JP6842410B2 - 新規の高効率ライブラリーにより同定されるaavベクター - Google Patents
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Description
本願は、2014年10月3日に出願された米国仮特許出願USSN 62/059,769、表題「NOVEL HIGH EFFICIENCY LIBRARY-IDENTIFIED AAV VECTORS」の35 U.S.C.§119(e)下の利益を主張し、該仮出願の全内容は、本明細書において参考として援用される。
連邦政府により支援された研究
本発明は、NIH/NINDSにより付与されたRO1 NS066310下における政府の支援によりなされた。政府は、本発明において特定の権利を有する。
分野
いくつかの側面において、本開示は、新規のAAVカプシド配列およびその使用の方法ならびに関連するキットを提供する。
効果的な遺伝子導入は、特定の疾患(例えば神経疾患)のための新たな治療の開発のために重要である。AAVベクターは、in vivoでの遺伝子導入のための有効なプラットフォームとして登場した。しかし、遺伝子送達のための新たなベクターに対する必要性は存在し続けている。
いくつかの態様において、バーコード配列は、キメラAAVカプシドタンパク質をコードする核酸配列の非翻訳領域(UTR)(例えば、5’または3’UTR)中に挿入された、ヌクレオチドの単一の連続した区画を含み、それにより、バーコード配列の検出によるカプシドタンパク質の同定を可能にする。
いくつかの態様において、各々のユニークなバーコード配列は、約10ヌクレオチド〜約50ヌクレオチドの長さを有する。いくつかの態様において、各々のユニークなバーコード配列は、約20〜約40ヌクレオチドの長さを有する。いくつかの態様において、各々のユニークなバーコード配列は、30ヌクレオチドの長さを有する。
いくつかの態様において、本開示は、本明細書において開示される方法により同定されるカプシドを含むrAAVに関する。いくつかの態様において、rAAVは、対象のCNS組織または別の組織を選択的にターゲティングする。いくつかの態様において、rAAVはさらに、導入遺伝子(例えば、タンパク質をコードする遺伝子または機能的RNAをコードする遺伝子)を含む。
いくつかの態様において、キメラAAVカプシドをコードする核酸ライブラリーを作製する方法が提供される。いくつかの態様において、方法は、AAVカプシドをコードする核酸をシャッフリングして、キメラAAVカプシドをコードする核酸のセットを得ることを含む。いくつかの態様において、セットの各々の核酸は、少なくとも3種の異なるAAV血清型の別個のポリペプチド領域を有する、ユニークなキメラAAVカプシドタンパク質をコードする。いくつかの態様において、方法はさらに、各々のキメラAAVカプシドをコードする核酸を、制約つきのランダム化されたバーコード核酸のセットからのユニークなバーコード核酸でタグ付けすることを含む。
いくつかの側面において、本明細書において提供されるのは、それらを特定の遺伝子治療および研究用途のために有用とする望ましい組織ターゲティングおよび形質導入特性を有する、組み換えAAVである。いくつかの態様において、本開示は、多様な標的組織に形質導入するために有用なキメラAAVカプシドに関する。本開示は、いくつかの側面において、バーコード付けされたキメラAAVカプシドライブラリーから同定された新規のAAVカプシドタンパク質を提供する。本明細書において用いられる場合、用語「ライブラリー」とは、主体、例えばウイルス粒子(例えばrAAV)、分子(例えば核酸)などの集合を指す。ライブラリーは、少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも10、少なくとも25、少なくとも50、少なくとも102、少なくとも103、少なくとも104、少なくとも105、少なくとも106、少なくとも107、少なくとも108、少なくとも109、またはそれより多くの異なる主体(例えばウイルス粒子、分子(例えば核酸))を含んでもよい。いくつかの態様において、ライブラリーの主体(例えばウイルス粒子、核酸)は、当該主体の回収または同定を促進することができるタグ(例えばバーコード)に結合しているかまたはこれに連結していてもよい。例えば、いくつかの態様において、本明細書において提供されるライブラリーは、バーコード付けされた核酸の集合を含む。いくつかの態様において、ライブラリーは、増殖可能(例えばクローンの増幅のプロセスを通して)な核酸の集合を指す。ライブラリーの主体は、別々に、または混合物として、保存、維持または含めることができる。
いくつかの態様において、バーコード配列は、キメラAAVカプシドタンパク質をコードする核酸配列の3’非翻訳領域(UTR)中に挿入された単一の連続したヌクレオチドの区画を含み、それによりバーコード配列の検出によるカプシドタンパク質の同定を可能にする。
