JP4358521B2 - 細胞デリバリーのためのコンジュゲートおよび組成物 - Google Patents
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Description
本発明は,生物学的システム,例えば細胞内への分子のデリバリーを容易にするための組成物およびコンジュゲートを特徴とする。本発明により提供されるコンジュゲートは,治療用化合物を細胞膜を横切って輸送することにより,治療上の作用を与えることができる。本発明は,分子,例えば,限定されないが,小分子,脂質,ヌクレオシド,ヌクレオチド,核酸,抗体,トキシン,負に荷電したポリマーおよび他のポリマー,例えば,蛋白質,ペプチド,ホルモン,炭水化物,またはポリアミンを,細胞膜を超えてデリバリーするための新規薬剤の設計および合成を包含する。一般に,本明細書に記載されるトランスポーターは,分解性リンカーとともにまたはなしで,独立してまたは多成分系の一部としてのいずれかで用いるよう設計される。以下の式で一般に示される本発明の化合物は,血清の存在下または非存在下で,異なる組織に由来する多くの細胞タイプへの分子のデリバリーを改良すると予測される。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
ビス−ヒドロキシアミノアルキル誘導体,例えば,D−トレオニノールを,N保護アミノアルカン酸とカップリングさせて,式9;
の化合物を得;
一級ヒドロキシ保護R1を導入し,次にR1のアミノを脱保護して,式10:
の化合物を得;
式10の脱保護したアミンを保護されたアミノ酸,例えばグルタミン酸とカップリングさせて,式11:
の化合物を得;
式XIのコンジュゲート化グルタミン酸のアミンR11を脱保護して,式12:
の化合物を得;
式12の脱保護したアミンをアミノ保護プテロイン酸とカップリングさせて,式13:
の化合物を得;そして
式13の二級ヒドロキシルにリン含有基を導入して式5の化合物を得る,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
ビス−ヒドロキシアミノアルキル誘導体,例えば,D−トレオニノールを,保護されたアミノ酸,例えばグルタミン酸とカップリングさせて,式14:
の化合物を得;
一級ヒドロキシ保護R1を導入し,次に式14のR11のアミノを脱保護して,式15:
の化合物を得;
式15の脱保護したアミンをアミノ保護プテロイン酸とカップリングさせて,式16:
の化合物を得;そして
式16の二級ヒドロキシルにリン含有基を導入して,式8の化合物を得る,
の各工程を含む。
の構造を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
葉酸をカルボキシペプチダーゼと反応させて,式19:
式19の二級アミンに保護基R6を導入して,式20:
の化合物を得;そして
式20の一級アミンに保護基R7を導入して,式18の化合物を得る,
の各工程を含む。
を有する式1の化合物を包含する。
を有する式7の化合物を包含する。
を有する式4の化合物を包含する。
を有する式4の化合物を包含する。
の基であり;X1'は,天然に生ずるまたは天然に生じないアミノ酸の保護されたまたは保護されていない側鎖であり,X2は,アミド,アルキル,またはカルボニル含有リンカーまたは結合であり,およびX3は,分解性リンカーであり,これは任意に存在しなくてもよい]
を有する化合物を特徴とする。
の基を含む。
を有する化合物を特徴とする。
(a)システアミンのチオールを,式28:
を有する化合物を得るのに適した条件下で選択的にトリチル化し;
(b)(a)の生成物を,式29:
を有する化合物と,式30:
を有する化合物を得るのに適した条件下でペプチドカップリングさせ;
(c)(b)の生成物のアミノ保護基R21を,式31:
を有する化合物を得るのに適した条件下で除去し;
(d)(c)の生成物を,式32:
を有する化合物と,式33:
を有する化合物を得るのに適した条件下で縮合させ;
(e)(d)の生成物から,式34:
を有する化合物を得るのに適した条件下でR22を選択的に切断し;
(f)(e)の生成物を,式35:
を有する化合物と,式36:
を有する化合物を得るのに適した条件下でカップリングさせ;
(g)(f)の生成物を,式37:
を有する化合物を得るのに適した条件下で脱保護し;そして
(h)(g)の生成物に,式27を有する化合物を得るのに適した条件下でジスルフィド系脱離基を導入する,
の各工程を含む。
を有する化合物を特徴とする。
(a)チオール含有リンカーを,と,式40:
を有する化合物を得るのに適した条件下で,核酸,ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドとカップリングさせ;そして
(b)(a)の生成物を,式39を有する化合物を得るのに適した条件下で,式37を有する化合物とカップリングさせる,
の各工程を含む。
を有する化合物である。
を有する化合物のジスルフィド結合を還元することを含む。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を表す]
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を表す]
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を含む]
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を特徴とする。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式66:
を有する化合物を,式67:
を有する化合物に,式68:
を有する化合物の形成に適した条件下で導入し;
(b)式26を有する化合物からR6を除去し;そして
(c)式69:
を有する化合物を,式48を有する化合物の形成に適した条件下で,式68を有する化合物に導入する,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式70:
を有する化合物を,式67:
を有する化合物と,式49を有する化合物の形成に適した条件下でカップリングさせる工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式71:
を有する化合物を,式72:
を有する化合物と,式95:
(b)式95を有する化合物からR6を除去し;そして,
(c)式52を有する化合物の形成に適した条件下で,任意に,ヌクレオチド,ヌクレオシド,核酸,オリゴヌクレオチド,アミノ酸,ペプチド,蛋白質,脂質,リン脂質,または標識をカップリングさせ,または任意に,式71を有する化合物をカップリングさせ,および任意に,(b)および(c)を繰り返す,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
式73:
を有する化合物を,糖,例えば,式74:
を有する化合物と,式53を有する化合物の形成に適した条件下でカップリングする工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式75:
を有する化合物を,糖,例えば,式74.
を有する化合物と,式54を有する化合物の形成に適した条件下でカップリングさせる工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式76:
を有する化合物を,化合物
X−W
[式中,Xは,ヌクレオチド,ヌクレオシド,核酸,オリゴヌクレオチド,酵素的核酸,アミノ酸,ペプチド,蛋白質,脂質,リン脂質,生物学的に活性な分子または標識を含み,およびWはリンカー分子または化学結合を含み,これは存在しても存在しなくてもよい]
とカップリングさせ;そして
(b)任意に,式55を有する化合物の形成に適した条件下で工程(a)を繰り返す,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式77:
を有する化合物を,糖,例えば,式74:
を有する化合物にカップリングさせ;そして
(b)任意に,
X−W
[式中,Xは,除去可能な保護基,アミノ,置換アミノ,ヌクレオチド,ヌクレオシド,核酸,オリゴヌクレオチド,酵素的核酸,アミノ酸,ペプチド,蛋白質,脂質,リン脂質,または標識を含み,およびWはリンカー分子または化学結合を含み,これは存在しても存在しなくてもよい]
を有する化合物を,式56を有する化合物の形成に適した条件下でカップリングさせる,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式77:
を有する化合物を,糖,例えば,式74:
を有する化合物とカップリングさせ;そして
(b)トリチル基,例えば,ジメトキシトリチル,モノメトキシトリチル,またはトリチル基を(a)の生成物の一級ヒドロキシルに導入し;そして
