JP6887663B2 - アグマチンの製造方法及びその利用 - Google Patents

Description

本発明は、アグマチンの製造方法及びその利用に関する。

アグマチンが、機能性ポリアミンとして近年注目されてきている（非特許文献１）。その生理活性から、主に米国を中心にサプリメントとして広く流通している。
植物、アーキアや一部のバクテリアは、アルギニンの脱炭酸により合成されるアグマチンを経由してポリアミンを合成する（非特許文献２）。哺乳類もアルギニン脱炭酸酵素（ａｒｇｉｎｉｎｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ、ＡＤＣ）を有するがその活性は弱く、細胞内に存在するアグマチンの大部分は食餌由来である（非特許文献１）。

アグマチンは神経伝達物質としてや、アドレナリンやノルアドレナリンの分泌を促進するシグナル分子として機能する（非特許文献１）。また、モルヒネの鎮痛作用を増強する働きや、結果として薬物依存性を低減する作用も有している（非特許文献３、４）。更にアグマチンは、オルニチン脱炭酸酵素(ｏｒｎｉｔｈｉｎｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ、ＯＤＣ)アンチザイム（ＯＤＣに特異的に結合し分解へと誘導するタンパク質）の発現を誘導する事で、細胞内ポリアミン濃度の恒常性を維持している（非特許文献５）。また、ガン細胞のＯＤＣを阻害する事で抗ガン作用を発揮する事も報告されている（非特許文献５）。近年の解析で、高脂肪食に起因するホルモンバランスの乱れ、インスリン耐性、及び体重増加が、アグマチンの摂取により緩和・低減される事が示された（非特許文献６）。加えてアグマチンは、尿素サイクル促進や、カルニチン生合成促進を介した脂質酸化亢進にも寄与する事が解明され、生活習慣病諸症状を改善する新たな機能性物質としても期待されている（非特許文献６）。また、アグマチンはアルギニン同様、機能性物質として注目されているプトレスシン、スペルミジン、及びスペルミンの前駆物質でもあるため、アルギニン摂取時と同様の効果が期待できると考えられる。しかしながら、上記の様に哺乳類ＡＤＣ活性は弱く、アグマチンによる健康増進作用を得るためには食餌による継続的な摂取が必要である。従って、アグマチンを著量含む食品は、健康的な生活を求める消費者に強く訴求すると考えられる。

ポリアミンを多く含有する食品として、大豆をはじめとする豆類やきのこ、哺乳類の内臓や魚卵等が挙げられるが、特に納豆、糠漬け、味噌、醤油等の発酵食品は著量のポリアミンを含む事が知られている。これらの発酵食品に含まれるポリアミンの多くは、発酵に関与する微生物によって産生される（非特許文献１、７）。アグマチンを著量含む発酵食品としては清酒が知られており（〜２ｍＭ）、清酒醸造に関与する微生物群（酵母［Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ］、麹菌［Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ］、乳酸菌、硝酸還元菌等）によるアグマチン生産が示唆されている（非特許文献１、７）。しかしながら、酵母や麹菌等、子嚢菌におけるポリアミンはオルニチンの脱炭酸反応を経て合成され、アグマチンを経由する生合成経路は一部の例外を除き殆ど知られていない（非特許文献８、９）。また、酵母及び麹菌のゲノム解析からも、両微生物はａｄｃとアノテーションされた遺伝子を保持しないと推測されており（非特許文献１０、１１）、例示したいずれの微生物がアグマチン生産に関与するかは依然不明であった。また、清酒を原料とした米酢は、アグマチンを含めいかなるポリアミンも含まないと報告されており（非特許文献７）、これらは互いに矛盾する結果である。

アグマチンの製造方法としては、遺伝子工学的手法を用いて、アルギニン脱炭酸酵素遺伝子を大量発現させた組換え体を利用する方法等が知られている（特許文献１）。

中国特許出願公開第１０４９１１２２３号明細書

Galgano F, Caruso M, Condelli N, Favati F. 2012. Focused review: agmatine in fermented foods. Front. Microbiol. 3:199. Tabor CW, Tabor H. 1985. Polyamines in microorganisms. Microbiol. Rev. 49:81-99. Moinard C, Cynober L, de Bandt JP. 2005. Polyamines: metabolism and implications in human diseases. Clin. Nutr. 24:184-197. Wade CL, Schuster DJ, Domingo KM, Kitto KF, Fairbanks CA. 2008. Supraspinally-administered agmatine attenuates the development of oral fentanyl self-administration. Clin. Nutr. 587:135-140. Agostinelli E, Marques MP, Calheiros R, Gil FP, Tempera G, Viceconte N, Battaglia V, Grancara S, Toninello A. 2010. Polyamines: fundamental characters in chemistry and biology. Amino Acids. 38:393-403. Nissim I, Horyn O, Daikhin Y, Chen P, Li C, Wehrli SL, Nissim I, Yudkoff M. 2014. The molecular and metabolic influence of long term agmatine consumption. J. Biol. Chem. 289:9710-9729. Okamoto A, Sugi E, Koizumi Y, Yanagida F, Udaka S. 1997. Polyamine content of ordinary foodstuff and various fermented foods. Biosci. Biotechnol. Biochem. 61:1582-1584. Valdes-Santiago L, Ruiz-Herrera J. 2014. Stress and polyamine metabolism in fungi. Front. Chem. 1:42. Kumar S, Saragadam T, Punekar NS. 2015. Novel route for agmatine catabolism in Aspergillus niger involves 4-guanidinobutyrase. Appl. Environ. Microbiol. 81:5593-5603. Machida M, Asai K, Sano M, Tanaka T, Kumagai T, Terai G, Kusumoto K, Arima T, Akita O, Kashiwagi Y, Abe K, Gomi K, Horiuchi H, Kitamoto K, Kobayashi T, Takeuchi M, Denning DW, Galagan JE, Nierman WC, Yu J, Archer DB, Bennett JW, Bhatnagar D, Cleveland TE, Fedorova ND, Gotoh O, Horikawa H, Hosoyama A, Ichinomiya M, Igarashi R, Iwashita K, Juvvadi PR, Kato M, Kato Y, Kin T, Kokubun A, Maeda H, Maeyama N, Maruyama J, Nagasaki H, Nakajima T, Oda K, Okada K, Paulsen I, Sakamoto K, Sawano T, Takahashi M, Takase K, Terabayashi Y, Wortman JR, Yamada O, Yamagata Y, Anazawa H, Hata Y, Koide Y, Komori T, Koyama Y, Minetoki T, Suharnan S, Tanaka A, Isono K, Kuhara S, Ogasawara N, Kikuchi H. 2005. Genome sequencing and analysis of Aspergillus oryzae. Nature. 438:1157-1161. Akao T, Yashiro I, Hosoyama A, Kitagaki H, Horikawa H, Watanabe D, Akada R, Ando Y, Harashima S, Inoue T, Inoue Y, Kajiwara S, Kitamoto K, Kitamoto N, Kobayashi O, Kuhara S, Masubuchi T, Mizoguchi H, Nakao Y, Nakazato A, Namise M, Oba T, Ogata T, Ohta A, Sato M, Shibasaki S, Takatsume Y, Tanimoto S, Tsuboi H, Nishimura A, Yoda K, Ishikawa T, Iwashita K, Fujita N, Shimoi H. 2011. Whole-genome sequencing of sake yeast Saccharomyces cerevisiae Kyokai No. 7. DNA Res. 18:423-434.

