JP2000515740A

JP2000515740A - ガンマ―ヘレグリン

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Publication number: JP2000515740A
Application number: JP10506093A
Authority: JP
Inventors: エムシェイファー，ガブリエル; スリウコウスキー，マーク
Original assignee: ジェネンテックインコーポレーテッド
Priority date: 1996-07-12
Filing date: 1997-07-08
Publication date: 2000-11-28
Anticipated expiration: 2017-07-08
Also published as: US20100135957A1; US6096873A; IL191078A; IL191078A0; US8226935B2; AU727606B2; IL127892A0; IL127892A; US6916624B2; US7585673B2; WO1998002541A1; CA2257839C; JP2009235108A; IL191077A0; AU3720897A; US6500941B1; JP4382879B2; CA2257839A1; US20090042797A1; DE69732711D1

Abstract

(57)【要約】ヘレグリンスーパーファミリーの新規な成員が同定され、”γ−ＨＲＧ”と命名された。この分子は、ヒトの肺癌ＭＤＡ−ＭＢ−１７５細胞から分泌され、構造性活性レセプター複合体の形成を促し、オートクライン的方法でこれらの細胞の成長を刺激する。γ−ＨＲＧポリペプチド及び核酸が、その多くの用途（例えば、γ−ＨＲＧの組み換え生産のためのγ−ＨＲＧ核酸の使用）ともに開示される。γ−ＨＲＧアンタゴニスト（例えば、中和抗体及びアンチセンス核酸分子）並びにその用途も記載される。

Description

【発明の詳細な説明】ガンマ−ヘレグリン発明の分野本願は、従来同定されていたヘレグリン(heregulins)に存在しなかった独特のＮ末端ドメインを有するヒト乳ガンＭＤＡ−ＭＢ−１７５細胞によって分秘されるガンマ−ヘレグリン（γ−ＨＲＧ）と称される新規のヘレグリンポリペプチドの発見に関する。発明の背景細胞の成長と分化を制御するシグナルの形質導入は、種々の細胞性タンパクのリン酸化によって部分的に制御される。プロテインチロシンキナーゼは、この工程を触媒する酵素である。レセプタープロテインチロシンキナーゼは、細胞内基質のリガンド刺激チロシンリン酸化を介して細胞成長を方向付けると信じられている。クラスＩサブファミリーの成長因子レセプタープロテインチロシンキナーゼは、ＥｒｂＢ１遺伝子によってコードされる１７０ｋＤａ表皮成長因子レセプター（ＥＧＦＲ）を含む。ＥｒｂＢ１は、ヒトの悪性腫瘍の原因として関係してきた。特に、この遺伝子の発現の増大は、乳房、膀胱、肺および胃のより活発的なガンに観察されてきた。クラスＩサブファミリーの第二のメンバー、ｐ１８５^neuは、始めは、化学的に処置されたラットの神経芽腫の形質転換遺伝子の産物として同定された。ｎｅｕ遺伝子（ＥｒｂＢ２およびＨＥＲ２とも呼ばれる）は、１８５ｋＤａのレセプタ−プロテインチロシンキナーゼをコードする。ヒトＨＥＲ２遺伝子の増幅および／または過剰発現は、乳房および卵巣癌の予後とわずかな関係がある（Slamon ら，Science 235:177-182(1987)；およびSlamonら，Science 244:707-712(1989) ）。ＨＥＲ２の過剰発現は、胃、子宮内膜、唾液腺、肺、腎臓、大腸および膀胱のガンを含む他のガンと関係づけられてきた。従って、Slamonらは米国特許第４９６８６０３号において、腫瘍細胞におけるＨＥＲ２遺伝子の増幅または発現を調べるための種々の診断アッセイを記載し、クレームしている。Slamonらは、腫瘍細胞におけるＨＥＲ２ガン遺伝子の多数の(multiple)遺伝子コピーの存在が、疾患が主な腫瘍部位を越えて広がるらしいこと、並びに、それゆえ別な方法で他の診断因子によって示唆される場合より、活発な処置を必要とすることを示唆することを見出した。Slamonらは、リンパ節の状態の測定に加えてＨＥＲ２遺伝子増幅試験が、大いに改良された予後の有益を提供すると結論した。ＥｒｂＢ３またはＨＥＲ３と称されるさらなる関連遺伝子についても記載されてきた。米国特許第５１８３８８４号；Krausら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA86:919 3-9197(1989)；欧州特許出願第４４４９６１号公報；およびKrausら,Proc.Natl. Acad.Sci.USA90:2900-2904(1993)を参照。Krausら(1989)は、顕著に土昇したレベルのＥｒｂＢ３ｍＲＮＡが、あるヒト乳腺腫瘍細胞系に存在し、ＥｒｂＢ１およびＥｒｂＢ２に似たＥｒｂＢ３が、ヒトの悪性腫瘍においてある役割を演じるかもしれないことを示唆することを見出した。また、Krausら(1993)は、キメラＥＧＦＲ／ＥｒｂＢ３レセプターのＥｒｂＢ３触媒ドメインのＥＧＦ−依存性活性化が、感染したＮＩＨ−３Ｔ３細胞における増殖反応を起こす結果となることを示した。さらに、これらの研究者は、あるヒトの乳腺腫瘍細胞系が、安定した状態のＥｒｂＢ３チロシンリン酸化の顕著な上昇を示し、このレセプターがヒトの悪性腫瘍においてある役割を演じるかもしれないことを示唆することを証明した。ガンにおけるＥｒｂＢ３の役割は、第三者によって探求されてきた。乳房（Lemoineら，Br.J.Cancer 66:1116-1121(1992)）、胃腸（Pollerら,J.Pathol.1 68:275-280(1992)，Rajkumerら,J.Pathol.170:271-278(1993),およびSanidasら，Int.J.Cancer 54:935-940(1993)）、および膵臓のガン（Lemoineら，J.Pathol ．168:269-273(1992),およびFriessら,Clinical Cancer Research 1:1413-1420( 1995)）において過剰発現されることが見出されてきた。成長因子レセプタープロテインチロシンキナーゼのクラスＩサブファミリーはＨＥＲ４／Ｅｒｂ４レセプターを含むようにさらに広げられてきた。欧州特許出願第５９９２７４号；Plowmanら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90;1746-1750(1993) ；およびPlowmanら,Nature 366:473-475(1993)を参照。Plowmanらは、増大したＨＥＲ４の発現が、乳房の腺癌を含む上皮由来のある癌腫と密接に関連することを見出した。ＨＥＲ４の発現を評価するヒトの腫瘍性状態（特に乳ガン）の検出のための診断方法が、欧州特許出願第５９９２７４号に記載されている。ＨＥＲ２癌遺伝子の活性化物質の探求により、ヘレグリンポリペプチドのファミリーを発見するに至った。これらのタンパクは、Orr-Urtregerら，Proc.Natl. Acad.Sci.USA 90:1867-1871(1993)によるヒト染色体８の短腕(the short arm)にマップされた単一の遺伝子の択一的スプライシング(alternate splicing)から得られるらしい。 Holmesらは、彼らがヘレグリン−α（ＨＲＧ−α）、ヘレグリン−β１（ＨＲＧ−β１）、ヘレグリン−β２（ＨＲＧ−β２）、ヘレグリン−β２様（ＨＲＧ −β２−like）およびヘレグリン−β３（ＨＲＧ−β３）と称するＨＥＲ２レセプターのポリペプチド活性化物質のファミリーを単離およびクローン化した。Ho lmesら,Science256:1205-1210(1992)；国際公開９２／２０７９８号；および米国特許第５３６７０６０号を参照。４５ｋＤａのポリペプチド、ＨＲＧ−αが、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１ヒト乳ガン細胞系のならし培地から精製された。これらの研究者は、ＭＣＦ７乳房腫瘍細胞のＨＥＲ２レセプターのチロシンリン酸化を活性化するという、精製されたヘレグリンポリペプチドの能力を証明した。さらに、ＳＫ−ＢＲ−３細胞（高レベルのＨＥＲ２レセプターを示す）へのヘレグリンポリペプチドの分裂促進活性(the mitogenic activity)が例証された。ＥＧＦファミリーに属する他の成長因子のように、可溶性ＨＲＧポリペプチドは、タンパク分解的に処理されて４５ｋＤａの可溶性形態を放出する膜結合前駆体（プロＨＲＧ(pro-HRG)と称される）から誘導されると思われる。これらのｐｒｏ−ＨＲＧは、Ｎ末端シグナルペプチドを欠く。ヘレグリンは最初の２１３アミノ酸残基において実質的に同一であるが、Ｃ末端部位において異なる二つの種々のＥＧＦ様ドメインに基づいて、αとβの二つの主要なタイプにクラス分けされる。それにも拘わらず、これらのＥＧＦ様ドメインは、それに含まれる６つのシステイン残基の間隔が同じである。アミノ酸配列の比較に基づいて、Holmesらは、ＥＧＦ様ドメインの最初と６番目のシステインとの間において、ＨＲＧがヘパリン結合ＥＧＦ様成長因子（ＨＢ−ＥＧＦ）に４５％類似し、アンビレグリン(amphiregulin)（ＡＲ）に３５％同一、ＴＧＦ− αに３２％同一、およびＥＧＦに２７％同一であることを見出した。ヒトのＨＲＧのラット等価物である、４４ｋＤａのｎｅｕ分化因子（ＮＤＦ）が、Pelesら,Cell,69:205-216(1992)；およびWenら,Cell,69:559-572(1992)によって最初に記載された。ＨＲＧポリペプチドのように、ＮＤＦはＥＧＦ様ドメインが続くイムノグロブリン（Ｉｇ）相同ドメインを備え、Ｎ末端シグナルペプチドを欠く。次に、Wenら,Mol.Cell.Biol.,14(3):1909-1919(1994)は、“エグゾ− スティブ・クローニング(exhaustive cloning)”を行って、ＮＤＦのファミリーを広げた。この研究は、６つの別個の繊維芽細胞系ｐｒｏ−ＮＤＦを示した。Ho lmesらの命名を採用すれば、ＮＤＦはＥＧＦ様ドメインの配列に基づいてαまたはβポリペプチドのいずれかのように分類される。１から４までのイソ型タンパク質は、ジャスタメンブレン・ストレッチ(justamembrane stretch)（ＥＧＦ− 様ドメインとトランスメンブレンとの間）を基準として特徴決定される。また、イソ型タンパク質ａ、ｂおよびｃは、種々の長さの細胞質ドメインを有することが記載されている。これらの研究者は、種々のＮＤＦイソ型タンパク質が択一的スプライシングによって生成され、別個の組織特異的機能を行うと結論してしている。ＮＤＦに関する欧州特許第５０５１４８号；国際公開第９３／２２４２４号；および国際公開第９４／２８１３３も参照。 Fallsら，Cell,72:801-815(1993)は、彼らがアセチルコリンレセプター誘導活性（ＡＲＩＡ）ポリペプチドと称するヘレグリンファミリーの他のメンバーについて記載する。チキン由来のＡＲＩＡポリペプチドは、筋肉のアセチルコリンレセプターの合成を刺激する。国際公開第９４／０８００７号も参照。ＡＲＩＡは β-型ヘレグリンであり、ＨＲＧαおよびＨＲＧβ１−β３のＩｇ−様ドメインとＥＧＦ−様ドメインとの間の糖化部位に富んだ完全なスペーサー領域を欠く。 Marchionniら,Nature,362:312-318(1993)は、彼らがグリア成長因子(glial gr owth factors)（ＧＧＦ）と称するいくつかのウシ由来タンパクを同定した。これらのＧＧＦは、Ｉｇ−様ドメインとＥＧＦ−様ドメインを上記の他のヘレグリンタンパクと共有するが、アミノ末端クリングルドメインも有する。ＧＧＦは一般的に、Ｉｇ−様ドメインとＥＧＦ−様ドメインとの間に完全なグリコシル化スペーサー領域を持たない。ＧＧＦのうちのたった一つであるＧＧＦIIが、Ｎ末端シグナルペプチドを有する。ＧＧＦとその使用に関する国際公開第９２／１８６２７；国際公開第９４／００１４０；国際公開第９４／０４５６０；国際公開第９４／２６２９８；および国際公開第９５／３２７２４も参照。 Hoらは、J.Biol.Chem.270(4):14523-14532(1995)において、感覚および運動性のニューロン誘導因子(sensory and motor neuron-derived factor)（ＳＭＤＦ）と称されるヘレグリンファミリーの別のメンバーを記載する。このタンパクは、別個のＮ末端ドメインではなく、他の全てのヘレグリンポリペプチドに特有のＥＧＦ−様ドメインを備えている。ＳＭＤＦと他のヘレグリンポリペプチドとの間の主な構造上の差異は、ＳＭＤＦのＩｇ−様ドメイン、および他の全てのヘレグリンポリペプチドに特有の“グリコ(glyco)”スペーサーが欠如していることである。ＳＭＤＦの別の特徴は、Ｎ末端近くの疎水性アミノ酸の二つのストレッチ(stretches)の存在である。ヘレグリンポリペプチドは、ＨＥＲ２レセプターを活性化する能力に基づいて最初に同定され（Holmesら，上掲）、neuを発現するある卵巣細胞およびneu-移入繊維芽細胞が、ＮＤＦに結合も架橋結合もしないか、あるいはＮＤＦに反応せずにチロシンリン酸化を行わないことが見出された（Pelesら,EMBO J.12:961-97 1(1993)）。これは、他の細胞性成分が、完全なヘレグリンの反応を与えるのに必要であることを示唆した。Carrawayらは、続いて、¹²⁵Ｉ−ｒＨＲＧβ_1177-24 ₄ が、ウシＥｒｂＢ３が安定に移入されたＮＩＨ−３Ｔ３繊維芽細胞に結合し、形質移入されていない親細胞には結合しないことを証明した。従って、ＥｒｂＢ３がＨＲＧのレセプターであること、内在性チロシン残基のリン酸化並びに両方のレセプターを発現する細胞のＥｒｂＢ２レセプターのリン酸化を仲介すると結論した。Carawayら,J.Biol.Chem.269(19):14303-14306(1994)、Sliwkowskiら,J. Biol.Chem.269(20):14661-14665(1994)は、ＨＥＲ３のみが移入された細胞が、ヘレグリンに対して低い親和性を示す一方、ＨＥＲ２およびＨＥＲ３の両方が移入された細胞が高い親和性を示すことを見出した。この観察は、Kokaiら,Cell 58:287-292(1989)；Sternら,EMB0 J.7:995-1001(1 988)；およびKingら,4:13-18(1989)によって先に記載された“receptor cross-t alking”と関連する。これらの研究者は、ＥＧＦＲに対するＥＧＦの結合によりＥＧＦＲキナーゼドメインおよびｐ１８５^HER2のクロスリン酸化(cross phospho rylation)の活性化を生じることを見出した。これは、リガンド誘発レセプターヘテロダイマー化と、付随したヘテロダイマー内におけるレセプターのクロスリン酸化の結果であると信じられている（Wadaら，Cell 61:1339-1347(1990)）。 Plowmanと彼の同僚は、ｐ１８５^HER4／ｐ１８５^HER2活性化について同様に研究した。彼らは、ｐ１８５^HER2のみ、ｐ１８５^HER4のみ、もしくは二つのレセプターを共に、ヒトのＴリンパ球において表し、ヘレグリンがｐ１８５^HER4のチロシンリン酸化を刺激しうることを証明したが、両方のレセプターを表す細胞におけるｐ１８５^HER2リン酸化を刺激することのみ可能であった。Plowmanら，Natur e 336:473-475(1993)。しかして、ヘレグリンは、いくつかのレセプターと相互作用し得るＥＧＦ成長因子のメンバーの唯一知られた例である。CarrawayとCant ley,Cell 78:5-8(1994)。ヘレグリンの生物学的役割がいくつかのグループによって調べられた。例えば、Fallsら（上述）は、ＡＲＩＡが筋管の分化においてある役割を演じること、すなわち運動ニューロンのシナプス後の筋細胞におけるニューロトランスミッターレセプターの合成および濃縮に影響を及ぼすことを見出した。CorfasとFischb achは、ＡＲＩＡがニワトリの筋肉におけるナトリウムチャネルの総数を増加することも示した。CorfasとFischbach，J.Neuroscience，13(5):2118-2125(1993) 。ＧＧＦＩＩがサブコンフルエント静止状態ヒト筋芽細胞(subconfluent quiesc ent human myoblasts)の分裂促進性であること、並びにＧＧＦＩＩの連続的存在下におけるクローン化されたヒト筋芽細胞の分化により、６日間分化した後に多数の筋管を生じることも示した（Sklarら,J.Cell Biochem.,Abst.W462,18D,540( 1994)）。１９９４年１１月２４日に公開された国際公開第９４／２６２９８号も参照。 Holmesらは、上述したように、ＨＲＧが、哺乳動物細胞系に分裂促進効果を発揮することを見出した（ＳＫ−ＢＲ−３およびＭＣＦ−７など）。Schwann細胞におけるＧＧＦｓの分裂促進活性も報告されている。例えばBrockesら,J.Biol.C hem.255(18):8374-8377(1980)；LemkeとBrockes，J.Neurosci.4:75-83(1984)；B rockesら,J.Neuroscience 4(1):75-83(1984)；Brockesら,Ann.Neurol.20(3):317 -322(1986)；Brockes，J.,Methods in Enzym.,147:217-225(1987)およびMarchio nniら，上掲。Schwann細胞は、ニューロンの軸索の周りのミエリン鞘を提供する重要なグリア細胞を構成し、それゆえ個々の神経繊維を形成する。しかして、Schwann 細胞が末梢神経の発達、機能および再生において重要な役割を演じることは明らかである。治療的見地からこの意味は、Leviら，J.Neuroscience 14(3):1309-13 19(1994)に向けられてきた。Leviらは、傷を受けた脊髄の領域に移植されうるヒトSchwann細胞を含む細胞性人工器官の構成の可能性を議論している。Schwann細胞をex vivoで培養する方法が記載されている。国際公開第９４／００１４０号およびLiら,J.Neuroscience 16(6):2012-2019(1996)を参照。 Pinkas-Kramarskiらは、ＮＤＦが、胎児および成体のラットの脳のニューロンおよびグリア細胞、並びにラットの脳細胞の一次培養において示されるらしいことを見出し、星状細胞の生存および成熟ファクターとして作用するかもしれないことを示唆した（Pinkas-Kramarskiら,PNAS,USA 91:9387-9391(1994)）。Meyer とBirchmeier,PNAS,USA91:1064-1068(1994)は、in situハイプリダイゼーションとＲＮアーゼ保護研究を用いて、マウス胚形成および周産期の動物におけるヘレグリンの発現を分析した。これらの著者は、この分子の発現に基づいて、ヘレグリンが、間葉およびニューロンのファクターとしてin vivoにおいて役割を演じると結論した。また、かれらの知見は、ヘレグリンが上皮の発達において作用することを暗示している。同様に、Danilenkoら,Abstract 3101,FASEB 8(4-5):A53 5(1994)は、ＮＤＦとＨＥＲ２レセプターの相互作用が、傷の修復の間における表皮移動および分化の指揮において重要であることを見出した。発明の概要本発明は、新規のγ−ＨＲＧポリペプチドおよび核酸の発見に関する。この分子は、ヒト乳ガンＭＤＡ−ＭＢ−１７５細胞によって分泌され、構成的な活性レセプター複合体の形成を導き、自己分泌によりこれらの細胞の成長を刺激する。従って、本発明は、単離されたγ−ＨＲＧポリペプチドを提供する。このγ− ＨＲＧポリペプチドは、好ましくは実質的に均質であり、天然配列ポリペプチド（例えば図１のヒトγ−ＨＲＧ）および変異体γ−ＨＲＧ（例えばキメラγ−ＨＲＧ）からなる群から選択されても良い。さらに、γ−ＨＲＧポリペプチドは、哺乳動物（例えばヒト）から単離されたポリペプチド、組換え手段で作成されたポリペプチド、並びに合成手段で作成されたポリペプチドからなる群から選択されてもよい。従って、ポリペプチドは、天然グリコシル化と無関係であっても、また完全にグリコシル化されていなくてもよい。好ましい実施態様において、単離されたγ−ＨＲＧは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のヒトγ−ＨＲＧのエフェクター機能を所有し、（ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２の完全なヒトγ−ＨＲＧのアミノ酸配列；（ｂ）天然に生じる（ａ）の配列以外の動物種由来の完全なγ−ＨＲＧのアミノ酸配列：（ｃ）天然に生じる（ａ）または（ｂ）の対立性変異体またはイソ型タンパク質；および（ｄ）一または二のアミノ酸のみが置換した（ａ）、（ｂ）または（ｃ）のアミノ酸配列からなる群から選択されたアミノ酸配列を含む。本発明は、さらにγ−ＨＲＧおよび薬学的に許容できるキャリアーを含む組成物（好ましくは無菌のもの）を提供する。この組成物は、ＥｒｂＢレセプター（活性化されるＥｒｂＢレセプターと同じでも異なっても良い）を発現する細胞を γ−ＨＲＧポリペプチドと接触させる工程を含むＥｒｂＢレセプターを活性化する方法において用いられても良い。この方法は、例えば細胞が細胞培養中であるようなin vitroであってもよく、または、細胞が哺乳動物中（例えば、ＥｒｂＢレセプター活性化から利益を得ることができる患者）に存在するようなin vivo であってもよい。別の実施態様において、本発明は、細胞をγ−ＨＲＧポリペプチドと接触させる工程を含む細胞（特に、細胞表面にＥｒｂＢレセプターを発現する細胞）の増殖、分化もしくは生存を増幅するin vitroまたはin vivoの方法を提供する。その細胞は、例えば、グリア細胞または筋細胞であってもよい。さらに、本発明は、ＥｒｂＢレセプターを含むことが疑われるサンプルをγ−ＨＲＧポリペプチド（例えば、ラベルされたγ−ＨＲＧ）と接触させ、結合が生じたかどうかを検出する工程を含む、ＥｒｂＢレセプターを検出する方法を提供する。この方法では、ガン患者（例えば、乳ガンまたは卵巣ガン）の予後を測定するためのアッセイが提供される。 γ−ＨＲＧは、他のヘレグリンに存在しない独特のＮ末端ドメイン（ＮＴＤ）を備えている。このＮＴＤとその断片（その上ＮＴＤまたはその断片をコードする核酸も）は、例えば、γ−ＨＲＧを検出および生成するための抗ＮＴＤ抗体、および核酸プローブのような、γ−ＨＲＧ−特異的試薬の生成に特に使用できると考えられる。