(c)式78:
を有するリン含有基を,式57を有する化合物の形成に適した条件下で,(b)の生成物の二級ヒドロキシルに導入する,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式79:
を有する化合物に,式80:
を有する化合物の形成に適した条件下で,カルボキシ保護を導入し;
(b)窒素含有基を,式81:
を有する化合物の形成に適した条件下で,(a)の生成物に導入し;
(c)(b)の生成物からカルボン酸保護基を除去し,および式82:
を有する化合物の形成に適した条件下で,アミノプロパンジオールを導入し;
(d)除去可能な保護基,例えば,トリチル,モノメトキシトリチル,またはジメトキシトリチルを,式83:
を有する化合物の形成に適した条件下で,(c)の生成物に導入し;そして
(e)式78:
を有するリン含有基を,式60を有する化合物の形成に適した条件下で,(d)の生成物に導入する,
の各工程を含む方法。
を有する化合物を含む]
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式84:
を有する化合物から,式85:
を有する化合物の形成に適した条件下でR8を除去し;
(b)基V(ここで,Vは,蛋白質またはペプチド,例えば,ヒト血清アルブミン蛋白質,アンテナペディアペプチド,カポジ線維芽細胞成長因子ペプチド,Caiman crocodylus Ig(5)軽鎖ペプチド,HIVエンベロープ糖蛋白質gp41ペプチド,HIV−1Tatペプチド,インフルエンザヘマグルチニンエンベロープ糖蛋白質ペプチド,またはトランスポータンAペプチド,または式45:
を有する化合物を含む)
を,式59を有する化合物の形成に適した条件下で,オキシム結合の形成により(a)の生成物に導入する,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式66:
を有する化合物を,式67:
を有する化合物に,式68:
を有する化合物の形成に適した条件下で導入し;
(b)式68を有する化合物からR6を除去し;そして
(c)式69:
を有する化合物を導入し;および式69’:
を有する化合物を,式64を有する化合物の形成に適した条件下で,式68を有する化合物に導入する,
の各工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式93:
を有する化合物を,式86:
を有する化合物に,式62を有する化合物の形成に適した条件下で導入する工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式96:
を有する化合物を,式86:
を有する化合物に,式63を有する化合物の形成に適した条件下で導入する工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式89:
を有する化合物を,式90:
を有する化合物と,式87を有する化合物の形成に適した条件下で,例えば,式89を有する化合物を式90を有する化合物(ここで,化合物90のXは酵素的核酸分子を含み,および式89のYはペプチドを含む)と,合成後コンジュゲーションすることにより,カップリングさせる工程を含む。
を有する化合物を合成する方法を特徴とし,該方法は,
(a)式91:
を有する化合物を,式90:
を有する化合物と,式88を有する化合物の形成に適した条件下で,例えば,式91を有する化合物と式90を有する化合物(式中,化合物90のXは酵素的核酸分子を含み,および式91のYはペプチドを含む)とを合成後コンジュゲーションすることにより,カップリングさせる工程を含む。
を有する化合物を特徴とする。
を有するポリエチレングリコールリンカーを含む。
Biochim.Biophys.Acta,1489,181−206)。
"アルケニル"の例には,ビニル,アリル,および2−メチル−3−ヘプテンが含まれる。
"アルキニル"の例としては,プロパルギル,プロピンおよび3−ヘキシンが挙げられる。
を有する化合物を表す。
Mは,イオウまたは酸素原子を含む]
を有する化合物を表す。本発明のリン酸は,式98のいずれかのR,S,またはTが核酸またはヌクレオシドへの結合を含むヌクレオチドリン酸を含むことができる。
まず図面を簡単に説明する。
図面:
図1は,化学的に安定化されたリボザイムモチーフの例を示す。HHRzは,ハンマーヘッドリボザイムモチーフを表す(Usman et al.,1996,Curr.Op.Struct.Bio.,1,527);NCHRzはNCHリボザイムモチーフを表す(Ludwig&Sproat,国際公開WO98/58058);G切断剤はG切断剤リボザイムモチーフを表す(Kore et al.,1998,Nucleic Acids Research 26,4116−4120,Eckstein et al.,国際公開WO99/16871)。Nまたはnは,独立して,ヌクレオチドを表し,これは同一であっても異なっていてもよく,互いに相補性を有する;rIはリボイノシンヌクレオチドを表す;矢印は標的中の切断の部位を示す。HHRzおよびNCHRzの4位は,2’−C−アリル修飾を有するものとして示されているが,当業者は,そのような修飾がリボザイムの活性を有意に阻害しない限り,この位置を当該技術分野においてよく知られる他の修飾で修飾することができることを理解するであろう。
本発明の組成物およびコンジュゲートは,薬品を投与するために用いることができる。医薬品は,患者において,疾病状態を予防し,発症を阻害し,または治療する(症状をある程度緩和し,好ましくはすべての症状を緩和する)。
100ヌクレオチドを越える長さの核酸の合成は,自動化方法を用いては困難であり,そのような分子の治療的コストは非常に高くなる。本発明においては,好ましくは,小さい核酸モチーフ("小さい"とは,100ヌクレオチド以下の長さ,好ましくは80ヌクレオチド以下の長さ,最も好ましくは50ヌクレオチド以下の長さの核酸モチーフ,例えば,アンチセンスオリゴヌクレオチド,ハンマーヘッドまたはNCHリボザイムを表す)が外的デリバリーに用いられる。これらの分子は構造が簡単であるため,核酸が蛋白質および/またはRNA構造の標的領域に進入する能力が高い。本発明の例示的分子は化学的に合成するが,他の分子も同様に合成することができる。
血清リボヌクレアーゼによる分解を防止する修飾(塩基,糖および/またはリン酸)を有する,化学的に合成された核酸分子は,その抗力が高まるであろう(例えば,Eckstein et al.,国際公開WO92/07065;Perrault et al.,1990 Nature 344,565;Pieken et al.,1991 Science 253,314;Usman and Cedergren,1992 Trends in Biochem.Sci.17,334;Usman et al.,国際公開WO93/15187;Rossi et al.,国際公開WO91/03162;Sproat,米国特許5,334,711;およびBurgin et al.,(上掲)を参照。上述の参考文献はすべて,本明細書に記載される核酸分子の塩基,リン酸および/または糖成分になしうる種々の化学修飾を記載する。細胞中におけるその抗力を増強する修飾,およびオリゴヌクレオチドの合成時間を短縮し化学物質の必要性を減少するために核酸分子から塩基を除去することが望ましい(これらのすべての刊行物は本明細書の一部としてここに引用する)。
本発明の化合物および組成物を用いて治療することができる特定の疾病状態には,限定されないが,癌および癌性状態,例えば,乳,肺,前立腺,結腸直腸,脳,食道,胃,膀胱,膵臓,子宮頚部,頭頚部,および卵巣癌,黒色腫,リンパ腫,神経膠腫,多剤耐性癌,および/またはウイルス感染,例えば,HIV,HBV,HCV,CMV,RSV,HSV,ポリオウイルス,インフルエンザ,ライノウイルス,西ナイル熱ウイルス,エボラウイルス,口蹄疫ウイルス,およびパピローマウイルス感染が含まれる。
本発明の化合物,例えば核酸コンジュゲート分子を診断手段として使用し,疾病に罹患した細胞内の遺伝的浮動および変異を検査するか,または細胞において疾病関連RNAの存在を検出することができる。例えば,酵素的核酸分子の活性と標的RNAの構造との間の密接な関係により,分子のいずれの領域においても,標的RNAの塩基対形成および3次元構造を変更する変異を検出することができる。本発明に記載される酵素的核酸分子コンジュゲートを複数使用することにより,インビトロならびに細胞および組織におけるRNAの構造および機能に重要なヌクレオチド変化をマッピングすることができる。酵素的核酸分子による標的RNAの切断を使用して,遺伝子の発現を阻害し,疾病の進行における特定の遺伝子産物の役割を(本質的に)明らかにすることができる。このようにして,他の遺伝子標的を疾病の重要な介在物として明らかにすることができる。これらの実験は,組み合わせ療法の可能性を提供することにより,疾病進行のよりよい治療につながるであろう(例えば,異なる遺伝子を標的とする多数の酵素的核酸分子,既知の小分子阻害剤とカップリングさせた酵素的核酸分子,酵素的核酸分子および/または他の化学的または生物学的分子と組み合わせた間欠的治療)。本発明の酵素的核酸分子の他のインビトロにおける用途は当該技術分野においてよく知られており,これには,疾病に関連する状態に関係するmRNAの存在の検出が含まれる。そのようなRNAは,標準的な方法論を使用して酵素的核酸分子で処理した後,切断産物の存在を判定することにより検出する。
