JP2012121902A

JP2012121902A - 抗ウイルス薬および癌に対する医薬を製造するためのパラポックスウイルスｏｖｉｓ株の使用

Info

Publication number: JP2012121902A
Application number: JP2012021508A
Authority: JP
Inventors: Olaf Weber; オラフ・ヴェーバー; Tobias Schlapp; トビアス・シュラップ; Angela Siegling; アンゲラ・ジークリング; Andreas Knorr; アンドレアス・クノール; Claudia Hirth-Dietrich; クラウディア・ヒルト−ディートリッヒ; Gudrun Theiss; グトルン・タイス; Hans-Dieter Volk; ハンス−ディーター・フォルク
Original assignee: Aicuris GmbH and Co KG
Current assignee: Aicuris GmbH and Co KG
Priority date: 2000-07-11
Filing date: 2012-02-03
Publication date: 2012-06-28
Also published as: TWI304341B; PE20020187A1; SV2002000528A; GT200100136A; ECSP034419A; KR20030016387A; BR0112407A; KR100805996B1; ZA200300274B; HN2001000154A; DOP2001000211A; BRPI0112407B8; BRPI0112407B1; DE10122451A1

Abstract

【課題】感染性または非感染性の免疫不全のための免疫治療剤の提供。
【解決手段】ヒトおよび動物におけるウイルス感染および癌に対する医薬の製造のための、パラポックスウイルスｏｖｉｓ株ＮＺ２、ＮＺ−７、ＮＺ−１０およびｏｒｆ−１１の１つに分類上属するウイルスの使用。
【選択図】なし

Description

本発明は、感染性または非感染性の免疫不全のための免疫治療剤としての、パラポックスウイルスｏｖｉｓ株の使用、および腫瘍性疾患およびウイルス感染ならびにそのような感染を伴う疾患を治療するためのパラポックスウイルスｏｖｉｓ株の使用、さらにヒトおよび動物において使用するための医薬の製造のためのパラポックスウイルスｏｖｉｓ株の使用に関する。

本発明はさらに、パラポックスウイルスｏｖｉｓ株、およびそれから調製される医薬形態の、ストレス（例えば手術）後の感染性疾患を予防または軽減するためのストレス後感染防御における免疫治療剤または免疫予防剤としての使用；手術または介入前（例えば、プロテーゼの移植前または歯科的介入の前）に投与することによる感染性疾患の予防または軽減のための感染予防におけるそれらの使用、（例えば気管の、パピローマウイルス感染の、ヘルペスウイルスによる感染の、ＨＩＶ感染の、および肝炎ウイルスによる感染のような内蔵のウイルス感染の）急性および慢性のウイルス感染の感染後防御または治療におけるそれらの使用、創傷治癒過程を促進するための創傷治癒におけるそれらの使用、および治癒がごくわずかまたは全く治癒しない創傷の治癒の支援のためのそれらの使用（例えば、脚の潰瘍）、多発性硬化症、喘息、いぼおよびその他の皮膚の新形成等の疾患に対するそれらの使用、様々なアレルギー疾患に対するそれらの使用、全身的なアレルギーの発症を阻止するためのそれらの使用、および局所的なアレルギーに対するそれらの使用、および例えば老人患者における健康状態の改善のためのそれらの使用に関し、本発明において用いられるパラポックスウイルスｏｖｉｓ株はＮＺ２、ＮＺ−７、ＮＺ−１０およびｏｒｆ−１１である。

本発明はさらに、特定の細胞、例えばＷＩ−３８, ＭＲＣ−５もしくはＶｅｒｏ細胞、で継代および／または適合させることによって得られたこれらの株の子孫、またはこれらの株もしくは子孫から得られたウイルスの一部もしくは断片を使用することも可能である。一部とは、適当な系、例えば培養線維芽細胞において、適当なベクター、例えばワクシニアの助けかりて発現するゲノムまたはサブゲノム断片であると理解される。断片とは、例えば超音波処理により物理的に破壊された粒子の、例えばクロマトグラフィー等の生化学的な精製によって得られる一部分であると理解される。

本発明はさらに、医薬および医薬調製物を製造するためのパラポックスウイルスｏｖｉｓの該株の使用に関する。さらに、本発明は、抗ウイルス治療または癌治療のための医薬および医薬調製物を製造するための、他の治療法と組み合わせた、パラポックスウイルスｏｖｉｓの該株の使用に関する。

潜在的で慢性的な持続的ウイルス感染は、免疫抑制によって活性化または再活性化し得ること、また逆に、潜在的であるウイルス（例えば潜在的なヘルペスウイルス感染は免疫抑制に関連して再発する：ストレスまたはコルチゾン投与に関連する陰唇疱疹）によって誘発される急性疾患を免疫系が抑制することが知られている。さらに、慢性的に持続するおよび潜在的なウイルス感染は、低分子量を有する従来の抗ウイルス物質を用いて治療することは困難であるかまたは不可能でさえある。

その理由は、そのような感染に関連するウイルスの酵素活性の不在（例えば、最初にヌクレオシドインヒビターをウイルスの核酸に取り込んでこのインヒビターが例えばウイルスＤＮＡの鎖を終止させるようにするウイルスポリメラーゼの不在；例えば、抗ウイルス化合物を最初にリン酸化してこの化合物が活性になるようにする必要のある何らかのウイルスチミジンキナーゼ活性の不在）、または宿主の免疫系による、感染したまたは変性した細胞の、例えば癌細胞の、またはウイルス抗原の、何らかの認識の欠如であり得る。