いくつかの態様において、各々のユニークなバーコード配列は、約10ヌクレオチド〜約50ヌクレオチドの長さを有する。いくつかの態様において、各々のユニークなバーコード配列は、約20〜約40ヌクレオチドの長さを有する。いくつかの態様において、各々のユニークなバーコード配列は、30ヌクレオチドの長さを有する。
別の側面において、本開示は、キメラAAVカプシドをコードする核酸ライブラリーを作製する方法に関する。いくつかの態様において、キメラAAVカプシドをコードする核酸ライブラリーを作製する方法は、(i)キメラAAVカプシドをコードする核酸のセットを調製すること;(ii)ユニークなバーコード核酸の数が、キメラAAVカプシドをコードする核酸の数より大きくなるように、制約つきのランダム化されたバーコード核酸のセットを調製すること;ならびに(iii)各々のキメラAAVカプシドをコードする核酸を(ii)において調製されたセットのユニークなバーコード核酸と組み合わせることを含む。
哺乳動物、特に非ヒト霊長類から単離されたAAVは、臨床開発およびヒト遺伝子治療適用のための遺伝子導入ベクターを作製するために有用である。いくつかの態様において、本明細書において開示される組み換えAAV(rAAV)は、CNSに対する向性を有する。したがって、いくつかの態様において、本開示のrAAVベクターは、CNSの障害の遺伝子治療のために特に有用である。いくつかの態様において、バーコード付けされたキメラAAVカプシドライブラリーを用いて得られたAAVカプシドタンパク質が提供される。タンパク質およびアミノ酸配列、ならびにAAVカプシドに関する他の情報は、配列のリストにおいて記載される。いくつかの態様において、AAVカプシド配列をコードする単離された核酸のフラグメント(部分)が、所望されるカプシド配列をコードする核酸を構築するために有用であり得る。フラグメントは、任意の適切な長さ(例えば、少なくとも6、少なくとも9、少なくとも18、少なくとも36、少なくとも72、少なくとも144、少なくとも288、少なくとも576、少なくとも1152ヌクレオチド長またはそれより長く)のものであってよい。例えば、AAVカプシドの特性を改変するために、第1のAAVカプシドタンパク質のポリペプチドをコードする核酸配列のフラグメントを、第2のAAVカプシド配列をコードする核酸配列を構築するために用いても、またはこれの中に組み込んでもよい。いくつかの態様において、複数のAAV血清型からのカプシド配列フラグメントを含むAAVカプシドタンパク質は、キメラAAVカプシドとして言及される。
いくつかの態様において、カプシド寄与体は、AAVrh.39、AAVrh.43、AAV1、AAV6、AAV8、AAVrh.10、およびAAVrh.8である。いくつかの態様において、カプシド寄与体は、AAV8、AAVrh.39、AAV1、AAVrh.8、AAV6およびAAVrh.43である。いくつかの態様において、B4に対するカプシド寄与体は、AAVrh.39、AAV1、AAVrh.43、AAVrh.8、AAV6、およびAAV8である。いくつかの態様において、キメラカプシドタンパク質は、異なるAAV血清型に由来する3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、25、50、75、100アミノ酸長より長い、またはそれより長い、別個のポリペプチド領域を含む。いくつかの態様において、AAV血清型は、AAV1、AAV2、AAV4、AAV5、AAV6、AAV8、AAV9、AAVrh8、AAVrh10、AAVrh39およびAAVrh43からなる群より選択される。
いくつかの側面において、本開示は、単離されたAAVを提供する。AAVに関して本明細書において用いられる場合、用語「単離された」とは、人工的に得られたかまたは生成されたAAVを指す。単離されたAAVは、組み換え方法を用いて生成することができる。かかるAAVは、本明細書において、「組み換えAAV」として言及される。組み換えAAV(rAAV)は、好ましくは、rAAVの導入遺伝子が、1以上の予め決定された組織に特異的に送達されるような、組織特異的ターゲティング能力を有する。AAVカプシドは、これらの組織特異的ターゲティング能力を決定することにおける重要なエレメントである。したがって、ターゲティングされている組織に適切なカプシドを有するrAAVを選択することができる。いくつかの態様において、rAAVは、配列番号5〜8または配列番号13〜16のいずれか1つに記載されるアミノ酸配列を有するカプシドタンパク質、またはそれに対して実質的な相同性を有するタンパク質を含む。
本明細書において用いられる場合、用語「組み換え細胞」とは、生物学的に活性なポリペプチドの転写またはRNAなどの生物学的に活性な核酸の産生をもたらすDNAセグメントなどの外因性DNAセグメントが導入されている細胞を指す。
本開示のrAAVを生成するために組み換えベクターを所望されるAAVカプシド中にパッケージングするための前述の方法は、限定的であることを意図されず、他の好適な方法は、当業者に明らかであろう。
