JP5410708B2 - 新属シャーペア(Sharpea)属に属する微生物および微生物製剤並びに経口組成物 - Google Patents
新属シャーペア(Sharpea)属に属する微生物および微生物製剤並びに経口組成物 Download PDFInfo
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Description
(1)細菌の形態:桿菌
(2)運動性:無
(3)胞子形成:無
(4)グラム染色性:陽性
(5)カタラーゼ反応:陰性
(6)酸素に対する態度:絶対嫌気性
(7)G+C含量:36〜38mol%
(a)形態的性質
(1)細菌の形:桿菌
(2)細菌の大きさ: 0.7〜1×2〜10μm
(3)運動性:無
(4)胞子:無
(1)ABCMブイヨン寒天培地での培養:
37℃、24時間培養により、直径1〜2.5mm程度のやや不規則な円形状
で扁平状に隆起し、周縁は波状、表面は円滑で、露滴状の構造であって、褐色で
透明、硬度は脂状のコロニーを生じる。
(2)ABCMブイヨン液体培地での培養:
37℃、15〜24時間培養によって懸濁する。
(C)生理学的性質
(1)グラム染色性:陽性
(2)カタラーゼ反応:陰性
(3)酸素に対する態度:絶対嫌気性
(4)乳酸発酵:ヘテロ型
(5)グルコースから産生される乳酸の旋光性:D型
(6)グルコースからのガス発生:あり
(7)生育の範囲
温度 15℃ なし
45℃ あり
(8)耐塩性 3%耐塩性
(9)糖類からの酸生成の有無
API 50 CH System (BioMereux社製)を用いた。
(+酸生成あり、+/−酸生成わずかにあり、−酸生成なし)
D−アラビノース −
リボース −
D−キシロース −
ガラクトース +
グルコース +
フラクトース +
マンノース +
ラムノース −
マンニトール −
ソルビトール −
サリシン −
セロビオース +
ラクトース +
メリビオース +
トレハロース −
メレジトース −
ラフィノース −
デンプン +
グルコン酸 −
(1)G+C含量
Mesbahらの方法(Mesbah M., Premachandran U. and Whitman W.E., Precise measurment of the G+C content of deoxyribonucleic acid by high−performance liquid chromatography, Int. J. Syst. Bacteriol.,39,159−167(1989)によって測定した。
G+C含量:37.4mol%
(2)細胞壁のアミノ酸組成
アミノ酸組成:アスパラギン酸、グルタミン酸、グリシン、アラニン、メソジ
アミノピメリン酸
ペプチドグリカンタイプ:A1γ、(L−Ala)−D−Glu−m−Dpm
(16S rRNA遺伝子の塩基配列決定)
コロニーPCRにより、16S rRNA遺伝子領域を増幅し、ABI PRISM 3100DNA Sequencer(Applied Biosystem社製)により全16S rRNA遺伝子塩基配列を決定した。以下の27F、75R、520F、520R、930F、800R、1100F、1100Rのプライマーを用いた。
27F:5’−AGAGTTTGATCCTGGCTCAG−3’
75R:5’−CCCGGGATCCAAGCTTACGGTTACCTTGTTAC
GACTT−3’
520F:5’−CAGGAGTGCCAGCAGCCGCGG−3’
520R:5’−ACCGCGGCTGCTGGC−3’
930F:5’−GCACAAGCGGTGGAGCATGTGG−3’
800R:5’−CAGGACTACCAGGGTATCTAAT−3’
1100F:5’−CAGGAGCAACGAGCGCAACCC−3’
1100R:5’−AGGGTTGCGCTCGTTG−3’
このST18株の16S rRNA遺伝子の塩基配列について、BLASTサーチ(日本DNAデータバンク)により既知の菌種との相同性検索を行った。この結果、一般的に相同性が97%未満であれば別種であるとされるが、最も近縁のL. catenaformis JCM 1143T(アクセッションナンバー:M23729)との相同性は89.9%であった。配列表の塩基配列1に対し相同性97%以上であれば、本発明の微生物に含まれる。
さらに解析ソフトCLUSTAL Wにより系統樹を作成した。図2は、クロストリジウムクラスターXV〜XIXに属する既知の種とST18株との関係を示した系統樹の図である。図中の分岐点に示された数値は、ブートストラップ信頼値であり、括弧内の記号はアクセッションナンバーである。