本発明は、アグマチンを効率的に製造する方法を提供することを課題とする。

本発明者らは、発酵原料及び有機酸の存在下において培養することによって、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅにアグマチン含有生成物を発酵により産生させることによって、アグマチンを高濃度で含む発酵液が得られることを見出し、これにより上記課題を解決できることを見出した。

生体内において、通常、アグマチンは脱炭酸酵素の作用によりアルギニンから産生され、さらにアグマチンはプトレシン、スペルミジン及びスペルミン等のポリアミンへと次々に代謝される。本発明者らの検討により、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅという特定の糸状菌を用い、有機酸の存在下においてこれに発酵を行わせることによって、何らかの理由により、菌体内で生成したアグマチンが代謝されることなく菌体外へと排出されていると考えられた。本発明者らは、さらに検討を重ね、アグマチン産生レベルがさらに増強される培養条件等を突き止めた。

本発明は、上記の知見に基づき、さらなる試行錯誤を経て完成されたものであり、下記の態様を含む。

項１．
発酵原料及び有機酸の存在下において培養することによって、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅにアグマチン含有生成物を発酵により産生させる工程
を含む、アグマチンの製造方法。
項２．
前記培養を、ｐＨ６以下で行う、項１に記載の製造方法。
項３．
前記培養の開始時点以後、４８時間経過時点までに、培養ｐＨが６以下となり、その時点から少なくとも４８時間以上前記培養をｐＨ６以下にて行う、項１に記載の製造方法。
項４．
前記有機酸が、乳酸、コハク酸、クエン酸、酢酸、ピルビン酸及びリンゴ酸からなる群より選択される少なくとも一種の有機酸である、項１〜３のいずれか一項に記載の製造方法。
項５．
前記培養を、２７〜３３℃の範囲内で行う、項１〜４のいずれか一項に記載の製造方法。
項６．
前記発酵原料が、イネ科植物の種子、マメ科植物の種子、芋類の根及び胡麻類の種子、並びにそれらの加工品からなる群より選択される少なくとも一種の天然素材由来物、及び／又はＬ−アルギニンである、項１〜５のいずれか一項に記載の製造方法。
項７．
前記アグマチン含有生成物が、糖化液である、項１〜６のいずれか一項に記載の製造方法。
項８．
項１〜６のいずれか一項に記載の製造方法により得られうる、アグマチン含有発酵物。
項９．
（１）項７に記載の工程；及び
（２）前記糖化液を原料として用いてアルコール発酵を行い、アルコール液を得る工程
を含む、アルコール液の製造方法。
項１０．
（１）項７に記載の工程；
（２）前記糖化液を原料として用いてアルコール発酵を行い、アルコール液を得る工程；及び
（３）前記アルコール液を原料として用いて酢酸発酵を行い、酢を得る工程
を含む、酢の製造方法。

本発明によれば、アグマチンを効率的に製造することができる。また、本発明の方法は、遺伝子組換え体を使用する必要がないという利点を有する。例えば、清酒用として長年に渡り使用されてきた菌株を使用すれば、生成物の安全性が保証されている製造方法を提供することができる。

一般的なポリアミン生合成経路を示す図面である（ADC、arginine decarboxylase；ODC、ornithine decarboxylase；Agm、アグマチン；PUT、プトレスシン；SPD、スペルミジン；SPM、スペルミン）。 米酢に含まれるポリアミンのHPLC解析を示す図面である（製法及び原料の異なる米酢を供試し、それらに含まれるポリアミンを、HPLCにより定性・定量した結果を示す図面である（上段、10 μM標準物質；中段、純米酢1 (10倍希釈)；下段、米酢(原液). P1、 プトレスシン； P2、 スペルミジン；P3、アグマチン； P4、 スペルミン； P5、 カルドペンタミン(内部標準物質)。 供試サンプルの製法及び原料に関する詳細は表1を参照）。 食酢に含まれるポリアミン（mM）を示す図面である（種々の食酢に付き、製造ロットの異なる3サンプルを供試し、それらに含まれるポリアミンをHPLCにより定量した。（A）アグマチン、（B）プトレスシン、（C）スペルミジン。エラーバーは標準偏差を示す。各食酢の製法及び原料に関する詳細は表1を参照）。 清酒用及び醤油用麹菌のアグマチン生産能を示す図面である（清酒用及び醤油用麹菌を用いた糖化を行い、発酵液中のアグマチンをHPLCを用いて定量した。培養は3.1 mM （0.025%） L-乳酸存在下、20℃で行った、白丸、清酒用麹菌； 黒丸、醤油用麹菌。）。 アグマチン生産における至適温度を示す図面である（種々の温度で清酒用麹菌を用いた糖化を行い、発酵液中のアグマチンをHPLCを用いて定量した。培養は3.1 mM （0.025%） L-乳酸存在下で行った。対照として、精製糖化酵素（α-アミラーゼ及びグルコアミラーゼ）を用いて糖化を行った。白丸、20℃；薄灰色丸、30℃；濃灰色丸、40℃；黒丸、50℃；黒三角、酵素糖化（50℃）。）。 乳酸及び乳酸ナトリウムがアグマチン生産に与える影響を示す図面である（L-乳酸或いはL-乳酸ナトリウム存在下で清酒用麹菌を用いた糖化を行い、発酵液中のアグマチン（左）及びプトレスシン（右）をHPLCを用いて定量した。培養は全て30℃で行った。（A） L-乳酸の影響。白丸、乳酸非添加；薄灰色丸、3.1 mM （0.025%）；濃灰色丸、12.2 mM （0.1%）；黒丸、61.0 mM （0.5%）。（B） 61.0 mM L-乳酸ナトリウムの影響。）。 清酒に含まれる有機酸がアグマチン生産に与える影響を示す図面である（L-乳酸、酢酸、コハク酸、或いはクエン酸存在下で清酒用麹菌を用いた糖化を行い、発酵液中のアグマチン（左）及びプトレスシン（右）をHPLCを用いて定量した。培養は全て30℃で行った。有機酸は、プロトン終濃度が61.0 mMとなる様添加した。白丸、61.0 mM L-乳酸；薄灰色丸、61.0 mM酢酸；濃灰色丸、30.5 mMコハク酸；黒丸、20.3 mMクエン酸。）。 市販甘酒に含まれるポリアミンを示す図面である（異なる製造メーカーから販売されている甘酒5種のポリアミン含量をHPLCにより定量した（N = 1）。対照として、清酒用麹菌を最適条件下（30℃、 61.0 mM L-乳酸存在下）で6日間培養（糖化）した際に、発酵液中に蓄積するアグマチン濃度を示した（清酒用麹糖化液、図7のデータ参照）。（A）アグマチン、（B）プトレスシン、ND not detected。）。 遊離アルギニンがアグマチン生産に与える影響を示す図面である（L-乳酸及びL-アルギニン存在下、30℃で清酒用麹菌（米麹）を保温し、液中のアグマチンをHPLCを用いて定量した。白丸、乳酸及びアルギニン共に非添加；薄灰色丸、10 mMアルギニン；濃灰色丸、10 mMアルギニン及び3.1 mM（0.025%）L-乳酸；黒丸、10 mMアルギニン及び12.2 mM（0.1%）L-乳酸；黒三角、10 mMアルギニン及び61.0 mM （0.5%）L-乳酸。）。 ゴマ醪に含まれるポリアミンのHPLC解析を示す図面である（清酒用麹或いは醤油用麹（共に米麹）を用いて脱脂ゴマ粕を3日間発酵させ、得られた発酵液（ゴマ醪）上清に含まれるポリアミンを、HPLCにより定性・定量した。（A）クロマトグラム。上段、10 μM標準物質；中段、清酒用麹（20倍希釈）；下段、醤油用麹（20倍希釈）。P1、プトレスシン；P2、スペルミジン；P3、アグマチン；P4、スペルミン（内部標準物質）。（B）アグマチン（mM）。白、清酒用麹；黒、醤油用麹。）。

