JP5328155B2 - Adam−9モジュレータ - Google Patents
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Description
診断でのその公知の使用に加えて、抗体は治療剤として使用されることが示されている。たとえば癌を処置するための免疫療法、または治療目的の抗体の使用が近年使用されている。受動免疫療法は、癌処置でのモノクローナル抗体の使用を含む。たとえば非特許文献1を参照。これらの抗体は、腫瘍細胞成長または生存の直接阻害と、体の免疫系の自然細胞殺活性を補充するその能力との両方による、固有の治療生物活性を有することができる。これらの作用物質は、単独で、または放射線および化学療法剤と併せて投与できる。それぞれ非ホジキンリンパ腫および乳癌の処置のために承認されたリツキシマブおよびトラスツズマブは、そのような治療剤の2つの例である。あるいは抗体は、抗体が毒性剤に連結されている抗体接合体を作製するために使用でき、腫瘍へ特異的に結合することによってその薬剤を腫瘍に向かわされる。ゲムツズマブオゾガマイシンは、白血病の処置に使用される承認抗体接合体の例である。癌細胞に結合して、診断および治療への潜在的用途を有するモノクローナル抗体は、公報に開示されている。たとえば特に、標的タンパク質の一部の分子量を開示する次の特許出願:特許文献1(200kD c−erbB−2(Her2)/and other unknown antigens 40〜200KD in size)および特許文献2(50kD and 55kD oncofetal protein)を参照。臨床試験でのおよび/または固形腫瘍の処置のために承認された抗体の例は:トラスツズマブ(抗原:180kD、HER2/neu)、エドレコロマブ(抗原:40〜50kD、Ep−CAM)、抗ヒト乳脂肪球(HMFG1)(抗原>200kD、HMWムチン)、セツキシマブ(抗原:150kDおよび170kD、EGFレセプタ)、アレムツズマブ(抗原:21〜28kD、CD52)、およびリツキシマブ(抗原:35kD、CD20)を含む。
本明細書で開示する本発明は、本明細書で示すような既知のポリペプチドADAM−9(本明細書ではKID24とも呼ばれる)が各種の原発性および転移性ヒト癌の両方に存在するという発見と、抗KID24抗体をそのような癌を処置するために使用できるという発見に関する。本発明は、KID24アンタゴニスト、モジュレータ、各種のヒト癌で発現される、KID24に結合するモノクローナル抗体を提供する。
本発明は、これに限定されるわけではないが、膵臓、結腸、肺、および前立腺癌を含む、各種の組織タイプの癌性細胞で発現される抗原、ADAM−9(KID24)を提供する。さらに本発明は、KID24に結合するモノクローナル抗体およびポリペプチドならびにこれに限定されるわけではないが、KID24の発現および/または過剰発現に関連するヒト癌を含む各種の疾患を診断および処置するために、これらの抗体およびポリペプチドを作製および使用する方法を提供する。
I.一般技法
本発明の常法は、別途指摘しない限り、当分野の範囲内である分子生物学(組換え技法を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学および免疫学の従来技法を採用するであろう。そのような技法は、文献、たとえばMolecular Cloning:A Laboratory Manual,second edition(Sambrook et al.,1989)Cold Spring Harbor Press;Oligonucleotide Synthesis(M.J.Gait,ed.,1984);Methods in Molecular Biology,Humana Press;Cell Biology:A Laboratory Notebook(J.E.Cellis,ed.,1998)Academic Press;Animal Cell Culture(R.I.Freshney,ed.,1987);Introduction to Cell and Tissue Culture(J.P.Mather and P.E.Roberts,1998)Plenum Press;Cell and Tissue Culture:Laboratory Procedures(A.Doyle,J.B.Griffiths,and D.G.Newell,eds.,1993−8)J.Wiley and Sons;Methods