本開示の「組み換えAAV(rAAV) ベクター」は、典型的には、最低でも、導入遺伝子およびその調節配列、ならびに5’および3’AAV末端逆位反復配列(ITR)から構成される。カプシドタンパク質中にパッケージングされて、選択された標的細胞に送達されるのは、この組み換えAAVベクターである。いくつかの態様において、導入遺伝子は、ベクター配列に対して異種の核酸配列であって、目的のポリペプチド、タンパク質、機能的RNA 分子(例えば、miRNA、miRNA阻害剤)または他の遺伝子産物をコードするものである。核酸コード配列は、標的組織の細胞における導入遺伝子転写、翻訳および/または発現を可能にする様式において、調節成分に作動的に連結している。
rAAVベクターの導入遺伝子配列の組成は、生じるベクターが使用される用途に依存するであろう。例えば、導入遺伝子配列の1つの型は、発現の際に検出可能シグナルを生成するレポーター配列を含む。別の例において、導入遺伝子は、治療用タンパク質または治療用機能的RNAをコードする。別の例において、導入遺伝子は、研究目的のため、例えば、(例えば導入遺伝子産物の機能を研究するための)内部に導入遺伝子を有する体細胞トランスジェニック動物モデルを作製するために用いられることを意図される、タンパク質または機能的RNAをコードする。別の例において、導入遺伝子は、疾患の動物モデルを作製するために用いられることを意図されるタンパク質または機能的RNAをコードする。適切な導入遺伝子コード配列は、当業者には明らかであろう。
hsa-miR-619、hsa-miR-620、hsa-miR-621、hsa-miR-622、hsa-miR-623、hsa-miR-624、hsa-miR-624*、hsa-miR-625、hsa-miR-625*、hsa-miR-626、hsa-miR-627、hsa-miR-628-3p、hsa-miR-628-5p、hsa-miR-629、hsa-miR-629*、hsa-miR-630、hsa-miR-631、hsa-miR-632、hsa-miR-633、hsa-miR-634、hsa-miR-635、hsa-miR-636、hsa-miR-637、hsa-miR-638、hsa-miR-639、hsa-miR-640、hsa-miR-641、hsa-miR-642、hsa-miR-643、hsa-miR-644、hsa-miR-645、hsa-miR-646、hsa-miR-647、hsa-miR-648、hsa-miR-649、hsa-miR-650、hsa-miR-651、hsa-miR-652、hsa-miR-653、hsa-miR-654-3p、hsa-miR-654-5p、hsa-miR-655、hsa-miR-656、hsa-miR-657、hsa-miR-658、hsa-miR-659、hsa-miR-660、hsa-miR-661、hsa-miR-662、hsa-miR-663、hsa-miR-663b、hsa-miR-664、hsa-miR-664*、hsa-miR-665、hsa-miR-668、hsa-miR-671-3p、hsa-miR-671-5p、hsa-miR-675、hsa-miR-7、hsa-miR-708、hsa-miR-708*、hsa-miR-7-1*、hsa-miR-7-2*、hsa-miR-720、hsa-miR-744、hsa-miR-744*、hsa-miR-758、hsa-miR-760、hsa-miR-765、hsa-miR-766、hsa-miR-767-3p、hsa-miR-767-5p、hsa-miR-768-3p、hsa-miR-768-5p、hsa-miR-769-3p、hsa-miR-769-5p、hsa-miR-770-5p、hsa-miR-802、hsa-miR-873、hsa-miR-874、hsa-miR-875-3p、hsa-miR-875-5p、hsa-miR-876-3p、hsa-miR-876-5p、hsa-miR-877、hsa-miR-877*、hsa-miR-885-3p、hsa-miR-885-5p、hsa-miR-886-3p、hsa-miR-886-5p、hsa-miR-887、hsa-miR-888、hsa-miR-888*、hsa-miR-889、hsa-miR-890、hsa-miR-891a、hsa-miR-891b、hsa-miR-892a、hsa-miR-892b、hsa-miR-9、hsa-miR-9*、hsa-miR-920、hsa-miR-921、hsa-miR-922、hsa-miR-923、hsa-miR-924、hsa-miR-92a、hsa-miR-92a-1*、hsa-miR-92a-2*、hsa-miR-92b、hsa-miR-92b*、hsa-miR-93、hsa-miR-93*、hsa-miR-933、hsa-miR-934、hsa-miR-935、hsa-miR-936、hsa-miR-937、hsa-miR-938、hsa-miR-939、hsa-miR-940、hsa-miR-941、hsa-miR-942、hsa-miR-943、hsa-miR-944、hsa-miR-95、hsa-miR-96、hsa-miR-96*、hsa-miR-98、hsa-miR-99a、hsa-miR-99a*、hsa-miR-99b、およびhsa-miR-99b*。