１． アグマチンの製造方法
１．１ Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ
Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅとしては、特に限定されず、幅広く使用することができる。例えば、清酒用として長年に渡り使用されてきた菌株を使用すれば、生成物の安全性が保証されている製造方法を提供することができるという点で、有利である。そのような製品カテゴリーとして、例えば、アメリカ食品医薬品局（ＦＤＡ）より食品添加物に与えられる安全基準合格証である、ＧＲＡＳ（Ｇｅｎｅｒａｌｌｙ Ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ Ａｓ Ｓａｆｅの頭字語）等が挙げられる。

特に、清酒用麹菌株が好ましい。

Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅは、単独種を用いてもよいし、複数種を組み合わせて用いてもよい。

１．２ 発酵原料
発酵原料としては、特に限定されず、アグマチン生合成の材料となりうるもの、特にＬ−アルギニン、を含むものであれば幅広く用いることができる。例えば、イネ科植物の種子、マメ科植物の種子、芋類の根及び胡麻類の種子、並びにそれらの加工品からなる群より選択される少なくとも一種の天然素材由来物を用いることができる。

イネ科植物としては、米、小麦、大麦、トウモロコシ、キビ、アワ及びヒエ等が挙げられる。

マメ科植物としては、大豆、小豆、インゲン豆及びエンドウ豆等が挙げられる。

芋類としては、サツマイモ等が挙げられる。

加工品としては、脱脂ゴマ粕（ゴマ油絞り粕）等が挙げられる。

発酵原料としては、Ｌ−アルギニンを用いることもできる。

発酵原料は、一種を単独で使用してもよいし、複数種を組み合わせて使用することもできる。

１．３ 有機酸
有機酸としては、特に限定されず、乳酸、コハク酸、クエン酸、酢酸、ピルビン酸及びリンゴ酸等を使用できる。

有機酸は、一種を単独で使用してもよいし、複数種を組み合わせて使用することもできる。

有機酸は、好ましくは、培養をｐＨ６以下で行うために培養液中に添加される。アグマチンの効率的生産のためには、培養を、ｐＨ５．５以下で行うことが好ましく、ｐＨ５以下で行うことがより好ましく、４以下で行うことがさらに好ましく、３以下で行うことがさらにより好ましい。

アグマチンの効率的生産のためには、好ましくは２４時間以上、より好ましくは４８時間以上、さらに好ましくは１４４時間以上、上記ｐＨ範囲内での培養を行うことができる。

アグマチンの効率的生産のためには、培養初期、すなわち対数増殖期において上記ｐＨ範囲内での培養を行うことが好ましい。この点において、培養の開始時点以後、４８時間経過時点までに培養ｐＨが上記範囲内となり、その時点から少なくとも上記培養時間、前記培養を上記ｐＨ範囲内にて行うことが、アグマチンの効率的生産のために好ましい。効率的生産のためには、培養の開始時点以後、より好ましくは２４時間経過時点までに、さらに好ましくは１２時間経過時点までに、さらにより好ましくは２時間経過時点までに、培養ｐＨが上記範囲内となり、その時点から少なくとも上記培養時間、前記培養を上記ｐＨ範囲内にて行うことができる。

アグマチンの効率的生産の観点で、培養を、２７〜３３℃の範囲内で行うことが好ましく、２８〜３２℃で行うことがより好ましく、２９〜３１℃で行うことがさらに好ましい。

１．４ その他の培養条件
培養は、通常、液体培養とする。固体培養であってもよい。

本発明の方法においては、発酵原料毎に、それぞれ適した公知の培養条件を、必要に応じて適宜改変して、それぞれ適用することができる。

例えば、米麹を用いて培養を行う場合には、米麹を用いて糖化液を製造する通常の方法に沿って培養を行うことができる。

２． アグマチン含有生成物
本発明の方法により、アグマチン含有生成物が得られる。アグマチン含有生成物は、アグマチンを含有する発酵物である。

本発明の方法により得られるアグマチン含有発酵物は、アグマチンを高濃度含有している。発酵原料や製造条件にもよるが、好ましくは、１０ｍＭ以上のアグマチンを含有している。