従って、本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ：４のγ−ＨＲＧＮ-末端ドメイン（ＮＴＤ）の少なくとも３０アミノ酸の連続した配列を含む単離されたポリペプチド、あるいはＳＥＱＩＤＮＯ：４の完全なγ−ＨＲＧＮ-末端ドメイン（ＮＴＤ）のアミノ酸配列を含むポリペプチドを提供する。ＮＴＤ特異的抗体は、とりわけ、γ−ＨＲＧを含むことが疑われるサンプルとその抗体（任意にラベルされる）とを接触させ、結合が生じたかどうかを検出する工程を含むγ−ＨＲＧを検出する方法において用いられても良い。また、この抗体は、γ−ＨＲＧを含む混合物を、抗体が結合する固相上を通過させ、γ−ＨＲＧを含む画分を回収する工程を含む、γ−ＨＲＧを精製する方法において使用されてもよい。 γ−ＨＲＧのＮＴＤをコードする核酸は、テストサンプル（例えば、ガンを有する、あるいはガンに罹りやすいことが疑われる哺乳動物に由来の）中のγ−ＨＲＧをコードする核酸分子の存在を検出するために使用されてもよく、テストサンプルと単離された核酸とを接触することを含み、かつ単離された核酸がテストサンプル中の核酸分子とハイブリダイズするか否かを調べることを含む。また、 γ−ＨＲＧのＮＴＤをコードする核酸は、γ−ＨＲＧに一致する実体配列を有する核酸を同定および単離するためにハイプリダイゼーションアッセイにおいて用いることもできる。さらなる実施態様において、このＮＴＤをコードする核酸は、テストサンプル中のγ−ＨＲＧをコードする核酸分子を増幅するためのポリメラーゼチェーン反応においてプライマーとして用いることもできる。また本発明は、in vitroまたはin vivoのいずれかでγ−ＨＲＧ生成および／または生物学的活性をブロックすることが望ましい方法に使用するためのγ−ＨＲＧ−特異的アンタゴニストを提供する。あるタイプのアンタゴニストは、γ− ＨＲＧのＮＴＤに特異的に結合する中和抗体である。別のタイプのアンタゴニストは、アンチセンス核酸分子であり、例えば、ＮＴＤをコードする核酸配列に相補的であり、ＭＤＡ−ＭＢ−１７５細胞によるγ−ＨＲＧポリペプチドの生成を減少しうる分子である。別の態様において、本発明は、γ−ＨＲＧをコードする単離された核酸分子（および単離されたアンチセンス核酸分子；上記参照）を提供する。例えば、核酸分子は、（ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１の完全なγ−ＨＲＧのコード領域のヌクレオチド配列を含む核酸；（ｂ）遺伝暗号の縮退の範囲内で（ａ）の配列に対応する核酸；および（ｃ）適度に厳密な条件下でＳＥＱＩＤＮＯ：２のヒトγ −ＨＲＧのＮ末端ドメイン（ＮＴＤ）をコードするＤＮＡに相補的なＤＮＡにハイブリダイズし、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のヒトγ−ＨＲＧのエフェクター機能を有するポリペプチドをコードする核酸からなる群から選択されても良い。単離された核酸分子は、任意に、操作により連結されたプロモーターをさらに含む。他の実施態様では、本発明は、核酸分子（例えば、ベクターを用いて形質転換された宿主細胞によって認識されたコントロール配列に操作により連結された核酸分子を含む発現ベクター）；核酸分子を含む宿主細胞：および宿主細胞を培養し、かつ細胞培養からγ−ＨＲＧを回収する工程を含むγ−ＨＲＧの生成を果たすためにγ−ＨＲＧをコードする核酸分子を用いる方法を提供する。また、単離された核酸は、in vivoまたはex vivo遺伝子治療において使用されても良い。形質転換された宿主細胞におけるγ−ＨＲＧの生成に代わるものとして、本発明は、（ａ）増幅可能な遺伝子と少なくとも約１５０塩基対の隣接配列を含む、内在性γ−ＨＲＧ遺伝子内またはそれに近接するＤＮＡ配列と相同である相同的ＤＮＡを用いて内在性γ−ＨＲＧ遺伝子を含む細胞を形質転換し、しかして組換えにより、この相同的ＤＮＡが細胞ゲノムに組み込まれ；（ｂ）増幅可能な遺伝子の増幅のために選定された条件下で細胞を培養し、それによってγ−ＨＲＧ遺伝子も増幅され；そしてその後（ｃ）細胞からγ−ＨＲＧを回収することを含む γ−ＨＲＧの生成方法を提供する。さらに本発明は、治療に有効な量のγ−ＨＲＧを哺乳動物に投与することを含む哺乳動物の処置方法を提供する。例えば、哺乳動物は神経学的または筋の疾患を患っていてもよい。逆に言えば、本発明は、治療に有効な量のγ−ＨＲＧアンタゴニストを哺乳動物に投与することを含む哺乳動物の処置方法を提供する。この後者の場合の哺乳動物は、γ−ＨＲＧレベル／生物学的活性の減少から利益を受けることができる者である（例えば、ガン）。本発明の上記または他の態様は、以下の詳細な記載を参酌することにより当業者にとって明らかなものとなるであろう。図面の簡単な説明図１は、γ−ＨＲＧのｃＤＮＡ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）および推測されるアミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）を図示する。疎水性領域に下線が付されている。ＥＧＦ様ドメインには陰が付され、ＥＧＦ様ドメインのシステイン残基が囲まれている。Ｎ連結グリコシル化部位は、核酸配列の上に（・）が付されている。図２は、異なるＨＲＧイソ型タンパク質の図式的な比較である。囲みは種々のＨＲＧイソ型タンパク質の主な構造モチーフを示す。γ−ＨＲＧの構造上の特徴は、ＨＲＧβ、ＳＭＤＦおよびＧＧＦと比較されている。ＥＧＦ様ドメイン（ＥＧＦ）はブラックボックスとして示されている。ジャクスタメンブレン(juxtame mbrane)（番号が付されている）、トランスメンブレン（ＴＭ）領域および細胞質ドメインが、別個の枠として記載されている。グリコシル化されたスペーサードメイン（Spacer domain）は、γ−ＨＲＧ、ＨＲＧβおよびＳＭＤＦにおけるＩｇ様ドメイン（Ig domain）とＥＧＦ様ドメインとを分ける。γ−ＨＲＧの特有のＮ末端配列に縞模様が付されている。ＨＲＧβ、ＳＭＤＦおよびＧＧＦのＮ末端領域は、分けて陰が付されている。ＧＧＦは、Ｎ末端領域にクリングル様モチーフ(kringle)およびシグナルペプチド配列（ＳＰ）を有する。図３は、未標識のγ−ＨＲＧと結合した¹²⁵Ｉ−ｒＨＲＧβ１_(177-244)の置換曲線である。ＥｒｂＢ３−またはＥｒｂＢ４−免疫付着因子が、¹²⁵Ｉ−ｒＨＲＧβ１_(177-244)（０．２３ｎＭ）および種々の量のγ−ＨＲＧとインキュベートされた。図４Ａおよび４Ｂは、ＭＤＡ−ＭＢ−１７５（図４Ａ）およびＳＫ−ＢＲ−３（図４Ｂ）細胞の増殖における２Ｃ４、４Ｄ５およびＥｒｂＢ４免疫付着因子の効果を示す。ＭＤＡ−ＭＢ−１７５およびＳＫ−ＢＲ−３細胞は、９６ウェルプレートにまかれ、２時間付着された。実験は、１％の血清を含む媒体中で行われた。抗ＥｒｂＢ２抗体、ＥｒｂＢ４免疫付着因子（Ｈ４−ＩｇＧ）または媒体のみが添加され、細胞が２時間３７℃でインキュベートされた。次いで、Ｈ４−ＩｇＧ効果を中和するためにｒＨＲＧβ１（１ｎＭ）または１００ｎＭのｒＨＲＧ β１、もしくは媒体のみが添加され、細胞が４日間インキュベートされた。単層が洗浄され、０．５％クリスタルバイオレットで染色／固定された。細胞増殖を調べるために、吸収を５４０ｎｍで測定した。図５は、実施例に同定されたγ−ＨＲＧイソ型タンパク質（クローン２０）の部分的アミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：１０）を伴うγ−ＨＲＧアミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）の配列である。図６Ａ−Ｃは、実施例で同定されたγ−ＨＲＧイソ型タンパク質（クローン２０）の部分的ヌクレオチド配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：１１）を伴うγ−ＨＲＧ核酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）の配列である。好ましい実施態様の詳細な説明Ｉ．定義一般的に、以下の語句または成句は、詳細な説明、実施例、およびクレームにおいて用いられた場合に、示された定義を有する。他に示さなければ、用語“ＥｒｂＢ”はここで用いられる場合に、いずれか一つまたはそれ以上の哺乳動物のＥｒｂＢレセプター（すなわち、ＥｒｂＢ１または表皮成長因子（ＥＧＦ）レセプター；ＥｒｂＢ２またはＨＥＲ２レセプター；ＥｒｂＢ３またはＨＥＲ３レセプター；ＥｒｂＢ４またはＨＥＲ４レセプター；および今後同定されるべきこのクラスＩチロシンキナーゼファミリーの別のメンバー）を指し、かつ、“ｅｒｂＢ”は、これらのレセプターをコードする哺乳動物のＥｒｂＢ遺伝子を指す。 “γ−ＨＲＧ”（または“ガンマ−ヘレグリン”）は、ＳＥＱＩＤＮＯ：２の天然配列γ−ＨＲＧの少なくとも一つの生物学的特性（以下に定義）を有するあらゆるポリペプチド配列であるとここに定義される。この定義は、ヒトＭＤＡ−ＭＢ−１７５細胞のような天然γ−ＨＲＧ源もしくは他の動物種のような別の起源から単離されたポリペプチドだけでなく、組換え又は合成方法によって調製されたポリペプチドも含む。それは、機能的誘導体、対立変異体、天然に生じるイソ型タンパク質およびその類似体を含む種々の形態をも含む。時として、γ− ＨＲＧは、哺乳動物から単離された内在性γ−ＨＲＧポリペプチドと称する“天然γ−ＨＲＧ”である。γ−ＨＲＧは、天然γ−ＨＲＧ（例えば図１に示されたヒトγ−ＨＲＧ）と同じアミノ酸配列を備える限りにおいて、“天然配列γ−ＨＲＧ”とすることもできる。しかしながら、“天然配列γ−ＨＲＧ”は、組換え又は合成手段によって生成されるポリペプチドを含む。“完全なγ−ＨＲＧ”は、細胞から放出された可溶性または分泌されたγ−ＨＲＧである（すなわち、アミノ末端配列を欠く）。γ−ＨＲＧ“イソ型タンパク質”は、γ−ＨＲＧの少なくとも一部のＮ末端ドメイン（以下参照）を含む天然に生じるポリペプチドである。γ−ＨＲＧイソ型タンパク質の例は、以下の実施例に記載されている。任意に、γ−ＨＲＧは、天然グリコシル化と無関係である。“天然グリコシル化”は、天然γ−ＨＲＧが誘導される哺乳動物細胞において生成される際に、天然γ−ＨＲＧに共有結合している炭水化物分子を指す。従って、非ヒト細胞において生成されたヒトγ−ＨＲＧは、例えば天然グリコシル化と関係がないように記載することができる。時として、γ−ＨＲＧは、グリコシル化とは何ら関係がない（例えば、原核生物において組み換えにより生成された結果）。 γ−ＨＲＧは、このタンパク質を上述したヘレグリンポリペプチドから区別する特有のアミノ末端ドメインを有する。これは、ここでは“Ｎ末端ドメイン”または“ＮＴＤ”と称される（すなわち、図１の約残基１から約残基５６０；ＳＥＱＩＤＮＯ：３の核酸配列によってコードされたＳＥＱＩＤＮＯ：４）。 “完全な”ＮＴＤは、細胞表面から放出されたＮＴＤである。しかしながら、表現“ＮＴＤ”は、図１に記載されたＮＴＤの機能的均等物を含む。用語“γ−ＨＲＧ変異体”は、図１のγ−ＨＲＧ配列のＮまたはＣ末端、もしくは内部に一つ以上のアミノ酸残基が付加され；一つ以上のアミノ酸残基が削除され、かつ任意に一つ以上のアミノ酸残基で置換されたγ−ＨＲＧポリペプチド；並びに一つのアミノ酸残基が共有結合的に修飾されて得られた生成物が非自然発生的なアミノ酸を備えている上記ポリペプチドの誘導体を含む。通常は、生物学的に活性なγ−ＨＲＧ変異体は、図１のアミノ酸配列に“実質的に相同”であり、それゆえ一般的には図１に示されたヒトγ−ＨＲＧと少なくとも約７０％、好ましくは少なくとも約７５％、さらに好ましくは少なくとも約８０％、そしてさらに好ましくは少なくとも約８５％、さらに好ましくは少なくとも約９０％、最も好ましくは少なくとも約９５％のアミノ酸配列の同一性を備えるアミノ酸配列を備えるだろう。 γ−ＨＲＧ変異体のあるタイプは、“γ−ＨＲＧフラグメント”であり、一つ以上のアミノ酸残基または炭水化物単位が削除された天然に生じる全長のγ−ＨＲＧ配列の一部である。アミノ酸残基の削除は、Ｎ末端またはＣ末端のいずれかもしくは内部を含むポリペプチドのどこに生じても良い。フラグメントは通常、 γ−ＨＲＧと共通する少なくとも一つの生物学的特徴を有する。γ−ＨＲＧフラグメントは、γ−ＨＲＧのＮＴＤの少なくとも２０、３０、４０、５０または１００アミノ酸残基の連続した配列を備えるであろう。好ましいフラグメントは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のヒトγ−ＨＲＧの配列に同一な約３０−１５０残基を備えている。別のタイプのγ−ＨＲＧ変異体は、“キメラγ−ＨＲＧ”であり、この用語は、異種のポリペプチドに融合または結合された全長のγ−ＨＲＧまたはその断片を含むポリペプチドを含む。キメラは、通常は、γ−ＨＲＧと共通する少なくとも一つの生物学的特徴を有するだろう。キメラγ−ＨＲＧの例は、免疫付着因子およびエピトープのタグが付されたγ−ＨＲＧを含む。他の実施態様において、異種のポリペプチドはチオレドキシン、サルベージレセプター結合エピトープ、細胞毒性ポリペプチドまたは酵素である（例えば、プロドラッグを活性試薬に変えるもの）。用語“免疫付着因子”は、表現“γ−ＨＲＧ−イムノグロブリンキメラ”と交換可能に用いられ、γ−ＨＲＧの生物学的に活性な部位とイムノグロブリン配列とを組み合わせるキメラ分子を指す。イムノグロブリン配列は、好ましくは、しかしながら必須ではないが、イムノグロブリン定常ドメインである。本発明のキメラのイムノグロプリン分子は、ＩｇＧ₁、ＩｇＧ₂、ＩｇＧ₃またはＩｇＧ₄サブタイプ、ＩｇＡ、ＩｇＥ、ＩｇＤまたはＩｇＭから得ても良いが、好ましくはＩｇＧ₁またはＩｇＧ₃である。用語“エピトープのタグが付された”は、ここで用いられた場合には、“タグポリペプチド”に融合した完全なγ−ＨＲＧまたはそのフラグメントを含むキメラポリペプチドを指す。タグポリペプチドは、それに対して抗体が形成されるエピトープを提供するのに十分であり、さらにγ−ＨＲＧの活性と抵触しないように十分短い残基を有する。タグポリペプチドは、それに対する抗体が他のエピトープと実質的に交差反応しないように非常に独特であることが好ましい。適切なタグポリペプチドは、一般的に少なくとも６アミノ酸残基、そして通常は約８− ５０アミノ酸残基を有する（好ましくは約９−３０残基）。ここで用いられる場合、用語“サルベージレセプター結合エピトープ”は、ＩｇＧ分子のin vivo血清半減期を増大する原因であるＩｇＧ分子（例えば、ＩｇＧ₁、ＩｇＧ₂、ＩｇＧ₃またはＩｇＧ₄）のＦｃ領域のエピトープを指す。ここで用いられる場合、用語“細胞毒性試薬”は、細胞の機能を抑制または阻害および／または細胞の破壊を引き起こす物質を指す。この用語は、放射性同位元素（例えばＩ、Ｙ、Ｐｒ）、化学療法剤、並びに細菌、真菌、植物または動物由来の酵素的活性毒素またはそのフラグメントのような毒素を含むことを意図する。また、この用語は、国際公開第９４／２２８６７号に記載されたバイサイクリックアンサミシン(bicyclic ansamycins)；ＥＰ６００８３２に開示された１，２−ビス（アリールアミノ）安息香酸誘導体；ＥＰ６００８３１に開示された６，７−ジアミノ−フタラジン−１−オン(6,7-diamino-phthalazin-1-one)誘導体；ＥＰ５１６５９８に開示された４，５−ビス（アリールアミノ）−フタリミド(4,5-bis(arylamino)-phthalimide)誘導体；またはＳＨ２−含有基質タンパク質に対するチロシンキナーゼの結合を阻害するペプチド（例えば、国際公開第９４／０７９１３号参照）のようなガン遺伝子生成物／チロシンキナーゼ阻害因子を含む。 “化学療法剤”は、ガンの処置に使用できる化学的化合物である。化学療法剤の例は、アドリアマイシン、ドキソルビシン、５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）、シトシンアラビノシド（Ara-C）、シクロホスファミド、チオテパ、バスルファン、シトキシン、タキソール、メトトレキサート、シスプラチン、メルファラン、ビンプラスチン、ブレオマイシン、エトポシド、イホスファミド、マイトマイシンＣ、マイトキサントロン、ビンクリスチン、ＶＰ−１６、ビノレルビン、カルボブラチン、テニポシド、ダウノマイシン、カルミノマイシン、アミノプテリン、ダクチノマイシン、マイトマイシン、ニコチンアミド、エスペラミシン（米国特許第４６７５１８７号参照）、メルファランおよび他の関連するナイトロジェンマスタード、並びに内分泌治療（ジエチルスチルベストロール（ＤＥＳ）、タモキシフェン、ＬＨＲＨ拮抗薬、プロゲスチン、抗プロゲスチン等）を含む。本願で用いられる用語“プロドラッグ”は、親薬剤と比較して腫瘍細胞に対して毒性が少なく、酵素学的に活性化され得るかより活性な親形態に変換され得る、薬学的に活性な物質の前駆体または誘導体を指す。本発明のブロドラッグは、より活性な細胞毒性のない薬剤に変換されうる、ホスファート含有プロドラッグ、チオホスファート含有プロドラッグ、スルファート含有プロドラッグ、ペプチド含有プロドラッグ、Ｄアミノ酸修飾プロドラッグ、グリコシル化プロドラッグ、β−ラクタム−含有プロドラッグ、任意に置換されたフェノキシアセトアミド含有プロドラッグまたは任意に置換されたフェニルアセトアミド含有プロドラッグ、５−フルオロシトシンおよび他の５−フルオロウリジンプロドラッグを含むが、これらに限定されない。本発明で使用するためのプロドラッグ形態に誘導され得る細胞毒性薬剤の例は、上記化学療法剤を含むが、これらに限定されない。 “単離されたγ−ＨＲＧ”、“高度に精製されたγ−ＨＲＧ”および“実質的に均質なγ−ＨＲＧ”は交換可能に用いられ、γ−ＨＲＧ源から精製されるか、組換え又は合成方法によって調製され、かつ、（ａ）スピニングキャップ配列決定装置、または市販の、あるいは本願出願時に公開されている方法によって修飾された、最も商業的に利用できるアミノ酸配列決定装置を用いることによってＮ末端または内在性アミノ酸配列の少なくとも１５、好ましくは２０アミノ酸残基を得るように、あるいは（ｂ）クーマシーブルー、あるいは好ましくは銀染色を用いて非還元または還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥによって均質（homogeneity ）であるように、他のペプチドまたはタンパク質を十分に含まないγ−ＨＲＧを意味する。ここで均質とは、約５％未満の他の起源のタンパクの混入を意味する。 “生物学的特徴”は、“γ−ＨＲＧ”と関連して用いられた場合に、ＳＥＱＩＤＮＯ：２の天然配列γ−ＨＲＧによって直接または間接的に引き起こされるかあるいは行われるエフェクターまたは抗原性の機能または活性を備えることを意味する（その天然、または変性したコンホメーションのいずれにせよ）。 “エフェクター機能”は、レセプター活性化（例えば、ＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３および／またはＥｒｂＢ４レセプターの活性化）；一以上のこれらのレセプターを有する細胞（例えば、ＳＫ−ＢＲ−３細胞、Schwann細胞、肝細胞、グリア芽細胞(glioblastoma cells)、上皮細胞、筋細胞、星状細胞および／または稀突起膠細胞）の生存、分化および／または増殖の増強：レセプター結合（例えば、ＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３および／またはＥｒｂＢ４レセプター）；分裂促進活性；細胞膜にイオンチャネル（例えばＮａ⁺チャネル）の形成誘発；神経筋接合部におけるアセチルコリンレセプター合成の誘発；ニューロンと、筋、神経または腺細胞との間のシナプス接合の形成の増幅；エストロゲンレセプターのダウンレギュレーション；および細胞インターナリゼーション（恐らく核局在化と関係するものであろう）を含む。天然配列γ−ＨＲＧの根本的なエフェクター機能は、以下の実施例に証明されているもの、すなわちＥｒｂＢ３および／またはＥｒｂＢ４レセプターに結合する能力；ＥｒｂＢレセプター、例えばＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ３および／またはＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ４レセプター複合体を活性化する能力（チロシンリン酸化アッセイで調べられる）；および／または細胞増殖を誘発する能力である。 “抗原性機能”は、天然配列γ−ＨＲＧの特有のＮ末端ドメイン（ＮＴＤ）に対して生じた抗体と交差反応しうるエピトープまたは抗原性部位を具備することを意味し、このような抗体は他の既知のヘレグリンポリペプチドとは意味のある交差反応をしない。γ−ＨＲＧポリペプチドの主要な抗原性機能は、γ−ＨＲＧのＮＴＤに特異的に結合する抗体に、少なくとも約１０⁶Ｌ／モルの親和性で結合することである。通常は、このポリペプチドは少なくとも約１０⁷Ｌ／モルの親和性で結合する。 “生物学的に活性”とは、“γ−ＨＲＧ”と共に用いられた場合には、天然配列γ−ＨＲＧのエフェクター機能を示しかつ具備し、さらに抗原性機能を有する（しかし必須ではない）γ−ＨＲＧポリペプチドを意味する。 “抗原的に活性な”γ−ＨＲＧは、γ−ＨＲＧの抗原性機能を有し、かつさらにエフェクター機能を有する（しかし必須ではない）ポリペプチドとして定義される。 γ−ＨＲＧ配列に関する“アミノ酸配列の同一性のパーセント”とは、ここでは、配列を直線化し、必要であれば最大のパーセントの配列同一性が得られるようにキャップを導入した後で、配列同一性の一部として伝統的な置換を考慮しないで、図１に記載された推定アミノ酸配列を有するγ−ＨＲＧ配列における残基と同一の候補配列中のアミノ酸残基のパーセントとして定義される。γ−ＨＲＧ配列にＮ末端、Ｃ末端または内部の、伸長、欠失または挿入のいずれも、配列の同一性または相同性に影響すると解釈されるべきではない。用語“ガン”および“ガン性”とは、制御できない細胞成長によって通常特徴付けされる哺乳動物における生理学上の状態を指し、記載する。ガンの例は、癌腫、リンパ腫、芽腫、肉腫、および白血病を含むが、これらに限定されない。このようなガンのより特定の例は、扁平上皮癌、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、胃ガン、膵臓ガン、グリオブラストーマ(glioblastoma)および神経線維腫症のようなグリア細胞腫瘍、頸部ガン、卵巣ガン、肝臓ガン、膀胱ガン、ヘパトーム、乳ガン、結腸ガン、結腸直腸ガン、子宮内膜ガン、唾液腺ガン、腎臓ガン、腎性のガン、前立腺ガン、外陰部のガン、甲状腺ガン、肝性のガン、および種々の種類の頭および首のガンを含む。 “疾患状態の測定”は、腫瘍性疾患、特に乳房、卵巣、胃、子宮内膜、唾液腺、肺、腎臓、結腸および膀胱のガンに対して、患者の生存および再発時間の尤度を測定する行為を指す。