JP5242855B2

JP5242855B2 - 免疫アジュバント

Info

Publication number: JP5242855B2
Application number: JP2012526548A
Authority: JP
Inventors: 直幸守屋; ▲祐▼生子守屋; 忠昭宮崎; 安弘二川; 志保青木
Original assignee: AUREO SCIENCE CO., LTD.; Hokkaido University NUC; Aureo Co Ltd
Current assignee: AUREO SCIENCE CO., LTD.; Hokkaido University NUC; Aureo Co Ltd
Priority date: 2010-07-29
Filing date: 2011-07-28
Publication date: 2013-07-24
Anticipated expiration: 2031-07-28
Also published as: WO2012014978A1; JPWO2012014978A1

Description

本発明は、免疫原性物質による免疫力強化のために該免疫原性物質とともに投与する免疫アジュバントに関するものである。

β−グルカンは、Ｄ-グルコースを構成糖として構成される多糖類であるが、例えばβ-１，３グルカンは、β−ピラノース型の環状Ｄ-グルコース同士がグルコース１位の炭素に結合している水酸基部位とグルコース３位の炭素に結合している水酸基部位との間でβ−１，３グルコシド結合によって縮合し、環状β−ピラノース型のＤ-グルコースが重合するように構成される多糖類である。β−グルカンのような多糖類はエネルギー源である糖の貯蔵分子や細胞壁などの構造分子として自然界の生物中に多種多様に見出されるが、キノコ類であるアガリクス茸、霊芝（レイシ）、舞茸（マイタケ）、椎茸（シイタケ）等に含有するβ−グルカンには、健康を維持増進ための様々な生理活性を有していることが知られ、免疫増強作用、抗腫瘍活性、ガン細胞増殖抑制作用、抗アレルギー作用、抗炎症作用、コレステロール低下作用、抗血栓作用、食物繊維作用、血圧降下作用、血糖降下作用、肝機能亢進などを目的とする機能性素材や医薬品等として利用する試みが数多くなされている。また、難消化性であることから、便秘の予防・改善のための整腸剤、あるいは、その保湿性を利用する化粧品など、幅広い応用が期待できる多糖類の機能性素材として期待されている。

有益な活性を有するβ−グルカンとして、β−１，３グルコシド結合からなる主鎖に加えて、グルコース６位の炭素からのＤ-グルコースの側鎖を有するβ−１，３−１，６−グルカンがよく知られており、枝分かれ構造が活性に必要であると考えられているが、その作用機序は必ずしも明らかでない。また、β−グルカンは天然物から得られる高分子ポリマーであることから、分岐の度合、主鎖の長さ、側鎖の長さ等の構造は、また、アミノ化、リン酸化、メチル化、アセチル化等によるＤ-グルコース水酸基の修飾の有無や度合も、均一ではなく、その構造や化学修飾が活性に与える影響に関する原理は示されていない。そこで、経験的にキノコ類由来のβ−グルカンが好んで用いられているに過ぎない面があり、他の生物種由来のβ−グルカンを利用する試みは少なかった。

最近、自然界に広く存在する不完全菌であるアウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物（通称、黒酵母）が産生するβ−１，３−１，６−グルカンによっても、キノコ類由来のβ−グルカンと同等又は同等以上の機能が得られることが明らかとされている。

例えば、下記特許文献１には、β−１，３−１，６グルカンを主成分とするアウレオバシジウム培養液が、経口的に高い抗腫瘍活性及び免疫賦活活性を有し、各種疾病に対する医薬品として応用できる旨が記載されている。

一方、ワクチンや抗体生産の分野では、免疫原性物質による免疫の効果を高めるため効果を持つものを免疫アジュバントと称し、このような免疫アジュバントの作用を有するものとして、無機物の水酸化アルミニウム、リン酸カルシウム、リン酸アルミニウム、ミョウバンなどや、鉱油や流動パラフィンのミセルに結核菌の死菌を懸濁したフロイントの完全アジュバントなどが知られている。

特開２００２−２０４６８７号公報

しかしながら、免疫アジュバントには、ワクチン等の種類によっては十分な効果を発揮できない場合や、それ自体、アレルギー症状を悪化させる副作用を引き起こす場合もあり、新たな免疫アジュバントを提供することが期待されていた。