本開示はまた、組み換えアデノ随伴ウイルス(rAAV)ベースの方法を用いる疾患の体細胞トランスジェニック動物モデルの作製を含む。方法は、少なくとも部分的に、AAV血清型およびそのバリアントが、成体動物において、組織特異的様式において、効率的かつ安定な遺伝子導入を媒介するという観察に基づく。rAAVエレメント(カプシド、プロモーター、導入遺伝子産物)を組み合わせて、安定な導入遺伝子を時間および組織に特異的な様式において発現する体細胞トランスジェニック動物モデルを達成する。本開示の方法により作製される体細胞トランスジェニック動物は、ヒトの疾患、病理学的状態の有用なモデルとして、および/または機能(例えば、組織特異的、疾患の役割)が未知であるか、完全には理解されていない遺伝子の効果を特徴づけるために役立ち得る。例えば、動物(例えばマウス)に、特異的組織ターゲティング能力(例えば、肝臓、心臓、膵臓)を有するカプシド、および疾患に関与する遺伝子の発現を駆動する組織特異的プロモーターを有する導入遺伝子を含むrAAVを、別個の発達段階(例えば年齢)において感染させることができる。感染すると、rAAVは、標的組織の別個の細胞に感染し、導入遺伝子の産物を生成する。
いくつかの態様において、導入遺伝子は、病理学的状態を引き起こす。病理学的状態を引き起こす導入遺伝子は、その産物が疾患または障害において役割を有し(例えば、疾患または障害を引き起こすか、動物を疾患または障害に罹患しやすくし)、動物において当該疾患または障害を誘導し得る遺伝子である。次いで、動物を観察して、疾患の任意の数の側面(例えば、進行、処置に対する応答など)を評価する。これらの例は、限定的であることは意図されず、他の側面および例が本明細書において開示され、以下により詳細に記載される。
当業者は、それらが組織特異的病理学的状態および/または疾患の動物モデルを作製するために有用であることを前提として、他の好適な導入遺伝子を容易に選択することができる。
rAAVは、当該分野において公知の任意の適切な方法に従って、組成物中で、対象に送達することができる。好ましくは生理学的に適合可能なキャリア中で(例えば組成物中で)懸濁されたrAAVは、対象、例えば宿主動物、例えばヒト、マウス、ラット、ネコ、イヌ、ヒツジ、ウサギ、ウマ、ウシ、ヤギ、ブタ、モルモット、ハムスター、ニワトリ、シチメンチョウ、または非ヒト霊長類(例えばマカク)に投与することができる。いくつかの態様において、宿主動物は、ヒトを含まない。
当業者は、rAAVが向けられた適応症を考慮して、好適なキャリアを容易に選択することができる。例えば、1つの好適なキャリアは食塩水を含み、これは多様な緩衝液(例えばリン酸緩衝化食塩水)と共に処方することができる。他の例示的なキャリアとして、無菌食塩水、乳糖、ショ糖、リン酸カルシウム、ゼラチン、デキストラン、寒天、ペクチン、ピーナッツ油、ゴマ油および水が挙げられる。キャリアの選択は、本開示の限定要因ではない。
RAAVは、所望される組織の細胞をトランスフェクトするために、ならびに過度の有害効果を伴わずに遺伝子導入および発現の十分なレベルを提供するために、十分な量で投与される。慣用的なおよび薬学的に許容し得る投与の経路として、これらに限定されないが、選択される器官への直接送達(例えば、肝臓への門脈内送達)、経口、吸入(鼻内および気管内送達を含む)、眼内、静脈内、筋肉内、皮下、皮内、腫瘍内、および他の非経口の投与の経路が挙げられる。投与の経路は、所望される場合には組み合わせてもよい。
薬学的に許容し得る賦形剤およびキャリア溶液の処方は、当業者に周知であり、多様な処置レジメンにおいて本明細書において記載される特定の組成物を用いるための好適な投与および処置のレジメンの開発も同じである。
かかる処方物は、本明細書において開示される核酸またはrAAVコンストラクトの薬学的に許容し得る処方物の導入のための好ましい場合がある。リポソームの形成および使用は、当業者に一般的に公知である。最近、血清安定性および循環半減期が改善されたリポソームが開発された(米国特許第5,741,516号)。さらに、潜在的薬物キャリアとしてのリポソームおよびリポソーム様調製物の多様な方法が記載されている(米国特許第5,567,434号;同第5,552,157号;同第5,565,213号;同第5,738,868号および同第5,795,587号)。
リポソームは、水性の溶媒中に分散して、多重膜の求心性二層ベジクル(多重膜ベジクル(MLV)とも称される)を自発的に形成するリン脂質から形成される。MLVは、一般に、25nm〜4μmの直径を有する。MLVの超音波処理は、200〜500.ANG.の範囲の直径を有し、コア中に水溶液を含む、小さい単層膜ベジクル(SUV)の形成をもたらす。