さらに、臨床上治りにくいウイルス感染に関連して、別のウイルスによる重感染が、その臨床上治りにくいウイルスに対する抗ウイルス効果をもたらし得ることが知られている¹⁾。著者¹⁾は、Ｔ細胞、ナチュラルキラー細胞およびマクロファージよって分泌される、ＩＦＮ−γおよびＴＮＦ−αなどのインターフェロンに対するこの効果の関連を実証することができた。

クラスＩ制限的細胞傷害性Ｔ細胞がＨＢＶトランスジェニックマウスにおける肝細胞ＨＢＶ遺伝子発現を阻害することが可能であること、肝細胞をなんら破壊することなくこの過程が起こること、およびこの過程がＴＮＦ−αおよびＩＦＮ−γによって発揮されることを実証した別の初期の研究²⁾がこの著者によって得られた結果によって確認された。

「パラ特異的免疫」を誘導するための物質、即ち「パラ免疫誘導物質」と呼ばれる物質は、獣医の現場において、比較的長い間、治療的、感染後防御的および予防的に用いられてきた。パラ特異的免疫誘導物質は、例えば、化学的に不活化されたパラポックスウイルスｏｖｉｓ、Ｄ１７０１株（ＤＥ３５０４９４０）からなる。ＢＡＹＰＡＩＶ１ＵＮ（登録商標）はこのウイルス（パラポックスウイルスｏｖｉｓ、Ｄ１７０１株）をもとに調製された製品である。

動物において、不活化されたパラポックスウイルスは、非常に多岐にわたる病原体によって引き起こされた感染に対する非特異的な保護を誘導する。この保護は、内因的な防御システムの一部を構成する様々なメカニズムによって媒介されると考えられる。

これらのメカニズムには、感染の誘導、ナチュラルキラー細胞の活性化、「コロニー刺激活性」（ＣＳＡ）の誘導およびリンパ球増殖の刺激が含まれる。作用機序の初期の研究は、インターロイキン２およびインターフェロンαの刺激効果を実証した³⁾。

この背景に基づき、本発明の目的は、パラポックスウイルスｏｖｉｓＤ１７０１株によるパラ特異的免疫反応の上記の一般化された誘導を質的に増大させるようにパラポックスウイルスｏｖｉｓの優れた効果の治療上の有用性を更に改善し、より優れた抗ウイルスまたは抗腫瘍効果を低用量を用いて達成することができるように改善することである。またこの治療効果は副作用が少ないと期待される。

したがって、本発明の目的は、パラポックスウイルスの免疫学的効果を改善することである。この目的は、慣用的に用いられているＤ１７０１株の代わりにパラポックスウイルスｏｖｉｓの上記の株を使用することにより達成される。

本発明は、ヒトおよび動物におけるウイルス感染および癌に対する医薬の製造のための、分類上パラポックスウイルスｏｖｉｓ株ＮＺ２、ＮＺ−７、ＮＺ−１０またはｏｒｆ−１１の１つに属するウイルスの使用に関する。

本発明はさらに、ヒトおよび動物におけるウイルス感染および癌に対する医薬の製造のための、本発明の株の子孫の使用であって、該子孫が、適当な細胞系、例えばＷＩ−３８およびＭＲＣ−５、Ｖｅｒｏ細胞等のヒト細胞、ＢＫ−Ｋｌ３Ａ４７／ＲｅｇまたはＭＤＢＫ等のウシ細胞およびＭＤＯＫ等のヒツジ細胞に継代または適合させることによって得られる、使用、さらに該株およびそれらの継代および適合化した変異体の部分または断片の使用であって、該一部が培養線維芽細胞等の適当な系においてワクシニアウイルス等の適当なベクターの助けをかりて発現するゲノムまたはサブゲノム断片であると理解され、断片が、発現したまたは物理的に破壊したウイルス粒子のクロマトグラフィー等の生化学的精製によって得られる一部分であると理解される、使用、およびさらにパラポックスウイルスｏｖｉｓの１つの株の使用であって、自己免疫疾患のためのおよび気道および内蔵の急性および慢性ウイルス感染のための免疫治療剤または免疫予防剤としての医薬および医薬粗製物の製造のための、使用、およびさらに該株およびそれから得られた誘導体の１つの使用であって、ストレス感染後防御および感染後の感染性疾患を予防または軽減するための、さらに手術および歯科的介入のなかでの感染予防に関連する医薬および医薬粗製物の製造のための、使用、およびさらに該株およびそれから得られた誘導体の１つの使用であって、例えば気道の、パピローマウイルス感染の、ヘルペス属のウイルスによる感染の、ＨＩＶ感染の、または内蔵のウイルス感染、例えば肝炎ウイルスによる感染等の急性および慢性ウイルス感染の感染後防御または治療において使用するための、使用、およびさらに該株およびそれから得られた誘導体の１つの使用であって、創傷治癒過程を促進するために、および治癒がごくわずかまたは全く治癒しない創傷の治癒を支援するために創傷に対して、および脚の潰瘍に対して使用するための、使用、およびさらに該株およびそれから得られた誘導体の１つの使用であって、アレルギー疾患、乾癬、神経皮膚炎および他の自己免疫疾患、例えばループスエリテマトーデス等、の様々な疾患に対して使用するための、および例えば高齢の患者において、健康状態を改善するための、使用、およびさらに該株およびそれから得られた誘導体の１つの使用であって、内蔵の、例えばクーロン病、皮膚の、血液の、中枢神経系および、目を含むその付加的な構造の、癌を含む炎症性、変性および増殖性疾患に対して使用するための医薬および医薬粗製物の製造のための、使用、およびさらにヒトおよび動物における抗ウイルス治療または癌治療のための医薬および医薬調製物の製造のための他の治療法と組合せての、該株およびそれから得られた誘導体の１つの使用に関する。

