JP4915917B2

JP4915917B2 - ラクト−ｎ−ビオースｉ及びガラクト−ｎ−ビオースの製造方法

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Publication number: JP4915917B2
Application number: JP2006346470A
Authority: JP
Inventors: 本光北岡; 完西本
Original assignee: National Agriculture and Food Research Organization
Current assignee: National Agriculture and Food Research Organization
Priority date: 2006-12-22
Filing date: 2006-12-22
Publication date: 2012-04-11
Anticipated expiration: 2026-12-22
Also published as: JP2008154495A; EP2100967A1; EP2100967A4; WO2008078614A1; US8173399B2; KR101185788B1; KR20090087935A; EP2100967B1; US20100120096A1

Description

本発明は、酵素法を用いてラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースを製造する方法に関する。

β１，３−ガラクトシドであるラクト−Ｎ−ビオースＩ（Ｇａｌβ１−３ＧｌｃＮＡｃ）及びガラクト−Ｎ−ビオース（Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃ）は生理活性糖鎖の中によく見られる構造であり、機能性糖などとしての食品産業上の利用のほか、酵素、レクチンの基質や阻害剤、生体構成糖など、医薬品、試薬として利用することもできる。

これらの化合物の従来の製造法としては、例えばラクトースとＮ−アセチルグルコサミンとを含有する基質を出発原料として、ブタ睾丸起源のβ−ガラクトシダーゼとバチルス・サーキュランス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｃｉｒｃｕｌａｎｓ）の生産するβ−ガラクトシダーゼとを順次的に反応させることを特徴とするラクト−Ｎ−ビオースＩの製造法（特許文献１）、並びに糖ヌクレオチドと複合糖質前駆物質から複合糖質を生産する能力を有する微生物、動物細胞あるいは昆虫細胞を利用した複合糖質の生産方法（特許文献２）が知られている。しかしながら、前者は反応効率が低く、後者は発酵法によりこれらの糖を製造する方法であることから製造される化合物はどうしてもコスト高になり、いずれも実用性を欠いていた。

特許文献３には、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼの逆反応触媒活性を利用し、ガラクトース−１−リン酸を原料として、ラクト−Ｎ−ビオース誘導体を合成可能であることが示唆されている。しかし、ガラクトース−１−リン酸が高価であるため実用的価値は無かった。

特開平６−２５３８７８特開２００３−１８９８９１特開２００５−３４１８８３

したがって、安価でかつ簡便にラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースを製造する方法に関するニーズが存在する。

本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、酵素法によりラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースを製造する方法を完成した。

すなわち、本発明は以下を包含する。
（１）Ｎ−アセチルグルコサミン、リン酸、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２１１；１，３β−ガラクトシル−Ｎ−アセチルヘキソサミンホスホリラーゼ）及びＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ（ＥＣ５．１．３．２）の存在下で、
（ｉ）糖質原料と、該糖質原料を加リン酸分解しα−グルコース−１−リン酸を生じる酵素（Ｇ１Ｐ生成酵素）との組合せ；並びに
（ｉｉ）α−グルコース−１−リン酸をＵＤＰ−グルコースに変換する酵素及びＵＤＰ−ガラクトースをα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素とそれらの補因子との組合せ、及び／又はα−グルコース−１−リン酸及びＵＤＰ−ガラクトースをそれぞれＵＤＰ−グルコース及びα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素（ＵＤＰ−Ｇｌｙ生成酵素）とその補因子との組合せを作用させることを特徴とする、ラクト−Ｎ−ビオースＩの製造方法。

（２）Ｎ−アセチルガラクトサミン、リン酸、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２１１）及びＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ（ＥＣ５．１．３．２）の存在下で、
（ｉ）糖質原料と、該糖質原料を加リン酸分解しα−グルコース−１−リン酸を生じる酵素（Ｇ１Ｐ生成酵素）との組合せ；並びに
（ｉｉ）α−グルコース−１−リン酸をＵＤＰ−グルコースに変換する酵素及びＵＤＰ−ガラクトースをα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素とそれらの補因子との組合せ、及び／又はα−グルコース−１−リン酸及びＵＤＰ−ガラクトースをそれぞれＵＤＰ−グルコース及びα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素（ＵＤＰ−Ｇｌｙ生成酵素）とその補因子との組合せを作用させることを特徴とする、ガラクト−Ｎ−ビオースの製造方法。