したがって、本発明の目的は、天然物由来の有効成分を利用する免疫アジュバントであって、優れた効果を有するものを提供することにある。

本発明者らは、上記目的を達成するため鋭意研究し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下のとおりである。
［１］免疫原性物質による免疫力強化のために該免疫原性物質とともに経鼻投与する免疫アジュバントであって、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養物から得られる培養組成物を有効成分として含有することを特徴とする経鼻用免疫アジュバント。
［２］前記免疫原性物質はワクチンの形態であり該ワクチンは、インフルエンザウイルスワクチンである上記［１］記載の経鼻用免疫アジュバント。
［３］更にPoly(I:C)を併用して経鼻投与する形態に適用する、上記［２］記載の経鼻用免疫アジュバント。
［４］前記培養組成物は、前記微生物を培養した培養液又はこれを乾燥して粉末化したものである上記［１］〜［３］のいずれか１項に記載の経鼻用免疫アジュバント。

本発明の免疫アジュバントによれば、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養物から得られる培養組成物を有効成分として含有するので、抗原に対する抗体の産生能を増強させ、ワクチン等の免疫原性物質による免疫賦活作用を強化する。

鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について試験群１〜４の各試験群の平均の結果をまとめて示す図表である。鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について試験群１と試験群２の固体別の結果を比較した図表である。鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について試験群２と試験群４の固体別の結果を比較した図表である。鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について試験群２と試験群３の固体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＧ抗体価について試験群１〜４の各試験群の平均の結果をまとめて示す図表である。血清中ＩｇＧ抗体価について試験群１と試験群２の個体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＧ抗体価について試験群２と試験群４の固体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＧ抗体価について試験群２と試験群３の固体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＭ抗体価について試験群１〜４の各試験群の平均の結果をまとめて示す図表である。血清中ＩｇＭ抗体価について試験群１と試験群２の固体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＭ抗体価について試験群２と試験群４の個体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＭ抗体価について試験群２と試験群３の固体別の結果を比較した図表である。血清中ＩｇＧ抗体価について試験群５〜１２の各試験群の平均の結果を示す図表である。血清中ＩｇＭ抗体価について試験群５〜１２の各試験群の平均の結果を示す図表である。１〜８倍希釈での鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について試験群５〜１２の各試験群の平均の結果を示す図表である。

本発明の免疫アジュバントは、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養物から得られる培養組成物（以下、「アウレオバシジウム由来培養組成物」という。）を有効成分として含有する。このアウレオバシジウム由来培養組成物としては、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物（以下、「アウレオバシジウム微生物」という。）を培養した培養液そのもの、遠心分離等により菌体を分離除去した培養液、その培養液の濃縮液、その培養液の希釈液、あるいはその培養液から水分を除いた固形物等だけでなく、これらを脱塩等してβ−グルカン等の特定の成分の含有量を高めたものも含まれる。

本発明において用いられる上記アウレオバシジウム微生物としては、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属し、β−グルカン生産能を有する微生物であればよいが、例えば、アウレオバシジウムプルランスＭ―１（Aureobasidium pullulans M-1、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター受託番号ＦＥＲＭＢＰ−０８６１５）や、アウレオバシジウムプルランスＭ―２（Aureobasidium pullulans M-2、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター受託番号FERM BP-10014）が好適に用いられる。なお、これらの菌株が産生するβ−グルカンは、NMR測定（１３ＣＮＭＲ：Ｖａｒｉａｎ社ＵＮＩＴＹＩＮＯＶＡ５００型、１ＨＮＭＲ：Ｖａｒｉａｎ社ＵＮＩＴＹＩＮＯＶＡ６００型）による構造解析で、グルコースがβ−１，３結合した主鎖からβ−１，６結合でグルコースが分岐した構造を有するβ−１，３−１，６−グルカンであることが明らかとなっている。

上記アウレオバシジウム微生物の培養は、公知の方法（特開昭５７−１４９３０１号公報等参照）に準じて行うことができる。すなわち、炭素源（ショ糖）０．５〜５．０質量％、Ｎ源０．１〜５．０質量％、その他微量物質（例えば、ビタミン類、無機質）を加えた培地（ｐＨ５．２〜６．０）に菌を接種し、温度２０〜３０℃で２〜１４日間通気培養、好ましくは通気撹拌培養すればよい。β−グルカンが生成されるにしたがって培養液の粘度が上昇し、粘性の高いジェル状になる。このようにして得られる培養液には、通常、０．６〜１０質量％の固形分が含まれており、該固形分中にはβ−グルカンが５〜８０質量％含まれている。