好ましくは、本発明は、経口投与のためのおよび／または経口投与のための耐胃液製剤における、他の治療法と組み合わせた、医薬および医薬粗製物の製造のためのパラポックスウイルスｏｖｉｓの１つの株の使用に関する。

本明細書に例示的に記載されたパラポックスウイルスｏｖｉｓＮＺ−２は、European Collection of Cell Cultures, Centre for Applied Microbiology and Research, Porton Down, Salisbury, Wiltshire, SP4 0JG, United Kingdomにおいて２００１年７月１０日に寄託された。受託番号はＥＣＡＣＣ−０１０７１００６である。

Ｄ１７０１株またはＮＺ２株によるＨＢＶ−トランスジェニックマウスの処置の結果を示す。血漿において得られたＤ１７０１株またはＮＺ２株を用いたＨＢＶ−トランスジェニックマウスの処置の結果を示す。Ｄ１７０１株またはＮＺ２株による処置後に誘導されたγインターフェロンの発現レベルを示す。Ｄ１７０１株またはＮＺ２株による処置後に誘導されたＴＮＦαの発現レベルを示す。Ｄ１７０１株またはＮＺ２株による処置後に誘導されたＩＬ−１５の発現レベルを示す。腫瘍を有するヌードマウスにおけるＤ１７０１株またはＮＺ２株による処置後の腫瘍の平均の大きさを示す（ｍｇ）。○：グループ１（プラセボ（ＰＢＳ））、△：グループ２（Ｄ１７０１株）、□：グループ３（ＮＺ２株）。ＮＺ２株およびＤ１７０１株のヒトＭＲＣ−５細胞における継代能力を示す。ヒトＭＲＣ−５細胞をＮＺ２株またはＤ１７０１株に感染させ、得られた細胞上清中のウイルス力価（ＴＣＩＤ₅₀）を継代数に対してプロットした。ウシＢＫクローン３ａ細胞およびヒトＷＩ−３８細胞でのＤ１７０１株の継代において得られた、継代数に対してプロットされたウイルス力価を示す。ウシＢＫクローン３ａ細胞およびヒトＷＩ−３８細胞でのＮＺ２株の継代において得られた、継代数に対してプロットされたウイルス力価を示す。ヘルペスウイルス感染後の生存率に対する、ＮＺ２株の用量依存的効果を示す。

一例として以下のものを発見した：
実施例１.Ｂ型肝炎ウイルスのおける治療活性の実証−トランスジェニックマウス
Ｂ型肝炎ウイルス−トランスジェニックマウス（ＨＢＶ株１.３Ｘ^-ｔｇ）を「概念実証」実験に用いた。１群あたり８〜１０週齢の雄性マウスを７匹用いた。実験開始から１日目および４日目に０.１５ｍＬの体積で種々の用量を腹腔内投与した。

投与については、個々の投与群について、以下の希釈率の各ウイルス株を調製した：
第１用量１.５×１０⁶ＴＣＩＤ₅₀
第２用量５×１０⁵ＴＣＩＤ₅₀
第３用量１.５×１０⁵ＴＣＩＤ₅₀
第４用量５×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀
滅菌した、ピロゲンフリーのＰＢＳをプラセボ対照として用いた。
ウイルスは以下のようにして濃縮した：５００ｍＬのパラポックスウイルスｏｖｉｓＮＺ２株（力価、約２×１０⁵ＴＣＩＤ₅₀／ｍＬ）およびパラポックスウイルスｏｖｉｓＤ１７０１株（力価１×１０⁷ＴＣＩＤ₅₀／ｍＬ）から得られた上清を同じウイルス力価に調整した。Ｂｅｃｋｍａｎ超遠心（ＳＷ２８ローター、２８０００ＲＰＭ、４℃にて３時間）をこの目的に使用した。超遠心の後、適当な体積の希釈用培地を用いてペレットを１×１０⁷ＴＣＩＤ₅₀／ｍＬの力価に調整した。

逆滴定を確認するために、対応する用量のアリコートを用い、これらの用量の力価を確認した。確認用のアリコートを除去した後、対応する用量を５６℃で１時間不活化した。
希釈用培地:
１０ｍＬのＥＭＥＭ１０×
２.７ｍＬの２ｇ／Ｌ炭酸水素塩１ｍＬの１％グルタミン
８６.３ｍＬの２回蒸留水