in Enzymology(Academic Press,Inc.);Handbook of Experimental Immunology(D.M.Weir and CC.Blackwell,eds.);Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells(J.M.Miller and M.P.Calos,eds.,1987);Current Protocols in Molecular Biology(F.M. Ausubel et al.,eds.,1987);PCR:The Polymerase Chain Reaction,(Mullis et al.,eds.,1994);Current Protocols in Immunology(J.E. Coligan et al.,eds.,1991);Short Protocols in Molecular Biology(Wiley and Sons,1999);Immnunobiology(C.A.Janeway and P.Travers,1997);Antibodies(P.Finch,1997);Antibodies:a practical approach(D.Catty.,ed.,IRL Press,1988−1989);Monoclonal antibodies: a practical approach(P.Shepherd and C. Dean,eds.,Oxford University Press,2000);Using antibodies:a laboratory manual(E.Harlow and D.Lane(Cold Spring Harbor Laboratory Press,1999);The Antibodies(M.Zanetti and J.D.Capra,eds.,Harwood Academic Publishers,1995);and Cancer:Principles and Practice of Oncology(V.T.DeVita et al,eds.,J.B.Lippincott Company,1993)に十分に述べられている。
II.定義
「KID24」は、本発明の抗体がそれに対して作られる分子量約75kDaの新規なポリペプチド抗原(還元条件下)を指す。KID24抗原は、抗KID24抗体によって結合され、膵臓および癌の複数のタイプに存在する細胞表面タンパク質である。この抗原は1つを超える異なるエピトープを有することができ、本発明の一部の実施形態は、2つ以上のKID24抗原特異性エピトープの2つ以上のうちの1つに対して作られるKID24モジュレータを含む。KID24は、その正常組織対応物と比較して、ある癌細胞で過剰発現できると現在考えられている。
III.抗体およびポリペプチドを作製する方法
モノクローナル抗体を作製する方法は、当分野で既知である。利用される1つの方法は、Kohler and Milstein,Nature 256:495−497 (1975)の方法またはその改良である。通例、モノクローナル抗体は非ヒト種、たとえばマウスから開発される。概してマウスまたはラットは免疫化に使用されるが、他の動物も使用できる。抗体は、ヒトKID24を含有する細胞、細胞抽出物、またはタンパク質調製物の免疫原性量によってマウスを免疫化することによって産生される。免疫原は、これに限定されるわけではないが、一次細胞、培養細胞系、癌性細胞、核酸、または組織でありうる。1つの実施形態において、ヒト胎児腎臓上皮細胞が使用される。別の実施形態において、ヒト膀胱または膵臓前駆細胞が使用される。ヒト胎児腎臓細胞を単離および培養する方法は実施例1で詳説する。免疫化に使用する細胞、たとえばヒト胎児腎臓細胞は、免疫原としてのその使用の前にある期間(少なくとも24時間)に亘って培養できる。細胞(たとえばヒト胎児腎臓細胞)は、単独で、または非変性アジュバント、たとえばRibiと組合せて免疫原として使用できる。概して免疫原として使用するときに、無傷で維持され、好ましくは生存可能であるべきである。無傷の細胞は破裂細胞よりも免疫化動物によって抗原を良好に検出させることができる。変性または刺激の強いアジュバント、たとえばフロイトアジュバントの使用はヒト胎児腎臓または他の細胞を破裂させることがあり、したがって阻止される。免疫原は定期間隔で、たとえば隔週、または毎週、複数回投与できるか、または動物において(たとえば組織組換えにおいて)生存能を維持するような方法で投与できる。実施例2は、抗KID24抗体を産生させるために使用する方法について述べており、KID24に結合する他のモノクローナル抗体を産生させるために使用される。