特に、γ−ＨＲＧは、癌患者から得られたガン性組織におけるＥｒｂＢ（例えば、ＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３またはＥｒｂＢ４であるが、通常はＥｒｂＢ２）の過剰発現を定量するために用いられる。これは、“ガン患者の処置の適切なコースの決定”としても関連する。例えば、ＥｒｂＢ２過剰発現によって特徴づけられる患者は、他の診断因子によって示唆されるより、より積極的な処置（例えば、化学−または放射線治療）を必要とするかもしれない。この語句は、in situにおいて高度の腺管癌患者を診断することを含む。例えば、Disisら，Cancer Research，54:16-20(1994)。用語“サンプル”は、患者の組織、体液、または細胞を指す。通常は、組織または細胞は患者から除去されるが、in vivo診断も考えられる。固体状の腫瘍の場合、組織サンプルは、外科的に除去された腫瘍から得られ、通常の技術によってテストするために調製される。リンパ種と白血病の場合には、リンパ球、白血病性細胞、またはリンパ組織が得られ、適切に調製されるだろう。尿、涙、血清、脳脊髄液、糞便、痰、細胞抽出物等を含む患者の他のサンプルも、特定の腫瘍には用いられるだろう。表現“ラベルされた”とは、ここで用いられる場合には、検出可能な化合物または組成物と直接または間接的に結合した分子（例えば、γ−ＨＲＧまたは抗γ −ＨＲＧ抗体）を指す。ラベルは、それ自身によって検出され（例えば、ラジオアイソトープラベルまたは蛍光ラベル）、もしくは、酵素ラベルの場合には、検出可能な基質化合物または組成物の化学変化を触媒し得る。 “固相”により、関心のある試薬（例えば、γ−ＨＲＧまたはそれに対する抗体）が付着できる非水性マトリックスが意味される。ここに含まれた固相の例は、部分的または完全にガラス（例えば、制御された孔ガラス）、ポリサッカリド（例えばアガロース）、ポリアクリルアミド、ポリスチレン、ポリビニルアルコールおよびシリコーンから形成されたものを含む。ある実施態様では、文脈に基づいて、固相はアッセイプレートのウェルを含み、別の場合には、精製カラム（例えば、親和性クロマトグラフィーカラム）である。この用語は、米国特許第４２７５１４９号に記載されたような、分離した粒子の不連続固相(a discontinuo us solid phase)をも含む。語句“ＥｒｂＢレセプターを活性化”は、ＥｒｂＢレセプターの細胞内キナーゼドメインにチロシン残基をリン酸化することを引き起こす作用を指す。一般的に、これは、一つ以上のレセプターのキナーゼドメインを活性化し、それによって一つ以上のレセプターのチロシン残基のリン酸化、および／または付加基質ポリペプチドにおけるチロシン残基のリン酸化を引き起こす、二つ以上のＥｒｂＢレセプターのレセプター複合体（例えば、ＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ３またはＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ４複合体）に対するγ−ＨＲＧの結合を含む。ＥｒｂＢレセプターリン酸化は、以下に記載されたチロシンリン酸化アッセイを用いて定量されうる。表現“細胞の生存を増幅”とは、in vitroまたはin vivoのいずれかにおいて、γ−ＨＲＧにさらされていない未処理の細胞と比較して、細胞の生存期間が増加する作用を指す。語句“細胞の増殖を増幅”は、in vitroまたはin vivoのいずれかにおいて、未処理の細胞と比較して、細胞の成長および／または繁殖の程度を増大する工程を含む。細胞培養における細胞増殖における増大は、γ−ＨＲＧにさらす前後の細胞総数を計測することによって検出されうる（以下の実施例を参照）。増殖の程度は、集密性の程度の顕微鏡的試験を介して定量されうる。細胞増殖は、細胞による³Ｈの取り込みを測定することによっても定量されうる。 “細胞の分化の増幅”により、元の細胞とは異なる一つ以上の特徴または機能の獲得または所有の程度が増大する作用が意味される（すなわち、細胞の特殊化）。これは、細胞の表現型における変化をスクリーニングすることによって検出されうる（例えば、細胞における形態の変化を同定）。 “グリア細胞”は、中枢神経系および末梢神経系から誘導され、乏突起膠細胞、星状細胞、上衣細胞または小グリア細胞、並びに神経節の衛星細胞および末梢神経線維の周りの神経線維鞘細胞またはSchwann細胞から選択されうる。 “筋細胞”は、骨格、心臓または平滑筋組織細胞を含む。この用語は、より特殊化された筋細胞に分化する細胞を含む（例えば、筋芽細胞）。 “単離されたγ−ＨＲＧ核酸”は、通常は天然源において関係する少なくとも一つの混入する起源の核酸を含まず、好ましくは他の哺乳動物のＲＮＡまたはＤＮＡを実質的に含まない。語句“通常関連する少なくとも一つの混入する起源の核酸を含まない”は、核酸が起源または天然細胞に存在するが、異なる染色体の位置に存在する、あるいは起源細胞に通常見出されない核酸配列が隣接している場合を含む。単離されたγ−ＨＲＧ核酸の例は、図１に示されたヒトγ−ＨＲＧと少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８０％、さらに好ましくは少なくとも８５％、さらに好ましくは９０％、最も好ましくは９５％の配列同一性を有する、生物学的に活性なγ−ＨＲＧをコードするＲＮＡまたはＤＮＡである。 “厳密な条件”は、（ａ）洗浄のために低イオン強度および高温度、例えば５０℃で、０．０１５ＭＮａＣｌ／０．００１５Ｍクエン酸ナトリウム／０．１％ＮａＤｏｄＳＯ₄（ＳＤＳ）を用いる、または（ｂ）ハイブリダイゼーションの間にホルムアミドのような変性剤を用いる、例えば５０％（vol/vol）のホルムアミドと、０．１％ウシ血清アルブミン／０．１％フィコール／０．１％ポリビニルピロリドン／５０ｍＭのリン酸ナトリウムバッファー、ｐＨ６．５、７５０ｍＭＮａＣｌ、７５ｍＭクエン酸ナトリウム、４２℃を用いるものである。他の例は、０．２ｘＳＳＣおよび０．１％ＳＤＳ中で４２℃において洗浄することを伴って、４２℃において５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ（０．７５ＭＮａＣｌ、０．０７５Ｍクエン酸ナトリウム）、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）、０．１％ピロリン酸ナトリウム、５ｘ Denhardt'sナトリウム、超音波処理されたサケ精液ＤＮＡ（５０μｇ／ｍＬ）、０．１％ＳＤＳ、および１０％デキストランスルファートの使用である。 “適度に厳密な条件”は、Sambrookら,Molecular Cloning:A Laboratory Manu al(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press，1989)に記載され、上記より厳密性の低い洗浄溶液およびハイブリダイゼーション条件（例えば、温度、イオン強度および％ＳＤＳ）の使用を含む。適度に厳密な条件の例は、約３７−５０℃で１ｘＳＳＣでフィルターを洗浄した後で、２０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ（１５０ｍＭＮａＣｌ，１５ｍＭクエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５ｘ Denhardt's溶液、１０％デキストランスルファートおよび２０ｍｇ／ｍＬの変性され剪断されたサケ精液ＤＮＡを含む溶渣中で３７℃で一夜インキュベーションするような条件である。当業者は、プローブ長等のファクターを適応させるのに必要なものとして、温度、イオン強度等の調節方法を認識するだろう。表現“コントロール配列”は、特定の宿主生命体における操作により連結されたコード配列の発現に必要なＤＮＡ配列を指す。原核生物に適したコントロール配列は、例えば、プロモーター、任意にオペレーター配列、並びにリボソーム結合部位を含む。真核細胞は、プロモーター、ポリアデニル化シグナルおよびエンハンサーを利用することが知られている。核酸は、別の核酸配列と機能的に関連するように配置された場合に“操作により連結”される。例えば、ポリペプチドの分泌に関係するプレプロテインとして発現されるのであれば、プリシークエンス(presequence)または分泌リーダー(se cretory leader)のＤＮＡが、ポリペプチドのＤＮＡに操作により連結され；配列の転写に影響を与えるなら、プロモーターまたはエンハンサーがコード配列に操作により連結され、翻訳を容易にするように配置されるのであれば、コード配列にリボソーム結合部位が操作により連結される。一般的に、“操作により連結”は、連結されたＤＮＡ配列が連続であり、分泌リーダーの場合には、連続かつ読み枠内であることを意味する。しかしながら、エンハンサーは連続である必要がない。連結は、都合の良い制限部位におけるリゲーションによって行われる。もしそのような部位が存在しないのなら、合成オリゴヌクレオチドアダプターまたはリンカーが、通常の方法に従って用いられる。 γ−ＨＲＧ“アンタゴニスト”は、γ−ＨＲＧエフェクター機能を妨げ、妨害する分子である（例えば、γ−ＨＲＧによってＥｒｂＢレセプターの結合および／または活性化を妨げ、妨害する分子）。このような分子は、例えば、ここに記載されたチロシンリン酸化アッセイにおいてγ−ＨＲＧによるＥｒｂＢレセプター活性化の競合阻害する能力に関して選別されうる。好ましいアンタゴニストは、他のヘレグリンポリペプチドとＥｒｂＢレセプターとの相互作用を実質的に妨害しないものである。γ−ＨＲＧアンタゴニストの例は、γ−ＨＲＧに対する中和抗体およびγ−ＨＲＧ遺伝子に対するアンチセンスポリヌクレオチドを含む。用語“アンチセンスオリゴデオキシヌクレオチド”および“アンチセンスオリゴ”は、γ−ＨＲＧｍＲＮＡまたはＤＮＡの領域とハイブリダイズし、それによってin vitroまたはin vivoでγ−ＨＲＧポリペプチドの生成を妨げまたは低減するポリヌクレオチドを指す。好ましいアンチセンスポリヌクレオチドは、図１のγ−ＨＲＧＮＴＤコード領域の少なくとも一部に相補的なものである。この用語は、“修飾された”ポリヌクレオチドを含み、その例がここに記載されている。用語“抗体”は、最も広い意味で用いられ、ポリエピトピック特異性を備えた単一の抗γ−ＨＲＧモノクローナル抗体および抗γ−ＨＲＧ抗体組成物を特にカバーする（中和および非中和抗体を含む）。ここで特に興味のある抗体は、上述した技術背景に記載されたもののような、他の既知のヘレグリンタンパク質と有意味に交差反応しないものであり、従ってγ−ＨＲＧに“特異的に結合する”ものである。このため、γ−ＨＲＧの特有のＮＴＤに結合する抗体は、特に使用できる。このような実施態様において、非γ−ＨＲＧタンパクに対する抗体の結合の程度は、例えば放射線免疫沈降法（ＲＩＡ）によって調べて１０％未満であろう。ここで用いられるように、用語“モノクローナル抗体”は、実質的に均質な抗体の集団から得られた抗体を指し、すなわち少数存在するかもしれない可能な自然発生変異を除いて、個々の抗体が同一である。モノクローナル抗体は、高度に特異的であり、単一の抗原部位に対して向けられている。さらに、通常は異なる決定基（エピトープ）に対して向けられた異なる抗体を含む通常の（ポリクローナル）抗体調製物とは対称的に、各モノクローナル抗体は、抗原の単一の決定基に向けられている。ここで、モノクローナル抗体は、所望の生物学的活性を示す限り、抗γ−ＨＲＧ抗体の可変（高頻度可変領域を含む）ドメインを定常ドメインと、軽鎖を重鎖と、あるいはある種の鎖を他の種の鎖と繋ぎ合わせることにより生成されるハイブリッドおよび組換え抗体、元の種あるいはイムノグロブリンクラスまたはサブクラスに関わらず、異種タンパクとの融合物、並びに抗体フラグメント（例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ）₂、およびＦｖ）を含む。（例えば、米国特許第４８１６５６７号およびMage & Lamoyi，Monoclonal Antibody Production Techniques a nd Applications，pp.79-97(Marcel Dekker，Inc.)New York(1987)）。しかして、修飾語句“モノクローナル”は、抗体の実質的に均質な集団から得られる抗体の特徴を示し、特定の方法による抗体の生成が必要であるとは解釈されない。例えば、本発明に従って用いられるモノクローナル抗体は、Kohler & M ilstein，Nature 256:495(1975)によって最初に記載されたハイブリドーマ法によって調製され、組換えＤＮＡ法によって調製される（米国特許第４８１６５６７号）。“モノクローナル抗体”は、例えばMcCaffertyら，Nature 348:552-554 (1990)に記載された技術を用いて調製されたファージライブラリーからも単離される。非ヒト（例えばマウスの）抗体の“ヒューマナイズされた(humanized)”形態は、非ヒト免疫グロブリンから誘導された最小配列を含む、特異的キメライムノグロブリン、イムノグロブリン鎖またはこれらの断片（Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’ 、Ｆ（ａｂ）₂または抗体の他の抗原結合配列）である。たいていの場合は、ヒューマナイズされた抗体は、受け入れ側の抗体の相補的決定領域（ＣＤＲ）の残基が、所望の特異性、親和性および能力を備えたマウス、ラットまたはウサギのような非ヒト種のＣＤＲ（ドナー抗体）の残基で置換されるヒトイムノグロブリン（受け入れ側の抗体）である。ある場合には、ヒトイムノグロブリンのＦｖフレームワーク領域（ＦＲ）残基は、対応する非ヒトＦＲ残基によって置換される。さらに、ヒューマナイズされた抗体は、受け入れ側の抗体もしくは導入されたＣＤＲまたはＦＲ配列に見出される残基を含んでも良い。これらの修飾は、抗体の性能をさらに洗練および最適化するようになされる。一般的に、ヒューマナイズされた抗体は、非ヒトイムノグロブリンのＣＤＲ領域に対応するＣＤＲ領域の全てまたは実質的に全て、並びにＦＲ領域の全てまたは実質的に全てがヒトイムノグロブリン共通配列のものである、少なくとも一つ、通常は二つの種々のドメインの実質的に全てを含むだろう。また、ヒューマナイズされた抗体は、イムノグロブリン定常領域（Ｆｃ）の少なくとも一部、通常はヒトイムノグロブリンのものを最適に含むだろう。 “中和抗体”によって、天然配列γ−ＨＲＧのエフェクター機能をブロックまたは実質的に低減し得る、ここに定義されたような抗体分子が意味される。例えば、中和抗体は、ここに記載されたチロシンリン酸化アッセイにおいてＥｒｂＢレセプターを活性化するγ−ＨＲＧの能力を阻害または低減しうる。また、中和抗体は、ここに記載された細胞増殖アッセイにおいてγ−ＨＲＧの分裂促進活性を遮断してもよい。 “処置”は、治療処置および予防処置の両方を指す。処置の必要な者は、既に疾患を有する者と、疾患に係る傾向を有する者または疾患が予防されるべき者を含む。処置の目的となる“哺乳動物”は、ヒト、家庭または農場の動物、および動物園の、スポーツの、またはペットの動物、例えばヒツジ、イヌ、ウマ、ネコ、ウシ等を含む、哺乳動物として分類されるあらゆる動物を指す。好ましくは、ここで言う哺乳動物とはヒトである。 “薬学的に許容できる”キャリアー、賦形剤または安定化剤は、使用される投与量および濃度において、それに曝される細胞または哺乳動物に対して無毒なものである。生理学的に許容できるキャリアーは、多くの場合、水性のｐＨ緩衝溶液である。生理学的に許容できるキャリアーの例は、リン酸、クエン酸、および他の有機酸のようなバッファー；アスコルビン酸を含む酸化防止剤；低分子重量（約１０残基未満）ポリペプチド；血清アルブミン、ゼラチンまたはイムノグロブリンのようなタンパク質；ポリビニルピロリドンのような親水性ポリマー；グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニンまたはリシンのようなアミノ酸；モノサッカリド、ジサッカリド、およびグルコース、マンノースまたはデキストリンを含む他の炭水化物；ＥＤＴＡのようなキレート剤；マンニトールまたはソルビトールのような糖アルコール；ナトリウムのような塩形成カウンテリオン (counterions)；および／またはTween^TM、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、およびPluronics^TMのような非イオン性界面活性剤を含む。 “リポソーム”は、哺乳動物に薬剤を輸送するのに使用される、種々のタイプの脂質、リン脂質および／または界面活性剤からなる小さいベシクルである。リポソームの成分は、通常は、生物学的膜の脂質編成に類似した、二重層形態に編成される。ＩＩ．発明の実施の形態１．γ−ＨＲＧポリペプチドと核酸ヒトγ−ＨＲＧのＤＮＡおよびアミノ酸配列が図１に記載されている。ここに記載された新規のγ−ＨＲＧは、そのＤＮＡが適度に厳密ないし厳密な条件下で、図１の特有のＮ末端ドメイン（ＮＴＤ）におけるＤＮＡ（またはそのフラグメント）にハイブリダイズする、適切な配列同一性を有する成長因子のファミリーのメンバーであるかもしれないことが考えられる。このようなγ−ＨＲＧ変異体の例は図５に示されたイソ型タンパク質である。しかして、本発明のさらなる態様は、γ−ＨＲＧのＮＴＤをコードするＤＮＡと適度に厳密ないし厳密な条件下でハイブリダイズするＤＮＡを含む。このような天然配列γ−ＨＲＧ分子を単離し種々のγ−ＨＲＧを調製する技術を後述する。 γ−ＨＲＧの調製に適した技術は、当該技術分野でよく知られ、ポリペプチドの内在性の起源からγ−ＨＲＧを単離すること、ペプチド合成（ペプチド合成装置を用いる）および組換え技術（またはこれらの技術のあらゆる組み合わせ）を含む。γ−ＨＲＧの調製の好ましい技術は、以下に記載された組換え技術である。γ−ＨＲＧの組換え生成のためのベクター、宿主細胞等に関する米国特許第５３６４９３４号も参照。 γ−ＨＲＧポリペプチドを生成するために、γ−ＨＲＧをコードするＤＮＡが単離され（例えば、以下の実施例１に記載されたようにｃＤＮＡライブラリーから）、かつ適切なベクターにおいて他の核酸に操作により連結される。このようにして単離されたＤＮＡは、選択された発現システムに基づいて発現を増幅するように変異されても良い。例えば、転写されたｍＲＮＡにおける５’ステムおよびループ構造を避ける、および／または選択された宿主によってさらに容易に転写されるコドン（例えば、E.coliまたは酵母の発現によく知られた好ましいコドン）を具備するように、ヌクレオチド置換がなされてもよい。ベクターは、宿主細胞内で複製することができ、クローニングに用いることができ（すなわち、使用可能な量の核酸を生成すること）、および／またはγ−ＨＲＧの発現を命令するプラスミドまたは他のＤＮＡである。ベクターの設計は、中でも、ベクターについて意図される使用および宿主細胞に依存する。通常、ベクター成分は、Ｎ末端シグナル配列、複製起点、一つ以上のマーカー遺伝子、エンハンサー成分、プロモーター、オペレーター配列、リボソーム結合部位および転写終結配列のーつ以上を含むが、これらに限定されるわけではない。 γ−ＨＲＧの哺乳動物細胞培養生成のために特に使用できるプラスミドは、ｐＲＫ５（欧州特許第３０７２４７号）およびその誘導体、もしくはｐＳＶＩ６Ｂ（１９９１年６月１３日に公開された国際公開第９１／０８２９１）である。他に使用できるベクターは、国際公開第９６／０４３９１に開示されている。宿主細胞は、通常はベクターで形質転換される。ここで、ベクターのクローニングまたは発現に適した宿主細胞は、原核宿主細胞（例えば、E.coll、Bacillusの株、 Pseudomonasおよび他の細菌）、酵母および他の真核性微生物、並びに高度の真核生物の細胞（チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞および他の哺乳動物の細胞）である。細胞は、生存している動物に存在してもよい（例えば、ウシ、ヤギまたはヒツジ）。昆虫細胞を使用してもよい。クローニングおよび発現方法は、当該技術分野で周知である。γ−ＨＲＧの発現を得るために、発現ベクターが、形質転換またはトランスフェクションによって宿主細胞中に導入され、得られた組換え宿主細胞が、プロモーターを誘発し、組換え細胞を選択し、もしくはγ− ＨＲＧＤＮＡを増幅するのに適合するように修飾された通常の栄養培地中で培養される。一般的に、in vitro哺乳動物細胞培養の生産性を最大化するための原理、プロトコルおよび実践的な技術は、Mammalian Cell Biotechnology:a Pract ical Approach，M.Butler，ed.(IRL Press，1991)に見出される。用語“形質転換”および“トランスフェクション”は、ここでは交換可能に用いられ、細胞中にＤＮＡを導入する方法を指す。形質転換またはトランスフェクション後に、γ−ＨＲＧＤＮＡが宿主細胞ゲノムに組み込まれるか、染色体外成分として存在してもよい。原核細胞または実質的な細胞壁構造を有する細胞が宿主として用いられる場合には、ＤＮＡを用いた細胞のトランスフェクションの好ましい方法は、Cohenら,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.69:2110-2114(1972)に記載されたカルシウム処理方法、またはChungら,Nuc.Acids.Res.16:3580(1988)のポリエチレングリコール法である。酵母が宿主として用いられる場合には、通常は、トランスフェクションは、Hinnen,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,75:1929-193 3(1978)によって教示されるように、ポリエチレングリコールを用いて行われる。哺乳動物細胞が宿主細胞として用いられる場合には、トランスフェクションは、通常、リン酸カルシウム沈降法、Grahamら,Virology 52:546(1978),Gormanら, DNA and Protein Eng.Tech.2:3-10(1990)によって行われる。しかしながら、核注入、電気穿孔法、プロトプラスト融合のような、原核性及び真核性細胞にＤＮＡを導入するための他の既知の方法も、本発明における使用に適している。本発明において特に使用できるのは、γ−ＨＲＧをコードするＤＮＡの哺乳動物細胞における過渡的発現(transient expression)を提供する発現ベクターである。一般的に、過渡的発現は、宿主細胞が、発現ベクターの多くのコピーを蓄積し、発現ベクターによってコードされた高レベルの所望のポリペプチドを合成するような、宿主細胞中で効果的に複製できる発現ベクターの使用を含む。適切な発現ベクターと宿主細胞を含む過渡的発現システムは、クローン化されたＤＮＡによってコードされたポリペプチドの便利な陽性の同定、並びに所望の生物学的または生理学的特性に関して前記ポリペプチドを早くスクリーニングすることを考慮する。