上記の送達の方法に加えて、以下の技術もまた、rAAV 組成物をホストに送達する代替的方法として企図される。ソノフォレーシス(例えば、超音波)は、米国特許第5,656,016号において、循環系中への、およびこれを通しての、薬物の透過性の速度および効力を増強するためのデバイスとして、用いられ、記載されている。企図される他の薬物送達の選択肢は、骨内注射(米国特許第5,779,708号)、マイクロチップデバイス(米国特許第5,797,898号)、眼用処方物(Bourlais et al., 1998)、経皮マトリックス(米国特許第5,770,219号および同第5,783,208号)ならびにフィードバック制御送達(米国特許第5,697,899号)である。
本明細書において記載される剤は、いくつかの態様において、治療、診断または研究用途におけるそれらの使用を容易にするために、医薬または診断または研究用のキットに組み立てられてもよい。キットは、本開示の成分を収容する1以上の容器および使用のための説明を含んでもよい。特に、かかるキットは、本明細書において記載される1以上の剤を、意図される用途およびこれらの剤の適切な使用を記載する説明と共に含んでもよい。ある態様において、キット中の剤は、医薬処方物中で、当該剤の特定の用途のために、および投与の方法のために好適な投与量であってよい。研究目的のための剤は、成分を、多様な実験を行うために適切な濃度または量で含んでよい。
キット内に含まれる説明は、細胞中の潜在型AAVを検出するための方法を含んでもよい。加えて、本開示のキットは、説明、陰性および/または陽性対照、容器、試料のための希釈剤およびバッファー、試料調製用チューブ、および配列比較のための参照AAV配列の印刷されたまたは電子的な表を含んでもよい。
例
例1:新規のAAVカプシドライブラリー
細菌の感染により組織に常在するファージを増幅するペプチドファージディスプレイライブラリーとは異なり、AAVカプシドライブラリーを用いる複数のラウンドのin vivoでの選択は、cap遺伝子全体のPCR増幅と、その後の高効率のクローニングおよび再パッケージングを必要とする。このプロセスの各々の相互作用は、数週間から数か月間を要する。したがって、本発明者らは、より高い多様性の、より多数の野生型AAVカプシド、すなわちAAV1、AAV2、AAV4、AAV5、AAV6、AAV8、AAV9、AAVrh8、AAVrh10、AAVrh39およびAAVrh43に基づく、新たなAAVカプシドライブラリーを作製することを決定した。新たなライブラリーの多様性および複雑性を増大させることに加えて、本発明者らはまた、ライブラリー中の各々のクローンの3’UTR中のユニークなバーコードを用いること、および標的細胞/組織中のそれらの頻度を決定するためにディープシークエンシングを行うこと、およびその後プラスミドライブラリーからのカプシド/バーコード対のPCR増幅による、AAVカプシドライブラリーのin vivoでの選択についての新たなアプローチを検討した(図1を参照)。
レンチウイルス−shRNA ライブラリーにおけるユニークなバーコードの包含は、遺伝子機能のゲノムワイドなスクリーニングおよび経路の発見を劇的に加速させた。<100,000個のクローンを有するこれらのライブラリーにおいて、ユニークなバーコードが用られ、バーコードとshRNAとの間の関係は、ハイスループットスクリーニングによりよく特徴づけられた。さらに、240,000個のマイクロアレイに適合するバーコードのユニークなセットが開発された。2×107クローンのライブラリーによる本願について、かかるアプローチを利用することは不可能であった。
本発明者らは、ヒトU87神経膠腫細胞において、10、102、105のゲノムコピー(gc)/標的細胞のAAVライブラリー用量を用いて、実験を行った。細胞をライブラリーに4時間にわたり暴露し、その後、しっかり洗浄し、3日間インキュベートした。バーコードを、粗細胞ライセートから、それらに直近で隣接する定常領域に特異的なプライマーを用いて、PCRで増幅した。PCR生成物をTOPO-TAクローニングプラスミド中にクローニングし、各々のライブラリー用量について、多数のクローンについて、個々のバーコードをシークエンシングした。本発明者らは、全てのライブラリー用量についてクローナルドミナンス(clonal dominance)についての証左を見出したが、特に、最も低い用量において、25クローンのうちの24が、単一のバーコードであった(図3)。実験を繰り返し、異なるバーコードが同定されたにもかかわらず、最も低いライブラリー用量においてクローナルドミナンスの類似の結果を得た。これらの結果は、より低いAAVライブラリー用量が、ストリンジェンシーの増大、およびディープシークエンシングなしでの最も感染性の高いクローンの同定をもたらし得ることを示唆する。