コンジュゲートとして細胞にデリバリーされる本発明の配列特異的酵素的核酸分子の潜在的な有用性は,DNA制限エンドヌクレアーゼがDNAの研究のために有するものと同様の多くの適用をRNAの研究のために有する(Nathans et al.,1975 Ann.Rev.Biochem.44:273)。例えば,制限フラグメントのパターンを使用して2つの関連するRNA間の配列の関係を確立することができ,大型のRNAを研究のためにより有用なサイズのフラグメントに特異的に切断することができる。酵素的核酸分子の配列特異性を操作できることは未知の配列のRNAの切断に理想的である。出願人は,細菌,微生物,真菌,ウイルス,および真核生物系,例えば植物または哺乳動物細胞において,標的遺伝子の遺伝子発現をダウンレギュレートするために核酸分子を用いることを記載する。
一般
すべての反応は,アルゴンの正圧下で無水溶媒中で行った。市販の試薬および無水溶媒をさらに精製することなく用いた。1H(400.035MHz)および31P(161.947MHz)のNMRスペクトルは,特に記載しない限りCDCl3中で測定し,化学シフトppmはそれぞれTMSおよびH3PO4を表す。分析的薄層クロマトグラフィー(TLC)は,Merck Art.5554 Kieselgel 60F254プレートで行い,びフラッシュカラムクロマトグラフィーはMerck0.040−0.063mmシリカゲル60を用いた。
N−Fmoc−6−アミノカプロン酸(10g,28.30mmol)をDMF(50ml)に溶解し,N−ヒドロキシスクシンイミド(3.26g,28.30mmol)および1,3−ジシクロヘキシルカルボジイミド(5.84g,28.3mmol)を溶液に加えた。反応混合物を室温(約23℃)で一夜撹拌し,沈殿した1,3−ジシクロヘキシルウレアを濾別した。濾液にD−トレオニノール(2.98g,28.30mmol)を加え,反応混合物を室温で一夜撹拌した。溶液を真空下で約半分の用量とし,残渣を約mmlの酢酸エチルで希釈し,約xmlの5%NaHCO3で抽出し,次にブラインで洗浄した。有機層を乾燥し(Na2SO4),蒸発させてシロップを得,酢酸エチル中メタノールの1−10%勾配を用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーによりクロマトグラフィーを行った。生成物を含む画分をプールし,蒸発させて,白色固体(9.94g,80%)を得た。1H−NMR(DMSO−d6−D2O)δ7.97−7.30(m,8H,芳香族),4.34(d,J=6.80,2H,Fm),4.26(t,J=6.80,1H,Fm),3.9(m,1H,H3Thr),3.69(m,1H,H2Thr),3.49(dd,J=10.6,J=7.0,1H,H1Thr),3.35(dd,J=10.6,J=6.2,1H,H1’Thr),3.01(m,2H,CH2COAcp),2.17(m,2H,CH2NHAcp),1.54(m,2H,CH2Acp),1.45(m,2H,CH2Acp),1.27(m,2H,CH2Acp),1.04(d,J=6.4,3H,CH3).MS/ESI+m/z441.0(M+H)+
乾燥ピリジン(80ml)中の13(6g,13.62mmol)の溶液に,p−アニシルクロロジフェニルメタン(6g,19.43mmol)を加え,反応混合物を室温で一夜撹拌した。メタノール(20ml)を加え,溶液を真空下で濃縮した。残留シロップを約xmlのジクロロメタンと約xmlの5%NaHCO3との間に分配し,有機層をブラインで洗浄し,乾燥し(Na2SO4),蒸発乾固させた。ジクロロメタン中メタノールの1−3%の勾配を用いるフラッシュカラムクロマトグラフィーにより,14を白色泡状物として得た(6g,62%)。1H−NMR(DMSO)δ7.97−6.94(m,22H,芳香族),4.58(d,1H,J=5.2,OH),4.35(d,J=6.8,2H,Fm),4.27(t,J=6.8,1H,Fm),3.97(m,2H,H2,H3Thr),3.80(s,3H,OCH3),3.13(dd,J=8.4,J=5.6,1H,H1Thr),3.01(m,2H,CH2COAcp),2.92(m,dd,J=8.4,J=6.4,1H,H1’Thr),2.21(m,2H,CH2NHAcp),1.57(m,2H,CH2Acp),1.46(m,2H,CH2Acp),1.30(m,2H,CH2Acp),1.02(d,J=5.6,3H,CH3).MS/ESI+m/z735.5(M+Na)+
14(9.1g,12.77mmol)をピペリジン(10ml)を含むDMF(100ml)に溶解し,反応混合物を室温で約1時間保持した。真空下で溶媒を除去し,残渣をジクロロメタン中メタノールの1−10%の勾配を用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して,15をシロップとして得た(4.46g,71%)。1H−NMRδ7.48−6.92(m,14H,芳香族),6.16(d,J=8.8,1H,NH),4.17(m,1H,H3Thr),4.02(m,1H,H2Thr),3.86(s,3H,OCH3),3.50(dd,J=9.7,J=4.4,1H,H1Thr),3.37(dd,J=9.7,J=3.4,1H,H1’Thr),2.78(t,J=6.8,2H,CH2COAcp),2.33(t,J=7.6,2H,CH2NHAcp),1.76(m,2H,CH2Acp),1.56(m,2H,CH2Acp),1.50(m,2H,CH2Acp),1.21(d,J=6.4,3H,CH3).MS/ESI+m/z491.5(M+H)+
N−Boc−α−OFm−グルタミン酸(Bachem)(1.91g,4.48mmol)のDMF(10ml)中の溶液にN−ヒドロキシスクシンイミド(518mg,4.50mmol)および1,3−ジシクロヘキシルカルボジイミド(928mg,4.50mmol)を加え,反応混合物を室温で一夜撹拌した。1,3−ジシクロヘキシルウレアを濾別し,濾液に15(2g,4.08mmol)およびピリジン(2ml)を加えた。反応混合物を室温で3時間撹拌し,次に真空下で濃縮した。残渣を酢酸エチルと5%Na2HCO3との間に分配し,有機層を先に記載されたようにブラインで抽出し,乾燥し(Na2SO4),蒸発させて,シロップを得た。ジクロロメタン中メタノールの2−10%勾配を用いるカラムクロマトグラフィーにより,16を白色泡状物として得た(3.4g,93%)。1H−NMRδ7.86−6.91(m,22H,芳香族),6.13(d,J=8.8,1H,NH),5.93(brs,1H,NH),5.43(d,J=8.4,1H,NH),4.63(dd,J=10.6,J=6.4,1H,Fm),4.54(dd,J=10.6,J=6.4,1H,Fm),4.38(m,1H,Glu),4.3(t,J=6.4,1H,Fm),4.18(m,1H,H3Thr),4.01(m,1H,H2Thr),3.88(s,3H,OCH3),3.49(dd,J=9.5,J=4.4,1H,H1Thr),3.37(dd,J=9.5,J=3.8,1H,H1’Thr),3.32(m,2H,CH2COAcp),3.09(brs,1H,OH),2.32(m,2H,CH2NHAcp),2.17(m,3H,Glu),1.97(m,1H,Glu),1.77(m,2H,CH2Acp),1.61(m,2H,CH2Acp),1.52(s,9H,t−Bu),1.21(d,J=6.4,3H,CH3).MS/ESI+m/z920.5(M+Na)+
16(2g,2.23mmol)をアニソール(10ml)を含むメタノール(30ml)に溶解し,この溶液にxmlのジオキサン中4MHClを加えた。反応混合物を室温で3時間撹拌し,次に真空下で濃縮した。残渣をエタノールに溶解し,xmlのエーテルを加えることにより生成物を沈殿させた。沈殿物をエーテルで洗浄し,乾燥して,17を無色泡状物(1g,80%)として得た。1H−NMR(DMSO−d6−D2O)δ7.97−7.40(m,8H,芳香族),4.70(m,1H,Fm),4.55(m,1H,Fm),4.40(t,J=6.4,1H,Fm),4.14(t,J=6.6,1H,Glu),3.90(dd,J=2.8,J=6.4,1H,H3Thr),3.68(m,1H,H2Thr),3.49(dd,J=10.6,J=7.0,1H,H1Thr),3.36(dd,J=10.6,J=6.2,1H,H1’Thr),3.07(m,2H,CH2COAcp),2.17m,3H),1.93(m,2H),1.45(m,2H),1.27(m,2H),1.04(d,J=6.4,3HThr).MS/ESI+m/z526.5(M+H)+