５日目に、動物を安楽死させ肝臓と血液を採取した。各動物の肝臓約２０ｍｇをＱＩＡａｍｐ組織キット（Qiagen、Hilden）を用いて処理し、ＤＮＡの濃度を分光計で測定し、１％アガロースゲルでの電気泳動によりその完全性をチェックした。ドットブロットハイブリダイゼーション法で、このＤＮＡをＨＢＶ特異的プローブとハイブリダイズさせた。ＲＮＡによって生じるシグナルを排除するためにＤＮＡは予めＲＮＡｓｅＡ（Qiagen、Hilden）で処理しておいた。２００μＬのＤＮＡ（１０μｇ）をナイロンメンブレン（Boehringer Mannheim）に載せ、それぞれのケースにつき３分間ソークＩ（０.５ＮＮａＯＨ；１ＭＮａＣｌ）で４回処理し、ソークＩＩ（３ＭＮａＣｌ；０.５Ｍｔｒｉｓ−ＨＣＩ、ｐＨ７.４）で２回処理した；次いでＤＮＡを１２０℃で３０分間焼いた後、プローブを含まない標準ハイブリダイゼーションバッファー（５×ＳＳＣ、Ｎ−ラウリルサルコシン、０.１％ｗ／ｖ；ＳＤＳ、０.０２％；ブロッキング試薬、１×および１００μｇの新鮮な精子ＤＮＡ／ｍＬ）を用いて６０℃で３０分間プレハイブリダイズさせた。この工程の後、全ＨＢＶゲノムを含むＤＮＡ（２０〜４０ｎｇ／ｍＬハイブリダイゼーション緩衝液）をランダムオリゴヌクレオチドプライム化プローブとハイブリダイズさせた。その後、フィルターを、４×ＳＳＣ／０.１％ＳＤＳ、２×ＳＳＣ／０.１％ＳＤＳおよび１×ＳＳＣ／０.１％ＳＤＳ中で６４℃にて１０分間洗浄した。

免疫学的検出は、製造者の説明書にしたがって、ＣＤＰ−ＳｔａｒＲシステム（Boehringer Mannheim）を用いて行った。評価のためにＬｕｍｉｌｍａｇｅｒＲ（Boehringer Mannheim）を使用した。血液中のＨＢＶ特異的ＤＮＡを定量的ＰＣＲにより定量した。まず、ＥＤＴＡ血を遠心することにより血漿を単離した。ＤＮＡをHighPure 16 System Viral Nucleic Acid Kit （Boehringer Mannheim）および定量的ＰＣＲを用いて精製し、ABI PRISM 7700 Sequence Detection System （PE Applied Biosystems）によってＨＢＶ特異的シグナルについて試験した。以下のプライマーとプローブを用いた:
ayw-570f （センス） 5'- CTGTACCAAACCTTCGGACGG - 3'
ayw-670r （アンチセンス） 5'- AGGAGAAACGGGCTGAGGC - 3'
プローブ:
ayw-613t 5'- CCATCATCCTGGGCTTTCGGAAAATT - 3'。

ＤＮＡを５０μＬの反応液（この反応液には、１.４ｍＭの各ｄＮＴＰ、４．７５ｍＭのＭｇＣｌ₂、１５ｐｍｏｌの各プライマーおよびプローブ、５μＬの１０倍量のＰＣＲ緩衝液[すべてのＰＣＲ試薬はTagManコア試薬キット（Perkin Elmer/Roche Molecular Systems Inc.）から入手した]および１.２５ＵのＴａｑＤＮＡポリメラーゼおよび０.２５ＵのＡｍｐＥｒａｓｅを含有する）中で増幅させた。最初の変性工程（９５℃にて１０分間）の後、試料を４０サイクルの変性（９５℃、３０秒）およびアニーリング／伸張（５６℃、１分間）に付した。生成物をＡＢＩＰＲＩＳＭ（登録商標）7700 Sequence Detection System スタンダードソフトウエアを用いて解析した。

組織化学的解析は、Ｂ型肝炎ウイルスコア抗原に対して検出された抗体（Ｄａｋｏ）を用いて行った。このため、１つの肝葉の一部を４％ホルムアルデヒドで一晩固定化し、パラフィンに包埋し、切片（５μｍ）を作成した。パラフィンを除去し再水和した後、内因性のペルオキシダーゼ活性を３％Ｈ₂Ｏ₂を用いて２０分間クエンチした。非特異的結合を通常のヒツジ血清を用いてブロックした。次いで、この切片を１:５００に希釈した抗体と室温で３０分間インキュベーションした。その後の工程はすべてVectastain ABCキット（Vector Laboratories）を用いて説明書にしたがって行った。

この免疫反応を、３,３'−ジアミノベンジジンテトラクロリドおよび過酸化水素を用いて可視化した。この切片をヘマトキシリン／エオシンで対比染色した。

結果を、分散および多重比較（post hoc comparison）により統計的に解析した。

結論として、意外にも、ＮＺ２株を用いた場合、既知のパラポックスｏｖｉｓＤ１７０１株で得られた効果と比較して抗ウイルス効果の増幅がみられた。このことにより、はじめて、パラポックスウイルスｏｖｉｓを用いて、これまでに知られているパラ免疫誘導物質で達成された効果の強度とは有意に異なる強度を有する免疫系の複合的能力（complex capacity）を誘導することが可能になる。

意外にも、以下の結果が得られた：
肝臓：Ｄ１７０１で処置した動物と比較して、ＨＢＶ特異的ＤＮＡの有意に大きな減少がＮＺ２で処置した動物において得られた。ＮＺ２の抗ウイルス活性は、Ｄ１７０１の活性よりもさらに強力である:用量が最大の群では、ＮＺ２の投与によってＨＢＶ特異的ＤＮＡが、Ｄ１７０１を同量投与した場合よりも、４５倍以上も効果的に減少するのに対し、用量が最低の群では５７倍も効果的に減少する。血漿では、ＮＺ２の投与によりＨＢＶ特異的ＤＮＡが最低用量の群において、Ｄ１７０１を同量の投与した群よりも１０倍以上効果的に減少する。このことは、パラポックスウイルスｏｖｉｓＮＺ２株の治療効果は、Ｄ１７０１株の効果よりも有意に優れていることを示している。