（３）（ｉ）の組合せが、スクロースとスクロースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．７）との組合せ、デンプン又はデキストリンとホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．１）との組合せ、セロビオースとセロビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２０）との組合せ、セロデキストリンとセロデキストリンホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．４９）及びセロビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２０）との組合せ、ラミナリオリゴ糖とラミナリビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．３１）及び／又はβ−１，３オリゴグルカンホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．３０）との組合せ、並びにトレハロースとトレハロースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２３１）との組み合わせ、よりなる群から選択される１つ以上の組合せである、上記（１）又は（２）に記載の方法。

（４）（ｉｉ）の組合せが、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１２）と、ＵＤＰ−グルコース、ＵＤＰ−ガラクトース又はその混合物との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；並びにグルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ、よりなる群から選択される１以上の組合せである、上記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。
（５）酵素が担体に固定化されている、上記（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。

本発明によれば、安価でかつ簡便にラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースを製造する方法が提供される。

本発明は、酵素法による、ラクト−Ｎ−ビオースＩ又はガラクト−Ｎ−ビオースの製造方法に関する。

図３に本発明の酵素法の反応経路の概略図を示す。図３に示される通り、本発明の酵素法は、主に以下の３つの酵素反応からなる：（１）糖質原料の加リン酸分解反応；（２）グルコース−１−リン酸のガラクトース−１−リン酸への変換反応、（３）Ｎ−アセチルグルコサミン又はＮ−アセチルガラクトサミンからのラクト−Ｎ−ビオースＩ又はガラクト−Ｎ−ビオースの合成反応。

（１）の反応は、上記要素（ｉ）として含まれる糖質原料と該糖質原料を加リン酸分解してα−グルコース−１−リン酸を生じる酵素（Ｇ１Ｐ生成酵素）との組合せが、リン酸の存在下で反応して、グルコース−１−リン酸及び還元未糖が生じる反応である。上記要素（ｉ）として用いられる糖質原料と係る酵素の組合せは、これに限定されるものではないが、スクロースとスクロースホスホリラーゼとの組合せ、デンプン又はデキストリンとホスホリラーゼとの組合せ、セロビオースとセロビオースホスホリラーゼとの組合せ、セロデキストリンとセロデキストリンホスホリラーゼ及びセロビオースホスホリラーゼとの組合せ、ラミナリオリゴ糖とラミナリビオースホスホリラーゼとの組合せ、トレハロースとトレハロースホスホリラーゼとの組合せのいずれか一つ、あるいはそれらの組合せを含む。より好ましい組合せは、スクロースとスクロースホスホリラーゼとの組合せ、セロビオースとセロビオースホスホリラーゼとの組合せ、セロデキストリンとセロデキストリンホスホリラーゼ及びセロビオースホスホリラーゼとの組合せ、デンプン又はデキストリンとホスホリラーゼとの組合せのいずれか一つ、あるいはそれらの組合せであり、最も好ましい組合せは、スクロースとスクロースホスホリラーゼとの組合せである。糖質原料の使用濃度は特に限定されるものではないが、好ましくは約１〜約１０００ｇ／Ｌであり、より好ましくは約１０〜約１０００ｇ／Ｌである。Ｇ１Ｐ生成酵素の使用形態は特に限定されるものではなく、菌体抽出液、精製酵素、固定化酵素など種々のものを利用することができ、その使用量（活性で表す）も特に限定されないが、例えば糖質原料１ｇあたり約０．１ユニット〜約１００ユニットで使用し得る。

またこの反応に関わるリン酸はいかなる起源のものであっても良い。反応系に加えるリン酸濃度は特に限定されるものではないが、好ましくは約０．１ｍＭ〜約１０００ｍＭ、より好ましくは約１ｍＭ〜約１００ｍＭ程度である。

上記（２）の反応は、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼの存在下、上記要素（ｉｉ）として含まれる酵素及びその補因子の組合せによって、上記（１）の反応で生じたグルコース−１−リン酸をＵＤＰ−グルコースに変換しかつＵＤＰ−ガラクトースをガラクトース−１−リン酸へ変換する反応である。

要素（ｉｉ）として使用する酵素は、α−グルコース−１−リン酸をＵＤＰ−グルコースに変換する酵素及びＵＤＰガラクトースをガラクトース−１−リン酸に変換する酵素の組合せ、又はα−グルコース−１−リン酸及びＵＤＰ−ガラクトースをそれぞれＵＤＰ−グルコース及びα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素（ＵＤＰ−Ｇｌｙ生成酵素）、のいずれか、あるいはその組合せを包含する。すなわち、要素（ｉｉ）として含まれる酵素又は酵素の組合せは、該酵素又は酵素の組合せによる反応を進行させるための補因子、及びＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼの存在下で、α−グルコース−１−リン酸をα−ガラクトース−１−リン酸へ変換する上記（２）の変換反応を進行させる。

