＯＢ−イムノグロブリンキメラは、単量体、または異種− 若しくは同種多量体、特には二量体または三量体として集合する。 好ましい実施態様において、ＯＢ蛋白質配列またはＷＳＸレセプター細胞外領 域配列は、例えばイムノグロブリンＧ１（ＩｇＧ１）等のイムノグロブリンのエ フェクター機能を含む抗体のＣ−末端部分（特にＦｃ領域）のＮ−末端に融合さ れる。重鎖定常領域の全体を、ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプター細胞外領域配 列に融合することも可能である。しかしながら、より好ましくはパパイン切断部 位の直ぐ上流のヒンジ領域から始まる配列（ＩｇＧのＦｃを化学的に定義し；重 鎖定常領域の最初の残基を１１４位として、残基２１６、または他のイムノグロ ブリンの類似する部位）が、融合に使用される。特に好適な実施態様において、 ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプターアミノ酸配列は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、また はＩｇＧ３重鎖のヒンジ領域、ＣＨ２及びＣＨ３、またはＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ ２及びＣＨ３領域に対して融合される。融合が行われる厳密な部位は重要ではな く、至適部位は常法の実験により決定されうる。 いくつかの実施態様において、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ−イムノグロブリ ンキメラは、多量体として、及び特には同種二量体または四量体として集合する 。一般的にはこれらの集合体イムノグロブリンは、既知の単位構造を有するであ ろう。基本的な４本鎖構造単位は、ＩｇＧ、ＩｇＤ及びＩｇＥが存在する形態で ある。４本単位は、より高分子量のイムノグロブリンにおいて反復され；ＩｇＭ は、ジスルフィド結合により互いに保持される基本的４本単位の五量体として一 般には存在する。ＩｇＡグロブリン及び場合によってはＩｇＧグロブリンは、血 清中において多量体としても存在しうる。多量体の場合、各４本単位は、同じで あるかまたは異なってもよい。 本発明の範囲にある種々の典型的な集合ＷＳＸレセプターまたはＯＢ−イムノ グロブリンキメラは、下記に模式的に図表化される： （ａ）AC_L-AC_L; （ｂ）AC_H-(AC_H,AC_L-AC_H,AC_L-V_HC_H,またはV_LC_L-AC_H); （Ｃ）AC_L-AC_H-(AC_L-AC_H,AC_L-V_HC_H,V_LC_L-AC_H,またはV_LC_L-V_HC_H); （ｄ）AC_L-V_HC_H-(AC_H,またはAC_L-V_HC_H,またはV_LC_L-AC_H); （ｅ）V_LC_L-AC_H-(AC_L-V_HC_H,またはV_LC_L-AC_H):及び （ｆ）(A-Y)n-(V_LC_L-V_HC_H)₂， 式中、 各Aは、同じまたは異なったＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプターのアミ ノ酸配列を表し； V_Lは、イムノグロブリン軽鎖可変領域であり； V_Hは、イムノグロブリン重鎖可変領域であり； C_Lは、イムノグロブリン軽鎖の定常領域であり； C_Hは、イムノグロブリン重鎖の定常領域であり； nは、１より大きい整数であり； Yは、共有的交差結合試薬の残基を示す。 簡潔さのために前述の構造は、基本的特徴のみを示し；それらはイムノグロブ リンの連結部（Ｊ）または他の領域は示されず、またジスルフィド結合も示され ない。しかしながら、そのような領域が結合活性のために必要な場合には、それ らはイムノグロブリン分子に占める通常の位置に存在するように構築されるであ ろう。 別法として、ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプター細胞外領域配列は、イムノグ ロブリン重鎖及び軽鎖の間にされ得、而してキメラ重鎖を有するイムノグロブリ ンが得られる。この実施態様において、ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプター配列 は、イムノグロブリンの各アームにおけるイムノグロブリン重鎖の３’末端に対 して、ヒンジ及びＣＨ２領域の間またはＣＨ２及びＣＨ３領域の間の何れかにお いて融合される。類似する構築物が、Hoogenboom et al.，Mol．Immunol．28:10 27-1037(1991)により報告されている。 イムノグロブリン軽鎖の存在は、本発明のイムノアドヘシンにおいては必要と されないが、イムノグロブリン軽鎖は、ＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプター−イ ムノグロブリン重鎖融合ポリペプチドに共有的に結合するか、あるいは、ＷＳＸ レセプター細胞外領域またはＯＢ蛋白質に直接に融合するかの何れかで存在する であろう。前者の場合、イムノグロブリン軽鎖をコードするＤＮＡは、典型的に はＯＢ蛋白質またはＷＳＸレセプター−イムノグロブリン重鎖融合蛋白質をコー ドするＤＮＡと共に発現される。分泌に際して、ハイブリッド重鎖及び軽鎖は共 有的に結合して、２個のジスルフィド結合したイムノグロブリン重鎖−軽鎖対を 有するイムノグロブリン様構造を与えるであろう。このような構造の調製のため の好適な方法は、例えば１９８９年３月２８日発行の米国特許第4,816,567号に 開示されている。 好適な実施態様において、本発明のイムノアドヘシンの構築に使用されるイム ノグロブリン配列は、ＩｇＧイムノグロブリン重鎖定常領域に由来する。ヒトイ ムノアドヘシンについては、ヒトＩｇＧ１及びＩｇＧ３イムノグロブリン配列の 使用が好ましい。ＩｇＧ１を使用することの主な優位点は、ＩｇＧ１イムノアド ヘシンが固定化蛋白質Ａにて効率的に精製されうることである。対照的に、Ｉｇ Ｇ３の精製には顕著により不安定な媒体である蛋白質Ｇを必要とする。しかしな がら、特定のイムノアドヘシン構造のためのＩｇ融合のの相手を選択する際には 、イムノグロブリンの他の構造的及び機能的性質を考慮しなければならない、例 えば、ＩｇＧ３のヒンジはより長く、より柔軟性であって、それはＩｇＧ１と融 合させた場合に、適切に畳み込みまたは機能しないであろうより大きいアドヘシ ン領域を適合させうる。他の考慮点は荷電であり；ＩｇＧイムノアドヘシンは２ 価の同種二量体である一方で、ＩｇＡ及びＩｇＭ等のＩｇサブタイプは、基本的 同種二量体単位の二量体または五量体をそれぞれ与えるであろう。インビボでの 適用のために設計されるイムノアドヘシンについては、Ｆｃ領域により特定され る動薬理学的性質及びエフェクター機能も重要である。いずれも２１日のインビ ボ半減期を有するＩｇＧ１、ＩｇＧ２及びＩｇＧ４であるが、それらの相補系を 活性化する相対的能力は異なっている。ＩｇＧ４は相補系を活性化せず、ＩｇＧ ２は相補体活性化においてＩｇＧ１よりも顕著に弱い。更にＩｇＧ１とは異なっ て、ＩｇＧ２は単核細胞または好中球のＦｃレセプターに結合しない。ＩｇＧ３ は、相補体活性化においては至適であるが、インビボ半減期は、他のＩｇＧアイ ソタイプの約３分の１である。ヒト治療において使用すべく設計されるイムノア ドヘシンについての他の重要な考慮点は、特定のアイソタイプのアロタイプ変異 体の数である。一般に、血清学的に定義されるアロタイプのより少ないＩｇＧア イソタイプが好ましい。例えば、ＩｇＧ１は、４種の血清学的に定義されるアロ タイ プ部位を有し、それらの内の２種（Ｇ１ｍ及び２）はＦｃ領域に位置し；これら の部位の内のＧ１ｍ１は、非免疫原性である。対照的に、ＩｇＧ３には１２種の 血清学的に定義されるアロタイプがあり、これらの全てはＦｃ領域にあり；これ らの部位の内わずかに３種（Ｇ３ｍ５、１１及び２１）のみが非免疫原性である １個のアロタイプを有する。従って、γ３イムノアドヘシンの潜在的免疫原性は 、γ１イムノアドヘシンよりも大きい。 親としてのイムノグロブリンに関しては、２個の重鎖間でジスルフィド結合を 形成するヒンジのシステインの直ぐ上流が、有用な結合点である。しばしば使用 される設計においては、分子のＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質部分のＣ−末 端残基のコドンが、ＩｇＧヒンジ領域の配列DKTHTCPPCP（配列番号：４４）のコ ドンの直ぐ上流におかれる。 イムノアドヘシンの構築及び発現のための好適な一般的方法は、ＷＳＸレセプ ター及びＯＢ蛋白質についてここで開示した方法と同様である。イムノアドヘシ ンは、ＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質部分をコードするｃＤＮＡを、読枠に おいてＩｇのｃＤＮＡ配列に融合することにより最も都合よく構築される。しか しながら、ゲノムＩｇ断片に対する融合も使用され得る（例えば、Gascoigne et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84:2936-2940(1987)；Aruffo et al.，Cell 61:1303-1313(1991)；Stamenkovic et al.，Cell 66:1133-1144(1991)参照）。 後者の型の融合は、発現のためのＩｇ制御配列の存在を必要とする。ＩｇＧ重鎖 定常領域をコードするｃＤＮＡは、発表された配列に基づいて、ハイブリダイゼ ーションまたはポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術により、脾臓または末梢血 リンパ細胞から誘導されたｃＤＮＡライブラリーから単離されうる。イムノアド ヘシンのＷＳＸレセプターまたはＯＢ蛋白質及びＩｇ部分をコードするｃＤＮＡ は、選択した宿主細胞にて効率的発現が可能なプラスミドベクター中に縦列にて 挿入される。哺乳動物細胞での発現のためには、ｐＫＲ−５（Schall et al.，C ell 61:361-370(1990)）及びＣＤＭ−８ベースのベクター（Seed，Nature 329:8 40(1989)）が使用され得る。正確な結合部分は、設計された結合部分コドン間の 付加的配列を、オリゴヌクレオチド特異的削除変異生成を使用して除去すること により生成されうる（Zoller et al.，Nucleic Acids Res．10:6487(1982)； Capon et al.，Nature 337:525-531(1989)）。合成的オリゴヌクレオチドが、各 半分が所望の結合部分の何れかの側に相補的であるようにし、理想的には３６− ４８量体として使用され得る。別法として、ＰＣＲ技術が、分子の２個の部分を 読枠内において、適当なベクターに結合させるために使用され得る。 イムノアドヘシンの発現用の宿主細胞系の選択は、主として発現ベクターに依 存する。他の考慮点は、必要とされる蛋白量である。ミリグラム量が、一時的ト ランスフェクトによりしばしば産生されうる。例えば、アデノウイルスＥＩＡ− 形質転換２９３ヒト胚腎細胞系は、リン酸カルシウム法の修飾によってｐＲＫ５ ベースのベクターにより一時的にトランスフェクトされ、効率的イムノアドヘシ ン発現を許容する。ＣＤＭ−８ベースのベクターは、ＤＥＡＥ−デキストラン法 によってＣＯＳ細胞のトランスフェクトに使用され得る（Aruffo et al.，Cell 61:1303-1313(1990)；Zettmeissl et al.，DNA Cell Biol．USA 9:347-353(1990 )）。大量の蛋白質が必要な場合、イムノアドヘシンは、宿主細胞系の安定な形 質転換の後に発現されうる。例えば、ｐＲＫ５−ベースのベクターは、ジヒドロ 葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）をコードし、Ｇ４１８に対する耐性を付与する付 加的なプラスミドの存在下で、モルモット卵巣（ＣＨＯ）細胞に導入されうる。 Ｇ４１８耐性のクローンが培養物中に選択でき；これらのクローンは、増大する 濃度のＤＨＦＲ阻害剤メトトレキセートの存在下で育成され；クローンが選択さ れ、ここにおいてＤＨＦＲ及びイムノアドヘシン配列をコードする遺伝子コピー 数が共に増幅される。イムノアドヘシンがＮ−末端に疎水性先行配列を含む場合 には、それが処理され、トランスフェクトされた細胞から分泌されるであろう。 より複雑な構造を持ったイムノアドヘシンの発現には、特有に適合させた宿主細 胞が必要とされ、例えば軽鎖またはＪ鎖部分がある種の骨髄腫またはハイブリド ーマ細胞により提供されるであろう（Gascoigne et al.，前出文献；Martin et al.，J．Virol．67:3561-3568(1993)）。 イムノアドヘシンは、アフィニティクロマトグラフィーにて都合よく精製され うる。アフィニティリガンドとしての蛋白質Ａの適合性は、キメラにおいて使用 されたイムノグロブリンのＦｃ領域の種及びアイソタイプに依存する。蛋白質Ａ は、ヒトγ１、γ２、またはγ４重鎖に基づくイムノアドヘシンの精製に使用さ れ得る（Lindmark et al.，J．Immunol．Meth．62:1-13(1983)）。蛋白質Ｇは、 全てのマウスアイソタイプ及びヒトγ３について推奨される（Guss et al.，EMB O J．5:1567-1575(1986)）。アフィニティリガンドが結合される担体は多くの場 合にアガロースであるが、他の担体も使用可能である。調節多孔性ガラスまたは ポリ（スチレンビニル）ベンゼン等の機械的に安定な担体は、アガロースにより 達成されるよりも早い流速及び短時間の処理を可能とする。イムノアドヘシンの 蛋白質ＡまたはＧアフィニティカラムに対する結合条件は、Ｆｃ領域、即ちその 種及びアイソタイプにより完全に指示されうる。一般的に、適切なリガンドが選 択されれば、効率的結合が条件調節されない培養液から直接に生じる。イムノア ドヘシンの際だった特徴は、ヒトのγ１分子については、蛋白質Ａの結合容量が 同じＦｃ型の抗体に比較して若干低下していることである。結合したイムノアド ヘシンは、酸性ｐＨ（３．０またはそれ以上）または穏和なカオトロピズム塩を 含む中性ｐＨ緩衝溶液の何れかにて、効率的に溶離されうる。このアフィニティ クロマトグラフィー工程は、＞９５％の純粋なイムノアドヘシン調製物を生じう る。 イムノアドヘシンを精製するために、蛋白質ＡまたはＧでのアフィニティクロ マトグラフィーに代えて、またはそれに加えて、この技術で既知の他の方法も使 用されうる。イムノアドヘシンはイオウ−親和性ゲルクロマトグラフィーにおい て抗体と同様に挙動し（Hutchens et al.，Anal．Biochem．159:217-226(1986) ）、また金属キレートクロマトグラフィーに固定化される（Al-Mashikhi et al. ，J．Dairy Sci．71:1756-1763(1988)）。しかしながら、抗体とは対照的に、イ オン交換カラムにおけるそれらの挙動は、それらの等電点のみならず、それらの キメラの性質のために分子に存在する荷電二極性によっても予想される。 所望により、イムノアドヘシンは二重特異的に作成されうる。而して、本発明 の意味のアドヘシンは、ＷＳＸレセプター細胞外領域を、他のサイトカインレセ プターサブユニツトの細胞外領域等と組み合わせてもよい。このような二重特異 的イムノアドヘシン分子が作成されるサイトカインレセプターは、ＴＰＯ（また はｍｐｌリガンド）、ＥＰＯ、ＩＬ−４、ＩＬ−７、ＧＨ、ＰＲＬ、ＩＬ−３、 ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＬＩＦ、ＯＳＭ、ＣＮＴＦ及びＩＬ−２を 含む。別法として、ＯＢ蛋白質領域は、二重特異的イムノアドヘシンの生成にお いて、ここに例示されるような他のサイトカインと組み合わされてもよい。二重 特異的分子について、それらの抗体様構造の一つのアームにキメラ抗体重鎖、及 び他のアームにキメラ抗体軽鎖からなる三量体分子が、精製の容易性の点から有 利である。二重特異的イムノアドヘシンの酸性に伝統的に使用され、１０種の四 量体の混合物を産生する抗体産生四量体とは対照的に、三量体イムノアドヘシン 構造の３本の鎖をコードする核酸によりトランスフェクトされた細胞は、３種の 分子の混合物のみを産生し、この混合物からの所望の生成物の精製は、対応して より容易である。 ｘ．ＯＢ蛋白質の長い半減期の誘導体 本発明の方法において使用される好ましいＯＢ蛋白質機能性誘導体は、ＯＢ− イムノグロブリンキメラ（イムノアドヘシン）及び他の長半減期分子を含む。Ｏ Ｂ蛋白質イムノアドヘシンの創生技術は上述した。好ましいＯＢイムノアドヘシ ンは、実施例１１に記述される技術に従って製造される。 天然分子より長い半減期を有するＯＢ蛋白質の他の誘導体は、非蛋白性ポリマ ーに共有的に結合されたＯＢ蛋白質またはＯＢ−イムノグロブリンキメラを含む 。非蛋白性ポリマーは、通常は親水性合成ポリマー、即ち天然には他に見出され ないポリマーである。しかしながら、天然の供給源から単離されるポリマーのよ うに、天然に存在し、また組み換え的若しくはインビトロの方法により産生され るポリマーは有用である。親水性ポリビニルポリマー、例えばポリビニルアルコ ール及びポリビニルピロリドンは、本発明の範囲内にはいる。特に有用なものは 、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等のポリアルキレンエステル；ポリオキシ エチレン、ポリオキシプロピレン、及びポリオキシエチレンとポリオキシプロピ レンとのブロックコポリマー（Pluronics^TM）等のポリエルキレン；ポリメタク リレート；カルボマー；ラクトース、アミロプクチン、デンプン、ヒドロキシエ チルデンプン、アミロース、デキストランサルフェート、デキストラン、デキス トリン、グリコーゲン、若しくは例えばヒアルロン酸等の酸ムコポリサッカライ ドのポリサッカライドサブユニット等の、ホモポリサッカライドまたはヘテロポ リ サッカライドを含む、サッカライド単量体、Ｄ−マンノース、Ｄ−およびＬ−ガ ラクトース、フコース、フラクトース、Ｄ−キシロース、Ｌ−アラビノース、Ｄ −グルクロン酸、シアル酸、Ｄ−ガラクツロン酸、Ｄ−マンニュロン酸（例えば 、ポリマンニュロン酸またはアルギン酸）、Ｄ−グルコサミン、Ｄ−ガラクトサ ミン、Ｄ−グルコース、及びノイラミン酸からなる分枝鎖また非分枝鎖のポリサ ッカライド；ポリソルビトール及びポリマンニトール等の糖アルコールのポリマ ー；ヘパリン若しくはヘパロンを含む。該ポリマーは、好ましくは水溶性である が、交差結合の前にはそうである必要はなく、しかしながら接合体は水溶性でな ければならない。更に、該ポリマーは、接合体形態で高度に免疫原性であっては ならず、また血管内輸液または注射により投与されるべき場合には、このような 経路に適合しないような粘性を有してはならない。 好ましくは該ポリマーは、反応性の単一の基のみを有する。このことは、蛋白 質分子の交差結合の防止を助ける。しかしながら、交差結合を低減すべく反応条 件を至適化すること、または実質的に均質な誘導体を回収するために、ゲル濾過 またはクロマトグラフィー的ふるいを通して反応生成物を精製することは、ここ における権利範囲内にある。 該ポリマーの分子量は、望ましくは約１００〜５００，０００の範囲にあり、 好ましくは約１，０００〜２０，０００である。選択される分子量は、ポリマー の性質及び置換の程度に依存するであろう。一般的には、ポリマーの親水性がよ り大きく、かつ置換の程度が大きいほど、採用される分子量はより小さい。至適 分子量は、常法の実験により決定されるであろう。 該ポリマーは、該ポリマー及び結合されるべきＯＢ蛋白質またはＯＢ−イムノ グロブリンキメラの１個以上のアミノ酸または糖残基と反応する多官能性交差結 合試薬を介して、ＯＢ蛋白質またはＯＢ−イムノグロブリンキメラに共有的に結 合される。しかしながら、誘導化ポリマーをハイブリッドと直接結合させること により、該ポリマーを直接に交差結合させること、またはその逆も、本発明の範 囲にある。 ＯＢ蛋白質またはＯＢ−イムノグロブリンキメラの共有的交差結合部位は、Ｎ −末端アミノ基及びリジン残基に見出されるイプシロンアミノ基、並びに他のア ミノ、イミノ、カルボキシル、スルヒドリル、ヒドロキシまたは他の親水性基を 含む。該ポリマーは、多官能性（通常二官能性）交差結合試薬を使用することな くハイブリッドに直接に共有的に結合されうる。アミノ基に対する共有結合は、 塩化シアヌル酸、カルボニルジイミダゾール、アルデヒド反応基（ＰＥＧアルコ キシドとブロモアセトアルデヒドのジエチルアセタール；ＰＥＧとＤＨＳＯ及び 無水酢酸；ＰＥＧと４−ヒドロキシベンズアルデヒドのフェノキシド、スクシン イミジル活性化エステル、活性化ジチオカルボネートＰＥＧ、２，４，５−トリ クロロフェニルクロロホルメートまたはＰ−ニトロフェニルクロロホルメート活 性化ＰＥＧ）に基づく既知の化学によりなされる。