本発明のγ−ＨＲＧが、１９９１年５月１６日に公開された国際公開第９１／０６６６７に示されているように、相同的組換えによって調製されうることがさらに考慮される。手短に言えば、内在性γ−ＨＲＧ遺伝子を有する細胞を相同的ＤＮＡを用いて形質転換することを含み、この相同的ＤＮＡは、（ａ）増幅可能な遺伝子（例えば、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ））、および（ｂ）γ−ＨＲＧをコードする遺伝子の内部または近くに存在する細胞ゲノム中のヌクレオチド配列と相同的な、少なくとも約１５０塩基対の長さを備えた少なくとも一つの隣接配列を含む。形質転換は、組換えにより細胞ゲノム中に相同的ＤＮＡが組み込まれる様な条件下で行われる。相同的ＤＮＡを組み込んだ細胞は、増幅可能な遺伝子の増幅を選択する条件下におかれ、それによってγ−ＨＲＧ遺伝子が付随的に増幅される。得られた細胞は、所望の量のγ−ＨＲＧの生成について選別される。γ−ＨＲＧをコードする遺伝子の近くに存在する隣接配列は、例えば、図１のγ−ＨＲＧのヌクレオチド配列を開始点として用いて、ゲノミックウォーキングの方法によって容易に同定される。 γ−ＨＲＧは、分泌されたポリペプチドとして培養培地から回収されるが、宿主細胞の溶解物から回収されてもよい。最初の工程として、粒子の破片、宿主細胞または溶解されたフラグメントが、例えば、遠心または限外ろ過によって除去され；任意に、タンパク質が、商業的に利用できるタンパク質濃縮フィルターで濃縮され、イムノアフィニティーカラムでの分画；イオン交換カラムでの分画；硫酸アンモニウムまたはエタノール沈降；逆相ＨＰＬＣ；シリカでのクロマトグラフィー；ヘパリンセファロースでのクロマトグラフィー；カチオン交換樹脂でのクロマトグラフィー；クロマトフォーカシング：ＳＤＳ−ＰＡＧＥ；およびゲルろ過（例えば、High Load Superdex^TM 75 prep grade coluinを用いる、以下の実施例を参照）から選択された一つ以上の精製方法によって、γ−ＨＲＧを他の不純物から分ける。γ−ＨＲＧが不溶性の、集合した形態として最初に発現された場所（特に細菌性宿主細胞中）、組換えタンパク質屈折体を可溶化および復元するのに当該技術分野で利用できる技術を用いてγ−ＨＲＧを可溶化および復元する必要があるかもしれない（例えば、米国特許第４５１１５０２号参照）。 γ−ＨＲＧ変異体（以下参照）は、変化によって引き起こされた、特徴の実質的な変化を考慮して、天然配列γ−ＨＲＧと同じ方法で回収される。例えば、エピトープが付されたγ−ＨＲＧの調製は、融合ポリペプチドを吸着するために、エピトープに対する抗体を含むイムノアフィニティーカラムを用いた精製を容易にする。ウサギポリクローナル抗γ−ＨＲＧカラムのようなイムノアフィニティーカラムは、少なくとも一つの残存するイムノエピトープにそれを結合することによって、γ−ＨＲＧ変異体を吸着するために用いられる。天然配列γ−ＨＲＧのアミノ酸配列変異体は、適切なヌクレオチドの変化を天然配列γ−ＨＲＧＤＮＡ中に導入することによって、または所望のγ−ＨＲＧポリペプチドのin vitroにおける合成によって調製される。このような変異体は、例えば、図１のヒトγ−ＨＲＧについて示されたアミノ酸配列の残基の欠失、挿入または置換を含む。アミノ酸の変化は、Ｎ−および／またはＯ−結合グリコシル化部位の数や位置を変えるような、天然配列γ−ＨＲＧの翻訳後処置も変えるかもしれない。可能性のあるＮ−結合グリコシル化部位は図１に示されている。一般的に、Ａｓｎ残基はＧｌｎで置換されるが、他の置換または欠失も可能である。突然変異誘発に好ましい位置の天然γ−ＨＲＧポリペプチドのある残基または領域の同定に使用できる方法は、CunninghamとWells,Science 244:1081-1085(19 89)によって記載された“アラニン走査突然変異誘発(alanine scanning mutagen esis)”である。アミノ酸配列の欠失は、一般的に、約１から３０残基、好ましくは約１から１０残基の範囲とされ、通常は連続的である。連続した欠失は、通常は多数の残基にさえ形成されるが、単一または半端な数の欠失もこの範囲内である。欠失は、 γ−ＨＲＧの活性を修飾するために種々の哺乳動物のγ−ＨＲＧ間で相同性の低い領域に導入されてもよい。ＥＧＦ様ドメインのγ−ＨＲＧからの欠失は、より顕著にγ−ＨＲＧの生物学的活性を修飾しそうである。模範的なγ−ＨＲＧ欠失変異は、図１の残基７４９−７６８が欠失したγ−ＨＲＧである。他の模範的な欠失は、図１に同定された一つ以上のＮ結合グリコシル化部位が欠失した、および／または潜在的なプロテアーゼ切断部位に関係する一つ以上の残基が除去された（すなわち、残基４１１−４１４、４４０−４４１、４８１−４８２、５００ −５０１、６０６−６０７のいずれか一つ以上が除去された）、および／または一つ以上のシステイン残基が除去された天然配列γ−ＨＲＧを含む。図１のγ− ＨＲＧアミノ酸配列における関心のある領域は、残基１−７４８（すなわち、β ３Ｃ末端ドメインを欠くγ−ＨＲＧ）：１−７０３（すなわち、ＥＧＦ様ドメインを欠くγ−ＨＲＧ）；１−５６９（すなわち、ＥＧＦ様ドメインとスペーサードメインを欠くγ−ＨＲＧ）；１−５６０（すなわち、ＥＧＦ様ドメイン、スペーサードメインおよびＩｇドメインを欠くγ−ＨＲＧ）：３４２−３６３（疎水性領域）；３６４−５６０；３６４−７６８；４１１−５６０；４１１−７６８；４１２−５６０；４１２−７６８；４１３−５６０；４１３−７６８；４１４−５６０；４１４−７６８；４１５−５６０；４１５−７６８；４４１−５６０；４４１−７６８；４８２−５６０；４８２−７６８；５０１−５６０；５０１−７６８；６０７−５６０；６０７−７６８を含む。これらの領域は、本質的にこれらの領域から構成される、またはこれらの領域を含むγ−ＨＲＧポリペプチドの調製に使用されうる。このような欠失変異体は、付加的な内因性の欠失および／または置換をさらに含んでもよく、および／または抗γ−ＨＲＧ抗体を生成する際に使用するための、例えば免疫原性ポリペプチド等の異種ポリペプチドに融合されてもよい。また、これらの変異体は、付加的なカルボキシルまたはアミノ末端アミノ酸残基（例えば、アミノ末端メチオニル残基）を含んでもよい。アミノ酸配列挿入は、１つの残基から１００以上の残基を含むポリペプチドの長さの範囲のアミノ−および／またはカルボキシル末端融合、並びに単一または多数のアミノ酸残基の内在配列挿入(intrasequence insertions)を含む。内在配列挿入（すなわち、完全なγ−ＨＲＧ配列の内部における挿入）は、通常、約１から１０残基、好ましくは１から５残基、最も好ましくは１から３残基の範囲とすることができる。挿入は、好ましくは多数の残基にさえすることができるが、このことは必須とされない。末端挿入の例は、Ｎ末端メチオニル残基を備えたγ −ＨＲＧ、組換え細胞培養におけるγ−ＨＲＧの直接的生成の人工物を含む。好ましいタイプの挿入変異体は、キメラγ−ＨＲＧである。異種ポリペプチドに結合したγ−ＨＲＧを含む融合タンパク質は、組換えＤＮＡ技術を用いて構成することができ、異種ポリペプチドは、ヘテロ二官能性(heterobifunctional)架橋剤の使用のような当該技術分野において周知の技術によってγ−ＨＲＧポリペプチドに共有結合されうる。模範的なカップリング試薬は、Ｎ−スクシニミジル −３−（２−ピリジルジチオール）プロピオナート（ＳＰＤＰ）、イミノチオラン（ＩＴ）、イミドエステルの二官能性誘導体（例えばジメチルアジピミダートＨＣＬ）、活性のあるエステル（例えばジスクシニミジルスベラート）、アルデヒド（グルタルアルデヒド）、ビス−アジド化合物（例えばビス（ｐ−アジドベンゾイル）ヘキサンジアミン）、ビス−ジアゾニウム誘導体（例えばビスー（ｐ −ジアゾニウムベンゾイル）−エチレンジアミン）、ジイソシアナート（例えば、トリエン２，６−ジイソシアナート）、およびビス−活性フルオリン化合物（例えば、１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼン）を含む。キメラγ−ＨＲＧポリペプチドは、γ−ＨＲＧと、例えば、β−ラクタマーゼまたはE.coli trp座にコードされた酵素のような細菌性ポリペプチド、または酵母タンパク質等の免疫原性のポリペプチドとの融合体、１９８９年４月６日に公開された国際公開第８９／０２９２２に記載されたようなアルブミンまたはフェリチンのようなタンパク質との融合体を含む。キメラγ−ＨＲＧの別の例は、本願の実施例に記載されたチオレドキシン融合タンパク質である。ある実施態様では、キメラポリペプチドは、γ−ＨＲＧ（またはそのフラグメント）と、抗タグ抗体が選択的に結合できるエピトープを具備するタグポリペプチドとの融合体を含む。エピトープタグは、通常、γ−ＨＲＧのアミノ−またはカルボキシル末端において付される。その存在がタグポリペプチドに対するラベルされた抗体を用いて検出される限り、このようなエピトープが付されたγ−ＨＲＧの形態が望ましい。また、エピトープタグを付することにより、抗タグ抗体を用いた親和精製により、γ−ＨＲＧを容易に精製することが可能になる。タグポリペプチドとそれらに対する各抗体は、当該技術分野で周知である。例としては、ｆｌｕＨＡタグポリペプチドとその抗体１２ＣＡ５（Fieldら，Mol.Cell.B iol.8:2159-2165(1988)）；ｃ−ｍｙｃタグとそれに対する８Ｆ９、３Ｃ７、６Ｅ１０、Ｇ４、Ｂ７および９Ｅ１０抗体（Evanら，Molecular and Cellular Bio lo gy 5(12):3610-3616(1985)）：および単純ヘルペスウイルス糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タグとその抗体（Paborskyら,Protein Engineering 3(6):547-553(1990)）が含まれる。また、キメラγ−ＨＲＧは、天然γ−ＨＲＧより長い半減期を有する免疫付着因子を含んでもよい。異種イムノグロブリン定常ドメインに結合したポリペプチドから構成される免疫付着因子は、当該技術分野において知られている。最も単純かつ最も直接的な免疫付着因子の設計は、γ−ＨＲＧとイムノグロブリン重鎖のヒンジおよびＦｃ領域とを組み合わせる。通常は、本発明のγ−ＨＲＧイムノグロブリンキメラを調製する際に、γ−ＨＲＧをコードする核酸またはその断片が、イムノグロブリン定常ドメイン配列のＮ末端をコードする核酸のＣ末端に融合されるが、Ｎ末端融合も可能である。通常は、このような融合において、コードされたキメラポリペプチドは、イムノグロブリン重鎖の定常領域の少なくとも機能的に活性なヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインを保持するだろう。また、融合は、定常ドメインのＦｃ部のＣ末端に、もしくは重鎖のＣＨ１または軽鎖の対応領域のＮ末端に直接的に形成される。キメラγ−ＨＲＧは、例えば、読み枠のγ−ＨＲＧ部位(the γ-HRG portion in-frame)をコードするｃＤＮＡ配列を、タグポリペプチドまたはイムノグロブリンＤＮＡ配列に融合し、適切な宿主細胞中で得られたＤＮＡ融合構成物を発現することによって最も簡単に構成される。本発明に含まれる別のタイプのキメラγ−ＨＲＧは、細胞毒性ポリペプチド（たとえば、細菌、真菌、植物または動物由来の酵素学的に活性な毒素、またはこれらのフラグメント）と融合したγ−ＨＲＧである。あるいは、毒素は、単離されたγ−ＨＲＧに共有結合されてもよい。使用することのできる酵素学的に活性な毒素およびそのフラグメントは、ジフテリアＡ鎖、ジフテリア毒素の非結合活性フラグメント、体外毒素Ａ鎖（Pseudomonas aeruginosa由来）、リシンＡ（例えばリシンＡ鎖）、アブリンＡ鎖、モデシン（modeccin）Ａ鎖、アルファーサルシン（alpha-sarcin）、Aleurites fordiiタンパク質、ジアンチン（dianthin）タンパク質、Phytolaca americanaタンパク質（ＰＡＰＩ、ＰＡＰＩＩ、およびＰＡＰ−Ｓ）、モモジカカランチア（momordica charantia）インヒビター、カーシン（curcin）、クロチン（crotin）、サパオナリアオフィシナリス（sa paonaria officinalis）インヒビター、ゲロニン（gelonin）、ミトゲリン（mit ogellin）、レストリクトシン（restrictocin）フェノマイシン（phenomycin）、エノマイシン（enomycin）およびトリコテセン（tricothecenes）を含む。さらなる種類のキメラγ−ＨＲＧは、プロドラッグ（例えば、ペプチジル化学療法試薬、国際公開第８１／０１１４５を参照）を活性な抗ガン剤に変換するプロドラッグ活性化酵素と融合したγ−ＨＲＧポリペプチドである。例えば、国際公開第８８／０７３７８および米国特許第４９７５２７８号参照。このようなキメラ分子の酵素成分は、プロドラッグをより活性な細胞毒性形態に変換するようにプロドラッグに作用しうるあらゆる酵素を含む。本発明の方法で使用できる酵素は、リン酸塩含有プロドラッグを遊離試薬に変換するのに使用できるアルカリホスファターゼ；硫酸塩含有プロドラッグを遊離試薬に変換するのに使用できるアリールスルファターゼ；無毒性５−フルオロシトシンを抗ガン剤、５−フルオロウラシルに変換するのに使用できるシトシンデアミナーゼ；ペプチド含有プロドラッグを遊離試薬に変換するのに使用できるセラチアプロテアーゼ、サーモリシン、ズプチリジン、カルボキシペプチダーゼおよびカテプシン（例えば、カテプシンＢおよびＬ）のようなプロテアーゼ；Ｄアミノ酸置換基を含有するプロドラッグを変換するのに使用できるＤ−アラニルカルボキシペプチダーゼ；グリコシル化されたプロドラッグを遊離試薬に変換するのに使用できる、β−ガラクトシダーゼおよびノイラミニダーゼのような炭水化物切断酵素；β-ラクタムを用いて誘導された試薬を遊離試薬に変換するのに使用できるβ-ラクタマーゼ；およびアミン窒素原子においてそれぞれフェノキシアセチルまたはフェニルアセチル基を用いて誘導された試薬を遊離試薬に変換するのに使用できるペニシリンＶアミダーゼまたはペニシリンＧアミダーゼのようなペニシリンアミダーゼを含むが、これらに限定されない。あるいは、当該技術分野において“アブザイム”としても知られる、酵素活性を備えた抗体が、本発明のプロドラッグを遊離活性試薬に変換するのに使用されうる（例えば、Massey ，Nature 328:457-458(1987))。さらなるタイプのキメラポリペプチドは、サルベージレセプター結合エピトープに融合したγ−ＨＲＧである。このようなキメラ分子は、天然配列γ−ＨＲＧと比較した際に、増大した血清半減期を有してもよい。語句“長い半減期”は、 γ−ＨＲＧ誘導体と共に用いられる場合には、対応する天然配列γ−ＨＲＧよりも長いプラスマ半減期および／またはより遅いクリアランスを有するγ−ＨＲＧ誘導体に関する。 in vivo半減期が増大したこのようなキメラポリペプチドを調製するための系統的方法は、いくつかの工程を含む。最初は、ＩｇＧ分子のＦｃ領域のエピトープを結合するサルベージレセプターの配列およびコンホメーションを同定することを含む。このエピトープが同定されたら、γ−ＨＲＧの配列が、同定された結合エピトープの配列およびコンホメーションを含むように修飾される。配列が変異された後、γ−ＨＲＧ変異体が、元の分子より長いin vivo半減期を有するか否かを調べるためにテストされる。もしγ−ＨＲＧ変異体が、試験に基づいてより長いin vivo半減期を有しない場合には、その配列は、同定された結合エピトープの配列およびコンホメーションを含むようにさらに変更される。変更された γ−ＨＲＧは、より長いin vivo半減期について試験され、この方法は、より長いin vivo半減期を示す分子が得られるまで続けられる。サルベージレセプター結合エピトープは、通常、Ｆｃドメインの１または２のループのいずれか一つ以上のアミノ酸残基がγ−ＨＲＧに転移される領域を構成する。より好ましくは、Ｆｃドメインの１または２のループの３つ以上の残基が転移される。さらに好ましくは、エピトープがＦｃ領域（例えば、ＩｇＧの）のＣＨ２ドメインから得られる。最も好ましい実施態様では、サルベージレセプター結合エピトープは、配列（５’から３’）：ＰＫＮＳＳＭＩＳＮＴＰ（ＳＥＱＩＤＮＯ：５）を含み、そして任意に、ＨＱＳＬＧＴＱ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）、ＨＱＮＬＳＤＧＫ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）、ＨＱＮＩＳＤＧＫ（ＳＥＱＩＤＮＯ：８）、またはＶＩＳＳＨＬＧＱ（ＳＥＱＩＤＮＯ：９）からなる群から選択された配列をさらに含む。他の最も好ましい実施態様では、サルベージレセプター結合エピトープは、配列（５’から３’）：ＨＱＮＬＳＤＧＫ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）、ＨＱＮＩＳＤＧＫ（ＳＥＱＩＤＮＯ：８）、またはＶＩＳＳＨＬＧＱ（ＳＥＱＩＤＮＯ：９）、及び配列：ＰＫＮＳＳＭＩＳＮＴＰ（ＳＥＱＩＤＮＯ：５）を含むポリペプチドである。あるいは、γ−ＨＲＧは、ｅｒｂＢ発現細胞に細胞性防御メカニズムを集中させるように、Ｔ細胞レセプター分子（例えばＣＤ２またはＣＤ３）または、Ｆｃ γＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩ（ＣＤ３２）およびＦｃγＲＩＩＩ（ＣＤ１６）等のＩｇＧのＦｃレセプター（Ｆｃ７Ｒ）のような白血球上のトリガー分子に結合する分子（抗体の様な分子）に融合されてもよい。同様に、ｅｒｂＢ遺伝子を発現する細胞に細胞毒性試薬を局在させるキメラγ−ＨＲＧポリペプチドもここで考慮される。例えば、このようなキメラγ−ＨＲＧポリペプチドにおける異種のポリペプチドは、細胞毒性試薬に結合するものであってもよい（例えば、サポリン(saporin)に向けられた抗体、抗インターフェロンα、ビンカアルカロイド、リシンＡ鎖、メトトレキサートまたは放射活性同位体ハプテン）。変形の第三グループは、アミノ酸置換変異体である。これらの変異体は、天然配列γ−ＨＲＧ分子の少なくとも一つのアミノ酸残基が除去され、異なる残基がそのかわりに挿入される。例えば、置換変異体は、図１のアミノ酸配列内の１，２，３またはそれ以上の位置において一つのアミノ酸が別のアミノ酸に置換されることによって、完全なγ−ＨＲＧについて図１に示されたアミノ酸配列と異なるものであってもよい。上述された天然配列における変化は、米国特許第５３６４９３４号に記載された保存的および非保存的変異のための技術およびガイドラインのいずれかを用いてなされる。交換、付加または削除すべきアミノ酸を選択することに関する指導について、特にその表１およびその表の周りの論考を参照。天然γ−ＨＲＧの適切なコンホメーションを維持することに関係しないあらゆるシステイン残基も、分子の酸化安定性を改良し、異常な架橋結合をさけるために、通常はセリンで置換されてもよい。また、潜在的なプロテアーゼ切断部位における残基（すなわち、残基４１１−４１４，４４０−４４１，４８１−４８２，５００−５０１，６０６−６０７のいずれか一つ以上）も、他の残基で置換されてもよい。代表的な置換は、β型ＥＧＦ様ドメインがα型ＥＧＦ様ドメインで置換された γ−ＨＲＧ、およびβ型ＥＧＦ様ドメインがラットＮＤＦまたはＡＲＩＡのβ型ＥＧＦ様ドメインで置換されたγ−ＨＲＧを含む。図１のヒトγ−ＨＲＧのさらに典型的な置換は、以下の置換：ｈγ−ＨＲＧ（Ｃｙｓ２９７→Ｓｅｒ）、ｈγ −ＨＲＧ（Ｃｙｓ６３９→Ｓｅｒ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｐｒｏ９０→Ａｌａ）、ｈ γ−ＨＲＧ（Ｈｉｓ１５９→Ａｒｇ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｇｌｕ２３７→Ａｓｐ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ａｓｎ３２９→Ｇｌｎ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｌｅｕ３６５→Ｖａｌ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｖａｌ３９６→Ｌｅｕ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｇｌｎ４５５→ Ａｓｎ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｖａｌ４６８→Ｌｅｕ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｔｈｒ５２０→Ｓｅｒ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｌｙｓ５７０→Ａｒｇ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｌｅｕ５９３→Ａｌａ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ｖａｌ６５７→Ａｌａ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ａｓｎ４６７→Ｇｌｎ）、ｈγ−ＨＲＧ（Ａｓｎ６９１→Ｇｌｎ）のいずれか一つ以上を含む。天然配列γ−ＨＲＧのアミノ酸配列変異体をコードする核酸分子は、当該技術分野で知られた種々の方法によって調製される。これらの方法は、天然源からの単離（天然に生じるアミノ酸配列変異体の場合）、または天然配列γ−ＨＲＧの初期に調製された変異体または非変異体のオリゴヌクレオチド介在（または特定部位の突然変異誘発）変異、ＰＣＲ変異誘発、およびカセット式変異誘発による調製を含むが、これらに限定されない。 γ−ＨＲＧポリペプチドの共有結合修飾は、本発明の範囲内に含まれる。天然配列γ−ＨＲＧとそのアミノ酸配列変異体の両方が、共有結合により修飾されてもよい。γ−ＨＲＧまたはそのフラグメントの標的化されたアミノ酸残基を、選択された側鎖もしくはＮ−またはＣ−末端残基と反応しうる有機的誘導剤と反応させることによって、γ−ＨＲＧまたはそのフラグメントの共有結合修飾が分子中に導入されてもよい。γ−ＨＲＧの潜在的共有結合修飾に関する米国特許第５３６４９３４号参照。腫瘍標的化については、上述されたもののような細胞毒性試薬とγ−ＨＲＧを共有結合的に結合させることが有益とされるかもしれない。例えば、種々の放射性核種（例えば、²¹²Ｂｉ、¹³¹Ｉ、¹³¹Ｉｎ、⁹⁰Ｙおよび¹⁸⁶Ｒｅ）が、放射性物質結合γ−ＨＲＧの生成に利用される。