DMF(5ml)のN2−iBu−N10−TFA−プテロイン酸1(480mg,1mmol)の溶液に,1−ヒドロキシベンゾトリアゾール(203mg,1.50mmol),EDCI(288mg,1.50mmol)および17(遊離塩基,631mg,1.2mmol)を加えた。反応混合物を室温で2時間撹拌し,約3mlに濃縮し,シリカゲルのカラムに負荷した。ジクロロメタン,次にジクロロメタン中メタノールの1−20%の勾配で溶出して,18(0.5g,51%)を得た。1H−NMR(DMSO−d6−D2O)δ9.09(d,J=6.8,1H,NH),8.96(s,1H,H7プテロイン酸),8.02−7.19(m,13H,芳香族,NH),5.30(s,2H,プテロイン酸),4.50(m,1H,Glu),4.41(d,J=6.8,2H,Fm),4.29(t,J=6.8,1H,Fm),3.89(dd,J=6.2,J=2.8,1H,H3Thr),3.68(m,1H,H2Thr),3.48(dd,J=10.4,J=7.0,1H,HIThr),3.36(dd,J=10.4,J=6.2,1H,H1’Thr),3.06(m,2H,CH2COAcp),2.84(m,1H,iBu),2.25(m,2H,CH2NHAcp),2.16(m,3H,Glu),1.99(m,1H,Glu),1.52(m,2HAcp),1.42(m,2HAcp),1.27(m,2HAcp),1.20(s,3H,iBu),1.19(s,3H,iBu),1.03(d,J=6.2,3HThr).MS/ESI-m/z984.5(M−H)-
乾燥ピリジン(15ml)中のコンジュゲート18(1g,1.01mmol)の溶液に,p−アニシルクロロジフェニルメタン(405mg)を加え,反応混合物を水分から保護しながら室温で一夜撹拌した。メタノール(3ml)を加え,反応混合物を真空下で濃縮して,シロップを得た。残渣をジクロロメタンと5%NaHCO3との間に分配し,有機層をブラインで洗浄し,乾燥し(Na2SO4),蒸発乾固させた。ジクロロメタン中メタノールの0.5−10%勾配を用いるカラムクロマトグラフィーにより,19を無色泡状物(0.5g,39%)として得た。1H−NMR(DMSO−d6−D2O)δ9.09(d,J=6.8,1H,NH),8.94(s,1H,H7プテロイン酸),8.00−6.93(m,27H,芳香族,NH),5.30(s,2H,プテロイン酸),4.50(m,1H,Glu),4.40(d,J=6.8,2H,Fm),4.29(t,J=6.8,1H,Fm),3.94(m,2H,H3,H2Thr),3.79(s,3H,OCH3),3.11(dd,J=8.6,J=5.8,1H,H1Thr),3.04(m,2H,CH2COAcp),2.91(dd,J=8.6,J=6.4,1H,H1’Thr),2.85(m,1H,iBu),2.25(m,2H,CH2NHAcp),2.19(m,2H,Glu),2.13(m,1H,Glu),1.98(m,1H,Glu),1.55(m,2HAcp),1.42(m,2HAcp),1.29(m,2HAcp),1.20(s,3H,iBU),1.18(s,3H,iBu),1.00(d,J=6.4,3HThr).MS/ESI-m/z1257.0(M−H)-
3’−O−(2−シアノエチル−N,N−ジイソプロピルホスホルアミダイト)(20)
ジクロロメタン(2ml)中の19(500mg,0.40mmol)の溶液に,2−シアノエチルテトライソプロピルホスホルジアミダイト(152μL,0.48mmol)を加え,次にピリジニウムトリフルオロ酢酸(93mg,0.48mmol)を加えた。反応混合物を室温で1時間撹拌し,次にヘキサン中でシリカゲルのカラムに負荷した。酢酸エチル−ヘキサン1:1,次に1%ピリジンの存在下で酢酸エチルおよび酢酸エチル−アセトン1:1を用いて溶出して,20を無色泡状物(480mg,83%)として得た。31PNMR δ149.4(s),149.0(s)
システアミン修飾葉酸30の合成は図9に示される。モノメトキシトリチルシステアミン21は,システアミンのチオール基をトリフルオロ酢酸中4−メトキシトリチルアルコールで選択的トリチル化することにより製造した。21をPyBOPの存在下でFmoc−Glu−OtBu(Bachem Bioscience Inc.,King of Prussia,PA)とペプチドカップリングさせて,高収率で22を得た。N−Fmoc基をピペリジンで穏やかに除去して,23を得た。23をp−(4−メトキシトリチル)アミノ安息香酸(ピリジン中p−アミノ安息香酸と塩化4−メトキシトリチルとの反応により製造)と縮合させて,完全に保護されたコンジュゲート24を得た。N−MMTr基を酢酸で選択的に切断して,25を定量的収率で得た。25とN2−iBu−6−ホルミルプテリン26,との間にシッフ塩基を形成させ9,ボラン−ピリジン複合体による還元を良好な収率で進行させて,完全に保護されたシステアミン−葉酸付加物27を得た12。27の保護基を塩基および酸で連続して切断して,チオール誘導体29を得た。29を2,2−ジピリジルジスルフィドでチオール交換反応を行い,所望のS−ピリジル活性化シントン30を黄色粉体として得た。TEA+塩として単離:D2O中の10の1HNMRスペクトル:δ8.68(s,1H,H−7),8.10(d,J=3.6,1H,pyr),7.61(d,J=8.8,2H,PABA),7.43(m,1H,pyr),7.04(d,J=7.6,1H,pyr),6.93(m,1H,pyr),6.82(d,J=8.8,1H,PABA),4.60(s,2H,6−CH2),4.28(m,1H,Glu),3.30−3.08(m,2H,システアミン),3.05(m,6H,TEA),2.37(m,2H,システアミン),2.10(m,4H,Glu),1.20(m,9H,TEA).MS/ESI-m/z608.02[M−H]-
30をそのTEA+またはNa+塩として単離することにより,これがDMSOおよび/または水に溶解性となることに注目すべきである。このことは,コンジュゲーション反応において用いるのに重要な要件である。
オリゴヌクレオチド合成,脱保護および精製は,本明細書に記載されるように行った。5’−Thiol−ModifierC6(Glen Research,Sterling,Virginia)を成長しつつあるオリゴヌクレオチド鎖の5’末端に最後のホスホルアミダイトとしてカップリングさせた。固体支持体から切断し,塩基を脱保護した後,ジスルフィド修飾酵素的核酸分子31(図10)を,イオン交換クロマトグラフィーを用いて精製した。ジチオスレイトール(DTT)で還元してチオール基のマスクをはずして32を得,これをゲル濾過により精製し,直ちに30とコンジュゲート化した。得られたコンジュゲート33を,ゲル濾過により過剰の葉酸から分離し,次に50mM酢酸トリエチルアンモニウム(TEAA)中アセトニトリルの勾配を用いてRP HPLCにより精製した。脱塩は,RP HPLCにより行った。400mgのジスルフィド修飾酵素的核酸分子31で反応を行って,200−250mg(50−60%収率)のコンジュゲート33を得た。MALDI TOF MSにより構造を確認した:13[M−H]-12084.74(計算値12083.82)。この合成の別の方法は図11に示される。
オリゴヌクレオチドの任意の所望の位置に取り込ませるのに適したヌクレオシドおよび非ヌクレオシド−N−アセチル−D−ガラクトースアミンコンジュゲートの両方を設計した。これらのモノマーの複数の取り込みにより,"グリコシドクラスター効果"を得ることができる。
2’−(N−α,ε−ビス−Fmoc−L−リシル)アミノ−5’−O−4,4’−ジメトキシトリチル−2’−デオキシウリジン(1)(4g,3.58mmol)を無水DMF(30ml)に溶解し,ジエチルアミン(4ml)を加えた。反応混合物を室温で5時間撹拌し,次に濃縮(オイルポンプ)してシロップを得た。残渣をエタノールに溶解し,エーテルを加えて生成物を沈殿させた(1.8g,75%)。1H−NMR(DMSO−d6−D20)δ7.70(d,J6,5=8.4,1H,H6),7.48−6.95(m,13H,芳香族),5.93(d,J1',2'=8.4,1H,H1’),5.41(d,J5,6=8.4,1H,H5),4,62(m,1H,H2’),4.19(d,1H,J3',2'=6.0,H3’),3.81(s,6H,2xOMe),3.30(m,4H,2H5’,CH2),1.60−1.20(m,6H,3xCH2).MS/ESI+m/z674.0(M+H)+
N−アセチル−1,4,6−トリ−O−アセチル−2−アミノ−2−デオキシ−β−D−ガラクトピラノース(3)
