JP6508754B2 - 放流用サケ稚魚の感染症予防剤 - Google Patents
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Description
オレガノ油;投与量27mg/日/kg体重以下、添加濃度0.09重量%以下、
カルバクロール;投与量15.91mg/日/kg体重以下、添加濃度0.053重量%以下、
パラ−シメン;投与量4.23mg/日/kg体重以下、添加濃度0.014重量%以下、
亜麻仁油;投与量270mg/日/kg体重以上、添加濃度0.9重量%以上、
綿実油;投与量270mg/日/kg体重以上、添加濃度0.9重量%以上、
リノレン酸;投与量156.6mg/日/kg体重以上、添加濃度0.5重量%以上、
リノール酸;投与量40.5mg/日/kg体重以上、添加濃度0.1重量%以上。
オレガノ油;投与量27mg/日/kg体重未満、添加濃度0.09重量%未満、
カルバクロール;投与量15.91mg/日/kg体重未満、添加濃度0.053重量%以下、
パラ−シメン;投与量4.23mg/日/kg体重未満、添加濃度0.014重量%以下、
ガンマ−テルピネン;投与量2.85mg/日/kg体重以下、添加濃度0.010重量%未満、
亜麻仁油;投与量270mg/日/kg体重より大、添加濃度0.9重量%より大、
綿実油;投与量810mg/日/kg体重未満、添加濃度2.7重量%未満、
リノレン酸;投与量156.6mg/日/kg体重より大、添加濃度0.5重量%より大、
リノール酸;投与量40.5mg/日/kg体重より大、添加濃度0.1重量%より大。
〈カルバクロール〉
投与量;27×58.92重量%=15.9084=15.91mg/日/kg体重以下、好ましくは13.5×58.92重量%=7.95542=7.96mg/日/kg体重以下、より好ましくは5.4×58.92重量%=3.18168=3.18mg/日/kg体重以下。
添加濃度;0.09×58.92重量%=0.053028=0.053重量%以下、好ましくは0.045×58.92重量%=0.026514=0.027重量%以下、より好ましくは0.018×58.92重量%=0.0106056=0.011重量%以下。
〈パラ−シメン〉
投与量;27×15.65重量%=4.2255=4.23mg/日/kg体重以下、好ましくは13.5×15.65重量%=2.11275=2.11mg/日/kg体重以下、より好ましくは5.4×15.65重量%=0.8451=0.85mg/日/kg体重以下。
添加濃度;0.09×15.65重量%=0.014085=0.014重量%以下、好ましくは0.045×15.65重量%=0.0070425=0.007重量%以下、より好ましくは0.018×15.65重量%=0.002817=0.003重量%以下。
〈リノレン酸〉
投与量;270×58重量%=156.6=156.6mg/日/kg体重以上。
添加濃度;0.9×58重量%=0.522=0.5重量%以上。
〈リノール酸〉
投与量;270×15重量%=40.5=40.5mg/日/kg体重以上。
添加濃度;0.9×15重量%=0.135=0.1重量%以上。
〈カルバクロール〉
投与量;27×58.92重量%=15.9084=15.91mg/日/kg体重未満。
添加濃度;0.09×58.92重量%=0.053028=0.053重量%以下。
〈パラ−シメン〉
投与量;27×15.65重量%=4.2255=4.23mg/日/kg体重未満。
添加濃度;0.09×15.65重量%=0.014085=0.014重量%以下。
〈ガンマ−テルピネン〉
投与量;27×10.57重量%=2.8539=2.85mg/日/kg体重以下。
添加濃度;0.09×10.57重量%=0.009513=0.010重量%未満。
〈リノレン酸〉
投与量;270×58重量%=156.6=156.6mg/日/kg体重より大、好ましくは540×58重量%=313.2mg/日/kg体重以上。
添加濃度;0.9×58重量%=0.522=0.5重量%より大、好ましくは1.8×58重量%=1.044=1.0重量%以上。
〈リノール酸〉
投与量;270×15重量%=40.5=40.5mg/日/kg体重より大、好ましくは540×15重量%=81mg/日/kg体重以上。
