JP2000513951A - 細胞増殖および創傷治療の緩和 - Google Patents

細胞増殖および創傷治療の緩和

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Abstract

(57)【要約】 細胞増殖緩和剤を放出可能に支持し得る眼内デバイス、その製造方法、および、使用が提供される。増殖緩和剤は、眼内デバイスを形成するものであるとともに概して生物学的に不活性なポリマーであって眼内組織に対して生理学的に適合性があるような材料に対して、共有結合的に、あるいは、非共有結合的に、設けられる。眼内デバイスが組織内に埋設されると、薬剤は、薬剤が実質的に埋設領域内に保持されるように、眼内デバイスから放出される。デバイスは、インプラント近傍における細胞増殖を禁止するために使用することができる。デバイスは、殺菌されたキットとして、好ましくは、すぐに使うのに好適な形態で、提供される。

Description

【発明の詳細な説明】 細胞増殖および創傷治療の緩和 はじめに 発明の属する技術分野 本発明は、細胞増殖緩和剤を受容したポリマーインプラントを特徴とする方法 および構成物に関するものである。本発明は、インプラントの近傍に位置する部 位における細胞増殖および／または創傷治療の緩和をもたらし、インプラント自 身への細胞接着を抑制する。背景 生体内における不適切な細胞増殖は、様々な疾病状態をもたらす可能性がある 。特別な症状は、増殖細胞のタイプに応じて、また、細胞の位置に応じて、変化 する。これら疾病状態は、細胞が癌細胞である場合の癌性悪性疾患から、細胞タ イプが通常の線維芽細胞である場合の傷跡にまで、あるいは、増殖細胞が外皮ま たは皮膚の一部をなす上皮細胞または皮膚細胞である場合の皮膚病にまで、にわ たって変化する。 細胞増殖が眼内の様々な組織で起こると、視力低下をもたらす可能性がある。 そのような視力低下の一例は、レンズカプセルと関連したままであるレンズ上皮 細胞の増殖に起因する。この場合、白内障の手術が必要となるかも知れない。特 に、白内障の除去のために、頻繁に関節包外の白内障取出を行うと、レンズ上皮 細胞の無用の増殖が起こる。そして、レンズカプセル後部の不透明化が起こる。 関節包外から白内障取出を行った患者に関して、実質的にすべての小児患者が、 および、大人患者の５０％が、手術から３〜５年以内に、２回目の不透明白内障 にかかる。 様々な細胞毒性の薬剤が、２回目の白内障形成、および、レンズカプセル後部 の不透明化を抑制するためのものとして、報告されている。例えば、５−フルオ ロウラシル、メトトレキサート、コルヒチン、およびダウノマイシンといった、 細胞毒性の薬剤が、レンズカプセル後部の不透明化を阻止し得るよう、レンズ上 皮の残部の破壊のために、眼の前眼房内にしみ込まされている。これらの薬剤は 、例えば、注入により搬送される、あるいは、眼内への薬剤の拡散をもたらすよ うな様々な薬剤搬送技術を利用して搬送される。 視力低下をもたらすような細胞増殖の第２の例は、緑内障手術の後に起こる。 緑内障は、眼内圧（intraocular pressure、ＩＯＰ）の上昇、視神経の損傷、お よび、徐々に視野を失うこと、といった古くからの３つの症状によって特徴づけ られる眼病の異種グループを包含している。ＩＯＰの上昇は、水性体液の流出が 少なくなることによって起こる。この場合、眼の前部セグメントにおける流体は 、眼全体にわたっての圧力バランスを維持するためのものである。緑内障に対す る現在の治療は、例えば、β遮断薬（例えば、チモモール）、縮瞳薬（例えば、 ピロカルピン）、アドレナリン作用薬（例えば、エピネフリン）、および、炭素 性脱水酵素抑制因子（例えば、アセタゾラミド）といった眼薬の１つまたは複数 を投与することによって行われている。大部分の緑内障患者に対しては、はじめ のうちは、薬剤治療が有効であるけれども、多くの場合、時間がたつと直りにく くなってしまう。こうなってしまうと、正常なＩＯＰを維持するために手術を行 う必要が生じる。 緑内障の矯正のための手術には、様々なタイプの緑内障フィルタリング手術（ glaucoma filtering surgery、ＧＦＳ）がある。この手術においては、ＩＯＰを 下げるために、前眼房からの水性体液の流出を避けるよう、排液チャネルが形成 される。最も有効なＧＦＳは、フィルタ用水疱の形成、あるいは、排液瘻管の形 成を行うことである。これにより、ＩＯＰを下げるために、手術部位における結 膜の改良がなされる。様々な技術を、生体適合性のプラスチックチューブまたは バルブを使用することによって、水疱または瘻管の開放性を維持するために使用 することができる。しかしながら、排液チャネル全体にわたる傷跡が、しばしば 、水疱または瘻管の阻止を引き起こし、これに伴ってＩＯＰの増大化が起こって しまう。最近の医学研究により、創傷の治療プロセスを抑制する薬剤を導入する と、いくつかの例において、ＧＦＳの成功率を向上させ得ることが示された。こ れら薬剤は、典型的には、手術時に排液フィルタ組織に対して例えばガーゼのよ うな非特定手段により、あるいは、手術後に反復しかつ苦痛を伴う結膜内への注 入により、投与される。 ２回目の白内障の阻止とＧＦＳとの双方のために報告されている薬剤搬送技術 は、多かれ少なかれ、目標細胞部位への投薬薬剤の拡散に依存している。しかし ながら、眼の前眼房を通しての水性流体の連続移動は、目標細胞部位における薬 剤の効果的な集中に変更することができる。よって、これら搬送技術は、目標細 胞ではなく、目標部位に関して特定の配置にはない他の細胞に対しての、緩和薬 剤の本来的な活性により、無用の副作用をもたらす。その結果、目的部位に対し ての効果的な投薬が、少なくなってしまう。例えば、ミトマイシンＣや５−フル オロウラシルのような抗増殖性に効力のある薬剤の非特定搬送は、しばしば、さ らなる併発症を起こすような、不適切な創傷治療、水性体液の漏れ、低圧化、あ るいは、非常に小さな圧力につながる。 したがって、手術を含み、かつ、成果が例えば白内障手術におけるレンズ上皮 の成長抑制や緑内障フィルタリング手術における線維芽細胞の成長抑制といった 細胞増殖の緩和に依存するような処置養生にとって、部位を特定した様式で、細 胞増殖の緩和と創傷治療反応の緩和とを行い得るような、薬剤搬送の方法および 構成物を確立することは、興味深いことである。関連文献 Ｈｅｙｒｍａｎ氏他による１９８９年のJ．Cataract Refract．Surg.,5:169に は、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）およびヒドロゲル眼内レンズによる 薬剤の吸収および解放に関する研究が開示されている。欧州特許出願０ ４４３ ８０９ Ａ２には、眼内レンズ（ＩＯＬ）を薬理学的に活性な薬剤を含有する親 水性材料で被覆することが開示されている。米国特許第４，９１８，１６５号に は、ＩＯＬに対して共変関係にある細胞毒の共役抗体を連結することが開示され ている。米国特許第４，１７０，０４３号には、ＩＯＬを、生体適合性かつ水溶 性フィルムで被覆することが開示されている。米国特許第４，２４０，１６３号 には、ＩＯＬを、薬剤で被覆することが開示されている。 眼内において生分解性マイクロカプセルを使用することは、Ｗｏｎｇ氏による 米国特許第４，８５３，２２４号に開示されている。ミトマイシンの水性混合物 を含有させた生腐食性のポリマーディスクは、Ｃｈａｒｌｅｓ氏他による１９９ １年のOphthalmology 98(4):503に開示されている。治療薬の搬送のための生分 解性眼内インプラントは、米国特許第４，８６３，４５７号、Ｌｅｅ氏他による １９８８年のInvest．Opth.& Visual Science 29(11):1692、および、Ｌｅｅ氏 他による１９８７年のOphthalmology 94:1523に開示されている。Ｋｅｙ氏他に よる１９８６年のOphthalmic Surgery 17(12):796には、眼に使用するための、 ５−フルオロウラシルを含有させたコラーゲンガーゼが開示されている。拡散制 限膜を有しかつコルヒチンを含有させたウェハは、Ｌｅｇｌｅｒ氏他による１９ ９３年のJ．Cataract Refract．Surg．19:462に開示されている。同様に、Ｈａ ｒｔｍａｎｎ氏による１９９０年のOphtalmologie 4:102を参照されたい。 以下の参考文献も、また、本発明の主題に関連している。Ｘｕ氏他による１９ ９３年のOphal．Surgery 24(6):382-388、Ｔａｈｅｒｙ氏およびＬｅｅ氏による １９８９年のJ．of Ocular．Pharm.，5(2):155-179、Ｐａｌｍｅｒ氏による１９ ９１年のOphthalmology，98:317-321、Ｋ．Ｍｏｓｂａｃｈ氏による１９７６年 編纂のMethods in Enzymology，Vol．24 Immobilized Enzymes、Ｓ．Ｗｏｎｇ氏 による１９９１年のChemistry of Protein Conjugation and Crosslinking CRC 、Ｇ．Ｐｉｅｔｅｒｓｚ氏による１９９０年のG．Bioconjugate Chem．1:89、Ｗ ．Ｊ．Ｐｏｗｅｒ氏他による１９９４年のJ．Cat．Refract．Surg．19:440、Ｍ ．Ｗｅｌｌｅｒ氏他による１９８８年のInternational Ophthalmology 12:127、 Ｍ．Ｂｒｕｃｅ Ｓｈｉｅｌｄｓ氏によるTextbook of Glaucoma（１９９２年第 ３版）におけるCh.34 and 36、Ｈ．Ａｌｋｏｃｋ氏およびＦ．