炭素１４ラベルされた１−イソチオシアナートベンジル−３−メチルジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＭＸ−ＤＴＰＡ）が、γ−ＨＲＧに対するラジオヌクレオチドの結合用に典型的なキレート試薬である。国際公開第９４／１１０２６号参照。 γ−ＨＲＧの別の種類の共有結合修飾は、例えばポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリオキシアルキレン、またはポリエチレングリコールとポリプロピレングリコールとのコポリマーのような種々の非タンパク様ポリマーの一つにγ−ＨＲＧポリペプチドを結合することを含む。また、γ−ＨＲＧは、例えば、コアセルベーション技術または界面重合（例えば、それぞれヒドロキシメチルセルロースまたはゼラチン−ミクロカプセルおよびポリ−（メチルメタクリラート）ミクロカプセル）によって調製されたミクロカプセル、コロイド状薬剤輸送システム（例えば、リポソーム、アルブミンミクロスフィア、ミクロエマルジョン、ナノ粒子およびナノカプセル）、もしくはマクロエマルジョンにエントラップされてもよい。このような技術は、Remington's Pharmaceutical S ciences，16th edition，Oslo，A.,Ed.,(1980)に記載されている。アミノ酸配列変異体と共有結合変異体が調製されたら、生物学的および／または抗原的に活性である分子を選択するのが通常である。変異体が天然配列γ−ＨＲＧに対して生じた抗体と交差反応しうるか否かを調べるために、競合型イムノアッセイが用いられる。レドックスまたは熱安定性、疎水性、タンパク分解の感受性、キャリアーまたはマルチマー(multimers)との凝集傾向のようなタンパク質またはポリペプチド特性のさらなる潜在的な修飾が、当該技術分野で周知の方法によりアッセイされる。通常、関心の向けられた変異体は以下の特徴：（ａ）ＥｒｂＢ３および／またはＥｒｂＢ４に結合する能力；（ｂ）ＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ３および／またはＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ４レセプター複合体におけるＥｒｂＢレセプターを活性化する能力：および（ｃ）ＥｒｂＢ２およびＥｒｂＢ３レセプターおよび／またはＥｒｂＢ２およびＥｒｂＢ４レセプターを発現する細胞の増殖を刺激する能力の一つ以上を備えるであろう。特徴（ａ）を選別するために、ＥｒｂＢ３およびＥｒｂＢ４レセプターのいずれかまたは両方に結合するγ−ＨＲＧ変異体の能力が、in vitroで容易に調べられる。例えば、これらのレセプターの免疫付着因子形態が生成され（以下参照）、ＥｒｂＢ３およびＥｒｂＢ４免疫付着因子が固体相上に固定されうる（例えば、ヤギ−抗ヒト抗体で被覆されたアッセイプレート上に）。固定された免疫付着因子に結合するγ−ＨＲＧの能力は、例えば他のヘレグリン分子による競合置換を調べることによって調べられる。さらに詳しくは、以下の実施例に記載された¹² ⁵ Ｉ−ＨＲＧ結合アッセイを参照。特徴（ｂ）については、実施例に記載されたＭＣＦ７細胞を用いたチロシンリン酸化アッセイが、ＥｒｂＢレセプターの活性化を選別するための手段を提供する。本発明の他の実施態様において、γ−ＨＲＧ変異体がＥｒｂＢレセプターを活性化する能力を定性的および定量的に測定するために、国際公開第９５／１４９３０号に記載されたＫＩＲＡ−ＥＬＩＳＡが用いられる。簡単に言うと、本出願に記載されたアッセイに従って、細胞密度が６０％〜７５％のＭＣＦ７細胞（測定可能なレベルのＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３およびＥｒｂＢ４を生産する）が平底９６ウェル培養プレートの各ウェルに添加され、３７℃、５％ＣＯ₂中で一夜培養される。次の朝、ウェルの上清がデカントされ、プレートがペーパータオルに軽くタンプされる。次いで、培養培地（コントロール）、天然配列γ−ＨＲＧまたは変異体γ−ＨＲＧのいずれかを含む培地が、各ウェルに添加される。細胞が３７℃で約３０分間刺激され、ウェルの上清がデカントされ、プレートがペーパータオルに再度軽くタンプされる。細胞を溶解しレセプターを可溶化するために、１００μｌの溶解バッファーが各ウェルに添加される。溶解バッファーは、５０ｍＭＨＥＰＥＳ（Gibco）、０．５％ Triton-X 100（Gibco）、０．０１％チメロサール、３０ＫＩＵ／ｍｌアプロチニン（ICN Biochemicals，Aurora，OH ）、１ｍＭ４−（２−アミノエチル）−ベンゼンスルホニルフルオリドヒドロクロリド（AEBSF;ICN Biochemicals）、５０μＭロイペプチン（ICN Biochemica ls）および２ｍＭオルトバナジン酸塩（Ｎａ₃ＶＯ₄、Sigma Chemical Co，St.Lo uis,MO）を含む１５０ｍＭＮａＣＬ、ｐＨ７．５からなる。次いで、プレートは、６０分間、室温においてプレートシェーカー（Bellco Instruments，Vinela nd，NJ）上で優しく揺さぶられる。細胞が溶解される間に、ＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３またはＥｒｂＢ４細胞外ドメイン（関心の向けられたレセプターに依存）に対して向けられた親和精製されたポリクローナル抗体を用いて４℃で一夜被覆されたＥＬＩＳＡミクロタイタープレート（Nunc Maxisorp，Inter Med，Denmark）がデカントされ、ペーパータオルにタンプされ、優しく揺らしながら室温で６０分間、１５０μｌ／ウェルのブロックバファー（０．５％ＢＳＡ（Intergen Company，Purchase，NY）および０．０１％チメロサールを含むＰＢＳ）でブロックされる。６０分後、抗ＥｒｂＢ被覆プレートか、自動プレート洗浄機（Scan Washer 300，Skatron Instruments ，Inc，Sterling，VA）を用いて洗浄バッファー（０．０５％ Tween-20と０．０１％チメロサールを含むＰＢＳ）で６回洗浄される。細胞培養ミクロタイターウェルからの可溶化されたＥｒｂＢレセプターを含む溶解物は、抗ＥｒｂＢ被覆されかつブロックされたＥＬＩＳＡウェルに移され（８５μｌ／ウェル）、優しく攪拌しながら室温で２時間インキュベートされる。未結合レセプターは洗浄バッファーで洗浄することにより取り除かれ、希釈バファー（０．５％ＢＳＡ、０．０５％Tween-20、５ｍＭＥＤＴＡおよび０．０１％チメロサールを含むＰＢＳ）中の１００μｌのビオチニル化４Ｇ１０（抗ホスホチロシン抗体）が各ウェルに添加される。室温で２時間インキュベートした後に、プレートを洗浄し、１００μｌの希釈バッファー中のＨＲＰＯ結合ストレプトアビジン（Zymed Laboratories，S.San Francisco，CA）が各ウェルに添加される。プレートが、優しく攪拌しながら室温で３０分間インキュベートされる。遊離のアビジン結合体が洗浄され、１００μｌの新たに調製された培養基溶液（テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）；２−成分培養基キット；Kirkegaard and P erry，Gaithersburg，MD）が各ウェルに添加される。反応は１０分間行われ、その後に、発色が１００μｌ／ウェルの１．０ＭＨ₃ＰＯ₄の添加によって停止される。４５０ｎｍにおける吸収が、Macintosh Centris 650(Apple Computers，C upertino，CA)およびDeltaSoftソフトウェア（BioMetallics，Inc，Princeton， NJ）で管理されたvmaxプレートリーダー（Molecular Devices，Palo Alto，CA）を用いて、６５０ｎｍの参照波長を用いて（ＡＢＳ_450/650）読みとられた。しかして、変異体γ−ＨＲＧによって誘発されたＥｒｂＢレセプターリン酸化の程度が、天然配列γ−ＨＲＧおよびコントロール（恐らくは活性化しない）によって誘発されたものと比較されうる。最後に、特徴（ｃ）については、ＥｒｂＢ２およびＥｒｂＢ３レセプターおよび／またはＥｒｂＢ２およびＥｒｂＢ４レセプターを発現する細胞の増殖を刺激するγ−ＨＲＧ変異体の能力が、細胞培養において容易に調べられる。この実験に使用できる細胞は、ＡＴＣＣから入手可能なＭＣＦ７とＳＫ−ＢＲ−３細胞を含む。これらの腫瘍細胞系は細胞培養プレートにプレートされ、それに付着されてもよい。γ−ＨＲＧ変異体および天然配列γ−ＨＲＧコントロールは、例えば１ｎＭの終濃度に添加されてもよい。単層は、洗浄され、クリスタルバイオレットで染色／固定されてもよい。それゆえ、増殖が上述されたようにして定量されうる。さらに詳しくは、以下の実施例を参照。変異体を含むγ−ＨＲＧの増殖能力を調べるために使用できる別の細胞は、SchWann細胞である。上記Liらを参照。２．治療用組成物及び方法また、γ−ＨＲＧは、中枢（脳及び脊髄）、末梢（交感神経、副交感神経、感覚、及び腸）を含むニューロン、及び運動ニューロンのin vivoでの発達、維持、及び／または再生の促進において有用であると考えられている。従って、γ− ＨＲＧは、ヒトなどの哺乳類の神経系に影響を与える種々の”神経系疾患”の診断及び／または治療のための方法に油用であると思われる。このような疾患は、神経系が、例えば、外傷、手術、発作、虚血、感染、代謝的疾患、栄養欠乏、悪性疾患、または毒性薬によって損傷を受けた患者において生ずるであろう。この薬剤は、ニューロンの生存、増殖、または分化を促進する用に設計される。例えば、γ−ＨＲＧは、外傷または手術によって損傷を受けた運動ニューロンの生存または増殖を促進するのに用いることができる。また、γ −ＨＲＧは、筋萎縮性側索硬化症（Lou Gehrig病）、ベル麻痺、及び棘筋萎縮症又は麻痺を含む種々の状況といった、運動ニューロン疾患の治療に用いることができる。γ−ＨＲＧは、アルツハイマー病、パーキンソン病、癲癇、多発性硬化症、ハンティングトン舞踏病、ダウン症候群、感音難聴、及びメニェール病などのヒトの”神経退行(neurodegenerative)疾患”の治療に用いることができる。さらに、γ−ＨＲＧは、ニューロパシー、特に末梢ニューロパシーの治療に用いることができる。”末梢ニューロパシー”とは、運動、感覚、感覚運動、または自律神経の機能障害に最も頻繁に現れる、末梢神経系に影響する疾患である。末梢神経ニューロパシーによって現れる広範な形態は、各々独自に、同様に広範な数の原因によるものである。例えば、末梢ニューロパシーは、遺伝的に獲得され、全身性疾患によってもたらされ、あるいは、毒性薬によって誘発される。例えば、遠位感覚運動ニューロパシー、または、胃腸管の運動減退又は膀胱アトニーなどの自律神経ニューロパシーを含むが、これらに限定されない。全身性疾患に伴うニューロパシーの例は、ポストポリオ症候群を含み；遺伝性ニューロパシーの例は、シャルコー・マリー・ツース病、レフサム病、無β‐リポ蛋白血症、タンジアー病、クラッベ病、異染性白質萎縮症、ファブリー病、及びデジェリーヌ病を含み；毒性薬によって生ずるニューロパシーの例は、化学治療薬での治療によって生ずるものを含む。また、γ−ＨＲＧは、筋肉細胞及びそれらに影響する状況の治療にも用いられる。例えば、γ−ＨＲＧは、哺乳類の筋系の病態生理学的状態、例えば、骨格筋疾患（例えば、ミオパシーまたはジストロフィー）、心筋疾患（心房性不整脈、心筋症、虚血性障害、先天性疾患、または心臓障害など）、または平滑筋疾患（例えば、多発性硬化症、血管病変、または先天性血管外傷）の治療：筋肉障害の治療；筋肉細胞萎縮の低減；哺乳類における筋肉細胞の生存、増殖及び／または再生の向上；高血圧の治療；及び／または（重筋無力症または頻拍患者におけるような）機能的アセチルコリンレセプターが不十分な筋肉細胞の治療に用いられる。 γ−ＨＲＧは、細胞膜表面におけるイオンチャンネルの形成を誘発し、及び／または個体におけるシナプス接合の形成を促進するために用いられる。またγ− ＨＲＧは、記憶促進剤としても有用であり、ニコチンに対する切望感を取り除くものと思われる。 γ−ＨＲＧは、ＥｒｂＢレセプター、特にＥｒｂＧ２レセプターを産生する組織の修復及び／または再生を促進するのに用いられる。例えば、γ−ＨＲＧは、皮膚の創傷；胃腸管疾患；バレット食道；嚢胞性または非嚢胞性末期腎臓疾患；及び炎症性腸疾患の治療に用いられる。同様に、この分子は、ヒトの胃腸、呼吸、生殖、または尿管における上皮再生を促進するのに用いられる。他の実施態様において、γ−ＨＲＧは、腫瘍細胞の浸潤及びメスターシス(mes tasis)を阻害するのに用いられる。低下した内因性γ−ＨＲＧレベルによって特徴づけられる腫瘍は（Park等，Proc.Am.Assoc.Cancer Res.，34:521(1993)）、 γ−ＨＲＧに依存している。γ−ＨＲＧは、ＥｒｂＢレセプターと相互作用をすることによって腫瘍細胞の化学治療薬に対する感受性を向上させることにより、化学治療を促進するのに用いることができる。ＥｒｂＢレセプター過剰発現(ove rexpression)を特徴とする癌細胞を、癌組織に対する細胞毒性薬としてのγ−ＨＲＧを用いて治療するのが望ましい。γ−ＨＲＧ−酵素複合体は、ＥｒｂＢれせぷたーを発現する標的細胞に対する標的化したプロドラッグ治療のために有用である。他の状態では、特にγ−ＨＲＧの過剰なレベルが存在する及び／または哺乳類においてγ−ＨＲＧによるＥｒｂＢレセプターの過剰な活性化が生じている場合、哺乳類をγ−ＨＲＧアンタゴニストで治療するのが好ましい。γ−ＨＲＧアンタゴニストで治療される例示的な状態または疾患は、良性または悪性腫瘍（例えば、腎臓、肝臓、腎臓、膀胱、乳房、胃腸、卵巣、結腸直腸、前立腺、膵臓、舌、外陰、甲状腺、肝臓の癌；肉腫；グリア芽腫；及び種々の頭部及び首部腫瘍）；白血病及びリンパ性悪性疾患；ニューロン性、グリア性、星状細胞性、視床下部性、及び他の腺性、マクロファージ性、上皮性、間質性、胞胚腔性の疾患などの他の疾患；炎症性、脈管形成性及び免疫学的疾患；乾癬及び瘢痕組織形成を含む。また、γ−ＨＲＧアンタゴニストは、腫瘍細胞の免疫反応に対する耐性を逆転させるために、病理学的新脈管形成を阻害するために、及び、免疫系を刺激するために用いることもできる。本発明のさらなる実施態様では、γ−ＨＲＧはアンタゴニストは、γ−ＨＲＧの過剰産生及び／またはγ−ＨＲＧによるＥｒｂＢレセプターの過剰活性化を特徴とする神経疾患を罹患した患者に投与してもよい。γ−ＨＲＧアンタゴニストは、手術後に起こるかもしれない感覚ニューロンの迷走的再生の阻害、あるいは、例えば慢性痛み症候群の治療における感覚ニューロンの選択的切除において用いられる。治療的用途のためには、γ−ＨＲＧは、必要に応じて患者に投与される。あるいは、ここで遺伝子治療（γ−ＨＲＧをコードする核酸、あるいは、γ−ＨＲＧの阻害が望ましい場合は、アンチセンスポリヌクレオチド）も考えられる。 γ−ＨＲＧ遺伝子発現のアンチセンス阻害は、多重レベルで起こりうる。しかし、好ましい方法は、γ−ＨＲＧｍＲＮＡのタンパク質への輸送の妨害を含むものである。これを達成するために、γ−ＨＲＧｍＲＮＡに相補的なオリゴデオキシヌクレオチド（オリゴ）を用いてもよい。このアンチセンスオリゴは、生得的なセンスｍＲＮＡに、相補的ワトソン−クリック塩基対によって結合する。しかし、プラスミド由来のアンチセンスＲＮＡ（即ち、プラスミドにおいてアンチセンスＤＮＡが提供された場合）も考えられる。Mercola及びCohen，Cancer Gene Therapy，2(1):47-59(1995)。他の実施態様、いわゆる”抗−遺伝子法(anti-gen e approach)”によると、アンチセンス分子は、既に形成された対を持つアンチセンス分子の第３の塩基のフーグスチーン(Hoogsteen)（または抗−フーグスチーン）水素結合を介して、γ−ＨＲＧＤＮＡに結合してトリプルヘリックスまたはトリプレックスを形成するものである。アンチセンスオリゴは、γ−ＨＲＧｍＲＮＡ転写に沿っていずれを向くことも可能であるが、好ましい標的配列は、その５’末端において、開始コドンに渡るものである。一般に、アンチセンスオリゴは、γ−ＨＲＧに比較的特異的であり、従って、少なくともγ−ＨＲＧの独特なＮＴＤをコードするＤＮＡの部分に相補的である。対象のオリゴは、通常は少なくとも１５−１７塩基を含有する。最も活性名アンチセンス配列を同定するために、欠失分析が行われる。アンチセンスオリゴは、自動的方法によって容易に合成できる。米国特許第5, 489,677号参照。通常、in vivoでの使用を意図するアンチセンスオリゴは、ヌクレアーゼ分解を受けにくく、及び／または、細胞による取り込み効率を向上させるように修飾される。幾つかのバックボーン修飾が、ヌクレアーゼ分解を妨げるために開発されている。一つの例示的修飾により、”メチル−ホスホネート”（ＭＯ）オリゴとなる。この方法によると、ヌクレオチド結合間における非架橋酸素原子の一つがメチル基に置換され、全体としてオリゴの負電荷が取り除かれる効果を有する。Tonkinson等，Cancer Investigation，14(1):54-65(1996)。Tonk inson等に記載されたヌクレアーゼ分解を低減させるための他の修飾は、ホスホロチオエート（ＰＳ）修飾であり、リンにおける非架橋酸素の一つがイオウで置換されている。基本のオリゴを修飾する他の方法は、Cohen，J.Adv.Pharmac ol.，25:319-339(1993)に総説されている。例えば、、デオキシリボース−ホスフェートバックボーン全体がペプチド様バックボーンに置換された新しい類似物が報告されている。上記Mercola及びCohen参照。細胞取り込みを向上させるためにアンチセンスオリゴは、ＤＯＴＭＡなどのカチオン性脂質と複合した、ポリリシンまたはリポフェクチンと結合した、及び／またはコレステリル部分に共有結合したリポソーム中にカプセル化することができる。上記Tonkinson参照。（任意にベクターに含まれた）核酸を患者の細胞に入れるための主要な２つの方法があり；それらは、in vivo及びex vivoである。in vivo輸送では、通常は γ−ＨＲＧが必要とされている部位に、核酸が患者に直接注入される。ex vivo 処理では、患者の細胞が取り出され、核酸がこれらの単離された細胞に導入され、変性した細胞が患者に直接、あるいは、例えば多孔質膜にカプセル化されて患者に埋め込むことにより投与される（例えば、米国特許第4,892,538号及び第5,2 83,187号参照）。生存可能な細胞に核酸を導入するために利用可能な種々の技術がある。この技術は、核酸が、培養された細胞にin vitroで輸送されるか、対象とするホストの細胞中にin vivoで輸送されるかによって変化する。哺乳類細胞にin vivoで核酸を輸送するのに適した技術は、リポソーム、電気穿孔法、マイクロインジェクション、細胞融合、ＤＥＡＥ−デキストラン、カルシウムホスフェート析出法、等を含む。遺伝子のex vivo輸送に通常用いられるベクターは、レトロウイルスである。ここで好ましいin vivo核酸輸送技術は、ウイルスベクター（アデノウイルス、単純ヘルペス１型ウイルス、またはアデノ−関連ウイルスなど）でのトランスフェクション及び脂質ベースの系（胃炎死の脂質媒介輸送に有用な脂質は、例えばＤＯＴＭＡ、ＤＯＰＥ及びＤＣ−Ｃｈｏｌである）を含む。ある種の状態においては、核酸源を、細胞表面膜タンパク質または標的細胞に特異的な抗原、標的細胞のレセプターに対するリガンドなどといった標的細胞をターゲットする試薬とともに提供するのが好ましい。リポソームが用いられる場合、エンドサイトーシスを伴う細胞表面膜タンパク質に結合するタンパク質が、ターゲット及び／または取り込む促進のために用いられ、例えば、特定の細胞タイプに親和性のカプシドタンパク質又はそのフラグメント、サイクル中にインターナリゼーションを受けるタンパク質に対する抗体、及び、細胞内位置をターゲットし、細胞内半減期を向上させるタンパク質である。レセプター媒介エンドサイトーシスの技術は、例えば、Wu等，J.Biol.Chem.，262:4429-4432(1987);及びWagner等，Proc.Natl. Acad.Sci．USA，87:3410-3414(1990)に記載されている。現在知られている遺伝子マーキング及び遺伝子治療プロトコールの総説については、Anderson，等，Sc ience，256:808-813(1992)を参照されたい。また、WO 93/25673及びその中の参考文献も参照のこと。 γ−ＨＲＧまたはγ−ＨＲＧアンタゴニストの治療用製剤は、所定の純度を有し、任意に生理学的に許容されるキャリア、賦形剤、又は安定化剤（Remington ’s Pharmaceutical Sciences，16th Edition，Osol.,A.,Ed.,(1980)）を有する γ−ＨＲＧまたはγ−ＨＲＧアンタゴニストを混合することにより、凍結乾燥ケーキまたは水溶液の形態で、貯蔵のために調製される。製薬的に許容されるキャリア、賦形剤、または安定化剤は、用いられる投与量及び濃度において受容者に非毒性であり、リン酸、クエン酸、及び他の有機酸等のバッファー；アスコルビン酸を含む酸化防止剤；低分子量（約１０残基未満）ペプチド；血清アルブミン、ゼラチン、アスパラギン、アルキニン又はリシン等のタンパク質；単糖類、二糖類、及びグルコース、マンノース又はデキストリンを含む炭化水素；ＥＤＴＡ等のキレート剤；マンニトール又はソルビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の塩形成対イオン；及び／またはTween(商品名)、Pluronics(商品名)、またはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の非イオン性界面活性剤を含む。 in vivo投与に用いられるγ−ＨＲＧ又はγ−ＨＲＧアンタゴニストは無菌でなければならない。これは、凍結乾燥及び再構成の前または後に、除菌濾過膜を通すことによって容易に達成される。製剤は、通常は凍結乾燥形態又は溶液で貯蔵される。治療用γ−ＨＲＧ又はγ−ＨＲＧアンタゴニスト組成物は、一般的に、無菌のアクセスポートを有する容器、例えば、皮下注入針によって接合可能なストッパーを持つ静脈内溶液バッグまたはバイアルに配置される。 γ−ＨＲＧ又はγ−ＨＲＧアンタゴニスト投与の経路は、周知の方法、例えば、静脈内、腹膜内、大脳内、筋肉内、眼内、動脈内、または病巣内経路の吸入または輸液、あるいは後述の徐放システムによる注入又は輸液に従う。γ−ＨＲＧは、輸液またはボーラス注入によって連続的に投与される。徐放(sustained-release)製剤の好ましい例は、タンパク質を含有する固体疎水性ポリマーの半透性マトリクスを含み、このマトリクスは、例えば、フィルムまたはマイクロカプセルの形状をしている。徐放マトリクスは、ポリエステル、ヒドロゲル（例えば、Langer等，J.Blomed.Mater.Res.