次に、本発明者らは、野生型マウスにおいて、この原理の正当性を試験した。この目的のために、本発明者らは、6〜8週齢のC57BL/6マウスの尾静脈を介して、1E9、1E10、1E11および5E11gcの用量で(1用量あたり1マウス)AAVライブラリーを注入した。3日後、本発明者らは、各々のマウスから大脳、小脳、脊髄、肝臓、骨格筋および心臓を回収し、ゲノムDNAを単離した。本発明者らは、大脳および肝臓においてバーコード調査を行った。なぜならば、これら2つの器官は、AAVを含む多くの遺伝子導入ベクターについて、非常に異なる形質導入プロフィールを提示するからである。
古典的には、標的組織からのAAVライブラリーのin-vivoでの選択は、標的組織において濃縮された全長キメラcap遺伝子のPCR増幅により、または、アデノウイルスレスキューにより、行われてきた。バーコードを「フィッシング」タグとして用いる本発明者らの単ラウンドin-vivo選択戦略に対する代替的戦略として、本発明者らは、また、標的組織の全DNA単離物から濃縮された全長cap遺伝子を単ラウンドで回収することができるか否かを検討することを決定した。ここで注意すべき重要なことは、このアプローチは「フィッシング」タグとしてのバーコードの使用を必要としないが、それらはなお、ユニークなカプシド配列を互いに区別するために役立つ;1ヌクレオチドのみ異なるキメラカプシド遺伝子ですら、ユニークなバーコードの存在により、各々の他のものと容易に区別することができるということである。
本発明者らの次のゴールは、これらの脳選択的AAVカプシドが、成体マウスにおける全身静脈内注入の後で脳への向性を示すか否かを決定することであった。これらのカプシドを用いて、EGFPをコードする自己相補的な組み換えAAVベクター(rAAV-B1〜B4)を作製し、また、新生仔および成体マウスにおけるiv注入の後でのその例外的なCNS向性を考慮して、AAV9を対照として作製した。rAAVベクターを、成体C57BL/6マウス中に、4.6×1011ベクターゲノムの用量で、尾静脈を介して注入した(N=3個体のマウス/rAAVベクター)。注射の4週間後に、脳、脊髄および末梢組織を収集し、免疫蛍光染色によりGFP発現について分析した。
2つの最も有望なベクター、AAV-B1およびAAV-B2のより高い用量を、成体マウスにおけるそれらの体内分布プロフィールをさらに研究するために用いた。rAAV-B1およびrAAV-B2のより高い用量(2E12vg)の注入は、皮質および海馬のニューロン、内皮および星状膠細胞の形質導入をもたらした(図7)。重要なことに、rAAV-B1およびrAAV-B2ベクターについての肝臓での形質導入効率は、蛍光イメージングにより観察した場合、AAV9よりも劇的に低かった(図8)。
本発明者らは、今や、全長カプシド遺伝子PCRによりCNSなどのより広い組織にターゲティングされた単離された新規のAAVカプシドを有するが、この古典的な方法は、血液脳関門を超えてニューロンを高効率で形質導入することができる少数のAAVゲノムにより限定される場合がある。先に、PCRに由来する、アンプリコンのサイズがより小さいライブラリーが、より大きなアンプリコンに由来するものよりも多くのユニークな配列および高い多様性推定値を含むことが示されている。したがって、カプシド遺伝子全体の代わりにバーコードのみを増幅する単ラウンドのin vivo選択戦略は、したがって、本発明者らが、低頻度のイベントから生じ得る微量のウイルスゲノム(例えば、ライブラリー中の、BBBを超えてニューロンに高効率で形質導入することができるAVカプシド)すら増幅することを可能にするであろう。このことは、本発明者らが、1E9および1E10の脳からバーコードを引き出すことができた一方で、1E11より低い用量においては、脳から全長カプシド遺伝子を単離することはできなかったという、本発明者らの観察により支持される。
図23は、成体マウスにおける血管内注入の後でのAAV-B1ベクターのCNS形質導入プロフィールを示す。図23Aは、AAV-B1およびAAV9を注射されたマウス(2×1012vg/マウス)の脳におけるGFP分布の全体像を提供する。十字縫合に対して+0.5mm、−1.80mmおよび−3.00mm(左から右へ)で配置された冠状脳切片の代表的な画像を示す。AAV-B1を注射されたマウス(2×1012vg/マウス)の異なるCNS領域におけるニューロンの集団の形質導入を、図23Bにおいて示す。黒矢印は、形態により同定されたGFP陽性ニューロンの例を示す。バー=50μm。図23Cは、大脳、小脳および脊髄におけるAAVベクターゲノム含有量を示す(N=4個体の動物/群)(5×1011vg/マウス)。月齢が一致する注射されていないマウスを、対象として含めた(示さず)。図23Dは、1群あたり2個体の動物の大脳、小脳および脊髄におけるGFP発現のウェスタンブロット分析を示す(5×1011vg/マウス)。GFPのシグナル強度を、定量的比較のために、対応するβ−アクチンシグナル強度に対して正規化した。Studentの不対t検定により、**p<0.01、***p<0.001、****p<0.0001。