IV.ポリペプチドおよびモノクローナル抗体をスクリーニングする方法
KID24に結合するポリペプチドおよびモノクローナル抗体をスクリーニングするために複数の方法を使用できる。「結合」が生物的または免疫学的に関連する結合、すなわち免疫グロブリン分子がコードされる、またはポリペプチドが作製される独自の抗原に対して特異性である結合を指すことが理解される。それは免疫グロブリンが非特異性標的に対して非常に高い濃度で使用されるときに発生する非特異性結合は指さない。1つの実施形態において、モノクローナル抗体はKID24への結合について標準スクリーニング技法を使用してスクリーニングされる。この方式では、抗KID24モノクローナル抗体を得た。ブダペスト条約に従って、抗KID24モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、2003年5月2日にAmerican Type Culture Collection(ATCC)10801 University Blvd.、マナッサス、バージニア州20110−2209へ、Patent Deposit Designation PTA# 5174で寄託されている。
V.抗KID24抗体を性質決定する方法
抗KID24抗体を性質決定する複数の方法を使用できる。1つの方法を、それが結合するエピトープを同定することである。エピトープマッピングは、各種の販売元、たとえばPepscan Systems(Edelhertweg 15,8219 PH Lelystad,オランダ)から販売されている。エピトープマッピングを使用して抗KID24抗体が結合する配列を決定できる。エピトープは、直鎖エピトープ、すなわちひと続きのアミノ酸に含有されるか、または必ずしも一続きのアミノ酸に含有されなくてもよい、アミノ酸の三次元相互作用によって形成された配座エピトープである。可変長のペプチド(たとえば少なくとも4〜6アミノ酸長)を単離または合成(たとえば組換えにより)して、抗KID24抗体による結合アッセイに使用できる。抗KID24抗体が結合するエピトープは、細胞外配列に由来する重複ペプチドを使用して、抗KID24抗体による結合を決定することによる体系的スクリーニングで決定できる。
VI.抗KID24抗体およびKID24モジュレータを使用して癌を診断する方法
本明細書で開示した方法によって作製したKID24に対するモノクローナル抗体は、これに限定されるわけではないが、卵巣、乳房、肺、前立腺、結腸、腎臓、膵臓、皮膚、甲状腺、脳、心臓、肝臓、胃、神経、血管、骨、および上部消化管を含む各種の組織における癌性細胞の存在または非存在を同定するために診断の目的で使用できる。本明細書で開示した方法によって作製したKID24に対するモノクローナル抗体は、固形腫瘍からのその放出後に血液中を循環している癌性細胞の存在または非存在を、あるいはそのレベルを同定するためにも使用できる。そのような循環抗原は、無傷のKID24抗原、または本明細書で教示した方法に従って検出できる能力を保持するその断片でありうる。そのような検出は、当分野で一般的な標準方法を使用してFACS解析によって実施される。
VII.本発明の組成物
本発明は、抗KID24抗体、抗KID24抗体に由来するポリペプチド、抗KID24抗体をコードする配列を含むポリヌクレオチド、および本明細書で述べる他の薬剤から成る製薬組成物を含む組成物も含む。本明細書で使用するように、組成物はさらに1つ以上の抗体、KID24に結合するポリペプチドおよび/またはタンパク質、KID24アゴニスト、アンタゴニスト、モジュレータ、および/またはKID24に結合する1つ以上の抗体、ポリペプチドおよびタンパク質をコードする配列を含む1つ以上のポリヌクレオチドを含む。
VIII.治療目的のKID24モジュレータおよび抗KID24抗体の使用方法