したがって、本発明で意図する上記要素（ｉｉ）の組合せは、以下の組合せ：ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１２）と、ＵＤＰ−グルコース、ＵＤＰ−ガラクトース又はその混合物との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素（ＥＣ２．７．７．９及びＥＣ２．７．７．１０の各酵素には、グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を有するものも存在する）と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；並びにグルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ、を包含する。上記要素（ｉｉ）の組合せが、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１２）とＵＤＰ−グルコース若しくはＵＤＰ−ガラクトース又はその両者との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；あるいはグルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ、であることが好ましい。係る要素（ｉｉ）の組合せは、各組合せを単独で使用してもよいし、組合せて使用してもよい。

これらの酵素は特に限定されるものではなくいかなる起源の酵素を用いることも可能である。この酵素の使用形態は特に限定されるものではなく、菌体抽出液、精製酵素、固定化酵素など種々のものを利用することができ、その酵素の使用量（活性で表す）も特に限定されないが、例えば糖質原料１ｇあたり約１ユニット〜約１０００ユニットで使用し得る。補因子の使用濃度は特に限定されるものではないが、好ましくは約０．０１ｍＭ〜約１００ｍＭ、より好ましくは約０．０２ｍＭ〜約１０ｍＭである。

ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼは特に限定されるものではなくいかなる起源の酵素を用いることも可能である。ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼの使用形態は特に限定されるものではなく、菌体抽出液、精製酵素、固定化酵素など種々のものを利用することができ、その使用量も特に限定されないが、例えば糖質原料１ｇあたり約０．１ユニット〜約１００ユニットで使用し得る。

上記（３）の反応は、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼの存在下、Ｎ−アセチルグルコサミン又はＮ−アセチルガラクトサミンを出発原料として、上記反応（２）によって生じたガラクトース−１−リン酸からラクト−Ｎ−ビオースＩ又はガラクト−Ｎ−ビオースを合成する反応である。出発原料として用いるＮ−アセチルグルコサミン又はＮ−アセチルガラクトサミンの濃度は特に限定されないが、好ましくは約１０ｍＭ〜約２Ｍ、より好ましくは約１００ｍＭ〜約１Ｍである。ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼの起源はいかなるものを用いても差し支えないが、好ましくはＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属細菌由来の酵素（例えば特開２００５−３４１８８３）を用いる。ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼの使用形態は特に限定されるものではなく、菌体抽出液、精製酵素、固定化酵素など種々のものを利用することができる。ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼの使用量（活性で表す）も特に限定されないが、例えば糖質原料１ｇあたり約０．１ユニット〜約１００ユニットで使用し得る。

本発明で使用される上記酵素の量は以下のように定義される：ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼは、０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭガラクトース−１−リン酸、１ＭＮ−アセチルグルコサミンからなる反応液において１分間に１マイクロモルのリン酸を遊離する酵素量を１ユニットとする；ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼは、０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭガラクトース−１−リン酸、１０ｍＭＵＤＰ−グルコース、１０ｍＭ塩化マグネシウムからなる反応液において１分間に１マイクロモルのグルコース−１−リン酸を生成する酵素量を１ユニットとする；ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼは、０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、５ｍＭＵＤＰ−ガラクトースからなる反応液において１分間に１マイクロモルのＵＤＰ−グルコースを生成する酵素量を１ユニットとする；スクロースホスホリラーゼ等のホスホリラーゼ酵素は０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭスクロース等の基質（糖質原料）、１０ｍＭリン酸水素ナトリウムからなる反応液において１分間に１マイクロモルのグルコース−１−リン酸を生成する酵素量を１ユニットとする；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素は、０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭピロリン酸、１０ｍＭＵＤＰ−グルコース、１０ｍＭ塩化マグネシウムからなる反応液において１分間に１マイクロモルのグルコース−１−リン酸を生成する酵素量を１ユニットとする。