Ｗ．Ｌａｍｐｅ氏 による１９８１年版のContemporary Polymer Chemistry。 次に示すものは、一般的な文献である。Ｍａｅｄａ氏他による１９９２年のBioc onj．Chem．3:351-362、Ｔａｋａｋｕｒａ氏およびＨａｓｉｄａ氏による１９９ ５年のCrit．Rev．Oncol．Hematol．18:207-231。 発明の概要 本発明は、例えば眼内における目標細胞の増殖を緩和するための、方法および 構成物を提供する。組成物は、細胞成長緩和剤が設けられたポリマーインプラン トである。緩和剤の付設は、不安定な共有結合により、あるいは、非共有結合に より、可逆的になされる。ポリマーから放出されたときには、緩和剤は、限られ た組織領域内に、実質的に留まる。これにより、緩和剤は、その限られた領域に おける一次的目標細胞に対して、影響を及ぼす。本発明は、また、緩和剤が設け られた生物学的に不活性なポリマーを備える眼内デバイスを提供する。また、こ のような眼内デバイスを製作するための方法を提供する。本発明による方法およ び組成物は、埋設部位内に移動する細胞の成長を緩和するために細胞成長緩和剤 として抗増殖剤を使用することにより、例えば、二次的白内障を阻止するために 、緑内障フィルタリング手術の成功度を向上させるために、および、埋設インプ ラントの生体適合性を向上させるために、使用可能であることがわかる。 図面の簡単な説明 図１は、本発明の１つの実施形態を概略的に示す図である。図において、対象 をなす組織には、ポリマーおよび細胞増殖緩和剤から構成されたインプラントが 当接している。この実施形態においては、ダウノマイシン（１５）と、ループ（ １０）として製造されたポリマーナイロンと、が設けられている。これにより、 ダウノマイシンで被覆されたループ（５）を作ることができる。ダウノマイシン で被覆されたループ（５）は、白内障手術後に、レンズ（３５）のレンズカプセ ル（３０）内に挿入される。これにより、薬剤が、カプセル（３０）の内表面の 内張りをなすレンズ上皮細胞（２５）に対して近接配置される。 図２は、本発明の他の実施形態を概略的に示す図である。図においては、細胞 増殖緩和剤をなすダウノマイシン（１５）と、ナイロン膜（１００）と、が設け られている。これらにより、インプラント形態（１０５）を作ることができる。 ナイロン−ダウノマイシンインプラント（１０５）は、フィルタリング手術後に おいて、手術によって作られた瘻管（１２０）内の結膜（１１５）の後部の組織 に当接している。この部位におけるインプラントは、細胞毒薬剤を、増殖中の線 維芽細胞に対して近接配置する。この処置を行わないと、手術で形成された排液 チャネル（１２０）にわたって傷跡を残すこととなる。 特徴的な実施形態の説明 本発明は、対象をなす組織における細胞増殖および創傷治療の緩和のための、 方法および構成物をもたらす。本方法においては、対象をなす組織は、細胞増殖 緩和剤および／または創傷治療剤、および、生物学的に不活性なポリマーインプ ラントを備えて構成されている構成物に当接している。選択された緩和剤は、可 逆的にポリマーインプラントに設けられている。これにより、組織内へのデバイ スのインプラント後において、薬剤の局所的な搬送を行うことができる。”ポリ マーインプラント”とは、手術または他の手段によって、生体内への配置に際し て好適な物理的形態とされたポリマーを意味している。ポリマーインプラントの 実際の物理的形状は、意図した目的に応じて決定されることになる。ポリマーイ ンプラントは、インプラントを、緩和剤の溶液中に浸漬させることによって、準 備することができる。これにより、薬剤は、疎水／親水作用によって、および／ または、化学的結合によって、ポリマーに吸収される。使用の際には、ポリマー インプラントおよび付随した薬剤は、手術時にまたは手術後に、組織内に導入さ れる。ＧＦＳの場合には、インプラントは、結膜空間近傍において強膜切開を行 った部位（部分的に厚ければ）の上に乗っている。２回目の白内障を阻止するた めに、インプラントが、レンズカプセル内に挿入される。緩和剤は、インプラン トポリマーから、インプラントのごく近くに位置する目標細胞の細胞増殖および ／または創傷治療を緩和するに十分な濃度および速度でもって、連続的に解放さ れる。この場合、インプラント部位から離れた細胞に対しては、最小の影響しか 及ぼさない、あるいは、一切影響を及ぼさない。２回目の白内障の場合には、目 標細胞は、レンズの上皮細胞を含んでおり、ＧＦＳや他の応用においては、線維 芽細胞および白血球を含んでいる。この場合、傷跡が最小化される。 局在化した緩和領域は、ポリマーの解放特性、および、緩和薬剤の集中により 決定される。この緩和領域は、以下のような実験技術を使用して容易に最適化す ることができる。例えば、２回目の白内障の防止のために、インプラントは、レ ンズカプセルの残部内に残ることとなり、緩和剤は、実質的に同じ領域に局在化 することとなる。通常の治療において、細胞がインプラントを囲み、またインプ ラントに取り付いたり、および／または、インプラントをケース詰めのように塞 いでしまう場合には、局在化は、さらに、推進される。一般に、局在化領域は、 インプラントから１０ｍｍ以内であり、さらに好ましくは、７ｍｍ以内であり、 最も好ましくは、５ｍｍ以内またはそれ以下である。インプラントの緩和活性は 、インプラントに対して実際に接触することとなるすべての細胞に対して、最大 限にもたらされる。このような接触抑制は、ＧＦＳにとって、特に望ましい。 本発明の構成物および方法によれば、紹胞増殖および／または創傷治療の緩和 に対して現在使用可能な方法と比較して、いくつかの利点を呈する。例えば、緩 和剤をポリマーインプラントに対して結合させることの結果として、緩和剤を、 創傷部位内に局在化させることができる。これにより、薬剤の高度な局所集中、 かつ、他の領域への拡散または搬送の最小化または阻止、をもたらすことができ る。仮に、他の領域への何らかの拡散があったとしても、増殖抑制剤の集中は、 一般に、他の領域内の細胞に効果をもたらすには不十分である。これに対して、 現在利用可能な、局在化させることなく増殖抑制剤を投与するといった方法では 、例えば、増殖および／または治療の制御性が悪く、創傷からの漏れがあったり 、インプラント部位から離れた細胞に負の効果をもたらすことにより、併発症が 起こる可能性がある。本発明の他の利点は、緩和剤の投与量を制御できること、 および、対象をなす組織内の本質的な細胞に望まない効果をもたらさないこと、 である。というのは、薬剤を組織部位に局在化させることで、敏感な細胞、特に 正常な細胞からなる他の領域への移動を阻止し得るからであり、また、侵略され た細胞の領域内に、成長抑制剤を閉じ込めるからである。また、薬剤の局在化を インプラントにより達成していることによって、対象をなす各組織に対する隔離 を行う必要がないことである。結果として得られる効果は、必要に応じて、望ま しくないタイプの細胞の完全な除去から、インプラント部位における細胞増殖の 抑制にまでわたる。あるいは、成長を刺激するために使用することができる。例 えば、糖尿病患者や火傷患者の場合に、わずかしか治療されていない創傷の成長 を刺激するために使用することができる。 構造物は、緩和剤が付加される生体適合性ポリマーからなるインプラントを備 えている。”緩和剤”とは、細胞の成長または発展を変更させ得るすべての化合 物を意味しでおり、細胞増殖緩和剤と創傷治療阻害剤との双方を含んでいる。例 としては、代謝拮抗薬、細胞を死滅させる細胞毒、細胞の成長または増殖や細胞 分裂・分化等を刺激するような成長因子をさらに抑制する抗有糸分裂薬があり、 あるいは、例えば線維芽細胞のような創傷治療に関連して細胞の数を選択的に抑 制したり刺激したりすることによって、創傷治療プロセスを代替し得る化合物が ある。 意図された応用が細胞増殖の抑制および／または創傷治療の阻止である場合に は、特定の増殖抑制剤は、ダウノマイシン、ダウノルビシン、ドクサルビシン、 ミトマイシンＣ、５−フルオロウラシル、シトシンアラビノシド、コルヒチン、 シトチャラシンＢ、ブレオマイシン、ビンクリシチン、ビンブラスチン、メトト レキサート、および類似物とすることができる。同様に興味のあるものは、微生 物や植物源から派生される毒性薬である。例としては、リシン、アブリン、ジフ テリアトキシン、および類似物のような、天然に発生したトキシンがある。所望 の結果が細胞増殖あるいは創傷治療の増強である場合には、増殖緩和剤は、線維 芽細胞の成長要因、上皮の成長要因、変換成長要因β、血小板決定成長要因のよ うな要因を操作するような成長操作剤とすることができる。 ポリマーは、例えば眼のような組織に対して、生物学的に不活性な、かつ、生 理学的に適合したものである。ポリマーは、また、望ましくは、それ自身が炎症 反応を引き起こさないものである。ポリマーは、また、選択された緩和剤の十分 な量を可逆的に受容し得るものであり、例えば創傷治療の禁止といった所望の目 的を満たすために、好適な様式で緩和剤を解放し得るものである。ポリマーの好 ましい特性としては、細胞毒薬剤と可逆的に相互作用し得ることである。これに より、細胞毒薬剤は、眼内にゆっくりと解放される。ポリマーは、細胞毒薬剤を 共有結合的に、あるいは、非共有結合的に吸収することができる。薬剤をポリマ ーに受容させる方法の例としては、静電的な帯電、疎水または親水相互作用、あ るいは、共有結合がある。 望ましい特性を有した様々な分子は、例えば、ポリアミド、ポリペプチド、ポ リエステル、ポリカーボネート、ポリウレタン、ポリアセタール、ポリサッカラ イド、ポリオレフィンといったポリマーの通常品を作るために使用することがで き、これらポリマーは、ポリマーインプラントを作るために使用することができ る。