JP7007663B2 - クロモジ抽出物 - Google Patents
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Description
項1.
クロモジ属植物又はその抽出物を含有する生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項2.
前記生活習慣病が、肥満、筋持久力低下又は肝機能低下である、項1に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項3.
前記クロモジ属植物が、クロモジ属植物の全草又は葉部、茎部、根部、種子、及び花部からなる群より選択される1又は2以上に由来する、項1又は2に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項4.
クロモジ属植物の品種が、ケクロモジ、ヒメクロモジ、及びオオバクロモジからなる群より選択される1又は2以上である、項1~3のいずれか1項に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項5.
前記抽出物が、水抽出物、有機溶媒抽出物又は含水有機溶媒抽出物である、項1~4のいずれか1項に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項6.
経口、静脈内注射、吸入又は経皮により投与される、項1~5のいずれか1項に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項7.
飲食料品、医薬部外品、又は医薬品である、項1~6のいずれか1項に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
項8.
前記飲食料品が、茶飲料である、項1~7のいずれか1項に記載の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物。
本発明者らは、クロモジ属植物又はその抽出物若しくは精製物が、優れた生活習慣病に対する効果、限定はされないが、例えば肥満改善効果、筋持久力改善効果、及び肝機能改善効果を有することを新たに見出した。クロモジ属植物は、天然に由来するものであり、古来より食用されていることから、安全で有効な肥満改善用途、筋持久力増強用途、又は肝機能改善用途に好適である。本発明は、医薬的な用途にも用いられることが可能であるが、非医薬的な用途としても用いられ得る。
本発明の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物は、飲食料品の一つの成分として配合することが可能である。これらの飲食料品は、限定はされないが、肥満改善、筋持久力増強及び/又は肝機能改善等のために用いられる飲食料品として用いることも可能であり、例えば、病院等の医療機関で患者のために提供され得る。またはこれらの飲食料品は、限定はされないが、機能性飲料又は機能性食品として提供することも可能であり、これらの機能性飲食料品は、医療機関の他、ドラッグストア、コンビニエンスストア、スーパーマーケット、百貨店等で提供され得る。機能性飲食料品とは、国や公共団体が許可・指定している医薬品的な効能を有する飲食品又は企業が国等に所定の効果を届け出た内容に基づき機能性を表示した飲食料品をいう。機能性食品には、特定保健用食品、栄養機能食品、機能性表示食品、老人用食品、健康補助食品(バランス栄養食、サプリメント)等が挙げられる。医薬品的な効能又は機能性を表示したパッケージや容器、添付文書、取扱い説明書等を含む飲食品も含まれる。国等への申請書に医薬品的な効能又は機能性を表示した飲食品も含まれる。
本発明の生活習慣病予防及び/又は改善用組成物は、医薬品や医薬部外品とされる場合は、適宜の形態に製剤化し、任意の投与形態でヒト又は動物に投与することができる。投与形態としては、限定はされないが、例えば、経口、経皮、経腸、経粘膜、注射などが挙げられる。本発明の効果を顕著に奏する観点から、投与形態は経口投与が好ましい。
ケクロモジ(L. sericea)の葉及び茎の乾燥粉砕物各20gを、それぞれ70%エタノール水溶液300mlに分散、撹拌させ、室温にて24時間抽出した。抽出上清を濾別したのち、残渣を再び70%エタノール水溶液に分散させ、加熱還流後、抽出上清を濾別した。更に残渣を70%エタノール水溶液に分散させ、超音波処理1時間後、抽出上清を濾別し、合一した上清を順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、ケクロモジの葉による抽出物1(6g)及びケクロモジの茎による抽出物2(6g)を得た。
ケクロモジ(L. sericea)の葉の乾燥粉砕物100gに水1.5Lを加え、ミキサーで粉砕後、撹拌及び超音波付与を行い、抽出上清を濾別及び脱水することにより、水と併せて抽出液(2L)を得た。更に、順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、抽出物3(20g)を得た。