図では、プラセボ群（１００％として示した）と比較して、ＨＢＶ特異的シグナルの減少が示されている。
図１は、Ｄ１７０１株またはＮＺ２株によるＨＢＶ−トランスジェニックマウスの処置の結果を示す。プラセボ群に対して、いずれの染色もおよびすべてのケースで肝臓においてＨＢＶ特異的ＤＮＡが有意に減少するが、ＮＺ２株を用いた場合その減少は大きくなる。最低のＮＺ２用量ではいずれも、ＨＢＶ特異的ＤＮＡの減少は、等価なＤ１７０１投与群の場合において有意に大きい。
図２は、血漿において得られたＤ１７０１株またはＮＺ２株を用いたＨＢＶ−トランスジェニックマウスの処置の結果を示す。いずれの染色およびすべての投与群において、プラセボ群と比較して、ＨＢＶ特異的ＤＮＡは血漿において有意に減少するが、ＮＺ２株を用いる場合その減少は大きくなる。ＮＺ２の最低投与量とは対照的に、Ｄ１７０１株の最低投与量はもはや有意の抗ウイルス効果を有しない。

実施例２.サイトカインの誘導
７〜８週齢の雌性Ｂａｌｂ／ｃマウスを無菌条件下で飼育し、実験に用いた。マウスを各群６匹の群に無作為にグループ分けした。以下の処置スキームを適用した：
グループ１: プラセボ
グループ２: パラポックスウイルスovisＤ１７０１株；５×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀／用量
グループ３: パラポックスウイルスovisＮＺ２株；５×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀／用量
グループ４: プラセボ
グループ５: パラポックスウイルスovisＤ１７０１株；５×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀／用量
グループ６: パラポックスウイルスovisＮＺ２株；５×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀／用量

投与した体積は１０ｍL／ｋｇであり、投与は腹腔内投与で行った。

グループ１〜３の動物を投与から６時間後に屠殺し、グループ４〜６の動物は投与から１２時間後に屠殺した：腹腔細胞を氷冷ＰＢＳを用いた洗浄により得、門脈および腸間膜リンパ節を単離した。腹腔細胞を遠心工程により濃縮した（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ卓上遠心器で、室温にて３０００ｒｐｍで５分間）後０.２ｍＬの溶解緩衝液（溶解溶液：２５ｍＭクエン酸ナトリウム、４Ｍグアニジウムイソチオシアネート、０.５％Ｎ−ラウリルサルコシン）中に溶解し、ショック凍結し、ＲＮＡを調製するときまで−７５℃で保存した。

全ＲＮＡを酸性フェノール／クロロホルム抽出により調製した。このため、溶解緩衝液中で凍結した試料を室温で融解し、伸張のため以下の溶液で処理した:溶解緩衝液１／１０体積の２Ｍクエン酸ナトリウム（ｐＨ４.０）、溶解緩衝液１体積の１水飽和フェノールおよび溶解緩衝液１／５体積のクロロホルム／イソアミールアルコール（２４:１）。これらの試薬を攪拌機で１０秒間混合した後、氷上で１０分間保って温度を一定にした。１５３６５ｇで４℃にて３０分間遠心することによりこの相を分離した。その後、水相を新しい容器に移し、この相に存在するＲＮＡを単離するために、Ｒnaid（登録商標）plusキット（DIANOVA）から８ｍＬのＲＮＡ−ＭＡＴＲＩＸを加えた。および全体を室温で１５分間インキュベーションした。得られたＲＮＡ／ＲＮＡ−ＭＡＴＲＩＸ複合体を７０００ｇでの遠心によりペレット化し、上清を捨てた。次いでペレットを、それぞれのケースについて２回２５０ｍＬのＲＮＡ−ＷＡＳＨ（ＤＩＡＮＯＶＡ）で洗浄した後、最後に洗浄した後、真空遠心で乾燥させた。２０−３０ｍＬのＲＮＡｓｅ不含蒸留水を添加することによってＲＮＡを溶出し、全体を５５℃に１５分間加熱した。室温にて７０００ｇで１分間遠心した後、ＲＮＡ溶液を新しい容器に移すことによりマトリックスを分離した。

ＲＮＡの量をゲル電気泳動によりチェックした。ＲＮＡは−７０℃で保存した。

オリゴ（ｄＴ）プライマーを出発分子として使用してｍＲＮＡを逆転写することによりｃＤＮＡを合成した。以下の成分を合成混合物に含有させた：２００ｎｇ−２μｇの全ＲＮＡ、２μＬのＭ−ＭＬＶ逆転写酵素（２００Ｕ／μＬ）（GIBCOBRL）、８μＬの適当な５×ＲＴ緩衝液（GIBCOBRL）、１μＬのＤＴＴ（０.１Ｍ）（GIBCOBRL）、４μＬのｄＮＴＰ（２.５ｍＭ）（SIGMA）、２μＬのオリゴ（ｄＴ）_12-18プライマー（１００μｇ／ｍＬ）（PROMEGA）、１μＬのヒト胎盤インヒビター（１００００Ｕ／ｍＬ）（GIBCOBRL）および水を加えて合計４０μＬにする。混合物を室温に１０分間保った後、３７℃で４５分間インキュベーションした；次いで、９５℃に３分間加熱し氷上で急速に冷却した。この方法により合成したｃＤＮＡを−２０℃で保存した。