そのようなポリマーの特別の例は、シリコーンラバー、ポリウレタンラバー 、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ポリ（ヒドロキシエチルメタクリレート）、 ポリ（メチルメタクリレート）、ポリ（エチレンテレフタレート）、ポリピロー ル、ポリスチレン、ポリ（テトラフルオロエチレン）、ポリグリコール酸、セル ロース、エチルセルロース、メチルセルロース、デキストラン（dextran）、カ ルボキシメチルセルロース、ヒアルロン酸、ナイロン、および、コラーゲンがあ る。ただし、これらポリマーに限定するものではない。さらに、インプラントは 、ポリマー、および／または、その塩、同族体、類似物、派生物、錯体、フラグ メント、また、上記ポリマーのコポリマー、複合品、あるいは混合物とすること ができる。 特に興味のあるものは、インプラントの挿入後において、緩和剤が解放された 後に、細胞増殖の緩和を所望の程度までもたらすのに十分な量の緩和剤を共有結 合的にあるいは非共有結合的に受容し得る、生物学的に不活性なポリマーインプ ラントである。そのような１つの例は、ナイロンポリマーインプラントである。 このインプラントに対しては、細胞増殖および／または創傷治療を抑制するのに 十分な量のダウノマイシンが吸着される。細胞緩和剤が結合したナイロンポリマ ーは、膜の形態とすることができる。あるいは、これに代えて、粉末の形態とす ることができる。また、様々な手法、例えば圧力成型により、ウェハ、または、 他のインプラント形態とすることができる。様々なフィラー／バインダおよびコ ーティングを使用することができる。本質的に、バインダは、粒子の分散を可能 とする水性溶液中に溶解される。組織においては、これは、何もされていないイ ンプラントよりも、より乱雑な分布をもたらす。他の多くの好適なポリマーの生 物学的性質は、公知である。ポリマーが緩和剤を可逆的に受け入れる能力は、当 業者には公知である方法を使用して所望の生物学的性質を付与されたすべてのポ リマーに対して、当業者には容易に決定できる。 緩和剤は、インプラントと接触している領域近傍においてのみ局所的に拡散し 得るように、ポリマーインプラントに対して可逆的に結合されている、あるいは 、不安定な結合を介して結合されていることが望ましい。これにより、緩和剤の 局所集中が増大し、かつ、インプラント部位から離れた細胞に対する副作用を低 減できるとともに、投与回数を低減することができる。ポリマーからの成長緩和 剤の解放速度は、意図した使用に応じて、変更することができる。一般に、速度 は、最初の２４時間で初期量の約２５〜５０％を解放する程度であり、次の２４ 時間で初期量の５〜１０％を解放する程度である。 ポリマーインプラントは、多くの方法で準備することができる。例えば、緩和 剤は、緩和剤の溶液内にポリマーインプラントを浸漬することにより、インプラ ントに対して結合させることができる。これにより、薬剤は、ポリマーに対して 可逆的に受容されることとなる。緩和剤は、また、インプラントに対する噴霧、 あるいはインプラント周辺における緩和剤の流通といった当業者には公知な他の コーティング技術により、インプラントに対して可逆的に結合させることができ る。２つのシステムが特に興味深い。第１のシステムは、ポリマーすなわちナイ ロン上に、吸着させた細胞毒薬剤（ダウノマイシン、ドクソルビシン、等）を使 用している。水性溶液中において、ダウノマイシンは、ナイロンからゆっくりと 解放される。第２のシステムにおいては、ポリマー上に存在する反応基と、緩和 剤と、の間に共有結合が形成されている。そのような結合の例としては、ヒドラ ゾンやセミカルバゾンのような、ドクソルビシン、ダウノマイシンのＣ１３カル ボニル基のイミン派生物がある。これらのタイプの結合は、Ｙａｍａｍｏｔｏ氏 他によるJ．Medical Chem．(1972)15:872-875、および、Ｍｏｒｒｉｓｏｎ氏お よびＢｏｙｄ氏による１９６６年のOrganic Chemistry(2nd Ed.)(Allyn and Bae en，Inc.，Boston，p．640)に記載されている。 ポリマーに対する抗増殖剤の共有結合のために、−ＯＨ、−ＣＯＯＨ、−ＳＨ 、あるいは、−ＮＨ２のような反応基がポリマーには存在する、あるいは、当業 者には公知の方法によって、これらの反応基を導入することができる。例えば、 Ｍｏｓｂａｃｈ氏によるMethods of Enzymology、および、Ｗｏｎｇ氏によるChe mistry of Protein Conjugation and Crosslinkingを参照することができる。特 に興味のあるものは、酵素的に解裂させ得るような、あるいは、酸化性または還 元性条件によって解裂させ得るような、不安定な共有結合である。上記のような 反応基に対して薬剤を結合させるための多くの方法は、当業者には公知である。 例えば、Ｐｉｅｔｅｒｓｚ氏によるBioconjugate Chemistry(1990)1:89を参照す ることができる。例えば、ポリマーがナイロンである場合には、機能的な カルボキシル基およびアミノ基は、３ＭのＨＣｌを使用した加水分解の制御によ って、導入することができる。カルボキシル基は、ヒドラジド（hydrazide）で 置換されたナイロンをもたらすよう、１−エチル−３−［３−ジメチルアミノプ ロピル）−カルボジイミド］（ＥＤＣ）を、アジピックジジヒドラジドに対して 反応させることにより得ることができる。 修飾されたナイロンは、また、Ｍｏｒｒｉｓ氏他によるBiochem．J．(1975)14 7:593に記載されているように、トリエチルオキソニウムテトラフルオロボレー トによるポリマーの初期Ｏ−アルキル化によっても、得ることができる。得られ たナイロンのイミダート塩は、その後、非水条件下で、アジビン酸ジヒドラジド のような二重の酸ヒドラジドと反応させて、ヒドラジドで置換されたナイロンを 得ることができる。 ポリマーが例えばポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）である場合には、カ ルボキシル基を、酸素プラズマ放電の後に、アクリル酸を適用することにより、 導入することができる。これにより、利用可能なカルボキシル基を備えたＰＭＭ Ａを得ることができる。これに関しては、例えば、Ｉｎｎ−Ｋｙｕ Ｋａｎｇ氏 他による１９９３年の研究を参照することができる。ＥＤＣを使用したカルボキ シル基の活性化、および、アジビン酸ジヒドラジドとの反応により、ヒドラジド で置換されたＰＭＭＡを得ることができる。 ポリマーが、例えばカルボキシメチルセルロース、ヒアルロン酸、ヘパリン、 または類似物のようなポリサッカライド、あるいは、利用可能なカルボキシル基 を元々備えているタンパク質である場合には、同様の方法で、ＥＤＣ、アジピン 酸ジヒドラジド、あるいはヒドラゾンを使用することにより、カルボキシル基を 直接的に引き出すことができる。ヒドラジドで置換されたポリサッカライド、あ るいは、タンパク質を、それぞれ得ることができる。これに関しては、例えば、 Ｈｅｒｗｉｔｚ氏他による１９８０年のJ．Applied Biochem.，2:25-［?］、お よびＰｏｕｙａｎｉ氏およびＰｉｅｓｔｗｉｃｈ氏による１９９４年の［Journa l? ］5:339-347、およびＬａｒｓｏｎ氏他による１９８９年のBiomaterials 10:511 -516を参照することができる。 インプラントの生体適合性は、例えば、ＰＥＧを適用することにより、向上さ せることができる。活性化されたＰＥＧの準備方法は、周知である。例えば、Ｂ ｅｒｇｓｔｒｏｍ氏他による１９９２年のJ．Biomed．Mat．Research 26:779-79 0を参照することができる。これら活性化されたＰＥＧ分子と反応し得る反応基 を備えたポリマーを準備するための方法は、周知である。ＰＥＧ付のインプラン ト材料の生体適合性を向上させる例は、既に出版されている。このような修飾を 施すことによって、インプラントを形成することには適していても生体適合性の ないポリマーあるいは生体適合性の乏しいポリマーを、使用可能とすることがで きる。インプラントの生体適合性を改良するための他の手段は、ヘパリン（例え ば、Ｂｅｈａｒ−Ｃｏｈｅｎ氏他による１９９５年のInvestigative Ophthal-mo logy Visual Science 36:5802を参照することができ、この文献には、ヘパリン でコーティングしたＩＯＬが開示されている）を使用することである。 ポリマーインプラントは、様々な形態で得ることができる。ポリマーは、特定 の応用に対して好適な形態へと、キャスティングしたり、成形したり、あるいは 、製造することができる。インプラントは、ＩＯＬのような自立デバイスとする ことができ、あるいは、インプラントは、他のデバイスとともに使用できる形態 とすることができる。２回目の白内障を阻止することに使用するために、例えば 、インプラントの形態は、ＩＯＬに関連してレンズカプセル内に適用し得るよう な、実質的な環状リング（”ｏ”リング）またはループとすることができる。Ｏ リングまたはループは、レンズの直径とほぼ同じ直径を有しており、カプセルの 内周を巡るように眼内に配置される。デバイスが所定位置に配置された後に、Ｉ ＯＬが挿入される。これに代えて、ＧＦＳの場合には、インプラントは、薄膜ま たはガーゼのような形態とすることができる。