本発明の方法により得られるアグマチン含有発酵物は、さらに加工することができる。

発酵原料によって、アグマチン含有生成物が異なるが、一定の発酵原料の場合、糖化液となりうる。例えば、米を原料とする場合、糖化液が得られる。この糖化液を原料としてアルコール発酵を行うことによりアルコール液が得られ、このアルコール液を原料として酢酸発酵を行うことで酢を製造することができる。

本発明の方法により得られるアグマチン含有発酵物から、アグマチンを単離することもできる。

以下、本発明を実施例及び比較例により具体的に説明するが、本発明はこれらに何ら限定されるものではない。

材料及び方法

（１）供試菌株
市販の清酒用、及び醤油用麹菌(種麹)を用いた。両株共にAspergillus oryzaeである。

（２）製麹
製麹は既報(財団法人日本醸造協会1978. 増補改訂 清酒製造技術)の手法に改変を加えて行った。300 gの米(特別栽培米こしひかり；神明、神戸、兵庫)を洗浄し、適量の水道水に3時間浸漬した。米をザルにあげ10分間水切りを行った後、蒸器を用いて50分間蒸した。蒸米をさらしの上に広げ、スパーテルで切り返しながら約30℃になるまで放冷した。これに0.23 gの種麹を接種して十分に混和した後、さらしごとタッパー(15.8 cm × 23.1 cm × 5.4 cm)に移した。水で濡らした後固く絞ったガーゼを、種麹を接種した蒸米の上に広げ、30℃で保温(培養)した。20時間後及び28時間後に手入れ(財団法人 日本醸造協会 1978. 増補改訂清酒製造技術)を行い、蒸米をほぐす事で菌糸の蒸米表面への展開・定着を促進した。2度目の手入れの後、タッパーを34℃恒温槽へ移し、蒸米表面の乾燥、菌糸の蒸米内部への伸長、及び細胞外分泌酵素群(アミラーゼ及びプロテアーゼ)の産生を誘導した(財団法人 日本醸造協会 1978. 増補改訂清酒製造技術)。45時間後、菌糸が蒸米内部まで十分に伸長している事を確認した後、3度目の手入れを行った。室温で2時間乾燥し、これを米麹とした。米麹は使用時まで4℃で保存した。

（３）米麹を用いた糖化
米麹及び蒸米培地を用いた糖化実験を、以下に従い行った。50 gの米麹、L-乳酸、及び163 mlの水道水を500 ml容三角フラスコに分注し、培養温度(20℃、30℃、40℃、或いは50℃)で1.5時間保温する事で液温を平衡化した。特に断りのない限り、L-乳酸終濃度を3.1 mM (0.025% [vol/vol])とした。75 gの米を上記同様の手法で蒸し、室温になるまで放冷した。これを三角フラスコに添加し、培養液総量を300 mlとした。フラスコを目的温度に設定した恒温槽に移して培養を開始した。24時間毎に培養液を撹拌し、遠心分離(20,600 × g、5分)により培養上清を回収した。培養上清は孔径0.45 μmのフィルター(Millex LH filter; Millipore, Bedford, MA, USA)で濾過し、液体クロマトグラフィー(HPLC)及びガスクロマトグラフィー(GC)分析に供試するまで4℃で保存した。対照実験として、精製加水分解酵素(α-アミラーゼ及びグルコアミラーゼの混合物； ナガセケムテックス、大阪)を用い、50℃で蒸米の糖化を行った。すなわち、蒸米125 gに水道水を加えて液量を300 mlとし、温浴により65℃まで加温した。そこへ、上記精製加水分解酵素を0.9 g添加し、十分に撹拌した。これを50℃に設定した恒温槽へ移し、7日間保温した。糖化液を経時的に採取し、発酵液同様に成分分析に供試した。

（４）培養条件の最適化
麹菌によるアグマチン生産の最適化を図る事を目的とし、種々の培養条件(培養温度、添加する有機酸、及び有機酸塩)を検討した。初めに、上記と同様の培養液を調製し、これを20℃、30℃、40℃、或いは50℃で培養した。続いて、L-乳酸添加量に依存したアグマチン蓄積量の変動を解析するため、L-乳酸終濃度の異なる培養液を調製し、30℃で培養した(L-乳酸濃度: 3.1 mM [0.025%、vol/vol]、12.2 mM [0.1%、vol/vol]、及び61.0 mM [0.5%、vol/vol])。併せて、乳酸イオンがアグマチン生産に与える影響を調べるため、61.0 mM L-乳酸ナトリウムを培養液に添加し培養を行った(30℃)。更に、清酒中に含まれる有機酸の影響を解析するため、培養液に61.0 mM酢酸、30.5 mMコハク酸、或いは20.3 mMクエン酸を添加し培養を行った(30℃)。なお、これら有機酸の濃度は、プロトン終濃度が61.0 mMとなる様調整した(L-乳酸61.0 mMから電離しうるプロトン相当)。全ての培養において培養上清を経時的に採取し、上清中のアグマチンをHPLCにより定量した。また、遊離アルギニン(アグマチン合成の基質)がアグマチン生産に与える影響を解析した。すなわち、50 g 米麹に種々の濃度のL-乳酸、及び水道水を添加して液量300 mlとし、ここへ10 mM L-アルギニンを添加して30℃で保温して、液中に蓄積したアグマチンをHPLCにより定量した。

（５）培養上清、食酢、及び甘酒からのポリアミン抽出及びHPLC解析
培養上清、食酢、及び甘酒からのポリアミン抽出、及びHPLCによるポリアミンの定性・定量は既報(Morimoto N, Fukuda W, Nakajima N, Masuda T, Terui Y, Kanai T, Oshima T, Imanaka T, Fujiwara S. 2010. Dual biosynthesis pathway for longer-chain polyamines in the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakarensis. J. Bacteriol. 192:4991-5001., 森屋 利幸 2015. HPLCによるポリアミン分析. ポリアミン 2:15-18.)に準拠した。すなわち、供試サンプルを超純水で適宜希釈し、得られた希釈液500 μlに対して50 μlの10% (wt/vol)トリクロロ酢酸(trichloroacetic acid、TCA； 和光純薬、大阪)を加え、ボルテックスを用いて1分間十分に混和し、核酸、タンパク質等の生体高分子を変性させると共に、それらからポリアミンを解離させた。遠心分離(4℃、20,600 × g、5分)により残渣を沈殿させ、遠心上清をポリアミン画分として回収した。内部標準物質(カルドペンタミン或いはスペルミン)を、終濃度10 μMとなる様ポリアミン画分に添加し、孔径0.45 μlのフィルター(Millipore)で濾過した。濾液100 μlを以降のHPLC解析に供試した。