上述した本発明の酵素は、任意の起源のものでよく、例えば細菌等の原核生物、酵母、菌類、動物等の真核生物由来のいずれの酵素であってもよく、また組換え酵素であってもよい。そのような酵素は市販のものを使用し得るか、または当業者に周知の方法、例えば天然から精製してもよいし、あるいは遺伝子組換え法によって取得し得る。例えば、遺伝子組換えによる方法では、本発明の酵素は、文献に記載されている若しくは公知の核酸又はタンパク質配列データベースに登録されている該酵素遺伝子の塩基配列を基に作製したプライマーを用いたＰＣＲによって適当なライブラリー中の該酵素遺伝子に対応するｍＲＮＡから作製したｃＤＮＡを増幅した後に、該ｃＤＮＡを市販の遺伝子発現ベクターに組込み、該発現ベクターで大腸菌等の菌体を形質転換することによって、菌体中で生成される。生成された酵素は、硫安分画等の粗分画又は各種のカラムクロマトグラフィーなど、当業者に周知のタンパク質精製法によって精製できる。また、酵素をＧＳＴやＨｉｓ−ｔａｇとの融合タンパク質として発現させることにより、その後の精製を容易にすることができる。

核酸又はタンパク質配列データベースは、例えばＧｅｎＢａｎｋ、ＵｎｉＧｅｎｅ、ＥＭＢＬなどに掲載の配列を利用することができる。配列検索プログラムとして使用可能なものは、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡなどのプログラムである。

プライマーは、通常１７〜３０塩基、好ましくは１９〜２５塩基の長さを有する。目的の酵素遺伝子又は対応ｃＤＮＡを鋳型にし、その５’末端及び３’末端を含む上記長さのセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを自動ＤＮＡ合成装置にて合成し、これを用いてＰＣＲを実施することができる。ＰＣＲは、目的の鋳型ＤＮＡ及びプライマー並びに４種の塩基（ｄＮＴＰ）及び耐熱性ＤＮＡポリメラーゼの存在下、変性、アニーリング及び伸長を１サイクルとして、通常２０〜４０サイクルを実施することを含む。変性は、二本鎖ＤＮＡを一本鎖に解離するための処理であり、通常９４℃、１５秒〜５分間の処理を行う。アニーリングは、一本鎖の鋳型ＤＮＡに、それに相補的なプライマーをアニーリングする処理であり、通常５５〜６０℃、３０秒〜２分間の処理を行う。伸長反応は、鋳型ＤＮＡに沿ってプライマーを伸長する反応であり、通常７２℃で３０秒〜１０分間の処理を行う。

形質転換は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ，ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ（１９８９），ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓに記載されるような技術を使用して実施できる。

本発明の酵素はまた、上記の原核生物細胞又は真核生物細胞から直接精製してもよい。細胞破壊液を調製し、遠心分離、硫安分画、透析、各種クロマトグラフィー（例えばゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーなど）、電気泳動、限外ろ過、結晶化などの酵素精製のための一般的な技術を適宜組合せて、目的の酵素を精製することができる。本発明に使用可能な酵素の形態は、精製酵素の他に、粗製酵素（例えば菌体抽出液、凍結乾燥体など）でもよい。粗製酵素を使用する場合には、本発明の上記反応を妨害する因子を含むべきではない。

また本発明において、上記酵素は担体に固定化して使用することができる。本発明に使用し得る固定化酵素の調製方法には、担体結合法（物理的吸着法、イオン結合法、共有結合法、生化学的特異結合法など）、架橋法及び包括法等の当業者に周知の方法が含まれる。担体結合法は、酵素を水不溶性の担体に結合させる方法であり、この場合、セルロース、デキストラン、アガロースなどの多糖類の誘導体、ポリアクリルアミドゲル、ポリスチレン樹脂、イオン交換樹脂などの合成高分子、多孔性ガラス、金属酸化物などの無機物質などを担体として使用できる。架橋法は官能基を２個以上もった試薬と酵素とを反応させて、酵素間で架橋化を行うことで固定化する方法であり、架橋試薬として、グルタルアルデヒド、イソシアン酸誘導体、Ｎ，Ｎ−エチレンビスマレイミド、ビスジアゾベンジシン、Ｎ，Ｎ−ポリメチレンビスヨードアセトアミドなどが使用できる。包括法は天然高分子や合成高分子のゲルマトリックスの中に酵素を閉じ込める格子型等を含み、その際に用いる高分子化合物として、ポリアクリルアミドゲル、ポリビニルアルコール、光硬化性樹脂、デンプン、コンニャク粉、ゼラチン、アルギン酸、カラギーナンなどが含まれる。

本発明の好適な実施形態によれば、上記反応に関わる全ての酵素を固定化したバイオリアクターカラムを用いて、固定化酵素リアクターとして反応を行うことも可能である。この場合、原料や補因子を含む水溶液を、例えば滞留時間０．０１時間〜３００時間の流速でカラムを連続的に通過させることによってラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースの製造を実施し得る。