インプラントの領域における傷跡 を最小化することが要望された場合には、ポリマー薄膜は、また、ポリマー製イ ンプラントまたは他のインプラントをカプセル詰めするために使用することがで きる。 インプラントは、必要に応じて製造され、例えば、オートクレーブ（スチーム 式）殺菌器、照射、酸化エチレンガス、等の、任意の適切な手段により、殺菌さ れる。インプラントは、受容を可能とするために、細胞増殖緩和剤を含有する無 菌的な殺菌溶液に浸漬される。この受容操作の後に、インプラントは、結合して いない緩和剤を除去するために水ですすがれて、乾燥され、パッケージされる。 これに代えて、ナイロン粉末（粒子）を上記のように殺菌して、例えばダウノマ イシンを含有する溶液に加えることができる。そして、結合していない薬剤を除 去するために水ですすがれて、乾燥される。ダウノマイシンを受容したナイロン 粉末には、バインダとしての適切な形成剤（ヒドロキシプロピルメチルセルロー ス（ＨＰＭＣ）、スクロース、等）が混合されて、タブレット、ウェハ、等に成 形される。組織内に配置されたときには、バインダは、組織に捕捉されたナイロ ン−ダウノマイシン粒子を残して、溶解する。薬剤は、粒子からゆっくりと解放 される。 ポリマーの緩和剤に対する搭載能力は、部分的には、インプラントの表面積に より決定され、共有結合の場合には利用可能な反応基の数により決定される。し たがって、表面積が最大化されたインプラント、例えば、ポーラスなインプラン ト、あるいは、織り込まれたインプラント、が好ましい。インプラントは、また 、細胞侵略に対する物理的ゲートをもたらすために、目標細胞とインプラントと の間の物理的接触を増大させるよう構成された、例えばリップ、リッジ、または 、グリッドが形成されている。例えば、ＧＦＳにおいては、インプラントは、瘻 管内に埋設可能な膜とすることができる。膜インプラントは、通常、フィルタ部 位からの水性流体の自由な流通を可能とするよう構成されており、そして、通常 、強膜の手術部位を覆い得るサイズとされている。膜インプラントとしては、典 型的には、１ｃｍの直径、および、１〜５ｍｍの厚さが適切である。膜は、結膜 の下方において、強膜の手術部位上に直接的に配置することができる。よって、 ＧＦＳ時に形成された瘻管水疱の支持を補助することができる。インプラントは 、また、部分的な厚さの手術の場合には、適切な形状にカットして、強膜ベッド に配置することができる。 使用時には、ポリマーインプラントおよび組み込まれた薬剤は、手術時にまた は手術後に、組織内に導入することができる。一例として、ＧＦＳの場合には、 ポリマーインプラントは、手術部位に対して以下のようにして配置される。結膜 が、縁の前部において注意深く切開される。強膜上の余分な腱組織が、切り取ら れる。縁溝が形成され、角膜の支質内へと、前方側に広げられる。前眼房へと入 る前に、フィルタ部位から離れた周縁透明角膜を通して、穿刺術がなされる。そ の後、前眼房に、フィルタ部位を通して入れられ、強膜組織および柱メッシュの 小ブロック（１×３ｍｍ）が切り取られる。強膜切開のエッジが止血を制御する ために焼かれる。そして、周縁の虹彩切除が行われる。円筒状ポリマーが強膜切 開部位内に挿入され、その後に閉塞される。 インプラントを挿入した後には、増殖緩和剤あるいは創傷治療剤がインプラン トポリマーから、インプラントのごく近傍において細胞増殖および創傷治療を緩 和するのに十分な濃度かつ十分な時間にわたって、連続して放出される。インプ ラントは、緩和剤を、ゆっくりと定常的に解放される。この結果、薬剤は、実質 的に、インプラントの領域内に留まることができる。これに代えて、インプラン トは、複数段階での放出を行っても良い。この場合には、ポリマーは、短い時間 での初期”破裂”を行い、その後、より低濃度での放出を行う。このような放出 形態は、また、目標ではない領域に対しては緩和剤の搬送量を最小化できるとい う利点があり、かつ、限られた領域の目標細胞に対しては、所望の緩和を急速に もたらすような初期放出を行い得るという利点がある。支持体に連結される負荷 は、支持体の表面積、および、細胞緩和溶液の濃度および時間に依存する。高濃 度を使用すれば、多量の弱く結合した薬剤が破裂とともに放出される。放出量は 、変えることができ、放出は、使用に先立ってインプラントがどの程度集中的に 洗浄されたかに応じて変わる。インプラントは、また、インプラントと物理的に 接触しているすべての目標細胞に対して、少なくともインプラントの配置後の７ 日間にわたって、接触緩和を効果的にもたらすために、十分な濃度の所望の緩和 剤を保持していることが有利である。 よって、濃度と、成長緩和剤の放出速度と、の双方は、目標細胞に対して効果 が得られるまでに要する時間に対して、影響を及ぼすことができる。一般に、イ ンプラントポリマーに設けられた細胞緩和剤の細胞増殖に関する効果は、使用さ れた緩和剤の濃度に応じて、目標細胞に細胞緩和剤が接触してから、２４〜４８ 時間以内に現れる。この場合の効果は、ポリマーからの放出特性、および、緩和 剤の効力に応じて、３〜５日間にわたって、あるいは、それ以上にわたって続く ことが期待される。 意図された使用に対しての、細胞緩和剤付きインプラントの有効性は、様々な 方法で検証することができる。多くのタイプの細胞を、対象をなす組織における 細胞のタイプと同様の、複雑な細胞に対して試験するために使用することができ る。例えば、インプラントの使用対象が人間の眼の組織である場合には、手術用 試料から、あるいは、新鮮なアイバンクから得られた、人間の強膜の線維芽細胞 が使用されることが好ましい。意図した使用が家畜病の治療である場合には、試 験用の細胞は、対象となっている受納者自身からの試料であることが好ましい。 例えば、所望の効果が細胞増殖の抑制である場合には、とりわけ、眼内の創傷内 へと移動する細胞増殖の抑制である場合には、インプラントは、ポリマーインプ ラントを含む培養器に哺乳類の細胞を加えることによって、インビトロでの細胞 培養試験を行うことができる。例えば緑内障や２度目の白内障の進展といったよ うな、目的の処置条件に対するインビボモデルを適用することができる。能力を 決定するためのインビトロでの評価の例は、インビトロでの細胞増殖を抑制また は刺激することに活用される。これに代えて、成長は、タンパク質合成における 試験剤のような機能決定により評価することができる。例えば、コラーゲン形成 の刺激は、コラーゲン受容タンパク質内への１−［２，３−3Ｈ］−プロライン （proline）の組込を使用してインビトロで観測することができる（Ｐｅｔｅｒ ｋｏｆｓｋｙ，Ｂ．氏他による１９８２年のImmunochemistry of the Extra- cellular Matrix Vol.II，ed．Furthmayr,H．CRC Boca Raton,FL pp.19-42）。 ポリマーインプラントのある特別な使用においては、対象をなす組織は、目の 強膜および結膜であり、本発明において意図した応用は、緑内障フィルタリング 手術の成果を増強することである。緑内障フィルタリング手術においては、ＩＯ Ｐを下げるための手段として水性体液の流出を増加させるために、排液瘻管また はチャネルが形成される。緑内障フィルタリング手術におけるポリマーインプラ ントの意図した応用は、手術創傷の治療を制御するすなわち下方制限することで ある。これにより、治療はなされるものの、既に形成されたフィルタ用チャネル または水疱を閉塞するために、プロセス中において過度に組織を傷つけることが ない。創傷部位に当接している組織内の細胞の多くが無糸分裂性（非分割性）で あることにより、抗有糸分裂剤は、これら細胞に対しては、わずかの効果しか、 あるいは全く効果をもたらさない。よって、インプラントの使用に関しては、付 加的な選択性を付与する必要がある。 ポリマーインプラントに対して、十分な量の緩和剤が、手術後の治療を増強し たり、あるいは、治療を抑制したりするという所望の効果を得るために、手術創 傷部位内に導入される。効果的な濃度は、細胞増殖を禁止する照射量として定義 されるものであって、上記のようなインビトロでの評価を使用すれば、ポリマー インプラントだけが付加される制御プレートと比較して、少なくとも７０％であ り、好ましくは８０％よりも大きく、最も好ましくは９５％よりも大きい。ある いは、効果的な濃度は、細胞増殖を刺激する照射量として定義されるものであっ て、制御プレートと比較して、少なくとも５０％であり、最も好ましくは２００ ％よりも大きい。ＧＦＳにおいて創傷治療を禁止するための共役体の効果的な照 射量は、一般に、１０〜５００μｇの範囲であり、より好ましくは１０〜２００ μｇの範囲であり、最も好ましくは１０〜１００μｇの範囲である。 本発明の他の使用においては、対象をなす組織および細胞は、白内障手術後に おける、レンズカプセル、および、任意の関連して残っているレンズ上皮細胞で ある。本発明は、一次的白内障の除去後において、レンズカプセル上における、 残留したレンズ上皮細胞の成長を阻止するために使用される。一次的白内障は、 老齢者のものであっても、若年者のものであっても、放射線によって誘起された ものであっても構わず、任意のタイプのものとすることができる。ポリマーイン プラントは、一次的白内障の除去後において、レンズカプセル後部の光学軸を超 えて成長するような、レンズ上皮細胞の増殖を禁止する、あるいは、レンズ上皮 細胞の増殖部位を死滅させることが好ましい。カプセル外の一次的白内障の除去 後における二次的白内障の阻止に対しての使用における、本発明の効率の評価は 、インビトラモデルにおける技術を使用することができる。