抽出されたポリアミンの分離には、陽イオン交換カラム(CK10S陽イオン交換カラム[内径8 mm × 50 mm]； GLサイエンス、東京)を用いた。カラム・オーブンは70℃に加温し、移動相(100 mMクエン酸三カリウム、1.7 M塩化カリウム、650 mM 2-プロパノール、0.24 mMポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテル[Brij 35； 和光純薬]、及び65 mM塩酸)を用いてカラムを平衡化した(流速1.0 ml/分)。分離・溶出されたポリアミンを、o-フタルアルデヒド(OPA； 東京化成工業、東京)を含む発色液(400 mMホウ酸、400 mM水酸化ナトリウム、0.49 mM Brij 35、7.5 mM OPA、171 mMエタノール、及び28 mM 2-メルカプトエタノール)と混和する事で誘導体化した。発色液の流速は0.5 ml/分とした。誘導体化されたポリアミンを、蛍光検出器(GL-5453A； GLサイエンス)により検出した(励起波長、320 nm； 放出波長、450 nm)。

（６）脱脂ゴマ粕の発酵
（６−１）発酵基材
脱脂ゴマ粕を供試した。

（６−２）菌株及び培養条件
脱脂ゴマ粕の発酵には、清酒用或いは醤油用麹(共にAspergillus oryzae)を供試した。製麹工程は既報(財団法人 日本醸造協会 1978. 増補改訂 清酒製造技術)に準拠した。

（６−３）麹菌を用いた脱脂ゴマ粕の発酵
20 gの脱脂ゴマ粕、0.15 mlのL-乳酸、0.3 gの食品用A. niger由来セルラーゼ(AC40； エイチビィアイ株式会社、宍粟、兵庫)、及び100 mlの水道水を300 ml容三角フラスコに分注し、1時間静置した(粕への吸水)。20 gの清酒用或いは醤油用米麹を添加して総量を150 mlとし、30℃で3日間保温した(静置培養)。培養液の撹拌及び培養液遠心上清(17,900 × g、2分)の回収は1日毎に行った。得られた遠心上清をゴマ醪とし、孔径0.45 μmのフィルター(GLクロマトディスク13P； GLサイエンス株式会社、東京)で濾過した後、高速液体クロマトグラフィー(high-performance liquid chromatography、HPLC)解析に供試した.

（６−４）HPLCによるポリアミンの定量
ゴマ醪に含まれるポリアミンの定量は既報(Morimoto et al. 2010. J. Bacteriol. 192:4991.)に準拠した。

結果
（１）食酢に含まれるポリアミン
既報(Galgano F, Caruso M, Condelli N, Favati F. 2012. Focused review: agmatine in fermented foods. Front. Microbiol. 3:199., Okamoto A, Sugi E, Koizumi Y, Yanagida F, Udaka S. 1997. Polyamine content of ordinary foodstuff and various fermented foods. Biosci. Biotechnol. Biochem. 61:1582-1584.)によれば、清酒は著量のアグマチン(~ 2 mM)を含有するにも関わらず、それを原材料として製造される米酢は、アグマチンを含めたいかなるポリアミンも含んでいない。近年のゲノム解析(Andres-Barrao C, Falquet L, Calderon-Copete SP, Descombes P, Ortega Perez R, Barja F. 2011. Genome sequences of the high-acetic acid-resistant bacteria Gluconacetobacter europaeus LMG 18890^Tand G. europaeus LMG 18494 (reference strains), G. europaeus 5P3, and Gluconacetobacter oboediens 174Bp2 (isolated from vinegar). J. Bacteriol. 193:2670-2671., Azuma Y, Hosoyama A, Matsutani M, Furuya N, Horikawa H, Harada T, Hirakawa H, Kuhara S, Matsushita K, Fujita N, Shirai M. 2009. Whole-genome analyses reveal genetic instability of Acetobacter pasteurianus. Nucleic Acids Res. 37:5768-5783.)から、食酢醸造に関与する酢酸菌はアグマチン脱尿素酵素(アグマチナーゼ)遺伝子オルソログを保持する事が推測されており、酢酸菌によるアグマチンのプトレスシンへの転換が示唆されるものの、上記文献に例示される食酢からはプトレスシン、及びスペルミジンも検出されない事から、上記は互いに矛盾する結果である。これを検証するため、製造手法の異なる自社米酢2種のポリアミン含量を、HPLCにより解析した。供試サンプルとして、米のみを原材料として用い、麹菌及び酵母による並行複発酵で得られた酒醪を、酢酸菌を用いた酢酸発酵により食酢へ転換したもの(「純米酢1、2、及び3」とする)、及び蒸米を精製加水分解酵素(α-アミラーゼ及びグルコアミラーゼ)及び米麹を用いて高温(65℃)で糖化した糖化液と、醸造(精製)エタノールの混合液を酢酸発酵させたもの(「米酢」とする)を用いた(表1)。

HPLC解析の結果、純米酢1からは0.70 mMのアグマチンが検出されたのに対し、米酢のアグマチン含量は痕跡量(0.069 mM)であった(図2及び3A)。また、プトレスシン含量にも差異が認められた(純米酢1、0.059 mM； 米酢、0.0038 mM) (図3B)。これらを踏まえ、製造工程、原材料、及び発酵に使用する微生物が異なる種々の食酢のポリアミン含量を解析した。その結果、純米酢1同様に、並行複発酵を経由して製造された純米酢2及び3も著量のアグマチンを含有していた(純米酢2、0.67 mM； 純米酢3、0.35 mM) (図3A)。一方で、精製加水分解酵素を用いた高温(65℃)処理により得られた糖化液を原料とした米黒酢や、前述の米酢のアグマチン含量は、純米酢と比較して著しく低かった(表1及び図3A)。これらの結果から、麹菌及び酵母のアグマチン生産への関与が示唆された。更に、麹菌を使用するものの、糖化を高温(65℃)で行った米酢はアグマチンを含まない事から(表1及び図3A)、糖化工程を比較的低温で行う事が重要であると推測された。なお、いずれの食酢もスペルミジンを殆ど含んでおらず、またサンプル間での顕著な差異も検出されなかった(図3C)。スペルミンはどの食酢からも検出されなかった(データ示さず)。