，15:167-277(1981)及びL anger，Chem.Tech.，12:98-105(1982)に記載のポリ（２-ヒドロキシエチル-メタクリレート）またはポリ（ビニルアルコール））、ポリラクチド（米国特許第3, 773,919号、EP58,481）、Ｌ-グルタミン酸及びγ-Ｌ-グルタメートのコポリマー（Sidman等，Biopolymers，22:547-556(1983)）、非分解性エチレン−酢酸ビニル（Langer等，上記）、Lupron Depot(商品名)（乳酸−グリコール酸コポリマー及び酢酸ロイプロリドからなる注入可能な微小球）等の分解性乳酸−グリコール酸コポリマー、及び、ポリ-Ｄ-（−）-３-ヒドロキシブチル酸（EP133,988）を含む。徐放性γ−ＨＲＧ又はγ−ＨＲＧアンタゴニスト組成物は、リポソーム的にトラップされた薬剤も含む。γ−ＨＲＧを含むリポソームは、それ自体周知の方法によって調製される：DE3,218,121；Epstein等，Proc.Natl.Acad.Sci．USA 82:3 688-3692(1985)；Hwang等，Proc.Natl.Acad.Sci．USA 77:4030-4034(1980)；EP5 2,322；EP36,676；EP88,046；EP143,949；EP142,641；日本国特許出願83-118008 ；米国特許第4,485,045号及び第4,544,545号；及びEP102,324。通常は、リポソームは小さく（約２００−８００オングストローム）単ラメラタイプであり、その脂質含有量は約３０モル％コレステロールより大きく、選択される割合は、最適な治療のために調節される。特に有用なリポソームは、ホスファチジルコリン、コレステロール及びＰＥＧ−誘導ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥＧ− ＰＥ）を含む脂質組成物の逆相エバポレーション(reverse phase evaporation) 法によって製造できる。リポソームは、所定の孔サイズのフィルターを通して押し出され、所望の径を持つリポソームが得られる。化学治療薬（ドキソルビシン等）を、任意にリポソーム内に含有させてもよい。Gabizon等，J.National Canc er Inst．81(19)1484(1989)参照。神経疾患のために、シラスティック膜等の膜にγ−ＨＲＧを吸着させるのが好ましく、それは、損傷を受けた神経組織の近傍に埋め込まれる。ＰＣＴ公開番号 WO91/04014（1991年4月4日発行）。他の治療的養生法は、本発明のγ−ＨＲＧまたはγ−ＨＲＧアンタゴニストの投与と組み合わされる。神経状態を治療するために、γ−ＨＲＧは、任意に、所望の治療効果を達成する他の神経向性因子と組み合わされ、あるいは協調して投与される。例えば、γ−ＨＲＧは、神経成長因子（ＮＧＦ）、ニューロトロフィン（ＮＴ-３）、骨由来神経因子（ＢＤＮＦ）、ニューロトロフィン-４及び５- （ＮＴ-４／５）、インシュリン様成長因子（例えば、ＩＧＦ-１またはＩＧＦ- ２）、ｇａｓ６、またはニューロンに相乗的刺激作用を有する他の神経向性因子とともに用いることができ、”相乗的”なる語は、γ−ＨＲＧと第２の物質の組み合わせの効果が、いずれかの物質で個々に達成される効果より大きいことを意味する。神経向性因子の好ましい投与量は、これらの分子について、この分野で知られている量と同様である。ここに記載されるγ−ＨＲＧまたはγ−ＨＲＧアンタゴニストで治療される癌患者は、放射線治療も受けてもよい。あるいは、それに付け加えて、化学治療薬を患者に投与してもよい。そのような化学治療薬の組成及び投与量のスケジュールは、製造者の指示に従うか、熟練した実施者が経験的に決定する。また、これらの化学治療薬の組成及び投与量スケジュールは、Chemotherapy Service Ed.， M.C．Perry，Williams & Wilkins，Baltimore，MD（1992）に記載されている。化学治療薬は、γ−ＨＲＧまたはγ−ＨＲＧアンタゴニスト投与に先んじても後でもよく、あるいはそれと同時に投与してもよい。癌の指標としては、ＥＧＦＲ、ＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３、ＥｒｂＢ４または脈管内皮因子（ＶＥＧＦ）に結合する抗体等の、抗原を伴う腫瘍に対する抗体も投与するのが好ましい。あるいは、それに付け加えて、１つまたはそれ以上のサイトカインを患者に投与してもよい。治療的に用いられるγ−ＨＲＧ又はγ−ＨＲＧアンタゴニストの有効な投与量は、例えば、治療目的、投与経路、及び患者の状態に依存するであろう。従って、治療者は、最適な治療効果を得るために求められる投与量を決定し、経路を修正する必要がある。典型的な１日の投与量は、１日当たり、患者の体重１kgについて、約１μｇから１００ｍｇ、好ましくは、１０μｇから１０ｍｇであろう。典型的には、医師は、γ−ＨＲＧまたはγ−ＨＲＧアンタゴニストを、上記の疾患の治療に所定の効果が達成される量まで投与するであろう。３．非治療的方法 γ−ＨＲＧポリペプチドは、成長している細胞（グリア及び筋肉細胞など）に ex vivoで用いられる。細胞特異的因子、例えば、シュワン細胞特異的マーカーであるＰ７５^NGFRの単離のために、細胞培地中にそのような細胞集団を有するのが好ましい。このような因子は、診断材料として有用であり、Ｐ７５^NGFRの場合、診断用途のための抗体を製造する抗原として用いられる。また、哺乳類患者への（例えば、遮断された中枢軸索の再生に影響を与えるべく、末梢神経創傷の再生を助け、自家移植片に換わるものとして、損傷を受けた脊髄の領域への）移植のための細胞性プロテーゼとして用いるために、哺乳類細胞（例えば、シュワン細胞）の集団を有するのも好ましい。本発明のin vitro法によれば、ＥｒｂＢレセプターを含む細胞が提供され、細胞培養媒質中に配置される。好ましい組織培養媒質は、当業者に周知であり、最小必須媒質(Minimal Essential Medium)（ＭＥＭ）、ＲＰＭＩ−１６４０、及びダルベッコの修飾イーグル媒質を含むがこれらに限定されない。これらの組織培養媒質は、Sigma Chemical Company(St.Louis，HO)及びGIBCO(Grand Island，NY )から商業的に入手できる。細胞は、次いで、細胞培養媒質中で、有効量のγ− ＨＲＧの存在下、細胞が生存可能かつ成長を維持するのに十分な条件で培養される。細胞は、クロット、寒天、または液体培地において種々の方法で培養することができる。細胞は、有効量のγ−ＨＲＧの存在下、例えば３７℃といった生理学的に許容される温度で培養される。γ−ＨＲＧの量は、変化させてよいが、好ましくは約１０ｎｇ／ｍｌから約１ｍｇ／ｍｌである。γ−ＨＲＧは、当然のことながら、当業者が過度の実験を行うことなしに経験的に決定した投与量で培地に添加してもよい。培地におけるγ−ＨＲＧの濃度は、細胞とγ−ＨＲｇが培養される条件等の種々の要因に依存する。特定の温度及びインキュベーション時間、並びに他の培養条件は、例えば、γ−ＨＲＧの濃度、及び細胞及び媒質のタイプ等の種々の要因に依存しうる。当業者は、過度の実験無しに、作動的かつ最適な培養条件を決定できるであろう。シュワン細胞のex vivo培養の技術は、ヒトのクローナル筋原細胞のex vivo培養を記述した上記のLi等,及びSklar等,に記載されている。γ−ＨＲＧは、これらの方法で用いられる他のヘレグリンポリペプチドと置換しうる。 γ−ＨＲＧポリペプチドは、ＥｒｂＢ（例えば、ＥｒｂＢ２）過剰発現及び／または増幅で特徴づけられる癌の診断に用いることができる。同様に、γ−ＨＲＧ発現を検知できる分子（例えば、核酸プローブ及び抗-γ−ＨＲＧ抗体）を、 γ−ＨＲＧ発現の検出に用いることができる（例えば、幾つかの乳癌等の、γ− ＨＲＧが構成的活性複合体の形成を導く癌において、後述の実施例参照）。このような診断アッセイは、リンパ腺状態、主要な腫瘍サイズ、組織学的程度、エストロゲンまたはプロエストロゲン状態、腫瘍ＤＮＡ含有量（倍数性）、または細胞増殖（Ｓ相フラクション）の測定といった他の診断／予後評価と組み合わせて用いることができる。Muss等，New Eng.J.Hed.，330(18):1260-1266(1994)参照。ここで測定するサンプルとして得られるのは、例えば、患者の腫瘍病変部からの組織サンプルである。ホルマリン固定、パラフィン包理ブロックが調製される。上記のMuss等,及び、Press等，Cancer Research 54:2771-2777(1994)参照。組織断片（例えば、４μＭ）は、周知の方法で調製される。次いで、組織断片に結合したγ−ＨＲＧの量が定量化される。一般に、γ−ＨＲＧ（タンパク質または核酸プローブ）またはＨＲＧ抗体は、直接または間接に、検出可能なラベルで標識される。多数のラベルが利用可能であり、一般的に、以下の範疇に部類される： (a)放射性同位元素、例えば、³⁵Ｓ、¹⁴Ｃ、¹²⁵Ｉ、³Ｈ、及び¹³¹Ｉ等。γ−ＨＲＧまたは抗体は、Current Protocols in Immunology，Ed．Coligen等，Wiley Publishers，Vols 1&2に記載された技術を用いて放射性同位元素でラベルすることができ、例えば、放射活性はシンチレーション計数を用いて測定できる。 (b)蛍光ラベル、例えば、希土類キレート（ユーロピウムキレート）またはフルオレセイン及びその誘導体、ローダミン及びその誘導体、ダンシル、リサミン、フィコエリスリン(phycoerythrin)及びテキサスレッド等が利用可能である。蛍光ラベルは、例えば、上記のCurrent Protocols in Immunologyに記載された技術を用いてγ−ＨＲＧまたは抗体に接合できる。蛍光は、フルオロメーター（ Dynatech）を用いて定量化できる。 (c)種々の酵素−基質ラベルが利用可能であり、米国特許第4,275,149号は、これらのうちの幾つかの総説を提供する。酵素は、一般的に、色原体物質の化学変換を触媒し、それは種々の技術を用いて測定できる。例えば、酵素は基質の色変化を触媒し、分光測光法によって測定できる。蛍光変化の定量化技術は、上記されている。化学発光物質は、化学反応によって電気的に励起され、次いで、（例えば、Dynatech ML3000化学発光計を用いて）測定可能な光を放出するか、蛍光アクセプターにエネルギーを供与する。酵素的ラベルの例は、ルシフェラーゼ（例えば、ホタルルシフェラーゼ及び細菌ルシフェラーゼ：米国特許第4,737,456 号）、ルシフェリン、２，３-ジヒドロフタラジンジオン、マレーとデヒドロゲナーゼ、ウレアーゼ、セイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰＯ）等のペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β-ガラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、リソザイム、サッカリドオキシダーゼ（例えば、グルコースオキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼ、及びグルコース-6-ホスフェートデヒドロゲナーゼ）、ヘテロ環オキシダーゼ（ウリカーゼ及びキサンチンオキシダーゼ等）、ラクトベルオキシダーゼ、ミクロペルオキシダーゼ等を含む。酵素をタンパク質に接合する技術は、O'Sullivan等，Methods for the Preparation of Enzyme-Antibo dy Conjugates for use in Enzyme Immunoassay，in Method in Enzyme(ed．Lan gone & H．Van Vunakis)，Academic Press，New York，73:147-166（1981）及び上記のCurrent Protocols in Immunologyに記載されている。酵素−基質の組み合わせの例は、例えば、(a)セイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰＯ）と基質としての過酸化水素であって、過酸化水素は染料前駆物質（例えば、オルトフェニレンジアミン（ＯＰＤ）又は3,3',5,5'-テトラメチルベンジジンヒドロクロリド（ＴＭＢ））を酸化する；(b)アルカリホスファターゼ（ＡＰ）と色原体物質としてのパラ−ニトロフェニルホスフェート；及び(c)β- Ｄ-ガラクトシダーゼ（β-Ｄ-Ｇａｌ）と色原体（例えば、ｐ-ニトロフェニル- β-Ｄ-ガラクトシダーゼ）またはフルオロゲン(fluorogenic)物質４-メチルウンベリフェリル-β-Ｄ-ガラクトシダーゼ(4-methylumbelliferyl-β-D-galactosid ase)を含む。当業者は、多数の他の酵素−基質の組み合わせが利用可能である。これらの総説については、米国特許第4,275,149号及び第4,318,980号参照。ラベルは、γ−ＨＲＧまたは抗体に、間接的に接合するときもある。当業者は、これを達成するための種々の技術を知っているであろう。例えば、γ−ＨＲＧまたは抗体はビオチンに接合し、上記の３つの広い範疇のラベルは、アビディンに接合する、あるいはその逆である。ビオチンはアビディンに特異的に結合するので、ラベルは、この間接的方法で、γ−ＨＲＧまたは抗体に接合する。ビオチン−アビディン複合体を含む技術の総説は、上記のCurrent Protocols in Immun ology参照。あるいは、ラベルとγ−ＨＲＧまたは抗体との間接的接合を達成するために、γ−ＨＲＧ又は抗体を小さなハプテン（例えばジゴキシン）に接合し、上記の異なるタイプのラベルの一つを抗-ハプテン抗体（例えば、抗-ジゴキシン抗体）に接合する。よって、ラベルとγ−ＨＲＧまたは抗体との間接的接合が達成される。本発明の他の実施態様では、γ−ＨＲＧ又は抗体はラベルされる必要はなく、それらの存在は、ラベルされた抗-γ−ＨＲＧ又は抗-抗体の抗体（例えば、ＨＲＰＯとの接合体）を用いて検出される。好ましい実施態様では、γ−ＨＲＧは又は抗体は、物質（例えば、テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）またはオルトフェニレンジアミン（ＯＰＤ））の色変化を触媒する酵素的ラベルで標識される。即ち、放射性材料の使用が回避される。試薬の色変化は、適当な波長において（例えば、650nmの参照波長で、ＴＭＢでは450nm 、ＯＰＤでは490nm）分光測光学的に測定される。よって、スライド上の組織断片は、ラベルされたγ−ＨＲＧ又は抗体に露出され、組織断片の染色強度が測定される。通常はin vitro分析が考えられるが、検出可能な部分に接合したγ−ＨＲＧ又は抗体のin vivo診断も実施することができる。例えば、米国特許第4,938,948号参照。 γ−ＨＲＧ製剤は、放射性ヨウ素、酵素、フルオロホア、スビンラベル等で標識した場合、γ−ＨＲＧのアッセイ（例えば、ラジオイムノアッセイ、固相酵素免疫検定法、またはラジオレセプターアッセイにおける標品として使用するためのγ−ＨＲＧの標識）、親和性精製技術（例えば、ＥｒｂＢ３またはＥｒｂＢ４レセプター等のＥｒｂＢレセプターのためのもの）、及び競合型のレセプター結合アッセイにおける標品(standard)としても有用である。この点において、独特なＮＴＤまたはそのフラグメント（例えば、連続した２０以上のアミノ酸残基を有するもの）は、検出及び／または精製で使用するγ−ＨＲＧ−特異的抗体の製造のための免疫原として有用である。同様に、γ−ＨＲＧをコードする核酸は、種々の組織におけるγ−ＨＲＧ発現を検出するプローブとして有用である。この点において、γ−ＨＲＧの独特なＮＴＤをコードする核酸をコードする又は相補的な核酸あるいはそのフラグメントが特に有用である。ＤＮＡ分析の技術は良く知られている。例えば、米国特許第 4,968,603号参照。通常、ＤＮＡ分析は、哺乳類から誘導されたサンプルのサザンプロットを含む。４．γ−ＨＲＧ抗体及びその使用ポリクローナル及びモノクローナル抗体等の抗体を製造する技術は、この分野で周知である。ポリクローナル抗体は、動物を（任意に、免疫化される種において免疫源となる異種タンパク質と接合されていてもよい）γ−ＨＲＧまたはそのフラグメントで免疫化することによって生ずる。γ−ＨＲＧに向けられたモノクローナル抗体は、培地における連続細胞系による抗体分子の産生のために提供される任意の方法を用いて製造される。モノクローナル抗体を製造するのに適した方法は、Kohler等，Nature 256:495-497(1975)の原型のハイブリドーマ法、及び、Ｂ細胞ハイブリドーマ法Kozbor,J.，Immunol．133:3001(1984)；Brodeur等，M onoclonal Antibody Production Techniques and Applications, pp51-63(Marce l Dekker，Inc.，New York，1987)；及びBoerner等，J.Immunol．147:86-95(199 1)を含む。本発明のモノクローナル抗体をコードするＤＮＡは、従来の手法に従って（例えば、抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合することのできるオリゴヌクレオチドプローブを用いることにより）容易に単離され配列される。本発明のハイブリドーマ細胞はｍそのようなＤＮＡの好ましい源として提供される。一度単離された後、ＤＮＡは発現ベクターの中に配置され、次いで、E.coli 細胞、サルＣＯＳ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、または骨髄腫細胞といった免疫グロブリンタンパク質を生成しないホスト細胞にトランスフェクトされ、形質転換されたホスト細胞におけるモノクローナル抗体の合成がを得る。ＤＮＡは、例えば、相同的ネズミ配列に換えてヒト重鎖及び軽鎖定常ドメインのコード配列を置換することにより（Morrison，等，Proc.Natl.Acad.Sci．USA 81:6851(1984)）、または、非免疫グロブリンポリペプチドのコード配列の全部または一部の配列をコードする免疫グロブリンに共有結合させることによって修飾してもよい。この方法において、”キメラ(chimeric)”または”ハイブリッド (hybrid)”抗体が調製され、これらは抗-γ−ＨＲＧモノクローナル抗体の結合特異性を有する。非−ヒト抗体のヒト化方法は、この分野で知られている。一般的に、ヒト化抗体は、それに導入された非ヒト源からの１つ又はそれ以上のアミノ酸残基を有する。これらの非−ヒトアミノ酸残基は、”外来(import)”残基と呼ばれることが多く、典型的には”外来”可変ドメインから取り込まれる。ヒト化は、実際には Winterとその協力者の方法に従い（Jones等，Nature 321:522-252(1986)；Reich mann等，Nature 332:323-327(1988)；及びVerghoeyen等，Science 239:1534-153 6(1988)）、齧歯類のＣＤＲ配列をヒト抗体の対応する配列で置換することによって行われる。従って、これらの”ヒト化”抗体は、キメラ抗体であり（米国特許第4,816,567号）、生得的なヒト可変ドメインより実質的に短い部分が、非− ヒト種からの対応する配列で置換されている。実際には、ヒト化抗体は、典型的にヒト抗体であり、幾つかのＣＤＲ残基及び可能性としては幾つかのＦＲ残基が、齧歯類抗体の類似部位からの残基で置換される。ヒト化抗体の製造において用いられる、重鎖及び軽鎖の、ヒト可変ドメインの選択は、抗原性を低減するのに極めて重要である。いわゆる”ベスト-フィット( best-fit)”法に従って、齧歯類抗体の可変ドメインの配列は、周知のヒト可変ドメイン配列の全てのライブラリーに対してスクリーニングされる。齧歯類に最も近いヒト配列は、ヒト化抗体のヒト骨格（ＦＲ）として許容される（Sims等， J.Immunol.，151:2296(1993)；及びChothia及びLesk，J.Mol.Biol.，196:901(19 87)）。他の方法は、重鎖及び軽鎖の特定のサブグループの全てのヒト抗体の共通配列から誘導される特定の骨格を使用する。同じ骨格は、幾つかの異なるヒト化抗体に使用しうる（Carter等，Proc.Natl.Acad.Sci．USA 89:4285(1992)；及びPresta等，J.Immunol．151:2623(1993)）。抗体が、抗原に対する高親和性及び他の好適な生物学的特性の保持でヒト化されることはさらに重要である。この目的を達成するために、好ましい方法に従って、旁配列及び概念的なヒト化生成物の、旁及びヒト化配列の三次元モデルを用いた分析過程によって、ヒト化された抗体が調製される。三次元免疫グロブリンモデルが共通に利用でき、当業者になじみ深い。選択した候補となる免疫グロブリン配列の可能な三次元構造を図解及び表示するコンピュータプログラムが利用できる。これらの表示の検討により、候補となる免疫グロブリン配列の機能化における残基の同様な役割の分析、例えば、候補となる免疫グロブリンの、その抗原に対する結合能力に影響する残基の分析をすることができる。このようにして、ＦＲ残基を選択し、共通かつ外来の配列から結合することにより、標的抗原に対する向上した親和性といった所望の抗体特性が達成される。一般的に、ＣＤＲ残基は、直接的かつ最も本質的に、抗原結合への影響に含まれている。ヒト抗体を製造するための代替的方法に従って、トランスジェニック動物（例えばマウス）が利用可能であり、免疫化に際して、内因性免疫グロブリン生成無しに、ヒト抗体の全てのレパートリーを製造することができる。例えば、キメラ及び生殖系(germ-line)突然変異マウスにおける抗体重鎖結合領域（Ｊ_H）遺伝子のホモ接合的欠失が、内因性抗体製造の完全な阻害をもたらすことが記載されている。そのような生殖系突然変異マウスにおけるヒト生殖系免疫グロブリン遺伝子アレーの輸送は、抗原攻撃の際のヒト抗体の産生をもたらす。Jakobovits等， Proc.Natl.Acad.Sci．USA，90:2551(1993)；Jakobovits等，Nature 362:25 5-258(1993)；及びBruggermann等，Year in Immuno．7:33(1993)。あるいは、ファージ提示(phrge display)技術（McCafferty等，Nature 348:55 2-553(1990)）を、非免疫化ドナーからの免疫グロブリン可変（Ｖ）ドメイン遺伝子レパートリーからin vitroでヒト抗体及び抗体フラグメントを製造するのに用いることができる。この技術によると、抗体Ｖドメイン遺伝子は、Ｍ１３またはｆｄ等の糸状バクテリオファージの主または副いずれかの被覆タンパク質遺伝子に骨格中にクローンされ、ファージ粒子表面における機能的抗体フラグメント賭して提示される。