白内障手術は、Ｕｌ ｒｉｃｈ氏他により開示された方法（（１９９３）Ｊ.Cat.Refract Surg．19:46 2）によって、ウサギのようなホスト動物において行うことができる。手術後に おいて、ポリマーインプラントは、カプセルバッグ内に挿入される。インプラン トは、レンズの直径とほぼ同等の直径を有する開放ループまたはリングの形態に 形成されている。ループの両端部は、バッグ内部において、眼内レンズ触覚の配 置に関して共通の技術を使用して、配置される。様々な濃度の細胞増殖緩和剤が 、インプラントに吸収される。手術後においては、眼は、カプセル表面の後部に おけるレンズ上皮細胞の増殖に関しての、インプラントの効果を決定するために 観測される。手術後の選択された時間後において、動物は、人間のために犠牲と され、眼は、レンズ上皮細胞の増殖の程度を評価することによって組織学の発展 に供せられる。 人間における二次的白内障の進展には、数カ月から数年までの時間がかかる。 臨床的には、二次的白内障は、レンズカプセル後部におけるレンズ上皮細胞の成 長の出現（カプセル後部における不透明化）を観測するための、スリットランプ 式の顕微鏡法によって決定される。この不透明化は、とりわけ中央に位置してい る場合には、視覚の明瞭さを減少させることとなる。カプセル後部における不透 明化の処置は、従来は、ＹＡＧレーザによる包切開によって不透明化したカプセ ル除去して視力の明瞭度を修復して改良することにより達成されていた。本発明 においては、一次的白内障の手術時に埋設されたときには、レンズ上皮細胞にと っては細胞毒となる薬剤が治療濃度で放出される。これら薬剤は、細胞を破壊し 、よって、細胞増殖を阻止する。そして、スリットランプ式顕微鏡を使用して、 レンズ後部の不透明化が起こっていないことを確認することができる。これに代 えて、カプセル後部の不透明化が視覚の明瞭さの損失をもたらすことから、視覚 の明瞭さを白内障を除去した手術レベルに維持することにより、あるいは、ＹＡ Ｇ包切開時の投射を減少させることにより、インプラントの有効性を証明するこ とができる。 本発明による構成物は、１つあるいは多くの手術に使用されるための、キット とすることができる。キットは、ポリマーインプラント、および、成長緩和剤を 、個別に備えることができる。薬剤は、例えば凍結乾燥されたもののような塊状 で、および、１回分または複数回分の投薬量としてガラス瓶にいれた形態とする ことができる。殺菌された容器内に１回分の投薬量を入れておくと便利である。 これに代えて、キットは、直接的に使用可能な構成物とすることができる。一般 に、成長緩和剤は、殺菌環境内において様々な要素との組合せによりアセンブリ として固体支持体に組み込まれる。このアセンブリは、使用するまでの間は、無 菌状態に維持される。構成物は、殺菌容器内において、乾燥状態でまたは凍結乾 燥状態で保存されることが好ましい。これらの条件下における安定性を操作する ために、賦形剤を使用することができる。概して、薬剤がこれらの状況下におい て現状で安定であれば、インプラントに組み込まれた際にも、同一条件下におい て安定であるとみなすことができる。インプラントは、インプラントを行うまで は、乾燥状態に保持されるべきである。 以下の実験例は、例示のためのものであって、本発明を何ら限定するものでは ない。 実験例 内容一覧 実験例１ ポリスチレンに設けられたリシンの細胞毒活性 実験例２ ポリスチレン培養器に設けられたリシンの放出特性 実験例３ 125Ｉ−リシンおよび様々なポリマーの連結特性および放出特性 実験例４ ナイロン膜に設けられたダウノマイシンにおける細胞増殖実験例５ 異なるポリマーに設けられたダウノマイシンの細胞毒活性 実験例６ 異なるタイプのポリマーに連結されたダウノマイシンの連結量 実験例７ ナイロン膜に設けられたダウノマイシンの連結特性および放出特性 実験例８ ウサギモデルにおける二次的白内障の阻止のためのナイロン−ダウ ノマイシンインプラント 実験例９ 緑内障にかかったビーグル犬におけるフィルタリング手術後の傷形 成の制御のためのナイロン−ダウノマイシンインプラント 実験例１０ ヒドラゾン結合を介してのポリマーインプラントに対するダウノ マイシンの共有結合 実験例１１ ナイロン粉末からのダウノマイシンの連結および放出 実験例１２ ヒドラゾン結合を介してのカルボキシメチルセルロースに対する ダウノマイシンの共有結合 実験例１３ インプラントのインビトロでの細胞成長緩和の変化 実験例１４ 創傷治療時における細胞増殖の増強のためのインプラントの変化 実験例１ ポリスチレンに設けられたリシンの細胞毒活性 リシン（Shigma Chemical Company）が、フォスフェイトバッファードサリン （phosphate buffered saline、ＰＢＳ）中に溶解され、２０、２．０、０．２ 、０．０２、０．００２μｇタンパク質／ｍｌという一連の溶液が準備された。 リシンの溶液は、２４くぼみのポリスチレン培養プレート（Corning）の１双の くぼみ（１くぼみあたり０．５ｍｌ）に加えられた。ＰＢＳは、参照のために、 ２つの付加的なくぼみに加えられた。３７℃で１時間にわたって暖められた後、 一晩４℃に維持された。その後、すべての結合していないリシンを除去するため に、プレートが、ＰＢＳで３回洗浄された。胎児のウシの奨液を１０％含む１． ０ｍｌのＭ１９９（Gibco）を懸架したＭＥ１８０セル（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＨＴ Ｂ３３）が、１くぼみあたり１．０×１０4個の細胞をもたらすよう、くぼみに 加えられた。そして、３７℃で８日間にわたって保温された。保温の後に、培養 媒質は、くぼみから吸い出され、細胞の単一層は、各くぼみに対して、０．５ｍ ｌの水晶紫溶液（７０％メタノール内に５％）を加えることにより着色された。 ５分間の保温の後、プレートは、過剰の着色を除去するために水で洗浄され、空 気乾燥された。その後、プレートは、反転式の顕微鏡で検査され、成長の度合い （％集合率）が評価された。結果を以下の表１に示す。 表１ この実験例は、ポリスチレンのようなポリマーに設けられたリシンのような前 処理剤が、コーティングされたポリマーに当接する細胞、あるいは、ポリマーイ ンプラントの近傍に位置する細胞の増殖を、禁止することを示している。 実験例２ ポリスチレン培養器に設けられたリシンの放出特性 リシン（Shigma Chemical Company）が、フォスフェイトバッファードサリン （phosphate buffered saline、ＰＢＳ）中に溶解され、１０、５．０、２．５ 、１．２５、０．６２、０．３１、０．１５μｇタンパク質／ｍｌという一連の 表２ 溶液が準備された。リシンの溶液は、２４くぼみのポリスチレン培養プレート（ Corning）の１双のくぼみ（１くぼみあたり０．５ｍｌ）に加えられた。ＰＢＳ は、参照のために、２つの付加的なくぼみに加えられた。３７℃で１時間にわた って暖められた後、一晩４℃に維持された。その後、すべての結合していないリ シンを除去するために、プレートが、ＰＢＳで５回洗浄された。洗浄後に、１． ０ｍｌのＰＢＳが、各くぼみに加えられ、プレートは、４℃に２４時間維持され た。個々のくぼみからの上澄みが集められ、ＭＥ１８０セルを使用してＭＴＴ細 胞毒評価で滴定された。ＰＢＳ内に放出されたリシンの量は、リシンの量が既知 であるものとの細胞毒性の比較により、決定された。結果を表２に示す。 この実験例は、ポリマーが、結合した緩和剤をゆっくりと放出することを示し ている。 実験例３ 125 Ｉ−リシンおよび様々なポリマーの連結特性および放出特性 リシンが、 125Ｉでラベル付けされ、５．８×１０4ｃｐｍ／μｇタンパク質 という特定の活性度で、１０μｇ／ｍｌという濃度に溶解された。ポリマーボー ル（１／４インチの直径）が、Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓから購入され、オート クレーブにより殺菌された。ポリマーボールが、リシンの溶液に加えられ、３７ ℃で１時間にわたって暖められた後、一晩４℃に維持された。その後、結合して いないリシンを除去するために、ポリマーボールが、ＰＢＳで洗浄された。個々 のボールは、チューブに加えられ、連結された放射線の量が、ＬＫＢγ線計数カ ウンタによって決定された。個々のボールは、また、１０％のＦＢＳを含有する １ｍｌのＭ１９９と４．５×１０4ＭＥ１８０セルを備えた、２４個のくぼみ培 養皿の各くぼみ内に、配置された。プレートは、３７℃で５時間にわたって暖め られた。その後、個々のボールが、くぼみから除去され、すすがれた後、放射性 がカウントされた。培養媒質のいくつかが集められてカウントされた。その後、 残った媒質が、吸い出されて、上記と同様にくぼみが着色されて、検査された。実験例４ ナイロン膜に設けられたダウノマイシンにおける細胞増殖 ナイロン膜ディスク（Ｂｉｏｄｙｎｅ Ａ、直径７．５ｍｍ、Ｐａｌｌ Ｂｉ ｏｓｕｐｐｏｒｔ）が、孔開け器を使用してシート膜からカットされ、オートク レーブに入れられた。その後、ディスクは、室温で２時間にわたって、ダウノマ イシンの溶液（２００μｇ／ｍｌの濃度のＰＢＳ溶液）内に入れられた。ディス クは、吸着されたダウノマイシンのために赤く見える。ディスクは、ＰＢＳで洗 浄され、Ｍ１９９に配置され、さらに２．７５時間加温された。ディスクが、最 終的に洗浄され、過剰の液体を除去するために吸い取られた。ディスクは、２４ くぼみの培養プレートの底部に配置され、１０％ＦＢＳを含有するＭ１９９を備 えた１０μｌのＭＥ１８０セルが、ディスクの中央に配置された。