N−アセチル−D−ガラクトースアミン(6.77g,30.60mmol)をアセトニトリル(200ml)に懸濁し,トリエチルアミン(50ml,359mmol)を加えた。混合物を氷浴中で冷却し,無水酢酸(50ml,530mmol)を冷却しながら滴加した。懸濁液は徐々に透明になり,次にこれを室温で2時間撹拌した。次にこれを氷浴中で冷却し,メタノール(60ml)を加え,15分間撹拌を続けた。混合物を減圧下で濃縮し,残渣をジクロロメタンと1N HClとの間に分配した。有機層を5%NaHCO3で2回,次にブラインで洗浄し,乾燥し(Na2SO4),蒸発乾固させて,10g(84%)の3を無色泡状物として得た。1HNMRは公表されているデータと一致した(Findeis,1994,Int.J.Peptide Protein Res.,43,477−485)。
この化合物は,3から,Findeis(上掲)に記載されているようにして製造した。
12−ヒドロキシドデカン酸(10.65g,49.2mmol)のDMF(70ml)中の冷却(0℃)撹拌溶液に,DBU(8.2ml,54.1mmol)を加え,次に臭化ベンジル(6.44ml,54.1mmol)を加えた。混合物を室温で一夜放置し,次に減圧下で濃縮し,1NHClとエーテルとの間に分配した。有機相を飽和NaHCO3で洗浄し,Na2SO4で乾燥し,蒸発させた。ヘキサン中酢酸エチルの20−30%勾配を用いるフラッシュクロマトグラフィーにより,ベンジルエステルを白色粉体(14.1g,93.4%)として得た。1H−NMRスペクトルデータは公開されている値と一致した33。
1−クロロ糖4(4.26g,11.67mmol)およびベンジル12−ヒドロキシドデカノエート(5)(4.3g,13.03mmol)をニトロメタン−トルエン1:1(122ml)にアルゴン下で溶解し,Hg(CN)2(3.51g,13.89mmol)および粉体モレキュラーシーブ4A(1.26g)を加えた。混合物を室温で24時間撹拌し,濾過し,濾液を減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンとブラインとの間に分配し,有機層をブラインで,次に0.5MKBrで洗浄し,乾燥し(Na2SO4),蒸発させてシロップを得た。ヘキサン中アセトンの15−30%勾配を用いるフラッシュシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより,生成物6を無色泡状物(6g,81%)として得た。1H−NMRδ7.43(m,5H,フェニル),5.60(d,1H,JNH,2=8.8,NH),5.44(d,J4,3=3.2,1H,H4),5.40(dd,J3,4=3.2,J3,2=10.8,1H,H3),5.19(s,2H,CH2Ph),4.80(d,J1,2=8.0,1H,H1),4.23(m,2H,CH2),3.99(m,3H,H2,H6),3.56(m,1H,H5),2.43(t,J=7.2,2H,CH2),2.22(s,3H,Ac).2.12(s,3H,Ac),2.08(s,3H,Ac),2.03(s,3H,Ac),1.64(m,4H,2xCH2),1.33(brm,14H,7xCH2).MS/ESI-m/z634.5(M−H)-
コンジュゲート6(2g,3.14mmol))をエタノール(50ml)に溶解し,5%Pd−C(0.3g)を加えた。反応混合物を45psiのH2で一夜水素化し,触媒を濾別し,濾液を蒸発乾固させて,純粋な7(1.7g,定量的)を白色泡状物として得た。1H−NMRδ5.73(d,1H,JNH,2=8.4,NH),5.44(d,J4,3=3.0,1H,H4),5.40(dd,J3,4=3.0,J3,2=11.2,1H,H3),4.78(d,J1,2=8.8,1H,H1),4.21(m,2H,CH2),4.02(m,3H,H2,H6),3.55(m,1H,H5),2.42(m,2H,CH2),2.23(s,3H,Ac),2.13(s,3H,Ac),2.09(s,3H,Ac),2.04(s,3H,Ac),1.69(m,4H,2xCH2),1.36(br,m,14H,7xCH2).MS/ESI-m/z544.0(M−H)-
7(1.05g,1.92mmol)を無水THF中に溶解し,N−ヒドロキシスクシンイミド(0.27g,2.35mmol)および1,3−ジシクロヘキシルカルボジイミド(0.55g,2.67mmol)を加えた。反応混合物を室温で一夜撹拌し,次にセライトパッドを通して濾過し,濾液を減圧下で濃縮した。粗NHSuエステル8をジイソプロピルエチルアミン(0.67ml,3.85mmol)を含む乾燥DMF(13ml)に溶解し,この溶液にヌクレオシド2(0.64g,0.95mmol)を加えた。反応混合物を室温で一夜撹拌し,次に減圧下で濃縮した。残渣を水とジクロロメタンとの間に分配し,水性層をジクロロメタンで抽出し,有機層を合わせ,乾燥し(Na2SO4),蒸発させて,シロップを得た。酢酸エチル中メタノールの2−3%勾配を用いるフラッシュシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより,9を無色泡状物として得た(1.04g,63%)。1HNMRδ7.42(d,J6,5=8.4,1H,H6Urd),7.53−6.97(m,13H,芳香族),6.12(d,J1',2'=8.0,1H,H−1’),5.41(m,3H,H5Urd,H4NAcGal),5.15(dd,J3,4=3.6,J3,2=11.2,2H,H3NAcGal),4.87(dd,J2',3'=5.6,J2',1'=8.0,1H,H2’),4.63(d,J1,2=8.0,2H,H1NAcGal),4.42(d,J3',2'=5.6,1H,H3’),4.29−4.04(m,9H,H4’,H2NAcGal,H5NacGal,OCH2),3.95−3.82(m,8H,H6NAcGal,2xOMe),3.62−3.42(m,4H,H5’,H6NAcGal),3.26(m,2H,CH2),2.40−1.97(m,28H,CH2,Ac),1.95−1.30(m,50H,CH2).MS/ESI-m/z1727.0(M−H)-
コンジュゲート9(0.87g,0.50mmol)をアルゴン下で乾燥ジクロロメタン(10ml)に溶解し,ジイソプロピルエチルアミン(0.36ml,2.07mmol)および1−メチルイミダゾール(21μL,0.26mmol)を加えた。溶液を0℃に冷却し,2−シアノエチルジイソプロピルクロロホスホルアミダイト(0.19ml,0.85mmol)を加えた。反応混合物を室温で1時間撹拌し,次に0℃に冷却して,無水エタノール(0.5ml)で急冷した。10分間撹拌した後,溶液を減圧下で濃縮し(40℃),残渣をジクロロメタンに溶解し,ヘキサン−酢酸エチル1:1,次に酢酸エチル,最後に酢酸エチル−アセトン1:1(1%トリエチルアミンを溶媒に加えた)を用いるシリカゲルカラムクロマトグラフィーを行って,ホスホルアミダイト10(680mg,69%)を得た。
31P−NMRδ152.0(s),149.3(s).MS/ESI-m/z1928.0(M−H)-
12’−ヒドロキシドデカノイル−2−アセトアミド−3,4,6−トリ−O−アセチル−2−デオキシ−β−D−ガラクトピラノース7(850mg,1.56mmol)をDMF(5ml)に溶解し,この溶液にN−ヒドロキシスクシンイミド(215mg,1.87mmol)および1,3−ジシクロヘキシルカルボジイミド(386mg,1.87mmol)を加えた。反応混合物を室温で一夜撹拌し,沈殿物を濾別し,濾液にD−トレオニノール(197mg,1.87mmol)を加えた。混合物を室温で一夜撹拌し,真空下で濃縮した。残渣をジクロロメタンと5%NaHCO3との間に分配し,有機層をブラインで洗浄し,乾燥し(Na2SO4),蒸発させて,シロップを得た。ジクロロメタン中メタノールの1−10%勾配を用いるシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより,11を無色油状物として得た(0.7g,71%)。1H−NMRδ6.35(d,J=7.6,1H,NH),5.77(d,J=8.0,1H,NH),5.44(d,J4,3=3.6,1H,H4),5.37(dd,J3,4=3.6,J3,2=11.2,1H,H3),4.77(d,J1,2=8.0,1H,H1),4.28−4.18(m,3H,CH2,CH),4.07−3.87(m,6H),3.55(m,1H,H5),3.09(d,J=3.2,1H,OH),3.02(t,J=4.6,1H,OH),2.34(t,J=7.4,2H,CH2),2.23(s,3H,Ac),2.10(s,3H,Ac),2.04(s,3H,Ac),1.76−1.61(m,2xCH2),1.35(m,14H,7xCH2),1.29(d,J=6.4,3H,CH3).MS/ESI-m/z(M−H)-