（２）アグマチン生産微生物の同定
既報(Galgano F, Caruso M, Condelli N, Favati F. 2012. Focused review: agmatine in fermented foods. Front. Microbiol. 3:199., Okamoto A, Sugi E, Koizumi Y, Yanagida F, Udaka S. 1997. Polyamine content of ordinary foodstuff and various fermented foods. Biosci. Biotechnol. Biochem. 61:1582-1584.)によれば、清酒に含まれるアグマチンの生産微生物として、酵母、麹菌、乳酸菌、或いは硝酸還元菌が示唆されている。これら知見、並びに上記の結果を踏まえ、初めに、麹菌のアグマチン生産能を、蒸米培地を用いた糖化実験を行う事で検証した。麹菌株として、清酒用、或いは醤油用麹を用いた。一般に、醤油用麹菌はプロテアーゼ生産性、及びそれらの酵素活性が清酒用麹と比較して高く、アグマチン合成の基質となるアルギニンをより多く蓄積しうる醤油用麹菌は、本研究の目的に適した菌株であると考えられた。雑菌汚染抑止のために3.1 mM (0.025%)のL-乳酸を添加し、20℃で7日間培養を行った。蒸米の液化は培養2日間のうちに完了した(データ示さず)。醤油用麹を接種した培養液中のアミノ酸量は予想と一致し、清酒用と比較して高かった(データ示さず)。しかしながら、清酒用麹が7日間の培養で5.06 mMのアグマチンを蓄積したのに対し、醤油用麹は痕跡量のアグマチンを蓄積するにとどまった(~ 0.2 mM) (図4)。これらの結果から、清酒用麹菌がアグマチン生産微生物である事が示された。これは、清酒が数mMのアグマチンを含むという先行知見(Galgano F, Caruso M, Condelli N, Favati F. 2012. Focused review: agmatine in fermented foods. Front. Microbiol. 3:199., Okamoto A, Sugi E, Koizumi Y, Yanagida F, Udaka S. 1997. Polyamine content of ordinary foodstuff and various fermented foods. Biosci. Biotechnol. Biochem. 61:1582-1584.)とも一致する。これらを踏まえ、以降の実験では清酒用麹菌を用いた。

一般に、アグマチンを経由するポリアミンの生合成経路は植物、アーキア、及び一部のバクテリアに存在する事が知られている(Tabor CW, Tabor H. 1985. Polyamines in microorganisms. Microbiol. Rev. 49:81-99.)。哺乳類もADC (図1)を有するがその活性は弱く、細胞中に存在するアグマチンの殆どは食餌由来である(Galgano F, Caruso M, Condelli N, Favati F. 2012. Focused review: agmatine in fermented foods. Front. Microbiol. 3:199. )。一方、酵母や麹菌を含む子嚢菌はオルニチンの脱炭酸反応を経由してポリアミンを生合成すると考えられている(図1) (Valdes-Santiago L, Ruiz-Herrera J. 2014. Stress and polyamine metabolism in fungi. Front. Chem. 1:42., Kumar S, Saragadam T, Punekar NS. 2015. Novel route for agmatine catabolism in Aspergillus niger involves 4-guanidinobutyrase. Appl. Environ. Microbiol. 81:5593-5603.)。麹菌のゲノム解析からも、A. oryzaeはadc遺伝子を保持しない事が示唆されている(Machida M, Asai K, Sano M, Tanaka T, Kumagai T, Terai G, Kusumoto K, Arima T, Akita O, Kashiwagi Y, Abe K, Gomi K, Horiuchi H, Kitamoto K, Kobayashi T, Takeuchi M, Denning DW, Galagan JE, Nierman WC, Yu J, Archer DB, Bennett JW, Bhatnagar D, Cleveland TE, Fedorova ND, Gotoh O, Horikawa H, Hosoyama A, Ichinomiya M, Igarashi R, Iwashita K, Juvvadi PR, Kato M, Kato Y, Kin T, Kokubun A, Maeda H, Maeyama N, Maruyama J, Nagasaki H, Nakajima T, Oda K, Okada K, Paulsen I, Sakamoto K, Sawano T, Takahashi M, Takase K, Terabayashi Y, Wortman JR, Yamada O, Yamagata Y, Anazawa H, Hata Y, Koide Y, Komori T, Koyama Y, Minetoki T, Suharnan S, Tanaka A, Isono K, Kuhara S, Ogasawara N, Kikuchi H. 2005. Genome sequencing and analysis of Aspergillus oryzae. Nature. 438:1157-1161.)。一方で、4つのodcオルソログを保持すると推測されており、そのいずれかの遺伝子産物がADCの機能を代替している可能性も示唆される。

（３）アグマチン生産における至適培養温度の探索
清酒醸造における並行複発酵は、良好な香気成分の揮発を抑制するため低温(15℃程度)で行われるが(Takahashi K, Kohno H. 2016. Different polar metabolites and protein profiles between high- and low-quality Japanese ginjo sake. PLOS ONE 11:e0150524.)、麹菌の生育至適温度は30℃以上である(財団法人 日本醸造協会 1978. 増補改訂清酒製造技術, Kobayashi A, Sano M, Oda K, Hisada H, Hata Y, Ohashi S. 2007. The glucoamylase-encoding gene (glaB) is expressed in solid-state culture with a low water content. Biosci. Biotechnol. Biochem. 71:1797-1799., Oda K, Kakizono D, Yamada O, Iefuji H, Akita O, Iwashita K. 2006. Proteomic analysis of extracellular proteins from Aspergillus oryzae grown under submerged and solid-state culture conditions. Appl. Environ. Microbiol. 72:3448-3457.)。従って、生育至適温度に近い環境下で培養する事で、推定ADC活性の上昇、及びそれに伴うアグマチン蓄積量の上昇が期待された。これを検証するため、清酒用麹菌を用い、種々の培養温度(20℃、30℃、40℃、或いは50℃)で糖化実験を行った。対照実験として、α-アミラーゼ及びグルコアミラーゼを用いた蒸米の高温糖化(50℃)も行った。高温になる程液化の進行は速く、40℃及び50℃の系では、培養1日目で液化が完了した(データ示さず)。酵素糖化の場合、液化は数時間で完了した(データ示さず)。30℃以下では、液化は培養2-3日目に完了した(データ示さず)。一方で、アグマチン蓄積量は30℃で最大となり、6日間の培養で5.21 mMのアグマチンが蓄積した(図5)。40℃以上では、アグマチンの蓄積量は著しく減少した(6日目アグマチン濃度: 40℃、2.91 mM； 50℃、1.18 mM) (図5)。また、酵素糖化では、アグマチンを含めたいかなるポリアミンも検出されなかった(図5)。これらの結果から、清酒用麹菌を用いたアグマチン生産における至適温度は30℃である事が示された。以降の培養実験は30℃で行った。