カルボキシル基は、カルボジ イミドを使用してＰＥＧ−アミン結合により誘導される。 ポリマーは、化学試薬、例えばメタ過ヨウ素酸または酵素、例えばグルコース 若しくはガラクトースオキシダーゼ（何れかが炭水化物のアルデヒド誘導体を生 成する）を使用する酸化により、次いでオリゴサッカライドのビオチンまたはア ビジンにより標識に関するHeitzmann et al.，P．N．A．S．71:3537-41(1974)ま たはBayer et al.，Methods in Enzymology 62:310(1979)により記述されるのと 同様な方法でヒドラジンまたはアミノ誘導体ポリマーとの反応により、オリゴサ ッカライドの基に接合される。更に、オリゴサッカライドを結合するために使用 された他の化学的または酵素的方法は、一般に誘導のためのアミノ酸部位よりも 少ない置換が存在し、従ってオリゴサッカライド生成物はより均質であるため、 特に有利である。オリゴサッカライド置換基は、場合により酵素消化、例えばノ イラミニダーゼ消化により、ポリマー誘導に先立って修飾されてもよい。 該ポリマーは、結合されるポリペプチドのアミノ酸側鎖、またはＮ−若しくは Ｃ−末端に対して直接に反応性を有するか、または多官能性交差結合試薬と反応 性の基を有する。一般的に、このような反応性基を有するポリマーは、固定化蛋 白質の調製について知られている。ここにおいてこのような化学を使用するため には、蛋白質固定化のために従来使用された不溶性ポリマーと同様な様式で誘導 するのでなければ、水溶性ポリマーを採用しなければならない。シュウ化シアン 活性化は、ポリサッカライドの交差結合において採用するために、特に有用な手 法である。 出発ポリマーについて称される“水溶性”とは、接合のために使用される該ポ リマーまたは反応性中間体が、誘導反応に関与するために充分に水溶性であるこ とを意味する。 ポリマー接合体について称される“水溶性”とは、該接合体が血液糖の生理学 的液体に可溶性であることを意味する。 このようなポリマーによる置換の程度は、蛋白質上の反応部位の数、蛋白質の 全てまたは断片が使用されるか、該蛋白質が異種蛋白質との融合物であるか否か （例えばＯＢ−イムノグロブリンキメラ）、分子量、親水性、及びポリマーの他 の性質、並びに選択される特定の蛋白質誘導部位等に依存して変化するであろう 。一般的に、接合体は１〜１０個のポリマー分子を有し、一方で任意の異種的配 列は、所望の活性が有意に悪影響を受けない限り、基本的には限定されない個数 のポリマー分子により置換されてもよい。交差結合の至適な程度は、所望の提要 にて機能する接合体の能力が決定された後には、置換の程度を変化させるための 時間、温度及び他の反応条件が変化する実験的マトリクスにより容易に決定され る。 例えばＰＥＧ等のポリマーは、ＰＥＧ等の非蛋白ポリマーによる蛋白質の共有 的修飾について、それ自体既知の広範囲の方法により交差結合される。しかしな がら、これらの方法のいくつかは、ここにおける目的に対しては好ましくない。 塩化シアヌル酸化学は、蛋白質交差結合を含む多くの副反応を招く。更に、それ は特にスルヒドリル基を含む蛋白質の不活性化を導く恐れが大きい。カルボニル ジイミダゾール化学（Beauchamp et al.，Anal．Biochem.，131:25-33(1983)） は、高いｐＨ（＞８．５）を必要とし、これは蛋白質を不活性化しうる。更に、 “活性化ＰＥＧ”中間体は水と反応しうる為、蛋白質に対して大過剰モルの“活 性化ＰＥＧ”が必要とされる。カルボニルジイミダゾール化学に要求される高濃 度のＰＥＧは、ゲル濾過クロマトグラフィー及び親水性クロマトグラフィーの両 者に対して悪影響を与えるため、精製において問題を生じる。加えて、高濃度の “活性化ＰＥＧ”は、蛋白質を沈殿させ得、これはそれ自体既に指摘されている 問題点である（Davis，米国特許第4,179,337）。他方において、アルデヒド化学 （Royer，米国特許第4,002,531）は、わずかに４０倍のモル過剰量のＰＥＧ及び １−２時間のインキュベートを必要とすることから、より効率的である。しかし ながら、“断言されているＰＥＧの金属ベース酸化剤と複合体を形成する傾向の 為に”（Harris et al.，J．Polym．Sci．Polym．Chem．Ed．22:341-52(1984)） 、ＰＥＧアルデヒドの調製についてRoyerにより示唆された二酸化マンガンは問 題である。ＤＭＳＯ及び無水酢酸を使用するMoffatt酸化の使用は、この問題を 取り除く。更にRoyerにより示唆されたナトリウムボロヒドリドは高いｐＨにお いて使用されなければならず、ジスルフィド結合を還元する顕著な傾向を有する 。対照的に、ナトリウムシアノボロヒドリドは、中性ｐＨにおいて有効であり、 ジスルフィド結合を還元する極めてわずかな傾向のみを有するため、好ましい。 本発明のＯＢ蛋白質またはＯＢ−イムノグロブリンキメラを修飾するための官 能化ＰＥＧポリマーは、Shearwater Polyner，Inc．(Huntsville，AL)から入手 可能である。このように商業的に入手可能なＰＥＧポリマーは、限定されるもの ではないが、アミノ−ＰＥＧ、ＰＥＧアミノ酸エステル、ＰＥＧ−ヒドラジド、 ＰＥＧ−チオール、ＰＥＧ−コハク酸塩、カルボキシメチル化ＰＥＧ、ＰＥＧ− プロピオン酸、ＰＥＧアミノ酸、ＰＥＧスクシンイミジルスクシネート、ＰＥＧ スクシンイミジルプロピオネート、カルボキシメチル化ＰＥＧのスクシンイミジ ルエステル、ＰＥＧのスクシンイミジルカルボネート、アミノ酸ＰＥＧのスクシ ンイミジルエステル、ＰＥＧ−オキソカルボニルイミダゾール、ＰＥＧ−ニトロ フェニルカルボネート、ＰＥＧトレシレート、ＰＥＧ−グリシジルエーテル、Ｐ ＥＧ−アルデヒド、ＰＥＧビニルスルホン、ＰＥＧ−マレイミド、ＰＥＧ−オル トピリジル−ジスルフィド、異種官能性ＰＥＧ、ＰＥＧビニル誘導体、ＰＥＧシ ラン、及びＰＥＧホスホライドを含む。これらのＰＥＧ誘導体を結合させるため の反応条件は、蛋白質、所望のＰＥＧ化の程度及び使用されるＰＥＧ誘導体に依 存して変化するであろう。ＰＥＧ誘導体の選択におけるいくつかの因子は、所望 の結合点（リジンまたはヒスチジン）、誘導体の加水分解安定性及び反応性、安 定性、結合の毒性及び抗原性、分析に対する適合性等を含む。任意の特定の誘導 体の使用に関する特定の指導は、製造者から入手可能である。 本発明の長半減期接合体は、未反応原料からゲル濾過により分離できる。接合 体の異種的分子種は、同様な方法で他から精製される。該ポリマーは疎水性ゲル として水不溶性であってもよい。 接合体は、イオン交換クロマトグラフィーによっても精製されうる。親電子的 に活性化されたＰＥＧの多くの化学は、ＰＥＧ化生成物のアミノ基の電荷を低下 させる。而して、高分解能イオン交換クロマトグラフィーは、遊離及び接合蛋白 質を分離するために使用され得、また異なるＰＥＧ化の程度を持った分子種を分 離するために使用され得る。実際に、異なる分子種（例えば１個または２個のＰ ＥＧ残基を有する）の分離は、未反応アミノ酸のイオン的性質の差異によって可 能である。 Ｂ．ＷＳＸレセプターの治療的使用 ＷＳＸレセプター及びＷＳＸレセプター遺伝子は、造血細胞における減少に特 徴づけられる疾患の治療において、哺乳動物に投与するために治療的用途が見出 されると考えられる。これらの疾患の例は、貧血（大球性及び無形成貧血）；血 小板減少症；形成不全；散在性血管内凝集（ＤＩＣ）；骨髄形成不全；免疫（自 己免疫）血小板減少性紫斑（ＩＴＰ）；ＨＩＶ誘導ＩＴＰを含む。加えて、これ らのＷＳＸレセプター分子は、骨髄増殖性血小板細胞疾患並びに炎症症状及び鉄 欠乏における血小板増加症の治療において有用であり得る。造血細胞増殖を導く ＷＳＸレセプターポリペプチド及びＷＳＸレセプター遺伝子は、化学若しくは放 射線療法または骨髄移植療法を受けた細胞における成熟血液細胞系の再母集団形 成を促進する為にも使用され得る。一般的にはＷＳＸレセプター分子は、初原的 造血細胞の増殖及び／または分化（特には増殖）を増強するものと期待される。 ＷＳＸレセプター及びＷＳＸレセプター遺伝子の他の可能性ある治療適応用は、 肥満及び糖尿病、並びに腎臓、肝臓及び肺の生育及び／または修復（例えば腎不 全）を促進する為の処置を含む。ＷＳＸレセプターは、II型成人糖尿病、生殖無 能、過コレステロール血症、高脂血症、動脈疾患及び高血圧等の肥満関連症状の 処置にも使用され得る。 ＷＳＸレセプターは、上記に示した臨床状況において、単独またはサイトカイ ン（ＯＢ蛋白質等）、成長因子若しくは抗体類との組み合わせにおいて投与され うる。これは、ＷＳＸレセプター投与量の効果的な低減を促す。このような付加 的分子の好適な投与量は、下記に議論される。 内因性ＷＳＸレセプターの低減した水準またはＷＳＸレセプター遺伝子の不能 を有する哺乳動物に対するＷＳＸレセプターの投与は、好ましくはそのような低 減した水準が病理的な疾患を導くか、ＷＳＸレセプターの活性化を欠く場合に考 慮される。全長のＷＳＸレセプターが患者に投与されるこれらの実施態様におい て、該レセプターをコードする遺伝子が、遺伝子療法技術によって患者に投与さ れうる。 遺伝子療法の適用において、例えば欠陥遺伝子との置き換えによって、治療的 に有効な遺伝子産物のインビボにての合成が達成されるように、遺伝子が細胞に 導入される。“遺伝子療法”とは、単一の処置によって継続的効果が達成される 慣用の遺伝子療法と、１回または反復する治療的に有効なＤＮＡまたはｍＲＮＡ の投与を含む遺伝子治療薬の投与との両者を含む。アンチセンスＲＮＡ及びＤＮ Ａは、インビボにおけるある遺伝子の発現を阻止するための治療剤として使用さ れ得る。細胞膜により制限された取り込みのために低い細胞内濃度ではあるが、 短いアンチセンスオリゴヌクレオチドが、それらが阻害剤として作用する細胞中 に取り入れられることが既に示されている（Zamecnik et al.，Proc．Natl．Aca d．Sci．USA 83:4143-4146(1986)）。該オリゴヌクレオチドは、例えば、それら の負に荷電するホスホジエステル基を非荷電基に置換することにより、それらの 取り込みを向上するように修飾されうる。 核酸を性細胞に導入する為の種々の技術が利用可能である。この技術は、核酸 が、インビトロでの培養細胞中、または意図する宿主の細胞にインビボにおいて 移送されるかにより変化する。核酸をインビトロにおいて哺乳動物細胞に移送す る技術は、リポソーム、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、 細胞融合、ＤＥＡＥ−デキストラン、リン酸カルシウム沈殿法等の使用を含む。 最近好まれるインビボ遺伝子移送技術は、ウイルス性（典型的にはレトロウイル ス性）ベクターによるトランスフェクション、及びウイルス被覆蛋白−リポソー ム媒介トランスフェクションが含まれる（Dzau et al.，Trends in Biotechnolo gy 11:205-210(1993)）。ある場合には、核酸供給源を標的細胞の細胞表面膜蛋 白質に特異的抗体、標的細胞のレセプターに対するリガンド等の標的細胞を標的 とする試薬と共に提供することが望ましい。リポソームが使用される場合、エン ドサイトーシスに関連する細胞表面膜蛋白質に結合する蛋白質が、標的を定め及 び／または取り込みを促進するために使用されてよく、例えば、特定の細胞に対 して向性を持ったカプシド蛋白質またはその断片、周期において内部化を行う蛋 白質に対する抗体、及び細胞内局在化を標的とし、細胞内半減期を向上する蛋白 質がある。レセプター媒介エンドサイトーシスの技術は、例えば、Wu et al.，J ．Biol．Chem．262:4429-4432(1987)；及びWagner et al.，Proc．Natl．Acad． Sci．USA 87:3410-3414(1990)により記述されている。最近知られている遺伝子 の標識付け及び遺伝子治療プロトコールの検討にはAnderson et al.，Science 2 56:808-813(1992)参照。 本発明はＷＳＸレセプター活性化の拮抗剤を提供する（例えば、ＷＳＸレセプ ターＥＣＤ、ＷＳＸレセプターイムノアドヘシン、及びＷＳＸレセプターアンチ センス核酸、中和抗体等、またその使用に関しては下記Ｅ節に検討される）。Ｗ ＳＸレセプター拮抗剤の増大または過剰レベルの内因性ＷＳＸレセプター活性化 の哺乳動物に対する投与は、好ましくはそのような水準のＷＳＸレセプター活性 化が病理学的疾患を導く場合に考慮される。 ある実施態様において、ＷＳＸレセプター拮抗剤分子は、特には血清中のＷＳ Ｘリガンド濃度が通常の生理学的水準をこえる場合等、体内で内因性リガンドを 結合するために使用され得、これによって不感応的になったＷＳＸレセプターを ＷＳＸリガンドに対して応答可能とする。また、望まれない細胞応答（例えば、 腫瘍細胞の増殖）を活性化している内因性ＷＳＸレセプターに結合することも利 益をもたらす。ＷＳＸレセプター拮抗剤の可能性ある治療適応用は、例えば、代 謝性疾患（食欲不振、悪液質、ステロイド誘発体幹肥満、及び食欲喪失、食物摂 取の減少または体重減少により特徴づけられる他の衰弱性疾患）、幹細胞腫瘍、 及びＷＳＸレセプター発現する他の腫瘍の処置を含む。 ＷＳＸレセプターＥＣＤの医薬組成物は、更にＷＳＸリガンドを含んでよい。 このような二重組成物は、それがＷＳＸリガンドの半減期を延ばすために治療的 に有用である場合、及び／または異種三量体複合体として直接に内因性ＷＳＸレ セプターを活性化する場合に利点があるであろう。ＷＳＸレセプターの治療用剤 形は、貯蔵のために、所望の純度を有するＷＳＸレセプターを場合により生理学 的に許容される担体、賦形剤、または安定化剤（Remington's Pharmaceutical S cience，16th edition，Osol，A.，Ed.，(1980)）と混合することにより、凍結 乾燥ケーキまたは水溶液の形態で調製される。許容される担体、賦形剤及び安定 化剤は、使用される投与量及び濃度において受容者に対して非毒性であり、リン 酸、クエン酸、及び他の有機酸等の緩衝剤；アスコルビン酸を含む抗酸化剤；低 分子量（約１０残基未満）のポリペプチド；血清アルブミン、ゼラチン、または イムノグロブリン等の蛋白質；ポリビニルピロリドン等の親水性ポリマー；グリ シン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン、またはリジン等のアミノ酸；グ ルコース、マンノースまたはデキストリンを含むモノサッカライド、ジサッカラ イドまたは他の炭水化物；ＥＤＴＡ等のキレート化剤；マンニトールまたはソル ビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の塩形成対イオン；Tween，Pluronics TMまたはポリエチレングリコール(PEG)等の非イオン性界面活性剤を含む。 ＷＳＸレセプターは、例えばコアセルベート化技術または界面重合（例えば、 それぞれ、リポソーム、ヒドロキシメチルセルロースまたはゼラチンマイクロカ プセル及びポリ−（メチルメタクリレート）マイクロカプセル）により調製され 、コロイド状薬剤分配システム（例えば、リポソーム、アルブミン微小球、マイ クロエマルジョン、ナノパーティクル、及びナノカプセル）において、またはマ クロエマルジョンにおいて、マイクロカプセルに取り込まれてもよい。このよう な技術は、Remington's Pharmaceutical Science,前出文献に開示されている。 インビボでの投与に使用するためのＷＳＸレセプターは、滅菌的でなければな らない。これは、凍結乾燥及び再構成に先行してまたはその後に、滅菌フィルタ ー膜を通して濾過により容易に行われうる。ＷＳＸレセプターは通常凍結乾燥形 態または溶液にて貯蔵されるであろう。 治療用ＷＳＸレセプター組成物は、一般に例えば静脈内溶液バッグまたは皮下 注射針で刺すことが出来るストッパを有するバイアル等の滅菌的な連通部を有す る容器内に収容される。 ＷＳＸレセプター投与の経路は、既知の方法に従って、、例えば、特定の指示 について上述した経路並びに静脈内、腹腔内、脊髄内、筋内、眼内、動脈内、病 変部内に注射または輸液の経路、または下記の徐放系である。ＷＳＸレセプター は、輸液により継続的に、または大量注射により投与される。一般に、疾患が許 容できれば、製剤化してＷＳＸレセプターを部位特異的分配により投与すべきで ある。 徐放調製物の好ましい例は、蛋白質を含有する固体疎水性ポリマーの半透過性 担体を含み、担体は、フィルムまたはマイクロカプセル等の成形された形態であ る。徐放性担体の例は、ポリエステル、Langer et al.，J．Biomed．Mater．Res ．15:167-277(1981)及びLanger，Chem．Tech．12:98-105(1982)に記述されるハ イドロゲル（例えば、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）、ポリラク チド（米国特許第3,773,919、EP 58,481）、Ｌ−グルタミン酸及びγエチル−Ｌ −グルタメートのコポリマー（Sidman et al.，Biopolymers 22:547-556(1983) ）、非−分解性エチレン−ビニルアセテート（Langer et al.,前出文献）、Lupr on Depot^TM（乳酸−グリコール酸コポリマー及びロイプロライドアセテートから なる注射可能な微小球）等の分解性乳酸−グリコール酸コポリマー、並びにポリ −Ｄ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸（EP 133,988）を含む。 ポリエチレン−ビニルアセテート及び乳酸−グリコール酸コポリマーのポリマ ーは、１００日にわたって分子の放出を可能とする一方で、ある種のハイドロゲ ルは、蛋白質をより短期間で放出する。カプセル化された蛋白質が体内に長期間 残ると、湿り気の中に３７℃にて曝された結果、それらは変性し、または凝集し て生物学的活性及び免疫原性の生じうる変化をもたらす。関連する機構に応じて 蛋白質の安定化のために合理的な手段が考案されうる。例えば、凝集の機構が、 チオ−ジチオ交換を介しての分子間Ｓ−Ｓ結合形成であることが見出された場合 、安定化はスルヒドリル残基の修飾、酸性溶液からの凍結乾燥、水分量の調整、 適切な添加剤の使用及び特定のポリマー担体組成物を開発等によって達成されう る。 徐放性ＷＳＸレセプター組成物は、リポソーム捕捉ＷＳＸレセプターも含む。 ＷＳＸレセプターを含むリポソームは、それ自体既知の方法により調製される： Hwang et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 77:4030-4034(1980)； EP 52,322；EP 36,676；EP 88,046；EP 143,949；EP 142,641；日本国特許出願8 3-118008；米国特許第4,485,045及び4,544,545号；及びEP 102,324。通常、リポ ソームは小型（約２００−８００オングストローム）の単層型で、その脂質含量 は約３０％コレステロール以上であり、選択される比率は至適ＷＳＸレセプター 治療のために調節される。 局所的に適用される場合、ＷＳＸレセプターは好適には担体及び／または賦形 剤等の他の成分と組み合わされる。このような他の成分にはそれらが生理学的に 許容され、かつ予定する投与について有効であり、組成物の活性成分の活性を破 壊しないことを除いて、性質に制限はない。好適なベヒクルの例は、軟膏、クリ ーム、ゲル、または懸濁物であり、精製されたコラーゲンを含むかまたは含まな い。該組成物は経皮的パッチ、プタスター、またはバンデージに、好ましくは液 体または半液体の形態で含浸させてもよい。 ゲル剤型を得るためには、液体組成物中に製剤化されたＷＳＸレセプターを、 局所投与に適当な粘性のゲルを形成すべく、有効量の水溶性ポリサッカライドま たはＰＥＧ等の合成ポリマーと混合してもよい。使用され得るポリサッカライド は、例えば、アルキルセルロース、ヒドロキシアルキルセルロース及びアルキル ヒドロキシアルキルセルロース含むエーテル化セルロース誘導体、等のセルロー ス誘導体、例えばメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、カルボキシ メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース及びヒドロキシプロピ ルセルロース等；デンプン及び分画デンプン；寒天；アルギン酸及びアルキン酸 塩；アラビアゴム；プル欄；アガロース；カーラキナン；デキストラン；デキス トリン；フルクタン；イヌリン；マンナン；キシラン；アラビナン；キトサン； グリコーケン；グルカン；及び合成生体高分子；並びにキサンタンガム；グアガ ム；イナゴマメゴム；アラビアゴム；トラガカンスゴム；カラヤゴム等のゴム類 、並びにそれらの誘導体及び混合物を含む。