ケクロモジ(L. sericea)の生葉及び生茎の混合物(1kg)に水1Lを加え、ミキサーで粉砕後、撹拌及び超音波付与を行い、抽出上清を濾別、洗浄、及び脱水する事により、水と併せて抽出液(2L)を得た。更に、順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、抽出物4(20g)を得た。
ケクロモジ(L. sericea)の生葉及び生茎の混合物(1kg)に水1Lを加え、ミキサーで粉砕後、撹拌及び超音波付与を行い、抽出上清を濾別及び脱水後、圧搾する事により、抽出液(1.5L)を得た。更に、順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、抽出物5(25g)を得た。
ケクロモジ(L. sericea)の生葉、生茎(1kg)を、40℃冷風乾燥機で一晩乾燥後、粉砕機で微粉砕し、ケクロモジ乾燥粉末(100g)を得た。
オオバクロモジ(L. umbellate var. membrancea (Maxim) Mojama)の茎の乾燥粉砕物1gに水10mLを加え、10分間抽出を行い、その後抽出上清を濾別及び脱水することにより、抽出液を得た。残渣に、再度水10mLを加え、10分間抽出を行い、その後上清を濾別及び脱水した。先に得られた抽出液と混合し、水により20mLに定容することで抽出物6を得た(50mg当量/ml)。
ケクロモジ(L. sericea)の葉及び茎の乾燥粉砕物1gに水20mLを加え、ポリプロピレン製容器に密閉し、電子レンジ(2450MHz、500W)で1分加熱を行った、抽出上清を濾別及び脱水することにより、水と併せて抽出物7(20mL)を得た。同様の方法で加熱時間を5分としたものを抽出物8とした。
ケクロモジ(L. sericea)の葉及び茎の乾燥粉砕物100gに熱水1.5Lを加え、抽出上清を濾別することにより、水と併せて抽出液(2L)を得た。更に、順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、抽出物9(15g)を得た。
ケクロモジ(L. sericea)の生葉及び生茎の混合物(1kg)に熱水1Lを加え、抽出上清を濾別することにより、水と併せて抽出液(1.5L)を得た。更に、順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、抽出物10(10g)を得た。
ケクロモジ(L. sericea)の茎(樹皮、心材含む)の乾燥粉砕物20g及び葉の乾燥粉砕物20gを、それぞれ80%メタノール300mlに分散、撹拌させ、室温にて24時間抽出した。抽出上清を濾別したのち、残渣を再び80%メタノールに分散させ、加熱還流後、抽出上清を濾別した。更に残渣を70%エタノール水溶液に分散させ、超音波処理1時間後、抽出上清を濾別し、合一した上清を順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、ケクロモジの茎による抽出物11(1.5g)及びケクロモジの葉による抽出物12(5g)を得た。これらの抽出物11及び12を、乾燥重量を基準として7:3に重量比率で混合して、抽出物13とした。
ケクロモジ(L. sericea)の茎(樹皮、心材含む)及び葉の乾燥粉砕物各100gに熱水1.5Lを加え、抽出上清を濾別することにより、水と併せて抽出液(2L)を得た。更に、順次減圧濃縮、窒素ガス雰囲気下で減圧乾燥、凍結乾燥を行い、ケクロモジの茎による抽出物14(6g)及びケクロモジの葉による抽出物15(6g)を得た。これらの抽出物14及び15を混合して、抽出物16とした。
7週齢の自然体重増加マウス(C57BL/6J雄マウス、平均体重23.1g)は、チャールスリバー社から購入した。動物を、室温24±3℃、12/12h(A.M.7:00-P.M.7:00)の明暗サイクルの条件で飼育した。マウスは水と食餌を自由に摂取できるようにした。次いで、マウスを体重に応じて、10匹ずつからなる3グループ(低脂肪食群、高脂肪食群、又は高脂肪クロモジ食群)に割り当て、36日間、以下の食餌を自由に供給した(試験期間)。
上記(動物と食餌)の試験期間終了後、血清中のトリグリセリド及びコレステロールについて評価を行った。試験期間終了後、エーテル麻酔下にて採血を行って屠殺し、各種臓器の重量を測定した。また、血清を調製し、分析時まで-30℃にて保存した
(試験例1-1)血清トリグリセリドの測定
血清中のトリグリセリドは、トリグリセライドE-テストワコーキット(和光純薬社製)を用いて、製造業者の説明書に従って定量した。血中トリグリセリドの結果を図1に示す。グラフの縦軸は、血清あたりの濃度をmg/dLで示したものである。
血清中のコレステロールは、コレステロールE-テストワコーキット(和光純薬社製)を用いて、製造業者の説明書に従って定量した。血中コレステロールの結果を図2に示す。図2において、グラフの縦軸は、血清あたりの濃度をmg/dLで示したものである。