DNA−DNAハイブリダイゼーションは、Ezakiらの蛍光検出によるマイクロプレート法(Int. J. Syst. Bacteriol.,39,224−229(1989))により行った。3株の近縁菌種の基準株(L. vitulinus JCM 1121T、L. catenaformis JCM 1143T、C. mitsuokai JCM 0609T)を、ST18株と比較するのに使用した。
C. mitsuokai JCM 0609T:15.6%
L. vitulinus JCM 1121T:14.3%
L. catenaformis JCM 1143T:0.7%
+:陽性、−:陰性、w:弱陽性、NT:試験せず
(1)細菌の形態:桿菌
(2)運動性:無
(3)胞子形成:無
(4)グラム染色性:陽性
(5)カタラーゼ反応:陰性
(6)酸素に対する態度:絶対嫌気性
(7)G+C含量:36〜38mol%
シャーペア・アザブエンシスST18株の培養:
ABCMブイヨン培地(栄研化学社製)5Lをフラスコに入れ、pHを7.2に調整しオートクレーブで、115℃、15分間の滅菌を行った。このABCMブイヨン培地に、予め、BL寒天培地(栄研化学社製)で48時間培養したコロニーを釣菌し、ABCMブイヨン培地で24時間のプレ培養したシャーペア・アザブエンシスST18株培養液を0.2容量%接種し、37℃、24時間静置培養した。この培養液を3000×gで遠心分離し集菌して湿重量約4g/5Lの菌体ペレットを得た。
シャーペア・アザブエンシスST18株含有微生物製剤の調製:
実施例1により得られた菌体ペレットを生理食塩水で洗浄した。その菌体ペレット
4g(湿重量)を滅菌10%スキムミルク46mlに懸濁し、凍結乾燥処理をして凍結乾燥粉末を得た。この凍結乾燥粉末に5質量倍のスキムミルク粉末を加えて均一に混合して本発明の微生物製剤を得た。この微生物製剤は、シャーペア・アザブエンシスST18株を4.5×1010cfu/g含有するものであった。
シャーペア・アザブエンシスST18株の消化管付着性試験1:
実施例1で得られた菌体ペレット4g(湿重量)を、あらかじめ滅菌しておいた10%スキムミルク溶液46mlに懸濁し−85℃で急冷した。融解試験を行ったところ、1×1010cfu/mlの生菌数が認められた。この懸濁液1mlを10mlの滅菌10%スキムミルク溶液に再懸濁して試料とした。2頭の1歳牝馬および1頭の1歳牡馬に対し、この試料11mlを5日間連日、シリンジで経口投与した(試験区)。対照区には、2頭の1歳牝馬および1頭の1歳牡馬に対し、11mlの滅菌10%スキムミルクを5日間連続で経口投与した。投与前と最終投与日から10日後にそれぞれの馬の糞便中におけるシャーペア・アザブエンシスST18株の菌数測定を行った。菌数は各試験区の平均値とした。その結果を表2に示す。
シャーペア・アザブエンシスST18株の下痢症・疝痛予防効果:
試験例1において、それぞれの馬について試料投与開始から30日間糞便の状態を観察し、各試験区について軟便が確認された延べ日数を調べた。対照区では、延べ8日間の軟便が確認されたのに対し、試験区では、軟便は認められなかった。また、対照区では、延べ5日間の疝痛の徴候が確認されたのに対し、試験区では疝痛の徴候はみられなかった。したがって、シャーペア・アザブエンシスST18株が有する馬への下痢症・疝痛予防効果が認められた。
シャーペア・アザブエンシスST18株の消化管付着性試験2:
実施例2により得られた微生物製剤を試料として用いた。2頭の1歳牝馬および1頭の1歳牡馬に対し、この試料1.5gを飼葉0.5kgの上に置いて投与する方法により5日間連続投与した(試験区)。完食を確認後、飼葉を自由摂取させた。試験例6とは別の個体を用いた。対照区には、2頭の1歳牝馬および1頭の1歳牡馬に対し、5日間、飼葉を自由摂取させた。投与前と最終投与日から10日後にそれぞれの馬の糞便中におけるシャーペア・アザブエンシスST18株の菌数測定を行った。菌数は各試験区の平均値とした。その結果を表3に示す。
シャーペア・アザブエンシスST18株の馬のストレス軽減効果:
哺乳動物のストレス度合いは、血清中のアルブミンにおけるフリーSH基保有率を指標とした。馬のストレスが高くなるとアルブミン中のフリーSH基が酸化されこの割合が低下すると考えられる。測定方法は、Fabsiakらの方法に準じた(Fabsiak J.P., Sedelov A. and Kagon V.E., Quantification of oxdative/nitrosative modification of CYS34 in human serum albmin using a fluorescence−based SDS−PAGE assay, Antioxidants and Redox Signal,5,855−865(2002))。