プレートは、 細胞接着を可能とするよう、３７℃で１時間加温された。その後、連結されてい ない細胞を除去するために、洗浄された。１０％ＦＢＳを含有したＭ１９９が加 えられ、プレートは、３７℃で４８時間加温された。細胞増殖の程度を決定する ために、１μＣｉの3Ｈ−チミジンが、各くぼみに加えられ、プレートは、さら に２４時間加温された。その後、ディスクが冷却下において１０％のトリクロロ アセティックアシッドで洗浄され、水で洗浄され、そして、カウントのために計 数管内に配置される。結果は、表４に示されている。 表３ 表４ 実験例５ 異なるポリマーに設けられたダウノマイシンの紹胞毒活性 ポリマーボール（１／４インチの直径）が、Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓから入 手された。個々のボール（オートクレーブにより殺菌済み）が、ＰＢＳ内に０． ５ｍｇ／ｍｌの濃度で溶解されたダウノマイシンの溶液に加えられた。そして、 室温で、一晩、維持された。その後、ボールは、結合していないダウノマイシン を除去するために、ＰＢＳで入念に洗浄された。そして、個々のボールは、２４ 個のくぼみ培養プレート（Ｃｏｓｔａｒ）のくぼみ内に配置された。さらに、ポ リメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）製眼内レンズ（ＩＯＬ）が、同様にして処 理された。ＭＥ１８０セルの単一細胞への懸架が、集合単一層をトリプシン化し て、および、ＦＢＳを１０％含有するＭ１９９に再懸架することにより、準備さ れた。１ｍｍの細胞懸架（１．４×１０4細胞／ｍｌ）が、培養プレートの各く ぼみに対して加えられる。プレートは、参照くぼみ（ボールなし）が集合箇所に 到達するまで、３７℃に加温される。この時点において、媒質が吸い出され、細 胞単一層は、上記のようにして、結晶バイオレットにより着色された。細胞成長 の程度は、反転式顕微鏡を使用してくぼみ内の着色細胞を視覚検査することによ り決定された。ポリマーボールによって処理されたダウノマイシン、あるいは、 ＩＯＬで処理されたダウノマイシンを含有するすべてのくぼみ内においては、一 切の細胞が観測されなかった。これに対して、ポリマーボールやＩＯＬを含有し ていないくぼみにおいては、成長細胞の集合単一層が観測された。この実験例は 、ポリマー製ＩＯＬが、ＩＯＬ上におけるまたは近傍における無用の細胞成長を 阻止するための緩和剤を備えて処理されており有利であることが、示される。 実験例６ 異なるタイプのポリマーに連結されたダウノマイシンの連結量 ポリマーボール（１／４インチの直径）が、上記のようにして、ダウノマイシ ンの溶液内に保持されている。保持の後、さらに、結合していないダウノマイシ ンの除去のために洗浄した後、個々のボールは、結合された薬剤を抽出するため に、１ｍｌのメタノール内に配置された。抽出されたメタノールの吸収は、４７ ６ｎｍにおいて現れる。１％のダウノマイシンの溶液およびボールの表面積に対 する１ｃｍにおける１７３という消滅係数を利用して、ポリマーの能力が決定さ れる。結果は、表５に示されている。 表５ この実験例は、様々なポリマーがダウノマイシンを連結し得ること、なかでも 、ナイロンが優れた連結能力を有していること、が示されている。 実験例７ ナイロン膜に設けられたダウノマイシンの連結特性および放出特性 ナイロン膜（ＰａｌｌからのＢｉｏｄｙｎｅ）製ディスクは、シート膜から、 孔開け器を使用して直径７．０ｍｍにカットされ、オートクレーブ処理された。 ディスクは、ダウノマイシン（Ｓｈｉｇｍａ）の５０μｇ／ｍｌの濃度のＰＢＳ 溶液内に、室温で３時間保持された。ディスクは、吸着されたダウノマイシンの ために赤色に見えた。ディスクは、結合していないダウノマイシンを除去するた めにＰＢＳで全体が洗浄された。４個のディスクが、結合したダウノマイシンを 抽出するために、１ｍｌのメタノールを含有するチューブ内に加えられた。ダウ ノマイシンの濃度は、メタノール溶液の４７６ｎｍにおける吸収を測定すること により、また、１％溶液における１７３という消滅係数を利用することにより決 定される。８個のディスクが、１ｍｌのＰＢＳを含有するチューブ内に加えられ 、室温で２４時間、加温された。加温後に、４個のディスクを含むチューブから ＰＢＳが除去された。これらディスクは、メタノールで抽出されて、上述のよう にしてディスクに結合した薬剤の量が決定された。他の４個のディスクについて は、さらに７２時間の加温（ＰＢＳ中において、総計９６時間の加温）が行われ た。加温の後、ＰＢＳが除去され、ディスクは、メタノールで抽出されて、結合 した薬剤の量が決定された。結果は、表６に示されている。 表６ 実験例８ ウサギモデルにおける二次的白内障の阻止のための ナイロン−ダウノマイシンインプラント 二次的白内障は、典型的には、ウサギにおいて、白内障手術の後の数週間以内 に、レンズカプセルの後部におけるレンズ上皮細胞の残余部分の増殖によって、 進展する。白内障手術後のレンズ上皮細胞の増殖に関するナイロン製ループ−ダ ウノマイシンからなるインプラントの効果は、ウサギモデルにおいて、インビボ で評価される。 白内障手術は、Ｕｌｒｉｃｈ氏他により開示された方法（（１９９３）J.Cat. Refract Surg．19:462）によって行うことができる。雌のニュージーランド産白 ウサギが、ランダムに、６匹ずつからなる、２つの処理グループに分けられる。 両方のグループにおいて、一方の眼におけるレンズ超音波吸引を伴うレンズ抽出 手術が行われる。この手術は、人間において一次的白内障の除去のために使用さ れる方法を模擬している。第１グループの動物には、処理されていないナイロン 製ループが適用される。第２グループの動物には、試験濃度のうちの１つの濃度 で細胞増殖緩和剤が吸収されたナイロン製ループが適用される。ループは、レン ズ超音波吸引によるレンズ材料の除去後にレンズカプセルの内部に配置される。 すべてのウサギは、抗炎症性の処置（ステロイドおよび抗生物質（局所的なゲ ンタマイシン）の局所投与）を含む標準的な術後ケアを１週間受けることになる 。眼は、その後、カプセル表面後部におけるレンズ上皮細胞の増殖に関して、イ ンプラントの効果を決定するために観測される。選択された時点において（３ケ 月および６ケ月）、動物は犠牲になり、眼が、組織学を進歩させるよう、レンズ 上皮の増殖の程度を評価するために供される。 本発明の眼内ナイロン−ダウノマイシンインプラントを前眼房内に埋設するこ とにより、レンズ上皮細胞の残余部分の増殖を禁止することができ、よって、二 次的白内障を阻止することができる。眼内インプラントを使用することは、細胞 毒薬を搬送して、ある時間にわたっての薬剤の放出を可能とするような、また、 眼内における劣化プロセスから薬剤の保護を可能とするような、優れた手段を提 供する。したがって、本発明の方法およびデバイスは、二次的白内障を防止する ための単純化された手順を提供する。 実験例９ 緑内障にかかったビーグル犬におけるフィルタリング手術後の 傷形成の制御のためのナイロン−ダウノマイシンインプラント ビーグル犬は、自然的に緑内障を発症し、人間の緑内障のモデルとして、使用 される。Ｋｉｎｇ氏他による（１９９１）Am.J.Vet.Res.52:2067-2070を参照さ れたい。１つの眼あるいは両方の眼において３０ｍｍＨｇよりも大きなＩＯＰ二 より特徴づけられる緑内障に各々がかかった６匹ずつのビーグル犬からなる２つ のグループは、１つの緑内障の眼において緑内障フィルタリング手術を受ける。 一方のグループは、ナイロン膜−ダウノマイシンインプラントを受容する。他方 のグループは、ナイロンフィルタで処置される。ビーグル犬は、Ｚｅｉｓｓスリ ットランプ生体顕微鏡で、前もっての眼の検査が行われる。手術前のＩＯＰは、 各眼に対する０．５％プロパラシンＨＣｌの点滴注入後において、圧平式呼吸運 動描写器（ＢｉｏＲａｄ）を使用して、肺切開による３回の測定の平均から得ら れる。犬は、通常の知覚麻痺状態とされ、リッドスペクトルが配置され、周縁に 基づく結膜ポータムが、縁の後部へと約８ｍｍにわたってなされ、鋭い切開が角 膜強膜周縁が良く見えるようになるまで、行われる。その後、三角形状の部分厚 さを有する強膜フラップが、強膜の約５０％深さにまで、周縁に基づいて進展さ れ、さらに、前眼房への侵入用創傷が、鋭い１５度の剃刀ナイフで形成された。 そして、１ｍｍ×３ｍｍの強膜切開が、部分厚さフラップの下の組織を切除する ためになされる。周縁虹彩切開が、Ｖａｎｎｕｓ鋏および湾曲宝石商鉗子により 行われる。強膜フラップは、１０−０ナイロンで所定位置において縫合される。 その後、ダウノマイシンでコーティングされたナイロン膜が、強膜と結膜との間 に配置される。結膜は、縫合によって閉塞される。 動物には、その後、各眼に対して抗生物質／ステロイドの組合せからなる軟膏 が適用され、暖められた状態に維持され、次の８時間においては１時間ごとに観 測され、翌日は４時間ごとに観測される。毎日の観測は、約２１日間にわたって 、抗生物質ステロイド軟膏の注入とともに、継続される。手術後の最初の５日間 においては毎日、６週間までは３日ごとに、１２週間までは毎週において、水疱 能力、毒性、柔軟性といった眼のルーチン検査、スリットランプ生体顕徴鏡検査 、肺切開検査が、行われる。ＩＯＰの変化も含めた観測は、下げられたＩＯＰを 維持するために、標準的に統計処理される。 実験例１０ ヒドラゾン結合を介してのポリマーインプラントに対する ダウノマイシンの共有結合 フリーのカルボキシル基を有するナイロン膜ディスク（Ｂｉｏｄｙｎｅ Ｃ、 ポアサイズ１．