反応形態は特に限定されるものではないが、通常は水溶液又は緩衝液中で行われる。反応液のｐＨは好ましくは５〜９である。反応温度は特に限定されるものではないが、好ましくは５℃〜８０℃、より好ましくは２０℃〜６０℃である。また反応時間は特に限定されるものではないが、０．１〜３０００時間であることが好ましい。

本発明の一つの利点は、上記全ての酵素反応を、一容器中で又はバイオリアクターを用いて簡便かつ容易に実施できる点にある。さらに、上記（１）〜（３）の反応は、該反応に関る酵素の性質に基づいて可逆的であり得るため、全体として単純な平衡反応とすることができ、上記反応（３）で生じるリン酸、及び上記反応（２）で生じるＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトースをリサイクルすることできる。したがって、これらの物質は触媒量で存在させるだけでよく、費用効果も高い。

本発明により得られるラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースは任意の方法で精製することができる。例えば、本発明により得られるラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースは、カラムクロマトグラフィーや結晶化により単離することが可能である。カラムクロマトグラフィーとして、これに限定されるものではないが、サイズ排除クロマトグラフィー、シリカゲルカラムクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、限外濾過膜分離、逆浸透膜分離が含まれる。結晶化方法としては、これに限定されるものではないが、濃縮、温度低下、溶媒添加（エタノール、メタノール、アセトンなど）が含まれる。
以下に本発明の実施例を示す。

実施例１．酵素の調製
本発明者らはスクロースを糖質原料としたときのラクト−Ｎ−ビオースＩ合成について、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ、及びグルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素を取得するため、ＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｌｏｎｇｕｍＪＣＭ１２１７株ゲノムＤＮＡより該酵素遺伝子の単離を行った。ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ遺伝子は特開２００５−３４１８８３に記載の方法で取得した。スクロースホスホリラーゼ（ＢＬ０５３６;配列番号１）、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ（ＢＬ１６４４；配列番号２）、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＢＬ１２１１；配列番号３）、及びグルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素（ＢＬ０７３９；配列番号４）の各遺伝子はＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｌｏｎｇｕｍＮＣＣ２７０５株ゲノムデータベースに登録されている該酵素遺伝子の塩基配列を基にしてプライマーを作製した（配列番号５〜２０；表１参照）。

これらを用いて、ＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｌｏｎｇｕｍＪＣＭ１２１７株より抽出したゲノムＤＮＡを鋳型として行ったポリメラーゼ連鎖反応法（ＰＣＲ）により、ＤＮＡ塩基配列を有する１３４６、１２３８、１８２０、２０５３ｂｐの明瞭なバンドを得た。得られたバンド（ＰＣＲ産物）をＤＮＡシークエンサーで分析してＤＮＡ塩基配列を解読した（配列表の配列番号１〜４参照）。このＤＮＡ塩基配列をアミノ酸に翻訳したところ、それぞれＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｌｏｎｇｕｍＮＣＣ２７０５株由来遺伝子と相同性の高い１２５１、１０２３、１６２７、１５３０ｂｐのオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）が認められた。これらのＯＲＦが該酵素遺伝子であることを実証するために、ＯＲＦの５’末端及び３’末端で作製したプライマー（表１参照）を用いてＯＲＦ全長をＰＣＲにより増幅し、導入した制限酵素部位を利用して市販の遺伝子発現用ｐＥＴ３０プラスミドに連結した。このプラスミドを用いて、常法により大腸菌を形質転換し、形質転換体を得た。得られた形質転換体を３０℃で培養し、該遺伝子発現誘導後の菌体より組換え酵素の精製を行った。精製は各酵素のＣ末端に付加したヒスチジンタグ配列を利用し、ニッケルカラムを用いて行った。１Ｌの培養液より精製される酵素量はそれぞれ表１に示された通りである。生産された組換え酵素が各酵素活性を有していたことからクローニングした各遺伝子が該酵素遺伝子であることが確認された。各酵素の活性は以下のように定義した。なお、反応温度は全て３０℃とした。ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼは０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭガラクトース−１−リン酸、１ＭＮ−アセチルグルコサミンからなる反応液において１分間に１マイクロモルのリン酸を遊離する酵素量を１ユニットとした。ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼは０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭガラクトース−１−リン酸、１０ｍＭＵＤＰ−グルコース、１０ｍＭ塩化マグネシウムからなる反応液において１分間に１マイクロモルのグルコース１リン酸を生成する酵素量を１ユニットとした。ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼは０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、５ｍＭＵＤＰ−ガラクトースからなる反応液において１分間に１マイクロモルのＵＤＰ−グルコースを生成する酵素量を１ユニットとした。スクロースホスホリラーゼは０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭスクロース、１０ｍＭリン酸水素ナトリウムからなる反応液において１分間に１マイクロモルのグルコース−１−リン酸を生成する酵素量を１ユニットとした。グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素は、０．１ＭＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、１０ｍＭピロリン酸、１０ｍＭＵＤＰ−グルコース、１０ｍＭ塩化マグネシウムからなる反応液において１分間に１マイクロモルのグルコース−１−リン酸を生成する酵素量を１ユニットとした。