ｃＤＮＡの量を「ハウスキーピング」遺伝子（β-アクチン）を用いて標準化した。定量的ＰＣＲをABI PRISM 7700 Sequence Detection System （PE Applied Biosystems）を用いて行った。以下のプライマーを用いた：
β−アクチンセンス： 5'-TGG AAT CCT GTG GCA TCC ATG AAA C-3'
アンチセンス：5'-TAA AAC GCA GCT CAG TAA CAG TCC G-3'
ＩＦＮ−γ センス： 5'-AGCGGC TGA CTG AAC TCA GAT TGT AG-3'
アンチセンス：5'-GTC ACA GTT TTC AGC TGT ATA GGG-3'
ＩＦＮ−α センス： 5'-GGC AGG TCT ACT TTG GAG TCA TTG C-3'
アンチセンス：5'-ACA TTC GAG GCT CCA GTG AAT TCG G-3'
ＩＬ−１５センス： 5'-GCC AAC TGG ATA GAT GTA AGA TAT GAC CT-3'
アンチセンス：5'-CGT GTT GAT GAA CAT TTG GAC AAT GCG TAT-3'

ＤＮＡは、２５μＬの体積の反応液（この反応液には、１.４ｍＭの各ｄＮＴＰ、４ｍＭのＭｇＣｌ₂、０.３μｍｏｌの各プライマーおよびプローブ、２.５μＬのＳＹＢＲグリーンを含む１０倍ＰＣＲ緩衝液[すべてのＰＣＲ試薬はＳＹＢＲグリーンＰＣＲコア試薬キット（PerkinElmer/RocheMolecularSystemsInc.）から入手した]および１.２５ＵのＴａｑＤＮＡポリメラーゼおよび０.２５ＵのＡｍｐＥｒａｓｅを含有する）中で増幅させた。最初の変性工程（９５℃にて１０分間）の後、試料を４０サイクルの変性（９５℃、３０秒）およびアニーリング／伸張（６０℃,１．３０分間）に付した。生成物をABIPRISM（登録商標）7700 Sequence Detection System スタンダードソフトウエアを用いて解析した。結果を、分散および多重比較により統計的に解析した。

意外にも以下の結果が得られた：
１.Ｄ１７０１株またはＮＺ２株による処置後、γインターフェロンの発現が投与後６時間および１２時間後の両方で誘導されている（図３）。ＮＺ２株のケースでは、この誘導がプラセボおよびＤ１７０１株の両方に関して有意に高い。Ｄ１７０１の投与後に得られたγ−インターフェロン発現の程度は、プラセボ対照とは有意な差異はない。この図は、腹腔洗浄により得られた細胞において測定された値を示している。

２.Ｄ１７０１株による処置後、ＴＮＦαの発現が投与後１２時間で誘導されるのに対し、ＮＺ２株での処置後では６時間後および１２時間後の両方で誘導されている（６時間の値と比較して１２時間後では減少を既に観察することができる：図４）。ＮＺ２株のケースでは、投与後６時間でのこの誘導は、Ｄ１７０１株のケースで観察される値よりも有意に高い。この図は、腹腔洗浄により得られた細胞において測定された値を示している。

３.Ｄ１７０１株またはＮＺ２株での処置後、６時間および１２時間後の両方でＩＬ−１５の発現が誘導される（図５）。ＮＺ２株の場合、この誘導は、投与後６時間でＤ１７０１株またはプラセボのケースよりも有意に高い。Ｄ１７０１の投与後に観察されるＩＬ−１５発現の程度は、プラセボ対照で観察される程度よりも有意に高い。この図は、腹腔洗浄により得られた細胞において測定された値を示している。

実施例３.腫瘍を有するヌードマウスにおける治療効果の実証
インキュベーターにて、ＭＤＡ−ＭＢ２３１細胞（ＡＴＣＣ＃ＨＴＢ２６）を、完全培地（８８５ＤＭＥＭ、１０％ＦＢＳ、１％ペニシリン／ストレプトマイシン、１％Ｌ−グルタミン（いずれもGibco Life Technologies））中、３７℃にて５％ＣＯ₂の存在下で培養した。移植の日に、細胞を約７０％コンフルエントであった。この細胞をトリプシン処理し、ＨＢＳＳで洗浄し、細胞数を計測し、予め冷却したＰＢＳを用いて２.５×１０⁷細胞／ｍＬに調整した。雌性のＮＣｒヌードマウス（taconic）を用いた。このマウスは８〜１０週齢であり、体重は約２２ｇであった。操作はすべて無菌状態で行った。５×１０⁶細胞を合計０.２ｍｌの体積で脇腹の領域に皮下注射した。この後、マウスを、腫瘍重量が平均約８０ｍｇに達するまでさらに７日間飼育した。腫瘍を測定してマウスを各ケースにつき１０匹の群に無作為にグループ分けした。各群に以下のものを投与した：
グループ１: プラセボ（ＰＢＳ）
グループ2: パラポックスウイルスｏｖｉｓ、Ｄ１７０１株
グループ3: パラポックスウイルスｏｖｉｓ、ＮＺ２株

Ｄ１７０１を２.５×１０⁵ＴＣＩＤ₅₀の用量で投与し、ＮＺ２は１×１０⁵ＴＣＩＤ₅₀の用量を投与した。各群においてこれらの用量を３日おきに４回投与した。腫瘍を１週間に２回測定した。Ｓｔｕｄｅｎｔテストを用いて有意度を求めた。