図25は、血管内送達の後でのマウスの肝臓および筋肉へのAAV-B1の体内分布を示す。(図25A)AAV-B1およびAAV9を注射されたマウスの肝臓(2×1012vg/マウス)ならびに(図25D)AAV-B1を注射されたマウスの骨格筋(三頭筋および四頭筋)、横隔膜および心臓(5×1011vg/マウス)におけるネイティブなGFP発現。AAVベクターゲノム含有量(N=4個体の動物/群)(図25B、肝臓;図25E、筋肉群)およびGFP発現のウェスタンブロット分析(N=2個体の動物/群)(図25C、肝臓;図25F、筋肉群)を示す(5×1011vg/マウス)。GFPのシグナル強度を、定量的比較のために、対応するβ−アクチンシグナル強度に対して正規化した。Studentの不対t検定により、*p<0.05、**p<0.01。
図28は、シングルラウンドin-vivoバイオパニング戦略の一態様の模式図を提供する。
図30は、脳に存在するカプシドのキメラ的および相同的な性質を示す。(図30A)脳選択的カプシドAAV-B1、-B2、-B3および-B4、ならびに(図30B)無作為に選択された4種の肝臓に存在するバリアントに対する、親のカプシド寄与。(図30C)脳および(図30D)肝臓クローンの間でのアミノ酸レベルにおける相同性。灰色の領域は相同性を示し;黒線は非相同アミノ酸を示す。アミノ酸組成についての%相同性を計算する。
図32は、AAV-B1の全身送達の後でのCNSにおけるGFP陽性細胞の表現型決定を示す。形質導入された細胞は、GFP、汎用的ニューロンマーカーNeuN(図32A、図32Bおよび図32D)、線条体の中型有棘ニューロンマーカーDARPP32(図32A)、ドーパミン作動性ニューロンマーカーチロシンヒドロキシラーゼ(TH)(図32B)、プルキンエニューロンマーカーカルビンジン−D−28k(Cal28K)(図32C)、内皮マーカーCD31(図32E)、および成熟乏突起膠細胞マーカーAPC(図32F)に対する抗体を用いる二重免疫蛍光染色により同定した。腹側脊髄におけるGFP陽性ニューロンの大きいサイズ、形態学および場所は、運動ニューロンのアイデンティティーを示唆する。GFP陽性星状膠細胞(図32G)は、それらの形態に基づいて同定した。白矢印は、共局在の例を示す。バー=10μm。
図35は、より低い用量(5×1010vg/マウス)で全身注入されたAAV-B1の体内分布プロフィールを示す。(図35A)CNS、(図35B)筋肉群および(図35C)末梢組織におけるAAVベクターゲノム含有量(N=4個体の動物/群)を示す。Studentの不対t検定により、*p<0.05、**p<0.01。
>配列番号1;AAV-B1
ATGGCTGCCGATGGTTATCTTCCAGATTGGCTCGAGGACAACCTCTCTGAGGGCATTCGCGAGTGGTGGGACTTGAAACCTGGAGCCCCGAAGCCCAAAGCCAACCAGCAAAAGCAGGACGACGGCCGGGGTCTGGTGCTTCCTGGCTACAAGTACCTCGGACCCTTCAACGGACTCGACAAGGGGGAGCCCGTCAACGCGGCGGACGCAGCGGCCCTCGAGCACGACAAGGCCTACGACCAGCAGCTCAAAGCGGGTGACAATCCGTACCTGCGGTATAACCACGCCGACGTCGAGTTTCAGGAGCGTCTGCAAGAAGATACGTCTTTTGGGGGCAACCTCGGGCGAGCAGTCTTCCAGGCCAAGAAGAGGGTTCTCGAACCTTTTGGTCTGGTTGAGGAAGGCGCTAAGACGGCTCCTGGAAAGAAACGTCCGGTAGAGCAGTCGCCACAAGAGCCAGACTCCTCCTCGGGCATCGGCAAGAAAGGCCAACAGCCCGCCAGAAAAAGACTCAATTTTGGCCAGACTGGCGACTCAGAGTCAGTTCCAGACCCTCAACCTCTCGGAGAACCTCCAGCAGCGCCCTCTGGTGTGGGACCTAATACAATGGCTGCAGGCGGTGGCGCACCAATGGCAGACAATAACGAGGGCGCCGACGGAGTGGGTAATTCCTCGGGAAATTGGCATTGCGATTCCACATGGATGGGGGACAGAGTCATCACCACCAGCACCCGAACCTGGGCCCTGCCCACCTACAACAACCACCTCTACAAGCAAATCTCCAACGGCACCTCGGGAGGAAGCACCAACGACAACACCTATTTTGGCTACAGCACCCCCTGGGGGTATTTTGATTTCAACAGATTCCACTGCCACTTCTCACCACGTGACTGGCAGCGACTCATCAACAACAACTGGGGATTCCGGCCAAAAAGACTCAGCTTCAAGCTCTTCAACATCCAGGTCAAGGAGGTCACGCAGAATGAAGGCACCAAGACCATCGCCAATAACCTTACCAGCACGATTCAGGTATTTACGGACTCGGAATACCAGCTGCCATACGTCCTCGGCTCCGCGCACCAGGGCTGCCTGCCTCCGTTCCCGGCGGACGTCTTCATGATTCCCCAGTACGGCTACCTTACACTGAACAATGGAAGTCAAGCCGTAGGCCGTTCCTCCTTCTACTGCCTGGAATATTTTCCTTCTCAAATGCTGAGAACGGGCAACAACTTTGAGTTCAGCTACCAGTTTGAGGACGTGCCTTTTCACAGCAGCTACGCGCACAGCCAAAGCCTGGACCGGCTGATGAACCCCCTCATCGACCAGTACCTGTACTACCTGTCTCGGACTCAGTCCACGGGAGGTACCGCAAGAACTCAGCAGTTGCTATTTTCTCAGGCCGGGCCTAATACAATGGCCAATCAGGCAAAGAACTGGCTGCCAGGACCCTGTTACCGCCAACAACGCGTCTCAACGACAACCGGGCAAAACAACAATAGCAACTCTGCCTGGACTGCTGGGACCAAATACCATCTGAATGGAAGAAATTCATTGGCTAATCCTGGCATCGCTATGGCAACACACAAAGACGACGAGGAGCGTTTTTTTCCCAGTAACGGGATCCTGATTTTTGGCAAACAAAATGCTGCCAGAGACAATGCGGATTACAGCGATGTCATGCTCACCAGCGAGGAAGAAATCAAAACCACTAACCCTGTGGCTACAGAGGAATACGGTATCGTGGCAGATAACTTGCAGCAGCAAAACACGGCTCCTCAAATTGGAACTGTCAACAGCCAGGGGGCCTTACCCGGTATGGTCTGGCAGAACCGGGACGTGTACCTGCAGGGTCCCATCTGGGCCAAGATTCCTCACACGGACGGCAACTTCCACCCATCTCCGCTGATGGGCGGCTTTGGCCTGAAACATCCTCCGCCTCAGATCCTGATCAAGAACACGCCTGTACCTGCGGATCCTCCGACCACCTTCAACCAGTCAAAGCTGAACTCTTTCATCACGCAATACAGCACCGGACAGGTCAGCGTGGAAATTGAATGGGAGCTACAGAAGGAAAACAGCAAGCGCTGGAACCCCGAGATCCAGTACACCTCCAACTACTACAAATCTACAAGTGTGGACTTTGCTGTTAATACAGAAGGCGTGTACTCTGAACCCCGCCCCATTGGCACCCGTTACCTCACCCGTAATCTGTAA
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GTCTCATGCTATTGCTTCGCATCGTCAGAC
>配列番号18;バーコードS5
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>配列番号19;バーコードS6
TGATTGGACTAGTCGTGGGAGTTAGCATGC
>配列番号20;バーコードS9
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>配列番号21;バーコードS10
TTATACGACTCATATGTGGCATACGTCGTG
>配列番号22;バーコードS11
GGAGCCGAGGAAGACTTGTCCGGGGACTGG
>配列番号23;バーコードS12
GCCGGGGTGTTGGTCTTTGTCTACGATGGC
Claims (7)
- AAV1、AAV2、AAV4、AAV5、AAV6、AAV8、AAV9、AAVrh8、AAVrh10、AAVrh39およびAAVrh43からなる群より選択される、少なくとも3種の異なるAAV血清型に由来する、別個のポリペプチド領域を含み、ここで、タンパク質のアミノ酸配列が、配列番号5〜8により表される、キメラAAVカプシドタンパク質。
- AAV1、AAV2、AAV4、AAV5、AAV6、AAV8、AAV9、AAVrh8、AAVrh10、AAVrh39およびAAVrh43からなる群より選択される少なくとも2種の異なるAAV血清型に由来する、6アミノ酸長より長い、別個のポリペプチド領域を含み、ここで、タンパク質のアミノ酸配列が、配列番号5〜8により表される、キメラAAVカプシドタンパク質。
- 配列番号5〜8に記載される配列を含む、キメラAAVカプシドタンパク質。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のカプシドを含む、rAAV。
- 対象のCNS組織を標的とする、請求項4に記載のrAAV。
- 導入遺伝子をさらに含む、請求項5に記載のrAAV。
- 導入遺伝子がCNS関連遺伝子である、請求項6に記載のrAAV。
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