KID24に対するモノクローナル抗体は、癌または他の疾患を持つ個体にて治療目的で使用できる。抗KID24抗体による療法は、上述のように試験管内および生体内の両方で複合体の形成を含むことができる。1つの実施形態において、モノクローナル抗体抗KID24は、癌性細胞に結合して、その増殖を低減することができる。生理学的(たとえば生体内)条件での結合を促進する濃度で投与されることが理解される。別の実施形態において、KID24に対するモノクローナル抗体は、各種の組織、たとえば膵臓、結腸、肺または前立腺の癌性細胞および他のタイプの癌、たとえば肉腫に向けられた免疫療法で使用できる。別の実施形態において、モノクローナル抗体抗KID24は単独で癌性細胞に結合して、癌細胞での細胞分裂を低減することができる。別の実施形態において、モノクローナル抗体抗KID24は癌性細胞に結合して、転移の発生を遅延させることができる。なお別の実施形態において、癌を持つ個体に抗KID24抗体を用いた緩和処置が与えられる。癌個体の緩和処置は、癌の進行に直接影響を及ぼすことなく、疾患の不利な症状、または疾患に与えた他の処置から発生する医原性症状を処置または弱めることを含む。これは疼痛の軽減、栄養補助、性的問題、心理的苦悩、うつ、疲労、精神障害、吐き気、嘔吐などの処置を含む。
免疫原としてのヒト腎臓細胞の調製
在胎期間10〜18週のヒト胎児腎臓をカリフォルニア州アラメダ群のAdvanced Biosciences Researchから入手した。腎臓を調達し、氷水中の組織培地に入れて実験室に出荷した。到着時ただちに腎臓を洗浄培地(ペニシリン/ストレプトマイシンおよびゲンタマイシンを含有する冷PBS)に移した。外膜を鉗子で除去して、腎臓を70%エタノールで短時間洗浄し、次に洗浄培地で2回すすいだ。腎臓を100mmの乾いた培養皿で外科用ハサミによって1mmの立方体に刻んだ。組織片を本明細書ではI/3Fと呼ばれる定義された無血清培地10mlにプレーティングした。この培地はU.S.Provisional Application No.60/504,674に述べられており、その開示は参照により本明細書に組み入れられている。各種の一般的に使用される細胞培地が本発明の常法で使用できるが、現在好ましい実施形態は無血清フルクトースベース細胞培地を使用する。
モノクローナル抗体の産生
非変性アジュバント(Ribi、R730、Corixa、ハミルトン、モンタナ州)をリン酸緩衝生理食塩水で2mlまで再懸濁させて、次にこの再水和アジュバント100μlを免疫化に使用される実施例1からの細胞ペレットの一部と静かに混合した。マウス1匹に付きヒト胎児腎臓細胞約106をBalb/cマウスの足蹠に、週にほぼ1回または2回注射した。正確な免疫化スケジュールは次の通りである:第0日、Ribiを加えて免疫化。第3日、Ribiを加えて免疫化。第7日、Ribiを加えて免疫化。第24日、Ribiを除いて免疫化。第29日、Ribiを除いて免疫化。第32日、Ribiを除いて免疫化。第36日、Ribiを除いて免疫化。第44日、Ribiを除いて免疫化。第51日、Ribiを除いて免疫化。第69日、力価試験のために採血。第71日、Ribiを加えて免疫化。第74日、Ribiを加えて免疫化。第81日、Ribiを加えて免疫化。第91日、融合前ブースト(Ribiなし)。第104日、融合のために結節を収集。
μ−抗KID24を含む抗KID24抗体の精製
ヒト胎児腎臓細胞を組織培養フラスコから10.0mM EDTAの存在下で分離して、1400rpmで5分間遠心分離し、1% BSAおよび2mM EDTA(FACS希釈剤)を含有するPBSで再懸濁させた。細胞をカウントして、107細胞/mlに調整した。細胞約0.1mlをFACS希釈剤100μlで37℃にて30分間インキュベートした。ヒト胎児腎臓細胞に結合したモノクローナル抗体をタンパク質Gアフィニティクロマトグラフィーを使用して組織培養上澄みから精製した。所望ならば、組織培養上澄みを最初にウシIgGカラムに通過させて、上澄み中の過剰なウシIgGを除去した。次の物質は抗体精製プロセスに使用した:ハイブリドーマ組織培養上澄み、Immunopure(G)IgG結合緩衝液(Pierce #21011 ロックフォード、イリノイ州)、Immunopure IgG溶離緩衝液(Pierce #21009)、濃HCl(pH調整用)、Corning 1リットルPES(ポリエーテルスルホン)、0.22μmフィルタ(Corning #431098、Corning、ニューヨーク州)、Amersham Pharmacia AKTA Explorer System(Amersham Biosciences、ピスカタウェイ、ニュージャージー州)、タンパク質Gセファロース 4 Fast Flow(Amersham Biosciences #17−0618−03)、3Mチオシアン酸カリウム/50mM Tris pH7.8より成るストリッピング緩衝液、およびPBS(リン酸緩衝生理食塩水)、3M Tris pH9.0.
