JP4431424B2 - 骨形成を促進するための組成物 - Google Patents
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Description
別の実施態様において、上記化合物は、式1中RがOR’(R’はC1〜C3アルキルを表す。)である化合物である。
別の実施態様において、上記化合物は、式1中RがOCH3又はOC2H5である化合物である。
別の実施態様において、上記化合物は、式1中RがOCH3である化合物である。
別の実施態様において、上記混合物は、式1中RがHである化合物とRがOCH3である化合物を含む。
別の実施態様において、上記混合物が甜菜からの抽出物又は糖蜜である。
別の実施態様において、上記化合物が、化学合成によって得られるものである。
別の実施態様において、上記組成物が医薬品である。
別の実施態様において、上記医薬品が、骨粗鬆症の治療又は予防用である。
別の実施態様において、上記組成物が、食品である。
別の実施態様において、上記食品が、健康食品又は機能性食品である。
別の実施態様において、上記食品、健康食品又は機能性食品が骨粗鬆症の予防用である。
上記式1のR’について、「C1〜C4アルキル」は、低級アルキルであるメチル(CH3)、エチル(C2H5)、n-もしくはi-プロピル(C3H7)又はn-もしくはi-ブチル(C4H9)を意味する。また同様に、「C1〜C3アルキル」は、メチル、エチル又はn-もしくはi-プロピルを意味する。
上記式1の化合物は、例えば、下記式2
の化合物からアミド結合を形成させることによって合成できる。式2及び式3の化合物は市販品を利用するか、さもなくば当業者には公知の出発物質と反応法を組合わせて容易に合成することができるだろう。
式1の化合物のうち、R基が-H及び-OCH3である化合物(それぞれN-tans-feruloyltyramine(「Amide 2」)及びN-trans-feruloylhomovanillylamine(「Amide 1」)という)は、いわゆるサトウダイコン(sugar beet)と称する甜菜の種子、根及び葉から、本発明者の一人である知地英征らの方法(Agric. Biol. Chem., 48(6):1653-1654 (1984))によって抽出、単離することができる。甜菜種子は粉砕後に、例えば、アセトン抽出、エタノール抽出、中和処理、ヘキサン抽出、水層の酢酸エチル抽出、イオン交換樹脂、シリカゲル等のカラムクロマトグラフィーによる酢酸エチル層の分離(シリカゲルクロマト溶離剤:ベンゼン-酢酸エチル-エタノール系)を順次実施することによって式1の上記2種類の化合物を混合物として得ることができ、これをさらに溶離剤を例えばクロロホルム-1%エタノールに替えてシリカゲルクロマトグラフィーに掛けることによってAmide1、ついでクロロホルム-2%エタノールからAmide 2をそれぞれ分離することができる。同様の又は類似の方法を用いて、甜菜の葉や根から目的の化合物を抽出、分離することができる。甜菜の根は、砂糖の原料であり、工業的に砂糖を結晶分離したあと糖蜜から分離できる。糖蜜は酵母の発酵原料、液体肥料、飼料添加物などに利用されているが、上記化合物の原料として使用できる。Amide1は、融点161℃、マススペクトルM+, m/z 343.1394、IRスペクトル3350〜3400cm-1(OH、NH), 1660cm-1(C=O)、NMRスペクトル(アセトン-d6)δ2.82(2H, J=7Hz), 3.62(2H, J=7Hz), 3.86(3H), 3.90(3H), 5.54(1H), 5.58(1H), 6.14 (1H, J=16Hz), 7.56(1H, J=16Hz), 6.68-7.0(6H)の物性値を有する。Amide 2は、融点148℃、マススペクトルM+, m/z 313.1337、IRスペクトル3390cm-1(OH、NH), 1660cm-1(C=O)、NMRスペクトル(アセトン-d6)δ2.76(2H), 3.54(2H), 6.52(1H, J=16Hz), 7.48 (1H, J=16Hz), 6.72-7.22(5H), 7.24(1H), 8.04 (1H), 8.22(1H)の物性値を有する。
(1)4-Benzyloxy-3-methoxyphenethylamineの合成
四つ口フラスコ(500 ml容)に水素化リチウムアルミニウム6.08 g(160 mmol)を入れ、それにtetrahydrofuran(THF)280 mlを加え、窒素気流下で還流加熱した。そこに4-benzyloxy-3-methoxy-β-nitrostyrene 9.12g (32 mmol)のTHF溶液(120 ml)を滴下した。2時間還流加熱した後、反応液を室温まで冷却し、水を加えた。沈殿物をろ過し、ろ液にジエチルエーテルを加え、その有機溶媒層を分離し、2N水酸化ナトリウム水溶液、ついで水で洗浄した。溶媒を乾燥剤(硫酸マグネシウム)で乾燥後、減圧留去し、4-benzyloxy-3-methoxy-phenethylamine(黄色油状物5.27g、収率64.1%)を得た。
丸底フラスコ(300 ml)に4-benzyloxy-3-methoxy-phenethylamine 5.27g (20.5 mmol)を入れ、TFH130 mlに溶解し、そこにferulic acid(上記式2の化合物) 3.98 g (20.5 mmol)を加えた。室温で撹拌しながら1,3-dicyclohexylcarbodiimide (DCC) 5.09 gのTFH (70 ml) 溶液を滴下した。室温で窒素気流下13時間撹拌し、出発物質の消失をTLCで確認の上、シリカゲルカラムで精製し、N-(4-benzyloxy-3-methoxyphenethyl)- ferulamide(黄色固体8.36g、収率94.2%)を得た。
四つ口フラスコ(200ml容)にN-(4-benzyloxy-3-methoxyphenethyl)- ferulamide 4 g (9.24 mmol)を入れ、それに塩酸23 ml(277 mmol)と酢酸 44 ml(769 mmol)を加え、40℃で反応させた。出発物質が消失したところで反応を止めて、反応液に水を加え、酢酸エチルで抽出後、溶媒を減圧留去した。得られた褐色シラップ(8.36g、収率94.2%)をシリカゲルカラムで精製し、N-trans-feruloylhomovanillylamine(無色固体)を得た。