乾燥ピリジン(10ml)中の11(680mg,1.1mmol)の溶液に,p−アニシルクロロトリフェニルメタン(430mg,1.39mmol)を加え,反応混合物を水分から保護しながら一夜撹拌した。メタノール(3ml)を加え,溶液を15分間撹拌し,真空下で蒸発させた。残渣をジクロロメタンと5%NaHCO3との間に分配し,有機層をブラインで洗浄し,乾燥し(Na2SO4),蒸発させてシロップを得た。ジクロロメタン中メタノールの1−3%勾配を用いるシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより12を白色泡状物として得た(0.75g,77%)。1H−NMRδ7.48−6.92(m,14H,芳香族),6.15(d,J=8.8,1H,NH),5.56(d,J=8.0,1H,NH),5.45(d,J4,3=3.2,1H,H4),5.40(dd,J3,4=3.2,J3,2=11.2,1H,H3),4.80(d,J1,2=8.0,1H,H1),4.3−4.13(m,3H,CH2,CH),4.25−3.92(m,4H,H6,H2,CH),3.89(s,3H,OMe),3.54(m,2H,H5,CH),3.36(dd,J=3.4,J=9.8,1H,CH),3.12(d,J=2.8,1H,OH),2.31(t,J=7.6,2H,CH2),2.22(s,3H,Ac),2.13(s,3H,Ac),2.03(s,3H,Ac),1.80−1.55(m,2xCH2),1.37(m,14H,7xCH2),1.21(d,J=6.4,3H,CH3).MS/ESI-m/z903.5(M−H)-
コンジュゲート12(1.2g,1.33mmol)を乾燥ジクロロメタン(15ml)にアルゴン下で溶解し,ジイソプロピルエチルアミン(0.94ml,5.40mmol)および1−メチルイミダゾール(55μL,0.69mmol)を加えた。溶液を0℃に冷却し,2−シアノエチル−N,N−ジイソプロピル−クロロホスホルアミダイト(0.51ml,2.29mmol)を加えた。反応混合物を2時間撹拌し,次に0℃に冷却し,無水エタノール(0.5ml)で急冷した。10分間撹拌した後,溶液を減圧下で濃縮し(40℃),残渣をジクロロメタンに溶解し,シリカゲルのカラムでヘキサン中酢酸エチルの50−80%勾配(1%トリエチルアミン)を用いてクロマトグラフィーを行って,ホスホルアミダイト13(1.2g,82%)を得た。31P−NMRδ149.41(s),149.23(s)
ホスホルアミダイト10および13を,標準的2’−O−TBDMSおよび2’−O−メチルヌクレオシドホスホルアミダイトとともに用いた。合成は,394(ABI)合成機で,改変した2.5μmスケールのプロトコルを用いて,2’−O−TBDMS保護ヌクレオシドについては5分間のカップリング工程を,2’−O−メチルヌクレオシドについては2.5分間のカップリング工程を用いて行った。放出されたトリチルカチオンの測定に基づいて,ホスホルアミダイト10のカップリング効率は50%より低かったが,ホスホルアミダイト13のカップリング効率は,典型的には95%より高かった。合成が完了した後に,オリゴヌクレオチドを脱保護した。5’−トリチル基はオリゴマーに結合させたままにして,精製を容易にした。固体支持体からの切断および保護基の脱離は本明細書に記載されるようにして行ったが,ただし,メチルアミン処理の前にFm保護を除去するためにDMF中20%ピペリジンを15分間用いた。SEP−PAKC−18吸着剤の短いカラムを用いて,5’−トリチル化オリゴマーをより短い(トリチルオフ)失敗配列から分離した。カラム上で1%トリフルオロ酢酸で処理することにより,結合したトリチル化オリゴマーを脱トリチル化し,トリエチルアンモニウムアセテート緩衝液で中和し,次に溶出した。逆相HPLCによりさらに精製した。ホスホルアミダイト13を用いて合成することができるN−アセチル−D−ガラクトースアミンコンジュゲートの例は,図15に示される。
2’−アミノ−2’−デオキシウリジン−N−アセチル−D−ガラクトースアミンコンジュゲート
ビス−Fmoc保護リシンリンカーは,EEDQ触媒ペプチドカップリングを用いて2’−アミノ−2’−デオキシウリジンの2−アミノ基に結合させた。5’−OHを4,4’−ジメトキシトリチル基で保護して1を得,次にジエチルアミンでN−Fmoc基を切断して,シントン2を高い合計収率で得た。
上述と同様の方法を用いて,D−トレオニノールを7にカップリングさせて,コンジュゲート11を良好な収率で得た。モノメトキシトリチル化,続いてホスフィチル化して,所望のホスホルアミダイト13を得た。
12−ヒドロキシドデカン酸ベンジルエステル
臭化ベンジル(10.28ml,86.45mmol)を,0℃で激しく撹拌しながら,純粋なDMF(120ml)中の12−ヒドロキシドデカン酸(17g,78.59mmol)およびDBU(12.93ml,86.45mmol)の溶液に滴加した。添加が完了した後,反応混合物を室温まで暖め,撹拌しながら一夜放置した。TLC(ヘキサン−酢酸エチル3:1)は,出発物質が完全に変換されたことを示した。DMFを減圧下で除去し,残渣をエチルエーテルと1NHClとの間に分配した。有機相を分離し,飽和水性炭酸水素ナトリウムで洗浄し,硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウムを濾別し,濾液を蒸発乾固させた。残渣をヘキサンから結晶化して,21.15g(92%)の表題化合物を白色粉体として得た。
ジエチルアゾジカルボキシレート(DEAD,16.96ml,107.7mmol)を,−20℃から−30℃で撹拌しながら純粋なTHF(250ml)中の12−ヒドロキシドデカン酸ベンジルエステル(21g,71.8mmol),トリフェニルホスフィン(28.29g,107.7mmol)およびN−ヒドロキシフタルイミド(12.88g,78.98mmol)の混合物に滴加した。反応混合物をこの温度でさらに2−3時間撹拌し,その後,TLC(ヘキサン−酢酸エチル3:1)は反応の完了を示した。溶媒を真空下で除去し,残渣をエーテル(250ml)で処理した。形成されたトリフェニルホスフィンオキシドの沈殿物を濾別し,母液を蒸発乾固させ,残渣を塩化メチレンに溶解し,ヘキサン−酢酸エチル(7:3)でシリカゲルのフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。適当な画分をプールし,蒸発乾固させて,26.5g(84.4%)の化合物15を得た。
化合物15(26.2g,59.9mmol)を225mlのエタノール−酢酸エチル(3.5:1)混合物に溶解し,10%Pd/C(2.6g)を加えた。反応混合物をParr装置で3時間水素化した。反応混合物をセライトを通して濾過し,蒸発乾固させた。残渣をメタノールから結晶化させて,15.64g(75%)の化合物16を得た。
純粋なDMF(150ml)中の,化合物16(15.03g,44.04mmol),ジシクロヘキシルカルボジイミド(10.9g,52.85mmol)およびN−ヒドロキシスクシンイミド(6.08g,52.85mmol)の混合物を室温で一夜撹拌した。TLC(塩化メチレン−メタノール9:1)は,出発物質が完全に変換されて,NHSエステル17が形成されたことを示した。次に,アミノプロパンジオール(4.01g,44mmol)を加え,反応混合物を室温でさらに2時間撹拌した。形成されたジシクロヘキシルウレアの沈殿物を濾過により除去し,濾液を減圧下で蒸発させた。残渣を酢酸エチルと飽和水性炭酸水素ナトリウムとの間に分配させた。全混合物を濾過して不溶性物質を除去し,透明な層を分離した。有機相を真空下で結晶物質が形成されるまで濃縮した。沈殿物を濾別し,冷酢酸エチルで洗浄して,10.86gの化合物17を得た。合わせた母液および洗浄液を蒸発乾固させ,酢酸エチルから結晶化させて,3.21gの化合物18を得た。合計収量14.07g(73.5%)。
塩化ジメトキシトリチル(12.07g,35.62mmol)を,0℃で純粋なピリジン(130ml)中の化合物18(14.07g,32.38mmol)の撹拌溶液に加えた。反応溶液を0℃で一夜保持した。次に,これをMeOH(10ml)で急冷し,蒸発乾固させた。残渣を塩化メチレンに溶解し,飽和水性炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し,硫酸ナトリウムで乾燥し,蒸発乾固させた。残渣を,ヘキサン中アセトンの段階勾配(3:7から1:1)を溶出液として用いるシリカゲルのフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。適当な画分をプールし,蒸発させて,14.73g(62%)の化合物19を無色油状物として得た。
Sanghviら(2000,Organic Process Research and Development,4,175−81)にしたがってホスフィチル化した。0.5%のトリエチルアミンを含むヘキサン中アセトンの段階勾配(1:4から3:7)を用いるシリカゲルのフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。収率約82%,無色油状物。