添加濃度;0.9×15重量%=0.135=0.1重量%より大、好ましくは1.8×15重量%=0.27=0.2重量%以上。
以下の実施例においては、特記しない限り、以下の実験方法を用いた。
(1)稚魚の飼育
稚魚は、100尾または500尾を一群として、容積60Lのアクリル水槽に収容し、湧水系河川水(水温7.8〜8.0℃)の掛け流しで飼育した。水槽の換水率は2回/時とした。飼料は魚類用初期飼料(アルテックK−2:日清丸紅飼料株式会社)を用いた。給餌は、約3%体重/日の量を、1日3回に分けて毎日与えた。各実施例においては、いずれの群にも同一量の飼料を与えた。
飼料への添加物(ハーブ精油、食用・飼料添加用油またはそれらの含有成分)の投与量は、添加濃度と1日あたりの給餌量とから算出し、稚魚のkg体重当たりの1日の投与量(mg/日/kg体重)として表した。
トリコジナのサイズは約100μmと大きいため、トリコジナの定量は、顕微鏡観察により行った。具体的には、まず、生きたままの稚魚を0.2%トリカイン水溶液の中に10分間漬け、体表に寄生する全ての原虫を脱離させた。次に、稚魚をトリカイン水溶液から取り出し、残ったトリカイン水溶液全量をプランクトン算定盤に入れ、実体顕微鏡観察を用いて液中に存在するトリコジナの個体数を数えた。トリコジナの寄生量は、稚魚のg体重当たりのトリコジナ個体数(個体/g体重)として表した。トリコジナの寄生量を各群間で比較するにあたっては、各群毎に平均値を算出し、一元配置分散分析法および多重比較検定Tukey−Kramer法により検定を行った。
イクチオボドのサイズは10μmと小さく、顕微鏡観察による計数が不可能である。そのため、イクチオボドの定量は、イクチオボド・リボゾームRNA遺伝子のDNAコピー数を定量することにより行った。なお、イクチオボド・リボゾームRNA遺伝子のDNAコピー数と個体数の間には有意な線形性相関があることが知られている(水野ら。平成26年度日本水産学会春季大会で発表)。
40Lの人工海水を張った60Lの水槽に稚魚を投入し、エアレーションをかけながら8℃で48時間無給餌で飼育した後、稚魚の生残数を数えた。海水移行試験後の生残数は、海水移行後生残率(%)として、水槽に投入した稚魚の数に対する百分率で表した。
稚魚を200ppmフェノキシエタノールで麻酔した後、左側の一番外側の鰓弁を採取し、解析まで−80℃で凍結保存した。解析にあたっては、左側鰓サンプルをSEI緩衝液中で摩砕し、Lowry法によるタンパク質の定量を行った後、試料とした。この試料とATPを溶解したSEI緩衝液を混和し、37℃で30分間反応させた(酵素反応群)。また、同時に、Na+,K+−ATPaseの阻害剤であるウアバインを添加して、同様に反応させた(酵素反応阻害群)。続いて、これらの反応液に含有される遊離リン量を測定し、酵素反応群と酵素反応阻害群の間の遊離リン量の差を求めた。鰓Na+,K+−ATPase活性の値は、鰓のタンパク質量および1時間当たりに出る遊離リン量の差(μmol Pi/mg protein/h)として表した。
稚魚を200ppmフェノキシエタノールで麻酔した後、右側の一番外側の鰓弁を採取し、解析までRNase不活剤(RNAlater;Ambion社)中で保存した。解析にあたっては、右側鰓サンプルからISOGEN(和光純薬社)を用いてTotal RNAを抽出した後、ゲノムDNAを除去するためDNaseI処理を行い、試料とした。この試料をランダムプライマーと逆転写酵素(Superscript III;Invitrogen社)とを用いて逆転写し、cDNAを得た。得られたcDNAを鋳型とし、既知のNa+,K+−ATPase αサブユニット遺伝子の配列から設計した特異的プライマー(フォワードプライマー;5’−AGCTCTGCCACCTGGGCT−3’(配列番号3)、リバースプライマー;5’−ATTTGTTGGTGGAGTTGA−3’(配列番号4))およびリアルタイムPCR装置(7500型:アプライドバイオシステムズ社)を用いてリアルタイムPCRを行った。同一の鋳型および定量用プライマー(フォワードプライマー;5’−CCCAAGGCCAACAGAGAGAA−3’(配列番号5)、リバースプライマー;5’−GGCGGGAACGTTGAAGGT−3’(配列番号6))を用いて、内部対照遺伝子(β−actin遺伝子)の発現量の定量も行った。スタンダードには、予めcDNAクローニングにより得たサケNa+,K+−ATPase αサブユニットcDNA断片を用いた。鰓Na+,K+−ATPase αサブユニット遺伝子発現量は、内部対照遺伝子の発現量に対する比較相対値として表した。