本発明においては、上記の培養によって得られるβ−グルカンを含む培養物を加熱又は加圧加熱殺菌して用いることが好ましい。また、遠心分離等により菌体を分離除去した後殺菌して用いてもよい。また、必要に応じて濃縮したもの、あるいは乾燥したものを用いることもできる。更に、β?グルカンに富む成分を抽出したものや、それを脱塩、精製したものを用いることもできる。なお、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養物は、増粘安定剤等の食品添加物として使用されているものであり安全性が高い。

本発明の免疫アジュバントは、免疫原性物質による免疫の効果を高めるために該免疫原性物質とともに投与されるように用いられる。すなわち、病原性細菌やウイルスの感染を予防し、又はその重篤化を予防、治療することを目的として、ワクチンによる免疫を発現させるときに、その効果を高めるために用いることができる。例えば、インフルエンザウイルスワクチンなどが挙げられる。あるいは、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ウシ、サルなどの動物に抗血清を産生させることを目的として、所定抗原による免疫を発現させるときに、その効果を高めるために用いることができる。

本発明の適用形態としては、ワクチンや所定抗原などの免疫原性物質をヒト又は動物に接種してこれによる免疫を発現させる際、本発明の免疫アジュバントを併用投与することにより、その免疫の効果を高めることができる。投与経路に特に制限はなく、公知の製剤形態を適宜選択して、経口投与、筋肉内投与、鼻腔内投与などに適応することが可能である。

本発明の免疫アジュバントは、免疫原性物質との混合物の形態としたうえで併用投与することが好ましい。これによれば、免疫の効果を高めるための免疫原性物質との相乗作用がより期待できる。

本発明の免疫アジュバントの投与量や、免疫原性物質の使用量に対する使用量は、免疫原性物質のちがい、被投与者又は動物の健康状態、症状、年齢や、投与方法・投与回数・投与時期などによって、適宜決定することができる。一般的な投与量を例示すれば、例えば、経口的に摂取する場合には、アウレオバシジウム由来培養組成物の固形分換算にして０．０２５〜４０００ｍｇ/ｋｇ（体重）の量で摂取する。また、鼻腔内投与の場合には、アウレオバシジウム由来培養組成物の固形分換算にして０．０５〜５ｍｇ/ｋｇ（体重）の量で摂取する。

以下実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、これらの実施例は本発明の範囲を限定するものではない。

［試験例１］
アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養液を用いて、その免疫アジュバントとしての有効性を調べた。具体的にはインフルエンザウイルスワクチンで免疫するときの免疫アジュバントとしての有効性を調べた。

アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養液としては、アウレオバシジウムプルランスＭ−２（Aureobasidium pullulans M-2）(ＦＥＲＭＢＰ−１００１４)を培養し、その培養液を１２１℃１５分間殺菌して調製された培養液であって、β−グルカン含有量が０．６５ｇ／１００ｇのものを用いた。以下、これを「アウレオ培養液」という。

マウスに感染させるインフルエンザウイルスとしてはＨ１Ｎ１亜型インフルエンザウイルスA/PR/8を使用した。また、それに対するワクチンとしては、常法に従い、ウイルス粒子をジエチルエーテルで処理してそのエーテル相に抽出することにより調製した、不活化ＨＡワクチン（Ａ／ＰＲ８ｓｐｌｉｔｖａｃｃｉｎｅ、総たんぱく量２．１ｍｇ／ｍｌ）を使用した。

実験動物としては、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６ＮＪｃｌ系統、雄、６週齢）を準備し、１週間順化飼育を行った後、下記表１に記載のとおり、（１）アウレオ培養液とワクチンを経鼻投与する試験群１、（２）ワクチンのみを経鼻投与する試験群２、（３）ＰＢＳを経鼻投与する試験群３、（４）アウレオ培養液を経口投与しワクチンを経鼻投与する試験群４、の計４群に分けた。

マウスへのワクチンの経鼻投与（試験群３ではＰＢＳの投与）は次のようにして行った。すなわち、イソフルランを充満させた容器にマウスを入れ、呼吸がゆっくりになるのを確認してから取り出し、マウスの鼻腔内にマイクロピペットで５μlを接種した。その際、試験群１ではアウレオ培養液をワクチンと混合して接種した。その後、麻酔から醒めたのを確認して飼育ゲージに戻した。また、試験群４では、１回目のワクチン経鼻投与と同じ日にアウレオ培養液の経口投与を開始し、ゾンデ法により１日１回２００μLを試験期間中連続して経口投与した。