実施例8-2で得られたクロモジ属植物の抽出物A、B、C、及び実施例10で得られたクロモジ属植物の抽出物11、12、13を10mg/mL濃度になるようジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解し、リパーゼ阻害活性評価試験に供した。評価試験にはブタ膵リパーゼ(Sigma-Aldrich社製)及びリパーゼキットS(大日本製薬社製)を使用した。測定方法は、キットの方法を一部改変し、96穴マイクロプレートを使用して行った。すなわち、抽出物を含む試料サンプル溶液15μL、酵素溶液(ブタ膵リパーゼ0.05mg/mL、125mmol/Lトリス塩酸(pH 7.5))4μL、発色液(0.1mg/mL 5,5’-ジチオビス(2-ニトロ安息香酸)を含む緩衝液)50μLを入れて混和した後、30℃で5分間予熱し、基質液(6.69mg/mL 三酪酸ジメルカプロール+5.73mg/mL ドデシル硫酸ナトリウム)5μLを加え混和後、遮光下にて30℃で30分間加熱し、反応停止液を加えた後、マイクロプレートリーダーにて412nmの吸光度を測定した。なお、各試料の対照には、試料溶液としてDMSOを添加し、同様に操作して行った。リパーゼ阻害活性評価試験の結果を図3に示す。
[式1]
阻害率(%)=100-(試験区-ブランク)/コントロール×100
(試験例2-1)体重の測定
上記(動物と食餌)の試験期間中、1週間ごとの体重を測定した。体重の測定結果を図4に示す。図4において、グラフの縦軸は各群の体重の平均をgで示したものである。
内臓脂肪量は、重量法により測定した。肝臓、副睾丸、腎臓、腸間膜、脳の各臓器について、それらの内部及び/又は周囲に生成した脂肪量と、全身の内臓脂肪量の総量を測定した。肝臓の脂肪量を、肝臓重量を測定することにより測定した結果を図5に示す。副睾丸の脂肪量を、副睾丸重量を測定することにより測定した結果を図6に示す。腎臓周囲の脂肪量を、腎臓重量を測定することにより測定した結果を図7に示す。腸間膜の脂肪量を、腸間膜重量を測定することにより測定した結果を図8に示す。脳の脂肪量を、脳重量を測定することにより測定した結果を図9に示す。全身の内臓脂肪量の総計についての結果を図10に示す。図5~図10について、グラフの縦軸は脂肪重量の平均をgで示したものである。
そこで、実施例10で得られたクロモジ属植物の抽出物11又は12をマウスの筋細胞であるC2C12細胞へ投与し、筋肉の持久力に関わるGLUT4(glucose transporter 4)遺伝子、及びエネルギー産生に関わるUCP-3遺伝子(uncoupling protein-3)の発現量をqPCR法により定量した。
上記(動物と食餌)の試験期間終了後、血清中のグルコースについて評価を行った。血清中のグルコースは、グルコースCII-テストワコーキット(和光純薬社製)を用いて、製造業者の説明書に従って定量した。血清中グルコースの結果を図13に示す。図13において、グラフの縦軸は、血清あたりの濃度をmg/dLで示したものである。
(試験例3-1)血清中のGOT値、GPT値の測定
上記(動物と食餌)の試験期間終了後、マウスの肝臓重量及び血清中のGOT値、GPT値について評価を行った。上述のように、肝臓重量の測定結果は図5に示されている。血清中のGOT値、GPT値は、トランスアミナーゼCIIテストワコー(和光純薬株式会社社製)を用いて、製造業者の説明書に従って定量した。血清中のGOT値、GPT値の結果をそれぞれ図14又は図15に示す。図14又は図15において、グラフの縦軸は、ユニット(U)を示す。
肝機能の改善効果について詳細に調べるため、10%のアルコールを飲水させる摂餌試験を行った。対照食群と表記されるグループでは、表1に記載の高脂肪食と水が与えられた。アルコール摂取群と表記されるグループでは、表1に記載の高脂肪食と10%のアルコールが与えられた。アルコール摂取クロモジ食群と表記されるグループでは、表1に記載の高脂肪クロモジ食と10%のアルコールが与えられた。その他の条件は、上記(動物と食餌)と同様である。試験期間終了後のマウスの肝臓右葉の切片の観察(HE染色)を行った。その結果を図16に示す。
以下の各処方例中の数値の単位は、全体量を100とした、「重量%」で示す。
上記の実施例で得られた抽出物を用いて、下記組成を混合及び撹拌して均一に調製し、流動層造粒装置により顆粒を得ることができる。顆粒剤は、飲料と共に服用することが可能である。
上記の実施例で得られた抽出物を用いて、下記組成を混合及び撹拌して均一に調製し、カプセル剤に用いるカプセル用粉末を得ることができる。
Claims (4)
- クロモジ属植物の抽出物を含有し、
前記クロモジ属植物が、ケクロモジの茎及び葉部に由来する、
高脂肪食を摂取している者のための、GLUT4遺伝子発現及び/又はUCP-3遺伝子発現促進用組成物。 - 前記抽出物が、水抽出物、有機溶媒抽出物又は含水有機溶媒抽出物である、請求項1に記載の組成物。
- 飲食料品、医薬部外品、又は医薬品である、請求項1又は2に記載の組成物。
- 前記飲食料品が、茶飲料である、請求項3に記載の組成物。
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