図６は、グループ１〜３の実験期間（日）中の腫瘍の平均の大きさを示す（ｍｇ）（記号：グループ１○、グループ２△；グループ３□）。驚くべきことに、腫瘍に対する活性（活性が対照群と比較して有意（ｐ<０.０５）であった）がこの実験系でみとめられた。ＮＺ２株はこの点について、Ｄ１７０１株よりも効力が顕著であることがみとめられた。同等の効果を達成するために、ＮＺ２はＤ１７０１と比較して約半分しか必要としなかった。

この知見は、腫瘍を有するヌードマウスにおける、本発明のウイルス調製物の治療効果を明白に裏付けるものである。ヌードマウスは免疫不全であり、機能性のＴ細胞は有していない。この実験系において、腫瘍に対する活性は、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、他の細胞およびサイトカイン／ケモカインの直接の効果に起因するものと推定される。ＮＺ２の優れた効果は、完全なおよびインタクトな免疫系の場合ではより一層明白な証拠となるであろう。

実施例４.ＮＺ２とＤ１７０１とのその他の生物学的な差異
Ｄ１７０１株とは対照的に、パラポックスウイルスＮＺ２はヒト細胞系において継続的に継代することができることが分かった。このことは、複製の挙動および／またはウイルスレセプターにおけるＮＺ２とＤ１７０１との間の本質的な違いを示している。

ヒト細胞系への適合化は、ヒト細胞系におけるウイルス株の製造のための重要な前提条件である。
４.ａ）ヒトＭＲＣ−５細胞に対する継続的に継代される能力
図７は、ＮＺ２およびＤ１７０１株をヒト二倍体細胞系ＭＲＣ−５に適合させる試みを示す。ＭＲＣ−５は生物学的に活性な化合物およびワクチンの製造に適している。両株について同じ初発力価を用い、対応する培養細胞上清をＭＲＣ−５細胞において５回継代させた。図は、各ケースにおいて感染させたＭＲＣ−５細胞から得られた上清の試料の力価をＴＣＩＤ₅₀で示し、継代数に対してプロットした。Ｄ１７０１ではなくＮＺ２株のみが、ウシ培養腎細胞に対して逆滴定可能であった（ＢＫクローン３ａ）。これは、感染および複製挙動におけるこの２つの株の間の根本的な生物学的違いの存在を示している。同時に、この結果は、ＮＺ２がＤ１７０１よりも広範なスペクトルで複製され得ること、それによりヒト細胞をベースとした製造方法の可能性がもたらされることを示している。

４.ｂ）ＮＺ２およびＤ１７０１のＷＩ−３８細胞およびＢＫクローン３ａ細胞おける継代能力
ＮＺ２とＤ１７０１株の間の根本的な生物学的違いは、図８および図９に示された実験によってさらに明白に実証される。図８は、ウシＢＫクローン３ａ細胞およびヒトＷＩ−３８細胞でのＤ１７０１の継代において得られた、継代数に対してプロットされたウイルス力価を示す。Ｄ１７０１はＢＫクローン３ａ細胞では継続的に継代することができるが、ヒトＷＩ−３８細胞ではできないことがみとめられる。

この状況は、ＮＺ２株については異なる。この株は、ＢＫクローン３ａ細胞とＷＩ−３８細胞の両方について数日間に渡って継続的に継代することができる（図９）。

これらの結果はまた、ＮＺ２およびＤ１７０１の感染および複製挙動における明白な違いを示している。

４.ｃ）ＷＩ−３８での継代後のヘルペスウイルス投与試験におけるＮＺ２の用量依存的効果
ＷＩ−３８細胞において継代させたＮＺ２株の免疫刺激特性を調べるため、マウスに対してヘルペスウイルス投与試験を行った。各ケース１０匹の実験動物からなる３つの群に対し、それぞれ、１×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀、５×１０⁴ＴＣＩＤ₅₀および１×１０⁵ＴＣＩＤ₅₀で処置し、対照群にはプラセボを投与した。図１０は、ヘルペスウイルスによる感染後の時間経過に対する４つの実験群の生存率を示す。意外にも、ＮＺ２は、ＷＩ−３８で継代させた結果、免疫刺激特性は失われなかった。

この実験例における実験結果はすべて、ＮＺ２とＤ１７０１の感染および複製挙動における根本的な違いを示している。意外にも、Ｄ１７０１の場合とは対照的に、免疫調節物質として用いるためのＮＺ２の調製物は産生細胞系としてウシ腎細胞を用いる必要はない。

潜在的で慢性的に持続するウイルス感染に対するＴｈ１免疫反応の影響の知られている状況^4)、5)、また増殖性の疾患例えば癌⁸⁹、およびパラポックスウイルスｏｖｉｓＮＺ２株の免疫調節特性がパラポックスウイルスＤ１７０１株よりも優れているという事実に基づけは、パラポックスウイルスｏｖｉｓＮＺ２株、または上記の株の１つを基礎とする免疫調節物質の、ヒトおよび動物における、単独療法または生物学的に活性な物質、例えば抗ウイルス薬、低分子量化合物との組合せとしての使用は、Ｂ型肝炎ウイルス、またはＣ型肝炎ウイルスまたは肝炎の原因ウイルスの群に由来するその他の病原体のいずれかによる感染、さらに、内臓の他のウイルス感染、並びに様々なタイプの単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）、様々なタイプのヒトパピローマウイルス（ＨＰＶ）、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、水疱瘡ウイルス、ヒトサイトメガロウイルス（ＨＣＭＶ）による、他の疾患を同様に伴う感染および動物における対応するウイルス性疾患の抗ウイルス治療が可能であり治療上有用である。