ここにおける好適なゲル化剤は、生 体系に対して不活性であり、非毒性、調製が容易、及び流動性に過ぎずかつ粘性 に過ぎない、かつＷＳＸレセプターをその内部に維持して不安定化しないもので ある。 好ましくはポリサッカライドは、エーテル化セルロースであり、より好ましく はＵＳＰに列挙された充分に定義され精製されたもの、例えば、ヒドロキシプロ ピルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、及びヒドロキシプロピルメチル セルロース等のメチルセルロース及びヒドロキシアルキルセルロース誘導体であ る。ここにおいて最も好ましくは、メチルセルロースである。 ゲル化のために有用なポリエチレングリコールは、典型的には適切な粘性を得 るために低及び高分子量ＰＥＧの混合物である。例えば、分子量４００−６００ のＰＥＧの、分子量１５００のものとの混合物は、ペーストを得るために適当な 比で混合した場合に、この目的に有効である。 ポリサッカライド及びＰＥＧに適用したように、“水溶性”なる用語は、コロ イド溶液及び分散物を含む。一般にセルロース誘導体の溶解度は、エーテル基の 置換の程度により決定され、ここにおいて有用な安定化誘導体は、該誘導体を水 溶性とするために、セルロース鎖中の無水グルコース単位あたりのエーテル基を 充分に持たねばならない。無水グルコース単位あたり少なくとも０．３５エーテ ル基のエーテル置換度が、一般には充分である。さらには、セルロース誘導体は 、例えば、Li，Na，K，またはCs塩類等のアルカリ金属塩の形態でもよい。 メチルセルロースがゲルにおいて採用される場合、それは好ましくは約２−５ ％、より好ましくは約３％のゲルを含み、ＷＳＸレセプターはゲルのｍｌあたり 、約３００−１０００ｍｇの量で存在する。 治療的に採用されるべきＷＳＸレセプターの有効量は、例えば、治療対象、投 与経路及び患者の症状に依存するであろう。従って、治療医は、至適治療効果を 得るために要求されるように、投与量の力価を決定し、投与経路を修飾する必要 がある。典型的には臨床医は、所望の効果が達成される投与量に至るまで、ＷＳ Ｘレセプターを投与するであろう。全身治療のための典型的な１日投与量は、上 述した因子に依存して、約１μｇ／ｋｇから１０ｍｇ／ｋｇまでまたはそれ以上 であろう。別法としての一般的計画では、ＷＳＸレセプターは製剤化され、組織 内において約０．１ｎｇ／ｃｃ以上であり有効であるが不当に毒性ではない最大 投与量までのＷＳＸレセプター濃度が確立され得る投与量をもって、標的部位ま たは組織に分配される。この組織内濃度は、可能であれば連続的輸液、徐放剤、 局所投与、経験的に決定される頻度での注射により維持されなければならない。 この治療の進行は、慣用のアッセイにより容易に監視される。 Ｃ．ＷＳＸレセプターの非治療的用途 ＷＳＸレセプター核酸は、ここに例示される組換え技術によってＷＳＸレセプ ターポリペプチドを調製するために有用であり、次いでこれは以下に記述される 種々の有用性を持った抗−ＷＳＸレセプター抗体の産生に使用され得る。 ＷＳＸレセプター（ポリペプチドまたは核酸）は、インビトロにて細胞の増殖 及び／または分化を誘導するために使用され得る。特に、この分子は幹細胞／先 駆細胞母集団（例えば、下記実施例８に記述されるようにして得られたＣＤ３４ ＋細胞母集団）の増殖を誘導するために使用され得る。生体外にて生育されるこ れらの細胞は、ここに記述されるような他の既知の成長因子またはサイトカイン に同時に曝されうる。これは、ＷＳＸレセプターを有する細胞の増殖及び／また は分化を生じる。 本発明の別の側面において、ＷＳＸレセプターはＷＳＸリガンドのアフィニテ ィ精製の為にも使用され得る。略述すれば、この技術は：（ａ）ＷＳＸリガンド の供給源を固定化ＷＳＸレセプターに、精製されるべきＷＳＸリガンドが選択的 に固定化レセプターに吸着される条件下で接触させ；（ｂ）固定化ＷＳＸレセプ ター及びその担体を洗浄して非吸着物質を除去し、；並びに（ｃ）ＷＳＸリガン ドを、それが吸着された固定化ＷＳＸレセプターから溶離緩衝溶液にて溶出する ことを含む。アフィニティ精製の特に好ましい実施態様においては、ＷＳＸレセ プターは不活性かつ多孔性の担体（例えば、シュウ化シアンと反応させたアガロ ース）に、共有的に結合する。特に好ましくは、蛋白質Ａカラムに固定化したＷ ＳＸレセプターイムノアドヘシンである。ＷＳＸリガンドを含む溶液が、次いで クロマトグラフィー担体を通される。ＷＳＸリガンドはカラムに吸着され、次い で溶離条件を変化させる（例えばｐＨまたはイオン強度を変化させる）ことによ り放出される。 ＷＳＸレセプターは、ＷＳＸレセプターへの結合について、可能性ある作動剤 または拮抗剤の競合的スクリーニングに使用されてもよい。このような作動剤ま たは拮抗剤は、それぞれ不十分または過剰なＷＳＸレセプター活性化に特徴づけ られる症状の治療用の可能性ある治療薬となりうる。 ＷＳＸレセプターに結合する分子を同定するための好ましい技術は、アッセイ プレートのウエル等の固相に結合されるキメラレセプター（例えば、エピトープ 標識ＷＳＸレセプターまたはＷＳＸレセプターイムノアドヘシン）を使用する。 場合により標識された（例えば放射標識）分子の、固定化レセプターへの結合が 評価されうる。 ＷＳＸレセプター作動剤または拮抗剤の同定のために、チミジン取り込みアッ セイが使用され得る。拮抗剤のスクリーニングのために、ＷＳＸレセプターはＷ ＳＸリガンド次いで推定される拮抗剤に曝されるか、またはＷＳＸリガンドと拮 抗剤がＷＳＸレセプターに同時に添加され、拮抗剤のレセプター活性化阻害能力 が評価される。 ＷＳＸレセプターポリペプチドは、分子量マーカーとしても有用である。ＷＳ Ｘレセプターポリペプチドを分子量マーカーとして使用するために、例えばゲル 濾過クロマトグラフィーまたはＳＤＳ−ＰＡＧＥが、蛋白質分離のために使用さ れ、このために実質的に通常の方法でそれらの分子量を決定することが望まれる 。ＷＳＸレセプター及び他の分子量マーカーは、分子量範囲を与えるための標準 として使用されるであろう。例えば、ホスホリラーゼｂ（ｍｗ＝97,400）、ウシ 血清アルブミン（ｍｗ＝68,000）、オボアルブミン（ｍｗ＝46,000）、ＷＳＸレ セプター（ｍｗ＝44,800）、トリプシンインヒビタ（ｍｗ＝20,100）、及びリゾ チーム（ｍｗ＝14,400）が、ｍｗマーカーとして使用され得る。ここで述べた他 の分子量マーカーは、Amersham Corporation，Arlington Heights，ILから商業 的に購入できる。分子量マーカーは、その検出を容易にするために一般に標識さ れている。例えばマーカーはビオチニル化され、分離に次いでストレプトアビジ ン−西洋ワサビペルオキシダーゼと共にインキュベートされて種々のマーカーが 光り検出により検出可能となる。 精製ＷＳＸレセプター及びそれをコードする核酸は、ＷＳＸレセプター及びそ のリガンドの機構研究用試薬、正常の生育及び発生におけるＷＳＸレセプター及 びＷＳＸリガンドの役割研究、並びに異常な生育及び発生、例えば悪性腫等のた めに試薬として販売されうる。 ＷＳＸレセプター変異体は、それらが採用される分析計、例えば抗−ＷＳＸレ セプター抗体により認識される限り、ＷＳＸレセプターのためのアッセイ例えば ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡまたはＲＲＡにおける標準または対象として有用である。 Ｄ．ＷＳＸレセプター抗体調製 １．ポリクローナル抗体 一般にポリクローナル抗体は、関連する抗原及びアジュバントの複数回の経皮 的（ｓｃ）または腹腔内的（ｉｐ）注射により、動物に生じさせうる。好ましい エピトープはＷＳＸレセプターのＥＣＤにあり、ポリクローナルまたはモノクロ ーナル抗体の創生のために、抗原としてはＷＳＸレセプターＥＣＤまたはＥＣＤ を含む分子（例えばＷＳＸレセプターイムノアドヘシン）を使用することが望ま しい。関連する抗原を、免疫されるべき種に対して免疫原性の蛋白質、例えばキ ーホールリンペットヘモシアニン、血清アルブミン、ウシチログロブリンまたは ダイズトリプシンインヒビタ等と、二官能性または誘導化試薬、例えばマレイミ ドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル（システイン残基を介しての接合） 、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（リジン残基を介して）、グルタルアルデヒド 、無水コハク酸、ＳＯＣｌ₂、またはＲ及びＲ¹が異なるアルキル基であるＲ¹Ｎ ＝Ｃ＝ＮＲを使用して接合させることは有用であろう。 動物は、１ｍｇまたは１μｇのペプチドまたは接合体（それぞれウサギまたは マウス）を３体積のフロイント完全アジュバントと合わせ、該溶液を複数部位に 皮内的に注射することにより、抗原、免疫原性接合体または誘導体に対して免疫 される。１ケ月後に動物は、フロイント完全アジュバント中のペプチドまたは接 合体の基の量の１／５ないし１／１０を用い、複数部位の経皮注射により追加免 疫される。７〜１４日後に、動物は採血され、血清が抗体力価についてアッセイ される。動物は力価がプラトーにはいるまで追加免疫される。好ましくは動物は 、同じ抗原の接合体であるが、異なる蛋白質に接合するか及び／または異なった 交差結合試薬を介して接合する接合体にて追加免疫される。接合体は、蛋白質融 合体として組み換え細胞培養においても調製されうる。アルム等の凝集剤も、免 疫応答を向上するために好適に使用される。 ２．モノクローナル抗体 モノクローナル抗体は、実質的に均質な抗体の母集団、即ち母集団に含まれる 個々の抗体は、少量存在しうる自然に起こる可能性のある変異を除いて同等であ る母集団から得られる。従って、修飾語“モノクローナル”は、異なる抗体の混 合物ではないものとしての抗体の特徴を示す。 例えばモノクローナル抗体は、Kohler et al.，Nature256:495(1975)によって 最初に記述されたハイブリドーマ法を使用して作成されるか、または組換えＤＮ Ａ法（Cabilly et al.，前出文献）によって作成されてもよい。ハイブリドーマ 法において、マウスまたはハムスター等の適当な宿主動物は、免疫に使用した蛋 白質に対して特異的に結合するであろう抗体を産生するか、または産生しうるリ ンパ細胞を引き出すために、上述したようにして免疫される。別法として、リン パ細胞はインビトロにおいて免疫される。次いで、リンパ細胞は、ポリエチレン グリコール等の適当な融合試薬を使用して、ミエローマ細胞と融合され、ハイブ リドーマ細胞が形成される（Goding，Monoclonal Antibodies：Principles and Practice，pp．59-103(Academic Press，1986)）。 斯くして調製されたハイブリドーマ細胞は、非融合の親ミエローマ細胞の生育 または生存を阻害する１種以上の物質を好ましくは含有する、適当な培養培地に 播種され育成される。例えば親ミエローマ細胞が酵素ハイポキサンチングアニン ホスホリボシルトランスフェラーゼ（HGPRTまたはHPRT）を欠く場合には、ハイ ブリドーマのための培地は、典型的にはHGPRT-欠損細胞の生育を阻害する物質で あるハイポキサンチン、アミノプテリン及びチミジン（ＨＡＴ培地）を含むであ ろう。 好ましいミエローマ細胞は、効率的に融合し、選択された抗体産生細胞により 安定した高水準の抗体産生を支持し、かつＨＡＴ培地等の培地に感受性のもので ある。これらの内で好ましいミエローマ細胞系は、Salk Institute Cell Distri bution Center，San Diego，California USAから入手可能なＭＯＰＣ−２１及び ＭＰＣ−１１マウス腫瘍から誘導されるもの、及びAmerican Type Culture Coll ection，Rockville，Maryland USAから入手可能なＳＰ−２細胞等のネズミミエ ローマ系である。ヒトミエローマ及びマウス−ヒトヘテロミエローマも、ヒトモ ノクローナル抗体の産生に関して記述されている（Kozbor et al.，J．Immunol ．133:3001(1984)；Brodeur et al.，Monoclonal Antibody Production Techniq u es and Applications，pp．51-63（Marcel Dekker，Inc．New York，1987)）。 ハイブリドーマ細胞が生育する培養培地は、該抗原に対して向けられたモノク ローナル抗体の産生についてアッセイされる。好ましくは、ハイブリドーマ細胞 により産生されるモノクローナル抗体の結合特異性が、免疫沈殿または放射免疫 アッセイ（ＲＩＡ）若しくは酵素結合免疫吸着剤アッセイ（ＥＬＩＳＡ）等のイ ンビトロ結合アッセイにより測定される。 モノクローナル抗体の結合親和性は、例えばMunson et al.，Anal．Biochem． 107:220(1980)のスキャッチャード（Scatchard）アッセイにより測定されうる。 ハイブリドーマが、所望の特異性、親和性及び／または活性の抗体を産生する ことが同定された後は、該クローンは限定希釈法によりサブクローン化され得、 標準法により育成される（Goding，前出文献）。この目的のために適当な培地は 、Ｄ−ＭＥＭまたはＲＰＭＩ−１６４０培地を含む。加えて、ハイブリドーマ細 胞は、動物内で腹水腫瘍としてインビボにおいて生育されうる。 サブクローンから分泌されたモノクローナル抗体は、例えば蛋白質Ａ−セファ ロース、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析または アフィニティクロマトグラフィー等の慣用のイムノグロブリン精製方法により、 培養培地、腹水または血清から好適に分離される。 モノクローナル抗体をコードするＤＮＡは、慣用方法により容易に単離され、 配列決定される（例えばネズミ抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的 に結合しうるオリゴヌクレオチドプローブの使用により）。ハイブリドーマ細胞 は、このようなＤＮＡの好ましい供給源として働く。一旦単離されれば、ＤＮＡ は発現ベクターに入れられ、これは次いで、E．coli細胞、霊長類ＣＯＳ細胞、 モルモット卵巣（ＣＨＯ）細胞、またはイムノグロブリン蛋白質を別途産生しな いミエローマ細胞にトランスフェクトさせ、組換え宿主細胞においてモノクロー ナル抗体の合成を得る。抗体をコードするＤＮＡの最近における組換え発現に関 する総説は、Skerra et al.，Curr．Opinion in Immunol．5:256-262(1993)及び pluckthun，Immunol．Revs．130:151-188(1992)を含む。 更なる実施態様において、抗体または抗体断片は、McCafferty et al.，Natur e 348:552-554(1990)に記述される枝術を使用して生成された抗体ファージライ ブラリーから単離されうる。Clackson et al.，Nature 352:624-628(1991)及びM arks et al.，J．Mol．Biol．222:581-597(1991)は、ファージライブラリーを使 用して、ネズミ及びヒト抗体の単離をそれそれ記述している。引き続く文献は、 鎖シャフルによる高親和性（ｎＭ範囲）ヒト抗体の産生（Marks et al.，Bio/Te chnology 10:779-783(1992)）、並びに極めて大きいファージライブラリー構築 のための計画として組み合わせ感染及びインビボ組換え（Waterhouse et al．Nu c．Acids Res．21:2265-2266(1993)）を記述している。しかしてこれらの技術は 、モノクローナル抗体の単離に関する伝統的モノクローナル抗体ハイブリドーマ 技術に対して生存可能な別の技術であり得る。 ＤＮＡも同種的ネズミ配列に代えて、ヒト重鎖及び軽鎖定常領域コード配列を 置換することにより（Cabilly et al.,前出文献；Morrison et al.，Proc．Natl ．Acad．Sci．USA 81:6851(1984)）、あるいはイムノグロブリンコード配列に非 イムノグロブリンポリペプチドの全てまたは一部のコード配列を共有的に結合す ることにより修飾されうる。 典型的なこのような非イムノグロブリンポリペプチドは、抗体の定常領域を置 換するか、またはそれらは抗体の一方の抗原結合部位の可変領域を置換して、抗 原に対して特異性を有する一つの抗原結合部位及び異なる抗原に特異性を有する 他の抗原結合部位を有するキメラ性二価抗体を創生する。 キメラまたはハイブリッド抗体は、交差結合試薬を含む合成蛋白質化学におけ る貴地方法を使用してインビトロにて調製されてもよい。例えば、イムノトキシ ンは、ジスルフィド交換反応またはチオエーテル結合形成により使用して構築さ れる。この目的に好適な試薬の例は、イミノチオレート及びメチル−４−メルカ プトブチルイミデートを含む。 ３．ヒト化及びヒト抗体 非−ヒト抗体をヒト化する方法はこの分野で周知である。一般に、ヒト化抗体 は、非−ヒトである供給源から導入される１個以上のアミノ酸残基を有する。こ れらの非−ヒトアミノ酸残基は、しばしば“輸入”残基と称され、これは典型的 には“輸入”可変領域から採られる。ヒト化は、基本的には齧歯類ＣＤＲまたは ＣＤＲ配列を、対応するヒト抗体配列で置換することにより、Winter及び共同研 究者の方法に従って行われうる（Jones et al.，Nature 321:522-525(1986)；Ri echmann et al.，Nature 332:323-327(1985);Verhoeyen et al.，Science 239:1 534-1536(1988)）。従って、このようなヒト化抗体は、キメラ抗体（Cabillly e t al．前出文献）であり、実質的に身障の可変領域より少ない部分が非−ヒト種 からの対応する配列により置換されている。実際的には、ヒト化抗体は典型的に はＣＤＲ残基のいくらか及び、たぶんＦＲのいくらかが、齧歯類抗体の類似部位 からの残基により置換されている。 軽鎖及び重鎖の両方のヒト化抗体を作成するために使用される可変領域の選択 は、抗原性を低減するために重要である。いわゆる“最適化”方法に従えば、齧 歯類抗体の可変領域の配列が、既知のヒト可変領域配列の全ライブラリーに対し てスクリーニングされる。次いで齧歯類のものに最も近接したヒト配列が、ヒト 化抗体のためのヒト骨格（ＦＲ）として認められる（Sims et al.，J Immunol． 151:2296(1993)；Chothia et al.，J Mol．Biol．196:901(1987)）。他の方法は 、軽鎖または重鎖の特定のサブグループの全てのヒト抗体の共通配列から誘導さ れる特定の骨格を使用する。同じ骨格は、いくつかの異なるヒト化抗体について も使用され得る（Carter et al.，Proc．Natl．Acad．Sci USA 89:4285(1992)； Presta et al.，J．Immunol．151:2623(1993)）。 抗体が、抗原に対する高い親和性及び他の好ましい生物学的性質を保ってヒト 化されることは更に重要である。この目的を達成するために、好ましい方法に従 えば、ヒト化抗体は親及びヒト化配列の三次元モデルを使用して、親配列及び種 々の概念的ヒト化生成物の分析工程により調製される。三次元イムノグロブリン モデルは、一般に利用可能であり当業者にはなじみがある。選択された候補のイ ムノグロブリン配列の可能な三次元配置構造を描いて映し出すコンピュータプロ グラムが利用可能である。これらのディスプレーを見ることは、候補のイムノグ ロブリン配列の機能における残基のそれらしい役割の分析、即ち候補のイムノグ ロブリンの抗原に対する結合能力に影響を与える残基の分析を可能とする。この ようにして、ＦＲ残基が、標的抗原に対する増大した親和性等の所望の抗体特性 が達成される様に、共通及び輸入配列から選択され、組み合わされる。一般的に 、 ＣＤＲ残基は、抗体結合への影響において、直接的かつ最も実質的に関与するも のである。 別法として、免疫により、内因性イムノグロブリン産生を伴わずに完全量のヒ ト抗体を産生しうるトランスジェニック動物（例えばマウス）の作成が可能であ る。例えば、キメラ及び生殖系列変異マウスにおける抗体重鎖結合領域（Ｊ_H） 遺伝子の同型接合的削除が、内因性抗体の産生を完全に阻害することが記述され ている。このような生殖系列変異マウスへのヒト生殖系列イムノグロブリン遺伝 子の並びの移送は、抗原の攻撃に対してヒト抗体の産生を生じるであろう。