ペプチド(3.3mg,3.3pmol)を10mM AcONaに溶解し,2当量の過ヨウ素酸ナトリウム(100mM水溶液)を加えた。最終反応用量は0.5mlであった。10分後,反応混合物を,分析的HPLC(Phenomenex Jupiter 5u C18 300A(150x4.6mm)カラム;溶媒A:50mM K3PO4(pH3);溶媒B:MeCN中30%溶媒A;勾配B,30分間)を用いて精製した。適当な画分をプールし,SpeedVacで濃縮乾固した。収率:定量的。
5’末端リンカーを有するHerzyme(配列番号13)(100OD)を50mM KH2PO4(pH3,反応用量1ml)中の酸化ペプチド(3−5当量)と混合し,室温で24−48時間保持した。反応混合物を分析的HPLC(Phenomenex Jupiter 5u C18300A(150x4.6mm)カラム;溶媒A:10mMTEAA;溶媒B:10mMTEAA/MeCN)を用いて精製した。適当な画分をプールし,SpeedVacで濃縮乾固して,所望のコンジュゲートを得た。ESMS:計算値:12699,実測値:12698。
リン脂質酵素的核酸コンジュゲート(図19を参照)は,ABI394合成機での固相オリゴヌクレオチド合成の間に,標準的合成化学を用いて,酵素的核酸分子(Angiozyme(登録商標),配列番号24)の5’末端にC18H37ホスホルアミダイトをカップリングさせることにより製造した。3’−AdT−ジ−グリセロール−5’(Aはアデノシンであり,dTは2’−デオキシチミジンであり,ジ−グリセロールはジ−DMT−グリセロールリンカーである(Chemgenesカタログ番号CLP−5215))を含む5’末端リンカーを用いて,標準的合成化学を用いて2つのC18H37ホスホルアミダイトを酵素的核酸分子に結合させた。さらに追加の当量のC18H37ホスホルアミダイトを用いてビスカップリングを行った。同様にして,図18に示される他の核酸コンジュゲートを同様の方法論にしたがって製造することができる。
40K−PEG酵素的核酸コンジュゲート(図20を参照)は,PEG誘導体(Shear−Water Polymers Inc,CAT番号PEG2−NHS)を酵素的核酸分子(Angiozyme(登録商標),配列番号24)の5’末端に合成後N−ヒドロキシスクシンイミドエステルカップリングさせることにより製造した。3’−AdT−C6−アミン−5’(Aはアデノシンであり,dT−C6−アミンはC5連結6炭素アミンリンカーを有する2’−デオキシチミジンである)を含む5’末端リンカー(Glen Research カタログ番号10−1039−05)を用いて,PEG誘導体をNHSカップリング化学を用いて酵素的核酸分子に結合させる。
48匹の雌C57B1/6マウスに,30mg/kgのAngiozyme(登録商標)および30mg/kgのAngiozyme(登録商標)/40KPEGコンジュゲートを1回皮下(SC)ボーラスとして投与した。リボザイム注入の24時間後に血漿を回収した。血漿サンプルを,ハイブリダイゼーションアッセイにより,全長リボザイムについて分析した。
72匹の雌C57B1/6マウスに,30mg/kgのAngiozyme(登録商標)およびリン脂質とコンジュゲート化した30mg/kgのAngiozyme(登録商標)を1回静脈内(4)ボーラスとして投与した(図19)。リボザイム注入の3時間後,血漿を採取した。血漿サンプルをハイブリダイゼーションアッセイにより全長リボザイムについて分析した。
蛋白質およびペプチドは,オキシムおよびモルホリノ結合を用いて,本発明の生物分解性核酸リンカー分子を介して,種々の分子,例えばPEGにコンジュゲート化することができる。例えば,治療用抗体をPEGにコンジュゲート化させて,改良することができる。図24は,生物分解性リンカーを用いてPEGにコンジュゲート化させたペプチドまたは蛋白質を合成する合成法の非限定的例を示す。示されている例は,蛋白質コンジュゲート用のものである。他のコンジュゲートは,蛋白質またはペプチドをPEG以外の分子,例えば,小分子,トキシン,放射性同位体,ペプチドまたは他の蛋白質にコンジュゲート化して,同様の様式で合成することができる。
(a)目的とする蛋白質,例えば,抗体またはインターフェロンを,過ヨウ素酸ナトリウム等で酸化される末端セリンまたはトレオニン成分を有するように合成する。次に,酸化された蛋白質を,生物分解性であるように設計された核酸リンカー分子,例えば,オキシアミノ(O−NH2)官能基を含むシチジン−デオキシチミジン,シチジン−デオキシウリジン,アデノシン−デオキシチミジン,またはアデノシン−デオキシウリジンダイマーにカップリングさせる。他の生物分解性核酸リンカー,例えば生物分解性であるように設計された他のダイマー,トリマー,テトラマー等を同様に用いることができる。示される例は5’−オキシアミノ成分を利用しているが,他の例では,核酸分子中の他の位置で,例えば,2’位,3’位,または核酸塩基位置でオキシアミノを用いることができる;
(b)次に,蛋白質/核酸コンジュゲートを酸化してジアルデヒド官能基を生成し,アミノ基を含むPEG分子(H2N−PEG),例えば,アミノリンカーを有するPEG分子にカップリングさせる。他のアミノ含有分子は,図面に示されるように,例えば,小分子,トキシン,または放射性同位体標識分子にコンジュゲート化することができる。
(a)生物分解性であるように設計された核酸リンカー分子,例えば,シチジン−デオキシチミジン,シチジン−デオキシウリジン,アデノシン−デオキシチミジン,またはアデノシン−デオキシウリジンダイマーを,末端リン酸基を有するように合成する。他の生物分解性核酸リンカー,例えば,生物分解性であるように設計された他のダイマー,トリマー,テトラマーを同様に用いることができる。次に,蛋白質/核酸コンジュゲート末端リン酸基を活性化試薬,例えば,NMIおよび/またはテトラゾールで活性化し,アミノ基(H2N−PEG)を含むPEG分子,例えばアミノリンカーを有するPEG分子とカップリングさせる。図に示されるように,他のアミノ含有分子,例えば,小分子,トキシン,または放射性同位体標識分子をコンジュゲート化させることができる。末端保護基,例えば,ジメトキシトリチル基をコンジュゲートから除去し,ホスフィチル化試薬,例えば,N,N−ジイソプロピル−2−シアノエチルクロロホスホルアミダイトを用いて末端ホスファイト基を導入する。
(b)次に,PEG/核酸コンジュゲートを,アミノ基,例えば,ペプチドまたは蛋白質の適切に保護されたアミノ末端またはアミノ側鎖を含むペプチドまたは蛋白質に,またはアミノリンカーを介してカップリングさせる。次に,コンジュゲートを酸化し,保護基を除去して,生物分解性リンカーを含む蛋白質/PEGコンジュゲートを得る。
B型肝炎ウイルスRNA(HBV)に対するヌクレアーゼ耐性リボザイム(HepBzyme(登録商標))は,前臨床開発の初期段階にある。HepBzymeは,B型肝炎ウイルスRNAの部位273を標的としており,HBVトランスジェニックマウスモデルにおいて,血清HBVレベルを用量依存的様式で統計学的に有意に減少させた(30および100mg/kg/日)。アシアロ糖蛋白質レセプターを標的とすることにより肝臓取込を改良しようとして,一連の5分枝鎖ガラクトースアミン残基をHepBzymeの5’末端にリン酸結合を介して結合させた(Gal−HepBzyme)。HepBzymeに及ぼすガラクトースアミンコンジュゲーションの影響を,30mg/kgの1回SCボーラス投与後のマウスの血漿,肝臓および腎臓における32P標識HepBzymeおよびGal−HepBzymeの定量により評価した。無傷のリボザイムの血漿への配置は,Gal−HepBzymeとHepBzymeとで同様であった。肝臓における無傷のリボザイムの最大観察濃度(Cmax)には約3倍の増加が認められた(Gal−HepBzyme(6.1±1.8ng/mg)対HepBzyme(2.2±0.8ng/mg)(p<0.05)。Gal−HepBzymeの曲線の下の面積(AUCall)もまた約2倍増加した。さらに,無傷のリボザイムのAUCallは肝臓において実質的に減少した(約40%)。無傷のGal−HepBzymeの肝臓におけるCmaxの有意な増加に加え,リボザイム同等物の合計数の増加が認められ,このことは,無傷のリボザイムおよび代謝産物の両方について,肝臓におけるアシアロ糖蛋白質レセプターおよびガラクトース特異的レセプターに対する親和性が増加したことを示唆する。これらのデータは,リボザイムとガラクトースアミンとのコンジュゲーションによりより望ましい配置プロファイルを有する化合物が生ずることを示し,改良されたインビボ薬物動態学および生物学的分布を有するコンジュゲート化リボザイムの用途を例証する。
天然に存在するリボザイムの特徴
グループIイントロン