セロビオースホスホリラーゼ（ＡｃｔａＣｒｙｓｔ．，Ｄ６０，１８７７−１８７８（２００４））、ラミナリビオースホスホリラーゼ（Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．，３０４（２），５０８−５１４（１９９３））はそれぞれかっこ内の文献に記載された方法で調製した。ホスホリラーゼはＳｉｇｍａ−Ａｌｄｏｒｉｃｈ社よりウサギ筋肉由来の酵素を購入した。

実施例２．スクロースのラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換
スクロースを糖質原料としてラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換反応を行った。反応液量は１ミリリットルとし、終濃度０．２４Ｍスクロース、０．２４ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ、スクロースホスホリラーゼを１ミリリットル当たり２Ｕ、２０Ｕ、２．６Ｕ、２Ｕ加え、３０℃で９０時間反応を行った。反応を１０分間煮沸停止後反応液のｐＨを４．５に調整しインベルターゼ処理を行うことにより残存スクロースを分解した。反応液をＴＬＣ（溶媒アセトニトリル−水７５：２５、担体シリカゲル６０）で分析した結果、ラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度は２００ｍＭであった。（図１、レーン２，３）

実施例３．セロビオースのラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換
セロビオースを糖質原料としてラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換反応を行った。反応液量は１ミリリットルとし、終濃度０．２４Ｍセロビオース、０．２４ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ、セロビオースホスホリラーゼを１ミリリットル当たり２Ｕ、２０Ｕ、２．６Ｕ、１０Ｕ加え、３０℃で９０時間反応を行った。反応を１０分間煮沸停止後反応液のｐＨを５に調整しβグルコシダーゼ処理を行うことにより残存スクロースを分解した。反応液をＴＬＣ（溶媒アセトニトリル−水７５：２５、担体シリカゲル６０）で分析した結果、ラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度は８０ｍＭであった。（図１、レーン４，５）

実施例４．ラミナリビオースのラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換
ラミナリビオースを糖質原料としてラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換反応を行った。反応液量は１ミリリットルとし、終濃度０．２４Ｍラミナリビオース、０．２４ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ、ラミナリビオースホスホリラーゼを１ミリリットル当たり２Ｕ、２０Ｕ、２．６Ｕ、５Ｕ加え、３０℃で９０時間反応を行った。反応を１０分間煮沸停止後反応液のｐＨを５に調整しβグルコシダーゼ処理を行うことにより残存スクロースを分解した。反応液をＴＬＣ（溶媒アセトニトリル−水７５：２５、担体シリカゲル６０）で分析した結果、ラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度は８０ｍＭであった。（図１、レーン６，７）

実施例５．マルトヘプタオースのラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換
マルトヘプタオースを糖質原料としてラクト−Ｎ−ビオースＩへの変換反応を行った。反応液量は１ミリリットルとし、終濃度０．２４Ｍマルトヘプタオース、０．２４ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ、ホスホリラーゼを１ミリリットル当たり２Ｕ、２０Ｕ、２．６Ｕ、７Ｕ加え、３０℃で９０時間反応を行った。反応液をＴＬＣ（溶媒アセトニトリル−水７５：２５、担体シリカゲル６０）で分析した結果、ラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度は１００ｍＭであった。（図１、レーン８，９）

実施例６．スクロースからラクト−Ｎ−ビオースＩの調製
ラクト−Ｎ−ビオースＩの合成は以下の通りに行った。反応液量は１０ミリリットルとし、終濃度０．６６Ｍスクロース、０．６０ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼをそれぞれ１ミリリットル当たり０．２５Ｕ、０．０８Ｕ、２．５０Ｕ、０．３３Ｕ加え、３０℃で５００時間反応を行った。反応液中のラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度はおよそ０．５２Ｍであり、糖質原料の約８０％がラクト−Ｎ−ビオースＩに変換していた。反応液中の未反応のスクロースを分解するため、反応液のｐＨを塩酸で４．５に調整し、Ｓｉｇｍａ社より購入したインベルターゼ３ｍｇを加え３７℃で１５時間処理した。処理後の反応液をＴＯＹＯＰＥＡＲＬＨＷ４０Ｆカラムに供し、ゲルろ過によりラクト−Ｎ−ビオースＩ画分を単離、回収した。回収した画分をエバポレーターで濃縮し、凍結乾燥によりラクト−Ｎ−ビオースＩ標品０．９５ｇ（単離収率４１％）を得た。