本明細書でμ−抗KID24と呼ばれるマウス抗ヒトKID24抗体を精製するために、上澄みの体積を測定して、等体積の結合緩衝液を上澄みに添加した。混合物を室温まで平衡にさせた。上澄みを0.22μmフィルタへの通過により浄化した。AKTA Explorer system(Amersham Biosciences)を使用して上澄みをタンパク質Gセファロースカラムへ注入して、次に5〜10カラム体積の結合緩衝液で洗浄した。モノクローナル抗体を溶離緩衝液で溶離させて、画分を収集した。溶離時に3M Tris、pH9.0の添加により画分を中和して、チューブを空にした(画分の1/60体積)。モノクローナル抗体を含有するピーク画分をプールした。プールしたサンプルを予め湿らせたslidealyzerカセット(10,000MWカットオフ;Pierce #66810)に注入して、4℃の1xPBS中で透析した(緩衝液を3回交換して、交換ごとに少なくとも4時間の透析)。精製したモノクローナル抗体を滅菌濾過して(0.2μm Acrodisc)、2〜8℃で貯蔵した。
癌細胞系A498におけるKID24発現の免疫沈降解析
腎臓癌細胞系A498を175cm2培養皿でコンフルエンシーまで培養した。細胞をPBSですすいで、次に溶解緩衝液(HBSSに加えて2% Triton X−100、2mM PMSF、0.1%アジ化ナトリウム、および溶解緩衝液5ml当り、無EDTA完全ミニプロテアーゼカクテルの錠剤1個(Roche Molecular Biochemicals))中へ掻き落として、溶解物を収集した。溶解物を14,000xgで4℃にて1時間遠心分離した。次に澄んだ溶解物を、ヒトIgG接合(1mg/ml)CNBr 4MBセファロースビーズ(Amersham Pharmacia)5μlによって4℃にて2時間予備除去した。ヒトIgGビーズを遠心分離および除去して、次に予備除去した溶解物を次いでCNBr 4MBセファロースビーズに接合したモノクローナル抗体μ−抗KID24(1mg/mlにて接合)によって4℃にて2時間インキュベートした。2時間のインキュベーションの後、μ−抗KID24ビーズを遠心分離および除去した。ヒトIgGおよびμ−抗KID24ビーズの両方を溶解緩衝液1mlによって個別に3回洗浄して、次に1ml HBSS+で3回洗浄した。洗浄したビーズをSDS−PAGEサンプル緩衝液30μlの添加および99℃で5分間の沸騰によって溶離させた。
(MS/MS)を使用するμ−抗KID24が結合する抗原の性質決定
μ−抗KID24が結合する抗原を単離して、Kane et al.,J Bio Chem.2002 June 21;277(25):22115−8の方法に従ってタンデム質量分析を受けさせる。タンパク質をSDS−PAGEによって分離して、ゲルをコロイド状クマシーブルー試薬(Invitrogen)で染色した。興味のあるタンパク質をゲル中でトリプシンによって消化した。Wu et al., Nature 405:477−82(2000)に述べられているように、トリプシンペプチドをイオントラップ質量分析計(Thermo−Finnigan LCDQ DECA XP)でマイクロキャピラリー液体クロマトグラフィーMS/MSによって配列決定した。あるいは質量分析法の他の一般的に既知の方法、たとえばMALDI質量分析法も本発明の常法で使用できる。
免疫組織化学方法
癌患者による凍結組織サンプルをOCT化合物に埋め込んで、ドライアイスを含むイソペンタン中で高速凍結した。凍結切片をLeica 3050 CM mictrotomeを用いて、厚さ8〜10μmに切断して、SuperFrost Plusスライド(VWR #48311−703)で解凍マウントした。切片を75%アセトン/25%エタノールを用いて10℃にて固定して、室温にて2〜4時間空気乾燥させた。固定切片を−80℃にて使用まで貯蔵した。
免疫組織化学の結果
モノクローナル抗体μ−抗KID24を使用して、異なる組織タイプからの各種の細胞系との反応性を試験した。結果は、弱い陽性染色では「+」、中程度の陽性染色では「++」、強い陽性染色では「+++」、陰性染色では「−」として評価した。
μ−抗KID24は固定化ヒトADAM−9に結合する
μ−抗KID24のさらなる性質決定は、標準ELISA手順および精製ヒトADAM−9を使用して実施した。簡潔には、精製ヒトADAM−9を96ウェルプレートに飽和濃度でコーティングした。μ−抗KID24の用量曲線が結合されて(0〜150ng/ウェル)、標準ELISAプロトコルを使用してADAM−9に結合したμ−抗KID24抗体を描出した。結果は、μ−抗KID24が精製ヒトADAM−9に用量反応性方式で結合することを示した。これらの結果は、μ−抗KID24が抗ADAM−9特異的バンドを免疫沈降できることを示した以前のウェスタンブロット結果(上の実施例4を参照)と一致する。