例え ば、Jakobovits et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 90:2551(1993)；Jakobo vits et al.，Nature 362:255-258(1993)；Bruggermann et al.，Year in Immun o．7:33(1993)参照。ヒト抗体は、ファージディスプレーライブラリーにおいて も産生されうる（Hoogenboom et al.，J．Mol．Biol．227:381(1991)；Marks et al.，J．Mol．Biol．222:581(1991)）。 ４．二重特異的抗体 二重特異的抗体（ＢｓＡｂｓ）は、少なくとも２種の異なる抗原に対して結合 特異性を有する抗体である。ＢｓＡｂｓは、腫瘍標的または造影剤として使用可 能であり、またＷＳＸレセプターを有する細胞に対して酵素またはトキシンを標 的に向ける為に使用され得る。このような抗体は、抗体の全配列または抗体断片 （例えばF(ab')₂二重特異性抗体）から誘導されうる。本発明に従えば、ＢｓＡ ｂｓはＷＳＸレセプターに結合する一つのアーム、並びにサイトカインまたは他 のサイトカインレセプター（またはそのサブユニット）、例えばＴＰＯ、ＥＰＯ 、Ｇ−ＣＳＦ、ＩＬ−４、ＩＬ−７、ＧＨ、ＰＲＬに対するレセプター；ＩＬ− ３、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＬＩＦ、ＯＳＭ及びＣＮＴＦレセプタ ーのα及びβサブユニット；またはＩＬ−２レセプター複合体のα、βまたはγ サブユニットに結合する他方のアームを有する。例えば、ＢｓＡｂｓは、ＷＳＸ レセプター及びｇｐ１３０の両者に結合しうる。 二重特異的抗体の調製方法はこの技術において知られている。全長二重特異的 抗体の伝統的産生は、２種のイムノグロブリン重鎖−軽鎖対の同時発現に基づき 、 ここにおいて２本の鎖は異なる特異性を有する（Milstein et al.，Nature 305: 537-539(1983)）。イムノグロブリン重鎖及び軽鎖の無作為の寄せ集めのために 、これらのハイブリドーマ（クオドローマ：Quadromas）は、１種のみが正しい 二重特異性構造を有する１０種の異なる異なる抗体分子の可能な混合物を生じる 。通常アフィニティクロマトグラフィー工程により行われる正しい分子の精製は 、かなり煩雑であり、また生成物の収率も低い。同様な手法は、１９９３年５月 １３日発行のWO 93/08829及びTraunecker et al.，EMBO J．10:3655-3659(1991) に開示されている。 別のより好ましい方法に従うと、所望の結合特異性を持った抗体可変領域（抗 体−抗原結合部位）は、イムノグロブリン定常領域配列に融合される。融合物は 、好ましくは少なくともヒンジの一部、ＣＨ２及びＣＨ３領域を有するイムノグ ロブリン重鎖定常領域を伴う。軽鎖結合に必要な部位を含む、融合物の少なくと も一つに存在する第一の重鎖定常領域を有することが好ましい。イムノグロブリ ン重鎖融合物、及び所望によりイムノグロブリン軽鎖をコードするＤＮＡが、別 個の発現ベクターに挿入され、適当な宿主生物に同時インフェクションする。こ れは、構築に使用される３種のポリペプチドの異なる比が至適収率を与える場合 に、実施態様において３種のポリペプチド断片の相対比の調節に大きな柔軟性を 与える。しかしながら、少なくとも２種のポリペプチド鎖の同じ比率での発現が 高収率をもたらす場合、または比率が重要でない場合には、２種または３種全て のポリペプチド鎖のコード配列を１個の発現ベクター中に挿入することも可能で ある。 この方法の好ましい実施態様において、二重特異的抗体は、第一の結合特異性 を一つのアームに有するハイブリッドイムノグロブリン重鎖、及び他方のアーム のハイブリッドイムノグロブリン重鎖−軽鎖対（第二の結合特異性を与える）か らなる。この非対称構造は、二重特異的分子の半分のみにイムノグロブリン軽鎖 が存在することが分離に容易な方法を提供するため、所望の二重特異的化合物を 望まれないイムノグロブリン鎖の組み合わせから分離することを容易にする。こ の方法は、１９９４年３月３日発行のWO 94/04690に開示されている。二重特異 的抗体の生成の更なる詳細は、例えば、Suresh et al.，Methods in Enzymology 121:210(1986)参照。 二重特異的抗体は、交差結合または“異種接合”抗体を含む。例えば、異種接 合体の一方の抗体はアビジンと結合され、他方がビオチンと結合されうる。この ような抗体は、例えば免疫系細胞を望ましからぬ細胞に向ける為（米国特許第4, 676,980)及びＨＩＶ感染の治療のため（WO 91/00360，WO 92/200373及びEP 0308 9）に提案された。異種接合抗体は、都合よい交差結合方法により作成されうる 。このような交差結合試薬は既知であり、種々の交差結合方法と共に米国特許第 4,676,980に開示されている。 二重特異的抗体を抗体断片から生成する技術も文献に記述されている。以下の 技術は、二重特異的であるとは限らないが二価抗体断片の調製に有用である。こ れらの技術に従えば、Fab'-SH断片がE．coliから回収され、これは化学的に結合 されて二価抗体が形成される。Shalaby et al.，J．Exp．Med．175:217-225(199 2)は、完全にヒト化されたBsAb F(ab')2分子を記述している。各Fab断片は、E.c oli から別個に分泌され、インビトロにて直接的化学結合に付されてBsAbが形成 される。該BsAbは、HER2を過剰発現する細胞及び正常ヒトＴ細胞に結合可能であ り、加えて、ヒト乳癌標的に対するヒト細胞毒性リンパ細胞の溶解活性の引き金 を引く。Rodrigues et al.，Int．J．Cancer（suppl.）7:45-50(1992)も参照。 組換え細胞培養物から直接に二価抗体断片を製造及び単離する種々の方法も記 述されている。例えば、二価異種二量体は、ロイシンジッパーを使用して調製さ れた。Kostelny et al.，J．Immunol．148(5):1547-1553(1992)。Fos 及びJun蛋 白質由来のロイシンジッパーペプチドは、遺伝子融合によって２種のことなる抗 体のFab'部分を連結している。該抗体同種二量体は、ヒンジ領域にて還元されて 単量体が形成され、次いで再度酸化されて抗体異種二量体が形成された。Hollin ger et al.，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 90:6444-6448(1993)により記述され ている“ジアボディ”技術は、BsAb断片を作成するための別の機構を提供した。 該断片は、リンカーにより軽鎖可変領域（ＶＬ）に連結する重鎖可変領域（ＶＨ ）を有し、リンカーは同じ鎖の２つの領域の間で対形性を許容するには短すぎる ものである。従って、一つの断片のＶＨ及びＶＬ領域は、他の断片の相補的Ｖｌ 及びＶＨ領域と対形性することを強いられ、これによって２個の抗原結合部位が 形成される。単鎖Fv(sFv)二量体を使用してBsAbを作成する他の方法も報告され て いる。Gruber et al.，J．Immunol．152:5368(1994)参照。 ５．抗体スクリーニング ＷＳＸレセプターに強い結合親和性ＷＰ持つ抗体を選択するのが望ましい。抗 体親和性は、例えば、飽和結合；固相酵素免疫検定法（ＥＬＩＳＡ）；及び競合 アッセイ（例えば、ＲＩＡ）によって測定される。強い結合親和性を持つ抗体は 、約１×１０^-7Ｍ以下、好ましくは約１×１０^-8Ｍ以下、最も好ましくは約１× １０^-9Ｍ以下（例えば、約１×１０^-12Ｍまで）の結合親和性（Ｋｄ）値でＷＳ Ｘレセプターに結合することができる。 他の実施態様では、対象とするＷＳＸレセプターエピトープに結合する抗体に ついてスクリーニングしてもよい。例えば、抗体２Ｄ７、１Ｇ４、１Ｅ１１また は１Ｃ１１（実施例１３参照）あるいは抗体クローン＃３、＃４または＃７（実 施例１４参照）に結合したエピトープに結合する抗体を同定することができる。 対象とする抗体に結合したＷＳＸレセプターのエピトープに結合する抗体につい てスクリーニングするために（例えば、ＷＳＸに対する上記の抗体の任意のもの の結合をブロックするもの）、Antibodies，A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Laboratiry，Ed Harlow and David Lane(1988)に記載されたような日常 的なクロス-ブロッキングアッセイを行うことができる。あるいは、抗体が対象 とするエピトープに結合するか否かを決定するために、例えば、Champe 等，J.B iol.Chem.，270，1388-1394(1995)に記載されたようなエピトープマッピングを 行うこともできる。 本発明の特に好ましい一実施態様では、アゴニスト抗体が選択される。アゴニ スト抗体を選択する種々の方法が用いられる。一つの実施態様では、ＷＯ９５／ １４９３０（ここに、参考として特に取り入れる）に記載されたキナーゼレセプ ター活性化固相酵素免疫検定法（ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡ）と呼ばれるアッセイに おいて、ＷＳＸレセプター細胞外ドメインを含むキメラレセプターへの結合に対 して、抗体のアゴニスト特性を評価する。 ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡを実施するために、ＷＳＸレセプターの細胞外ドメイン 及びＲｓｅレセプターの膜貫通及び細胞内ドメインを含むキメラレセプター（Ma rk 等，Journal of Biological Chemistry 269(14)：10720-10728(1994)）であ って、単純ヘルペスウイルスの糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タグを持つレセプターを 産生し、ＷＯ９５／１４９３０の実施例４に記載されたようにｄｐ１２．ＣＨＯ 細胞をそれで形質転換する。 ＷＳＸ／Ｒｓｅ．ｇＤ形質転換ｄｐ１２．ＣＨＯは、平底９６ウェル培養プレ ート内に100μlの媒質中で播種（ウェル当たり３×１０⁴）され、5％ＣＯ₂中、 ３７℃で終夜培養される。翌朝、ウェルの上清を除去し、種々の濃度の抗体を別 々のウェルに添加する。細胞は、３７℃で３０分間剌激し、ウェルの上清をデカ ントする。細胞を溶解し、キメラレセプターを可溶化するため、100μlの溶菌バ ッファーを各ウェルに添加する。次いで、プレートをプレート震盪器（Bellco Instruments，Vineland，NJ）上で、室温で６０分間緩やかに攪拌する。 細胞が可溶化される一方、５Ｂ６モノクローナル抗−ｇＤ抗体（5.0μg/ml、5 0mM炭酸塩バッファー中、pH9.6、100μｌ／ウェル）で、４℃で終夜被覆された ＥＬＩＳＡミクロタイタープレート（Nunc Maxisorp，Inter Med，Denmark）は 、デカントされ、150μl/ウェルのブロックバッファーで、室温で６０分間ブロ ックされる。６０分後、抗−ｇＤ ５Ｂ６被覆プレートは、洗浄バッファー（0.0 5%の TWEEN 20(商品名)及び0.01%のチメロサール(thimerosal)を含むPBS）で６ 回洗浄される。 細胞−培養ミクロタイターウェルからの可溶化ＷＳＸ／Ｒｓｅ．ｇＤを含む溶 解物は、抗−ｇＤ ５Ｂ６被覆された及びブロックされたＥＬＩＳＡウェルに移 され（85μｌ／ウェル）、室温で２時間インキュベートされた。非結合ＷＳＸ／ Ｒｓｅ．ｇＤは、洗浄バッファーで除去され、希釈バッファー（0.5%のBSA、0.0 5%のTween-20、5mMのEDTA及び0.01%のチメロサールを含むPBS）で1:18000に希釈 されたビオチニル化４Ｇ１０（抗−ホスホチロシン）の100μｌ、即ち、56ng/ml が各ウェルに添加される。室温で２時間インキュベートした後、プレートにはＨ ＲＰＯ複合ストレプトアビデイン（Zymed Laboratories，S.San Francisco，CA ）が各ウェルに添加される。プレートは、室温で３０分間、緩やかに攪拌しなが らインキュベートされる。フリーのアビディン複合体は除去され、100μlの新た に調製された基質溶液（テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）；２-成分基質キッ ト ；Kirkegaard and Perry，Gaithersburg，MD）が各ウェルに添加される。反応は １０分間進行させ、その後、100μl/ウェルの1.0MのＨ３ＰＯ４の添加によって 発色を停止させた。Macintosh Centris 650(Apple computers，Cupertino，CA) 及びDeltaSoft Software(BioMetallics，Inc，Princeton，NJ)に制御された vma x plate reader(Molecular Devices，Palo Alto，CA)を用いて、650nmの波長を 参照して450nmの吸収を読み取った（ＡＢＳ_450/650）。 ＫＩＲＡ ＥＬＩＳＡにおいて、0.5μg/ml以下（）、好ましくは約0.2μg/ml 以下、最も好ましくは約0.1μg/ml以下のＩＣ５０を持つような抗体が、好まし いアゴニストである。 他の実施態様では、ＯＢタンパク質に対する下流シグナル分子を活性化する抗 体をスクリーニングする。例えば、抗体の、シグナルトランスデューサ及び転写 のアクチベータ（ＳＴＡＴｓ）を活性化する能力を評価することができる。対象 とするアゴニスト抗体は、例えば、ＳＴＡＴ−１及びＳＴＡＴ−３複合体の形成 を刺激することもある。このような抗体をスクリーニングするために、Rosenblu m等，Endocrinology，137(11)：5178-5181(1996)に記載されたアッセイが行われ る。 あるいは、造血細胞の増殖及び／または分化を刺激する抗体を選択することも できる。例えば、下記の実施例１０の造血アッセイを行うことができる。例えば 、ネズミ胎児肝臓ｆＬＡＳＫ幹細胞は、Zeigler 等，Blood，84,2422-2430(1994 )に記載されたように妊娠中期の胎児の肝臓から分離され、幹細胞懸濁培地また はメチルセルロースアッセイにおいて実験される。幹細胞懸濁培地のために、20 000のｆＬＡＳＫ細胞が、10％の熱で不活性化したウシ胎児血清(Hyclone，Logan ，UT）及びＬ−グルタミンを添加したＤＭＥＭ．５／Ｆ１２媒質中の１２ウェル 形式の個々のウェルに播種される。成長因子は以下の濃度で添加される：キット (kit)リガンドは25ng/mL、インターロイキン-３（ＩＬ-３）は25ng/mL、インタ ーロイキン-６（ＩＬ-６）は50ng/mL、Ｇ−ＳＣＦは100ng/mL、ＧＭ−ＳＣＦは1 00ng/mL、ＥＰＯは2U/mL、インターロイキン−７（ＩＬ-７）は100ng/mL（全て の成長因子は、R and D Systems，Minneapolis，MN からのものである）。次い で、アゴニスト抗体が添加され、懸濁培地において成長したｆＬＡＳＫ細胞を膨 張する 能力が評価される。メチルセルロースアッセイは、既に記載されているようにお こなわれる（Zeiger,等，同上）。簡単に言えば、メチルセルロースアッセイは 、「完全な」メチルセルロースまたはプレ-Ｂメチルセルロース培地（Stem Cell Technologies，Vancouver，British Columbia，Canada）に25ng/mLのＫＬ（R a nd D Systems，Minneapolis，MN）を添加して行われる。得られたコロニーのサ イトスピン(cytospin)分析は、Zeigler等に既に記載されているように行われる 。アゴニスト抗体の、骨髄性、リンパ様及び赤血球コロニー形成を増強する能力 が評価される。また、アゴニスト抗体の、ネズミの骨髄幹細胞群、Ｌｉｎ^loＳｃ ａ⁺に対する影響も評価される。 肥満哺乳類（例えば、ob/obマウス）における、体重及び／または脂肪蓄積重 量及び／または食物摂取の統計的に有意な減少を誘発するアゴニスト抗体を選択 してもよい。このような分子のスクリーニングは、例えば、Lebin 等，Proc.Nat l.Acad.Sci.USA，93：1726-1730(1996)に記載されている。好ましいアゴニスト 抗体は、ob/obマウスのような肥満哺乳類において脂肪低減効果を発揮するもの であり、食物摂取の低減によって誘発されたものに過剰である。 ここで対象とする抗体は、実施例１３及び１４の抗体の一つの超可変領域残基 を有していてもよい。また、本発明は、これらの抗体の超可変領域残基が修飾さ れた、これらの抗体の「親和性成熟」した形態を含む。このような親和性成熟し た抗体は、好ましくは、元の抗体と同等又はそれより向上した生物学的活性を有 する。親和性成熟した抗体は、その超可変領域に、約１−１０、例えば５−１０ の欠失、挿入又は置換（但し、好ましくは置換）を含む。親和性成熟した抗体を 生成する有用な方法は、「アラニン走査突然変異誘発」（Curmingham and Wells ，Science，244：1081-1085(1989)1)と呼ばれる。ここで、アミノ酸とＷＳＸレ セプターとの相互作用に影響を与えるため、超可変領域残基の１またはそれ以上 が、アラニン又はポリアラニン残基で置換される。機能的選択制を示すこれらの 超可変領域残基は、次いで、置換部位において又はついて、さらなる又は他の突 然変異を誘発することにより詳細に分析される。この方法で製造されたａ１ａ− 変異体は、ここに述べたように生物学的活性をスクリーニングされる。他の方法 は、ファージ展示を用いた親和性突然変異(Hawkins 等，Mol.Biol.，254：889- 896(1992)及び Lowman 等，Biochemistry，30(45)：10832-10837(1991)）である 。簡単に言えば、数個の超可変領域部位（例えば、６−７部位）が突然変異して 、各部位で全ての可能なアミノ置換を生成する。このように生成された抗体突然 変異体は、繊維状ファージ粒子から、各粒子内にパッケージされたＭ１３の遺伝 子ＩＩＩ産物との融合として一価形式で展示される。ファージ展示突然変異体は 、次いで、それらの生物学的活性（例えば、結合親和性）がスクリーニングされ る。 ６．抗体修飾 種々の応用のために、抗体を調整するのが望ましいこともある。ここに、抗体 修飾の例を記載する。 本発明のある実施態様では、無傷の抗体ではなく抗体のフラグメントを用いる 方が望ましいことがある。この場合、抗体フラグメントは、その血清半減期を増 加させるために修飾するのが好ましい。これは、例えば、サルベージレセプター 結合エピトープを、抗体フラグメントに組み込むことによって行うことができる 。１９９６年１０月１７日発行のＷＯ９６／３２４７８参照。あるいは、上記の ＯＢタンパク質の長半減期誘導体の製造のように、抗体を非タンパク質ポリマー と複合させてもよい。 抗体が、例えば癌の治療のために用いられる場合、抗体の癌治療の有効性を向 上させる抗体の種々の修飾（例えば、中性化抗体）が考えられる。例えば、シス テイン残基がＦｃ領域に導入でき、それにより、この領域で鎖間ジスルフィド結 合が形成される。このように生成されたホモダイマー抗体は、向上した内面化能 力及び／または増加した補体媒介細胞殺傷及び抗体依存性細胞性細胞毒性（ＡＤ ＣＣ）を有する。Caron 等，J.Exp.Med.，176：1191-1195(1992)及びShopes,B. ，J.Immunol.，148：2918-2922(1992)参照。また、向上した抗−腫瘍活性を持つ ホモダイマー抗体も、Wolff 等，Cancer Research，53：2560-2565(1993)に記載 されたようなヘテロ２官能性架橋結合を用いて生成できる。あるいは、２つのＦ ｃ領域を持ち、それにより向上した補体溶解及びＡＤＣＣを有する抗体も製造で きる。Stevenson等，Anti-CancerDrugDesign，3：219-230(1989)参照。 また本発明は、化学治療試薬、毒素（例えば、細菌、真菌、植物または動物起 源の酵素活性な毒素、またはそのフラグメント）、または放射活性同位体（放射 性複合体）等の細胞毒性試薬と複合したここにのべた抗体を含む免疫複合体にも 関する。 このような免疫複合体の製造に有用な化学治療試薬は上述した。用いられる酵 素活性な毒素及びそのフラグメントは、ジフテリアＡ鎖、ジフテリア毒素の非結 合活性フラグメント、（緑膿菌からの）体外毒素Ａ鎖、リシンＡ鎖、アブリンＡ 鎖、モデシン(modeccin)Ａ鎖、アルファ-サルシン(alpha-sarcin)、Aleurites f ordiiタンパク質、dianthinタンパク質、Phytolaca americanaタンパク質（PAPI ,PAPII,及びPAP-S）、momordica charantia 阻害剤、curcin、crotin、sapaonar ia officinalis 阻害剤、gelonin、mitogellin、restrictocin、phenomycin、en omycin、及び tricothecenesを含む。