稚魚を200ppmフェノキシエタノールで麻酔した後、尾柄部をメスで切断し、ヘパリン処理したヘマトクリット管に血液を採集した。採集した血液を4℃、2000×gで15分間遠心分離に供した後、上清(血漿)を回収した。一方、0.067Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH6.24)に0.15mg/mLとなるようMicrococcus Lysodeikticusを懸濁し、細菌懸濁液を調製した。細菌懸濁液100mLに血漿5mLを添加し、5分間、1分ごとに波長540nmで吸光度測定を行って、1分当たりの吸光度変化の平均値を算出した。血漿に代えてリゾチーム標準品(Sigma社)を用いて同様の吸光度測定を行い、リゾチーム標準品1gが1分間に変化させる吸光度変化を1Unitとした。血漿リゾチーム活性は、血漿1mL当たり1分間当たりのUnit(Unit/mL/min)として表した。
本実験方法(8)に記載の方法により、血漿を回収した。血漿からジエチルエーテルを用いてステロイドを抽出した。酵素免疫測定法によるコルチゾル測定キット(EA65;Oxford Biomedical Research社)を用いてステロイド中のコルチゾル量を測定した。血漿コルチゾル量は、血漿1mL当たりの量(ng/mL)として表した。
稚魚から肝臓を採取し、本実験方法(7)に記載の方法に準じて、肝臓サンプルからcDNAを得た。得られたcDNAを鋳型とし、既知のHSP70遺伝子の配列から設計した特異的プライマー(フォワードプライマー;5’−TTCTACACCTCCATCACC−3’(配列番号7)、リバースプライマー;5’−GTGATGGTGATCTTGTTC−3’(配列番号8))およびリアルタイムPCR装置(7500型:アプライドバイオシステムズ社)を用いてリアルタイムPCRを行った。同一の鋳型ならびに配列番号5および6の定量用プライマーを用いて、内部対照遺伝子(β−actin遺伝子)の発現量の定量も行った。スタンダードには、予めcDNAクローニングにより得たサケHSP70 cDNA断片を用いた。肝臓のHSP70遺伝子発現量は、内部対照遺伝子の発現量に対する比較相対値として表した。
麻酔剤(FA100;DSファーマアニマルヘルス社)を用いて稚魚を不動化させた。10−5MのL−セリンを流速約2.7 mL/分で約1分30秒間稚魚の鼻腔内へと滴下することにより嗅覚を刺激し、嗅覚電図(Electro−Olfactogram;EOG)を記録した。また、同様に、飼育用水を滴下してEOGを記録した。嗅覚応答の値は、飼育用水に対するEOG応答強度/10−5MのL−セリンに対するEOG応答強度の比較相対値として表した。
(1)ハーブ精油の種類と添加濃度の検討
[1−1]事前投与
稚魚(平均体重0.31g、n=30)を500尾ずつ13群に分け、第1〜13群とした。各群に、表1に示す添加濃度および投与量となるよう、ハーブ精油(ハッカ油、ユーカリ油およびオレガノ油)を添加した飼料を給餌しながら、平成26年1月22日〜2月14日まで約3週間飼育した。2月14日に、各群の稚魚に寄生する原虫を観察または検出したところ、寄生は全く認められなかった。
続いて、各水槽に一辺10cm角のバスケットかごを上部から吊す形で設置して、かごの中に、イクチオボド(平均寄生数 0.17amol/g体重、n=30)およびトリコジナ(平均寄生数107個体/g体重, n=30)のいずれもが寄生している稚魚を50尾ずつ(平均体重 0.50g、n=30)収容して飼育することにより、感染試験を行った。感染試験は2月15日から4週間行った。感染試験中の飼料は、表1と同様のものを用いた。感染試験修了後(3月15日)に各群から稚魚をランダムに7尾ずつ採集し、実験方法(3)および(4)に記載の方法によりトリコジナおよびイクチオボドを定量した。また、3月15日までに各群で斃死した稚魚の累積尾数(累積斃死尾数)を数えた。1月22日から3月15日までの各群への総給餌量は580gだった。トリコジナの定量結果を図1に、イクチオボドの定量結果を図2に、稚魚の累積斃死尾数を図3にそれぞれ示す。