μ−抗KID24は、試験管内でADAM−9酵素活性を遮断することができる
試験管内酵素活性アッセイは、組換えヒトADAM−9細胞外ドメイン(ECD)およびμ−抗KID24抗体を使用して実施した。ADAM−9 ECDは、試験管内で亜鉛の存在下でペプチド基質(R&D Systems #E S003)を開裂させることができる。いったん開裂すると、ペプチドは、励起波長320nm(および発光波長405nm)で蛍光プレートリーダーを使用して検出できる蛍光発生シグナルを発生する。試験管内酵素アッセイは、製造者のプロトコルに従って実施した。簡潔には、200ng/rxnのrhADAM−9 ECD(R&D Systems #939−AD−020)を25mM Tris、2.5μm ZnCl2、および0.005% Brij 35にpH9.0にて添加した。μ−抗KID24の各種濃度を添加して、この反応物を軽く撹拌しながら室温にて5分間インキュベートした。最終体積を100μl/ウェルとするために、蛍光発生ペプチド基質(R&D Systems #ES003)10μmを添加した。反応物を37℃にて一晩インキュベートした。次にプレートを蛍光プレートリーダーでO.D.405nmにて読み取った。ADAM−9 ECMを含まない対照条件(酵素なし)は蛍光を示さず、このことは基質が開裂した場合にのみ蛍光発生性であるために予想された。μ−抗KID24を用いない正の対照条件は、最大蛍光を示した。μ−抗KID24は、用量依存方式でADAM−9 ECM活性を遮断することができた。これらの結果は、μ−抗KID24がADAM−9酵素活性を試験管内で遮断できることを示した。
μ−抗KID24は、結腸腫瘍細胞系HCT116、SW620およびHT29による軟寒天コロニー形成を阻害できる
μ−抗KID24の試験管内効果は、3つ結腸腫瘍細胞系HCT116、SW620およびHT29で試験した。当分野で公知の軟寒天コロニー形成に関する標準プロトコルを使用した。最終濃度1μg/mlのμ−抗KID24は、HCT116細胞の軟寒天コロニー形成を対照と比較して約60%阻害することができた。同様の結果は、SW620細胞(対照と比較して14%阻害)およびHT29細胞(対照と比較して22%阻害)で見られた。
μ−抗KID24および毒素接合抗マウスIgGの内部移行
Mab−ZAP(Advanced Targeting Systems、サンディエゴ、カリフォルニア州)は、タンパク質合成を阻害する毒素であるサポリンに接合した抗マウスIgGである。この毒素は、細胞膜に不浸透性である。モノクローナル抗体が内部移行可能な細胞表面抗原に結合した場合、毒素接合体は結合モノクローナルに結合して、内部移行し、最終的に細胞を死滅させることができる。毒性活性の証明のための内部移行に依存して、Mab−ZAPは、所与の表面抗原が細胞毒性効果を発現するために内部移行に依存するいずれかの毒素のための適切な標識として作用するかどうかを評価するように作用できる。そのようなものとしてMab−ZAPは、そのような内部移行依存性毒素、たとえばメイタンシノイドおよびカリケアマイシンのモデルとして作用する。
ヒト腫瘍の皮下側腹部モデルでのμ−抗KID24抗体の抗腫瘍有効性
本試験は、D54細胞(グリオーマ細胞系)より成るヒト腫瘍を使用する皮下側腹部モデルでの抗KID24抗体の用量反応性抗腫瘍活性を試験するために設計された。
腎臓下カプセル腫瘍モデル内のμ−抗KID24抗体の抗腫瘍および抗転移有効性
本試験は、メルケル細胞癌(皮膚の神経内分泌癌)から培養したメルケル細胞を使用する腎臓下カプセル腫瘍モデルでの抗KID24抗体の用量反応性抗腫瘍活性を試験するために設計された。
Claims (20)
- ATCC番号PTA−5174を有する宿主細胞またはその子孫により産生される単離された抗体、またはATCC番号PTA−5174を有する細胞系によって産生される抗体の結合特異性を保持している、その抗原結合断片。
- KID24に特異的に結合し、ATCC番号PTA−5174を有する細胞系によって産生される抗体の軽鎖由来の3つの相補性決定領域および重鎖由来の3つの相補性決定領域を含み、次の特徴:
a.癌細胞上のKID24に結合する能力;
b.試験管内または生体内で生癌性細胞の表面に露出されているKID24の部分に結
合する能力;
c.治療剤または検出可能なマーカーを、KID24を発現する癌細胞へ送達する能力;