実施例７．スクロースからガラクト−Ｎ−ビオースの調製
ガラクト−Ｎ−ビオースの合成は以下の通りに行った。反応液量は１０ミリリットルとし、終濃度０．６６Ｍスクロース、０．６０ＭＮ−アセチルガラクトサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼをそれぞれ１ミリリットル当たり０．２５Ｕ、０．０８Ｕ、２．５０Ｕ、０．３３Ｕ加え、３０℃で５００時間反応を行った。反応液中のガラクト−Ｎ−ビオース濃度はおよそ０．４０Ｍであり、糖質原料の約６０％がガラクト−Ｎ−ビオースに変換していた。反応液中の未反応のスクロースを分解するため、反応液のｐＨを塩酸で４．５に調整し、Ｓｉｇｍａ社より購入したインベルターゼ３ｍｇを加え３７℃で１５時間処理した。処理後の反応液をＴＯＹＯＰＥＡＲＬＨＷ４０Ｆカラムに供し、ゲルろ過によりガラクト−Ｎ−ビオース画分を単離、回収した。回収した画分をエバポレーターで濃縮し、凍結乾燥によりガラクト−Ｎ−ビオース標品０．７８ｇ（単離収率３４％）を得た。

実施例８．ラクト−Ｎ−ビオースＩの大量調製
ラクト−Ｎ−ビオースＩの大量調製は以下の通りに行った。反応液量は１リットルとし、終濃度０．６６Ｍスクロース、０．６０ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコースからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼをそれぞれ１ミリリットル当たり２Ｕ、０．３Ｕ、２０Ｕ、２．６Ｕ加え、３０℃で１３５時間反応を行った。このときのスクロース濃度及びラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度の経時変化を図２に示す。反応収率は８７％であった。反応終了後の反応液に２５ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で平衡化したＤＥＡＥ−ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ６５０Ｍ１６０ｍＬ加え、１時間撹拌することにより酵素を吸着させた後、ろ過により上清を分離した。この上清にドライイースト（日清カメリヤ）２０グラムを加え、３０℃で１８時間攪拌し、酵母処理を行った。処理後、遠心分離及びセライトを用いたろ過により、酵母を取り除いた上清を得た。得られた上清をエバポレーターで濃縮した後、室温に静置しておくことで結晶が得られたため、この結晶をろ過により分離し、真空乾燥により標品を得た。また、結晶を分離した母液についても再度結晶化を行い回収率の向上を行った。これにより純度９７％のラクト−Ｎ−ビオースＩ１３０グラム（収率５５％）、純度８５％のラクト−Ｎ−ビオースＩ６５グラム（収率２４％、合計収率７９％）が得られた。

実施例９．ラクト−Ｎ−ビオースＩのバイオリアクターによる調製
実施例８で調製した酵素の吸着されたＤＥＡＥ−ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ６５０Ｍ１６０ｍＬ分を径２．６ｃｍのガラス製カラムにつめてバイオリアクターカラム（φ２．６ｃｍ×３０ｃｍ）を調製した。該カラムにはラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼがそれぞれ約２０００Ｕ、３００Ｕ、２０００００Ｕ、２６００Ｕ吸着されていた。本カラムに３０℃、流速０．１ｍｌ毎分（滞留時間２７時間）の条件で５００ｍｌの基質溶液（終濃度０．６６Ｍスクロース、０．６０ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸−ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコース）を供し、循環させた。１回カラム循環後の基質溶液中のラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度はおよそ０．３Ｍ、２回カラム循環後では０．４Ｍ、３回カラム循環後のでは０．５Ｍであった。

実施例１０．グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）とガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）の両活性を持つ酵素を用いたラクト−Ｎ−ビオースＩの調製
ラクト−Ｎ−ビオースＩの合成は以下の通りに行った。反応液量は１ミリリットルとし、終濃度０．６６Ｍスクロース、０．６０ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＴＰからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）とガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）の両活性を持つ酵素をそれぞれ１ミリリットル当たり０．２５Ｕ、０．０８Ｕ、２．５Ｕ、５．０Ｕ加え、３０℃で６０時間反応を行った。６０時間後の反応液中のラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度は５０ｍＭであった。