図4及び図5の結果で、20℃で培養した際のアグマチン蓄積量に差が見られた(最終のアグマチン濃度: 図4、5.06 mM； 図5、3.34 mM)。両実験ではバッチの異なる米麹を使用しており、アグマチン蓄積量の差異は、米麹の品質(菌糸の蒸米内部への伸長程度、製麹後の保存期間等)の差が反映されたものと考えられる。アグマチンの安定的かつ効率的な生産には、米麹の品質管理が極めて重要である事が示唆された。

本実験結果から、麹菌の生育至適温度付近でアグマチン生産量が最大となる事が明らかとなった(図5)。麹菌が産生・分泌する細胞外加水分解酵素は一般に耐熱性に優れており、60℃付近の高温であっても十分な酵素活性を発揮しうる(Kundu AK, Das S. 1970. Production of amylase in liquid culture by a strain of Aspergillus oryzae. Appl. Microbiol. 19:598-603.)。高温での仕込みにより効率的な液化・糖化が期待できるが、麹菌そのものの生理活性は著しく減少する事が予想され、40℃以上での培養で観察されたアグマチン蓄積量の減少は、この生理活性の低下(推定ADC活性の低下)に起因すると考えられる。

（４）L-乳酸添加量に依存したアグマチン蓄積量の変動
清酒用麹菌は古くから乳酸菌と共存してきた事(財団法人日本醸造協会1978. 増補改訂 清酒製造技術)、或いは近年では、雑菌汚染抑止のため酒母に醸造乳酸を添加している事から、清酒用麹菌は醸造期間を通じ、常に乳酸に暴露されていると考えられる。酵母では、酢酸、プロピオン酸、及び乳酸等の有機酸(弱酸)により、ポリアミン排出機能を有するプロトンアンチポーターの発現が誘導される事(Albertsen M, Bellahn I, Kramer R, Waffenschmidt S. 2003. Localization and function of the yeast multidrug transporter Tpo1p. J. Biol. Chem. 278:12820-12825.他)、原核生物はアミノ酸の脱炭酸を介して細胞内のプロトンを消費し、細胞内pHの恒常性を保つ事、更に脱炭酸により生じるポリアミン類を細胞外へ排出する事(Jung IL, Kim IG. 2003. Polyamines and glutamate decarboxylase-based acid resistance in Escherichia coli. J. Biol. Chem. 278:22846-22852., Samartzidou H, Mehrazin M, Xu Z, Benedik MJ, Delcour AH. 2003. Cadaverine inhibition of porin plays a role in cell survival at acidic pH. J. Bacteriol. 185:13-19., Chattopadhyay MK, Tabor H. 2013. Polyamines are critical for the induction of the glutamate decarboxylase-dependent acid resistance system in Escherichia coli. J. Biol. Chem. 288:33559-33570., Chattopadhyay MK, Keembiyehetty CN, Chen W, Tabor H. 2015. Polyamines stimulate the level of the σ38 subunit (RpoS) of Escherichia coli RNA polymerase, resulting in the induction of the glutamate decarboxylase-dependent acid response system via the gadE regulon. J. Biol. Chem. 290:17809-17821.)が知られている。これら知見から、清酒用麹菌のアグマチン生産・分泌は耐酸機構の一環であり、より強い有機酸ストレスを付与する事でアグマチン生産を促進できるものと推測された。上記を踏まえ、L-乳酸濃度を0 mM、3.1 mM (0.025%)、12.2 mM (0.1%)、或いは61.0 mM (0.5%)に調整した培養液で清酒用麹菌を培養し(糖化)、アグマチン蓄積量を解析した。培養開始時のpHは以下の通りである: 0 mM、6.26； 3.1 mM、5.13； 12.2 mM、3.90； 61.0 mM、2.95。L-乳酸添加量依存的にアグマチン蓄積量は上昇し、61.0 mM L-乳酸の添加により、3.1 mMと比較し、アグマチン蓄積量は約2倍に上昇した(7日目アグマチン濃度: 3.1 mM、4.46 mM； 61.0 mM、7.60 mM) (図6A)。61.0 mMを超えるL-乳酸を添加しても、更なるアグマチン蓄積量の増加は観察されなかった(データ示さず)。これらの結果から、アグマチンの効率的生産には61.0 mMのL-乳酸添加が有効である事が示された。一方、乳酸非添加の系ではアグマチンは蓄積せず、著量(4.60 mM)のプトレスシンが検出された(図6A)。この事から、L-乳酸により、アグマチナーゼによるアグマチンの脱尿素反応(図1)が阻害される事が示唆された。この阻害がpHの低下、或いは乳酸イオンのどちらに起因するのかを検証するため、61.0 mMのL-乳酸ナトリウムを添加して培養を行った(培養開始時のpH、6.18)。その結果、L-乳酸添加時と同様に、主たるポリアミンとしてアグマチンが検出された(培養7日目: アグマチン、3.07 mM； プトレスシン、0.56 mM) (図6B)。この事から,アグマチナーゼ(図1)は乳酸イオンをシグナル分子としたフィードバック制御機構(酵素活性阻害或いは転写抑制)により調節を受ける事が示唆された。

上記から、古来乳酸菌と共生して来た清酒用麹菌は、乳酸イオンを特異的に認識する機構を獲得した可能性が考えられる。また、L-乳酸添加量依存的なアグマチン蓄積量の変動が見られた事から、本実験で観察されたアグマチン蓄積量の上昇は、低pH及び乳酸イオンの相乗的な効果に起因すると考えられる。併せて、1分子中に4つの窒素原子を持つアグマチンはプトレスシン(2つ)と比較し、より効率的に環境pHを上昇させる事が出来ると期待される。詳細の解明には、ADC、アグマチナーゼ、及びポリアミン(アグマチン)トランスポーター遺伝子の転写量解析や、ポリアミン生合成に関与するタンパク質の酵素学的解析(pH/乳酸イオン依存性)が必須である。