放射性複合体抗体の製造のために種々の放 射性ヌクレオチドが用いられる。例として、²¹²Ｂｉ、¹³¹Ｉ、¹³¹Ｉｎ、⁹⁰Ｙ及 び¹⁸⁶Ｒｅを含む。 抗体と細胞毒性試薬の複合は、Ｎ-スクシンイミジル-３-（２-ピリジルジチオ ール）プロピオナート（ＳＰＤＰ）、イミノチオラン（ＩＴ）、イミドエステル の２官能性誘導体（ジメチルアジビミダートＨＣＬなど）、活性エステル（ジス クシンイミジルスベラートなど）、アルデヒド（グルタルアルデヒドなど）、ビ ス-アゾ化合物（ビス（ｐ-アジドベンゾイル）ヘキサンジアミン）、ビス-ジア ゾニウム誘導体（ビス（ｐ-ジアゾニウムベンゾイル）-エチレンジアミンなど） 、ジイソシアナート（トリレン２，６-ジイソシアナート）、及び、ビス-活性フ ルオリン化合物（１，５-ジフルオロ-２，４-ジニトロベンゼン）等の種々の２ 官能性タンパク質カップリング試薬を用いて行うことができる。例えば、リシン 免疫毒素は、vitetta 等，Science，238：1098(1987)に記載されたように調製す ることができる。カーボン−１４ラベルした１-イソチオシアナトベンジル-３- メチルジメチレントリアミンペンタ酢酸（MX-DTPA）は、放射性ヌクレオチドの 工程への結合のためのキレート剤の例である。ＷＯ９４／１１０２６参照。 他の実施態様では、抗体は、腫瘍のプレターゲットに用いるために、「レセプ ター」（ストレプトアビディンなど）と複合してもよく、抗体-レセプター複合 体が患者に投与され、清澄化試薬を用いて結合していない複合体を循環から除去 し、次いで、細胞毒性試薬（例えば、放射性ヌクレオチド）に結合するリガンド （例えば、アビディン）を投与する。 また、抗体は、免疫リポソームとして調製してもよい。抗体を含むリポソーム は、Epstein 等，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，82：3688(1985)；Hwang 等，Proc． Natl.Acad.Sci.USA，77:4030(1980);及び米国特許第4,485,045号及び第4,544,54 5号に記載されているような、この分野で周知の方法によって調製される。向上 した循環時間を持つリポソームは、米国特許第5,013,556号に記載されている。 特に有用なリポソームは、ホスファチジルコリン、コレステロール及びＰＥＧ -誘導ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥＧ-ＰＥ）を含む脂質組成物での逆 相蒸発によって生成できる。リポソームは、所定の孔サイズのフィルターを通し て押し出され、所望の径を持つリポソームを生成する。本発明の抗体のＦａｂ’ フラグメントは、ジスルフィド交換反応を介して、Martin 等，J.Biol.Chem.，2 57：286-288(1982)に記載されたようにリポソームに複合できる。化学治療試薬 （ドキソルビシンなど）は、任意にリポソームに含まれてもよい。Gabizon等，J .National Cancer Inst.，81(19)1484(1989)参照。 また、本発明の抗体は、プロドラッグ（例えば、ペプチジル化学治療薬、ＷＯ ８１／０１１４５参照）を活性な抗癌薬に変換させるプロドラッグ活性化酵素に 抗体を複合させることにより、ＡＤＥＰＴにおいて用いることもできる。例えば 、ＷＯ８８／０７３７８及び米国特許第4,975,278号参照。 ＡＤＥＰＴに有用な免疫複合体の酵素成分は、プロドラッグをより活性な細胞 毒性形態に変換するように作用できる任意の酵素を含む。 本発明の方法で有用な酵素は、これらに限られないが、リン酸塩含有プロドラ ッグをフリーなドラッグに変換するのに役立つアルカリホスファターゼ；硫酸塩 含有プロドラッグをフリーなドラッグに変換するのに役立つアリールスルフアタ ーゼ；非毒性５−フルオロシトシンを抗癌薬５−フルオロウラシルに変換するの に役立つシトシンデアミナーゼ；ペプチド含有プロドラッグをフリーなドラッグ に変換するのに有用な、セラチアプロテアーゼ、サーモリシン、サブチリシン、 カルボキシペプチダーゼ及びカテプシン（カテプシンＢ及びＬなど）等のプロテ ア ーゼ；Ｄ-アミノ酸置換基を含有するプロドラッグの変換に役立つＤ-アラニルカ ルボキシペプチダーゼ；グリコシル化プロｄｐらっぐをフリーのドラッグに変換 するのに有用なβガラクトシダーゼ及びノイラミニダーゼなどの切断酵素；β- ラクタム誘導プロドラッグをフリーなドラッグに変換するのに役立つβ-ラクタ マーゼ；アミン窒素において、各々、フェノキシアセチルまたはフェニルアセチ ル基を誘導したドラッグをフリーなドラッグに変換するのに有用な、ペニシリン Ｖアミダーゼ又はペニシリンＧ」アミダーゼなどのペニシリンアミダーゼである 。あるいは、酵素活性を持つ抗体は、この分野で「アブザイム(abzyme)」として も知られ、本発明のプロドラッグをフリーな活性薬に変換するのに用いることが できる（Massey、Nature，328:457-468(1987)参照）。抗体−アブザイム複合体 は、アブザイムを腫瘍細胞群に輸送するために、ここに記載したように調製する ことができる。 この発明の酵素は、上述のヘテロ２官能性架橋剤を用いるなどの、この分野で 周知の技術により、抗体突然変異体に共有結合することができる。あるいは、本 発明の酵素の少なくとも機能的活性部分に結合した本発明の抗体の少なくとも抗 原結合領域を含む融合タンパク質は、この分野で知られた組み換えＤＮＡ技術を 用いて構成することができる（Neuberger 等，Nature，312：604-608(1984)を参 照）。 他の実施態様では、抗体は、例えば上述の修飾により、共有結合的に修飾する ことができる。 Ｅ．ＷＳＸレセプターリガンド及び抗体についての治療的用途 本発明のＷＳＸリガンド（例えば、ＯＢタンパク質及び抗-ＷＳＸレセプター アゴニスト抗体）は、一実施態様において、体重の減少、特に肥満症の治療、過 食症及びＯＢ及び／またはＷＳＸレセプター遺伝子の機能の異常な発現に伴う疾 患糖尿病などの他の代謝疾患の治療のために有用であり、ヒト患者におけるイン シュリンレベルを低減するために（例えば、例えばそのような患者のインシュリ ン選択性の回復又は向上に）役立つ。よって、これらの分子は、過剰な食物消費 及び関連する病理学的状態、例えば、タイプＩＩ成人発病糖尿病、不妊症（Cheh ab等，Nature Genetics，12：318-320(1996)）、コレステロール過剰血症、高脂 血症、心臓血管疾患、動脈硬化症、多嚢胞性卵巣疾患、変形性関節症、皮膚科的 疾患、インシュリン耐性、高トリグリセリド血症、癌、胆石症、及び高血圧症に 罹患した患者の治療に用いることができる。 さらに、ＷＳＸリガンドは、腎臓病、高血圧、及び気腫などの肺機能不全の治 療に用いることもできる。 さらなる実施態様では、本発明のＷＳＸリガンド（アゴニストＷＳＸレセプタ ーー抗体など）は、化学又は放射線治療あるいは骨髄移植治療を受けた哺乳類に おける成熟血液細胞直系の再集合を促進するのにも用いられる。一般的に、リガ ンドは、初期の造血細胞の増殖及び／または分化（但し、特に増殖）の促進を介 して作用する。リガンドは、同様に、血液細胞の減少に特徴づけられる疾患の治 療にも有用である。これらの疾患の例は、貧血（大球性貧血及び再生不良性貧血 を含む）、血小板減少症、発育不全、免疫（自己免疫）血小板減少性紫斑（ＩＴ Ｐ）、及びＨＩＶ誘発性ＩＴＰを含む。また、リガンドは、出血を伴う患者の治 療にも用いられる。ＷＳＸリガンドは、肥満、真性糖尿病等の代謝疾患の治療、 腎臓、肝臓又は肺の成長及び／または（例えば、腎不全における）再生を促進す るためにも用いられる。 ＷＳＸレセプターリガンドは及び抗体は、単独あるいは１またはそれ以上のサ イトカインと共に投与してよい。さらに、ＷＳＸリガンドタンパク質の投与に換 えて、ここで、（「ＷＳＸレセプターについての治療的用途」と題する上記のセ クションで議論した）遺伝子治療技術も考えられる。 ＷＳＸレセプター中性化抗体について可能性のある治療的応用は、代謝疾患（ 悪液質、食欲不振、及び食欲喪失、食物取り込みの低下または体重減少を特徴と する他のるいそう疾患）、幹細胞腫瘍及びＷＳＸレセプター発現の部位における 他の腫瘍、特にＷＳＸレセプターの過剰発現に特徴づけられる腫瘍の治療を含む 。 治療的応用のために、本発明のＷＳＸレセプターリガンド及び抗体は、哺乳類 、好ましくはヒトに、生理学的に許容される投与形態で投与され、ボーラスまた は長時間に渡る連続注入による静脈内、あるいは、筋肉内、腹膜内、脳脊髄内、 皮 下、関節内、髄膜内、包膜内、経口、局所、又は吸入経路によってヒトに投与す ることを含む。ＷＳＸレセプターリガンド及び抗体は、壁内、角膜内、病変内、 または病変周囲野経路により、リンパ、作用位置、及び全身治療効果のためにも 適当に投与される。 このような投与形態は、本質的に非毒性で非治療的な生理学的に許容されるキ ャリアを含む。このようなキャリアの例は、イオン交換体、アルミナ、アルミニ ウムステアラート、レシチン、ヒト血清アルブミンなどの血清タンパク質、リン 酸塩等の緩衝物質、グリシン、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、飽和植物脂肪 酸の部分的グリセリド混合物、水、塩、または、硫酸カリウム、リン酸水素二ナ トリウム、リン酸水素カリウム、塩化ナトリウム、亜鉛塩、コロイド状シリカ、 マグネシウムトリシリケート、ポリビニルピロリドン、セルロースベースの物質 、及びＰＥＧなどの電解質を含む。ＷＳＸレセプター抗体の局所用またはゲルベ ースの形態のためのキャリアは、カルボキシメチルセルロールまたはメチルセル ロースなどのポリサッカリド、ポリビニルピロリドン、ポリアクリラート、ホリ オキシエチレン−ポリオキシプロビレン−ブロックポリマー、ＰＥＧ、及び木ロ ウアルコールを含む。全ての投与について、従来の蓄積形態が好ましく用いられ る。このような形態は、例えば、マイクロカプセル、ナノ−カプセル、リポソー ム、プラスター、吸入形態、鼻スプレー、舌下錠、及び、持続放出性製剤を含む 。ＷＳＸレセプターリガンドまたは抗体は、典型的にはそのような媒体中に、約 0.1mg/mlから100mg/mlの濃度で調製される。 持続放出製剤の好ましい例は、ＷＳＸレセプターリガンド又は抗体を含む疎水 性ポリマーの半透性マトリクスを含み、そのマトリクスは、成形された物品、例 えば、フィルム、あるいはマイクロカプセルである。持続放出性マトリクスの例 は、ポリエステル、ヒドロゲル（例えば、Langer 等，同上、及びLanger 等，同 上に記載されたポリ（２−ヒドロキシエチル-メタクリラート）、または、ポリ （ビニルアルコール）、ポリラクチド（米国特許第3,773,919号）、Ｌ-グルタミ ン酸とγエチル-Ｌ-グルタマートのコポリマー（Sidman 等，同上）、非分解性 エチレン-酢酸ビニル（Langer 等，同上）、Lupron Depot(商品名)（乳酸-グリ コール酸コポリマー及び酢酸ロイプロリドからなる注入可能な微小球）などの分 解性乳酸-グリコール酸コポリマー、及び、ポリ-Ｄ-（-）-３-ヒドロキシブチル 酸を含む。エチレン-酢酸ビニル及び乳酸−グリコール酸などのポリマーは、分 子の放出を１００日を越えるようにできるが、ある種のヒドロゲルは、タンパク 質を、より短い時間で放出する。カプセル化したＷＳＸレセブター抗体を体内に 長時間保持すると、３７℃の水分に曝された結果、変性又は凝集を起こし、生物 学的活性の喪失や免疫原性の変化を起こしうる。合理的な方法は、含まれるメカ ニズムに依存する安定化について工夫できる。例えば、凝集メカニズムが、チオ -ジスルフィド交換を通した分子間Ｓ−Ｓ結合形成であることがわかれば、安定 化は、スルフィドリル残基の修飾、酸性溶液からの親油性化、水分含有量の制御 、適当な添加剤の使用、及び、特定のポリマーマトリクス組成物の開発によって 達成される。 また、持続放出性ＷＳＸレセプターリガンド組成物は、リポソームに捕捉され た添加剤を含む。ＷＳＸレセプターリガンドまたは抗体を含むリポソームは、Ep stein 等，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 82：3688(1985)；Hwang 等，Proc.Natl.Aca d.Sci.USA，77：4030(1980);及び米国特許第4,485,045号及び第4,544,545号に記 載されたような、この分野で周知の方法で調製できる。通常は、リポソームは小 さく（約200-800オングストローム）単層ラメラタイプであり、その脂質含有量 は約30％コレステロールより大きく、選択される比率は、ＷＳＸレセプターリガ ンド又は抗体治療に適合されている。向上した循環時間を持つリポソームは、べ き抗特許第5,013,556号に記載されている。 疾患を予防又は治療するために、ＷＳＸレセプターリガンド又は抗体の適当な 投与量は、治療すべき上記の疾患のタイプ、疾患の重篤度及び原因、抗体が予防 又は治療のいずれの目的で投与されるか、以前の治療、患者の臨床経過及びＷＳ Ｘレセプターリガンド又は抗体に対する反応、及び担当医師の判断による。ＷＳ Ｘレセプターリガンド又は抗体は、一度にあるいは連続した治療に渡って患者に 適当に投与される。 疾患のタイプ及び重篤度に応じて、約1μg/kgから15mg/kgのＷＳＸレセプター リガンド又は抗体が、例えば１またはそれ以上の別々の投与あるいは連続的な吸 入のいずれであっても、患者への投与の最初の候補となる投与量である。典型的 な日常の投与量は、約1μg/kgから100μg/kg（例えば、1-50μg/kg）またはそれ 以上であり、上記の要因に依存する。例えば、投与量は、Ｇ-ＣＳＦ、ＧＭ-ＣＳ Ｆ及びＥＰＯなどの他のサイトカインと同じ投与量であることもある。状況に応 じて、数日又はそれ以上に渡る繰り返し投与の場合、治療は、疾患の徴候に所定 の抑制が生ずるまで続けられる。この治療の進行は、従来の技術及び検定法によ って容易に監視される。 １又はそれ以上のサイトカインがＷＳＸレセプターと共に投与される場合、用 いられるＷＳＸリガンドの投与量は少なくなる。サイトカインの好ましい投与量 は、約1μg/kgから100μg/kg（例えば、1-50μg/kg）又はそれ以上である。例え ば、投与量は、Ｇ-ＣＳＦ、ＧＭ-ＣＳＦ及びＥＰＯなどの他のサイトカインと同 じ投与量であることもある。サイトカインは、ＷＳＸリガンドに先立って、同時 に、又は引き続いて投与される。サイトカインとＷＳＸリガンドは、混合して、 哺乳類に同時に投与する製薬的組成物を形成してもよい。ある実施態様では、Ｗ ＳＸリガンドとサイトカインの量は、哺乳類において、ＷＳＸリガンドとサイト カインの投与時に、血液細胞の相乗的再集合（造血細胞の増殖及び／または分化 の相乗的増加）が起こる量である。言い換えれば、２又はそれ以上の試薬（例え ば、ＷＳＸリガンド及びサイトカイン）の、血液細胞の再集合（造血細胞の増殖 及び／または分化）に対する調和作用が、これらの分子各々の効果の和よりも大 きい。 肥満及びそれに関連する病理学的状態の治療のために、ＷＳＸリガンドは、肥 満と闘い又は予防するための他の治療と組み合わせて投与してもよい。この目的 に有用な物質は、例えば、ホルモン（カテコールアミン、グルカゴン、ＡＣＴＨ ）；クロフィブレート；ハロゲナート；シンコカイン(cinchocaine)；クロロプ ロマジン；マジンドール及びフェネチルアミン誘導体、例えば、フェニルプロパ ノールアミン、ジエチルプロピオン、フェンテルミン、フェンジメトラジン、ベ ンズフェタミン、アンフェタミン、メタンフェタミン及びフェンメトラジン等の 非アドレナリン性神経伝達物質に作用する食欲抑制薬；フェンフルラミン、トリ プトファン、５-ヒドロキシトリプトファン、フルオキセチン及びセルトラリン 等のセロトニン神経伝達物質に作用する薬；ナロキソン、神経ペプチド-Ｙ、ガ ラ ニン、コルチコトロピン放出ホルモン、及びコレシストキニン等の中枢活性薬； ピリドスティグミン等のコリン作用アゴニスト；リソスフィンゴ脂質又はその誘 導体（EP 321,287、1989年6月21日発行）等のスフィンゴ脂質；チロイドホルモ ン、エフェドリン、ベータ-アドレナリン性アゴニスト等の熱発生薬；酵素阻害 剤、例えばテトラヒドロリポスタチン、スクロースポリエステル等の非消化性食 品、及びスレオ-クロロクエン酸又はその誘導体等の空腹抑制剤といった消化管 に作用する薬；イソプロテレノール及びヨヒンビン等のβ-アドレナリン性アゴ ニスト；ヨヒンビンのβ-アドレナリン様効果を増大するためのアミノフィリン 、クロニジン等のα₂-アドレナリンブロック薬の単独または成長ホルモン放出ペ プチドとの組み合わせ（米国特許第5,120,713号、1992年6月9日発行）；メトフ ォルミン及びフェンフォルミン等のビグアニドといった腸管吸収阻害薬；メチル セルロース等のバルク充填剤；ヒドロキシクエン酸塩等の代謝ブロック薬；プロ ゲステロン；コレシストキニンアゴニスト；ケト酸に類似した小分子；コルチコ トロピン放出ホルモンのアゴニスト；身体脂肪蓄積を低減するための麦角放出プ ロラクチン阻害性化合物（米国特許第4,783,469号、1988年11月8日発行）；ベー タ-３-アゴニスト；ブロモクリプチン；オピオイドペプチドのアンタゴニスト； 神経ペプチドＹのアンタゴニスト；グルココルチコイドレセプターのアンタゴニ スト；成長ホルモンアゴニスト；これらの組み台わせ；等である。これは、Bray and Greenway，Clinics in Endocrinol．and Metabol.，5：455（1976）に記載 された全ての薬剤を含む。 これらの補助剤は、ＷＳＸリガンドの投与と同時、その前又は後に投与してよ く、ＷＳＸリガンドと同じまたは異なる経路で投与することができる。 ＷＳＸリガンド治療は、個々の患者が望むときは、日々の食物又はカロリー摂 取の制限といった食事制限無しでも、または、それを強要しても行うことができ る。 Ｆ．製造品 本発明の他の実施態様では、上述の状態の治療に有用な材料を含む製造品が提 供される。この製造品は、容器とラベルとを含んでなる。好ましい容器は、例え ば、ボトル、ガラス瓶、シリンジ、及び試験管を含む。この容器は、ガラスやプ ラスチックなどの種々の材料から形成してよい。この容器は、状態を治療するの に有効な組成物を保有し、無菌の出入り口を具備する（例えば、容器は、血管内 溶液バッグまたは皮下用縫い針で貫通できるストッパーを有するガラス瓶であっ てもよい）。組成物中の活性剤はＷＳＸリガンドである。容器上の又は添付され たラベルは、組成物が選択した状態の治療に用いられることを示している。この 製造物は、ＷＳＸリガンドとともに投与されるサイトカインを収容した第二の容 器を具備してもよい。製造物は、例えば、リン酸塩緩衝塩水、リンガー溶液又は 出来ストロース溶液などの生理学的に許容されるバッファーを収容した更なる容 器を有してもよい。さらに、製造物は、他のバッファー、希釈液、フィルター、 針、シリンジ、及び使用時に挿入されるパッケージを含む、商業的又は使用者の 立場から望ましい他の材料を具備してもよい。 Ｇ．ＷＳＸレセプターリガンド及び抗体についての非-治療的用途 ＷＳＸレセプターリガンド及び抗体は、ここでＣＤ３４抗体が用いられている のと類似の方法で、造血幹細胞／先祖細胞集団の検出及び／または豊富化に用い ることができる。幹細胞豊富化のために、ＷＳＸレセプター抗体は、免疫パンニ ング(panning)、フローサイトメトリーまたは免疫磁気ビーズ等のこの分野で周 知の技術に利用できる。 ＷＳＸリガンドの一つの in vitro 応用によれば、ＷＳＸレセプターを含む細 胞が提供され、細胞培養媒質中に配置される。このようなＷＳＸレセプター含有 細胞の例は、ＣＤ３４＋細胞などの造血祖先細胞を含む。 好ましい組織培養は、当業者には周知であり、最小必須培地（ＭＥＭ）、ＲＰ ＭＩ-１６４０、及び張る別個の変性イーグル培地（ＤＭＥＭ）を含むが、これ らに限られるものではない。これらの組織培養媒質は、Sigma Chemical Company (st.Louis，MO)及びGIBCO(Grand Island，NY)から商業的に入手できる。次いで 、細胞は細胞培養媒質中、細胞が生存及び成長を維持するのに十分な条件下で、 有効量のＷＳＸリガンド及び任意にさらなるサイトカイン及び成長因子の存在下 で培養される。細胞は、クロット、寒天、又は液体培養を含む種々の方法で培養 で きる。 細胞は、３７℃といった生理学的に許容できる温度で、例えば、有効量のＷＳ Ｘリガンドの存在下で培養される。ＷＳＺリガンドの量は変化させてよいが、好 ましくは、約10ng/mlから約1mg/mlの範囲とする。