このサンプルについてSDS−PAGE電気泳動を行った。電気泳動後のゲルのバンドをトランスイルミネーター(フナコシ社製)で写真を撮り、強度を数値化した。続いてCBBRにて染色し写真撮影後、アルブミンとしてのタンパク量もNIH−Imageで求めた。この蛍光強度を、standard BSAの蛍光強度に換算した血清量/通常(Bradford)の蛋白定量から、血清アルブミン中のフリーSH基保有率を求めた。通常(Bradford)の蛋白量は、Protein Assay Kit(Bio−Rad製)で求めた。対照として、試験例1および3において、ST18株を投与しなかった馬のうち3頭について同様に試験した(ST18株無投与群)。結果を図3に示す。
シャーペア・アザブエンシスST18株のラットに対する拘束ストレス軽減効果:
ラットに拘束ストレスを負荷し、血中コルチコステロンの濃度を測定することによりストレス軽減効果を評価した。金属製の拘束装置を用い、ラットを8時間(午前0時〜午前8時)拘束した。拘束の前後で尾静脈からの採血を行いコルチコステロンの血中濃度を測定した。コルチコステロン量の測定は、ACTIVE Rat Corticosterone EIA kit(DSL社、10−81100)を用いてイムノアッセイ法で測定した。試験群には、10の8乗レベルとなる量の実施例1および3で得られたシャーペア・アザブエンシスST18株を5日間連続で経口投与した(n=6)。微生物を与えない群をコントロールとした。5日目に拘束ストレスをかけ、前日の血中コルチコステロン濃度と拘束ストレス負荷後の血中コルチコステロン濃度を求めた。結果を図4に示す。
シャーペア・アザブエンシスST18株のラットに対する強制水泳ストレス軽
減効果:
直径20cm、高さ50cmのプラスチック製の円筒に27℃の水を40cmまで入れ、ラットを15分間の強制的に水泳をさせ、強制水泳前後で尾静脈から採血し血中コルチコステロン量を測定した。試験群には、10の8乗レベルとなる量の実施例1および3で得られたシャーペア・アザブエンシスST18株を5日間連続で経口投与した(n=6)。微生物を与えない群をコントロールとした。5日目に強制水泳させ、前日の血中コルチコステロン濃度と強制水泳ストレス負荷後の血中コルチコステロン濃度を求めた。結果を図5に示す。
馬腸内フローラにおけるシャーペア・アザブエンシスST18株の分布(1)
国内各地の生産牧場および厩舎における0(当歳)〜33歳までの様々な年齢の牡7頭、牝9頭の糞便を採取し、PCR−DGGE法によりシャーペア・アザブエンシスST18株を保有しているか調べた。その結果、ST18株は16頭中14頭から検出されたことから、生産牧場や厩舎には関係なく、健常な馬の腸内フローラに普遍的に存在している微生物であると考えられる。したがって、本発明のシャーペア属微生物は馬に投与しても安全性の高いものである。
馬腸内フローラにおけるシャーペア・アザブエンシスST18株の分布(2)
下記表5に示した健常なサラブレッド12頭(A〜L)の新鮮な糞便について、変性剤濃度勾配ゲル電気泳動(PCR−DGGE)法により、シャーペア・アザブエンシスの分布を調べた。これらのサラブレッドは、糞便の採取1ヶ月以内に、生菌剤は使用していない。Walterら(Walter J., Hertel C., Tannock G.W., Lis C.M., Munro K. and Hammes W.P., Detection of Lactobacillus, Pediococcus, Leuconostoc, and Weissella species in human feces by using group−specific PCR primers and denaturing gradient gel electrophoresis, Appl. Environ. Microbiol.,67,2578−2585(2001))の文献に基づくPCR条件と、大腸菌の16S rRNA配列のNo.341−534領域で340bpを増幅させる下記のプライマーLac1とLac2GCを用いた。
5′−AGCAGTAGGGAATCTTCCA−3′
<reverse primer Lac2GC>
5′−CGCCCGGGGCGCGCCCCGGGCGGCCCGGGGGCAC
CGGGGGATTYCACCGCTACACATG−3′
ダイハイドロダイゼインおよびエクオール産生:
990mlの蒸留水にABCMブイヨン培地(栄研)46gを溶解し、オートクレーヴで121℃、15分間の滅菌を行なった。室温にもどしたABCMブイヨン培地に、フィルター滅菌した10ml水溶液のダイゼインを200μlになるように添加した。ST18を予めABCMブイヨン培地で培養し、その培養液0.2%を接種して、スチールウール法にて嫌気し、37℃で36時間培養した。