ワクチンでの免疫は、順化飼育後のマウスに第１回目を行い、４日間隔で第２回目を行い、計２回行った。最終免疫から４日後にインフルエンザウイルスを感染させた。マウスへのインフルエンザウイルスの感染は次のようにして行った。すなわち、ウイルス力価が５×１０^５ｐｆｕ／ｍｌになるようにＰＢＳにて段階希釈して希釈ウイルス液を調製し、その２μl（１０００ｐｆｕ／匹）を上記と同様にして麻酔下のマウスの鼻腔内に接種した。

ウイルスの感染後３日目にマウスから鼻腔洗浄液と血清を回収し、ＥＬＩＳＡ法にて、不活化インフルエンザウイルスに反応性を有する鼻腔洗浄液中のＩｇＡ抗体価と、血清中のＩｇＧ抗体価、及びＩｇＭ抗体価をそれぞれ測定した。

なお、ＥＬＩＳＡ法による抗体価測定に用いた不活化インフルエンザウイルスの調製は次のようにして行った。すなわち、ＭＤＣＫ細胞を宿主として培養し、インフルエンザウイルスを増やし、その培養液から超遠心によってウイルスを濃縮した。これをＰＢＳに懸濁して浮遊させ、Ｄｉｓｒｕｐｔｉｏｎｂｕｆｆｅｒ(０．１％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ／ＰＢＳ)を１０倍量加えて不活化させた。不活化ウイルスはＰＢＳで希釈し、ウイルス濃度５μｇ/ｍＬとした。

また、ＥＬＩＳＡ法による抗体価測定は次のようにして行った。すなわち、上記のウイルス濃度に調整した不活化インフルエンザウイルスを５０μＬ／ｗｅｌｌずつ９６ｗｅｌｌプレートに加え、４℃で一晩静置してウイルスの固層化を行った。ウェルからウイルス溶液を捨てた後、３％スキムミルク/ＰＢＳ−Ｔでブロッキングした。その後、マウスから回収した鼻腔洗浄液又は血清を段階希釈したものを、それぞれウェルに加え、更に、二次抗体を加えて反応させた。なお、二次抗体としては、ＩｇＡ抗体価についてＡｎｔｉ−ＭｏｕｓｅＩｇＡＨＲＰ、ＩｇＧ抗体価についてＡｎｔｉ−ＭｏｕｓｅＩｇＧＨＲＰ、ＩｇＭ抗体価についてＡｎｔｉ−ＭｏｕｓｅＩｇＭＨＲＰをそれぞれ使用した。常法に従い、ＴＭＢ試薬で発色させ２ＮＨ₂ＳＯ₄で反応を止めて、４５０ｎｍの吸光度を測定した。そして、ＥＬＩＳＡに供した試料の希釈倍率に応じて得られた吸光度の値をプロットし、それぞれの抗体価を比較した。

その結果を、図１〜図１２に示す。なお、そのうち図１、図５、図９は、鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価、血清中ＩｇＧ抗体価、血清中ＩｇＭ抗体価について、それぞれ各試験群の固体別の結果の平均をまとめて示す図表である。また、そのうち図２、図６、図１０は、鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価、血清中ＩｇＧ抗体価、血清中ＩｇＭ抗体価について、それぞれ試験群１と試験群２の固体別の結果を比較した図表である。また、そのうち図３、図７、図１１は、鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価、血清中ＩｇＧ抗体価、血清中ＩｇＭ抗体価について、それぞれ試験群２と試験群４の固体別の結果を比較した図表である。また、そのうち図４、図８、図１２は、鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価、血清中ＩｇＧ抗体価、血清中ＩｇＭ抗体価について、それぞれ試験群２と試験群３の固体別の結果を比較した図表である。

その結果、図４に見られるように、鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について、ワクチンを接種した試験群２とＰＢＳを接種した試験群３とにほとんど差が認められなかった。また、図８及び図１２に見られるように、血清中ＩｇＧ抗体価及びＩｇＭ抗体価についても、同様に、ワクチンを接種した試験群２において有意な抗体価の上昇が認められなかった。したがって、本試験例では、ワクチン接種の効果は比較的限定的であった。これは、本試験例では、ワクチン接種の期間が短かったためであると考えられた。