d.治療剤または検出可能なマーカーを、KID24を発現する癌細胞内へ送達する能力;
の少なくとも1つ以上を有する、単離された抗体またはその抗原結合断片。 - 前記癌細胞が、乳癌、結腸癌、結腸直腸癌、腎臓癌、肺臓癌、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌及び胃癌由来の癌細胞から成る群より選択される、請求項2に記載の単離された抗体または抗原結合断片。
- 前記単離された抗体は、ヒト化抗体である、請求項1に記載の単離された抗体。
- 前記単離された抗体は、ATTC番号PTA−5174を有する細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域および軽鎖可変領域に由来する、重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含むキメラ抗体である、請求項1に記載の単離された抗体。
- 前記キメラ抗体は、ヒト抗体由来の重鎖定常領域および軽鎖定常領域を含む、請求項5に記載の単離された抗体。
- 前記単離された抗体は、治療剤に連結されている、請求項1に記載の単離された抗体。
- 前記抗原結合断片は、Fab、Fab’、F(ab’)2およびFvからなる群より選択され;該抗原結合断片は、ATCC番号PTA−5174を有する細胞系によって産生される抗体の結合特異性を保持している、請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体の抗原結合断片。
- a.請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片を産生する細胞系を増殖させるステップと;
b.該発現された抗体または断片を収集するステップと;
を含む、抗体またはその抗原結合断片を産生する方法。 - 前記単離された抗体はモノクローナル抗体である、請求項9に記載の方法。
- 請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片の治療的有効量を製薬的に許容される担体と共に含む、製薬組成物。
- ATCC番号PTA−5174を有する細胞系より成る単離細胞系、またはその子孫。
- 化学療法剤を癌細胞に送達するための組成物であって、該化学療法剤と結合した請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片を含み、該癌細胞が、乳癌、結腸癌、結腸直腸癌、腎臓癌、肺臓癌、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌及び胃癌由来の癌細胞から成る群より選択される、組成物。
- 前記抗KID24抗体は、請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片である、請求項13に記載の組成物。
- 前記組成物は、個体に投与されることを特徴とする、請求項13または14に記載の組成物。
- 個体における癌細胞の増殖を阻害するための組成物であって、請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片の有効量を含み、該癌細胞が、乳癌、結腸癌、結腸直腸癌、腎臓癌、肺臓癌、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌及び胃癌由来の癌細胞から成る群より選択される、組成物。
- 前記抗体または抗原結合断片は、化学療法剤と結合されている、請求項16に記載の組成物。
- 前記化学療法剤が前記癌細胞内に送達されることを特徴とする、請求項17に記載の組成物。
- 個体から得られたサンプル中における癌細胞の存在または非存在を検出する方法であって、該個体から得られたサンプル中の細胞に請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片を接触させるステップと、該細胞由来のKID24および該抗体の複合体を検出するステップとを含み、該癌細胞が、乳癌、結腸癌、結腸直腸癌、腎臓癌、肺臓癌、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌及び胃癌由来の癌細胞から成る群より選択される、方法。
- 前記抗KID24抗体は、請求項1〜7のいずれか1項に記載の単離された抗体または請求項1〜3及び8のいずれか1項に記載の抗原結合断片である、請求項19に記載の方法。
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