[2−1]含有成分の解析
イクチオボドおよびトリコジナの寄生の予防効果が認められたオレガノ油を、下記の条件で、ガスクロマトグラフィー質量分析法(GC/MS)に供した。得られたマススペクトルの主要ピークについて、香料ライブラリーで検索して含有成分の同定を行った。また、得られたトータルイオンクロマトグラムの面積百分率により、各含有成分の含有割合を求めた。その結果を図4に示す。
GC/MS装置;GCMS−QP2010SE
カラム;Rtx−5ms(長さ30m、内径0.25mm、膜厚0.25μm)
サンプル注入量;0.5μL
気化室;温度250℃、スプリット比50:1
ガスの種類;ヘリウム
ガス圧;37.1kPa(線速度32.4cm/秒)
カラム温度;50℃から3℃/分で昇温し、300℃で5分保持した。
イオン源温度;200℃
インターフェイス温度;250℃
測定;40〜400m/zまでスキャンモードにて測定
具体的には、まず、原虫が全く寄生していない稚魚(平均体重1.80g、n=30)を、100尾ずつ6群に分け、第1〜6群とした。各群に、表2に示す添加濃度および投与量となるよう、オレガノ油、カルバクロール(試薬特級;和光純薬工業社)、パラ−シメン(試薬特級;和光純薬工業社)、ガンマ−テルピネン(試薬特級;和光純薬工業社)およびシネオール(試薬特級;和光純薬工業社)を添加した飼料を給餌しながら、平成26年3月21日〜4月4日まで2週間飼育した。なお、飼料における各オレガノ油含有成分の添加濃度および投与量は、オレガノ油の添加濃度を0.018重量%とした場合に相当する。
続いて、本実施例1(1)[1−2]に記載の方法により、4月5日から5月2日までの4週間、感染試験を行った。感染試験中の飼料は、表2と同様のものを用いた。なお、感染試験開始時には、各群の稚魚に原虫が全く寄生していないことを予め確認した。感染試験開始から14日目(4月18日)および28日目(5月2日)に、各群から稚魚をランダムに10尾採集し、実験方法(3)および(4)に記載の方法によりトリコジナおよびイクチオボドを定量した。また、各群ごとに、5月2日までの稚魚の累積斃死尾数を数えた。3月21日から5月2日までの各群の総給餌量は160gだった。トリコジナの定量結果を図5に、イクチオボドの定量結果を図6に、稚魚の累積斃死尾数を図7にそれぞれ示す。
(1)食用・飼料添加用油の種類と添加濃度の検討
[1−1]事前投与
稚魚(平均体重0.31g、n=30)を500尾ずつ10群に分け、第1〜10群とした。各群に、表3に示す添加濃度および投与量となるよう、食用油(綿実油および亜麻仁油)および飼料添加物フィードオイル(魚油)を添加した飼料を給餌しながら、平成26年1月22日〜2月14日まで約3週間飼育した。2月14日に、各群の稚魚に寄生する原虫を観察または検出したところ、寄生は全く認められなかった。
続いて、実施例1(1)[1−2]に記載の方法により感染試験を行った。ただし、感染試験中の飼料は、表3と同様のものを用いた。トリコジナの定量結果を図8に、イクチオボドの定量結果を図9に、稚魚の累積斃死尾数を図10にそれぞれ示す。
[2−1]含有成分の解析
イクチオボドおよびトリコジナの寄生の予防効果が認められた亜麻仁油の脂肪酸組成を図11に示す(関東化学株式会社試薬事業本部試薬技術部より提供)。図11に示すように、亜麻仁油には、リノレン酸が58重量%、リノール酸が15重量%含まれることが明らかになった。そこで、リノール酸およびリノレン酸について、イクチオボドおよびトリコジナの寄生の予防効果を検討した。
具体的には、まず、稚魚(平均体重0.31g、n=30)を500尾ずつ4群に分け、第1〜4群とした。各群に、表4に示す添加濃度および投与量となるよう、リノール酸(試薬特級;和光純薬工業社)およびリノレン酸(試薬特級;和光純薬工業社)を添加した飼料を給餌しながら、平成26年1月22日〜2月14日まで約3週間飼育した。2月14日に、各群の稚魚に寄生する原虫を観察または検出したところ、寄生は全く認められなかった。
続いて、実施例1(1)[1−2]に記載の方法により感染試験を行った。ただし、感染試験中の飼料は、表4と同様のものを用いた。その結果を図12に示す。