（５）種々の有機酸がアグマチン生産に与える影響
既報(浅野忠男2007. 生物工学85:63-68.)によれば、清酒中には様々な有機酸が含まれ、その内の約80%を乳酸、コハク酸、及びリンゴ酸が占める。少量成分としてクエン酸及び酢酸が含まれる(島津 善美, 藤原 正雄, 渡辺 正澄, 太田 雄一郎. 2009. 清酒に含まれる有機酸の酸味に及ぼす飲用温度の影響. 日本調理学会誌 42:327-333.)。これらを踏まえ、酢酸、コハク酸、及びクエン酸が清酒用麹菌によるアグマチン生産に与える影響を解析した。図6Aで示した様に、61.0 mMのL-乳酸(1価の酸)の添加によりアグマチン蓄積量が顕著に上昇した。各有機酸の濃度はそれぞれの価数を加味し、プロトン終濃度が61.0 mMとなる様調整した(酢酸、61.0 mM； コハク酸、30.5 mM；クエン酸、20.3 mM)。培養開始時のpHは以下の通りである: L-乳酸、3.10； 酢酸、3.81；コハク酸、3.70； クエン酸、3.19。いずれの有機酸の添加でもアグマチンが主たるポリアミンとして検出され、特にコハク酸及びクエン酸は、L-乳酸と同等のアグマチン産生促進効果を示した(培養6日目アグマチン濃度: L-乳酸、8.19 mM； コハク酸、9.04 mM；クエン酸、8.58 mM) (図7)。一方で酢酸の効果はやや低く、最終のアグマチン蓄積量は5.91 mMであった(図7) 。

（６）市販甘酒に含まれるポリアミン
上記の結果から、有機酸存在下、清酒用麹菌を用いて製造された甘酒(糖化液)は著量のアグマチンを含む事が推測された。これを検証するため、異なる製造業者より販売されている、米麹を原材料として含む5種の甘酒のアグマチン量を、HPLCにより定量した。サンプル3及び5からは約1 mMのアグマチンが検出されたが、他サンプルのアグマチン含量は痕跡量(~ 0.1 mM)であった。これらの値は、61.0 mM L-乳酸存在下、清酒用麹菌を用いて発酵させた糖化液に含まれるアグマチン量(8.19 mM) (図7及び8)と比較して著しく低い。これらの結果は、供試した甘酒が有機酸非存在下や高温条件下での糖化、或いは清酒用以外の麹菌を使用して製造された事を示唆する。

図8に示した結果は、本報告の発酵工程管理手法が、効率的なアグマチン高生産を達成する上で極めて有効な手段である事を示すものである。

（７）遊離L-アルギニン添加による効率的なアグマチン生産
図1に示した様に、一般にアグマチンはL-アルギニンが脱炭酸される事で合成される。清酒用麹菌もL-アルギニンからアグマチンを生合成すると推測し、遊離L-アルギニンがアグマチン生産に与える影響を解析した。すなわち、清酒用米麹をL-乳酸及びL-アルギニンを含む水溶液中で保温(30℃)し、液中に蓄積したアグマチンをHPLCにより定量した。L-アルギニン及びL-乳酸共に非添加、及び10 mM L-アルギニン存在下では、実験を通じて明瞭なアグマチン蓄積が見られなかったのに対し(~ 0.2 mM)、L-アルギニン及びL-乳酸の両方を添加した場合、L-乳酸添加量依存的にアグマチン蓄積量が上昇した(60分のアグマチン濃度: 3.1 mM L-乳酸、0.33 mM； 12.2 mM L-乳酸、0.64 mM； 61.0 mM L-乳酸、0.81 mM) (図9)。この結果から、L-乳酸存在下であれば、遊離L-アルギニンは迅速にアグマチンへ転換される事が示された。安価なL-アルギニンを基質とした、麹菌或いは麹菌ADCを用いた効率的なアグマチン生産への応用が期待される。また、L-乳酸を含む様々な有機酸によりアグマチン生産が促進される事から(図6A及び7)、麹菌ADCは低pH環境下でも十分な酵素活性を発揮しうると考えられる。その様な耐酸性タンパク質は他の物理・化学ストレス(高温等)でも変性せず安定である場合が多く(Francois JA, Starks CM, Sivanuntakorn S, Jiang H, Ransome AE, Nam JW, Constantine CZ, Kappock TJ. 2006. Structure of a NADH-insensitive hexameric citrate synthase that resists acid inactivation. Biochemistry 45:13487-13499., Mullins EA, Starks CM, Francois JA, Sael L, Kihara D, Kappock TJ. 2012. Formyl-coenzyme A (CoA):oxalate CoA-transferase from the acidophile Acetobacter aceti has a distinctive electrostatic surface and inherent acid stability. Protein Sci. 21:686-696.)、アグマチンの効率的な工業生産を検討する上で、麹菌由来ADCは極めて有望な酵素剤となりうると期待される。

（８）麹菌を用いた脱脂ゴマ粕の発酵
材料及び方法に記載した手法で、麹菌を用いた脱脂ゴマ粕の発酵実験を行い、培養液上清(ゴマ醪)中に蓄積するポリアミンを、HPLCにより定性・定量した。その結果、清酒用麹を用いて発酵させたゴマ醪からは約2 mMのアグマチンが検出されたのに対し、醤油用麹の場合、アグマチン量は痕跡量(0.05 mM)であった(図10)。更に、前者からは、保持時間7分の位置に未知アミンが検出された(図10A)。また、いずれのゴマ醪からも、ほぼ等量のプトレスシンが検出されたが、未知シグナルと重複しており、正確な定量は出来なかった(図10A)。上記から、蒸米以外の原料も、清酒用麹菌を用いた効率的なアグマチン生産に供試しうる事が示された。

Claims (8)

1. 発酵原料及び有機酸の存在下においてｐＨ５．５以下、かつ２７〜３３℃の範囲内で培養することによって、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅにアグマチン含有生成物を発酵により産生させる工程
   を含む、アグマチンの製造方法。
2. 前記培養を、ｐＨ５．１３以下で行う、請求項１に記載の製造方法。
3. 前記培養の開始時点以後、４８時間経過時点までに、培養ｐＨが６以下となり、その時点から少なくとも４８時間以上前記培養をｐＨ６以下にて行う、請求項１に記載の製造方法。
4. 前記有機酸が、乳酸、コハク酸、クエン酸、酢酸、ピルビン酸及びリンゴ酸からなる群より選択される少なくとも一種の有機酸である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の製造方法。
5. 前記発酵原料が、イネ科植物の種子、マメ科植物の種子、芋類の根及び胡麻類の種子、並びにそれらの加工品からなる群より選択される少なくとも一種の天然素材由来物、及び／又はＬ−アルギニンである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の製造方法。
6. 前記アグマチン含有生成物が、糖化液である、請求項１〜５のいずれか一項に記載の製造方法。
7. （１）請求項６に記載の工程；及び
   （２）前記糖化液を原料として用いてアルコール発酵を行い、アルコール液を得る工程を含む、アルコール液の製造方法。
8. （１）請求項６に記載の工程；
   （２）前記糖化液を原料として用いてアルコール発酵を行い、アルコール液を得る工程；及び
   （３）前記アルコール液を原料として用いて酢酸発酵を行い、酢を得る工程を含む、酢の製造方法。

Images