これに対して、図２，３に見られるように、鼻腔洗浄液中ＩｇＡ抗体価について、ワクチンのみを接種した試験群２よりも、アウレオ培養液をワクチンに混合して経鼻投与した試験群１や、ワクチンの経鼻投与とともにアウレオ培養液を経口投与した試験群４のほうが、抗体価が高くなった。したがって、アウレオ培養液が、インフルエンザウイルスに対する鼻腔局所の免疫を高める免疫アジュバントとして機能することが明らかとなった。

同様に、図６，７に血清中ＩｇＧ抗体価について、図１０，１１に血清中ＩｇＭ抗体価について、それぞれに見られるように、ワクチンのみを接種した試験群２よりも、アウレオ培養液をワクチンに混合して経鼻投与した試験群１や、ワクチンの経鼻投与とともにアウレオ培養液を経口投与した試験群４のほうが、抗体価が高くなった。したがって、アウレオ培養液が、インフルエンザウイルスに対する全身性免疫を高める免疫アジュバントとして機能することが明らかとなった。

以上から、アウレオ培養液が、インフルエンザウイルスワクチンで免疫するときの免疫アジュバントとして有効であることが明らかとなった。

［試験例２］
上記試験例１では、アウレオ培養液が免疫アジュバントとして有効であることが明らかとなった。そこで、インフルエンザウイルスに対する経鼻粘膜投与型ワクチンの免疫アジュバントとして知られる、ＴＬＲ３（Toll-Like Receptor 3）のリガンドである合成二本鎖RNA Poly(I:C)（Amersham Biosciences社製）と、酵母細胞壁分画であるザイモサン（Zymosan）（Sigma-Aldrich社製）とを用いて、免疫アジュバントとしての有効性を更に検討した。

アウレオ培養液、インフルエンザウイルス、ワクチン、及びマウスは、上記試験例１と同様とした。また、アウレオバシジウムプルランスＭ−２（Aureobasidium pullulans M-2）(ＦＥＲＭＢＰ−１００１４)を培養し、その培養物を乾燥して、β−グルカン含有量が０．３９ｇ／１００ｇの粉末を調製した。以下、これを「アウレオ粉末」という。

実験動物として、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６ＮＪｃｌ系統、雄、６週齢）を準備し、２週間順化飼育を行った後、下記表２に記載のとおり、（５）アウレオ培養液とワクチンを経鼻投与する試験群５、（６）アウレオ粉末とワクチンを経鼻投与する試験群６、（７）アウレオ培養液とPoly(I:C)とワクチンを経鼻投与する試験群７、（８）ザイモサン（Zymosan）とPoly(I:C)とワクチンを経鼻投与する試験群８、（９）Poly(I:C)とワクチンを経鼻投与する試験群９、（１０）ワクチンのみを経鼻投与する試験群１０、（１１）ＰＢＳを経鼻投与する試験群１１、（１２）アウレオ培養液を経口投与しワクチンを経鼻投与する試験群１２、の計８群に分けた。

マウスへの経鼻投与は、上記試験例１と同様にして、麻酔下、マウスの鼻腔内にマイクロピペットで５μlのＰＢＳ中に調整した上記試験物質を接種した。また、試験群１２では、１回目のワクチン経鼻投与の１週間前からアウレオ培養液の経口投与を開始し、ゾンデ法により１日１回２００μLを試験期間中連続して経口投与した。

ワクチンでの免疫は、順化飼育後のマウスに第１回目を行い、３週間間隔で第２回目を行い、計２回行った。最終免疫から２週間後にインフルエンザウイルスを感染させた。マウスへのインフルエンザウイルスの感染は次のようにして行った。すなわち、ウイルス力価が１×１０^５ｐｆｕ／ｍｌになるようにＰＢＳにて段階希釈して希釈ウイルス液を調製し、その２μl（２００ｐｆｕ／匹）を上記と同様にして麻酔下のマウスの鼻腔内に接種した。

ウイルスの感染後３日目にマウスから鼻腔洗浄液と血清を回収し、上記試験例１と同様にして、ＥＬＩＳＡ法にて、不活化インフルエンザウイルスに反応性を有する血清中のＩｇＧ抗体価、及びＩｇＭ抗体価と、鼻腔洗浄液中のＩｇＡ抗体価をそれぞれ測定した。