ＷＳＸリガンドは、当然のこ とながら、当業者が過度の実験無しに経験的に決定した投与量で添加される。培 地のＷＳＸリガンドの濃度は、細胞及びＷＳＸリガンドが培養される条件等の種 々の要因に依存する。特定の温度及びインキュベーションの時間、並びに、他の 培養条件は、これらの要因、例えば、ＷＳＸリガンドの濃度及び細胞及び培地の タイプなどによって変化させることができる。 ＷＳＸリガンドを、in vitro での細胞増殖及び／または分化の促進に用いる ことは、多くの方法において有用である戸考えられる。例えば、ＷＳＸリガンド の存在下、in vitro で培養された造血細胞は、細胞レベルの低下した哺乳類に 注入することができる。また、培養された造血細胞は、遺伝子治療の応用のため の遺伝子輸送のために用いることもできる。安定な in vitro 培地は、細胞特異 的因子の単離のため、及び、内因性又は組み換えにより導入されたタンパク質の 細胞内での発現のためにも用いられる。また、ＷＳＸリガンドは、細胞培地の他 の細胞の成長及び／または分化を支持する細胞の細胞生存、増殖及び／又は分化 の促進のためにも用いられる。 本発明のＷＳＸレセプター抗体は、親和性精製試薬としても有用である。この 方法では、ＷＳＸレセプターに対する抗体が、Sephadex樹脂又は濾紙などの適当 な支持体に、当業者に周知の方法を用いて固定化される。固定化された抗体は、 次いで、精製されるべきＷＳＸレセプターを含むサンプルと接触し、その後、固 定化された抗体に結合したＷＳＸレセプター以外の、サンプル中の実質的に全て の材料を除去するのに好適な溶媒で支持体を洗浄する。最後に、グリセリン緩衝 液 pH5.0 等の、ＷＳＸレセプターを抗体から放出させる他の適当な溶媒で支持 体を洗浄する。 また、ＷＸＳレセプター抗体は、ＷＳＸレセプターの診断アッセイ、例えば、 特定細胞、組織または血清におけるその発現の検出においても有用である。診断 的応用のために、抗体は、典型的には検出可能な部分でラベルされる。検出可能 部分は、直接的又は間接的に検出可能なシグナルを生ずることのできる任意のも のである。例えば、検出可能な部分は、³Ｈ、¹⁴Ｃ、³²Ｐ、³⁵Ｓ又は¹²⁵Ｉなどの 放射性同位元素；フルオレセインイソチオシアナート、ローダミンまたはルシフ ェリンなどの蛍光又は化学発光化合物；¹²⁵Ｉ、³²Ｐ、¹⁴Ｃ又は³Ｈなどの放射活 性同位体ラベル；あるいは、アルカリホスファターゼ、ベータ-ガラクトシダー ゼまたはセイヨウワサビペルオキシダーゼ等の酵素である。 ポリペプチド変異体の検出可能な部分への分離可能な結合のためにこの分野で 知られた任意の方法が採用され、Hunter 等，Nature，144：945(1962)；David等 ，Biochemistry，13：1014(1974)；Pain 等，J.Immunol.Meth.，40：219(1981) ；及び Nygren，J.Histrochem．and Cytochem.，30：407(1982)に記載されたも のも含む。 本発明の抗体は、競合結合アッセイ、直接及び間接サンドウィッチアッセイ、 及び免疫沈降アッセイ等の周知の検定方法に採用することができる。Zola，Mono clonal Antibodies：A Manual of Techniques，pp.147-158(CRC Press，Inc.，1 987)。 競合結合アッセイは、限られた量の抗体との結合について、試験サンプル分析 物と競合するラベルした標準物の能力に依る。試験サンプル中のＷＳＸレセプタ ーの量は、抗体と結合し始める標準物の量に反比例する。結合を始める標準物の 量の測定を腰囲にするため、通常、抗体は、競合の前又は後に不溶化され、抗体 と結合した標準物及び分析物が、結合していない標準物及び分析物から分離しや すくする。 サンドウィッチアッセイは２つの抗体の使用を含み、各々が、検出すべきタン パク質の異なる免疫原部分又はエピトープに結合できる。サンドウィッチアッセ イにおいて、試験サンプル分析物は、固体支持体に固定化された第１の抗体に結 合し、次いで、第２の抗体が分析物に結合し、不溶性の３元複合体を形成する。 米国特許第4,376,110号参照。第２の抗体は、それ自身が検出可能な部分でラベ ルされてもよく（直接サンドウィッチアッセイ）、あるいは、検出可能な部分で ラベルした抗−免疫グロブリン抗体を用いて測定してもよい（間接サンドウィッ チアッセイ）。例えば、サンドウィッチアッセイの一つのタイプがＥＬＩＳＡで あり、検出可能な部分は酵素である。 Ｈ．材料の寄託 以下の生物学的材料は、American Type Culture Collection，12301 Parklawn Drive，Rockville，MD，USA（ATCC）に寄託された。 寄託表示 ＡＴＣＣ番号 寄託日 Baf3/WSX E63x7 sort ATCC CRL 12015 1996年1月10日 (Baf3 x\cells expression human WSX receptor variant 13.2) 2D7ハイブリドーマ細胞系 1G4ハイブリドーマ細胞系 ATCC HB 12243 1996年12月11日 1E11ハイブリドーマ細胞系 1C11ハイブリドーマ細胞系 これらの寄託は、特許手続上の微生物寄託の国際的承認に関するブタペスト条 約及びその規則（ブタペスト条約）に従って行った。これは寄託日から３０年の 間生存可能な培地を維持することを保証する。寄託した各々の培地は、ジェネン テック社とＡＴＣＣとの合意を条件として、ブタペスト条約の条件に従ってＡＴ ＣＣから入手可能であり、前記合意は（ａ）培地への接近は、特許出願が係属中 は、特許庁長官が37 CFR §1.14及び35 USC §122に基づいて認めたものに可能 であり、（ｂ）このように寄託された培地の公衆への入手可能性に対する制限は 、特許された時点で取り除かれることを保証する。 特許出願の譲受人は、適当な条件で培養したときに、寄託に係る培地が脂肪又 は喪失又は破壊された場合、通知を受けたら速やかに、同じ培地の生存可能な標 品と置き換えることに同意する。寄託された細胞系の入手可能性は、あらゆる政 府の権威のある機関がその特許法に従って許可した権利に反して発明を実施する 許諾とは解釈されない。 上述の明細書は、当業者が本発明を実施するのに十分であると考える。本発明 は、寄託した培地によってその範囲を限定されず、寄託した実施態様は、本発明 の位置態様を例示したものに過ぎず、機能的に等価なあらゆる培地が本発明の範 囲内にある。この材料の寄託は、ここに含まれる詳細な説明が、本発明のベスト 。モードを含む全ての態様を実施するのに不十分であることを容認するものでは なく、請求の範囲をそれが示す特定の例示に限定すると解釈すべきでもない。確 かに、ここに示し述べたものに加えて、本発明の種々の変形が、これまでの説明 から当業者には明らかになり、それらは添付した請求の範囲内にある。 ＩＩＩ．実験 以下は、本発明を実施するための特定の実施態様の例である。これらの実施例 は、単に例示を目的とするものであり、本発明の範囲を如何なる方法においても 制限するものではない。 以上、以下に関わらず、ここに挙げる全ての刊行物、特許、特許出願は、それ らの全体を、参考としてここに取り入れる。 実施例1 ヒトWSXレセプターのクローニング WSX.6#1をデザインしたオリゴヌクレオチドプローブを、T73849EST配列に基づ いて合成した。WSX.6#1プローブは以下の配列を持つ51マーである： ラジオラベル化WSX．６＃１プローブを、ランダムでオリゴdTプライマー化λg t10胎児肝ライブラリー(Clontech,Palo Alto,CA)から1.2×10⁶クローンをプロー ブするために用いた。42℃でオーバーナイトのハイブリダイゼーションに引き続 いて、フィルターを0.5×SSC及び0.1%NaDodSO₄(SDS)で50℃で洗浄した。第一の スクリーニングから10クローンが選択され、1.5.6及び9とデザインされた4のク ロ ーンをEcoRＩ切断に引き続いてpBSSK^-(Stratagene)内にサブクローン化した。配 列分析により、クローン5及びクローン9は推定の開始メチオニン及びシグナルペ プチドを含むことが明らかにされた。クローン6(6.4とデザインされた)はほとん どの3'末端配列を含み、後にさらなるスクリーニングのため用いた。 フルレングス遺伝子を得るために、クローン6.4(Nsi-HindIII断片)をラジオラ ベルし、肝腫瘍Hep3B細胞系から構築したλgt10ライブラリーから1.2×10⁶クロ ーンをスクリーニングするために用いた。このスクリーニングにより24のポジテ ィブクローンが得られた。λgt10プライマー(F及びR)を用いた該クローンのPCR 分析に引き続き、4の最長クローン12.1,13.2,22.3及び24.3を単離した。これら のクローンをEcoRＩ部位を用いてpBSSK^-内にサブクローン化し、制限酵素切断に よる試験に引き続き、12.1及び13.2をシークエンシングに受けさせた。DNAシー クエンシングを自動Applied Biosystems DNAシークエンサーでTaq色素デオキシ ヌクレオチドターミネーターサイクルシークエンシングキットを用いて実施した 。 全ての単離されたクローン由来の集められた連続的な配列をは、WSXレセプタ ーとデザインされた新規に同定されたポリペプチドに対するコンセンサスアミノ 末端をコードしていた。しかしながら、配列分析により、異なる細胞内領域を持 つ少なくとも３の天然に生じるWSXレセプターの変異体が存在することが明らか にされた。これらの変異体は891位のリシン残基で異なってスプライシングされ ているようである。クローン6.4はLys891の後の5アミノ酸でストップする。クロ ーン12.1はLys891に引き続いて13.2及び6.4とは異なり、クローン13.2によって コードされるものとは異なり推定のbox2領域をコードする。クローン13.2は潜在 的なbox1領域を含み、Lys891に引き続いて制定のbox2及びbox3モチーフをコード する。Baumann等,Mol.Cell.Biol.14(1):138-146(1994)を参照。 クローン13.2細胞内領域に基づくフルレングスWSX遺伝子は、1165アミノ酸膜 貫通タンパク質をコードすると推定される。841アミノ酸細胞外ドメイン(ECD)は 2のWSXWSドメインを含む。ECDに24アミノ酸膜貫通ドメイン及び30アミノ酸細胞 内領域が続く。 実施例2 WSXレセプターイムノアドヘシン ポリメラーゼ連鎖増幅を用いて、WSXレセプターイムノアドヘシンを、ECDのC 末端でヒトCH2CH3(Fc)IgG(Bennett等,J.Biol.Chem.266(34):23060-23067(1991)) を用いてWSXレセプター遺伝子細胞外ドメイン(WSX.ECD)のフレーム中融合を実施 することにより作製し、pBSSK^-(Stratagen)内にクローン化した。発現のため、W SX-FcをClaＩおよびBstIIで摘出し、プラスミドpRK5.WSX-IgG GenenaseＩを作製 するためにpRK5.HulF.grbhIgG GenenaseＩベクター(Beck等,Molecular Immunolo gy 31(17):1335-1344(1994))内にライゲートした。このプラスミドを標準的なカ ルシウムリン酸トランスフェクション法を用いて293細胞内にトランスフェクト した。トランスフェクトされた細胞を、10%FBS,100mMHEPES(pH7.2)及び1mMグル タミンを50:50で補ったDMEM F12中で、37℃で5%C0₂で培養した。WSXレセプター イムノアドヘシンをProSepA^TMプロテインAカラムを用いて精製した。 実施例3 抗体生産 WSXに対する抗体を生産するために、実施例2のWSXレセプターイムノアドヘシ ンをポリクローナル抗体を生産するためにウサギを、モノクローナル抗体を生産 するためにマウスをありきたりの方法を用い接種した。 実施例4 WSXレセプターを発現する細胞系の生産 フルレングスWSXレセプター変異体13.2をコードする核酸を、pRKtkNeoプラス ミド(Holmes等,Science 253:1278-1280(1991))内に挿入した。それによって生産 された100μgsのpRKtkNeo.WSXプラスミドを直線化し、エタノール沈殿し、100μ LのRPMI1640に再懸濁した。7×10⁶BaF3細胞(5×10⁵/ml)を、900μLのRPMIに懸濁 し、直線化プラスミドに加えた。BRLエレクトロポレーシヨン装置を用いた325V ，1180μFでのエレクトロポレーションに引き続き、該細胞を５%WEHI3Bコンディ ション培地及び15％結成を含む15mlのRPMI1640内に接種した。48時間後細胞を2m g/mlG418において選択した。 WSXレセプター変異体を発現するBaf3/WSX細胞系を得るために、G418選択クロ ーンを、上述したようにwsx-Fcキメラタンパク質に対して生産されたウサギポリ クローナル抗血清を用いたFACSによって分析した。最高発現クローン(E6とデザ インされた)を、高レベルのWSXレセプター発現を持つ集団を維持するためFACSで 分類した。 実施例5 細胞増殖におけるWSXレセプターの役割 WSX変異体13.2及び12.1の増殖ポテンシャルを、GHレセプター細胞外及び膜貫 通ドメイン、そしてWSXレセプター13.2または12.1細胞内ドメインより成るキメ ラタンパク質をコードするヒト成長ホルモンレセプター-WSXレセプター(GH-WSX) 融合物を構築することによって試験した。これらのキメラ遺伝子融合物を、IL-3 非依存性細胞系BaF3内にトランスフェクトした。外因性成長ホルモン(GH)に応答 するGH-WSXトランスフフェクトBaF3細胞の能力を、チミジン取り込みアッセイで 試験した。図6及び8でみられるように、GH-WSXレセプター変異体13.2キメラは、 トランスフエクトBaF3細胞におけるチミジン取り込みを増大することができ、そ れゆえWSXレセプタ一変異体13.2の増殖ポテンシャルを示した。しかしながらWSX レセプター変異体12.1は、この実験において増殖シグナルを伝達できなかった( 図8)。 物質と方法 hGHレセプターの細胞外及び膜貫通ドメイン、そしてWSXレセプター変異体12.1 または変異体13.2のそれそれの細胞内ドメインを含むキメラレセプターを生産す るために、組換えPCRを用いた。要約すると、アミノ酸866でArgで始まり、アミ ノ酸958またはアミノ酸1165のそれぞれまで広がる変異体12.1または13.2のそれ それの細胞内ドメインを、アミノ酸18でMetで始まり、アミノ酸274でArgまで広 がるhGUレセプター細胞外及び膜貫通ドメインに、連続的なPCRによってフレーム 中で融合した。ヒトGHレセプターの細胞外及び膜貫通ドメインを生産するために 、GH-EDCキメラを最初にPCRを用いて構築した。このPCRに対して用いられる3'末 端 プライマーは、WSX細胞内ドメインの最初の20ヌクレオチドに相当するプライマ ーの5'末端で20ヌクレオチドを含んだ。該キメラの3'末端をPCRを用いて生産し たが、その場合5'末端プライマーはヒトGHレセプター膜貫通ドメインの最後の19 ヌクレオチドを含んだ。フルレングスキメラを生産するために、ヒトGHレセプタ ー産物の5'末端を、WSXレセプター細胞外PCR産物の3'末端と組み合わせ、引き続 き２の産物の融合物を作製するために増幅した。 このキメラ融合物を、ClaＩおよびXbaＩを用いて切断し、キメラ発現ベクター を作製するためにpRKtkNeo(Holmes等,Science253:1278-1280(1991))にライゲー トした。それからIL-3非依存性細胞系Baf3を、このhGH/WSXキメラ発現ベクター を用いてエレクトロポレーションした。 略記すると、100μgのpRKtkNeo/GH.WSXプラスミドを直線化し、エタノール沈 殿し、そして100μLのRPMI1640に再懸濁した。7×10⁶Baf細胞(5×10⁵/ml)を、90 0μLのRPMIに懸濁し、直線化プラスミドに加えた。BRLエレクトロポレーション 装置を用いて325V,1180μFでエレクトロポレーションに引き続き、該細胞を5%we hiコンディション培地と15%血清を含む15mlのRPHI1640内に接種した。48時間後 、細胞を2mg/mlG418で選択した。 Baf3/GH.WSX細胞系を得るために、G418選択細胞を抗ヒトGH mAb(3B7)を1μg/m lで用いてFACS分類した。上部10%発現細胞を選択し、増殖させた。 実施例６ WSXレセプターの発現分析 WSXレセプターの発現プロフィールを、初めにノーザン分析によって試験した 。ヒト胎児または成人mRNAのノーザンブロットをClontech(PaloAlto,California )から得た。およそ6kbの転写物をヒト胎児肺、肝臓及び腎臓で検出した。成人で は低レベルの発現が肝臓、胎盤、肺骨格筋、腎臓、卵巣、前立腺及び小腸を含む 様々な組織で検出された。 ヒト冷蔵血液のPCR分析により、CD34⁺サブ画分で転写物が同定された。PCR分 析により、WSXレセプターの全ての３の変異体がCD34⁺細胞で存在した。CD34^-サ ブ画分はこの同じPCR分析ではネガティブのようであった。 PCR分析により、6.4変異体及び13.2変異体の両者は、Zeigler等,Blood 84:242 2-2430(1994)に記述されているように妊娠中期胎児肝臓から単離されるAA4⁺Sca⁺ Kit⁺(flASK)細胞集団で明白であった。12.1変異体細胞内テールを含むクローン はネズミ組織から単離されなかった。 抗CD19/20抗体を用いて末梢血液から単離されたヒトB細胞もまた、短い形態の (6.4変異体)及び長い形態の(13.2変異体)レセプターmRNA発現に対してポジティ ブであった。 WSXレセプターは始源細胞及びより成熟した造血細胞の両者で発現されている ようである。 実施例7 ネズミWSXレセプターのクローニング ヒトWSXレセプターをネズミWSXレセプターを単離するためのプローブとして用 いた。実施例4のpRTtkNeo.WSXプラスミドを、SspＩを用いて切断した。このSsp Ｉ断片(1624bp)を単離し、ラジオラベルし、そしてネズミ肝λgtライブラリー(C lontech)をスクリーニングするために用いた。これにより4のポジティブクロー ンが得られ、それらをEcoRＩ切断を介したpBSSK^-内へのサブクローニングの後単 離し、シークエンスした。1.2.3.4とデザインされたこの結果として生じたクロ ーンは、ヒトWSXレセプターの細胞外ドメインと同一性を示した；これらのクロ ーンから由来する連続的な配列は、開始メチオニンから783位のトリプトファン まで広がっている。ヒトWSXレセプターとネズミWSXレセプターの全体の類似性は 、各自の細胞外ドメインのこの領域について73％である（図4A-B参照）。 実施例8 造血細胞増殖におけるWSXレセプターの役割 冷蔵血液由来の濃縮ヒト幹細胞集団CD34⁺におけるWSXレセプターの存在は、幹 細胞/始源細胞増殖におけるこのレセプターの潜在的な役割を示唆する。メチル セルロース培地(Stem Cell Technologies)中のCD34⁺ヒト血液細胞の増殖を、WSX レセプターアンチセンスオリゴヌクレオチドの存在下または不存在下で測定した 。 これらの試験はまた、ネズミ胎児肝臓由来のAA4⁺Sca⁺Kit⁺幹細胞を用いたネズミ 造血系で報告されている。両例において、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、 造血始源細胞油体のコロニー形成を実質的に有意に阻害した。以下の表1参照。 抗増殖効果は、-20アンチセンス及び+85アンチセンスオリゴヌクレオチド構築物 を用いると最も強調された。この阻害は始源的な増大から由来するいかなる特定 のミエロイド系列とも系列特異的ではなかった。アンチセンスオリゴヌクレオチ ドの主要な効果は、全体のコロニー数の減少にあった。個々のコロニーのサイズ もまた減少した。 ヒト及びネズミ幹細胞の両者を用いたアンチセンスオリゴヌクレオチド実験に より、ミエロイドコロニー形成の阻害が示された。しかしながらこれらのアッセ イにおいて観察された骨髄新生における減少は、カルチャー培地中のG-CSF及びG M-CFSを付加的に含むことによって妨げられ得る。これらのデータは骨髄新生コ ンパートメントにおける過剰なサイトカイン機能を説明することを助ける。 物質及び方法 ヒト肝細胞:ヒトへその緒冷凍血液をPBS/ヘパリン(1000μ/ml)中に集めた。単 核画分をデキストラン勾配を用いて分離し、いかなる残余の赤血球細胞をも20mM NH₄Cl中で溶解した。CD34⁺細胞をCD34⁺イムノマグネチックビーズ(Miltenyi,CA) を用いて単離した。これらの単離されたCD34⁺細胞は、FACS分析により90-97%CD3 4⁺であることが見出された。 