その培養液について、Wangらの方法(Wang X.L., Hur H.G., Lee J.H. and Kim S.I., Enantioselective synthesis of S−equol from dihydrodaidzein by a newly isolated anaerobic human intestinal bacterium, Appl. Environ. Microbiol., 71, 214−219(2005))に基づくHPLC法により、ダイゼイン、ダイハイドロダイゼインおよびエクオールを定量した。標品として用いたダイゼインはLC Laboratoriesから、ダイハイドロダイゼインはTronto Research Chemicalsから、エクオールはLC Laboratoriesからそれぞれ購入した。HPLCのクロマトグラムを図7に示す。
Claims (19)
- 配列表の配列番号1に示す16S rRNA遺伝子の塩基配列を相同性97%以上で含み、ストレス軽減作用を有する下記菌学的性質を示すシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)。
(1)細菌の形態:桿菌
(2)運動性:無
(3)胞子形成:無
(4)グラム染色性:陽性
(5)カタラーゼ反応:陰性
(6)酸素に対する態度:絶対嫌気性
(7)G+C含量:36〜38mol% - 下記の化学分類学的性質を有するものである請求項1記載のシャーペア・アザブエンシ
ス(Sharpea azabuensis)。
近縁菌種の基準株であるカテニバクテリウム・ミツオカイ(Catenibacter
ium mitsuokai)JCM 0609T株、ラクトバチルス・ヴィトゥリニス
(Lactobacillus vitulinus)JCM 1121T株およびラク
トバチルス・カテナフォルミス(Lactobacillus catenaform
is)JCM 1143T株とのDNA−DNA相同性が60%未満 - シャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)ST18株(寄託番号 NITE P−300)である請求項1または2に記載のシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)。
- 請求項1ないし3の何れかの項に記載のシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)を含有することを特徴とする微生物製剤。
- 哺乳動物用である請求項4に記載の微生物製剤。
- 哺乳動物が馬である請求項5記載の微生物製剤。
- 哺乳動物の下痢および/または疝痛の予防・治療用である請求項4ないし6の何れかの項に記載の微生物製剤。
- 哺乳動物が馬である請求項7記載の微生物製剤。
- 哺乳動物の抗ストレス用である請求項4ないし6の何れかの項に記載の微生物製剤。
- 哺乳動物が馬である請求項9記載の微生物製剤。
- 非ヒト哺乳動物に請求項1ないし3の何れかの項記載のシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)を含有する微生物製剤を投与することを特徴とする非ヒト哺乳動物のストレス低減方法。
- 非ヒト哺乳動物が馬である請求項11記載のストレス低減方法。
- 請求項1ないし3の何れかの項に記載のシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)をダイゼイン含有物に作用させて得られる発酵物を含有することを特徴とする経口組成物。
- ダイゼイン含有物が、大豆、豆乳、クズ、葛根、グワーオクルアおよびザクロよりなる群から選ばれたものである請求項13記載の経口組成物。
- 飲食物である請求項13または14記載の経口組成物。
- 医薬品である請求項13または14記載の経口組成物。
- 骨粗鬆症または動脈硬化の予防・治療用である請求項16記載の経口組成物。
- 請求項1ないし3の何れかの項に記載のシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)をダイゼイン含有物に作用させることを特徴とするハイドロダイゼインおよび/またはエクオールの製造方法。
- 請求項1ないし3の何れかの項に記載のシャーペア・アザブエンシス(Sharpea azabuensis)をダイゼインおよび/またはハイドロダイゼイン含有物に作用させることを特徴とするエクオールの製造方法。
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