・サイズ:約150〜1000以上のヌクレオチド。
・標的配列中の切断部位の5’側に隣接してUを必要とする。
・切断部位の5’側で4〜6のヌクレオチドと結合する。
・反応メカニズム:グアノシンの3’−OHによって攻撃し,3’−OHおよび5’グアノシンを有する切断産物を生成する。
・活性構造のフォールディングおよび維持を助けるために,場合により,蛋白質の補因子をさらに必要とする。
・このクラスには300以上の種類が知られている。テトラヒメナ・サーモフィラのrRNA,真菌ミトコンドリア,葉緑体,ファージT4,らん藻類,その他において,介在配列として見出されている。
・主要な構造上の特徴は,系統発生比較,突然変異原性および生化学的研究によってほぼ確立されている[1,2]。
・1つのリボザイムに対して完全な力学的フレームワークが立証されている[3,4,5,6]。
・リボザイムのフォールディングおよび基質ドッキングに関する研究が進行中[7,8,9]。
・重要な残基の化学修飾検討は十分確立されている[10,11]。
・このリボザイムは,結合部位が小さい(4〜6ヌクレオチド)ため,標的RNA切断に対して非常に非特異的になる場合があるが,テトラヒメナのグループIイントロンは,「欠損」β−ガラクトシダーゼのメッセージに新たなβ−ガラクシダーゼ配列を結合することによってこのメッセージを修復するのに利用されている[12]。
・サイズ:約290〜400のヌクレオチド。
・偏在するリボ核蛋白質酵素のRNA部分。
・tRNA前駆体を切断し,成熟tRNAを形成する[13]。
・反応メカニズム:恐らくはM2+−OHによって攻撃し,3’−OHおよび5’リン酸を有する切断産物を生成する。
・RNasePは原核生物および真核生物全体に見出されている。このRNAサブユニットは,細菌,酵母,齧歯類および霊長類から配列決定されている。
・外部ガイド配列(EGS)と標的RNAのハイブリダイゼーションによって,内因性RNasePを治療応用に活用することが可能である[14,15]。
・リン酸と2’OHとの接触の重要性が最近判明した[16,17]。
・サイズ:1000以上のヌクレオチド。
・標的RNAのトランス切断であることが最近実証された[18,19]。
・配列要求性は完全には決定されていない。
・反応メカニズム:内部アデノシンの2’−OHが3’−OH,および3’−5’および2’−5’分岐点を含む「ラリアット」RNAを有する切断産物を生成する。
・RNAの切断および結合に加えて,DNA切断への関与が実証された[20,21]唯一の天然リボザイムである。
・主要な構造上の特徴は,系統発生比較によってほぼ確立されている[22]。
・2’OH接触の重要性が判明しはじめている[23]。
・力学的フレームワークは検討中である[24]。
・サイズ:約144ヌクレオチド。
・ヘアピン標的RNAのトランス切断であることが最近実証された[25]。
・配列要求性は完全には決定されていない。
・反応メカニズム:2’−OHが切れやすい結合の5’側を攻撃し,2’,3’−サイクリックリン酸および5’−OH末端を有する切断産物を生成する。
・結合部位および構造上の要求性は完全には決定されていない。
・このクラスは1種しか知られていない。Neurospora VS RNAに見出されている。
・サイズ:約13〜40ヌクレオチド。
・切断部位の5’に隣接した標的配列UHを必要とする。
・切断部位の両側で可変数のヌクレオチドと結合する。
・反応メカニズム:2’−OHによって切れやすい結合の5’側を攻撃し,2’,3’−サイクリックリン酸および5’−OH末端を有する切断産物を生成する。
・このクラスには14種が知られている。RNAを感染体として利用する多くの植物病原体(ウィルソイド)において見出されている。
・2つの結晶構造を含め,本質的な構造上の特徴がほぼ明確にされている。[26,27]
・(インビトロ選択による工学的処理に対し)ごくわずかなライゲーション活性が実証された。[28]
・2つまたはそれ以上のリボザイムに対して完全な力学的フレームワークが確立されている。[29]
・重要な残基の化学修飾検討は十分確立されている。[30]
・サイズ:約50ヌクレオチド。
・切断部位の3’に隣接した標的配列GUCを必要とする。
・切断部位の5’側で4〜6のヌクレオチドと,切断部位の3’側で可変数のヌクレオチドと結合する。
・反応メカニズム:2’−OHによって切れやすい結合の5’側を攻撃し,2’,3’−サイクリックリン酸および5’−OH末端を有する切断産物を生成する。
・このクラスには3種が知られている。RNAを感染体として利用する3種の植物病原体(タバコ・リングスポット・ウィルス,アラビス・モザイク・ウィルスおよびチコリー黄色斑ウィルスのサテライトRNA)に見出されている。
・本質的な構造上の特徴がほぼ明確にされている[31,32,33,34]。
・(切断活性に加えて)ライゲーション活性があるためにこのリボザイムはインビトロ選択による工学処理が可能である[35]。
・1つのリボザイムに対して完全な力学的フレームワークが確立されている[36]。
・重要な残基の化学修飾検討が着手された[37,38]。
・サイズ:約60ヌクレオチド。
・標的RNAのトランス切断であることが実証されている[39]。
・結合部位および構造上の要求性は完全には決定されていないが,切断部位の5’側の配列は要求されない。フォールディングされたリボザイムはシュードノット構造を含む[41]。
・反応メカニズム:2’−OHによって切れやすい結合の5’側を攻撃し,2’,3’−サイクリックリン酸および5’−OH末端を有する切断産物を生成する。
・このクラスは2種しか知られていない。ヒトHDVに見出されている。
・環状のHDVは活性があり,ヌクレアーゼ安定性が増加している[42]。
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Claims (13)
- 式5:
[式中、R 1 は、トリチルまたは置換トリチル基から選ばれる酸不安定性保護基または水素であり、R 4 は、tert−ブチル、Fm(フルオレニルーメトキシ)、アリール基、トリチルまたは置換トリチル基から選ばれる酸不安定性保護基、または水素であり、各R3、R5、R6 およびR8は、独立して、水素、アルキルまたは、Boc、Cbz、ベンゾイル、ベンジル、フタロイル、トリフルオロアセチル、FMOCおよびモノメトキシトリチル基から選ばれる窒素保護基であり、R 7 は、水素、アルキル、ジメチルホルムアミドまたは、Boc、Cbz、ベンゾイル、ベンジル、フタロイル、トリフルオロアセチル、FMOCおよびモノメトキシトリチル基から選ばれる窒素保護基であり、各"n"は、独立して、0−200の整数であり、R12は、直鎖または分枝鎖のアルキル、置換アルキル、アリール、または置換アリールであり、および各R9およびR10は、独立して、N(R 14 )(R 15 )で示される窒素含有基(但し、R 14 とR 15 は、独立して、水素、アルキル、置換アルキル、アリール、または置換アリールであるか、もしくは、R 14 とR 15 はいっしょになって、4−7個の原子を含み、かつ3個までの複素原子を有する、複素環、置換複素環、ヘテロシクロアリール、置換シクロヘテロアリールを形成する)、シアノアルコキシ、アルコキシ、アリールオキシ、またはアルキル基である]
を有する化合物。 - トリチルまたは置換トリチル基から選ばれる酸不安定性保護基が、ジメトキシトリチルまたはモノメトキシトリチル基である、請求項1に記載の化合物。
- R 3 が水素である、請求項1または2に記載の化合物。
- R 4 がtert−ブチル、Fm(フルオレニルーメトキシ)、またはアリール基である、請求項1〜3のいずれか1項に記載の化合物。
- R 5 が水素である、請求項1〜4のいずれか1項に記載の化合物。
- R 6 がTFA(トリフルオロアセチル)である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の化合物。
- R 7 がイソブチリル、ジメチルホルムアミド、または水素である、請求項1〜6のいずれか1項に記載の化合物。
- R 8 が水素である、請求項1〜7のいずれか1項に記載の化合物。
- R 9 が OCH 2 CH 2 CN(オキシエチルシアノ)である 、請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物。
- R 12 がアルキルである、請求項1〜9のいずれか1項に記載の化合物。
- R 12 がメチルまたはエチルである、請求項1〜10のいずれか1項に記載の化合物。
- 各"n"が、独立して、0−4の整数である、請求項1〜11のいずれか1項に記載の化合物。
- 下式で示される化合物またはその塩。
Fm:フルオレニル−メトキシ
TFA:トリフルオロアセチル
iBu:イソブチリル
iPr:イソプロピル
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