(1)事前投与
原虫が全く寄生していない稚魚(平均体重1.80g、n=30)を、100尾ずつ12群に分け、第1〜12群とした。この12群を4群ずつのグループに分け、グループ1〜3とした。グループ2および3の各群には、感染試験の前に、オレガノ油および亜麻仁油を添加した飼料を給餌しながらの飼育(以下、「事前投与の飼育」という。)を行った。オレガノ油および亜麻仁油の飼料への添加濃度および投与量は表5のとおりとした。事前投与の飼育は、グループ2は7日間(平成26年3月21日〜3月28日まで)、グループ3は14日間(平成26年3月21日〜4月4日まで)行った。グループ1は、事前投与の飼育を行わなかった。
続いて、グループ1〜3のそれぞれについて、実施例1(1)[1−2]に記載の方法により4週間の感染試験を行った。ただし、感染試験中の飼料は、表5と同様のものを用いた。なお、各グループの感染試験開始時には、稚魚に原虫が全く寄生していないことを予め確認した。感染試験開始から14日目に、各群から10尾の稚魚をサンプリングし、実験方法(3)および(4)に記載の方法によりトリコジナおよびイクチオボドを定量した。また、感染試験開始から28日目に、稚魚の累積斃死尾数を求めた。各グループに飼育期間(事前投与の飼育と感染試験中の飼育を合わせた期間)中給餌した総給餌量は、グループ1で120g、グループ2で140g、グループ3で160gだった。トリコジナの定量結果を図13に、イクチオボドの定量結果を図14に、稚魚の累積斃死尾数を図15にそれぞれ示す。
(1)非感染魚での比較
原虫が全く寄生していない稚魚(平均体重1.80g、n=30) を、100尾ずつ4群に分け、第1〜4群とした。各群に、表5のグループ1の第1〜4群と同様にオレガノ油および亜麻仁油を添加した飼料を給餌しながら、平成26年3月21日〜5月2日まで6週間飼育した。その後、各群の稚魚の体重を測定し、実験方法(5)〜(11)に記載の方法により、海水移行試験(各群につき30尾)、鰓Na+,K+−ATPase活性の解析、Na+,K+−ATPase αサブユニット遺伝子発現量の解析、血漿リゾチーム活性の解析、血漿コルチゾル量の解析、HSP70遺伝子発現量の解析および嗅覚応答の電気生理学的解析に供した。その結果を図16に示す。なお、この飼育期間終了後、各群の稚魚に寄生する原虫を観察または検出したところ、寄生は全く認められなかった。また、全群について斃死は1尾もなかった。
実施例3(2)の感染試験修了時に、グループ3の各群から稚魚をランダムに採集し、体重を測定し、実験方法(5)〜(9)に記載の方法により、海水移行試験(各群につき30尾)、Na+,K+−ATPase活性の解析、Na+,K+−ATPase αサブユニット遺伝子発現量の解析、血漿リゾチーム活性の解析および血漿コルチゾル量の解析に供した。その結果を図17に示す。
Claims (6)
- カルバクロールおよび/またはリノレン酸を含有する、放流用サケ稚魚のイクチオボド症を予防する感染症予防剤。
- カルバクロールおよび/またはリノレン酸を含有する、放流用サケ稚魚のトリコジナ症を予防する感染症予防剤。
- 前記カルバクロールおよび/またはリノレン酸が下記の投与量または添加濃度で飼料に添加して用いられる、請求項1に記載の感染症予防剤;
カルバクロール;投与量15.91mg/日/kg体重以下、添加濃度0.053重量%以下、
リノレン酸;投与量156.6mg/日/kg体重以上、添加濃度0.5重量%以上。 - 前記カルバクロールおよび/またはリノレン酸が下記の投与量または添加濃度で飼料に添加して用いられる、請求項2に記載の感染症予防剤;
カルバクロール;投与量15.91mg/日/kg体重未満、添加濃度0.053重量%以下、
リノレン酸;投与量156.6mg/日/kg体重より大、添加濃度0.5重量%より大。 - 請求項1から4のいずれかに記載の感染症予防剤を放流用サケ稚魚に投与する工程を有する、放流用サケ稚魚の感染症を予防する方法。
- トリコジナ症およびイクチオボド症に感染していない放流用サケ稚魚に前記感染症予防剤を7日間以上投与する工程を有する、請求項5に記載の方法。
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