糸状粒子は、ファージゲノムの一本鎖ＤＮＡコピーを含むので、抗体の機能的特性に基づく選択は、これらの特性を示す抗体をコードする遺伝子の選択をもたらす。よって、ファージは、Ｂ細胞の幾つかの特性に類似する。ファージ提示は、種々の形式で行うことができる；それらの総説については、 Johnson，Kevin S．及びChiswell，David J.，Current Opinion in Structural Biology 3:564-571(1993)を参照のこと。Ｖ遺伝子セグメントの幾つかの源が、ファージ提示に用いられる。Clackson等，Nature，352:624-628（1991）は、免疫化マウスの肝臓から由来するＶ遺伝子の小さなランダム結合ライブラリーから、抗−オキサゾロン抗体の多様アレーを単離した。非免疫化ヒトドナーからのＶ遺伝子のレパートリーが構成でき、抗原の多様アレーに対する抗体（自己抗原を含む）が、Marks等，J.Mol.Biol．222:581-597(1991)、または、Griffith等，EM BO J．12:725-734（1993）に記載された方法に実質的に従って単離される。二特異的抗体は、少なくとも２つの抗原に対して特異的に結合する抗体である。この場合、結合特異性の一つは、γ−ＨＲＧに対するものであり、他方は任意の異なる抗原に対するもの、例えば、ＥｒｂＢレセプターを活性化する他のポリペプチドに対するものである。例えば、γ−ＨＲＧ及び他のヘレグリンポリペプチドに特異的に結合する二特異的抗体は、本発明の範囲に含まれる。二特異的抗体は、全長抗体または抗体フラグメント（例えば、Ｆ（ａｂ’）₂二特異的抗体）として調製できる。二特異的抗体の製造方法は、この分野で知られている。全長二特異的抗体の伝統的な製造は、免疫グロブリンの２つの重鎖及び軽鎖の対の共発現に基づき、２つの鎖は異なる特異性を有している（Millstein等，Nature 305:537-539(198 3)）。免疫グロブリン重鎖及び軽鎖のランダムな分類のため、これらのハイブリドーマ（クアドローマ(quadromas)）は、１０の異なる抗体分子の混合物を生成スル可能性があり、その一つのみが正しい二特異的構造を有する。正しい分子の精製は通常親和性クロマトグラフィー過程で行われるが、扱いにくく製造収率は低い。類似の方法が、WO 93/08829及びTraunecker等，EMBO J.，10:3655-3659(1 991)に記載されている。異なる方法に従って、所定の結合特性を持つ抗体可変ドメイン（抗体−抗原結合部拉）は、免疫グロブリン固定ドメイン配列に融合される。融合は、好ましくは、少なくともヒンジ、ＣＨ２、及びＣＨ３領域を部分を含む免疫グロブリン重鎖固定ドメインで行われる。融合の少なくとも一方に存在する、軽鎖結合に必要な部位を含有する第１の重鎖固定領域（ＣＨ１）を有するのが好ましい。免疫グロブリン重鎖の融合及び必要ならば免疫グロブリン軽鎖をコードするＤＮＡは、別々の発現ベクターに挿入され、適当なホスト動物に共トランスフェクションされる。これによって、構造体における３つのポリペプチド鎖の等しくない比率が最適の収率を与える場合に、具体化における３つのポリペプチドフラグメント相互の比率の調整に大きな柔軟性が与えられる。しかしながら、少なくとも２つの等しい比率のポリペプチド鎖が、高収率をもたらす場合、または比率が特に重要な意味を持たない場合、１つの発現ベクターに、２つ又は３つ全てのポリペプチド鎖に対するコード配列を挿入することもできる。この方法の好ましい実施態様では、二特異的抗体は、一つの腕に第１の結合特異性を有するハイブリッド免疫グロブリン重鎖、及び、他の腕に（第２の結合特異性を与える）ハイブリッド免疫グロブリン重鎖対からなる。この非対称構造は、二特異的分子の１／２のみの免疫グロブリン軽鎖の存在が容易な分離方法を与えるように、所望の二特異的化合物を、望まない免疫グロブリン鎖の組み合わせから分離することを促進する。この方法は、Wo 94/04690に記載されている。二特異的抗体のさらに詳細については、例えば、Suresh等，Methods in Enzymolog y，121:210(1986)を参照のこと。他の方法によると、抗体分子対間の界面は、組み換え細胞培地から回収される異種ダイマーの比率を最大にするように設計することができる。好ましい界面は、少なくとも、Ｃ_H３抗体固定ドメインの一部を含む。この方法では、第１の抗体分子の界面からの一つ又はそれ以上の小さなアミノ酸側鎖は、より大きな側鎖（例えば、チロシンまたはトリプトファン）で置換される。第２の抗体分子には、この大きな側鎖と同一または類似のサイズの補償的”溝”が、大きな側鎖を小さなもの（例えば、アラニンまたはスレオニン）に置換することによって形成される。これにより、ホモダイマーなどの他の望まない最終生成物を赳えて異種ダイマーの収率を向上させるメカニズムが提供される。二特異的抗体は、交差結合(cross-linking)又は”異種接合(heteroconjugate) ”抗体を含む。例えば、異種接合の抗体の一つは、アビディンに結合でき、他はビオチンに結合できる。このような抗体は、例えば、望まない細胞に対する免疫系細胞のターゲットのために（米国特許第4,676,980号）、及びＨＩＶ感染の治療のために（WO 91/00360）提案されている。異種接合抗体は、任意の従来の交差結合方法を用いて製造することができる。好ましい交差結合試薬は、この分野で知られており、多くの交差結合試薬に沿って、米国特許第4,676,980号に開示されている。抗体フラグメントからの二特異的抗体を製造する技術は、文献に記載されている。例えば、二特異的抗体は、化学結合を用いて調製できる。Brennan等，Scien ce 229:81（1985）は、生得的抗体が、タンパク質分解的に切断されて、Ｆ（ａｂ’）₂フラグメントを生成する方法を記載している。これらのフラグメントは、ジチオール錯形成試薬亜砒酸ナトリウムの存在下で還元されて隣接するジチオールを安定化し、分子間ジスルフィドの形成を防止する。生成されたＦａｂ’フラグメントは、チオニトロベンゾエート（ＴＮＢ）誘導体に変換される。Ｆａｂ ’-ＴＮＢ誘導体の一つは、次いで、メルカプトエチルアミンで還元することによりＦａｂ’-チオールに戻し、等モル量の他のＦａｂ’-ＴＮＢ誘導体と混合して、二特異的抗体を生成する。生成された二特異的抗体は、酵素の選択的固定化のための試薬として用いることができる。最近の発達は、E.coliからのＦａｂ’-ＳＨフラグメントの直接回収を促進し、それは化学的結合して二特異的抗体を形成する。Shalaby等，J.Exp.Med.，175 :217-225(1992)は、全てのヒト化二特異的抗体Ｆ（ａｂ’）₂分子の製造を記載している。各Ｆａｂ’フラグメントは、E.coliから別々に分泌され、in vitroで化学的結合されて二特異的抗体を形成する。このようにして生成された二特異的抗体は、ｅｒｂＢを過剰発現する細胞及び通常のヒトＴ細胞に結合し、並びに、ヒト乳房腫瘍標的に対するヒト細胞毒性リンパ球の溶解活性をトリガーすることができる。組み換え細胞培地から直接に二特異的抗体フラグメントを製造及び単離する種々の技術が記載されている。例えば、二特異的抗体は、ロイシンジッパーを用いて製造されている。Kostelny等，J.Immunol．148(5):1547-1553(1992)。Ｆｏｓ及びＪｕｎタンパク質からのロイシンジッパーペプチドは、結合して、遺伝子融合により２つの異なる抗体のＦａｂ’部分となる。抗体ホモダイマーは、ヒンジ領域で還元されてモノマーとなり、次いで、再酸化されて抗体異種ダイマーを形成する。この方法は、抗体ホモダイマーの製造にも用いられる。Hollinger等，P roc.Natl.Acad.Sci．USA，90:6444-6448(1993)に記載された”ダイアボディ(dia body)”技術は、二特異的抗体フラグメントを製造する代替的メカニズムを提供した。フラグメントは、リンカーによって軽鎖可変ドメイン（Ｖ_L）に結合した重鎖可変ドメイン（Ｖ_H）を含むが、このリンカーは、同じ鎖の２つのドメイン間を結合するには短すぎる。従って、１つのフラグメントのＶ_H及びＶ_Lドメインは、強制的に他のフラグメントの相補的Ｖ_L及びＶ_Hドメインと対をなすので、２つの抗原結合部位が形成される。一本鎖Ｆｖ（ｓＦｖ）ダイマーを用いることによる二特異的抗体フラグメントの他の製造方法が報告されている。Gruber等，J. Immunol．152:5368(1994)参照。２以上の価数を持つ抗体が考えられる。例えば、三特異的抗体が調製できる。 Tutt等，J.Immunol．147:60(1991)。中和抗体を製造するために、抗体は、上記で合成したこれらの分子を製造する技術を用いて作製される。好ましい中和抗体は、γ−ＨＲＧに特異的（即ち、例えば免疫析出によって測定される他のヘレグリンと有意な交差反応をしない）。抗体パネルの製造に従って、抗体には、所定の基準（即ち、in vitroまたはinvi voのいずれかでγ−ＨＲＧの生物学的活性を中和できる）を満たすそれらの分子を同定するためにスクリーニング工程が施される。例えば、γ−ＨＲＧ変異体のスクリーニングのための上記のアッセイの一つまたはそれ以上において、γ−ＨＲＧの、γ−ＨＲＧ活性をブロックする能力が評価できる。細胞上のγ−ＨＲＧのＥｒｂＢレセプターへの結合及びまたは活性化能力及び／またはγ−ＨＲＧのマイトジェン活性をブロックするこれらの抗体は、中和抗体として選択できる。抗体は、γ−ＨＲＧポリペプチドについて上述したのと類似の方法で、細胞毒性試薬又は酵素（例えば、プロドラッグ−活性化酵素）に結合させてもよい。さらに、抗体は、γ−ＨＲＧポリペプチドについて上述したようにラベルしてもよく、特に、抗体は診断アッセイにおいて用いられる。 γ−ＨＲＧ抗体、例えば、特定の細胞、組織、または血清におけるその生成は、γ−ＨＲＧの診断アッセイにおいて有用である。抗体は、上記のγ−ＨＲＧのような方法でラベルされ及び／または不溶性マトリクスに固定化される。γ−ＨＲＧについての好ましい診断アッセイは良く知られており、７−ＨＲＧポリペプチドアッセイについて上記で議論した。γ−ＨＲＧ分子の秘匿された性質が与えられた後、生物学的流体におけるこの分子の検出のために特に有用なアッセイが、1995年3月28日に発行された米国特許第5,401,638号に記載されている。この方法によると、体液（例えば、ヒト血漿又は血清）中のγ−ＨＲＧは、それに特異的に結合する固定化抗体を用いて”捕捉”される。次に、任意にラベルされていてもよい第２の抗体が用いられ、捕捉されたγ−ＨＲＧが検出される。この第２の抗体は、γ−ＨＲＧの任意のエピトープに結合するものでよい。このようにして、対照に対する体液中のγ−ＨＲＧの量が検出される。 γ−ＨＲＧ抗体は、組み換え細胞培地又は天然源からの、γ−ＨＲＧの親和性精製にも有用である。中和抗-γ−ＨＲＧ抗体も、in vitro又はinV I voでのγ−ＨＲＧの生物学的活性をブロックするのに用いられる。これが望まれる臨床的状態は、γ−ＨＲＧアンタゴニストの使用について上述した。５．診断キット及び製品本発明は、便宜的に少なくとも２つのタイプの診断アッセイ（即ち、γ−ＨＲＧを用いた癌検出用、及び、抗体又はＤＮＡマーカーを用いた、サンプル中のγ −ＨＲＧの存在の検出用）を提供するので、これらのアッセイの試薬は、キット、即ち、試験すべきサンプルと混合される試薬の組み合わせの包装として供給できる。キットの成分は、通常は予め設定した割合で提供される。よって、キットは、適当なラベルで直接又は間接に標識された、抗体またはγ−ＨＲＧ（ＤＮＡまたはポリペプチド）を含む。検出可能なラベルが酵素である場合、キットは、酵素に必要な基質または補因子（例えば、検出可能な色原体またはフルオロホアを供給する基質前駆物質）を含む。さらに、安定化剤、バッファー等を含む他の添加剤を含んでもよい。種々の試薬の相対的な量は、アッセイの感度を実質的に大敵にする試薬濃度とするように広範に変化させてよい。特に、試薬は、賦形剤を含む通常は親油性化された乾燥粉末として提供してもよく、溶解させることにより適当な濃度の試薬溶液となるようにする。また、キットは、バイオアッセイを実施する使用説明書を具備してもよい。本発明の他の実施態様では、上記の疾患の治療に有用な材料を含む製品(artic le of manufacture)が提供される。製造物品は、容器及びラベルを具備する。好ましい容器は、例えば、ボトル、瓶、シリンジ、及び試験管を含む。容器は、ガラスまたはプラスチックなどの種々の材料から形成される。容器は、病状を治療するのに有効な組成物を収容し、無菌のアクセスポートを具備してもよい（例えば、容器は、静脈内溶液バッグまたは皮下注射針で刺通可能なストッパーを具備する瓶であってよい）。組成物中の活性試薬はγ−ＨＲＧ又はそのアンタゴニストである。容器上又は容器に付帯されたラベルは、組成物が選ばれた病状を治療するために用いられることを表示する。製品は、さらに、リン酸緩衝塩水、リンガー液及びデキストロース溶液などの製薬的に許容されるバッファーを収容する第２の容器を具備してもよい。さらに、他のバッファー、希釈剤、フィルター、針、シリンジ、及び使用説明書と共に挿入する包装などの、商業的または使用者の立場から望ましい材料を含んでもよい。以下の実施例は、例示のために提供され、何ら限定するものではない。明細書中の全ての引用文献の開示は、ここに参考として特に取り入れるものである。実施例１この実施例は、本発明のγ−ＨＲＧポリペプチドの単離及び生化学的特徴付けを記載する。材料及び方法試薬：ＨＲＧβ１_(177-244)のＥＧＦ様ドメインは、E.coliで発現させ、前述のように精製して放射性ラベルした（Sliwkowski等，J.Biol.Chem．269:14661-1 4665(1994)）。抗-ＥｒｂＢ２モノクローナル抗体２Ｃ４及び４Ｄ５は、別に記載されている（Fendly等，Cancer Research 50:1550-1558(1990)）。ＥｒｂＢ３ -及びＥｒｂＢ４-イムノアドヘシン(immunoadhesins)：唯一のＭ１Ｉ部位を、免疫グロブリンのヒンジドメインをコードする領域においてヒトＩｇＧ重鎖を発現するプラスミド中に処理した。また、Ｍ１Ｉ部位は、これらのレセプターのＥＣＤ／ＴＭ結合をコードする領域において一組のＥｒｂＢ発現プラスミド中にも処理した。全ての突然変異誘発は、Kunkel法（Kunkel,T.，Proc.Natl.Acad.Sc i．USA 82:488(1985)）を用いて行った。Ｍ１Ｉ部位は、適当なＥｒｂＢ-ＩｇＧ融合構造を作製するのに利用した。種々のＥｒｂＢ-ＩｇＧキメラの融合結合は：ＥｒｂＢ２については、Ｅ⁶⁴⁶ _ErbB2−(ＴＲ)−ＤＫＴＨ²²⁴ _VH；ＥｒｂＢ３については、Ｌ⁶³⁶ _ErbB3−(ＴＲ)−ＤＫＴＨ²²⁴ _VH；ＥｒｂＢ４については、Ｇ⁶⁴⁰ _ErbB4 −(ＴＲ)−ＤＫＴＨ²²⁴ _VHであった。保持されたＴＲ配列は、Ｍ１Ｉ部位から誘導された。最終的な発現構造は、ｐＲＫ−タイプのプラスミドバックボーンであり、真核発現は、ＣＭＶプロモーターによって制御される（Gorman等，DN A Prot.Eng.Tech．2:3-10(1990)）。 in vitro実験のためのタンパク質を得るために、接着性ＨＥＫ-２９３細胞を、標準リン酸カルシウム法を用いて、適当な発現プラスミドでトランスフェクションした（Gorman等，上記、及び、Huang等，Nucleic Acids Res．18:937-947(1 990)）。血清含有媒質を、トランスフェクション後１５時間で血清無し媒質に置換し、トランスフェクションされた細胞を５−７日インキュベートした。得られた条件付け媒質を収集し、プロテインＡカラムを通した（1mL Pharmacia HiTrap (商品名)）。精製したＩｇＧ融合を、引き続きＰＢＳに対して透析し、Centi-pr ep-30フイルター（Amicon）を用いて濃縮した。グリセロールを、最終のウド２ 5％まで添加し、材料を−２０℃で保存した。材料の濃度は、Ｆｃ-ＥＬＩＳＡを介して測定した。細胞培養：ヒト乳癌細胞系ＭＤＡ-ＭＢ-１７５、ＭＤＡ-ＭＢ-２３１、ＳＫ- ＢＲ-３及びＭＣＦ７を、American Type Culture Collectionから得て、１０％の熱不活性化ＦＢＳ、２ｍＭのグルタミン及び１０％のペニシリン-ストレプトマイシンを添加した、Ｆ１２Ｈａｍ’ｓ及びダルベッコの修飾イーグル媒質（ＤＭＥＭ）の５０：５０混合物中に保存した。ｃＤＮＡライブラリーの製造及び特徴付け：ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞から、グアニジウムイソチオシアネート-セリウムクロリド法（Sambrook等，Molecular C loning:A laboratory Manual（New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press ，(1989)）を用いて、全部のＲＮＡを精製した。ポリ（Ａ）⁺ＲＮＡを、供給者の薦めに従って、オリゴ(dT)ダイナビーズ(Dynabeads)（DYNAL）を用いて単離した。第１及び第２の鎖合成は、Gibco BRL cDNA合成キットを用いて行った。Amer shanからのｃＤＮＡクローニングシステムを用いたとき、γｇｔ１０ｃＤＮＡ組み換えが生成された。in vitroパッケージングは、Gigapack II(商品名)パッケージエクストラクト（Stratagene）を用いて行った。ＰｓｔＩ-ＸｈｏｌＨＲＧβ３ｃＤＮＡフラグメント（ｎｔ１４４−６１８）は、ランダムブライミングでラベルし、１×１０⁶ブラークをスクリーニングした。陽性のクローンを、二次及び三次スクリーニングによって確認して精製した。ファー時ＤＮＡを、ＢａｍＨＩフラグメントとして単離し、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＳＫ^-の対応する部位にサブクローニングした。クローン５は、Sequenase version 2.0(商品名 )DNA配列キット（United States Biochemicals，Inc.）を用いて完全に配列させた。両方の鎖を配列させた。細菌性発現系：クローン５のｃＤＮＡフラグメント（ｎｔ１６９０−２７２２）を、ｐＥｔ−３２ＴＲＸ融合ベクター（Novagen）にサブクローニングした。このＢｇｌＩＩ-ＢｇｌＩＩフラグメントを、ｐＥｔ３２ａプラスミドのＢａｎＨＩ部位に挿入した。E.coliにおけるｔｒｘγ-ＨＲＧ（アミノ酸４５５−７６８）タンパク質発現は、供給者の薦めに従って誘発した。組み換えγ−ＨＲＧの精製：ｔｒｘγ-ＨＲＧを発現するE.coliを回収し、５０ｍＭのＴｒｉｓＨＣＬｐＨ８中に、９ｍｌ／ｇで懸濁した。リソザイムを最終のウド０．２ｍｇ／ｍｌまで添加し、溶液を氷上で１時間攪拌した。ＤｎａｓｅＩ（１０μｇ／ｍｌ）及びＭｇＣｌ₂（４ｍＭ）を添加した。次いで、溶液を３０分間超音波処理し、その後細胞ペレットを回収した。ペレット画分を、６ＭＧｄｎＨＣＬ、０．１ＭＴｒｉｓＨＣＬ、ｐＨ８．８に、２５０ｍｌ／ｇで溶解させた。可溶化したタンパク質は、１／１０容量の１ＭのＮａ₂ＳＯ₃及び１／１０容量の０．２ＭのＮａ２Ｓ４Ｏ６を添加することによって亜硫酸化(sul fitolyze)した。反応は、室温で１．５時間行い、High Load Superdex(商品名)7 5 prepgradeカラム（Pharmacia）を用いたゲル濾過クロマトグラフィーによって精製した。リフォールディングは、１ｍＭのシステインの添加によって開始し、１０ｍＭのメチオニンを酸化防止剤として添加して、室温で終夜インキュベートした。タンパク質濃度は、定量的アミノ酸分析によって測定した。ノーザン及びサザンハイブリダイゼーション：全てのＲＮＡは、Chomczynski 等，Anal.Biochem．162:156-159(1987)の方法によって単離した。ポリ（Ａ）⁺は、供給者の薦めに従って、オリゴｄ（Ｔ）セルロースカラム（Qiagen）を用いて単離した。ＲＮＡは、変性させ、０．８％ホルムアルデヒド／１％寒天ゲル中でサイズ分画し、ナイロン膜（Hybond，Amersham）に移した。ＲＮＡは、ＵＶ架橋させた（UV Stratalinker，Stratagene）。ブレハイブリダイゼーションは、４２℃において、５０％ホルムアルデヒド／１％ＳＤＳ／１ＭのなＣｌ、１０％硫酸デキストラン、及び１００μｇ／ｍｌのヘリング精子ＤＮＡ中で、少なくとも２時間行った。ＨＲＧβ３のＥＧＦ様ドメインの相補的配列を持つ制限フラグメント、あるいは、γ−ＨＲＧの独特配列（ｎｔ１２３８−１８６８）をコードするＫｐｎＩ-ＡｖａＩＩｃＤＮＡフラグメントのいずれかを用いたｃＤＮＡプローブは、ランダムプライミング（Prime-It II，Stratagene）で放射性ラベルした。ハイブリダイゼーションは、³²Ｐラベルしたフラグメントを含む同じ溶液中で４２℃で１６時間行った。ブロットは、２×ＳＳＣ／１％ＳＤＳにより室温で数回洗浄し、同じ溶液により６５℃で２０分間洗浄し、最後に、０．２×ＳＳＣ／１％ＳＤＳにより室温で１５分間洗浄した。ブロットは空気乾燥させ、−８０℃において１６時間、補力スクリーンを持つDu Pont Reflection(商品名)フィルムに露出させた。肝臓、胸腺、前立腺、精巣、卵巣、小腸、結腸、末梢血液白血球、心臓、脳、胎盤、はい、肝臓、骨格筋、腎臓及び膵臓からのポリ（Ａ）⁺２μｇを含むヒトの多重組織ノーザンブロット（Clontech）を、供給者の薦めに従って、放射性ラベルしたγ−ＨＲＧｃＤＮＡプローブ（ｎｔ８４１−１４４７）でハイブリダイズした。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５及びＭＤＡ-ＭＢ-２３１ゲノムＤＮＡは、上記のSambrook 等,に記載されたように単離した。ＤＮＡは、０．２５ＮのＨＣｌでの輸送処理に先立って異なる制限酵素で消化し、ナイロン膜（Hybond，Amershal）上に移した。γ−ＨＲＧのＢｇｌＩＩ-ＮｄｅＩｃＤＮＡフラグメント（ｎｔ１６９０− ２３５１）も、ランダムプライミングによって放射性ラベルし、ハイブリダイゼーションプローブとして用いた。プレハイブリダイゼーションは、６×ＳＳＣ／５×Denhardt's／０．７５％ＳＤＳ、１０％硫酸デキストラン及び１００μｇ／ｍｌヘリング精子ＤＮＡ中において、６８℃で４時間行い、放射性ラベルしたプローブでのハイブリダイゼーションは終夜行った。ノーザンブロットと同様の洗浄条件を用いたが、６８℃の０．２×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳでの洗浄工程を追加し、検出は上記の用に行った。 ¹²⁵Ｉ−ＨＲＧ結合アッセイ：結合アッセイは、ヌンクのブレークアパートストリップウェル(Nunc breakapart strip well)において行った。プレートは、５０ｍＭの炭酸バッファー（ｐＨ９．６）中の５μｇ／ｍｌヤギ-抗-ヒト抗体（Bo ehringer Mannheim）の１００μｌで、４℃において終夜被覆した。