融点161℃;マススペクトルM+, m/z 343.1394;UVスペクトル220nm(ε21,900), 232nm(ε22,100), 290nm(ε20,000), 319nm(ε24,300);IRスペクトル3350〜3400cm-1(OH、NH), 1660cm-1(C=O);NMRスペクトル(アセトン-d6)δ2.82(2H, J=7Hz), 3.62(2H, J=7Hz), 3.86(3H), 3.90(3H), 5.54(1H), 5.58(1H), 6.14 (1H, J=16Hz), 7.56(1H, J=16Hz), 6.68-7.0(6H)。
上記のAmide 1と同様の方法で、4-benzyloxyphenethylamineとferulic acidからN-trans-feruloyltyramineを合成した。
融点148℃;マススペクトルM+, m/z 313.1337;UV;スペクトル220nm(ε22,000), 292nm(ε16,300);IRスペクトル3390cm-1(OH、NH), 1660cm-1(C=O);NMRスペクトル(アセトン-d6)δ2.76(2H), 3.54(2H), 6.52(1H, J=16Hz), 7.48 (1H, J=16Hz), 6.72-7.22(5H), 7.24(1H), 8.04 (1H), 8.22(1H)。
粉砕した甜菜種子3.35kgをアセトン5,000mlで3回抽出したのち、エタノール5,000mlで3回抽出した。抽出液を合わせて40℃で1,200mlまで減圧濃縮し、濃縮液を重炭酸水素ナトリウムで中和したのち、ヘキサン3,000mlで7回抽出しヘキサン層(油分)を除去した。水層を酢酸エチル3,000mlで6回抽出し、酢酸エチル層を40℃で減圧濃縮して褐色シロップ22.7gを得た。このうち20gをシリカゲルカラム(5.5x61cm)に供し、ベンゼン、酢酸エチル、エタノールの混合比を変えながら3,000mlずつ溶出し、フラクション4にAmide 1及びAmide 2を主成分として含む混合物4.39gを得た。この混合物を同様のシリカゲルカラムに供し、クロロホルム-1%エタノールで溶出しAmide 1(1.11g)を回収し、ついでクロロホルム-2%エタノールで溶出しAmide 2(2.02g)を回収した。
(1)細胞培養
骨芽細胞株MC3T3-E1を10%仔牛胎児血清(FBS)を添加したα-MEM含有のプラスティックディッシュで37℃のCO2インキュベーターで培養した。3日おきにCa2+-,Mg2+- 非含有リン酸緩衝塩水(PBS)に0.02%EDTA、0.1%trypsinを加えたもので継代を行なった。実験には、2.0×104cells/wellを10%FBS添加のα-MEM 1mlを含有した24 well plateでコンフルエントになるまで培養した。培地交換と同時に試験試料を培地中濃度が0.1〜10.0μMになるように添加し92時間培養した。
細胞培養後、細胞を0.25Mのショ糖溶液にて3回洗浄した。25℃にて50mM 炭酸塩緩衝液(pH 9.8)を添加し超音波処理後、フェニルリン酸を基質とする測定法に準じた富士ドライケムスライド(富士フィルム社製)を用いて測定した。
細胞DNA量はH33258法(C. LabarcaとK. Paigen, Analytical Biochemistry 102:344-352, 1980)を用いて測定した。この方法は、H33258(和光純薬工業社製)がDNAと結合し蛍光(458nm)物質を生成するという原理に基づく。細胞培養後、細胞にCa2+-,Mg2+- 非含有 PBSを加えて超音波破砕を行なった。細胞ホモジネオート液、緩衝液、H33258を加えて攪拌し励起波長Ex:356nm, 発光波長Em:458nmで蛍光分析を行なった。
骨芽細胞株MC3T3-E1の、DNA量(μg)あたりのALP活性に及ぼすAmide 1及びAmide 2の影響を図1及び図2に示した。図1から明らかなように、Amide 1は、0.1μMで対照(Amide1又はAmide2非含有)の約2.2倍のALP活性、1.0μM で約2.5倍のALP活性を示し、これ以上の濃度ではALP活性は頭打ちとなった。一方、Amide 2は、0.1μMで対照の約1.3倍のALP活性、1.0μM で約1.5倍のALP活性、10.0μM で約2.5倍のALP活性を示した。これらの結果から、Amide 1及びAmide 2化合物がともに、骨芽細胞の分化を促進する活性、即ち骨形成を促進する作用又は機能を有することが明らかになった。またAmide 1は、培地中濃度0.1μMで対照の約2.2倍、1.0μMで約2.5倍の活性を示したことから、Amide 2よりも低濃度で高い活性を有することが判明した。
Claims (10)
- 式1中RがHである、請求項1に記載の医薬組成物。
- 式1中RがOR’(R’はC1〜C3アルキルを表す。)である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 式1中RがOCH3又はOC2H5である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 式1中RがOCH3である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記混合物が、式1中RがHである化合物とRがOCH3である化合物を含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記化合物又は前記混合物が、甜菜の種子、根又は葉から得られるものである、請求項1、2、5又は6に記載の医薬組成物。
- 前記混合物が甜菜からの抽出物又は糖蜜から得られるものである、請求項7に記載の医薬組成物。
- 前記化合物が、化学合成によって得られるものである、請求項1に記載の医薬組成物。
- 骨粗鬆症の治療又は予防用である、請求項1〜9のいずれか一項に記載の医薬組成物。
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