２μｍ、直径７ｍｍ、Ｐａｌｌ Ｂｉｏｓｕｐｐｏｒｔ）が、３ ０ｍｌのアジピン酸ジヒドラジド（１００ｍｇ／ｍｌの水溶液）内に、浸漬され た。１−エチル−３−３−［ジメチルアミノ−プロピル］−カルボジイミド（Ｅ ＤＣ）が、最終的に濃度が３．０ｍｇ／ｍｌになるまで、溶液に対して加えられ た。ｐＨは、１．０ＭのＨＣｌを滴下することにより、４．７５に維持された。 加温の後、膜は、水で念入りに洗浄され、０．２Ｍのソウディウムアセテートの ｐＨ４．５の緩衝液内のダウノマイシンの溶液（３．０ｍｌ、２．０ｍｇ／ｍｌ ）に加えられた。そして、室温で４８時間維持された。その後、膜ディスクは、 結合していないダウノマイシンを除去するために、ＰＢＳですすがれた。膜ディ スクは、非共有結合的に結合されたダウノマイシンを除去するために、２時間、 １００％メタノール（１ｍｌ／ディスク）内に配置された。合計３７．２μｇ／ ディスクが、この処理において除去された。その後、ディスクは、ヒドラゾン結 合を介してナイロンに結合されたダウノマイシンを抽出するために、メタノール と０．２ＭのソウディウムアセテートのｐＨ４．５の緩衝液との１：１溶液内に 配置され、室温に維持された。２４時間後に、ディスクが取り出され、抽出バッ ファが貯蔵された。ディスクは、１ｍｌの新鮮な抽出バッファ内に配置された。 抽出バッファ内に放出されたダウノマイシンの量は、光学スペクトルによって決 定された。この操作が、４８時間後と９６時間後とにおいて繰り返された。最初 の２４時間では、３７．４μｇ／ｃｍ2が放出された。４８時間後においては、 さらに１２．１５μｇ／ｃｍ2が放出された。９６時間後においては、さらに８ ．６μｇ／ｃｍ2が放出された。合計では、５８．２μｇ／ディスクが抽出され た。上記加温後には、ディスクは、わずかに赤色であり、いくつかのダウノマイ シンが、なお、ナイロンに残っていることがわかる。ヒドラジド処理がなされて いない参照用膜は、また、ダウノマイシンを結合している。実質的にすべてのダ ウノマイシンが、最初のメタノール抽出時に、これらディスクから除去された。 実験例１１ ナイロン粉末からのダウノマイシンの連結および放出 ナイロン６のペレット（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ ｉＮＣ．、３ｇ）が、２ ０％のＣａＣｌ2を含有する１００ｍｌの１００％メタノールに懸架された。室 温で攪拌しながらの長めの放置（４日）の後、ナイロン溶液は、室温で大量の水 （２１）内に攪拌しながら、滴下された。このようにして得られた粉末は、吸い 出しフィルター上に分離され、水およびエタノールで引き続いて洗浄され、真空 乾燥された。 ナイロン粉末（１５．５ｇ）が計量され、乳鉢内で挽かれた。粉末は、０．５ ｍｌのダウノマイシンのＰＢＳ溶液（２．２ｍｇ／ｍｌ）内に加えられ、室温で 一晩維持された。放置の後、粉末は、結合していないダウノマイシンを除去する ために、遠心力を利用してＰＢＳで２回洗浄された。粉末に付着したダウノマイ シンは、１．０ｍｌのメタノールに再懸架され、室温で一晩維持された。放置の 後、メタノールが除去され、粉末がさらに２回抽出された。抽出溶液内でのダウ ノマイシンの濃度は、光学スペクトルによって決定された。ナイロン粉末１ｍｇ あたりに対して抽出されたダウノマイシンの総量は、５１．９μｇであった。 実験例１２ ヒドラゾン結合を介してのカルボキシメチルセルロースに対する ダウノマイシンの共有結合 低粘度であって１００ｍｇのカルボキシメチルセルロース（Shigma Chemical Company）が、最終濃度が４．０ｍｇ／ｍｌとなるまで、溶解された。ｐＨは、 ＨＣｌで４．７５に調節された。アジピン酸ジヒドラジド（１．７５ｇ）が、室 温で攪拌しながら溶液に加えられた。ＥＤＣが溶液に加えられ（２００ｍｇ）、 ｐＨがＨＣｌの滴下により４．７に維持された。６０分の放置の後、さらに２０ ０ｍｇのＥＤＣが加えられ、６０分間放置された。溶液は、室温で７２時間にわ たってＨ2Ｏで透析され、その後、２４時間にわたって０．１Ｍのソーディウム アセテートバッファｐＨ４．５で透析された。透析の後、ＣＭＣ派生物が４℃で 貯蔵された。最終の量は、３０ｍｌであった。 約３．３ｍｇ／ｍｌのＣＭＣ派生物（ＣＭＣ−Ｈｚ）が、１ｍｇのダウノマイ シンを溶解させた０．１ｍｌのＨ2Ｏ中に混合され、４℃で４８時間にわたって 維持された。ＤＭＤ−Ｈｚに付着したダウノマイシンの量は、４７３ｎｍにおけ る吸光度を決定することにより、決定される。数ｍｌのＣＭＣ−ダウノマイシン 錯体は、１４ｍｌの冷エタノールを加えることにより凝固した。遠心分離した後 、凝固物は、乾燥された。乾燥したペレットは、１ｍｌのＰＢＳを加えることに より、水和された。その後、室温で放置された。３時間後に、ペレットは、膨ら み、ゲル状となった。 ヒドラジドの派生は、反応時に使用されるＥＤＣの量の調節により、制御する ことができる。放置の後、フリーのダウノマイシンは、フォスフェイトバッファ ードサリンに対するポリマー−薬剤混合体の透析により、除去することができる 。ＣＭＣ−Ｈｚに対するダウノマイシンの付着量は、４７３ｎｍにおける吸光度 の測定により決定される。 カルボキシメチルセルロースからのｐＨの関数としてのダウノマイシンの放出 速度は、アセトンを１０％含有するｐＨ４．５、５．０、７．４の希釈水性（０ ．１Ｍ）バッファ内に、個々のペレットを放置することにより、決定することが できる。各バッファ内における放置は、３７℃で実行される。各時間周期におい て、溶液内のフリーなダウノマイシンの量は、エタノールとともにダウノマイシ ンが付着したポリマーの凝固後に、溶液内に残っているダウノマイシンの吸光度 （４７６ｍｌ）を測定することにより決定される。 実験例１３ インプラントのインビトロでの細胞成長緩和の変化 細胞増殖緩和剤でコーティングされたポリマーインプラントは、インビトロで 評価することができる。細胞媒体くぼみには、１０％のＦＢＳを含有する１ｍｌ のＭ１９９が導入される。細胞増殖剤でコーティングされたインプラントポリマ ーが、くぼみに加えられる。この場合、培養くぼみは、例えば強膜、結膜から派 生した線維芽細胞、あるいは、レンズ上皮細胞といった対象をなす組織からの細 胞で、種付けされており、所望の効果を観測するために、成長緩和組成物に関し て十分な時間だけ放置される。成長は、各プレートに対して、トリパンブルーの 排除、トリチウムを含むチミジンの組込、等の当業者には公知な任意の方法によ って決定される。細胞成長は、また、着色にしろそうではないにしろ、細胞の直 接的な顕微鏡的可視化によって、決定することができる。これに代えて、細胞成 長を、染料ＭＴＴ（３−（４，５−ジメチルチアゾール−２ｙ）−２，５−ジフ ェニルテトラゾリウムブロマイド）を使用して決定することができる。この染料 は、死んだ細胞ではなく生きている細胞によって、青色形成化合物へと変換され る（Ｍｏｓｍａｎ、J.Immunol.Methods(1983)65:55）。青色化合物は、その後、 ソウディウムドデシルサルフェイト／ＨＣｌに溶解され、ＥＬＩＳＡ読取器によ って５９０ｎｍにおいて定量される。ＩＣ50値は、未処理の参照くぼみと比較し て、細胞の５０％の死滅が引き起こされる緩和剤により、決定される。 実験例１４ 創傷治療時における細胞増殖の増強のためのインプラントの変化 細胞増殖緩和剤付のポリマーインプラントは、創傷治療モデルを含む多数の技 術のすべてに対して評価することができる。特に明瞭な例は、手術による創傷を 含むモデルである。例えばβタイプの変換成長因子（ＴＧＦタイプβ）のような 細胞増殖緩和剤でコーティングされたポリマーインプラントは、ウサギの眼中に 結膜に沿って配置される。ニュージーランド産白ウサギが、通常通り麻酔して配 置され、リッドスペクトルが眼内に配置される。周縁に基づく結膜フラップが、 結膜の切開および周縁に向けての前方側への切開により形成される。上強膜をカ ットしないように注意が払われる。インプラントは、フラップの下に配置され、 結膜が、ランニング−ルッキング型の９−０ビクリル（vicryl）縫合で閉塞され る。 動物は、埋設後の３、５、７日目において犠牲となる。眼が取り出され、中性 のホルマリン中に固定される。インプラントを含む組織のパラフィン部が、準備 され、この埋設部分における線維芽の増殖の程度を観測するために、ヘマトキシ リンおよびエオシンで着色される。マソントリクロム（Hassons trichrome）に よる着色が、埋設部位において新たに形成されたコラーゲンファイバを観測する ために、前もって行われる。線維芽の増殖の程度、および、インプラント周辺に おいて新たに形成されたコラーゲンの量は、薬剤を備えていないインプラントや インプラントを受容していない組織と比較して、ＴＧＦタイプβでコーティング されたインプラントを受容した組織における方が、実質的により大きい。 上記実験例は、リシンおよびダウノマイシンのような成長緩和剤が、ポリスチ レン、ポリプロピレン、アクリル、ポリアミド、ナイロンのようなポリマーに、 可逆的に付着されていることを示している。これに代えて、不安定な共有結合を 、成長緩和剤をポリマーに対して連結させるために、使用することができる。こ の場合、緩和剤は、ポリマーにより放出される。連結および放出は、上記実験方 法を使用して、容易に決定することができる。ポリマーは、所望の応用に適した 埋設形態に加工することができ、動物内に埋設することができる。この方法は、 例えば、二次的白内障を防止するために、あるいは、ＧＦＳにおけるフィルタ用 水疱の能力を維持するために、適用することができる。 この明細書中に指摘したすべての刊行物および特許出願は、本願に関連する当 業者に対して提示される。また、すべての刊行物および特許出願は、あたかも、 個々の刊行物または特許出願が個々に組み込まれているかのようにして、参考の ため、ここに組み込まれる。 以上のように本発明について説明してきたけれども、当業者には、添付クレー ムの精神および範囲を逸脱することなく、変更および修正が可能であることは、 明らかであろう。