さらに、示された作用機序に基づけば、上記のパラポックスウイルスｏｖｉｓ株の上記の株は、特に、以下の予防的または治療的処置を行うことについて、ある程度の成功の見込みをもって使用することができる：
この治療法による処置を暴露後迅速に行う場合、ヘルペスウイルス感染に関する再発の防止、感染後防御、即ち、ウイルス感染の確立の阻止（例えば、ＨＩＶ）⁷⁾。この作用機序に基づいて癌の処置も同様に可能である^8)、9)。

臨床上の問題の性質によって、パラポックスウイルスをベースとする治療剤を全身的、即ち、例えば筋肉内、皮下、腹腔内、静脈内または経口的に、あるいは局所的に投与する。これに関連して、パラポックスウイルスは、精製された凍結乾燥状態で存在するかおよび／または投与の直前に適当な溶媒に懸濁させる、あるいは別の適当な製剤中に存在させるか耐胃液投与剤型または別の経口投与剤型中に存在させることができる。

適当な調製物はまた、特定の細胞、例えばＷＩ−３８、ＭＲＣ−５またはＶｅｒｏ細胞で継代および／または適合させることによって得られるＮＺ２の子孫、および上記のその他の株またはＮＺ２の一部もしくは断片、およびそれらの上記の株またはそれらの子孫から調製することもできる。一部とは、適当な系、例えば培養線維芽細胞、において適当なベクター、例えばワクシニア、の助けをかりて発現するゲノムまたはサブゲノム断片であると理解される。断片とは、例えば超音波処理によって物理的に破壊した粒子の生化学的精製、例えばクロマトグラフィー、によって得られる一部分であると理解される。

これに関連して、その臨床上の問題が必要とする条件を満たす時間的な計画にしたがって、いくつかの投与または長期間の処置が必要になるかもしれない。

即ち、例えば以下の計画に従う使用が癌治療の場合には特に期待できることが分かった（但し、これらに何ら限定されない）:
各ケースにつき１０⁶〜１０⁷ＴＣＩＤ₅₀（組織培養細胞感染量）の筋肉内投与を３日毎に４週間、次いで２週間の休止；各ケースについて１０⁶〜１０⁷ＴＣＩＤ₅₀の筋肉内投与を再開し、３日毎に４週間行った後、２週間の休止；各ケースについて１０⁶〜１０⁷ＴＣＩＤ₅₀の筋肉内投与を再開し、３日毎に４週間行った後、２週間の休止；重篤度および治療の成功度によって、これらのサイクルをさらに増やしてもよい；あるいは、製剤を少なくとも３ヶ月間４日〜５日毎に投与するという計画を示すこともできる。

例えば、慢性のウイルス感染の場合、３日毎に合計５回１０⁶〜１０⁷ＴＣＩＤ₅₀を腹部に皮下投与するか、三角筋もしくは大腿四頭筋の領域に筋肉内投与する。その疾患の必要によってはこの計画を分けることが可能である。風邪の予防については、製剤をうがい用として用い、病原菌の危険が存在する限りは、毎日繰り返す。

口の部分の外科的介入（例えば、歯の手術）後の感染を防ぐために、その介入の前夜に、本製剤で１〜２分間うがいを行う。

参考文献：
1. Guidotti, L.G., Borrow, P., Hobbs, M.V., Matzke, B., Gresser, I., Oldstone, M.B.A., and Chisari, F.V. (1996): Viral cross talk: Intracellular inactivation of the hepatitis B virus during an unrelated viral infection of the liver. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 93:4589-4594.

2. Guidotti, L.G., Ando, K., Hobbs, M.V., Ishikawa, T., Runkel, L., Schreiber, R.D., and Chisari, F.V. (1994): Cytotoxic T lymphocytes inhibit hepatitis B virus gene expression by a noncytolytic mechanism in transgenic mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 91:3764-3768.

3. Steinmassl,G., G.Wolf (1990): Bildung von Interleukin 2 and Interferondurch mononukleare Leukozyten des Schweines nach in vitro-Stimulation mit verschiedenen Viruspraparaten (Formation of interleukin 2 and interferon by pig mononuclear leukocytes following in-vitro stimulation with various virus preparations). J.Vet.Med.B37,5,321-331.

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7. Dhawan, S., L.M. Wahl, A. Heredia, Y.H. Zhang, J.S. Epstein, M.S. Meltzer, I.K. Hewlett (1995): Interferon gamma inhibits HIV-induced invasiveness of Monocytes. J. Leukocyte Biology, 58 (6):713-716.

8. J.F. Bromberg, C.M. Horvath, Z.L. Wen, R.D. Schreiber, J.E.Darnell (1996): Transcriptionally active statl is required for the antiproliferative effects of both interferon alpha and interferon gamma. PNAS 93(15):7673-7678.

9. M.Klouche, H.Kirchner, F.Holzel (1994): Antiproliferative effects of inter-feron gamma in combination with alpha-difluoromethylornithine on human carcinoma cell cultures. J.Cancer Research and Clinical Oncology 120(12):706].

Claims

ヒトおよび動物におけるウイルス感染および癌に対する医薬の製造のための、パラポックスウイルスｏｖｉｓ株ＮＺ２、ＮＺ−７、ＮＺ−１０およびｏｒｆ−１１の１つに分類上属するウイルスの使用。