実施例１１．グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）とガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）の両活性を持つ酵素を用いたラクト−Ｎ−ビオースＩの調製
ラクト−Ｎ−ビオースＩの合成は以下の通りに行った。反応液量は１ミリリットルとし、終濃度０．６６Ｍスクロース、０．６０ＭＮ−アセチルグルコサミン、１０ｍＭ塩化マグネシウム、３０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＵＤＰ−グルコース、１ｍＭピロリン酸ナトリウムからなる基質溶液を調製し、そこにラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ、スクロースホスホリラーゼ、ＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ、グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）とガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）の両活性を持つ酵素をそれぞれ１ミリリットル当たり０．２５Ｕ、０．０８Ｕ、２．５Ｕ、５．０Ｕ加え、３０℃で６０時間反応を行った。６０時間後の反応液中のラクト−Ｎ−ビオースＩ濃度はいずれも５０ｍＭであった。

本発明により製造可能なラクト−Ｎ−ビオースＩ及びガラクト−Ｎ−ビオースは、食品添加物、機能性食品、医薬品のバルク又は原料成分としてその有効利用が期待される。

図１は、示された糖質原料及びこれを加リン酸分解する酵素から、本発明の方法により、ラクト−Ｎ−ビオースＩが製造できることを示す薄層クロマトグラフィーの結果である。図２は、スクロースを糖質原料とする本発明のラクト−Ｎ−ビオースＩの製造方法における、スクロースとラクト−Ｎ−ビオースＩの濃度の継時変化を示す。図３は、本発明の酵素法の反応経路の概略図を示す。

Claims

Ｎ−アセチルグルコサミン、リン酸、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２１１）及びＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ（ＥＣ５．１．３．２）の存在下で、
（ｉ）糖質原料と、該糖質原料を加リン酸分解しα−グルコース−１−リン酸を生じる酵素との組合せ；並びに
（ｉｉ）α−グルコース−１−リン酸をＵＤＰ−グルコースに変換する酵素及びＵＤＰ−ガラクトースをα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素とそれらの補因子との組合せ、及び／又はα−グルコース−１−リン酸及びＵＤＰ−ガラクトースをそれぞれＵＤＰ−グルコース及びα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素とその補因子との組合せを作用させることを特徴とする、ラクト−Ｎ−ビオースＩの製造方法。
Ｎ−アセチルガラクトサミン、リン酸、ラクト−Ｎ−ビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２１１）及びＵＤＰ−グルコース−４−エピメラーゼ（ＥＣ５．１．３．２）の存在下で、
（ｉ）糖質原料と、該糖質原料を加リン酸分解しα−グルコース−１−リン酸を生じる酵素との組合せ；並びに
（ｉｉ）α−グルコース−１−リン酸をＵＤＰ−グルコースに変換する酵素及びＵＤＰ−ガラクトースをα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素とそれらの補因子との組合せ、及び／又はα−グルコース−１−リン酸及びＵＤＰ−ガラクトースをそれぞれＵＤＰ−グルコース及びα−ガラクトース−１−リン酸に変換する酵素とその補因子との組合せを作用させることを特徴とする、ガラクト−Ｎ−ビオースの製造方法。
（ｉ）の組合せが、スクロースとスクロースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．７）との組合せ、デンプン又はデキストリンとホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．１）との組合せ、セロビオースとセロビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２０）との組合せ、セロデキストリンとセロデキストリンホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．４９）及びセロビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２０）との組合せ、ラミナリオリゴ糖とラミナリビオースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．３１）及び／又はβ−１，３オリゴグルカンホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．３０）との組合せ、並びにトレハロースとトレハロースホスホリラーゼ（ＥＣ２．４．１．２３１）との組み合わせ、よりなる群から選択される１つ以上の組合せである、請求項１又は２に記載の方法。
（ｉｉ）の組合せが、ＵＤＰ−グルコース−ヘキソース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１２）と、ＵＤＰ−グルコース、ＵＤＰ−ガラクトース又はその混合物との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．９）及びガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．７．１０）と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰとの組合せ；グルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ；並びにグルコース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼとガラクトース−１−リン酸ウリジリルトランスフェラーゼの両活性を持つ酵素と、ＵＴＰ及びＵＤＰ−グルコース及び／又はＵＤＰ−ガラクトース及びピロリン酸との組合せ、よりなる群から選択される１以上の組合せである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
酵素が担体に固定化されている、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。