ネズミ幹細胞:妊娠中期胎児肝臓を集め、イムノパンニングによってAA4^-抗原 に対してポジティブに選択した。それからAA4^-ポジティブ画分を、AA4⁺Sca⁺Kit⁺ 画分のFACS単離によって幹細胞含有物に対してさらに豊富にした。 アンチセンス実験:ヒトまたはネズミWSXレセプターの領域に対してオリゴヌク レオチドを合成した。選択されたそれぞれのオリゴヌクレオチドに対して、アン チセンス(AS)、センス(S)及び混合(SCR)バージョンを合成した(図7参照)。+また は-はWSXレセプターの開始メチオニンに相対的な位置を示す。CD34⁺またはAA4⁺S ca⁺Kit⁺細胞を、センス、アンチセンスまたは混合オリゴヌクレオチドのそれぞ れを70μg/mlの濃度で含む、10%FBS、L-グルタミン、及びGIBCO^TMリピド濃縮物 を補った50:50 DMEM/F12培地で、10³/mlの濃度でインキュベートした。16時間後 、それぞれのオリゴヌクレオチドの第二の等量物を加え(35μg/ml)、該細胞をさ らに6時間インキュベートした。 コロニーアッセイ:上記コンディションのそれぞれから由来する5000細胞を、K itリガンド(KL)(25ng/ml)、インターロイキン-3(IL-3)(25ng/ml)及びインターロ イキン-6(IL-6)(50ng/ml)を含む5mlのメチルセルロース(Stem Cell Technologie s)内に等分した。それからメチルセルロースカルチャーを37℃で14日間インキュ ベートし、結果として生じたコロニーを数え、表現型を調べた。全てのアッセイ は三重で実施した。 実施例9 WSXレセプター変異体はOBタンパク質に対するレセプターである WSXレセプター変異体13.2は、最近クローン化されたレプチン(OB)レセプター と本質的に同じアミノ酸配列を持つ。Tartaglia等,Cell 83:1263-1271(1995)参 照。OBタンパク質は、実施例4に記述されているようにWSXレセプター変異体13.2 を用いてトランスフェクションされたBaf3細胞におけるチニジン取り込みを刺激 し得た(図９参照) 造血細胞におけるOBタンパク質発現を研究した。OBタンパク質に対して特異的 にデザインされたオリゴヌクレオチドプライマーにより、胎児肝臓及び胎児脳に おけるこのリガンドの存在が示され、同様に10-6及び7-4とデザインされた2の胎 児肝ストロマ細胞系でも示された。これらの不朽化ストロマ細胞系の両者は、幹 細胞集団のミエロイド及びリンパ球増殖の両者を支持することが示されている(Z eigler等,Blood 84:2422-2430(1994))。 実施例10 造血におけるOBタンパク質の役割 OBタンパク質の造血活性を調べるために、様々なin vitroアッセイを実施した 。 ネズミ胎児肝flASK幹細胞を、Zeigler等,Blood 84:2422-2430(1994)に記述さ れているように妊娠中期胎児肝臓から単離し、幹細胞懸濁物カルチャーまたはメ チルセルロースアッセイで研究した。 幹細胞懸濁物カルチャーに対しては、12000のfLASK細胞を、10％熱不活性化胎 児ウシ血清(Hyclone,Logan,UT)及びL-グルタミンを補ったDMEM4.5/F12培地で、1 2穴フォーマットにおいて個々のウェルにまいた。増殖因子を以下の濃度で加え た:kitリガンド(KL)を25ng/mL、インターロイキン-3(IL-3)を25ng/mL、インター ロイキン-6(IL-6)を50ng/mL、G-CSFを100ng/mL、GH-CSFを100ng/mL、EPOを2U/mL 、インターロイキン-7(IL-7)を100ng/mL(全ての増殖因子はR and D System,Minn eapolis,MNから得た)。OBタンパク質をもし他の指示がなければ100ng/mLで加え た。組換えOBタンパク質をLevin等,Proc.Natl.Acad.Sci.(USA)93:1726-1730(199 6)に記述されているように生産した。 Baf3細胞における増殖シグナルを変換する能力を維持させる場合(以前の実施 例参照)、OBタンパク質はkitリガンドの存在下で懸濁物カルチャーにおいて増殖 するflASK細胞の増殖を劇的に刺激した(図10A)。これらの懸濁物カルチャーへの OBタンパク質単独の添加では、造血幹細胞(HSC)の生存を作用できなかった。懸 濁物カルチャーアッセイにおいて様々な造血増殖因子を試験した場合、OBタンパ ク質の主要な共同作用は、KL,GM-CSF及びIL-3と共同した場合に得られるようで あった(表2)。いかなる特定の系列でも好ましい増殖は、結果として生じたカル チャーのサイトスピン分析から観察されなかった。flASK幹細胞を単離した。12000細胞を関連した増殖因子の組み合わせを用いた懸 濁物カルチャーにおいて接種した。細胞を7日後回収し、カウントした。細胞数 は×10³で表される。アッセイは三重で実施し、2の独立の実験で繰り返した。 メチルセルロースアッセイを以前に記述されたように実施した(Zeiger等，上 記参照)。略記すると、メチルセルロースコロニーアッセイを、25ng/mLのKL(R a nd D Systems,Minneapolis,MN)を添加した「完全」メチルセルロースまたはプレB メチルセルロース培地(Stem Cell Technologies,Vancouver,British Columbia,C anada)を用いて実施した。結果として生じたコロニーのサイトスピン分析をZeig ler等に以前に記述されたように実施した。 これらのメチルセルロースアッセイを実施する場合、OBタンパク質はミエロイ ドコロニー形成を増大させ、リンパ球及び赤血球コロニー形成を劇的に増大し( 図10B及び10C)、それはOBタンパク質が造血系列の大変早期の細胞に機能し得る ことを示す。重要なことは、OBタンパク質の造血活性は胎児肝幹細胞、ネズミ骨 髄幹細胞増殖では確かめられないことであった;Lin^loSca⁺もまたOBタンパク質に 応答して増殖される(KL:5倍の増大、KL及びOBタンパク質:10倍の増大)。 WSXレセプターの役割のさらなる造血分析を、db/dbマウスでの造血欠損を調べ ることによって実施した。 これらの欠損は、db/dbホモ接合体ミュータント骨髄の増殖ポテンシャルを測 定することによって評価された。ミエロイド(Humphries等,Proc.Natl.Acad.Sci. (USA)78:3629-3233(1981))またはリンパ球(McNiece等,J.Immunol.146:3785-90(1 991))のそれぞれの増殖に好ましいコンデイションの下で、db/db骨髄のコロニー 形成ポテンシャルは、野生型コントロール骨髄と比較した場合有意に減少した( 図11)。KL及びIL-7をリンパ球形成から由来して用いた場合で、該比較をプレBメ チルセルロースコンディションの下でなした場合、これは特に明らかであった(M cNiece等,上記参照)。OBタンパク質の生産が不十分である(Zhang等,Nature 372: 425-431(1994))相補的マウスミューテーションob/obの相当する分析により、リ ンパ球増殖能力は、機能的なOBタンパク質シグナル経路が不存在の場台、妥協さ れることが示された(図11)。しかしながらこの減少は、db/db骨髄を用いて観察 された減少よりも小さかった。 db/db及び野生型骨髄の細胞プロフィールの分析により、これら二つの間の有 意な差異が明らかにされた。db/db骨髄の全体の細胞性は変化なかった。しかし ながらdb/db骨髄の様々なB細胞集団を調べてみると、B220⁺及びB220⁺/CD43⁺細胞 の両者で減少したレベルが見出された。B220+細胞は全てのB細胞系列を表す一方 で、CD43はB細胞階層の最早期細胞で好ましく発現されているように思われる(Ha rdy等,J.Exp.Med.173:1213-25(1991))。2の群のCD4/CD8染色プロフィールの間で 差異は観察されなかった。TER119(赤血球細胞系列マーカー)集団は、db/db骨髄 において増殖していた(図12)。 2の群由来の脾臓の比較により、ホモ接合体淡灰色コントロールと比較して、d b/dbマウスの組織重量と細胞性の両者で有意な減少が明らかにされた(0.063±0. 009g vs.0.037±0.006g及び1.10×10⁷±1×10⁴vs.4.3×10⁶±10³細胞 >p0.05)。 この結果はOBタンパク質とEPOの間で示される共同作用性を確認し、赤血球形成 の調節におけるOBタンパク質に対する役割を指摘するようである。 db/dbマウスの造血コンパートメントのin vivoでの実験により、ホモ接合体ま たは野生型コントロールと比較した場合、末梢血リンパ球において有意な差異が 示された。db/dbマウスは血中グルコースレベルを調節できず、およそ6-8週令で 糖尿病になる;それゆえ動物が成熟するにつれての末梢血カウントを観察した。 血液サンプルの調達のため、実験の前及び研究を通じた各時点で、40μLの血 液を眼窩洞から採取し、凝血を防止するため10mLの希釈液中に即座に希釈した。 各血液サンプル由来の完全な血液カウントを、採血の60分以内にSerrono Baker システム9018血液分析器で測定した。各投与群における半分の動物のみが、いか なる与えられた日においても採血され、それゆえ各動物は交互の時点で採血され た。血中グルコースレベルをOne Touch グルコースメーター及びテストストリッ プを用いて、眼窩洞血液サンプルで測定した(Johnson and Johnson)。この実験 の結果は図13A-Cに示されている。 該分析により、末梢血リンパ球はコントロール動物と比較して全ての時点で有 意に減少していること、及びdb/dbマウスの末梢リンパ球集団は年齢に関して有 意に変化しないことが示された。FACS分析により、減少したリンパ球集団はB220⁺ 細胞及びCD4/CD8細胞の両者での減少を示すことが明らかにされた。赤血球と血 小板の両者は、調べた全ての時点を通じて野生型レベルである。ob/obホモ接合 体ミュータントマウスにおける末梢血リンパ球レベルは、野生型コントロールと 変わりなかった。 db/dbマウスの造血分析は、糖尿病の開始により複雑化し得る。それゆえリン パ球形成における高グルコースレベルの衝撃を、2の他の糖尿病モデル、グルコ キナーゼノックアウトヘテロ接合体マウス(Grupe等,Cell 83:69-78(1995))及びI FN-αトランスジェニックマウス(Stewart等,Science 260:1942-6(1993))におけ る末梢血プロフィール及び血中グルコースレベルと比較することによって調べた 。db/dbマウス、その適切なコントロール及び高グルコースモデルにおける末梢 リンパ球及び血中グルコースの比較により、血中グルコースとリンパ球カウント の間には何の関係も存在しないことが示された(図14)。それゆえこれらの結果は 、db/dbマウスで観察されるリンパ球欠損は、OBタンパク質シグナル経路の造血 機能に直接的に帰されることを示唆する。 チャレンジに応答するdb/db造血コンパートメントの能力を試験するために、d b/dbマウス及びコントロールを致死化の放射に受けさせた。C57BLKS/J db/db、C 57BLKS/J m⁺/db及びC57BLKS/J ⁺m/⁺mマウスを、¹³⁷Csソース由来の単一投与とし て致死化の全身体放射(750cGy,190cGy/分)に受けさせた。10の動物を実験グルー プごとに用いた。それから造血回復の速度論を、回復フェーズの間の末梢血液を モニターすることによって観察した。この実験により、放射後35日で末梢血液の リンパ球形成コンパートメントの完全な回復は、db/db造血系では不可能となる ことが示された。これらのマウスにおける血小板レベルはコントロールとした同 じ回復速度論にしたがったが、赤血球における減少は7-10日までコントロールか ら遅れてラグを生じた。この発見は、db/dbマウスの骨髄において見出された増 大したTER119集団を反映しているであろう(図12A)。 物質及び方法 骨髄、脾臓、及び抹消血液は、糖尿病マウス株:C57BLKS/J db/db(ミュータン ト)、C57BLKS/J m+/db(やせたヘテロ接合体コントロール同腹子)、C57BLKS/J +m /+m(やせたホモ接合体淡灰色コートコントロール同腹子)、及び肥満マウス株:C5 7BL/6J-ob/ob(ミュータント)そしてC57BL/6J-ob/+(やせた同腹子コントロール) から集めた。全ての株はJackson Laboratory,Bar Harbor,MEから得た。5の動物 の最小値を実験群ごとに用いた。大腿骨を2%FCSを加えたハンクスバランス塩溶 液(HBSS)で新鮮にし、単一細胞懸濁物を骨髄細胞で作製した。脾臓を集め、脾臓 被膜を裂き、ナイロンメッシュで濾過した。末梢血液を10U/mLのヘパリン及びIm mnol EDTAを用いたリン酸緩衝生理食塩水(PBS)において後眼窩洞を通じて集め、 以前に記述されているように加工した。それから骨髄、脾臓細胞及び抹消血液を 、以下の抗原に対するモノクローナル抗体を用いて染色した:B220/CD45R(PanB細 胞)FITC抗マウス、TER119/赤血球細胞R/PE抗マウス、CD4(L3T4),FITC抗マウス、 CD8(Ly3.2),FITC抗マウス、及びsIgM(Igh-6b),FITC抗マウス(全てのモノクロー ナル抗体はPharmigen,San Diego,CAから得た)。適切なアイソタイプコントロー ルが各実験に含まれた。メチルセルロースアッセイのため、群当たり5の動物由 来の骨髄をプールし、各群由来の100,000細胞等量物を各アッセイ時点で用いた 。 実施例11 OB-イムノアドヘシンの発現 タンパク質加工法を用いて、ヒトOBタンパク質をIgG1のヒンジ、CH2及びCH3ド メインとの融合物として発現させた。ヒトOBタンパク質とIgG1Fcドメインのキメ ラをコードするDNA構築物を、ヒトIgG1のFc領域クローンを用いて作製した。ヒ トOBcDNAをヒト肝細胞dscDNA(Clontech Buick-Clone cDNA産物）からPCRによっ て得た。IgG1cDNAのソースは、プラスミドpBSSK-CH2CH3であった。該キメラはフ ルレングスOBタンパク質（図16のアミノ酸1-167)のコード配列、及びアスパラギ ン酸216で始まるヒトIgG1配列(H鎖コンスタント領域の第一の残基として114アミ ノ酸を得る(Kabat等,Sequences of Proteins of Immunological Interest 第４ 版(1987)))を含み、該アスパラギン酸216はH-L鎖結合に関与するシステイン残基 の後のIgG1ヒンジの第一の残基であり、該ヒトIgG1配列はIgG1のCH2及びCH3Fcド メインを含むために残基441で終わる。OBタンパク質とIgG1コード配列の間の3の アミノ酸(Gly Val Thr)に対するコドンに興味が存在する。もし必要であれば、 この短いリンカー配列は、OBタンパク質とIgG1ヒンジ領域のコード配列間の正確 なジャンクションを作製するために、例えばサイトディレクトミュータジェネシ スによって、容易に検出し得る。OB-IgG1イムノアドヘシンのコード配列を、カ ルシウムリン酸法を用いて293細胞で一過的に発現するために、ネオマイシン選 択マーカーを含むpRK5ベースベクターpRK5tk-neo内にサブクローン化した(Suva 等,Science 237:893-896(1987))。293細胞を10%FBS及び2mML-Glnを含むHAM'S:低 グルコース培地(50:50)で培養した。OB-IgG1キメラの精製のために、トランスフ ェクションの後の日に血清フリー生産培地PS24に変化させ、培地を３日後集めた 。カルチャー培地を濾過した。 組換えヒトOB-IgG1を含む濾過された293細胞上清(400ml)を、フェニルメチル スルホニルフルオリドと2μg/mlのアプロチニンで1mMにした。この物質を、100m M HEPES pH8で平衡化した１×４．5cmのプロテインAアガロースカラム(Pierce カタログナンバー20365)上に４℃で乗せた。流速は75ml/時であった。OB-IgG1タ ンパク質を流速15ml/時で、3.5MMgCl₂+2%グリセロール(非緩衝化)を用いて溶出 した。 該溶出物を、およそ2分の1までMgCl₂濃度を減少させ、pHを上昇させるために、1 0mlの100mM HEPES pH8内に時々攪拌しながら集めた。それから該溶出タンパク質 をリン酸緩衝生理食塩水内で透析し、濃縮し、滅菌濾過して４℃または-70℃で 凍結して貯蔵した。この方法によって調製されたOB-IgG1イムノアドヘシンを、9 0％より大きく精製するためにSDS-PAGEで見積もる。 実施例12 PEG-OBの調製 ヒトOBタンパク質のPEG誘導体を、Shearwater Polymer,Inc(Huntsville,AL)か ら得た見かけの分子量が10kDであるPEGプロピオン酸(SPA-PEG)のスクシンイミド 誘導体を用いた逆相クロマトグラフィーによって精製されたhOBタンパク質の反 応によって調製した。逆相クロマトグラフィーによるhOBタンパク質の精製後、0 .1%トリフルオロ酢酸とおよそ40%のアセトニトリル中でタンパク質のおよそ1-2m g/m溶液を、0.2Mホウ酸バッファーの1/3から1/2容量を用いて希釈し、pHをNaOH を用いて8.5に調節した。SPA-PEGをSPA-PEGに対するタンパク質のモル比が1:1及 び1:2になるように反応混合物に加え、該混合物を１時間室温でインキュベート した。反応とゲル電気泳動またはイオン交換クロマトグラフィーによる精製後、 該サンプルをリン酸緩衝生理食塩水に対して徹底的に透析し、0.22ミクロンフィ ルターを通した濾過によって滅菌した。サンプルを４℃で貯蔵した。これらのコ ンディションの下で、SPA-PEGに対する1:1のモル比のタンパク質から生ずるPEG- hOB反応物は、主に2PEG含有種の少量と付着した1の10kDPEGを持つ分子より成っ た。1:2モル反応物由来のPEG-hOBは、SDSゲル電気泳動によって測定したところ 、hOBに付着した2及び3PEGの大体等量より成った。両反応において、少量の非反 応タンパク質が検出された。この非反応タンパク質を、必要とされるゲル濾過ま たはイオン交換工程によって効率的に除去した。ヒトOBタンパク質のPEG誘導体 を、1990年6月13日に印刷されたEP 372,752に記述されているアルデヒド化学に 本質的にしたがって調製し得る。 実施例13 ネズミ作用剤抗体 ネズミを各肉趾内に、MPL-TDM(モノホスホリルリピドA/トレハロースジコリノ ミコレート;Rabi,Immunochemical Research Inc.)に再懸濁したWSXレセプターイ ムノアドヘシン(上記実施例２参照)の20μgを用いて5回免疫化した。最後の免疫 化の３日後、膝窩リンパ球細胞を、記述されているように50%ポリエチレングリ コールを用いてマウスミエローマ細胞、X63-Ag8.8.653細胞と融合した(Laskov等 ,Cell.Immunol.55:251(1980))。 ハイブリドーマカルチャー上清の最初のスクリーニングを、キャプチャーELIS Aを用いて実施した。キャプチャーELISAのために、ミクロタイタープレート(Max isorb;Nunc,Kamstrup,Denmark)をPBS中で2μg/mlのヒトIgGのFc部分に対して特 異的なヤギ抗体(Goat抗hIgG-Fc;Cappel)の50Atl/ウェルを用いて4℃でオーバー ナイトでコートし、2×BSAを用いて室温で１時間ブロックした。それから2μg/m lのWSXレセプターイムノアドヘシンの50μl/ウェルを、各ウェルに1時間で加え た。残余の抗Fc結合部位を、3%ヒト血清及び10μg/mlのCD4-IgGを含むPBSを用い て1時間でブロックした。プレートを2μg/mlの抗WSXレセプターモノクローナル 抗体(またはハイブリドーマカルチャー上清)の50μl/ウェルを用いて１時間でイ ンキュベートした。それからプレートをHRP-ヤギ抗マウスIgGの50μl/ウェルを 用いてインキュベートした。結合酵素を基質(OPD)の添加によって検出し、プレ ートをELISAプレートリーダーを用いて490nMで読み取つた。各工程の間、プレー トを洗浄バッファー(0.05％TWEEN20^TMを含むPBS)で洗浄した。 作用剤抗体をWO 95/14930に記述されているKIRA ELISAを用いてスクリーニン グした。カルボキシル末端単純ヘルペスグリコプロテインD(gD)タグを持つ、WSX レセプターの細胞外ドメインとRswレセプターの膜貫通及び細胞内ドメインを含 むキメラレセプター(Mark等,Jounal of Biological Chemistry 269(14):10720-1 0728(1994))を生産し、dp12.CHO細胞をWO 95/14930の実施例4に記述されている ようにそれを用いてトランスフォームした。 