【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項 【提出日】平成８年１０月１６日（１９９６．１０．１６） 【補正内容】 請求の範囲 １．眼の限られた領域内における目標細胞の増殖の緩和に使用するためのインプ ラントであって、 非腐食性のポリマーと、該ポリマーに可逆的に設けられる少なくとも１つの緩 和剤と、を具備してなり、 前記緩和剤は、埋設時において、前記目標細胞の増殖を緩和するために、前記 緩和剤が前記限られた領域内に留まるような速度で放出されるように、前記ポリ マーに設けられていることを特徴とするインプラント。 ２．眼の限られた領域内における目標細胞における増殖の緩和に使用するための インプラントであって、 ポリマーと、共有結合により前記ポリマーに可逆的に設けられる少なくとも１ つの緩和剤と、を具備してなり、 前記共有結合は、生理学的な条件下においては、不安定であり、その結果、埋 設時において、前記目標細胞の増殖を緩和するために、前記緩和剤は、該緩和剤 が前記限られた領域内に留まるような速度で放出されることを特徴とするインプ ラント。 ３．少なくとも１つの緩和剤は、禁止するための薬剤であることを特徴とする請 求項１または２記載のインプラント。 ４．少なくとも１つの禁止するための薬剤は、抗有糸分裂薬であることを特徴と する請求項３記載のインプラント。 ５．前記抗有糸分裂薬は、アンスラサイクリン、ドキシルビシン、または、ダウ ノマイシンであることを特徴とする請求項４記載のインプラント。 ６．少なくとも１つの禁止するための薬剤は、代謝拮抗薬であることを特徴とす る請求項３記載のインプラント。 ７．前記代謝拮抗薬は、５−フルオロウラシルであることを特徴とする請求項６ 記載のインプラント。 ８．前記禁止するための薬剤は、毒素であることを特徴とする請求項３記載のイ ンプラント。 ９．前記毒素は、リシンであることを特徴とする請求項８記載のインプラント。 １０．レンズ上皮細胞の増殖を緩和するために使用されることを特徴とする請求 項１ないし９のいずれかに記載のインプラント。 １１．線維芽細胞の増殖を緩和するために使用されることを特徴とする請求項１ ないし９のいずれかに記載のインプラント。 １２．前記限られた領域は、フィルター部位であることを特徴とする請求項１な いし１１のいずれかに記載のインプラント。 １３．前記限られた領域は、レンズカプセルの略中央領域であることを特徴とす る請求項１ないし１２のいずれかに記載のインプラント。 １４．インプラントが、膜であることを特徴とする請求項１ないし１３のいずれ かに記載のインプラント。 １５．インプラントが、眼内レンズ、排掖通路、プロテーゼ、薬剤放出インプラ ント、または、レンズカプセルループであることを特徴とする請求項１ないし１ ４のいずれかに記載のインプラント。 １６．生物学的に不活性なポリマーを具備していることを特徴とする請求項１記 載のインプラント。 １７．前記ポリマーは、シリコン、ポリメチルメタクリレート、または、ナイロ ンであることを特徴とする請求項１６記載のインプラント。 １８．前記ポリマーがナイロンであり、前記緩和剤がダウノマイシンであること を特徴とする請求項１７記載のインプラント。 １９．前記ポリマーがヒアルロン酸、ヘパリン、または、カルボキシメチルセル ロースであることを特徴とする請求項２記載のインプラント。 ２０．白内障の手術後において、レンズ上皮細胞の残余部分を死滅させることに 使用されることを特徴とする請求項１ないし１９のいずれかに記載のインプラン ト。 ２１．組織に対する傷の形成を阻止することに使用されることを特徴とする請求 項１ないし２０のいずれかに記載のインプラント。 ２２．緩和剤が可逆的に取り付けられるとともに、白内障の手術後においてレン ズ上皮細胞の残余部分を死滅させることに使用するための請求項１ないし２１の いずれかに記載のポリマーインプラントを作ることに使用することを特徴とする ポリマーの使用。 ２３．緩和剤が可逆的に取り付けられるとともに、組織に対する傷の形成を阻止 することに使用するための請求項１ないし２２のいずれかに記載のポリマーイン プラントを作ることに使用することを特徴とするポリマーの使用。 ２４．眼の限られた領域内における目標細胞の増殖を緩和するための眼内デバイ スを作るための方法であって、 非腐食性かつ生物学的に不活性なポリマーを、可逆的に、緩和剤に接触させる ことを特徴とする方法。 ２５．眼内デバイスを作るための方法であって、 生物学的に不活性なポリマーに、緩和剤を、生理学的に不安定な共有結合によ って、可逆的であるように結合させることを特徴とする方法。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｋ 47/32 Ａ６１Ｋ 47/34 47/34 Ａ６１Ｐ 27/00 Ａ６１Ｐ 27/00 43/00 １０５ 43/00 １０５ Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，Ｍ Ｃ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＡＵ，ＣＮ，ＪＰ，ＵＳ

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 １．眼の限られた領域内における目標細胞の増殖の緩和に使用するためのインプ ラントであって、 ポリマーと、該ポリマーに可逆的に設けられる少なくとも１つの緩和剤と、を 具備してなり、 前記緩和剤は、埋設時において、該緩和剤が前記限られた領域内に留まるよう な速度で放出されるように、前記ポリマーに設けられていることを特徴とするイ ンプラント。 ２．少なくとも１つの緩和剤は、禁止するための薬剤であることを特徴とする請 求項１記載のインプラント。 ３．少なくとも１つの禁止するための薬剤は、抗有糸分裂薬であることを特徴と する請求項２記載のインプラント。 ４．前記抗有糸分裂薬は、アンスラサイクリン、ドキシルビシン、または、ダウ ノマイシンであることを特徴とする請求項３記載のインプラント。 ５．少なくとも１つの禁止するための薬剤は、代謝拮抗薬であることを特徴とす る請求項２記載のインプラント。 ６．前記代謝拮抗薬は、５−フルオロウラシルであることを特徴とする請求項５ 記載のインプラント。 ７．前記禁止するための薬剤は、毒素であることを特徴とする請求項２記載のイ ンプラント。 ８．前記毒素は、リシンであることを特徴とする請求項７記載のインプラント。 ９．レンズ上皮細胞の増殖を緩和するために使用されることを特徴とする請求項 １ないし８のいずれかに記載のインプラント。 １０．線維芽細胞の増殖を緩和するために使用されることを特徴とする請求項１ ないし８のいずれかに記載のインプラント。 １１．前記限られた領域は、フィルター部位であることを特徴とする請求項１な いし１０のいずれかに記載のインプラント。 １２．前記限られた領域は、レンズカプセルの略中央領域であることを特徴とす る請求項１ないし１１のいずれかに記載のインプラント。 １３．インプラントが、膜であることを特徴とする請求項１ないし１２のいずれ かに記載のインプラント。 １４．インプラントが、眼内レンズ、排液通路、プロテーゼ、薬剤放出インプラ ント、または、レンズカプセルループであることを特徴とする請求項１ないし１ ３のいずれかに記載のインプラント。 １５．生物学的に不活性なポリマーを具備していることを特徴とする請求項１な いし１４のいずれかに記載のインプラント。 １６．前記生物学的に不活性なポリマーは、非腐食性であることを特徴とする請 求項１５記載のインプラント。 １７．前記ポリマーは、シリコン、ポリメチルメタクリレート、または、ナイロ ンであることを特徴とする請求項１６記載のインプラント。 １８．前記ポリマーがナイロンであり、前記緩和剤がダウノマイシンであること を特徴とする請求項１７記載のインプラント。 １９．前記緩和剤は、前記ポリマーに対して、共有結合により連結されているこ とを特徴とする請求項１ないし１８のいずれかに記載のインプラント。 ２０．白内障の手術後において、レンズ上皮細胞の残余部分を死滅させることに 使用されることを特徴とする請求項１ないし１９のいずれかに記載のインプラン ト。 ２１．組織に対する傷の形成を阻止することに使用されることを特徴とする請求 項１ないし２０のいずれかに記載のインプラント。 ２２．緩和剤が可逆的に取り付けられるとともに、白内障の手術後においてレン ズ上皮細胞の残余部分を死滅させることに使用するための請求項１ないし２１の いずれかに記載のポリマーインプラントを作ることに使用することを特徴とする ポリマーの使用。 ２３．緩和剤が可逆的に取り付けられるとともに、組織に対する傷の形成を阻止 することに使用するための請求項１ないし２２のいずれかに記載のポリマーイン プラントを作ることに使用することを特徴とするポリマーの使用。 ２４．眼内デバイスを作るための方法であって、 生物学的に不活性なポリマーを、可逆的に、緩和剤に接触させることを特徴と する方法。
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