その結果を、図１３〜図１５に示す。なお、図１５には、１〜８倍希釈のときの鼻腔洗浄液中のＩｇＡ抗体価を示す。

図１３に見られるように、血清中ＩｇＧ抗体価について、ワクチンのみを接種した試験群１０や、アウレオ培養液を経口投与しワクチンを経鼻投与した試験群１２よりも、アウレオ培養液をワクチンに混合して経鼻投与した試験群５や、アウレオ粉末をワクチンに混合して経鼻投与した試験群６や、Poly(I:C)をワクチンに混合して経鼻投与した試験群９のほうが、抗体価が高くなった。しかしながらその効果は限定的であった。これは、本試験例では、インフルエンザウイルスの感染量が試験例１に比べて５分の１（２００ｐｆｕ／匹）と少なかったためであると考えられた。一方、アウレオ培養液とPoly(I:C)を併用した試験群７では、インフルエンザウイルスに対する経鼻粘膜投与型ワクチンの免疫アジュバントとしてその有効性が認められているザイモサン（Zymosan）とPoly(I:C)とを併用した試験群８と同程度の効果が得られた。

同様に、図１５に見られるように、鼻腔洗浄液中のＩｇＡ抗体価について、アウレオ培養液とPoly(I:C)を併用した試験群７では、インフルエンザウイルスに対する経鼻粘膜投与型ワクチンの免疫アジュバントとしてその有効性が認められているザイモサン（Zymosan）とPoly(I:C)とを併用した試験群８に匹敵する効果が得られた。したがって、アウレオ培養液が、インフルエンザウイルスに対する免疫を高める免疫アジュバントとして、高い有効性を有することが明らかとなった。

一方、図１４に見られるように、血清中ＩｇＭ抗体価については、試験群間における差が顕著ではなかった。上述したように、本試験例では、インフルエンザウイルスの感染量が試験例１に比べて５分の１（２００ｐｆｕ／匹）と少なかったためであると考えられた。

［試験例３］
免疫原性物質としてサイログロブリン（Ｔｇ）を使用しときの抗体価の向上に、アウレオ培養液が寄与するかを調べた。

実験動物としては、ＢＡＬＢ／ｃマウス(６週齢、雌)を準備し、１週間順化飼育を行った後、（i）通常の抗原免疫のみを行うコントロール群、（ii）抗原免疫に加えてアウレオ培養液を２００μL投与する群、（iii）同４００μL投与する群、の計３群(各８匹)に分けた。アウレオ培養液又は乳酸菌飲料を、ゾンデ法で同投与量を試験期間中１日１回連続して経口投与した。

抗原免疫は、常法により甲状腺組織から精製純化したサイログロブリン（Ｔｇ）を用い、フロイント完全アジュバント（和光純薬工業株式会社）と１：９の割合でエマルジョンを作成後、マウスに腹腔内投与(８０μg/匹)することにより行った。免疫は試験開始０、２、４、６週目にそれぞれ実施した。

抗体価測定のため、投与開始日及び免疫後３、５、７週目に採血を行い、上記サイログロブリン（Ｔｇ）を用いた自家製ＥＬＩＳＡによって抗Ｔｇ抗体（ＩｇＧ）の抗体価を測定した。ＥＬＩＳＡ法による抗体価測定は、常法に従い、酵素標識したＩｇＧ二次抗体を用いて、マウス血清を１０００倍〜１万倍に段階希釈し、その定量性のある範囲での吸光度を測定した。

その結果、免疫7週目において、（i）ｃｏｎｔｒｏｌ群が０．７８１±０．２２６、（ii）アウレオ培養液２００μL群が１．３４１±０．３０４、（iii）アウレオ培養液４００μL群が１．３１４±０．３２２の吸光度を示し、ｃｏｎｔｒｏ１群に比べてアウレオ培養液の２００μL又は４００μLの投与で、それぞれ有意(P≦０．０５)に抗体価の上昇が認めた。

以上から、免疫原性物質としてサイログロブリン（Ｔｇ）を使用したときにも、アウレオ培養液の投与により、抗体価が上昇することが明らかとなった。

Claims

免疫原性物質による免疫力強化を目的として該免疫原性物質とともに経鼻投与する免疫アジュバントであり、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する微生物の培養物から得られる培養組成物を有効成分として含有することを特徴とする経鼻用免疫アジュバント。
前記免疫原性物質はワクチンの形態であり該ワクチンは、インフルエンザウイルスワクチンである請求項１記載の経鼻用免疫アジュバント。
更にPoly(I:C)を併用して経鼻投与する形態に適用する、請求項２記載の経鼻用免疫アジュバント。
前記培養組成物は、前記微生物を培養した培養液又はこれを乾燥して粉末化したものである請求項１〜３のいずれか１項に記載の経鼻用免疫アジュバント。