WSX/Res.gDトランスフォームdp12.CHO細胞を、100ml培地中で平底96穴カルチ ャープレートにまき(3×10⁴/ウェル）、5%C0₂で37℃でオーバーナイトで培養し た。次の朝、ウェル上清を除去し、それから様々な濃度の精製mAbを別々のウェ ルに 加えた。細胞を37℃で30分刺激し、該ウェル上清を捨てた。細胞を溶解し、キメ ラレセプターを可溶化するために、100μlの溶解バッファーを各ウェルに加えた 。それから該プレートをプレートシェイカー(Bellco Instruments,Vineland,NJ) で室温で60分穏やかに振動した。 該細胞を可溶化する間、5B6モノクローナル抗gD抗体(50mM炭酸バッファー、pH 9.6中で5.0μg/ml,，100μl/ウェル)を用いて４℃でオーバーナイトでコートし たELISAミクロタイタープレート(Nunc Maxisorp,Inter Med,Denmark)に移し、2% BSAを含むBlock Bufferの150μl/ウェルを用いて室温で60分ブロックした。60分 後抗gD5B6コートプレートを、洗浄バッファー(0.05%TWEEN20^TM及び0.01%チメロ サールを含むPBS)を用いて６回洗浄した。 細胞カルチャーミクロプレートウェル由来の可溶化WSX/Rse.gDを含む溶解物を 、抗gD5B6コートそしてブロックELISAウェルにトランスファーし(85μl/ウェル) 、室温で2時間インキュベートした。非結合WSX/Res.gDを洗浄バッファーで洗浄 することによって除去し、希釈バッファー(0.5%BSA,0.05%Tween-20,5mMEDTA,及 び0.01%チメロサールを含むPBS)で1.18000に希釈されたビオチン化4G10(抗ホス ホチロシン)、すなわち56ng/mlを各ウェルに加えた。室温で２時間のインキュベ ーション後、該プレートを洗浄し、HRPO接合ストレプタビジン(Zymed Laborator ies，S.San Francisco,CA)を各ウエルに加えた。該プレートを穏やかに振動さ せながら室温で30分インキュベートした。フリーのアビジン接合物を洗い流し、 100μlの新鮮に調製された基質溶液(テトラメチルベンジジン(TMB);2-コンポー ネント基質キット;Kirkegaard and Perry,Gaithersburg,MD)を各ウェルに加えた 。反応を10分進行させ、その後に色素発達を100μl/ウェルの1.0MH₃PO₄を加える ことによってストップさせた。450nmの吸光度を、Macintosh Centris 650(Apple Computers,Cupertino,CA)及びDeltaSoft ソフトウェアー(BioMetallics,Inc,Pr inceton,NJ)でコントロールされたvmaxプレートリーダーを用いて、650nmのリフ ァレンス波長を用いて読んだ(ABS_450/650)。 25の抗WSXレセプターモノクローナル抗体のうち4が、KIRA ELISAでキメラWSX/ Rseレセプターを活性化した。該抗体は2D7,1G4,1E11及び1C11とデザインされた 。 4の作用剤抗WSXレセプターmAbが同じまたは異なるエピトープを認識するかど うかを測定するために、競合的結合ELISAをKim等,J.Immunol.Method 156:9-17(1 992)に記述されているように、ビオチン化mAb(Bio-mAb)を用いて実施した。Bio- mAbはAntibodies,A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Laboratory,Harlow E.及びD.Lane編,±.341(1988)に記述されているようにN-ヒドロキシスクシンイ ミドを用いて調製した。ミクロタイターウェルを50μlのヤギ抗hIgG-Fcを用いて コートし、4℃でオーバーナイトで維持し、2%BSAを用いて1時間ブロックし、そ して25μl/ウェルのヒトWSXレセプターイムノアドヘシン(1μg/ml)を用いて室温 で1時間インキュベートした。洗浄後、所定の最適濃度のBio-mAb結合物と1000倍 過剰の非ラベルmAbの混合物を、各ウェルに加えた。室温で1時間のインキュベー ションに引き続き、プレートを洗浄し、Bio-mAbの量をHRP−ストレプタビジンの 添加によって検出した。プレートを洗浄後、結合酵素を基質o-フェニルエネジア ミンジヒドロクロライド(OPD)の添加によって検出し、該プレートをELISAプレー トリーダーを用いて490nmを読んだ。 ネズミWSXレセプターを認識するmAbの能力を、キャプチャーELISAで測定した 。gDタグ(上記参照)を融合したネズミWSXレセプター(図21)を、抗gD(5B6)コート ELISAプレーとによって捕らえた。洗浄後、様々な濃度のビオチン化mAbを各ウェ ル内に加えた。ネズミWSXレセプター-gDに結合したビオチン化mAbを、上述のよ うにHRP-ストレブタビジンを用いて検出した。 該抗体が膜結合レセプターに結合するかどうかを測定するために、FACS分析を WSXレセプターを用いてトランスフェクトされた293細胞を用いて実施した。10⁵W SXレセプター-トランスフェクト293細胞を、100μlのPBSプラス1%胎児ウシ血清( FSC)に再懸濁し、2D7または1G4ハイブリドーマ細胞上清を用いて氷上で30分イン キュベートした。洗浄後、細胞を100μlのFITC-ヤギ抗マウスIgGを用いて4℃で3 0分インキュベートした。細胞を２度洗浄し、150μlのPBSプラス1%FCDに再懸濁 し、Facスキャン(Becton Dickinson,Mountain View,CA)によって分析した。抗体 2D7及び1G4はFacS分析にしたがって膜WSXレセプターに結合した。 作用剤2D7及び1G4の性質は以下の表に要約されている。 ^aこれらのmAbは競合的結合ELISAにより異なるエピトープを認識することが示さ れる。^b これらの結果はELISAで測定される(hWSXRはヒトWSXレセプターであり、mWSXRは ネズミWSXレセプターである)。^c 作用剤活性はKIRA ELISAにより測定される。 実施例14 ヒト作用剤抗体 ヒトWSXレセプター(hWSXR)を結合する単一鎖Fv(scFv)断片を、イムノチューブ 上にコートされた抗原またはストレプタビジンコートマグネチックビーズを用い て接合されたビオチン化抗原(Griffiths等,EMBO J.13:3245-3260(1994);及びVau ghan等(1996))を用いて、ラージヒトscFvライブラリー(Vaughan等,Nature Biote chnology 14:309-314(1996))から単離した。略記すると、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)中で10μg/mlのヒトWSXレセプターイムノアドヘシン(上記実施例2参照)を 用いてオーバーナイトでコートされたイムノチューブを、パンンニングの3周に 対して用いた。ヒト化抗体、huMAb4D5-8(Carter等,Proc.Natl.Acad.Sci.USA89:4 285-4289(1992))を、イムノアドヘシンのFcに結合する抗体のカウンター選択に 用いた。これをパンニング工程に対する溶液中の1mg/mlのhuMAb4D5-8を用いて実 施した。加えてヒトWSXレセプター細胞外ドメイン(Geneaseを用いてWSXレセプタ ーイムノアドヘシンから切断した(Carter等,Proteins:Structure,Function and Genetics 6:240-248(1989)))をビオチン化し、パンニングの3周で用いた。2また は3周のパンニングに引き続く個々のファージは、抗原結合ELISAにより特性指摘 された(表3及び4)。 表3 ヒトWSXレセプターイムノアドヘシン-コートイムノチューブを用いたパンニン グ aトータルで11の異なるクローンを同定した。 表4 ビオチン化ヒトWSXレセプターを用いたパンニング aトータルで7の異なるクローンを同定した。 ヒトWSXレセプターに結合するクローンを、さらにscFvをコードするPCR断片の BstNＩフィンガープリントで特性指摘した。トータル18のクローンを同定した： イムノチューブを用いたパンニングから11、そしてビオチン化抗原を用いたパン ニングから7(これらの群でオーバーラップは存在しなかった)。全ての18のクロ ーンに対するDNAをシークエンスした。 上記のように得られた抗HuWSXクローンを、最初にscFvファージとして、それ からscFvとしてKIRA-ELISAアッセイ(上記及び図22参照)で作用剤活性に対して分 析した。scFvファージをPEG沈降し(Carter等,Mutagenesis:A Practical Approac h,McPherson,M編.I±L Press,Oxford,UK,第1章、ppl-25(1991))、スクリーニン グの前PBSに再懸濁した。scFvを調製するため、該クローン由来のDNAを33D3細胞 内にトランスフォームした(可溶性タンパク質の発現に対する非サプレッサー株) 。 該細胞をカーベニシリンのml当たり2YT/2%グルコース/50μg上にまき、37℃でオ ーバーナイトでインキュベートした。5mlカルチャー(2YTG:2YT,2%グルコース,50 μg/mlカーベニシリン)をイノキュレートし、30℃でオーバーナイトで成育させ た。翌朝該5mlカルチャーを500mlの2YTG培地で希釈し、OD550がおよそ0.3になる まで30℃で成育させた。それから該培地を2YTGから2YT/50μg/mlカーベニシリン /2mMIPTGに変化させ、scFv生産のため30℃で4-5時間成育させた。該カルチャー を回収し、細胞ペレットを-20℃で凍結した。精製のため、該細胞ペレットを10m lのショケートバッファー(50mMTrisHCl pH8.5,20%スクロース,1mMEDTA)で再懸濁 し、4℃で1時間振動した。破片をスピンダウンし、Ni NTA Superose(Qiagen)カ ラムで精製させるために上清を採取した。MgCl₂を5mlまで上清に加え、ディスポ ーザルカラム内に装填した0.5mlのNi NTA Superose上で流した。それから該カラ ムを2×5ml洗浄バッファー1(50mMリン酸ナトリウム、300mMNaCl,25mMイミダゾー ル pH8.0)を用いて洗浄し、引き続き洗浄バッファ−2(50mMリン酸ナトリウム,30 0mMNaCl,250mMイミダゾール,pH8.0)で洗浄した。それからscFvを2.5mlの溶出バ ッファー(50mMリン酸ナトリウム,300mMNaCl,250mMイミダゾール,pH8.0)を用いて 溶出した。溶出されたプールをNAP5カラム(Pharmacia)を用いてPBSに変換し、4 ℃で貯蔵した。 クローン#3,#4及び#17は、ファージとして及びscFvとして作用剤活性を持つこ とが見出された(図23及び24参照)。これらの作用剤クローンの配列は図25に示さ れている。KIRA ELISAにおけるF(ab')₂としての抗体の活性を、F(ab')₂として増 大された活性を示すクローン#4及びクローン#17を用いて評価した。キャプチャ ーELISA(図13参照)においてネズミWSXレセプターを結合する抗体の能力を評価し た。クローン#4及びクローン#17はこのアッセイにおいてネズミWSXレセプターを 結合した。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 3/06 Ａ６１Ｋ 31/00 ６０３Ｌ 7/06 ６０７Ｃ 7/02 ６０７Ａ 7/04 ６０７Ｂ 9/10 ６０９Ｇ 9/00 ６０９ 9/12 ６０９Ｊ 13/12 ６１３Ｇ 17/00 ６１７ 19/02 ６１９Ａ 31/04 ６３１Ｃ 35/00 ６３５ 35/02 ６３５Ａ 37/04 ６３７Ｃ 43/00 ６４３Ｃ Ａ６１Ｋ 38/00 39/395 Ｄ 39/395 Ｎ Ｃ０７Ｋ 14/715 Ｃ０７Ｋ 14/715 16/28 16/28 16/42 16/42 19/00 19/00 Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｇ０１Ｎ 33/566 15/02 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｂ Ｃ１２Ｐ 21/08 15/00 Ｃ Ｇ０１Ｎ 33/566 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ， ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，Ｓ Ｚ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ， ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，Ｇ Ｅ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ， ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，Ｐ Ｌ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者 チャン，ナンシー ワイ アメリカ合衆国 カリフォルニア 94116 サンフランシスコ キンタラ ストリー ト 622 (72)発明者 キム，キュン ジン アメリカ合衆国 カリフォルニア 94024 ロス アルトス ベンヴニュー アヴェ ニュ 622 (72)発明者 マシューズ，ウィリアム アメリカ合衆国 カリフォルニア 94062 ウッドサイド サミット スプリングス ロード 560 (72)発明者 ロドリゲス，マリア エル アメリカ合衆国 カリフォルニア 94080 サウス サンフランシスコ ドネガル アヴェニュ 2320

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．単離されたWSXレセプター。 ２．（ａ）図2A-Bに示された成熟ヒトWSXレセプター変異体6.4のアミノ酸配列; （ｂ）図2A-Bに示された成熟ヒトWSXレセプター変異体12.1のアミノ酸配列;（ｃ ）図2A-Bにし召された成熟ヒトWSXレセプター変異体13.2のアミノ酸配列より成 る群から選択されたアミノ酸配列を含む請求項1記載のWSXレセプター。 ３．成熟ヒトWSXレセプター変異体13.2である請求項2記載のWSXレセプター。 ４．WSXレセプター細胞外ドメイン(ECD)である請求項1記載のWSXレセプター。 ５．その血清半減期を増大する分子と接合または融合された請求項4記載のWSXレ セプターECD。 ６．ポリエチレングリコール(PEG)と接合された請求項5記載のWSXレセプターECD 。 ７．請求項４記載のWSXレセプターECDと生理学的に許容できるキャリアーを含む 組成物。 ８．さらにWSXリガンドを含む請求項7記載の組成物。 ９．キメラWSXレセプターである請求項1記載のWSXレセプター。 10．免疫グロブリン配列と融合したWSXレセプターアミノ酸配列を含む請求項9記 載のキメラWSXレセプター。 11．免疫グロブリン定常ドメイン配列に対するWSXレセプター細胞外ドメインの 融合物を含む請求項10記載のキメラWSXレセプター。 12．上記定常ドメイン配列が免疫グロブリンH鎖のものである請求項11記載のキ メラWSXレセプター。 13．WSXレセプターをそれを結合できそうな分子にさらすこと、及びWSXレセプタ ーに対する該分子の結合を測定することを含むWSXレセプターに対して結合する 分子の同定法。 14．WSXレセプターを活性化できそうな分子にWSXレセプターをさらすこと、及び WSXレセプターの活性化を測定することを含むWSXレセプターを活性化する分子の 同定法。 15．固体相に固定化したWSXレセプターに対して分子を吸着させ、固定化WSXレセ プターから該分子を回収することを含むWSXレセプターに結合する分子の精製法 。 16．請求項1記載のWSXレセプターに特異的に結合する抗体。 17．作用剤抗体である請求項16記載の抗体。 18．約0.5μg/ml以下のKIRA ELISAでのIC50を持つ請求項17記載の抗体。 19．中性化抗体である請求項16記載の抗体。 20．ヒトまたはヒト化抗体である請求項16記載の抗体。 21．抗体断片である請求項16記載の抗体。 22．F(ab')₂である請求項21記載の抗体断片。 23．請求項16記載の抗体と生理学的に許容できるキャリアーを含む組成物。 24．さらにサイトカインを含む請求項23記載の組成物。 25．WSXレセプターを活性化するのに有効な請求項17記載の抗体の量にWSXレセプ ターをさらすことを含むWSXレセプターの活性化法。 26．細胞の増殖または分化を増大するために有効な請求項17記載の抗体の量に該 細胞をさらすことを含む、WSXレセプターを含む細胞のの増殖または分化の増大 法。 27．該細胞がCD34+細胞である請求項26記載の方法。 28．請求項16記載の抗体に対してWSXレセプターを含みそうなテストサンプルを さらすこと、及び該テストサンプルに対する上記抗体の結合を測定することを含 むWSXレセプターの存在の測定法。 29．請求項1記載のWSXレセプターをコードする単離された核酸分子。 30．請求項4記載のWSXレセプターECDをコードする単離された核酸分子。 31．請求項9記載のキメラWSXレセプターをコードする単離された核酸分子。 32．さらに該核酸分子に実施可能にリンクしたプロモーターを含む請求項29から 31項のいずれか一項記載の単離された核酸分子。 33．ベクターを用いてトランスフォームされたホスト細胞によって認識されるコ ントロール配列に実施可能にリンクした請求項29から31項のいずれか一項記載の 核酸分子を含む発現ベクター。 34．請求項33のベクターを含むホスト細胞。 35．請求項34記載のホスト細胞を培養することを含むWSXレセプターの生産に作 用するためのWSXレセプターをコードする核酸分子の使用法。 36．細胞の増殖または分化を増大するのに有効なWSXリガンドの量に細胞をさら すことを含む、WSXレセプターを含む細胞の増殖または分化の増大法。 37．WSXレセプターがWSXレセプター変異体13.2である請求項36記載の方法。 38．該細胞が造血始源細胞である請求項36記載の方法。 39．WSXリガンドがOBタンパク質である請求項36記載の方法。 40．WSXリガンドが抗WSXレセプター作用剤抗体である請求項36記載の方法。 41．リンパ球血液細胞系列の増殖または分化を増大する請求項36記載の方法。 42．ミエロイド血液細胞系列の増殖または分化を増大する請求項36記載の方法。 43．赤血球血液細胞系列の増殖または分化を増大する請求項36記載の方法。 44．さらに該細胞をさらなるサイトカインにさらすことを含む請求項36記載の方 法。 45．さらなるサイトカインが系列特異的サイトカインである請求子44記載の方法 。 46．該細胞が哺乳動物において存在する請求項36記載の方法。 47．該哺乳動物がヒトである請求項46記載の方法。 48．該咄乳動物が減少した血液細胞レベルに苦しんでいる、または苦しんでいる と思われる請求項46記載の方法。 49．減少した血液細胞レベルが化学療法、放射線療法、または骨髄移植治療によ って引き起こされる請求項48記載の方法。 50．該哺乳動物に治療上の有効量のWSXリガンドを投与することを含む哺乳動物 における血液細胞の再集団化法。 51．該血液細胞が赤血球細胞である請求項50記載の方法。 52．該血液細胞がミエロイド細胞である請求項50記載の方法。 53．該血液細胞がリンパ球細胞である請求項50記載の方法。 54．哺乳動物における該血液細胞の共同作用的再集団化を導く量で、哺乳動物に さらなるサイトカインを投与することを含む請求項50記載の方法。 55．WSXリガンド、さらなるサイトカイン、及び生理学的に許容できるキャリア ーを含む製薬学的組成物。 56．製造品で、 容器; 容器に付いたラベル;及び 容器内に含まれる活性試薬を含む組成物 を含み、該組成物は哺乳動物における血液細胞を再集団化するのに有効であり、 容器に付いた該ラベルは該組成物が哺乳動物における血液細胞の再集団化のため に用いられ得ることを示し、該組成物中の該活性試薬はWSXリガンドである製造 品 57.さらなるサイトカインが入ったさらなる容器を含む請求項56記載の製造品。 58.製造品で、 容器; 容器に付いたラベル;及び 容器内に含まれる活性試薬を含む組成物 を含み、該組成物は体重または脂肪組織重量を減少すること、または肥満した哺 乳動物における食料吸収量を減少することに有効であり、容器に付いたラベルは 該組成物が哺乳動物における肥満を治療するために用いられ得ることを示し、該 組成物中の該活性試薬は作用剤抗WSXレセプター抗体である製造品。