プレートは、洗浄バッファー（ＰＢＳ／０．０５％Tween-20(商品名)）で２回洗浄し、１００μｌの１％ＢＳＡ／ＰＢＳで３０分間ブロックした。バッファーを除去し、各ウェルを、１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中の１５ｎｇのＩｇＧ融合タンパク質とともに、強く振とうさせながら１．５時間インキュベートした。プレートは、洗浄バッファーで３回洗浄し、強く振とうさせながら種々の濃度のγ−ＨＲＧ及び¹²⁵Ｉ− ＨＲｇβ１を添加することにより、競合的結合を行わせた。１．５−２時間のインキュベーションの後、ウェルを洗浄バッファーで３回洗浄し、排出させ、個々のウェルを100 Series Iso Data γ-カウンターを用いて計数した。チロシンリン酸化アッセイ：ＭＣＦ７細胞を、１０％のＦＢＳを含有するＦ１２／ＤＭＥＭ中で、１×１０⁵細胞／ウェルでプレートした。４８時間後、細胞を血清無しのＦ１２／ＤＭＥＭで洗浄し、６時間血清涸渇させた。種々の濃度の細菌性発現した先端を切ったγ−ＨＲＧ（即ち、０ｐＭ、２２ｐＭ、６６ｐＭ、２００ｐＭ及び６００ｐＭのｔｒｘγ−ＨＲＧ）またはＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞の未精製条件の媒質を、結合バッファー（Ｆ１２／ＤＭＥＭ中の０．１％ＢＳＡ）中で調製し、各ウェルに添加した。室温で８分間のインキュベーションの後、媒質を注意深く吸引し、１００μｌのサンプルバッファー（５％ＳＤＳ、０．２５％２-メルカプトエタノール、２５ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣＬｐＨ６．８）を添加することにより反応を停止させた。各サンプル２０μｌを４−１２％勾配ゲル (gradient gel)（Novex）中でサイズ分画し、次いで、電気泳動的にニトロセルロース膜に移した。アンチホスホチロシン(antiphosphotyrosine)（UBIからの4G 10、１０μｇ／ｍｌで使用）免疫ブロットを発生させ、反射密度測定によってＭｒ〜１８０ｋＤａにおける主要反応性バンドを定量化した。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞からの条件付け媒質の製造及び特徴付け：細胞は、Ｔ１７５フラスコに播種し、７０−８０％の融合度(confluency)（〜２．５×１０⁷ 細胞／フラスコ）に達するまで成長させた。次いで、細胞をＰＢＳで洗浄し、血清無しＦ１２／ＤＭＥＭ媒質中で３−４日間成長させた。次いで媒質を回収し、濾過し、YM10 Diaflo限外濾過膜（Amicon）を具備する限外濾過セルを用いて濃縮した。γ−ＨＲＧは、非還元条件下でのウェスタンブロット分析により、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞の条件付け媒質中で可視化した。γ−ＨＲＧは、Ｃ４逆相絡むを用いたＨＰＬＣによって部分的に精製した。ＣＨＯ発現する全長ＨＲＧβ １（レーン１）は及び半純粋γ−ＨＲＧ（レーン２）を電気泳動させ、ブロットをＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ４ＩｇＧ異種ダイマーでプローブして、ウェスタンブロットを発生させた。一部の精製された上清を含むレーンでは、〜６４ｋＤのバンドが見られたのに対し、ＣＨＯ発現する全長ＨＲＧβ１は４５ｋＤａタンパク質として移動した。クリスタルバイオレットでの細胞増殖アッセイ：腫瘍細胞系を、以下の密度で９６ウェルプレートにプレートした：ＭＤＡ-ＭＢ-１７５について２×１０⁴細胞／ウェル、及び、ＳＫ-ＢＲ-３について１×１０⁴細胞／ウェル。媒質は、１％のＦＢＳを含有し、細胞は２時間接着させた。モノクローナル抗体、免疫接着（１０μｇ／ｍｌ）または媒質のみを添加し、細胞を３７℃で２時間インキュベーションした。γＨＲＧβ１_177-244は、最終濃度１ｎＭとなるように、または細胞接着の中和のために１００ｎＭを添加し、細胞を４日間インキュベーションした。単層をＰＢＳで洗浄し、０．５％のクリスタルバイオレットで染色／固定した。プレートを空気乾燥し、染料をエタノール中の０．１Ｍクエン酸ナトリウムで希釈（５０：５０）し、５４０ｎｍにおける吸収を測定した。結果及び考察 γ−ＨＲＧの単離及び配列分析：ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞におけるヘレグリン転写を特徴づけるために、この細胞系から誘導したｍＲＮＡでλｇｔ１０ｃＤＮＡライブラリーを構成した。ライブラリーは、ＨＲＧβ３のＥＧＦ様ドメイン及びＮ-末端配列の一部に相当するｃＤＮＡプローブでスクリーニングした。種々のクローンが同定された。全長ｃＤＮＡ配列を含むクローンの一つが、単離され配列分析された。図１は、γ−ＨＲＧのヌクレオチド配列及び予想されるアミノ酸配列を示す。２３０３塩基対（ｂｐ）の単一のオープンリーディングフレームは、ｎｔ３３４のＡＴＧコドンから開始する。この開始コドンは、潜在的な翻訳開始部位として知られるヌクレオチド配列の中に存在する（Kozak，Nucleic A cid Research 15:8125-8148(1987)）。数個の停止コドンは、開始コドンの上流側に見られた。ｎｔ２６３７のＴＡＧ停止コドンは、３’非コード配列に続き、それは、他のＨＲＧアイソフォーム(isoform)配列と同一であり、Ａ-リッチな領域に続くポリアデニル化シグナルを含む。オープンリーディングフレームは、８４．２ｋＤａの計算上の分子量を持つ７６８アミノ酸残基のタンパク質をコードする。 γ−ＨＲＧの構造分析：図２に示すように、γ−ＨＲＧは、ＧＧＦ、ＳＭＤＦ、及びＨＲＧβアイソフォームと完全に一致するＥＧＦ様ドメインを有する。ＧＧＦ、ＳＭＤＦ及びＨＲＧβ３と同じように、アミノ酸配列は、１１可変アミノ酸残基が伸びた後に、近接膜領域で終端する。従って、γ−ＨＲＧは経膜的領域（ＴＭ）及び細胞質ドメインを欠く。ＨＲＧα及びＨＲＧβにおけるように、多数のＮ-またはＯ-結合グリコシル化部位を持つスペーサー領域が存在する。この領域は、Ｉｇ様ドメインを持つＥＧＦ様ドメインに連結する。最近発見された新しいアイソフォーム、即ち感覚及び運動ニューロン誘導因子（ＳＭＤＦ）を除いて、全ての周知のＨＲＧフォームはこのモチーフを含む。Ｉｇ様ドメインの蒸留のＮ−末端ドメインは、独特であり他の全てのヘレグリンから区別できる。ＨＲＧα及びＨＲＧβに見られる最初の３３アミノ酸配列は存在しない。しかし、γ −ＨＲＧは、周知のＤＮＡ又はタンパク質配列に類似性を示す５６０アミノ酸配列を有する。他のＨＲＧアイソフォームで見られるように、γ−ＨＲＧは、Ｎ− 末端シグナル配列を欠く。しかし、独特な領域は、２２アミノ酸伸びた疎水性アミノ酸残基を示し、それは、内部のシグナル配列として機能し、γ−ＨＲＧの分泌能力の原因となる場合もある。モチーフデータベースを検索した後、Ｎ−末端領域に構造的モチーフは見いだせなかった。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５、ＭＤＡ-ＭＢ-２３１細胞系及び異なるヒト組織におけるヘレグリン転写の同定：ＭＤＡ-ＭＢ-１７５、ＭＤＡ-ＭＢ-２３１細胞系及び哺乳類腺組織におけるヘレグリン転写を比較するために、ポリ（Ａ）⁺ＲＮＡにノーザンブロット分析を行った。HRGβ３のＥＧＦ様ドメインに相当する放射性ラベルしたフラグメントを用い、ＭＤＡ-ＭＢ-２３１ＲＮＡにおいて、以前観察されたように３つの転写を検出した（Holmes等，Science 256:1205-1210(1992)）。３つの転写のシグナル強度の変動性は、異なる細胞バッチ及びＲＮＡ調製物に依存した。同様の転写サイズは、通常の乳房組織ＲＮＡにも見られた。しかし、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５では、３．３ｋｂの主要な転写のみが見られた。γ−ＨＲＧの独特なＮ−末端配列に相当する³²ＰラベルしたｃＤＮＡプローブを用いた場合、ＭＤＡ-ＭＢ-２３１ＲＮＡにも乳房組織ＲＮＡにも、ハイブリダイゼーションシグナルは局在化しなかった。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５ＲＮＡでは、再び主要な３．３ｋｂバンドが検出された。オートラジオグラフへの過剰な露出により、１．８ｋｂ、５ｋｂ及び７．５ｋｂのサイズのさらに低い強度のバンドが見られた。これらは、ＥＧＦ様ドメインプローブを用いた広範な露出後のオートラジオグラムにも見られた。種々のヒト組織が、γ−ＨＲＧｍＲＮＡの存在について試験された。転写は、精巣、卵巣、骨格筋に見られ、心臓、脳及び腎臓に弱い強度で見られた。脾臓、胸腺、前立腺におけるノーザンブロットでは転写は見られず、結腸、末梢血液白血球、胎盤、肺、肝臓及び膵臓では小さな強度で見られた。いかなる理論に依るものでもないが、これは、これらの組織における異なるスプライシングによると思われる。 γ−ＨＲＧアイソフォームはＤＮＡ再配列の結果ではない：ヘレグリン／ＮＤＦアイソフォームは、分化的にスプライシングされた遺伝子の産物である。γ− ＨＲＧがヘレグリン遺伝子の代替的スプライシング変異体ではなく、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞におけるＤＮＡ再配列の産物である可能性が示された。この問いに答えるために、ＭＤＡ-ＭＢ-２３１及びＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞から回収されたゲノムＤＮＡのサザンブロット分析を行った。両方の細胞系のゲノムＤＮＡは、制限酵素で消化してサイズ分画した。ブロットを、γ−ＨＲＧの放射性ラベルしたｃＤＮＡプローブ（ｎｔ１６９０−２３５１）でハイブリダイズした。ｃＤＮＡプローブの５’プライムは、独特なＮ−末端配列に相補的であった。３’プライムは、ヘレグリンに共通に分配された配列の一部を含み、これは、上記のMa rchionni等,がエクソン２と定義している。これは、プローブが、エクソン／イントロン結合または可能なＤＮＡ再配列部位に渡って設計されたことを意味する。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５及びＭＤＡ-ＭＢ-２３１細胞系の両方におけるバンドサイズの比較は相違を示さず、γ−ＨＲＧが、ＤＮＡ再配列の産物ではなく、新たなヘレグリン遺伝子のスプライシング変異体であることを強く示唆している。 γ−ＨＲＧの機能活性：ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞で条件付けされた媒質を、ＭＤＦ７細胞への結合アッセイで分析したとき、〜２６ｐＭの濃度が検出された。しかし、この数値は、未精製媒質のＨＲＧβ１_(177-244)結合の置換特性に比較して得られたものである。この上清における低い濃度により、組み換えタンパク質が生成される。ＥＧＦ様ドメインでのスクリーニング後に得られた異なるλｇｔ１０クローンの部分配列分析は、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞が、一つ以上の新規なＨＲＧアイソフォームを転写するという結論を導く。図１のγ−ＨＲＧを離れて、図１のγ−ＨＲＧのアイソフォームをコードするクローン２０が広範に特徴付けされた（図５及び６Ａ-Ｃ参照）。γ−ＨＲＧと比較して、クローン２０は、アミノ酸５６０と５６１との間に、少なくとも２６アミノ酸残基の挿入を含む。さらに、Ｎ−末端ＤＮＡ配列は、付加的塩基対によってγ−ＨＲＧと相違している。しかし、クローン２０は５’末端を欠いている。哺乳類細胞における初期発現実験は、クローン２０ＤＮＡ配列を含む構造物で行われた。分泌されたフォームのタンパク質配列分析は、Ｎ−末端配列及び疎水性領域を欠く加工されたポリペプチドを示した。タンパク質分解的切断が、このクローンの付加的挿入領域において、２つのアルギニン残基の間で起こった（即ち、タンパク質分解的に加工したタンパク質のＮ末端残基は、図５における残基３１５であった）。これらのデータに基づき、γＨＲＧチオレドキシン融合タンパク質のＮ−末端切断物を、細菌性発現系で発現させた。Ｃ−末端チオレドキシン融合タンパク質として発現させたとき、幾つかの哺乳類サイトカイン及び成長因子はE.coli細胞質に留まると報告されているが、ｔｒｘγ−ＨＲＧは不溶性であった（La VAllie等，Bio/Techn ology 11:187-193(1993)）。これらの条件下で、ｔｒｘγ−ＨＲＧは封入体に蓄積され、そこから組み換えタンパク質が単離される。精製に続いて、タンパク質は亜硫酸化され、次いでシステインの添加によりリフォールドされる。γ−ＨＲＧと、ヘレグリンレセプターＥｒｂＢ３及びＥｒｂＢ４との相互作用が試験された。in vitro系を用いた結合分析が行われ、個々のレセプターの結合特性が実験された。ＥｒｂＢ３及びＥｒｂＢ４の細胞外ドメインを含むＩｇＧ融合タンパク質が構成された。イムノアドヘシンは、¹²⁵Ｉ−ＨＲＧβ１（１７７−２４４）（０．２３ｎＭ）及び増加させた量の非標識γ−ＨＲＧとともにインキュベーションした。γ−ＨＲＧは、ＥｒｂＢ３及びＥｒｂＢ４の両方のレセプター各々に置換可能であった。結合分析は、ＥｒｂＢ３イムノアドヘシンに対するγ−ＨＲＧについて、１９±１．３ｎＭのＥＣ₅₀、ＥｒｂＢ４−ＩｇＧに対して、１３．３±０．８ｎＭのＥＣ₅₀を示した（図３）。競合的結合アッセイにおける、ＨＲＧβ１_(177-244)とチオレドキシンＨＲＧβ１_(177-244)融合タンパク質との比較により、Ｎ−末端チオレドキシン配列は、結合親和性に影響しないことが示された。全てのチロシンキナーゼクラスＩレセプターを中位のレベルで発現するヒト乳癌細胞系ＭＣＦ７（Beerli等，Mol.Cell.Biol.，15:6496-6505(1995)）における、ＥｒｂＢレセプターのチロシンリン酸化を刺激するγ−ＨＲＧの能力が実験された。細胞は、種々の量のγ−ＨＲＧで処理され、抗-ホスホチロシン抗体での免疫ブロットを用いてチロシンキナーゼ活性が測定された。投与量依存性のチロシンリン酸化が検出された。ＥＣ₅₀は、γ−ＨＲＧβ１（６０ｐＭ）で処理したＭＣＦ７で見られたものと同様であった。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞の上清に見られるγ−ＨＲＧの機能活性を評価した。分泌されたアイソフォームのサイズ測定は、ＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ４−ＩｇＧ異種ダイマーで実施されるウェスタンブロットによって行った。γ−ＨＲＧは、Ｃ４逆相カラムを用いたＨＰＬＣにより、条件付け媒質から半精製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより〜６４ｋＤａのバンドが見られ、全長ＨＲＧβ１を発現したＣＨＯは、４５ｋＤａの分子量サイズで泳動した。これらのデータは、成熟したタンパク質が、ＨＲＧβ１より２０ｋＤａ大きいことを示している。いかなる理論によるものではないが、γ−ＨＲＧの加工は、分泌事象の間に起こり、γ−ＨＲＧの”成熟”フォームを放出すると思われる。ＭＣＦ７細胞に対する結合実験により、¹²⁵Ｉ−ＨＲＧβ１_(177-244)の未精製条件付け媒質での投与量依存性の置換が示された。さらに、ＭＣＦ７細胞に対するチロシンリン酸化実験は、分泌されたγ−ＨＲＧのシグナル化能力も明らかにした。これらの発見は、組み換えγ−ＨＲＧで行った実験から得られたデータに合致する。ヘレグリンはヒト乳房腫瘍細胞系ＭＤＡ-ＭＢ-１７５の自己分泌成長因子である：ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞は、ＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ３及びＥｒｂＢ２／ＥｒｂＢ４異種ダイマー複合体Sliwkowski等，J.Biol.Chem．269:14661-14665（1994 ）のリガンド依存性形成を阻害するＥｒｂＢ２モノクローナル抗体（２Ｃ４）で処理した。クリスタルバイオレット染色アッセイにおいて、２Ｃ４でのインキュベーションは、この細胞系に対する強い成長阻害効果を示した（図４Ａ）。外来ＨＲＧは、この阻害を有意に逆転しなかった。一方２Ｃ４は、ＥｒｂＢ２過剰発現細胞系ＳＫ-ＢＲ-３には阻害効果を示さなかった（図４Ｂ）。２Ｃ４からの異なるエピトープと相互作用する他のＥｒｂＢ２に対するモノクローナル抗体である（Fendly等，上記）４Ｄ５での処理は、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５さいぼうにおいて中程度の成長阻害性であった。４Ｄ５による細胞分化の阻害は、ＥｒｂＢ２発現レベルに依存する（Lewis等，Cancer Immunol.Immunother.，37:255-263（1993) ）。ＳＫ-ＢＲ-３細胞における６６％の最大阻害が検出された（図５Ｂ）。しかしながら、この効果は、外来ＨＲＧによって打ち負かされる。分泌されたγ −ＨＲＧが-ＥｒｂＢレセプターと自己分泌的に相互作用することをさらに実証するために、可溶性レセプターイムノアドヘシンを用いてさらなる阻害実験を行った。ＭＤＡ-ＭＢ-１７５及びＳＫ-ＢＲ-３細胞を、ＥｒｂＢ４−ＩｇＧとともに４日間インキュベーションし、細胞増殖をクリスタルバイオレット染色によって測定した。イムノアドヘシンでの処理は、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５細胞において６４％の強い成長阻害をもたらした。この効果は、過剰の外来ＨＲＧの添加によって完全に中和された。ＨＲＧを発現しないＳＫ-ＢＲ-３細胞においては、ＥｒｂＢ４−ＩｇＧ処理は効果がなかった。これらの発見から、ＭＤＡ-ＭＢ-１７５によるγ−ＨＲｇの分泌は、構成的活性レセプター複合体の形成を導き、これらの細胞の自己分泌的成長を刺激すると結論づけられる。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ０７Ｋ 14/52 Ｃ０７Ｋ 16/22 16/22 Ｃ１２Ｐ 21/02 ＨＣ１２Ｎ 5/06 21/08 5/10 Ｃ１２Ｑ 1/68 ＺＣ１２Ｐ 21/02 Ｇ０１Ｎ 33/53 Ｄ 21/08 Ｃ１２Ｎ 5/00 ＥＣ１２Ｑ 1/68 ＢＧ０１Ｎ 33/53 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ

Claims

【特許請求の範囲】１．単離されたγ−ＨＰＧ。２．天然のグリコシル化を伴わない請求項１記載のγ−ＨＰＧ。３．ＳＥＱＩＤＮｏ：２のヒトγ−ＨＲＧのエフェクター機能を有し、（ａ）ＳＥＱＩＤＮｏ：２における天然γ−ＨＲＧに対するアミノ酸配列；（ｂ）（ａ）の配列以外の、動物種からの天然γ−ＨＲＧに対する天然のアミノ酸配列；（ｃ）（ａ）または（ｂ）の、天然の対立遺伝子変異体またはアイソフォーム；及び（ｄ）（ａ）、（ｂ）または（ｃ）の１つまたは２つののアミノ酸のみが置換されたアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む請求項１記載のγ−ＨＰＧ。４．ＳＥＱＩＤＮｏ：２における成熟γ−ＨＲＧに対するアミノ酸配列を含む請求項１記載のアミノ酸配列。５．ＳＥＱＩＤＮｏ：４のγ−ＨＲＧＮ−末端ドメイン（ＮＴＤ）の少なくとも１３の連続アミノ酸配列を含む単離されたポリペプチド。６．ＳＥＱＩＤＮｏ：４の成熟γ−ＨＲＧＮ−末端ドメイン（ＮＴＤ）に対するアミノ酸配列を含む請求項５記載のポリペプチド。７．請求項１記載のγ−ＨＲＧと、製薬的に許容されるキャリアとを含有する組成物。８．無菌である請求項７記載の組成物。９．ＥｒｂＢレセプターを発現する細胞を、請求項１記載のγ−ＨＲＧに接触させることを含んでなる、ＥｒｂＢレセプターを活性化する方法。１０．細胞が細胞培地である請求項９記載の方法。１１．細胞が哺乳類中に存在する請求項９記載の方法。１２．哺乳類がヒトである請求項１１記載の方法。１３．細胞を、請求項１記載のγ−ＨＲＧに接触させることを含んでなる、細胞の増殖、分化、及び生存を促進する方法。１４．細胞が、グリア細胞または筋肉細胞である請求項１３記載の方法。１５．ＥｒｂＢを含むと思われるサンプルを、請求項１記載のγ−ＨＲＧに接触させ、結合の発生を検出することを含んでなる、ＥｒｂＢレセプターの検出方法。１６．請求項１記載のＮ末端ドメイン（ＮＴＤ）に結合する単離された抗体。１７．中和抗体である請求項１６記載の抗体。１８．γ−ＨＲＧを含むと思われるサンプルを請求項１６記載の抗体に接触させ、結合の発生を検出することを含んでなる、γ−ＨＲＧの検出方法。１９．γ−ＨＲＧを含有する混合物を、請求項１６記載の抗体が結合した固相を通し、γ−ＨＲＧを含む画分を回収することを含んでなる、γ−ＨＲＧの精製方法。２０．γ−ＨＲＧをコードする単離された核酸分子。２１．（ａ）ＳＥＱＩＤＮｏ：１の成熟γ−ＨＲＧ遺伝子のコード領域のヌクレオチド配列を含む核酸；（ｂ）配列（ａ）の遺伝子コードの縮重の範囲内に相当する核酸；及び（ｃ）中等緊縮条件下でＳＥＱＩＤＮｏ：２のヒトγ−ＨＲＧのＮ末端ドメイン（ＮＴＤ）をコードするＤＮＡに相補的なＤＮＡにハイブリダイズし、ＳＥＱＩＤＮｏ：２のγ−ＨＲＧのエフェクター機能を有するポリペプチドをコードする核酸からなる群から選択される、請求項２０記載の核酸分子。２２．核酸分子にオペレート可能に結合したプロモータをさらに含む請求項２０記載の核酸分子。２３．ＳＥＱＩＤＮｏ：２における成熟γ−ＨＲＧのアミノ酸配列に相当するポリペプチドをコードする請求項２０記載の核酸分子。２４．ＳＥＱＩＤＮｏ：３の核酸配列に相補的であり、ＭＤＡ−ＭＢ−１７５細胞によるγ−ＨＲＧポリペプチドの生産を低下させることのできる単離された核酸分子。２５．請求項２０記載の核酸分子を含むベクター。２６．ベクターで形質転換されたホスト細胞によって認識される調節配列にオペレート可能に結合した請求項２０記載の核酸分子を含む発現ベクター。２７．請求項２０記載の核酸分子を含むホスト細胞。２８．請求項２７記載のホスト細胞を培養し、細胞培地からγ−ＨＲＧを回収することを含んでなる、γ−ＨＲＧをコードする核酸分子のγ−ＨＲＧの生産をエフェクトするための使用方法。２９．（ａ）内因性γ−ＨＲＧ遺伝子を含む細胞を、増幅可能な遺伝子及び内因性γ−ＨＲＧ遺伝子内またはその近傍のＤＮＡ配列と同種の少なくとも１５０塩基対のフランキング配列を含む同種のＤＮＡで形質転換することにより、組み換えによって同種ＤＮＡを細胞ゲノムに組み込み、（ｂ）細胞を、増幅可能な遺伝子の増幅のために選択する条件下で培養することにより、γ−ＨＲＧ遺伝子も増幅され、その後、（ｃ）細胞からγ−ＨＲＧを回収することを含んでなる、γ−ＨＲＧの製造方法。